JP7356356B2 - 前脳基底部コリン作動性神経細胞（ｂｆｃｎ）を生成するための方法および組成物 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１７年５月２５日に出願された米国特許仮出願第６２／５１１，２７１号、２０１７年１０月１２日に出願された米国特許仮出願第６２／５７１，７４１号、２０１７年１０月１９日に出願された米国特許仮出願第６２／５７４，６３９号、および２０１７年１１月１５日に出願された米国特許仮出願第６２／５８６，５７１号の３５Ｕ．Ｓ．Ｃ．§１１９（ｅ）に基づく優先権を主張し、これらのそれぞれの全内容が、全体として参照により本明細書に組み込まれる。

政府支援の記載
本発明は、一部、国立衛生研究所（ＮＩＨ）により付与された助成金第Ｒ２１ＡＧ０４２９６５号、第Ｕ０１ＡＧ０４６１７０号、第Ｕ０１ＡＧ０４６１７０号、第ＮＳ０４９４４２号、および第Ｕ０１ＡＧ０４６１７０号の下、政府支援で成された。米国政府は、本発明において一定の権利を有する。

配列表の組み込み
添付の配列表におけるデータは、本出願に参照により本明細書に組み込まれる。添付の配列表テキストファイル、名称ＮＹＳＣ１３９０＿４ＷＯ＿Ｓｅｑｕｅｎｃｅ＿Ｌｉｓｔｉｎｇ．ｔｘｔは、２０１８年５月２４日に作成され、５３ｋｂである。ファイルは、Ｗｉｎｄｏｗｓ ＯＳを使用するコンピューターのＭｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｗｏｒｄを使用してアクセスすることができる。

発明の分野
本発明は、全体として、医薬、より具体的には、前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）、特に、プレセニリン２遺伝子（ＰＳＥＮ２）における１つまたは複数の変異に関連する電気生理学的異常が修復されたＢＦＣＮ、を幹細胞から生成するための方法および組成物、並びにアルツハイマー病を治療するための細胞ベースの治療におけるかかるＢＦＣＮの使用の分野に関する。

アルツハイマー病（ＡＤ）は、老年認知症を生じる進行性疾患である。大まかに言うと、当該疾患は、２つのカテゴリー：高齢（６５歳より上）で生じる後期発症と、老齢期より十分前、すなわち、３５～６０歳に生じる早期発症とに分類される。両方のタイプの疾患において、病理は同じであるが、異常性は、より若い年齢で始まる場合において、より重篤かつ広がる傾向にある。当該疾患は、脳における少なくとも２つのタイプの病変：老人斑および神経原線維変化により特徴付けられる。老人斑は、脳組織の切片の顕微鏡解析により目に見える中心にある細胞外アミロイド沈着を有する最大１５０μｍに渡る無秩序の神経網の領域である。神経原線維変化は、互いに巻き付いた２つの対のフィラメントからなる、微小管と関連するタウタンパク質の細胞内沈着である。

斑の主要な成分は、Ａβまたはβ－アミロイドペプチドと呼ばれるペプチドである。Ａβペプチドは、アミロイド前駆体タンパク質（ＡＰＰ）と呼ばれる前駆体タンパク質の３９～４３個のアミノ酸の内部フラグメントである。ＡＰＰタンパク質内のいくつかの変異は、アルツハイマー病の存在と相関する。かかる変異は、ＡＰＰのＡβへのプロセシング（特に、増大した量の長い形態のＡβ（すなわち、Ａβ１～４２およびＡβ１～４３）へのＡＰＰのプロセシング）の増加または変化によりアルツハイマー病を引き起こすと考えられる。プレセニリン遺伝子ＰＳＥＮ１およびＰＳＥＮ２のような他の遺伝子における変異は、増大した量の長い形態のＡβを生じさせるＡＰＰのプロセシングに影響すると間接的に考えられる。これらの知見は、Ａβ（特に、その長い形態）がアルツハイマー病を引き起こす要因であることを示唆している。

米国において、５００万人の人々が、現在、アルツハイマー病の影響を受けており、アルツハイマー病の団体によると、この数は、２０５０年代までに１６００００００人まで増大する。不運なことに、本発明者らは、これらの患者の３～５％を占める遺伝性の原因の直接的な証拠のみを有する。このパーセンテージは、γ－セクレターゼ装置を構成するＡＰＰ、またはＰＳＥＮ１、ＰＳＥＮ２における遺伝性完全浸透性常染色体優性変異により引き起こされる常染色体優性遺伝性の早期発症型家族性アルツハイマー病（ＥＯＦＡＤ）バリアントを包含し［８７］、それらの機能の変化は、Ａβ４２オリゴマーの産生および／またはアミロイド斑の沈着を増大させる。

ヒトの脳におけるこの疾患の病態生理学を完全には再現していないＡＤのマウスモデルの数十年の研究［５、５７、５８］の後、インビトロでのＡＤモデル化の補足的な新たな概念が、［８１］による突破口において浮かび上がり、それにより、所定の因子を使用したｉＰＳＣへの成人ヒト組織リプログラミング、続いて、特定の脳細胞タイプへのインビトロでの分化が可能になる。

ＢＦＣＮは、最も脆弱な神経細胞集団の１つであり、その悪化が、ＡＤ患者における認知低下を一部説明する。ＢＦＣＮ不全および萎縮の証拠とは別に、他の研究により、ＡＤマウスモデルに移植されたヒト胚性幹細胞由来ＢＦＣＮが、移植マウスの行動学習における改善と関連し得ることが明らかになった［９４］。これらの知見は、早期の臨床指標ばかりでなく、ＡＤのサブタイプ特異的な細胞ベースの治療の可能性のあるストラテジーとしての、ｉＰＳＣおよびＥＳＣ由来ＢＦＣＮの関連性を明らかにする［３９］。この細胞ベースの治療ストラテジーを前に進めるために、ヒトＥＳＣおよび／またはｉＰＳＣ由来ＢＦＣＮを生成する精巧な分化プロトコールが、緊急に必要である。

本発明は、胚性幹細胞（ＥＳＣ）および人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）を含む多能性幹細胞（ＰＳＣ）からＢＦＣＮを効率的に得るための再現性の高いプロトコールを提供する。

従って、１つの実施形態において、本発明は、ＢＦＣＮを生成する方法を提供する。当該方法は、神経外胚葉性分化を誘導するためにトランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を含む基礎培地中でＰＳＣを培養することを含む。幾つかの態様において、基礎培地は、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を含む多能性を支持する因子を欠く、改変されたｍＴｅＳＲ１組成である。幾つかの態様において、培養は、スムーズンドアゴニスト（ＳＡＧ）およびプルモルファミンのようなスムーズンドタンパク質の１つまたは複数のアゴニストと共に、ＳＢ４３１５４２およびＬＤＮ１９３１８９のような二重のＳＭＡＤ阻害剤の存在下で行われる。約９、１０、１１又は１２日間の培養後、ＣＤ２７１＋細胞が、選択され、Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）のような、神経細胞の基礎培地中で神経胚様体（ＮＥＢ）を生成する。神経細胞の基礎培地は、場合により、Ｂ２７サプリメント、ｒｈｏ関連タンパク質キナーゼ（ＲＯＣＫ）の阻害剤、神経成長因子（ＮＧＦ）および脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）のうちの１つまたは複数を追加される。約７、８、９または１０日間のＣＤ２７１＋細胞の培養後、形成されたＮＥＢが回収され、解離され、単層培養物として播種され、（場合により、Ｂ２７サプリメント、ＮＧＦおよびＢＤＮＦを追加された）神経細胞の基礎培地中でさらに培養される。ＢＦＣＮへの分化を立証するために、培養された細胞は、Ｔｕｊ１、ＭＡＰ２、ＢＦ１、Ｎｋｘ２．１およびｐ７５の陽性発現について解析される。

別の実施形態において、方法は、プレセニリン１（ＰＳＥＮ１）またはプレセニリン２（ＰＳＥＮ２）の変異などの１つまたは複数の変異を修復するために遺伝子編集システムを用いて処理され得る、ｉＰＳＣを利用する。１つの態様において、変異はＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}であり、その修復は、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性を回復させる。

従って、別の実施形態において、本発明は、対象における疾患または障害を治療する方法を提供する。当該方法は、本明細書に記載されている培養方法を用いて生成されたＢＦＣＮを対象に投与することを含む。ある種の態様において、疾患または障害は、全身性アミロイドーシス、アルツハイマー病、成人発症型糖尿病、パーキンソン病、ハンチントン病、前頭側頭型認知症、およびプリオン関連伝達性海綿状脳症などの、アミロイド形成疾患である。実施形態において、神経細胞興奮性を障害する変異（例えば、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}）を有するＢＦＣＮが対象から得られ、それを使用してｉＰＳＣを生成し、次にこれを遺伝子編集システムで処理して当該変異を修復してもよい。次に、遺伝子編集されたｉＰＳＣを、本明細書に記載されている通りに培養して、神経細胞興奮性が回復したＢＦＣＮを生成し、それを対象に投与して、疾患または障害を治療する。ある種の態様において、疾患または障害はＡＤである。

関連する実施形態において、本発明は、対象においてＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性を回復させる方法を提供する。当該方法は、ａ）対象からＢＦＣＮを単離することであって、ＢＦＣＮは、ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせるＰＳＥＮ２における変異を有する、単離すること；ｂ）（ａ）のＢＦＣＮを使用してｉＰＳＣを生成すること；ｃ）ｉＰＳＣにおけるＰＳＥＮ２変異を修復すること；ｄ）本明細書に記載されている分化プロトコールを用いて（ｃ）のｉＰＳＣを培養して、変異が修復されたＢＦＣＮを生成すること；およびｅ）（ｄ）のｉＰＳＣを対象に投与することであって、それにより対象においてＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性が回復する、投与することを含む。

ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性の低下と関連する疾患もしくは障害の治療または予防のための化合物を同定する方法もまた、提供される。当該方法は、ａ）本明細書に記載されている分化プロトコールを用いて生成されたＢＦＣＮまたは神経胚様体（ＮＥＢ）を候補化合物と接触させることであって、ＢＦＣＮは、ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせるＰＳＥＮ２における変異を含む、接触させること；およびｂ）候補化合物との接触後のＢＦＣＮの神経細胞興奮性を検出することを含む。候補化合物との接触後のＢＦＣＮの神経細胞興奮性の増大は、化合物を、潜在的に、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性を回復させる能力がある化合物と同定する。

本発明はさらに、本明細書に記載されている分化プロトコールを用いて生成されたＢＦＣＮを提供する。当該ＢＦＣＮは、ＰＳＥＮ２の遺伝子編集による修復、並びにＢＦＣＮゲノムに組換え導入された検出可能なマーカーを含んでもよい。

本発明はまた、ＢＦＣＮを生成するためのキットを提供する。当該キットは、ＴＧＦ－βシグナル伝達の阻害剤およびＳｈｈシグナル伝達の活性化因子を有する培地を含む。実施形態において、当該培地は、ｂＦＧＦ、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を含む多能性を支持する因子を欠く、改変されたｍＴｅＳＲ１組成である。実施形態において、当該培地は、スムーズンドアゴニスト（ＳＡＧ）およびプルモルファミンのような、スムーズンドタンパク質の１つまたは複数のアゴニストと共に、ＳＢ４３１５４２およびＬＤＮ１９３１８９のような、二重のＳＭＡＤ阻害剤を含む。当該キットはまた、場合により、Ｂ２７サプリメント、ＲＯＣＫの阻害剤、ＮＧＦ、およびＢＤＮＦのうちの１つまたは複数を追加したＢｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）のような、神経細胞の基礎培地を含んでもよい。実施形態において、当該キットは、ＣＤ２７１＋細胞、並びにＴｕｊ１、ＭＡＰ２、ＢＦ１、Ｎｋｘ２．１、およびｐ７５を陽性発現する細胞の検出用試薬を含む。
[本発明1001]
前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）を生成する方法であって、
神経外胚葉性分化を誘導するためにトランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を含む基礎培地中で多能性幹細胞（ＰＳＣ）を培養する工程であって、前記基礎培地が、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を欠く、工程
を含み、それによりＢＦＣＮが生成される、方法。
[本発明1002]
前記阻害剤が、ＳＭＡＤ阻害剤である、本発明1001の方法。
[本発明1003]
前記阻害剤が、ＳＢ431542、ＬＤＮ193189、またはそれらの組み合わせである、本発明1002の方法。
[本発明1004]
前記活性化因子が、スムーズンドタンパク質のアゴニストである、本発明1001の方法。
[本発明1005]
前記活性化因子が、スムーズンドアゴニスト（ＳＡＧ）、プルモルファミン、またはそれらの組み合わせである、本発明1004の方法。
[本発明1006]
培養が、約4～9日間行われる、本発明1001の方法。
[本発明1007]
前記阻害剤が、約2日目～8日目に前記培地中に存在する、本発明1002の方法。
[本発明1008]
ＣＤ271＋細胞を選択する工程をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1009]
選択する工程が、約9～12日間の培養の後に行われる、本発明1008の方法。
[本発明1010]
神経細胞の基礎培地中で前記ＣＤ271＋細胞を培養して、神経胚様体（ＮＥＢ）を生成する工程をさらに含む、本発明1009の方法。
[本発明1011]
前記ＣＤ271＋細胞を約7日間培養し、それによりＮＥＢを生成する、本発明1010の方法。
[本発明1012]
ａ）前記ＮＥＢを回収する工程；および
ｂ）前記ＮＥＢの細胞を解離させて、前記解離させた細胞を単層として再播種する工程
をさらに含む、本発明1011の方法。
[本発明1013]
前記再播種された細胞を、前記細胞の生存を維持するため成長因子を有する培地中でさらなる持続期間培養し、前記細胞が、Ｔｕｊ1、ＭＡＰ2、ＢＦ1、Ｎｋｘ2．1、およびｐ75を発現する、本発明1012の方法。
[本発明1014]
前記細胞を前記活性化因子または阻害剤と接触させる前に、ｍＴｅＳＲ1基礎培地中でコンフルエントになるまで前記細胞を培養する工程をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1015]
前記ＰＳＣがヒト細胞である、本発明1001の方法。
[本発明1016]
前記ＰＳＣが、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）である、本発明1001の方法。
[本発明1017]
前記ｉＰＳＣが、アルツハイマー病（ＡＤ）と診断されたかまたはそれを有するリスクがある対象に由来する、本発明1016の方法。
[本発明1018]
前記ＰＳＣが、プレセニリン2（ＰＳＥＮ2）に変異を有するＢＦＣＮに由来する、本発明1017の方法。
[本発明1019]
前記変異がＰＳＥＮ2 ^Ｎ141Ｉ である、本発明1018の方法。
[本発明1020]
前記変異が、前記ｉＰＳＣの生成後に修復される、本発明1018の方法。
[本発明1021]
前記変異が、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓシステム、Ｃｒｅ／Ｌｏｘシステム、ＴＡＬＥＮシステム、および相同組換えからなる群より選択される遺伝子編集システムを用いて修復される、本発明1021の方法。
[本発明1022]
前記培養された細胞が、培養の8日目までにＮｋｘ2．1の均一な発現を示す、本発明1001の方法。
[本発明1023]
前記培養された細胞が、培養の8日目までに記録可能な活動電位を示す、本発明1001の方法。
[本発明1024]
前記培養された細胞が、成熟した活動電位を示す、本発明1012の方法。
[本発明1025]
前記培養された細胞が、培養の38日目までに成熟した活動電位を示す、本発明1001の方法。
[本発明1026]
前記培養された細胞が、対照と比較して、Ａβ42／40比の正常化を示す、本発明1020の方法。
[本発明1027]
前記培養された細胞が、対照と比較して、電気生理学的異常の低減を示す、本発明1020の方法。
[本発明1028]
前記電気生理学的異常の低減が、対照と比較して、脱分極電流に応答したスパイクの最大数およびスパイク高の回復を含む、本発明1027の方法。
[本発明1029]
対象において疾患または障害を治療する方法であって、本発明1001の方法を用いて生成されたＢＦＣＮを前記対象に投与することを含み、それにより前記疾患または障害が治療される、方法。
[本発明1030]
前記疾患または障害が、アミロイド形成疾患である、本発明1029の方法。
[本発明1031]
前記疾患または障害が、前記対象のＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性の低下と関連する、本発明1029の方法。
[本発明1032]
前記疾患または障害が、全身性アミロイドーシス、アルツハイマー病、成人発症型糖尿病、パーキンソン病、ハンチントン病、前頭側頭型認知症、およびプリオン関連伝達性海綿状脳症からなる群より選択される、本発明1030の方法。
[本発明1033]
前記ＢＦＣＮが、ＰＳＥＮ2変異が修復されたゲノムを含む、本発明1029の方法。
[本発明1034]
前記ＰＳＥＮ2変異がＰＳＥＮ2 ^Ｎ141Ｉ である、本発明1033の方法。
[本発明1035]
対象における前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）の神経細胞興奮性を回復させる方法であって、
ａ）前記対象からＢＦＣＮを単離する工程であって、前記ＢＦＣＮが、前記ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせる、プレセニリン2（ＰＳＥＮ2）における変異を有する、単離する工程；
ｂ）（ａ）の前記ＢＦＣＮを使用して人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）を生成する工程；
ｃ）前記ｉＰＳＣにおける前記ＰＳＥＮ2の変異を修復する工程；
ｄ）本発明1001の方法を用いて（ｃ）の前記ｉＰＳＣを培養して、前記変異が修復されたＢＦＣＮを生成する工程；および
ｅ）（ｄ）の前記ｉＰＳＣを前記対象に投与する工程であって、それにより前記対象におけるＢＦＣＮの神経細胞興奮性が回復する、投与する工程
を含む、方法。
[本発明1036]
前記変異がＰＳＥＮ2 ^Ｎ141Ｉ である、本発明1035の方法。
[本発明1037]
前記変異が、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓシステム、Ｃｒｅ／Ｌｏｘシステム、ＴＡＬＥＮシステム、および相同組換えからなる群より選択される遺伝子編集システムを用いて修復される、本発明1035の方法。
[本発明1038]
前記対象が、アルツハイマー病を有するか、または有するリスクがある、本発明1035の方法。
[本発明1039]
前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）における神経細胞興奮性の低下と関連する疾患もしくは障害の治療または予防のための化合物を同定する方法であって、
ａ）本発明1001の方法により生成されたＢＦＣＮまたは神経胚様体（ＮＥＢ）を候補化合物と接触させる工程であって、前記ＢＦＣＮが、前記ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせるプレセニリン2（ＰＳＥＮ2）における変異を含む、接触させる工程；および
ｂ）前記候補化合物との接触後に前記ＢＦＣＮの神経細胞興奮性を検出する工程
を含む、方法。
[本発明1040]
前記変異がＰＳＥＮ2 ^Ｎ141Ｉ である、本発明1039の方法。
[本発明1041]
前記疾患または障害が、アルツハイマー病である、本発明1039の方法。
[本発明1042]
ハイスループットな方法である、本発明1039の方法。
[本発明1043]
本発明1001の方法を用いて生成された、前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）。
[本発明1044]
ゲノムが、組換え導入されたマーカーを有する、本発明1043のＢＦＣＮ。
[本発明1045]
トランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を有する培地を含む、前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）を生成するためのキットであって、前記基礎培地が、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を欠き、前記阻害剤が、ＳＢ431542およびＬＤＮ193189を含み、前記活性化因子が、スムーズンドアゴニスト（ＳＡＧ）およびプルモルファミンを含む、キット。
[本発明1046]
人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）を生成するための試薬をさらに含む、本発明1045のキット。
[本発明1047]
遺伝子編集試薬をさらに含む、本発明1045のキット。
[本発明1048]
遺伝子変異を検出するための試薬をさらに含む、本発明1045のキット。
[本発明1049]
前記変異がＰＳＥＮ2 ^Ｎ141Ｉ である、本発明1048のキット。

図１Ａ～１Ｅ：基本的なコリン作動性分化プロトコールの模式的概要。（Ａ）細胞をプレーティングし、二重ＳＭＡＤ阻害の開始およびそれに続く腹側化因子の導入（２日目）の前に、１００％コンフルエントに到達させた（０日目）。１０日目に単層を解離させてｐ７５＋細胞を分取し、１９日目までＮＥＢとして維持する。次に、培養物を再度解離させて単層にする（より詳細については、方法を参照）。（Ｂ）左のパネルは、ＳＨＨ＋プルモルファミンまたはＳＡＧ＋プルモルファミン処理の際にＮｋｘ２．１により誘導されて１４日目（処理の８日目における除去後）に維持されている、ＮＫｘ２．１－ＥＧＦＰ ｈＥＳＣにおける持続性ＥＧＦＰ発現を示す。右のパネルは、１２日目における、示されている腹側化因子の存在下の、またはパターン化されていない（ＵＮＰ）ＮＫｘ２．１－ＥＧＦＰ細胞株における、ｑＰＣＲにより測定したＧＡＰＤＨに対するＮｋｘ２．１、Ｌｈｘ８、およびＢＦ１の相対的遺伝子発現を示す。ｎ＝３、技術的トリプリケート。（Ｃ）典型的な神経細胞ロゼットを示す、１１日目のｆ対照および対照株におけるネスチン、Ｓｏｘ２、およびＤＲＡＱ５の免疫染色の共焦点顕微鏡画像（左パネル）；またはＴｕｊ１、Ｎｋｘ２．１、およびＤＲＡＱ５の共焦点顕微鏡画像（右パネル）。３回の独立した実験の代表的な画像。（Ｄ）ＢＦＣＮマーカーＮｋｘ２．１／Ｔｕｊ１／ｐ７５／ＢＦ１／ＭＡＰ２／ＣｈＡＴを用いた、免疫染色したＮＥＢ凍結切片または単層へと解離したＮＥＢの蛍光顕微鏡画像。（Ｅ）ＭＡＰ２、ＣｈＡＴ、およびＨｏｅｃｈｓｔを用いて５０日目に免疫染色した、単層へと解離したＮＥＢ。蛍光顕微鏡画像、ＳＡＧ＋プルモルファミン処理単独に対するＮＧＦ添加の効果。画像は、少なくとも３回の独立した実験の代表である。

図２Ａ～２Ｆ：ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}神経前駆細胞における基本コリン作動性マーカー。（Ａ）使用した細胞株を示す表。線維芽細胞からリプログラミングされた４種のｉＰＳ株；ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異もε４対立遺伝子も有さない２人の対照（９４９および０５０６４３、それぞれｆ対照および対照と表示した）；ならびに当該変異およびε４対立遺伝子を有する２人のＡＤ患者（９４８および９５０、それぞれＡＤ１およびＡＤ２と表示した）を使用した。４つのうち３つのｉＰＳ株は、家系関連性があった（ｆ対照、ＡＤ１、およびＡＤ２）。（Ｂ）ＰＳＥＮ２のエクソン５のフラグメントを示す代表的なサンガー配列決定クロマトグラム。矢印は、ミスセンス点変異Ｃｈｒ１：２２７，０７３，３０４ Ａ＞Ｔの部位を印付ける。（Ｃ）早期神経細胞および前脳基底部のマーカーについての免疫細胞化学およびＲＴ－ＰＣＲ。ｎ＝３、技術的トリプリケートでの３回の独立した実験。（Ｄ）ＴＵＪ１およびＢＦ１についてのＲＴＰＣＲの倍数変化。ｎ＝３、技術的トリプリケートでの３回の独立した実験。（Ｅ）Ｐ７５染色の代表的なヒストグラム。ｎ＞６。（Ｆ）Ａβ４０およびＡβ４２のＥＬＩＳＡ定量。ｎ＝３、技術的トリプリケートでの３回の独立した実験。^＊＊＊、ｐ＜０．００１、^＊、ｐ＜０．０５。

図３Ａ～３Ｂ：免疫細胞化学による神経細胞マーカーおよび基本コリン作動性マーカー。（Ａ）ＤＩＶ２１におけるＴｒｋＡについての免疫染色。（Ｂ）ＤＩＶ６５における異なる拡大率でのＣｈＡＴおよびｖＡＣｈＴ；ならびにＴｕｊ１およびＭＡＰ２についての免疫染色。画像は、少なくとも３回の独立した実験の代表である。

図４Ａ～４Ｄ：ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ｉＰＳ株のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９により仲介される修正修正。（Ａ）ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９の標的化において使用するガイドＲＮＡ、並びに野生型の遺伝子型を導入するために利用するドナーｓｓＯＤＮを示す模式図。上部から下部への配列識別子：ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２６～３１。（Ｂ）左の２つのパネルは、ガイドＲＮＡ発現を有するＣａｓ９システムを示すＧＦＰ陽性ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を示し、ＮＴは、遺伝子導入されていないことを指し；右の２つのパネルは、ｐＣａｓ９－ｇＮ１４１Ｉ－ＧＦＰベクターを用いたリポフェクション後のＧＦＰ陽性ｉＰＳＣの試料を示す。（Ｃ）Ｎ１４１Ｉ変異の修正を示す、ｉＰＳＣ株から得られたサンガー配列決定。（Ｄ）変異体、対照、またはＣｉｓｐｒ－Ｃａｓ９により修正したＢＦＣＮからの７２時間培養上清におけるＥＬＩＳＡにより検出したＡβ４２／４０比（ＤＩＶ３４）。ｎ＝４、技術的トリプリケートでの４回の独立した実験。^＊、ｐ＜０．０５；^＊＊、ｐ＜０．０１、スチューデントＴ検定。

図５Ａ～５Ｂ：様々なＰＳＥＮ変異を有するＢＦＣＮは、Ａβ４２オリゴマー毒性に対して一貫してより感受性であるわけではない。（Ａ）７２時間のＡβ４２オリゴマー（５μＭ）への暴露に応答した細胞死を可視化するためにヨウ化プロピジウムを用いて処理した、示した遺伝子型由来のＢＦＣＮの試料画像。（Ｂ）７２時間の暴露後に集めた培地由来の記録したＬＤＨ放出（％）。ｎ＝３、技術的トリプリケートでの３回の独立した実験。ｈｏｃ検定後の２元配置ＡＮＯＶＡボンフェローニにより検出した。^＊、ｐ＜０．０５；^＊＊、ｐ＜０．０１。

図６Ａ～６Ｆ：ＮＬＲＰ２インフラマソームｍＲＮＡレベルは、いくつかのＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}細胞において過剰発現するが、それは変異によりもたらされるものではない。コリン作動性神経前駆細胞における（Ａ）ＮＬＲＰ２、（Ｂ）ＮＬＲＰ３、および（Ｃ）ＡＳＢ９のＲＴ－ＰＣＲ発現。（Ｄ）ＮＬＲＰ２、ＰＳＥＮ２、およびβ－アクチンを示すウエスタンブロット。神経前駆細胞（Ｅ）およびＢＦＣＮ（Ｆ）におけるＮＬＲＰ２のＲＴ－ＰＣＲ発現。ｎ＝３、全てのパネルについて、技術的トリプリケートでの３回の独立した実験。^＊＊＊、ｐ＜０．００１。

図７Ａ～７Ｂ：ＢＦＣＮの電気生理学的および形態学的特性。（Ａ）最下段に示す電位プロトコールにより生じる、最上段の化合物ナトリウムおよびカリウム電流。赤色で示す－２０ｍＶまでの電位ステップにより生じた電流の記録。挿入図は、－２０ｍＶまでの電位ステップにより生じた最初の２５ｍｓの電流を示す（スケールバー、２００ｐＡ、５ｍｓ）。（Ｂ）（Ａ）において記録したパッチＢＦＣＮの微分干渉画像。９４個の神経細胞（２２個の野生型対照、２１個の家族性対照、１８個のＡＤ１、２８個のＡＤ２、および５個のｉＡＤ１＿対照）。スケールバーは、３０μｍである。

図８Ａ～８Ｃ：ＡＤ株由来のＢＦＣＮにおける電気生理学的異常。（Ａ）ビオサイチン標識神経細胞の、コリン作動性マーカーＣｈＡＴおよびＶＡＣｈＴとの共局在。矢印は、記録した神経細胞体の位置を示し、スケールバーは、５０μｍである。（Ｂ）１秒間の負および正の矩形電流注入により生じるＢＦＣＮの代表的な発火パターンを示す。総計９４個の個々の神経細胞を電気生理的に研究した：２２個の野生型対照神経細胞、２１個の家族性対照神経細胞、１８個のＡＤ１神経細胞、２８個のＡＤ２神経細胞、および５個のｉＡＤ１＿（ＣＲＩＳＰＲにより修正した）神経細胞。９４個の神経細胞における実験は、数日から数週間を要した。それぞれの実験の日に、それぞれの日に研究したそれぞれの遺伝子型由来の少なくとも３つの試料と共に、それぞれの遺伝子型の代表を含めた。（Ｃ）全ての状態に渡る、神経細胞が維持可能な活動電位の最大数（左）および基電流における単一の活動電位の高さ（右）についての概要データ。個々のデータポイントを円として示し、群平均を棒として示す。^＊＊、ｐ＜０．０１、チューキーＨＳＤ検定。

図９Ａ～９Ｄ：ＢＦＣＮの固有電気生理学的特性。５つの群に由来する全ての記録したＢＦＣＮについてのデータの概要。９４個の神経細胞（２２個の野生型対照、２１個の家族性対照、１８個のＡＤ１、２８個のＡＤ２、および５個のｉＡＤ１＿対照）。ヒストグラムは、膜の抵抗（Ａ）、容量（Ｂ）、静止電位（Ｃ）、および基電流（Ｄ）について、各神経細胞の個々の値（円）および群平均（棒）を示す。統計的有意性を、ＡＮＯＶＡおよびチューキーの事後比較を用いて試験した。

図１０Ａ～１０Ｂ：ｉＰＳＣ株の品質管理。（Ａ）免疫蛍光は、７８８９（Ｓ）Ｂ ｉＰＳＣ株における多能性マーカーＳＳＥＡ４、Ｎａｎｏｇ、Ｔｒａ１６０の発現を示す。（Ｂ）７８８９（Ｓ）Ｂ ｉＰＳＣ株により生じた奇形腫由来の３つの胚葉（内胚葉、中胚葉、および外胚葉）。

図１１Ａ～１１Ｂ：成熟ＢＦＣＮにおけるアミロイドβレベル。（Ａ）ＢＦＣＮにおけるＡβ４０のレベル（ＤＩＶ３４）。^＊、一元配置ＡＮＯＶＡボンフェローニ事後検定に従って、研究における他の株に対してＰ＜０．０１。（Ｂ）ＢＦＣＮにおけるＡβ４２のレベル（ＤＩＶ３４）。ｎ＝３、技術的トリプリケートでの３回の独立した実験。^＊、スチューデントＴ検定に基づき、Ｐ＜０．０１。

発明の詳細な説明
本発明は、化学的に定義された培地を使用してＰＳＣからＢＦＣＮを生成する、頑強、迅速、かつ再現性のある分化プロトコールの発見に基づく。

以下は、本発明の実施において、当業者を助けるために提供される発明の詳細な説明である。当業者は、本発明の精神または範囲から逸脱することなく、本明細書にて記載されている実施形態において改変およびバリエーションをなしてもよい。別段定義されない限り、本明細書において使用される全ての技術および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者により一般的に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書における発明の説明にいて使用される専門用語は、特定の実施形態を説明するためだけに使用されるのであり、本発明を制限することは意図されていない。全ての刊行物、特許出願、特許、図面および本明細書において述べられる他の参考文献は、それらの全体が参照により明示的に組み込まれる。

本明細書に記載されているものと類似または均等な任意の方法および物質を、本発明の実施または試験において使用することもできるが、好ましい方法および物質が本明細書に記載されている。本明細書において述べられる全ての刊行物は、刊行物が引用されることと関連して、方法および／または物質を開示し、記載するために、参照により本明細書に組み込まれる。

別段定義されない限り、本明細書において使用される全ての技術および科学用語は、本発明が属する当該技術分野の当業者により一般的に理解されるのと同じ意味を有する。開示全体が、参照により本明細書に組み込まれる、次の参考文献は、本発明において使用される用語の多くの一般的な定義（本明細書において別段定義されない限り）を当業者にもたらす：Ｓｉｎｇｌｅｔｏｎら、Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（第２編、１９９４年）；Ｔｈｅ Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｗａｌｋｅｒ編、１９８８年）；Ｔｈｅ Ｇｌｏｓｓａｒｙ ｏｆ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ、第５編、Ｒ．Ｒｉｅｇｅｒら（編）、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ（１９９１年）；およびＨａｌｅ ＆ Ｍａｒｈａｍ、ｔｈｅ Ｈａｒｐｅｒ Ｃｏｌｌｉｎｓ Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｙ （１９９１年）。一般に、本明細書に記載されているか、または固有の分子生物学的方法の手法などは、当該技術分野において使用される一般的な方法である。かかる標準的技術は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、（２０００年、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ－－Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第３編、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）；およびＡｕｓｕｂｅｌら、（１９９４年、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ、Ｎｅｗ－Ｙｏｒｋ）のような参照マニュアルにおいて見ることができる。

説明において使用される専門用語は、特定の実施形態を説明するためだけであり、本発明の制限であることは意図されない。広範囲の値が提供される場合、文脈が明確に示さない限り、その範囲の上限から下限の、下限の単位の１０分の１までの、それぞれの間にある値（例えば、多数の炭素原子を含有する群の場合であって、範囲内にあるそれぞれの炭素原子数が提供される場合）、およびその公式の範囲における任意の他の公式または中間にある値が本発明に包含されることは、理解される。これらのより狭い範囲の上限および下限は、本発明においてまた包含されるより狭い範囲において独立して含まれ、所定の範囲における任意の具体的に除外される限界の対象となり得る。公式の範囲が、限界の一方または両方を含む場合、これらの含まれる限界のどちらかの両方を除外する範囲もまた、本発明において含まれる。

以下の用語は、本発明を説明するために使用される。用語が、本明細書において具体的に定義されない場合、その用語は、本発明の説明におけるその使用の状況下でその用語を適用する当業者により当該技術分野で認められた意味を付与される。

本明細書および添付の請求の範囲において使用される冠詞「ａ」および「ａｎ」を使用して、文脈が別段明確に示さない限り、冠詞の文法上の対象の１つまたは複数（すなわち、少なくとも１つ）を指す。例示の目的で、「構成要素」は、１つの構成要素または１つより多くの構成要素を意味する。

明細書および請求の範囲において使用される語句「および／または」は、結び付けられた構成要素、すなわち、ある場合において共同して存在し、他の場合において分離して存在する構成要素の「いずれかまたは両方」を意味すると理解されるべきである。「および／または」を用いて挙げられる複数の構成要素、すなわち、結び付けられた構成要素の「１つまたは複数」は、同じ様式で解釈されるべきである。他の構成要素、「および／または」の節により具体的に同定される構成要素以外が、場合により、具体的に同定されたこれらの構成要素と関連するか、または関連しないかに関わらず、存在してもよい。従って、非限定的な例として、「Ａおよび／またはＢ」への言及は、「含むこと」のような制限のない語句と結び付けて使用されるとき、１つの実施形態において、Ａのみ（場合により、Ｂ以外の構成要素を含む）；別の実施形態において、Ｂのみ（場合により、Ａ以外の構成要素を含む）；なお別の実施形態において、ＡとＢの両方（場合により、他の構成要素を含む）を指すことができる。

明細書および請求の範囲において使用される「または」は、上で定義された「および／または」と同じ意味を有すると理解されるべきである。例えば、リストにおける項目を切り離すとき、「または」または「および／または」は、包括的である、すなわち、多数の構成要素または構成要素のリストの少なくとも１つを含むが、１つより多く、場合により、さらに関連しない項目を含むと解釈されるべきである。「うちの１つのみ」または「うちの正確に１つ」または請求の範囲において使用されるとき、「からなる」のような、反対に明確に示される用語のみが、多数の構成要素または構成要素のリストの正確に１つを含むことを指す。一般に、本明細書において使用される用語「または」は、ただ、「いずれか」、「うちの１つ」、「うちの１つのみ」または「うちの正確に１つ」のような、排他的である用語により先行されるとき、排他的な代替物（すなわち、「一方または他方だが、両方ではない」）を示すと解釈されるべきである。

明細書および請求の範囲において使用される、１つまたは複数の構成要素のリストにおける語句「少なくとも１つ」は、構成要素のリスト内で具体的に挙げられるそれぞれおよび全ての構成要素の少なくとも１つを必ずしも含まないが、構成要素のリストにおける構成要素の任意の組み合わせを除外しない、構成要素のリストにおける任意の１つまたは複数から選択される少なくとも１つの構成要素を意味すると理解されるべきである。この定義によりまた、構成要素、語句「少なくとも１つ」が指す構成要素のリスト内で具体的に挙げられる構成要素以外が、具体的に同定されるこれらの構成要素と関連するか、または関連しないかに関わらず、場合により、存在して得ることが可能になる。従って、非限定的な例として、「ＡおよびＢの少なくとも１つ」（または、等しくは、「ＡまたはＢの少なくとも１つ」または等しくは、「Ａおよび／またはＢの少なくとも１つ」）は、１つの実施形態において、場合により、１つより多くの、Ａを含み、Ｂが存在しない（および場合により、Ｂ以外の構成要素を含む）、少なくとも１つ；別の実施形態において、場合により、１つより多くの、Ｂを含み、Ａが存在しない（および場合により、Ａ以外の構成要素を含む）、少なくとも１つ；なお別の実施形態において、場合により、１つより多くのＡを含む、少なくとも１つ、および場合により、１つより多くのＢを含む、少なくとも１つ（および場合により、他の構成要素を含む）を指し得る。

複数の工程または動作を含む本明細書に記載されている特定の方法において、方法の工程または動作の順序は、文脈が別段示さない限り、必ずしも、方法の工程または動作が列挙される順序に限定されないことが理解されるべきである。

用語「ＰＳＥＮ２遺伝子」は、本明細書において、ＰＳＥＮ２ポリペプチドをコードする遺伝子を指す。ＰＳＥＮ２遺伝子は、ＮＣＢＩ参照配列ＮＣ＿０００００１．１１（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）並びに公知のオルソログにより表される。用語「ＰＳＥＮ２ポリペプチド」は、本明細書において、ＮＣＢＩ参照配列ＮＰ＿０００４３８．２（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２）並びに公知のオルソログにより表されるポリペプチドを指す。

用語「アミロイド形成疾患」は、不溶性のアミロイド原線維の形成または沈着と関連する（またはそれにより引き起こされる）任意の疾患を含む。典型的なアミロイド形成疾患は、全身性アミロイドーシス、アルツハイマー病、成人発症型糖尿病、パーキンソン病、ハンチントン病、前頭側頭型認知症、およびプリオン関連伝達性海綿状脳症（それぞれ、ヒトにおけるクールー病およびクロイツフェルト・ヤコブ病並びにヒツジ及びウシにおけるスクレイピーおよびＢＳＥ）を含むが、これらに限定されない。種々のアミロイド形成疾患は、沈着した原線維のポリペプチド成分の性質により定義されるか、または特徴付けられる。例えば、アルツハイマー病を有する対象または患者において、β－アミロイドタンパク質（例えば、野生型、バリアント、または切断型β－アミロイドタンパク質）は、アミロイド沈着の特徴付けられているポリペプチド成分である。従って、アルツハイマー病は、例えば、対象または患者の脳における「Ａβの沈着により特徴付けられる疾患」または「Ａβの沈着と関連する疾患」の例である。用語「β－アミロイドタンパク質」、「β－アミロイドペプチド」、「β－アミロイド」、「Ａβ」および「Ａβペプチド」は、本明細書において互換的に使用される。

本明細書を通じて、用語「患者」または「対象」を使用して、本開示による組成物を用いた治療（予防的治療を含む）が提供される動物（好ましくは、ヒトまたは飼育動物）を記載する。特定の動物（例えばヒト患者）に特異的な状態または疾患の治療について、用語患者は、飼育動物（例えばイヌまたはネコ）または家畜（例えばウマ、ウシ、ヒツジなど）を含む、これらの特定の動物を指す。一般に、本開示において、用語患者は、別段定められないか、または用語の使用の文脈から読み取られない限り、ヒト患者を指す。

用語「β－アミロイドタンパク質」、「β－アミロイドペプチド」、「β－アミロイド」、「Ａβ」および「Ａβペプチド」は、本明細書において互換的に使用される。Ａβペプチド（例えば、Ａβ３９、Ａβ４０、Ａβ４１、Ａβ４２およびＡβ４３）は、ＡＰＰの３９～４３個のアミノ酸の約４ｋＤａの内部フラグメントである。例えば、Ａβ４０はＡＰＰの６７２～７１１番目の残基からなり、Ａβ４２はＡＰＰの６７２～７１３番目の残基からなる。Ａβペプチドは、セクレターゼによるＡＰＰの切断から生じるペプチドおよび切断産物と同じまたは本質的に同じ配列を有する合成ペプチドを含む。Ａβペプチドは、様々な供給源、例えば、組織、細胞株、または体液（例えば、血清もしくは脳脊髄液）に由来し得る。例えば、Ａβは、例えば、Ｗａｌｓｈら、（２００２年）、Ｎａｔｕｒｅ、４１６、５３５～５３９頁に記載されている通り、ＡＰＰ_７１７ＶＦを安定的に遺伝子導入されたチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞のようなＡＰＰ発現細胞に由来し得る。Ａβ調製物は、既に記載された方法を使用して組織試料からもたらされ得る（例えば、Ｊｏｈｎｓｏｎ－Ｗｏｏｄら、（１９９７年）、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、ＵＳＡ９４：１５５０頁を参照）。或いは、Ａβペプチドは、当該技術分野において周知の方法を使用して合成することができる。例えば、Ｆｉｅｌｄｓら、Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ：Ａ Ｕｓｅｒ’ｓ Ｇｕｉｄｅ編、Ｇｒａｎｔ、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ＆Ｃｏ．、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、Ｎ．Ｙ．、１９９２年、７７頁を参照。故に、ペプチドは、例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍのペプチド合成装置モデル４３０Ａまたは４３１において側鎖が保護されたアミノ酸を使用して、ｔ－ＢｏｃまたはＦ－ｍｏｃ化学のいずれかにより保護されたαアミノ基を用いた固相合成の自動メリフィールド技術を使用して合成することができる。より長いペプチド抗原は、周知の組換えＤＮＡ技術を使用して合成することができる。例えば、ペプチドまたは融合ペプチドをコードするポリヌクレオチドは、合成されるか、または分子クローニングされ、遺伝子導入および適当な宿主細胞による異種性発現のため適当な発現ベクターに挿入され得る。Ａβペプチドは、正常な遺伝子のＡβ領域における変異から生じる関連するＡβ配列も指す。

本明細書において使用される語句「実質的に純粋な」は、細胞の少なくとも９５％が、列挙される表現型を有する、細胞の集団を指す。「実質的に純粋な」細胞集団を指す全ての実施形態において、細胞集団がより低いかまたは高いレベルの純度を有する代替の実施形態も考慮される。例えば、幾つかの実施形態において、「実質的に純粋」である所定の細胞集団の代わりに、細胞集団は、細胞の少なくとも３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、もしくは９９％、または細胞の１００％が、列挙される表現型を有するものであってもよい。

用語「共投与」、「共投与された」および「共投与する」または「併用療法」は、同時の投与（２つ以上の剤を同時に投与すること）；および、剤が、治療されるべき領域に、ある程度（好ましくは有効量で）同時に存在する限り、異なる時間での投与（１つまたは複数の剤を、さらなる剤が投与される時間とは異なる時間で投与すること）の両方を指す。

用語「治療上有効量」は、治療効果を達成するのに必要な量を意味する。治療効果は、予防、症状の改善、症状の治療から、疾患の終結または治癒までの範囲にある任意の治療効果、例えば、アルツハイマー病または関連する状態の治療であり得る。

本明細書において使用される用語「投与」は、組成物が対象の身体内にあるようにする様式で、対象に組成物をもたらす、手段を指す。かかる投与は、皮下、皮内、静脈内、動脈内、腹腔内、および筋肉内を含むが、これらに限定されない、任意の経路によるものであり得る。

用語「有効な」を使用して、その意図される使用の文脈において使用されるとき、意図される結果をもたらす、化合物、組成物、または成分の量を記載する。用語「有効な」は、本出願において別段記載または使用される全ての他の有効量または有効な濃度期間を包含する。

本明細書において使用される用語「含む」は、組成物および方法が、列挙される構成要素を含むが、他の構成要素を除外しないことを意味することが意図される。「から本質的になる」は、組成物および方法を定義するために使用されるとき、任意の、組み合わせに本質的に重要な他の構成要素を除外することを意味する。従って、本明細書において定義される構成要素から本質的になる組成物は、単離および精製方法からの微量混入物、ならびに医薬的に許容される担体（例えば、リン酸緩衝食塩水、保存剤等）を除外しない。「からなる」は、他の成分、および本発明の組成物を投与するための実質的な方法のステップの、微量要素以外を除外することを意味する。これらの各移行句により定義される実施形態は、本発明の範囲内である。

本明細書において提供される範囲は、範囲内の値の全てが省略されていると理解される。例えば、範囲１～５０は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９、４０、４１、４２、４３、４４、４５、４６、４７、４８、４９、および５０からなる群からの任意の数、数の組み合わせ、または部分範囲を含むと理解される。

本明細書において使用される「キット」は、本発明の少なくとも非標準的な実験試薬、および本発明の方法において使用するための１つまたは複数の非標準的な実験試薬を含有すると理解される。

本明細書において用語「得る」は、製造すること、購入すること、または別の方法で手に入れることであると理解される。

本明細書において使用される用語「治療される」、「治療する」、または「治療」は、治療される状態、障害、もしくは疾患と関連するか、またはそれにより引き起こされる少なくとも１つの症状の減弱あるいは軽減を含む。治療された対象は、症状（例えば、アルツハイマー病もしくは関連する状態）の部分的または総合的な軽減を示し得るか、あるいは症状は、本発明による治療後に静止したままであり得る。用語「治療（treatment）」は、予防、治療（therapy）、および治癒を包含することが意図される。

本明細書において使用される用語「対照」は、実験試料との比較のため使用される試料または標準を指す。幾つかの実施形態において、対照は、健常患者から得られた試料である。他の実施形態において、対照は、歴史的対照または標準的基準値もしくは値の範囲（例えば、既に試験された試料、対象、または試料もしくは対象の群）である。

方法
ＢＦＣＮは、全ての形態のＡＤにおいて影響を受ける第一の細胞タイプの１つであると考えられ、それらの機能障害は、短期記憶形成および想起の障害と臨床的に相関する。本開示の実施例において詳述される通り、本発明者らは、ＰＳＥＮ２変異のキャリアおよび対照に由来する細胞株を使用してｉＰＳＣからヒトＢＦＣＮを生成する、最適化されたインビトロプロトコールを提示する。ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異を有する細胞株は、ｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮにおいてＡβ４２／４０の増大を示した。ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}株に由来する神経細胞が矩形の脱分極電流注入に応答して生じた活動電位の最大数はより少なかった。基電流注入における第一の活動電位の大きさもまた、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＢＦＣＮにおいて有意に減少した。ＰＳＥＮ２点変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９修正は、電気生理学的異常を消失させ、対照において記録されたレベルまで活動電位の最大数と活動電位高の両方を回復させる。増大したＡβ４２／４０はまた、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓにより仲介される修正後に正常化された。本明細書に記載されているゲノム編集データセットは、電気生理学におけるＰＳＥＮ２変異関連変化も示しながら、Ａβ４２／４０比の変異関連変化の強い一貫性を立証する。

従って、１つの実施形態において、本発明は、ＢＦＣＮを生成する方法を提供する。当該方法は、まず、ＰＳＣコロニーを調製することを含んでもよい。ＰＳＣは、低密度にて播種され（プレーティングされ）、約１～２日間接着培養で成長する。「低密度」は、約８，０００～約１１，０００個の細胞／ｃｍ^２を意味する。細胞は、好ましくは、約９，５００～約１０，５００個の細胞／ｃｍ^２にて、より好ましくは、約１０，０００個の細胞／ｃｍ^２にて播種される。約１～２日（またはそれ以上、すなわち、３日、４日、５日、６日、７日、８日、９日、１０日、またはそれ以上）後、好ましくは、直径約７５μｍ～約３００μｍ、より好ましくは、直径約１００μｍ～約２５０μｍである、ＰＳＣは、コロニーを形成する。

用語「ＰＳＣ」は、当該技術分野におけるその通常の意味を有し、すなわち、発生して内胚葉細胞、外胚葉細胞、および中胚葉細胞になる能力を有する自己複製する細胞である。好ましくは、ＰＳＣはｈＰＳＣである。ＰＳＣは、ＥＳＣおよびｉＰＳＣ、好ましくは、ｈＥＳＣおよびｈｉＰＳＣを含む。ＰＳＣは、基質（例えば、ゲルまたは基底膜基質）を含む表面に播種され得る。好ましい基質は、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（登録商標）、ＣＵＬＴＲＥＸ（登録商標）、およびＧＥＬＴＲＥＸ（登録商標）を含む商標名のもとで販売される、エンジェルブレス－ホーム－スワーン（ＥＨＳ）マウス肉腫細胞により分泌されるタンパク質混合物である。他の適当な物質は、コラーゲン、フィブロネクチン、ゼラチン、ラミニン、ポリ－リジン、ビトロネクチン、およびそれらの組み合わせを含むが、これらに限定されない。

幾つかの実施形態において、多能性幹細胞の維持における使用に適した培地が使用される。実施形態において、かかる培地は、Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓのｍＴｅＳＲ１培地である。しかしながら、当業者は、多能性幹細胞の維持における使用に対する適性に関してｍＴｅＳＲ培地と同等である幾つかの他のタイプの培地が存在し、そのいずれかを使用することができることを認識する。典型的には、かかる培地は、多能性状態の細胞の維持を促進するための１つまたは複数の多能性因子を含有する。ｍＴｅＳＲ１培地の組成は、当該技術分野において公知であり、例えば、Ｌｕｄｗｉｇら、２００６年（Ｎａｔ Ｍｅｔｈｏｄｓ、２００６年８月；３（８）：６３７～４６頁；「Ｆｅｅｄｅｒ－Ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ Ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ Ｈｕｍａｎ Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ」）に記載されており、その内容は、参照により本明細書に組み込まれる。

本発明の方法において使用される多能性幹細胞は、任意の適当なタイプの多能性幹細胞であり得る。ｉＰＳＣが使用される場合、かかる細胞は、改変されたＲＮＡベースの方法、センダイウイルスベースの方法等を含むが、これらに限定されない、当該技術分野において公知の任意の適当な手段を使用して、非多能性状態から多能性状態に「リプログラミング」されてもよい。さらに、かかる細胞は、当該技術分野において公知のリプログラミング因子の任意の適当なカクテルを使用して、多能性状態にリプログラミングされてもよい。

１つの実施形態において、ＰＳＣを調製し、例えばｍＴｅＳＲ１培地中でコンフルエントになるまで増殖させた後、方法は、神経外胚葉性分化を誘導するためにトランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を含む基礎培地中でＰＳＣを培養することを含む。利用される基礎培地は、改変されたｍＴｅＳＲ１培地であり、それは、塩化リチウム、ＧＡＢＡ、ピペコリン酸、ｂＦＧＦ、またはＴＧＦβ１を含まないｍＴｅＳＲ１培地のバリアント（時に、本明細書において「ｍＴｅＳＲ１カスタム」培地として言及される）である。ＴＧＦβシグナル伝達の阻害剤は、例えば、ＳＢ４３１５４２、ＧＷ７８８３８８、ＬＤＮ１９３１８９、ＬＹ２１０９７６１、ＬＹ２１５７２９９、およびＬＹ３６４９４７のうちの１つまたは複数を含む。Ｓｈｈシグナル伝達の活性化因子は、スムーズンドアゴニスト（ＳＡＧ；３－クロロ－Ｎ－［（１ｒ，４ｒ）－４－（メチルアミノ）シクロヘキシル］－Ｎ－［３－（ピリジン－４－イル）ベンジル］ベンゾ［ｂ］チオフェン－２－カルボキサミド）およびプルモルファミンのような、スムーズンドのアゴニストを含む。

約６、７、８、９、１０、１１もしくは１２日間（またはそれ以上、すなわち、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２５、３０、もしくはそれ以上）の培養後、ＣＤ２７１＋細胞が選択され、神経細胞の基礎培地（例えば、Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標））中で培養され、神経胚様体（ＮＥＢ）を生成する。神経細胞の基礎培地は、場合により、Ｂ２７サプリメント、ｒｈｏ関連タンパク質キナーゼ（ＲＯＣＫ）の阻害剤、神経成長因子（ＮＧＦ）および脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）の１つまたは複数を追加される。ＲＯＣＫの阻害剤は、例えば、ＧＳＫ２６９９６２、ＧＳＫ４２９２８６、Ｈ－１１５２、ＨＡ－１０７７、ＲＫＩ－１４４７、チアゾビビン、Ｙ－２７６３２、またはその誘導体を含む。

ＣＤ２７１＋細胞を選択するために、オーバーコンフルエント状態の細胞が、培養物表面から剥離され、ＦＡＣＳにより精製され、再プレーティングされる。このプロセスは、本明細書においてＮＥＢとしても言及される細胞凝集体または球体の形成を可能にする。本発明の目的のため、用語「ＮＥＢ」、「凝集体」、および「球体」は互換的に使用され、必須ではないが、好ましくは、少なくとも約１００個の細胞の多細胞の３次元構造体を指す。

剥離は、細胞スクレーパーもしくは他の適当な道具を用いて機械的に、または化学的に行われ得る。化学的剥離は、タンパク質分解酵素、例えば、コラゲナーゼ、トリプシン、トリプシン様タンパク質分解酵素、商標名ＴＲＹＰＬＥ（商標）の下で販売されるもののような組換え酵素、商標名ＡＣＣＵＴＡＳＥ（商標）の下で販売されるもののような天然にもたらされる酵素、およびそれらの組み合わせを使用して達成することができる。化学的剥離はまた、ＥＤＴＡのようなキレート剤、または尿素のような化合物を使用して行われ得る。機械的剥離または剥離は、最少の細胞死という利点を付与するが、可変サイズの凝集体を生じさせ、そのため、手動の選択プロセスを通じて適切な球体が選択される必要がある。良好な球体は、球形で、より濃い中心を有する金色／茶色で、直径が約３００μｍ～約８００μｍのものと定義される。酵素切断などの化学的方法を用いて細胞を剥離することは、さらなる培養に適した球体を主に生じる。それ故、球体の手動選択は要求されず、剥離工程は、自動化に適合し、ハイスループット研究において使用され得る。しかしながら、酵素切断は、細胞死を増大させ、より少ない数の球体を生じる。

選択されたＣＤ２７１＋細胞を約５、６、７、８、９、もしくは１０日間（またはそれ以上、すなわち、１１日間、１２日間、１３日間、１４日間、１５日間、１６日間、１７日間、１８日間、１９日間、２０日間、２５日間、３０日間、もしくはそれ以上）培養した後、形成されたＮＥＢを回収し、解離し、単層培養物としてプレーティングし、（場合により、Ｂ２７サプリメント、ＮＧＦ、およびＢＤＮＦを追加された）Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）のような神経細胞用の基礎培地中でさらに培養する。細胞をプレーティングして培養する表面は、細胞外基質タンパク質（例えば、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン）および／または正に荷電したポリ－アミノ酸（例えば、ポリ－アルギニン、ポリ－リジン、ポリ－オルニチン）を含み得る。好ましくは、表面は、ラミニンおよび／またはポリ－オルニチンを含む。

ＢＦＣＮへの分化を確認するために、培養された細胞は、Ｔｕｊ１、ＭＡＰ２、ＢＦ１、Ｎｋｘ２．１、およびｐ７５の陽性発現について解析される。

本発明の実施形態の多くは、例えば、培地サプリメントとして、本明細書に記載されている組成物および方法において使用される（または除外される）特定の因子を含む。当該因子は、ｂＦＧＦ、ＧＡＢＡ、ピペコリン酸、塩化リチウム、ＴＧＦ－β、ＮＧＦおよびＢＤＮＦを含むが、これらに限定されない。アクロニムまたは他の略語が使用される場合において、これらの因子のそれぞれの完全な名称を含む、これらの因子のそれぞれが、当該技術分野において周知である。さらに、これらの因子の全てが、市販の供給源を含む、複数の供給源から公的に入手可能である。本発明の方法および組成物におけるこれらの因子のそれぞれの使用のための典型的な量／濃度は、本特許開示の実施例の節において提供される。特定の量が言及される全ての実施形態について、「およその」特定された量である量も意図される。さらに、当業者は、幾つかの状況において、特定の量のさらなる偏差が使用され得、使用される量が、依然として所定の効果、例えば、所定の分化効果を依然として達成する限り、日常的な試験、最適化、用量応答研究等を行うことにより、それぞれの因子のどれ位を使用するかを決定して、例えば、所定の量を提言するか、増大させることができることを認識する。例えば、幾つかの実施形態において、特定の量の特定の剤は、所定の量の１０％、または２０％、または３０％、または４０％、または５０％、または６０％、または７０％、または８０％、または９０％まで低減されてもよい。同様に、幾つかの実施形態において、特定の量の特定の剤は、所定の量の１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％、１５０％、２００％、３００％、４００％、または５００％増大されてもよい。同様に、特定の因子が言及される場合、当業者は、当該因子の類似体、バリアント、または誘導体が当該特定の因子と同じ一般的な機能／活性を有する限り、当該因子の類似体、バリアント、または誘導体も使用することができることを認識する。

本明細書において考察される通り、本発明者らは、ＢＦＣＮにおいてＰＳＥＮ２の変異が神経細胞興奮性の障害をもたらすことを発見した。本明細書中の実施例において考察される通り、本発明者らは、神経細胞興奮性を回復させたＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異の修復を介して、ＢＦＣＮの興奮性における変異に関連し編集により元に戻り得る有意な差を観察した。従って、本発明の方法は、遺伝子編集システムを用いて処理して、プレセニリン１（ＰＳＥＮ１）またはプレセニリン２（ＰＳＥＮ２）の変異のような１つまたは複数の変異を修復し得る、ｉＰＳＣを利用してもよい。１つの実施形態において、変異はＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}であり、その修復が、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性を回復させる。

本明細書において使用される場合、用語「遺伝子編集」または「ゲノム編集」は、１つもしくは複数のヌクレアーゼおよび／またはニッカーゼを使用してＤＮＡが挿入されるか、置換されるか、または標的ＤＮＡ（例えば、細胞のゲノム）から取り除かれるタイプの遺伝子操作を指す。ヌクレアーゼは、ゲノムにおける所望の位置において特定の二重鎖切断（ＤＳＢ）を生じ、相同組換え修復（ＨＤＲ）（例えば、相同組換え）によりまたは非相同末端結合（ＮＨＥＪ）による導入された切断を修復するための細胞の内在性機序を利用する。ニッカーゼは、ゲノム中の所望の位置で特定の一本鎖切断を生じさせる。１つの非限定的な例において、２つのニッカーゼを使用して、標的ＤＮＡの反対の鎖上に２つの一本鎖切断を生じさせ、それにより、平滑末端または粘着末端を生じさせ得る。任意の適当なヌクレアーゼ（ＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質（Ｃａｓ）ヌクレアーゼ、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）、転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）、メガヌクレアーゼ、他のエンド－またはエキソ－ヌクレアーゼ、そのバリアント、そのフラグメント、およびそれらの組み合わせを含むが、それらに限定されない）を細胞に導入して、標的ＤＮＡ配列のゲノム編集を誘導することができる。特定の実施形態において、相同組換え修復（ＨＤＲ）（例えば、相同組換え）による標的ＤＮＡ配列（例えば、セーフハーバー遺伝子）のヌクレアーゼ介在性ゲノム編集が、本明細書に記載される方法に従い遺伝子修飾されたヒト神経幹細胞を生成するために使用される。

用語「ＤＮＡヌクレアーゼ」は、ＤＮＡのヌクレオチドサブユニット間のホスホジエステル結合を切断する能力がある酵素を指し、エンドヌクレアーゼまたはエキソヌクレアーゼであってもよい。本発明によると、ＤＮＡヌクレアーゼは、セーフハーバー遺伝子のような標的ＤＮＡ配列のゲノム編集を誘導するために使用され得る、操作された（例えば、プログラム可能または標的化可能な）ＤＮＡヌクレアーゼであってもよい。ＣＲＩＳＰＲ関連タンパク質（Ｃａｓ）ヌクレアーゼ、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）、転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）、メガヌクレアーゼ、他のエンド－またはエキソ－ヌクレアーゼ、そのバリアント、そのフラグメント、およびそれらの組み合わせを含むが、これらに限定されない、任意の適当なＤＮＡヌクレアーゼが使用され得る。

本発明の様々な実施形態において、遺伝子編集システムは、ＤＮＡヌクレアーゼを利用して、遺伝子を編集し、変異を修復する。特定の実施形態において、変異は、次の遺伝子編集システム：ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓシステム、Ｃｒｅ／Ｌｏｘシステム、ＴＡＬＥＮシステムおよび相同組換えのうちの１つまたは複数を使用して修復される。

本発明の分化プロトコールを利用して、対象における疾患または障害を治療してもよい。方法は、本明細書に記載される培養方法を用いて生成されたＢＦＣＮを対象に投与することを含む。様々な実施形態において、疾患または障害は、全身性アミロイドーシス、アルツハイマー病、成人発症型糖尿病、パーキンソン病、ハンチントン病、前頭側頭型認知症、およびプリオン関連伝達性海綿状脳症のような、アミロイド形成疾患である。実施形態において、神経細胞興奮性を障害する変異（例えばＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}）を有するＢＦＣＮが対象から得られ、それを使用してｉＰＳＣを生成し得、次にそれを遺伝子編集システムを用いて処理して変異を修飾し得る。次に、遺伝子編集されたｉＰＳＣを、本明細書に記載される通りに培養して、疾患または障害を治療するために対象に投与される、神経細胞興奮性が回復したＢＦＣＮを作製する。

関連する方法において、対象においてＢＦＣＮの神経細胞興奮性が回復されてもよい。この方法は、ａ）対象からＢＦＣＮを単離する工程であって、ＢＦＣＮは、ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせる遺伝子変異を有する、単離する工程；ｂ）（ａ）のＢＦＣＮを使用してｉＰＳＣを生成する工程；ｃ）ｉＰＳＣにおける変異を修復する工程；ｄ）本明細書に記載される分化プロトコールを使用して（ｃ）のｉＰＳＣを培養して、変異が修復されたＢＦＣＮを生成する工程；およびｅ）（ｄ）のｉＰＳＣを対象に投与する工程であって、それにより対象においてＢＦＣＮの神経細胞興奮性が回復する、投与する工程を含む。実施形態において、変異は、ＰＳＥＮ１またはＰＳＥＮ２の変異、例えばＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}である。

本発明はまた、本明細書に記載される分化プロトコールを用いて生成されたＢＦＣＮを包含する。ＢＦＣＮは、ＰＳＥＮ２の遺伝子編集による修復、並びにＢＦＣＮゲノムに組換え導入された検出可能なマーカーを含んでもよい。幾つかの実施形態において、ＢＦＣＮはＰＳＣから分化し、かかる実施形態において、ＰＳＣはｉＰＳＣであり得る。ｉＰＳＣは、対象の体細胞に由来し得る。１つの態様において、対象は、アミロイド形成疾患または障害を有する。

ｉＰＳＣテクノロジーは、その自家細胞移植の可能性に加えて、新規薬物を開発するためおよび病因を洞察するためのツールとして台頭してきている。Ｈａｎ、Ｓ．Ｓ．Ｗ．ら、Ｎｅｕｒｏｎ、７０：６２６～６４４頁（２０１１年）。本発明の方法および細胞は、神経細胞興奮性の回復を促進する化合物についてのハイスループットなインビトロスクリーニングの開発を目的にし得る。その目的のために、本開示は、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性の低下と関連する疾患もしくは障害の治療または予防のために使用され得る化合物を同定する方法を提供する。当該方法は、ａ）本明細書に記載される分化プロトコールを用いて生成されたＢＦＣＮまたは神経胚様体（ＮＥＢ）を候補化合物と接触させる工程であって、ＢＦＣＮが、ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせるＰＳＥＮ２における変異を含む、接触させる工程；およびｂ）候補化合物との接触後にＢＦＣＮの神経細胞興奮性を検出する工程を含む。神経細胞興奮性に対する有益な効果は、神経細胞興奮性の部分的または完全な回復における証拠であり、そのため、当該効果は、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性の低下と関連する疾患または障害（例えば、アミロイド形成疾患または障害）を治療するための候補治療剤の指標である。好ましくは、当該方法は、ハイスループットフォーマットで行われる。

本発明はまた、神経性疾患、好ましくは、アミロイド形成疾患もしくは障害のような、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性の低下と関連する疾患または障害についてのモデルシステムを提供する。１つの態様において、当該モデルシステムは、アミロイド形成疾患もしくは障害のような、ＢＦＣＮにおける神経細胞興奮性の低下と関連する疾患または障害を有する対象に由来するｉＰＳＣから分化したＢＦＣＮを含む。当該モデルシステムは、ミエリン産生細胞が移植された非ヒト哺乳類をさらに含み得る。１つの実施形態において、当該非ヒト哺乳類はマウスまたはラットである。本発明により提供されるモデルシステムを使用して疾患または障害を研究することができ、これは、背景にある機序を理解し、治療標的を明らかにすることを含む。

幾つかの実施形態において、本発明は、本明細書に記載される様々な方法の実施に有用な、組織培養培地、組織培養培地サプリメント、および様々なキットを提供する。

１つの実施形態において、本発明は、本発明の分化プロトコールによってＢＦＣＮを生成するためのキットを提供する。当該キットは、ＴＧＦ－βシグナル伝達の阻害剤およびＳｈｈシグナル伝達の活性化因子を有する培地を含む。実施形態において、当該培地は、ｂＦＧＦ、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を含む、多能性を支持する因子を欠く、改変されたｍＴｅＳＲ１組成である。実施形態において、当該培地は、スムーズンドアゴニスト（ＳＡＧ）およびプルモルファミンのような、スムーズンドタンパク質の１つまたは複数のアゴニストと共に、ＳＢ４３１５４２およびＬＤＮ１９３１８９のような、二重ＳＭＡＤ阻害剤を含む。

当該キットはまた、（場合により、Ｂ２７サプリメント、ＲＯＣＫの阻害剤、ＮＧＦおよびＢＤＮＦのうちの１つまたは複数が追加された）Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）のような、さらなる神経細胞基礎培地を含んでもよい。

当該キットはまた、ＦＡＣＳによるＣＤ２７１＋細胞の検出および単離、並びにＴｕｊ１、ＭＡＰ２、ＢＦ１、Ｎｋｘ２．１、およびｐ７５の発現の検出のための試薬を含んでもよい。

当該キットは、場合により、使用説明書、１つもしくは複数の容器、１つもしくは複数の抗体、又はそれらのうちのいずれかの組み合わせを含んでもよい。典型的にはラベルがキットに添えられ、当該ラベルには任意の記入または記録された資料が含まれ、それは、キット内容物の使用のための指示書または他の情報を提供する電子的なまたはコンピューターで読み込み可能な形態（例えば、ディスク、光ディスク、メモリーチップ、またはテープ）であってもよい。

以下の実施例は、本発明の利点および特性をさらに説明するために提供されるが、これは、本発明の範囲を制限することを意図するものではない。本実施例は、使用され得るものの典型である一方、当業者に公知の他の方法、方法論、または技術が代わりに使用されてもよい。

実施例Ｉ
ｉＰＳＣに由来するアルツハイマー病のＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異における、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９により修正可能な変異に関連する分子表現型および生理学的表現型
前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）は、全ての形態のＡＤにおいて影響を受ける最初の細胞タイプの１つであると考えられ、これらの機能障害は、短期記憶の形成および想起の障害と臨床的に相関する。本発明者らは、プレセニリン２（ＰＳＥＮ２）変異のキャリアおよび対照に由来する細胞株を使用して、ｉＰＳＣからヒトＢＦＣＮを生成するための最適化されたインビトロプロトコールを提示する。予想通り、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異を有する細胞株は、ｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮにおいてＡβ４２／４０の増大を示した。ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}株に由来する神経細胞が矩形の脱分極電流注入に応答して生じたスパイクの最大数は、より少なかった。基電流の注入時における第一の活動電位の高さもまた、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＢＦＣＮにおいて有意に低下した。ＰＳＥＮ２の点変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９による修正は、電気生理学的異常を消失させ、対照において記録されたレベルまでスパイクの最大数とスパイク高の両方を回復させた。また、増大したＡβ４２／４０を、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓにより仲介される修正後に正常化させた。ゲノム編集データは、電気生理学におけるＰＳＥＮ２変異関連変化も示しながら、Ａβ４２／４０比の変異関連変化の強い一貫性を立証する。

「アミロイド仮説」は、アルツハイマー病（ＡＤ）の病因の最も支持されている説明の１つである。臨床病理学的分解および／または臨床放射線学的分解の近年の例は、それぞれ、神経病理学的ＡＤが、常に認知症と関連するわけではない理由［２４］、および臨床上のＡＤを有する患者の約３分の１が、陰性のアミロイド脳スキャンを有する理由［４０］を説明するために、代替のモデルの考察を導いた。臨床上のＡＤが、アミロイドーシス、タウオパチー、神経炎症、および神経変性と結び付く幾つかの「フィードフォワード」シナリオの１つにより引き起こされ得ることが提案されている［２２］。プレセニリン２（ＰＳＥＮ２）をコードする遺伝子における変異は、常染色体優性遺伝性早期発症型家族性アルツハイマー病（ＥＯＦＡＤ）と関連する。ＥＯＦＡＤと結び付けられるヒト染色体１ｑ３１～４２上の遺伝子座の結合は、１９９５年に、ボルガドイツ人血液関係におけるＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}点変異の同定を導いた［４３］。この変異はＡβ４２～４３／４０比の上昇を引き起こし、それにより、Ａβオリゴマーおよび原線維のアセンブリーを促進する［８３］。

ＡＤの進行を考慮する際、ヒト前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）は、その機能障害が、全ての形態のＡＤにおける短期記憶回想の早期消失の基礎となる、最初の細胞タイプの１つである。「ＡＤのコリン作動性仮説」は、１９７０年代半ばにまとめられ［６、２０、６１］、マイネルトの基底核の神経細胞からのアセチルコリン放出の低減の発見は、ＡＤ患者の前脳基底部におけるシナプス前コリン作動性異常の存在を立証した［１、７１］。これらの知見に基づき、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤が開発され、ＡＤのための最も広く使用される対症療法として続いている［２１、２８、３３、８２］。結局、疾患の異なる段階における検死後の脳の生化学的研究および体積測定研究によって、同様にＡＤの経過における早期に影響を受けた脳の幾つかの他の領域が同定された［６３］。これらの結果は、海馬および皮質に伝統的に焦点を当てるが、より最近、前脳基底部にシフトし直し、および線条体のような、他の範囲を加える注目を始めた［２７、６２］。最新の解析は、コリン作動性前脳基底部体積測定値が、従前の標準的な海馬の体積よりも、ＭＣＩからＡＤへの移行の良好な予測因子であり得ることを示唆する［１０］。

本発明者らは、ＰＳＥＮ１^{Ａ２４６Ｅ}およびＰＳＥＮ１^{Ｍ１４６Ｌ}変異を有する対象由来の保存された線維芽細胞からのｉＰＳＣに由来する神経細胞の生成を既に報告している［７７］。これらのｉＰＳＣに由来する神経細胞の遺伝子発現特性の特徴決定において、本発明者らは、分化していないＰＳＥＮ１変異ｉＰＳＣおよびこれらの神経分化した子孫におけるインフラマソーム遺伝子ＮＬＲＰ２の発現上昇の予期せぬ関連性を観察した［７７］。それにより、本発明者らは、本発明者らのＰＳＥＮ２変異株におけるＮＬＲＰ２発現を調べ、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９［１５］を利用して、インフラマソームの活性化が、ＰＳＥＮ２における病原性変異と強く結び付けられているかを調べた。本発明者らは、遺伝子修正したＰＳＥＮ２株においてはＮＬＲＰ２発現の変化を見出さなかったが、ＢＦＣＮの興奮性における、変異に関連し編集により元に戻り得る有意な差を観察した。

材料および方法
ｉＰＳＣ株の作製および維持
７８８９（ｓ）Ｂ、０５０６４３（対照）、９４８（ＡＤ１）、９４９（ｆ対照）、および９５０（ＡＤ２）ｉＰＳＣ株を、［６０］のガイドラインに従いＮＹＳＣＦ貯蔵所を介して得た。Ｎｋｘ２．１－ＧＦＰ ＥＳＣ株の誘導および特徴決定は、既に公開されている［３０］。ＥＳおよびｉＰＳ細胞株の拡大増殖および維持は、血清を含まないｍＴｅＳＲ１（商標）培地（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）中で行った。ＳｔｅｍＰｒｏ（商標）Ａｃｃｕｔａｓｅ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）を使用して細胞を剥離し、細胞継代中には１０μＭ ＲＯＣＫ阻害剤（Ｙ２７６３２、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）を培地に追加した。

本書類における全ての研究について、細胞株は、ｉＰＳＣ段階から成熟神経細胞段階まで少なくとも３回の独立した分化を経験した。データは通常、これらの独立してもたらされた遺伝子型が同一の神経細胞（またはある場合において、神経前駆細胞）にわたって比較され、独立してもたらされた遺伝子型が同一の細胞にわたって同等の結果が得られた場合、これらは、これらの遺伝子型の認定された代表であるとみなされ、故に、遺伝子型特異的な実験のために伝えられた。

Ａβ４２オリゴマー調製
Ａβ４２オリゴマーを、既に報告されている通りに調製した［２３、７８］。簡単に言うと、本発明者らは、１，１，１，３，３，３－ヘキサフルオロ－２－プロパノール（ＨＦＩＰ）（Ｓｉｇｍａ）中にＡβ４２（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｃｏｍｐａｎｙ）１ｍｇを溶解した。この調製物を等分し、ＳｐｅｅｄＶａｃ（商標）遠心分離機を使用して乾燥させた。次に、ペレットを、ＤＭＳＯ中に再懸濁して、ウォーターバス中で１０分間超音波処理した５ｍＭ溶液を得た。ここから、アリコートを－２０℃で保存し、ＰＢＳ １００μｌで希釈し、オリゴマー形成を進めるために４℃で１２時間放置することにより、２週間以内に使用した。この最終溶液を、研究用の細胞培地中で１：１６に希釈し、細胞を５μＭ Ａβ４２オリゴマーに暴露した。対照ウェルは、１：１６ＰＢＳを用いて希釈した。細胞を、３日間、培地を変更することなく、オリゴマーまたはＰＢＳに暴露した。

細胞死アッセイ
細胞を、９６ウェルプレートフォーマットでアッセイした。オリゴマーまたはビヒクル溶液を培地に加え、そのまま３日間インキュベーションした。次に、培地を集め、乳酸脱水素酵素毒性アッセイ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いてアッセイした。培地５０μｌおよび等量の反応混合バッファーを、３０分間インキュベーションした。１回の実験当たりウェルのさらなるセットを、２％トリトン（商標）Ｘ－１００を用いて５分間インキュベーションして、全ての細胞を溶解し、これらのウェルの培地も集め、記載した通りインキュベーションした。インキュベーション後、吸光度を、それぞれ、４９０ｎｍおよび６８０ｎｍにおいてシグナルおよびバックグラウンド吸光度を記録した。シグナル値からバックグラウンドを引き、値を、トリトンＸ－１００で処理したウェルにより決定した総ＬＤＨ濃度に適合させた。ヨウ化プロピジウム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を、１μＭの最終濃度のため、細胞培地に加え、そのまま５分間インキュベーションした。次に、細胞を２回培地を用いて洗浄し、画像化した。ＣＥＬＩＧＯ（商標）画像血球計算器および添付のソフトウエア（Ｎｅｘｃｅｌｏｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を使用して、画像を取得した。それぞれの生物学的変数を、それぞれの指定した「実験」において技術的トリプリケートで評価し、それぞれの指定した「実験」を、少なくとも３回の完全な「開始から終了までの」反復で行なった。

ｉＰＳおよびＥＳ細胞からの前脳基底部コリン作動性神経細胞の分化
ヒトＥＳまたはｉＰＳＣを、Ａｃｃｕｔａｓｅ（商標）（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を用いて化学的に解離させた後、Ｃｕｌ－ｔｒｅｘ（商標）（Ｔｒｅｖｉｇｅｎ）コーティングプレートに、６ウェルプレートまたはペトリディッシュにおける１ウェル当たり４～８×１０^５個の細胞の密度にて、細胞数を合わせて、単一の細胞としてプレーティングした。細胞を、完全なコンフルエントに達するまで、ｍＴｅＳＲ１（商標）培地（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）においてまず維持した。分化の「０日目」に、培地を、多能性を促進する因子、すなわち、ｂＦＧＦ、ＴＧＦ－β、Ｌｉ－Ｃｌ、ＧＡＢＡおよびピペコリン酸を欠く、カスタムｍＴｅＳＲ１（商標）培地（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）により置き換えた。０日目における二重ＳＭＡＤ阻害剤（１０μＭ ＳＢ４３１５４２および２５０ｎＭ ＬＤＮ１９３１８９、Ｓｅｌｌｅｃｋｃｈｅｍ）の添加により、細胞を神経外胚葉特定化に向かわせた。分化の２日目において、培地を、二重ＳＭＡＤ阻害剤および２種の腹側化因子：５００ｎＭ ＳＡＧ（Ｒ＆Ｄ）および２μＭ プルモルファミン（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ（商標））を含有するカスタムｍＴｅＳＲ１により置き換えた。培地を、Ｂ２７（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を追加したＢｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）培地（Ｓｔｅｍｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）に次第にスイッチするとき、９日目まで、細胞に、２日毎にこの培地を与えた［３］。Ａｃｃｕｔａｓｅを使用して、１１日目に神経前駆細胞を回収し、ｐ７５＋（ＣＤ２７１）ＮＰＣをＦＡＣＳにより精製し、１ウェル当たり８０，０００個の細胞密度で、非接着性９６ウェルＶ底プレートに、１０μＭ ＲＯＣＫ阻害剤（Ｙ２７６３２、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）、神経成長因子、ＮＧＦ、（Ａｌａｍｏｎｅ ｌａｂｓ、５０ｎｇ／ｍＬ）および脳由来神経栄養因子、ＢＤＮＦ、（Ｒ＆Ｄ、５０ｎｇ／ｍＬ）を追加したＢｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）＋Ｂ２７においてプレーティングした。細胞を凝集させ、神経胚様体（ＮＥＢ）を形成させ、１９日目まで１日置きに加えた。１９日目において、Ａｃｃｕｔａｓｅ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を使用して、ＮＥＢを解離させ、単層培養物として、ＢＤＮＦおよびＮＧＦを追加したＢｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）培地＋Ｂ２７中の分岐ポリエチニルイミン（．１％、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）およびラミニン（１０ｍｇ／ｍＬ、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）を用いてコーティングしたプレートにプレーティングした。解析まで、培地を２日毎に交換した。代替として、３Ｄ ＮＥＢを、拡大増殖のため３～４個の小片に手動で解体し、さらに成長させるか、または凍結保存した。当初のバージョンのプロトコールは、Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）の代わりに基礎培地としてＮｅｕｒｏｂａｓａｌ（商標）を使用した。

ゲノムＤＮＡの単離および配列決定
製造元の指示に従い、Ｈｉｇｈ Ｐｕｒｅ（商標）ＰＣＲ鋳型調製キット（Ｒｏｃｈｅ）を使用して、ＰＳＥＮ２変異ｉＰＳＣ株または対照ｉＰＳＣ株からゲノムＤＮＡを単離した。増幅に先立ち、ゲノム試料を、ＲＮＡｓｅ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて処理した。次のプライマー：
フォワード：

、リバース：

を使用して、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異を含有するＰＳＥＮ２のエクソン５由来のフラグメントを増幅し、遺伝子型に関わらず、１７３ｂｐのフラグメントを生じさせた。ＡｐｏＥ対立形質バリアントの検出のため、配列決定に先立ち、プライマー：
フォワード：

、リバース：

を使用して、２４４ｂｐのフラグメントを増幅した。両方のＰＣＲを、次の設定：９４℃で１０分；４０サイクル（９４℃で３０秒、６２℃で２０秒、７２℃で１０秒）；７２℃で７分を用いて行なった。ＰＣＲ産物を２％アガロースゲル中で泳動させて、増幅したフラグメントのサイズをチェックした。増幅後、ＥＸＯＳＡＰ－ｉｔ（商標）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して、試料を洗浄し、次に、以下のプライマー：［５３］からのＰＳＥＮ２用プライマー（フォワード：

、リバース：

）；［３６］からのＡｐｏＥ用プライマー（フォワード：

、リバース：

）を使用して、配列決定した。

ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９による遺伝子修正
ｉＡＤ１対照株およびｉＡＤ２対照株は、ＰＳＥＮ２^{ＷＴ／ＷＴ}に対するＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ／ＷＴ}ヘテロ接合性点変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９により仲介した修正により、９４８（ＡＤ１）および９５０（ＡＤ２）ｉＰＳＣ株から生じた。ｇ１Ｎ１４１ＩシングルガイドＲＮＡ（ｓｇＲＮＡ）を、ｐＳｐＣａｓ９（ＢＢ）－２Ａ－ＧＦＰ（ＰＸ４５８）ベクターにクローニングし、それにより、ボルガ変異が位置するＰＳＥＮ２のエクソン５における配列に遺伝子編集を指示するためのｐＳｐＣａｓ９－ｇ１Ｎ１４１Ｉ－ＧＦＰベクターを生じる。一本鎖オリゴヌクレオチド（ｓｓＯＤＮ）は、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９修正のための効率的な鋳型である［１３、６６］。ｓｓＯＤＮ＃Ａ－Ｎ１４１Ｉ（配列の詳細は以下のとおり）を、遺伝子修正のためのドナー配列として使用した。本発明者らは、非対称なｓｓＯＤＮが、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９を使用した相同性により指示される修復のより高い効率を示したので、９１ｂｐの長い相同性アームおよび３６ｂｐの短い相同性アームを有する非対称なｓｓＯＤＮ配列を設計した［６８］。

下線＝点変異を修正するｓｓＯＤＮの塩基

Ａｍａｘａヒト幹細胞用Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ（商標）キット（Ｌｏｎｚａ ＶＰＨ－５００２）を使用して、５０～７０％コンフルエントでプレーティングされたＡＤ１およびＡＤ２ ｉＰＳＣ株にドナー配列およびｐＳｐＣａｓ９－ｇ１Ｎ１４１Ｉ－ＧＦＰベクターを形質導入し、回復のために再プレーティングした。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｉａ ＩＩｕ Ｃｅｌｌ Ｓｏｒｔｅｒ（商標）でＧＦＰ＋細胞を分取し、当該細胞を９６ウェルフォーマットで１ウェル当たり３０～５０個播種し、単一コロニーを検出してピックアップした。陽性コロニーを拡大増殖させ、ｑＤＮＡを抽出し、Ｃｈｒ１：２２７，０７３，３０４ Ａ＞Ｔに位置するＳＮＰ（ｄｂＳＮＰ ＩＤ：ｒｓ６３７５０２１５）に特異的なプローブを用いて特別設計ＴａｑＭａｎ（商標）ジェノタイピングアッセイを使用して決定した良好なＨＤＲについて解析した。選択したクローンをサンガー配列決定により解析して、Ｃｈｒ１：２２７，０７３，３０４位置の修正を確認し、周囲の領域における可能性のある挿入体または欠失体を廃棄した。

蛍光標示式細胞分取（ＦＡＣＳ）
分化の１２日目における神経前駆細胞を、Ａｃｃｕｔａｓｅ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を用いて５分間３７℃で解離させ、神経用基礎培地中で不活性化させた。細胞を１０００ｒｐｍにて４分間スピンし、ペレットを、ｐ７５またはＮＧＦＲとしても公知のＰＥマウス抗ヒトＣＤ２７１抗体（クローンＣ４０～１４５７、ＢＤ）を１：１００で含むＦＡＣＳバッファー（ＤＰＢＳ、０．５％ＢＳＡ分画Ｖ溶液、１００Ｕ／ｍＬペニシリン－ストレプトマイシン、０．５％ＥＤＴＡおよび２０ｍＭグルコース）中に再懸濁し、２０分間、室温（ＲＴ）、暗所にてインキュベーションした。インキュベーション時間の後、ＦＡＣＳバッファーを用いて細胞を洗浄し、ペレットを、１０μＭ ＲＯＣＫ阻害剤（Ｙ２７６３２、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ）を含むＦＡＣＳバッファー２ｍＬ中に再懸濁した。ｐ７５陽性細胞を、ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｉａ ＩＩｕ Ｃｅｌｌ Ｓｏｒｔｅｒ（商標）にて精製し、データを、ＦｌｏｗＪｏ（商標）ソフトウエアを使用して解析した。

リアルタイム定量的ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ－ｑＰＣＲ）
ＰＳＥＮ２変異患者または対照患者に由来するヒトｉＰＳＣを、単層で増殖させ、ＲＬＴバッファーを含む細胞培養ウェル中で直接溶解した。総ＲＮＡの精製を、ＲＮｅａｓｙ（商標）マイクロキット（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて、製造元の指示に従って行なった。ｃＤＮＡを、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ（商標）ＩＩＩ逆転写酵素（ＲＴ）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用して合成した。半定量的リアルタイムＰＣＲを、以下の表２において挙げるプライマーを使用して、ＳｔｅｐＯｎｅＰｌｕｓ（商標）リアルタイムＰＣＲシステム（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ、ＣＡ）において行った。本発明者らは、ＧＡＰＤＨに対して発現レベルを標準化した。ＰＣＲサイクルパラメーターは、５０℃で２分間、９５℃で１０分間、続いて９５℃で１５秒間、および６０℃で１分間の４０サイクルであった。それぞれの生物学的変数を、それぞれの指定した「実験」において技術的トリプリケートで評価し、それぞれの指定した「実験」を、少なくとも３回の完全な「開始から終了までの」反復で行なった。発現レベルを、対照株に対して標準化し、結果を、ＡＶＧ±ＳＥＭとして表した。

Ａβアッセイ
細胞を、二重ＳＭＡＤ阻害の８日目の後に３日間条件付けて、インビトロで神経前駆細胞によるＡβの分泌を測定した。ヒト／ラットβアミロイド４０ＥＬＩＳＡキットおよびβアミロイド４２ＥＬＩＳＡキット高感度（Ｗａｋｏ）を使用して、Ａβレベルを定量した。それぞれの生物学的変数を、それぞれの指定した「実験」において技術的トリプリケートを使用して評価し、それぞれの指定した「実験」を、少なくとも３回の完全な「開始から終了までの」反復で行なった。

免疫染色／ＩＣＣ
細胞を、１２、４８または９６ウェルプレートのウェルに直接、４％ＰＦＡを用いて２０分間固定し、１×ＤＰＢＳ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）を用いて３回洗浄した。染色のため、細胞を、ブロッキング溶液（０．１％トリトン（商標）Ｘ－１００プラス５％ロバ血清を含む１×ＤＰＢＳ）において２時間、室温においてインキュベーションした。対応する１次抗体を、ブロッキング溶液中の適当な濃度にて希釈し、一晩４℃にてインキュベーションした。使用した１次抗体を、以下の表において表す。細胞を、ＤＰＢＳＴ（１×ＤＰＢＳ＋０．１％トリトン（商標）Ｘ－１００）を用いて３回洗浄し、適当な２次抗体を、ブロッキング溶液において１時間室温にて加えた。次に、細胞を、ＤＰＢＳＴを用いて３回洗浄し、核対比染色のため、ＤＲＡＱ５またはＨｏｅｓｃｈｔ３３，３４２（１μｇ／ｍＬ、１×ＤＰＢＳにおいて希釈した）と１０分間室温にてインキュベーションした。１０×、２０×もしくは６３×の拡大率下で倒立蛍光顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ（商標）ＩＸ７１顕微鏡）または共焦点顕微鏡（Ｚｅｉｓｓ（商標）ＬＳＭ５パスカル顕微鏡）を使用して、細胞を可視化した。

ウエスタンブロット
ＰＳＥＮ２変異患者または対照患者に由来するヒトｉＰＳＣを、単層で増殖させ、細胞培養物中でタンパク質分解酵素およびホスファターゼ阻害剤を含むＲＩＰＡバッファー（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて直接溶解した。タンパク質濃度を、ＢＣＡタンパク質アッセイキット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して測定した。タンパク質の推定後、細胞溶解物２０μｇを、４～１２％Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓゲル（Ｂｏｌｔ（商標）タンパク質ゲル）上でのＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動により分離し、電気泳動ブロッティングによりニトロセルロース膜に移した。膜を、ブロッキングバッファー１Ｘ ＴＢＳＴ（トリス－緩衝食塩水＋０．１％Ｔｗｅｅｎ）および５％無脂肪乾燥ミルクを用いて、１時間、室温にて攪拌しながらブロッキングし、ＴＢＳＴを用いて３回洗浄した。洗浄後、膜を、４℃にて一晩攪拌しながら、ＮＬＲＰ２（１：１０００）、ＰＳＥＮ２（１：２００）または３－アクチン（１：１０００）に対する１次抗体とインキュベーションした。洗浄後、膜を、西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合した適当な２次抗体と１時間、室温にてインキュベーションした。最後に、タンパク質バンドを、製造元の指示に従い化学発光試薬を用いて可視化した。３－アクチンを、添加対照として使用した。

電気生理
全細胞パッチ－クランプ記録を、分化の３８～５５日目の単一神経細胞から得た。細胞を、低密度において、灌流ベースの付属記録チャンバーに置いたプラスチックカバーガラスに播種した。神経細胞を、Ｈａｍａｍａｔｓｕ Ｏｒｃａ（商標）Ｒ^２ＣＣＤカメラを備えたＯｌｙｍｐｕｓ ＢＸ６１ＷＩ顕微鏡下で微分干渉光学を使用して、局在化した。記録を、室温にてＭｕｌｔｉＣｌａｍｐ（商標）７００Ｂ増幅器（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ、ＵＳＡ）を使用して行なった。シグナルを、１０ｋＨｚにおいて試料採取し、６ｋＨｚにおいて、デジタル変換器（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）に類似のＤｉｇｉｄａｔａ（商標）１４４０Ａを使用してフィルターをかけた。増幅器制御およびデータ取得を、ｐＣｌａｍｐ（商標）１０．０ソフトウエア（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）を使用して行なった。

記録中、神経細胞を、酸化Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）培地（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ）を用いて灌流した。培地抵抗性記録ピペット（４～６ＭΩ）を、ｐＨ７．１に滴定し、モル浸透圧濃度３１０ｍＯｓｍの（ｍＭで）１３０Ｋ－グルコネート、１０ＫＣｌ、２Ｍｇ－ＡＴＰ、０．２Ｎａ－ＧＴＰ、０．６ＣａＣｌ２、２ＭｇＣｌ２、０．６ＥＧＴＡ、および５ＨＥＰＥＳからなる細胞内溶液で充填した。幾つかの実験において、細胞内溶液はまた、ｈｏｃ同定後の個々の神経細胞について４ｍｇ／ｍＬビオサイチン（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を含有し、それを、他で記載される通り［４２］、ストレプトアビジン結合Ａｌｅｘａ ４８８（Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて可視化した。最初の割り込み後、接近抵抗性（Ｒｓ）を、一貫してモニタリングし、Ｒｓが、２０ＭΩを超えるか、または３０％より変化したなら、記録を廃棄した。化合物Ｎａ＋およびＫ＋電流特徴決定のための電位プロトコールは、以下の通りである：細胞を、電位－８０ｍＶで維持し、続いて、０．１Ｈｚの頻度で１０ｍＶずつ－１００ｍＶから３０ｍＶまで増加させる５００ｍｓのステップに供した。電流固定様式に移行後、静止膜電位を記録し、細胞を、－７０ｍＶまでの負のＤＣ電流注入により過分極させて、興奮性測定値の一貫性を立証した。１ｐＡずつ－１０ｐＡから４０ｐＡまでの１秒間の矩形電流ステップを用いて活動電位を誘発した。

電気生理学的記録を、ＣｌａｍｐＦｉｔ（商標）ソフトウエア（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ、ＵＳＡ）を使用して解析し、結果の統計学的有意性を、チューキー事後比較の手段を用いたＡＮＯＶＡ検定を使用して測定した。塩および他の試薬を、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ、ＵＳＡ）から購入した。

統計解析
ｑＰＣＲ遺伝子発現実験およびＡβ４２／４０ ＥＬＩＳＡを、スチューデントｔ検定を使用した統計学的有意性について解析した。ＬＤＨ放出アッセイを、２元配置ＡＮＯＶＡボンフェローニ事後検定により解析した。チューキー事後比較を用いたＡＮＯＶＡ検定を、電気生理の結果の解析のため使用した。実験は、数日から数週間を要する電気生理学解析のため記録された９４個の神経細胞のそれぞれを検出する必要があった。それぞれの実験日において、それぞれの遺伝子型の代表を、それぞれの日に研究したそれぞれの遺伝子型由来の少なくとも３つの試料と共に含んだ。^＊、ｐ＜０．０５；^＊＊、ｐ＜０．０１；^＊＊＊、ｐ＜０．００１。

結果
ＢＦＣＮ分化のプロトコールの最適化
ＢＦＣＮ分化のスキームを、図１Ａに記載する。対照対象またはＡＤ患者に由来するｉＰＳＣをフィーダーのない状態でプレーティングし、ｍＴｅＳＲ１基礎培地を使用した分化の前に１００％コンフルエントに到達させた。「０日目」に、ＴＧＦ－βシグナル伝達の両方の分岐を阻害（二重ＳＭＡＤ阻害）して神経外胚葉の運命を誘導した［１２］。分化（２～１０日目）を、多能性を支持する因子（ｂＦＧＦ、ＴＧＦ－β、Ｌｉ－Ｃｌ、ＧＡＢＡおよびピペコリン酸）を欠く改変ｍＴｅＳＲ１組成を使用して行なった。これらの細胞を前脳基底部コリン作動性神経細胞に特定化するためには、淡蒼球原基（ＭＧＥ）誘導のための腹側化が必要とされる［１９、８５、９１］。細胞自体を、２～８日目に、５００ｎＭソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）類似体（ＳＡＧ）および２μＭプルモルファミンを用いて処理した。ＳＡＧは、組換えＳｈｈより低コストであり、Ｓｈｈ自体より神経細胞の生存特性においていくつかの利点を有し［７、３５］、ＣｈＡＴ^＋運動神経細胞およびグルタミン酸作動性介在神経細胞の分化中に示された通り、Ｓｈｈシグナル伝達を活性化するための適当な代替物である［９１］。本発明者らは、腹側化因子の組み合わせ、投薬量、およびタイミングを、誘導されたＮｋｘ２．１前脳基底部前駆体に由来するＢＦＣＮの特定化にとってより有益なものに調節するためのツールとして、Ｎｋｘ２．１－ＧＦＰ胚性幹細胞（ＥＳＣ）レポーター株を使用した。

しかしながら、中間神経前駆細胞からＴＨ＋およびＧＡＢＡ＋視床下部神経細胞などの複数の神経細胞サブタイプを生成するＮｋｘ２．１の能力を考慮して、本発明者らは、異なる特定化条件における、ＧＡＢＡ作動性介在神経細胞特異的転写因子Ｌｈｘ６［２６］の発現に対する、下流のコリン作動性特定化因子Ｌｈｘ８の発現を解析した（図１ｂ）。これらのデータは、Ｓｈｈ＋プルモルファミンの効果より少ない効果ではあるが、Ｎｋｘ２．１の誘導に対するＳＡＧおよびプルモルファミンの相乗効果の存在を支持する［５０］のデータと一致する（図１Ｂ）。Ｎｋｘ２．１からもたらされたＧＦＰレベルは、１４日目より後に維持され、８日目におけるＳＡＧ＋プルモルファミンの中止後でさえ維持された（図１Ｂ）。本発明者らは、ＳＡＧ単独よりも、それどころかＳｈｈ＋プルモルファミンよりも、ＳＡＧ＋プルモルファミンで処理した場合に高いＬｈｘ８を観察した（図１Ｂ）。興味深いことに、ＳＡＧ＋プルモルファミンにより誘導された中間Ｎｋｘ２．１レベルは、Ｌｈｘ８およびＢＦ１のより高い遺伝子発現誘導と相関する（図１Ｂ）。２日目においてＳＨＨ経路誘導性の腹側化を開始するという本発明者らの選択は、二重ｓｍａｄ阻害プロトコールとの関連において、より早期（例えば、視床下部神経細胞）またはより後期（例えば、ＧＡＢＡ作動性介在神経細胞）の腹側化により生成される他のＭＧＥ由来の集団を示す報告に基づいた。

パターン形成期の後、本発明者らは、カスタムｍＴＥＳＲ１（商標）培地から、神経細胞の生存および成長をサポートするＢ２７サプリメントを含むＢｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）培地に次第にスイッチした［３］。１１日目において、本発明者らは、ネスチンおよびＳｏｘ２マーカーについて陽性の神経細胞ロゼットを観察し（図１Ｃ）；また、本発明者らは、早くも１１日目にＴｕｊ１＋神経突起を観察した（図１Ｃ）。より高純度のコリン作動性集団を得るために、本発明者らは、ＢＦＣＮが、成人の脳における非病原性状態下で頑強なレベルのＰ７５を発現する唯一のＣＮＳ神経細胞タイプであるという事実に起因して、コリン作動性神経細胞に特異的な子孫を単離するためにＰ７５＋ＦＡＣＳストラテジーを開発した。このストラテジーのサポートは、胚性マウス中隔から高発現Ｐ７５＋細胞を単離するためのＦＡＣＳを使用した既に公開されたプロトコールを含む［６５］。この集団は、コリン作動性関連マーカーの最大の発現と相関した。

１１／１２日目に、本発明者らは、化学的解離（Ａｃｃｕｔａｓｅ）を用いて細胞を取り出し、１１～１２日目のｐ７５＋（ＣＤ２７１）神経前駆細胞を精製し、Ｖ底９６ウェルプレートにおいて神経前駆細胞をスピンダウンすることにより、３Ｄの神経胚様体（ＮＥＢ）を生成させた。１９日目に、ＮＥＢを解離させ、分岐ポリエチレンアミン（Ａｌｄｒｉｃｈカタログ番号４０８７２７）およびラミニンを用いてコーティングしたプレート上に単層として再プレーティングした。２６日目（培養物は、もはや添加したＤＡＰＴを有さない）まで、増殖因子ＢＤＮＦ、ＮＧＦおよびＤＡＰＴを添加して単層培養を維持した。幾つかの対照ｉＰＳＣおよびＨ９ ｈＥＳＣ株からのＮＥＢの化学的解離から生じた、ＮＥＢ構造および固定された単層の両方の凍結切片の免疫染色は、分化プロトコールの最終段階において、ＢＦＣＮ系統マーカーＴｕｊ１、ＭＡＰ２、ＢＦ１、Ｎｋｘ２．１、およびｐ７５の発現を示した（図１Ｄ）。神経細胞培養物へのＮＧＦ添加は、成熟、神経突起伸長、およびＣｈＡＴの存在に対する有利な効果を示した（図１Ｅ）。

ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ｉＰＳＣ株の作製およびＱＣ
ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異ｉＰＳＣおよび対照株を、新鮮皮膚生検から得た。確立した線維芽細胞株を、プレセニリン２ボルガ家族性ＡＤ変異（ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}）のキャリア２名および影響を受けていないメンバー１名の家系より寄付された皮膚パンチから成長させた。加えて、本発明者らは、非家族性関連対照を含めた。線維芽細胞を、改変ＲＮＡ方法を用いてリプログラミングして、山中因子（Ｏｃｔ４、ＫＬＦ４、ＳＯＸ２、およびｃ－Ｍｙｃ）を導入し、得られたｉＰＳＣ株は、アルカリ－ホスファターゼ（ＡＰ）酵素活性、遺伝子発現解析、および多能性マーカーについての免疫染色、並びに［６０］により開発された自動化ｉＰＳＣリプログラミングおよびＱＣ方法に従った、染色体異常の検出のための核型分析を含む、頑強な細胞再生および多能性を確かめるための幾つかの品質管理プロセスに供した。研究に含まれる対象の遺伝子型、性別および年齢を、図２ａに示す。また、２種のＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ} ｉＰＳＣ株はＡＰＯＥ ε４についてヘテロ接合性（ε３／ε４）であり、一方、対照ｉＰＳＣ株はホモ接合性ε３／ε３であった。ｉＰＳＣ株の特徴決定、多能性マーカーの発現、および品質管理の結果を、図１０に示す。簡単に言うと、選択した全てのｉＰＳＣクローンは、胚様体形成および３つの胚葉への分化により多能性を示し（図１０Ａ）、これは、参照により本明細書に組み込まれる。最後に、株を、フィンガープリンティングして（Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅ ｇｅｎｅｔｉｃｓ）、それらが、親線維芽細胞株と一致することを確実にした（データを示していない）。全ての親線維芽細胞株およびｉＰＳＣ株を、サンガー配列決定に供して、ＰＳＥＮ２およびＡＰＯＥの遺伝子型を決定した。ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}点変異が位置する（Ｃｈｒ１：２２７，０７３，３０４ Ａ＞Ｔ）領域を囲む、ＰＳＥＮ２のエクソン５由来の１７３ｂｐのフラグメントを、ＰＣＲにより増幅し、［５３］において公開されたプライマーを使用して配列決定し；同様に、３つの対立形質バリアントを決定する２つのＳＮＰを含有するＡＰＯＥ遺伝子座由来の２４４ｂｐのフラグメントを、ゲノムＤＮＡからＰＣＲにより増幅し、続いて配列決定して、［３６］のプライマーを使用して、ε２／ε３／ε４バリアント間を区別した。ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}点変異の存在を示す試料のクロマトグラムを図２Ｂにおいて示し、全ての遺伝子型を図２Ａにおいて概説した。

ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}神経前駆細胞の特徴決定
コリン作動性神経細胞の分化の早期段階におけるＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異の効果を研究するために、本発明者らは、ＢＦＣＮ分化プロトコールに沿ってＤＩＶ１１～１６において得られる神経前駆細胞（ＮＰＣ）を解析した。この中間未成熟集団の解析により、本発明者らが、それを実施しない場合、最後まで分化したコリン作動性神経細胞においては検出されない、ＢＦＣＮの生成において可能性のある早期変化を検出することが可能となる。かかる異常は、成熟神経細胞において潜在的に役割を果たし、ＡＤの病態生理学に関与し得る。本発明者らは、遺伝子発現および免疫蛍光法により、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異ＮＰＣおよび対照ＮＰＣにおける早期神経細胞マーカーの発現を解析した。本発明者らは、分化の１１日目の変異ＮＰＣにおいて、一般的な神経細胞マーカーであるＴｕｊ１（βＩＩＩ－チューブリン）のＲＮＡ発現がより低いことを見出したが、約１６～２１日目には、本発明者らは、免疫細胞化学により定量可能な差を検出しなかった（図２ＣおよびＤ）。また、１１日目のＮＰＣ単層培養物を典型的なＮＰＣマーカー：Ｓｏｘ２、およびＰａｘ６について免疫染色したところ；Ｎｋｘ２．１導入と共に予測された通り、Ｐａｘ６レベルが低下していた（示していない）。本発明者らは、１１日目のＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}培養物においてＳｏｘ２およびネスチンの同等の発現を観察した（図２Ｃ、上部のパネル）。２１日目では、変異ＮＰＣは、同等レベルのＮｋｘ２．１（ＭＧＥマーカー）を発現していたが、ｑＰＣＲによるとＢＦ１（前脳マーカー）のレベルが低減しており；しかしながら、この分化段階における免疫染色によるとＢＦ１タンパク質の発現は影響を受けていないように見えた（図２Ｃの下部パネル、およびＤ）。本発明者らは、陽性細胞の割合（％）または蛍光中央ピーク値に関して、ＤＩＶ１１～１２のＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}細胞のＮＧＦＲ（ｐ７５／ＣＤ２７１）表面発現における差を観察しなかった（図２Ｅ）。

［５９、７３］により既に公開された通り、変異体ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}の発現は、遺伝子導入マウスの脳においてＡβ４２／４０比の増大を引き起こし；加えて、この増強したＡβ４２産生は、変異ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}タンパク質の過剰発現が誘導された際の神経細胞株［８３］およびＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異患者に由来するｉＰＳＣ［９３］において観察された。首尾一貫して、本発明者らは、ＤＩＶ１１のＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}神経前駆細胞の培養上清において、Ａβ４２／４０比の２倍の増大、分泌されたＡβ４０の量の５０％の増大、およびＡβ４２種の２．５倍の増大を観察した（^＊＊＊ｐ＜０．００１）（図２ｅ）。コーリエル貯蔵所由来の線維芽細胞に由来するＦＡＤ１／ＰＳ２ ｉＰＳＣ株に適用した異なる神経細胞分化方法を用いたところ、本発明者らの研究において観察されたＡβ４０および４２の分泌レベル、ならびに［９３］において見られるレベルは、絶対数と倍数増加の両方において非常に類似する。

ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ｉＰＳＣ株および対照に由来する成熟ＢＦＣＮの特徴決定
ＢＦＣＮの分化、遺伝子発現、機能、およびコミュニケーションに対するＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異の影響を決定することを目的に、本発明者らは、適当な発現マーカーについて、より後の時間点において細胞を特徴付け；本発明者らの目標は、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ｉＰＳＣが、ＢＦＣＮ成熟プロセスを完了することができたかどうか、およびそうであれば、ＢＦＣＮ分化のより後の段階に沿った任意の異常がＥＯＦＡＤの病態生理学を説明するか、を調査することであった（図３）。プロＮＧＦに優先的に結合するｐ７５に加えて、本発明者らは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＢＦＣＮおよび対照において発現した初代成熟ＮＧＦ受容体であるＴｒｋＡの発現を解析した（図３ａ）。これは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＢＦＣＮが、予想通り、ＮＧＦの生存促進シグナルおよび分化シグナルを受けて当該シグナルから恩恵を受けることができることを示唆しており、それらの固有のアイデンティティをさらに裏付ける。本発明者らは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＢＦＣＮおよび対照において、さらなるコリン作動性神経細胞特異的マーカーであるコリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣｈＡＴ）および小胞アセチルコリン輸送体（ｖＡＣｈＴ）の同等の発現を観察した（図３ｂ）。Ｔｕｊ１、成熟マーカー微小管関連タンパク質２（ＭＡＰ２）のような他の一般的な神経細胞マーカーは、免疫蛍光により明らかな差を示した（図３ｂ）。

ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９により仲介されるＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異の修正およびＡβ４２／４０比に対する効果
ＰＳＥＮ１変異体において既に観察された通り［７７］、ＡＰＰのプロセシングおよび切断における分子変化ならびに／またはＮＬＲＰ２インフラマソームの活性化の悪化がＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異のみに関与するかを決定するために、本発明者らは、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９テクノロジーを利用して、本発明者らのｉＰＳＣ株におけるＰＳＥＮ２遺伝子座を修飾した。本発明者らは、２つのＰＳＥＮ２変異ｉＰＳＣ株（ＡＤ１、ＡＤ２）におけるＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}点変異を修正することにより、これを行なった。この目的のため、オンラインのツール（ｔｏｏｌｓ．ｇｅｎｏｍｅ－ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ．ｏｒｇ）を使用して、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異を囲むＰＳＥＮ２エクソン５の領域（２３ｂｐ上流のＣｈｒ１：２２７，０７３，３０４ Ａ＞Ｔ）にＣａｓ９を誘導するための特異的なガイドＲＮＡ（ｇ１Ｎ１４１Ｉ）を設計した。ｇ１Ｎ１４１Ｉを、ｐＳｐＣａｓ９（ＢＢ）－２Ａ－ＧＦＰ（ＰＸ４５８）ベクターにクローニングした。ＨＥＫ２９３Ｔにおいて、ｐＳｐＣａｓ９－ｇ１Ｎ１４１Ｉ－ＧＦＰを形質導入し、ＧＦＰの蛍光により発現を評価した（図４ａ）。

短い方のアームがＰＡＭ側に近い領域の方に置かれる非対称なドナー配列が、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９システムを用いた相同組換え修復の優れた効率を示したので［１３］、本発明者らは、変異を修正するために、９１ｂｐの長い相同性アームと３６ｂｐのより短い相同性アームとを有する非対称なｓｓＯＤＮ ＨＤＲ（相同組換え修復）鋳型、ｓｓＯＤＮ＃Ａ－Ｎ１４１Ｉを設計した。次に、本発明者らは、Ａｍａｘａ（商標）ヌクレオフェクションを使用して、ｐＳｐＣａｓ９－ｇ１Ｎ１４１Ｉ－ＧＦＰおよびｓｓＯＤＮ＃Ａ－Ｎ１４１ＩをｉＰＳＣ株に形質導入するよう処理した（図４ａ）。ヌクレオフェクションの４８時間後、細胞を解離させ、ＧＦＰ^＋集団をＦＡＣＳにより精製し、単一の遺伝子修正クローンを単離するために低密度にてフィーダーフリーで再プレーティングした（図４ｂ）。続いて、クローンを増殖させ、拡大増殖後にｇＤＮＡを抽出した。ＨＤＲの成功を示した陽性クローンのスクリーニングを、Ｃｈｒ１：２２７，０７３，３０４ Ａ＞Ｔに位置するＳＮＰ（ｄｂＳＮＰ ＩＤ：ｒｓ６３７５０２１５）に特異的なプローブを用いた特別設計ＴａｑＭａｎ（商標）ジェノタイピングアッセイを使用したｑＰＣＲにより決定した。本発明者らは、この方法により、元のｉＰＳＣ株に由来する、ホモ接合性ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}、ヘテロ接合性ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}、およびＰＳＥＮ２^ＷＴ単一クローン間で区別することができ、予め選択したクローンをサンガー配列決定に供して、Ｃｈｒ１：２２７，０７３，３０４の位置を確認し、周囲の領域におけるＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９修飾により導入される可能性のある挿入、欠失、またはミスマッチを検出し、ＨＤＲの成功を実証する（図４ｃ）。

修正が成功したクローンを拡大増殖させ、研究に使用した他の４つの株と並行してＢＦＣＮ分化プロトコールに供した。本発明者らは、ＢＦＣＮ（ＤＩＶ３４）から培地を回収し、アミロイドβ産生について再試験した。ＤＩＶ１１～１２のＮＰＣにおける本発明者らの従前の発見（図２ｆ）の裏付けとして、本発明者らは、成熟ＢＦＣＮがＡβ４２／４０比の有意な増大（図４ｄ）および全体的なＡβ産生（図１１）も示すことを観察した。重要なことに、これらの結果はまた、修正された株（ｉＡＤ１対照およびｉＡＤ２対照は、それぞれＡＤ１およびＡＤ２の修正クローンである）において、Ａβ４２／４０比の対照レベルへの正常化を示した（図４ｄ）。これらの結果はまた、異常なＡＰＰプロセシングとＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異を結び付け、プレセニリンがγ－セクレターゼの触媒部位を含有することを補強する［９０］、という従前の知見を裏付けた。

ｉＰＳＣに由来するＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}神経細胞のＡβ４２オリゴマー毒性に対する感受性の評価
従前の報告は、ＦＡＤ変異を有するｉＰＳＣ株が、高濃度のＡβ４２オリゴマーのような有害な刺激に対して増強した感受性を示し得ることを示した［２］。それ故、本発明者らは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異体由来の本発明者らのＢＦＣＮが、培地中のＡβ４２オリゴマーに対する増強した毒性を示すかどうかを試験した（図５）。本発明者らは、死細胞により放出された乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）の割合（％）を測定する（これは、毒性についての間接的な測定を提供する）ことにより、神経毒性を評価した。２元配置ＡＮＯＶＡによるこの方法を用いて、本発明者らは、７２時間の暴露後に、培地に加えた５μＭ Ａβ４２オリゴマーによりもたらされる毒性における有意な効果を検出した（^＊＊＊、ｐ＜０．０１）。事後ボンフェローニ解析により、ＡＤ２株とその修正されたアイソジェニック対照（ｉＡＤ２対照）との間の有意差を明らかにした。しかしながら、Ａβ４２オリゴマー毒性に対するこの明らかに増強した感受性が、ＡＤ１株およびその対応する対照においては観察されなかった。これらの結果は、Ａβ４２に対する感受性における差が、変異ＰＳＥＮ２遺伝子型のみには結び付けられないこと、および恐らく、ＡＤ１およびＡＤ２対象間のさらなる遺伝的因子が、このストレスに対する感受性に影響し、これが、複数のアイソジェニックモデルの重要性をさらに裏付けることを示している。

ｉＰＳＣに由来するＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}神経細胞におけるＮＬＲＰ２ ｍＲＮＡの評価
本発明者らは、ＰＳＥＮ１変異皮質神経細胞の場合（公開していない知見）と同様に、ＰＳＥＮ１変異ｉＰＳＣおよびＮＰＣにおいてＮＬＲＰ２ ｍＲＮＡが上昇したことを既に報告した［７７］。それ故、本発明者らは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異との関連でインフラマソームの成分の状態を解析することを望んだ。本発明者らが、ＤＩＶ１２にてＮＰＣにおけるＮＬＲＰ２のｍＲＮＡレベルをｑＰＣＲによりアッセイしたところ、本発明者らは、対照株と比較してＡＤ１およびＡＤ２株において１００倍を超える増大を観察した（図６ａ）。これは、１１日目のＰＳＥＮ２変異体由来の全細胞溶解物においてＳＤＳ－ＰＡＧＥにより観察した、ＮＬＲＰ２タンパク質の著しい増大と相関した（図６ｄ）。しかしながら、著しくは、本発明者らは、ＡＤ２株溶解物における免疫ブロットによるＮＬＲＰ２についてのバンドを検出しなかった。さらに、本発明者らは、ミトコンドリアクレアチニンキナーゼの分解を誘導するＥ３リガーゼをコードするＡＳＢ９の上昇のような、ＰＳＥＮ１変異ｉＰＳ神経前駆細胞において既に見られた幾つかの他の転写現象を実証することができなかった。代わりに、本発明者らは、ＰＳＥＮ２変異キャリアにおいてレベルが２０～３０％減少する傾向を観察した。

ｉＰＳＣに由来するＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＢＦＣＮの興奮性の評価
本発明者らは、ＢＦＣＮ分化プロトコールを用いて、分化の３５日目から、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異ＡＤ患者２名、野生型対照、および家族性対照に由来するディッシュにおいて電気生理的に活性なコリン作動性神経細胞を作製することができた。本発明者らは、まず、神経基礎培地中で成長させたＢＦＣＮからは、この段階では成熟した活動電位波形を得ることができなかったが、Ｂｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）培地へのスイッチにより、培養した神経細胞の電気生理学的特性が有意に改善した［３］。これらの知見は、両方の培地を比較するために使用された他のｉＰＳＣから生成された神経細胞の電気生理学的特徴決定と一致する［３］。ＣｈＡＴおよびＶＡＣｈＴのエンドポイント発現並びに電気生理学的応答が同等の２種のさらなる細胞株（Ｈ９胚性幹細胞株を含む）におけるＢｒａｉｎｐｈｙｓ（商標）培地を含有するプロトコールの恩恵が再現された。ＢＦＣＮの電気生理学的特性を調べるために、本発明者らは、全細胞パッチクランプ法を用いて、合計９４個の神経細胞（２２個の野生型対照、２１個の家族性対照、１８個のＡＤ１、２８個のＡＤ２、および５個のｉＡＤ１＿対照）から記録した。全ての実験群において、記録した神経細胞は、ナトリウムおよびカリウムイオンチャネルを介した電位活性化型電流、活動電位を生じる能力を示し、古典的な神経細胞形態を示した（図７）。実験のサブセットにおいて、記録した神経細胞を、パッチピペットを通じてビオサイチンを用いて標識し、それにより、事後細胞同定およびＩＣＨ特徴決定を可能にした。本発明者らは、全てのビオチン標識した細胞はＣｈＡＴおよびＶＡＣｈＴについて免疫陽性でもあったことを見出した（ｎ＝１２、図８ａ）。

神経細胞の膜抵抗性および膜容量に関しては群間の有意差が観察されず、膜静止電位および最小電流は、単一の活動電位の発生を必要とした（図９）。しかしながら、ＢＦＣＮの興奮性において、変異に関連し編集により元に戻り得る有意な差の存在が観察された。

ＡＤ１およびＡＤ２株に由来する神経細胞が矩形の脱分極電流注入に応答して生じることができた活動電位の最大数は、（ＷＴ対照および家族性対照の場合と比較して）より少なかった（チューキーの事後比較を用いたＡＮＯＶＡ検定、図８ｂ、ｃ）。基電流注入における最初の活動電位の高さもまた、ＡＤ１およびＡＤ２ ＢＦＣＮにおいて有意に減少した（図１ｃ）。重要なことに、ＡＤ１変異ｉＰＳＣ株におけるＰＳＥＮ２点変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９修正は、観察される電気生理学的異常を消失させ、それにより、活動電位の最大数と活動電位高の両方を、野生型対照および家族性対照において記録されたレベルまで回復させた（チューキーの事後比較を用いたＡＮＯＶＡ検定、図８）。

考察
米国において、５００万人の人々が、現在、アルツハイマー病の影響を受けており、アルツハイマー病の団体によると、この数は２０５０年代までに１６００００００人まで増大する。不運なことに、本発明者らは、これらの患者の３～５％を占める遺伝性の原因の直接的な証拠のみを有する。このパーセンテージは、γ－セクレターゼ装置を構成するアミロイドタンパク質前駆体（ＡＰＰ）、またはＰＳＥＮ１、ＰＳＥＮ２における遺伝性完全浸透性常染色体優性遺伝性変異により引き起こされるＥＯＦＡＤバリアントを包含し［８７］、それらの機能における変化は、Ａβ４２オリゴマーの産生および／またはアミロイド斑の沈着を増大させる。

ヒトの脳におけるこの疾患の病態生理学を完全には再現していないＡＤのマウスモデルの数十年の研究の後［５、５７、５８］、所定の因子を使用して成人ヒト組織をｉＰＳＣへとリプログラミングし、続いてそれを特定の脳細胞タイプへとインビトロで分化させることを可能にする、［８１］による飛躍的な進歩を受けて、インビトロでのＡＤモデル化の補足的な新たな概念が出現した。

ＢＦＣＮは、最も脆弱な神経細胞集団の１つであり、その悪化が、ＡＤ患者における認知低下を一部説明する。ＢＦＣＮ不全および萎縮の証拠とは別に、他の研究により、ＡＤマウスモデルに移植されたヒト胚性幹細胞由来ＢＦＣＮが、移植マウスの行動学習の改善と関連し得ることが明らかになった［９４］。これらの知見は、早期の臨床指標ばかりでなく、ＡＤのサブタイプ特異的な細胞ベースの治療の可能性のあるストラテジーとしての、ｉＰＳＣおよびＥＳＣに由来するＢＦＣＮの妥当性を明らかにする［３９］。この細胞ベースの治療ストラテジーを前に進めるために、ヒトＥＳＣおよび／またはｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮを生成する精巧な分化プロトコールが、緊急に必要である。

本発明者らの最初の目標は、ＢＦＣＮおよび中間神経前駆細胞（ＮＰＣ）を生成するための改善されたプロトコールを開発することであり、その後、対照対象とＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異を有するものの両方に由来する細胞株を分化させるときにこれらの方法を使用した。３人の姉妹（２人はＰＳＥＮ２変異を有しかつ認知低下を呈し、３人目は当該変異について野生型）から単離した線維芽細胞を使用して、ｉＰＳＣを開発した［６０］。様々な表現型と病原性変異の関連性の正確さの精査に取り組むために、本発明者らは、蛍光標示式細胞分取器（ＦＡＣＳ）による中間ＣＤ２７１^＋（ｐ７５）前脳前駆細胞集団の精製を含む公開されたＢＦＣＮプロトコール［４、１７、４６、５０、８９］を最適化することにより開始して、３Ｄ腹側化神経胚様体（ｖＮＥＢ）を生成し、それを後に解離させて、単層の神経細胞集団を観察した。

これらの細胞株でＢＦＣＮ分化を誘導した後、本発明者らは、（１）インビトロでＴｕｊ１^＋／ＢＦ１^＋／ＣｈＡＴ^＋神経細胞を生成する能力；（２）神経細胞の分化または炎症に関連する目的の遺伝子／タンパク質の発現；（３）可溶性かつオリゴマーのＡβ４０および４２の作製；（４）電気生理学的（ｅＰｈｙｓ）特性；ならびに（５）これらの細胞内または当該細胞に近接する１つまたは複数の先天的因子または微小環境因子に対するＢＦＣＮの選択的脆弱性、を解析した。

ＡＤマウスモデルにおける幾つかの研究は、ＡＤ病理の後期段階と関連する電気生理学的異常を明らかにしている。海馬におけるシナプス機能は、ＡＰＰ２３マウスモデルにおいて低減した［７０］。同様に、ＴｇＣＲＮＤ８マウスの前頭前野皮質由来のコリン作動性神経細胞は、対照マウスと比較して、コリン作動性励起を維持することができない［６４］。本明細書において、本発明者らは、インビトロでのＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮにおける電気生理学的特性の異常を報告する。注目すべきことに、この点変異の修正は、神経細胞興奮性を、対照ｉＰＳＣに由来する神経細胞のレベルまで回復させた。

本発明者らは、ヒトｉＰＳＣからのインビトロＢＦＣＮ分化プロトコールを最適化し、これは、再現性のある迅速な方法で、電気生理的に活性なＣｈＡＴ＋／ＶＡＣｈＴ＋神経細胞の均一な集団を作製することに焦点を当てている。当該プロトコールに導入した技術革新は、所定の血清を含まない培地条件において、コリン作動性運命に関連する因子の過剰発現を強制することなく、既に公開されたプロトコール［３８］において示唆された２０日目と比較して、早くも８日目に、かつ１１日目まで非常に強い、ＭＧＥサブ領域についての転写マーカーであるＮｋｘ２．１の均一な発現を付与した。本発明者らは、培養３８日目の神経細胞において成熟した活動電位を記録することができ、それは、コリン作動性特異的マーカーの同時発現を伴い、これは、ＥＳまたはｉＰＳＣを使用した他の既存のプロトコール［４、１７、４６、５０、８９］と比較して、より早期の時間点である。それ故、本発明者らのプロトコールは、均一なコリン作動性培養物におけるハイスループット薬物スクリーニングへの適用可能性を有する。加えて、ＮＥＢ自体の３Ｄ構造は、解離していないオルガノイド形態のままなら、より生理学的な設定における機構解析を可能にする。

この最適化したプロトコールをＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異ｉＰＳＣ株に適用した後、本発明者らは、培養上清中のＡβ４２／４０比の増大を見出した。本発明者らは、神経細胞分化プロセスおよびＢＦＣＮマーカーの発現における任意の証拠となる異常を観察しなかった。興味深いことに、本発明者らは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}ＮＰＣにおいてＢＤＮＦ遺伝子発現の減少を観察したが、これは、ホモ接合性およびヘテロ接合性ＡＰＰ^ｓｗｅ／ＰＳＥＮ１^{Ｍ１４６Ｖ}マウスにおいてＢＤＮＦ変化が観察される、報告［１８］に記載されている結果と類似する。この２つの変異株は、１つのＡＰＯＥ ε４対立遺伝子のキャリアでもある。この対立形質バリアントの存在、ＬＯＡＤについての最も一般的かつ十分に特徴付けられたリスク因子多型［１６］は、開始年齢および表現型の重症度を調節し得る［４９］。それ故、ＥＯＦＡＤ ＰＳＥＮ２ボルガ変異（またはＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９による修正）とＡＰＯＥ Ｅ４対立遺伝子の両方を組み合わせたこれらのｉＰＳＣ株は、特にａｐｏＥ分泌ｉＰＳＣに由来するアストロサイトも存在するとき、インビトロで早期発症型ＡＤの病態生理学を研究するための非常に有用なツールを構成する。

β－アミロイド産生の増加の原因もしくは結果であり得る、隣接する機序または現象を検索して、研究者らは、ＡＤ変異と関連する炎症の過剰反応および電気生理学的異常を見出した。β－アミロイド沈着とは独立したこれらの異常の概念およびＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９テクノロジーを使用して、ＥＯＦＡＤ変異を修正する、それらの実証は、β－アミロイド斑を標的にする（Ｇａｎｄｙら、印刷中）ばかりでなく、並行する炎症プロセスまたは興奮毒性／神経細胞発火異常を克服するための、組み合わせＡＤ治療の必要性についての議論の口火を切る。

ＮＬＲＰは、病原体および毒性刺激に応答して成熟炎症促進性サイトカインＩＬ－１３の分泌を誘導する、インフラマソームの成分である［１１、４１］。アルツハイマー病との関連並びにパーキンソン病の様な他の神経学的疾患［１４、３２］との関連において、ＮＬＲＰ２はアストロサイトにおいて［４５、５１］、ＮＬＲＰ３ミクログリアにおいて［３４］調節されていないようであり；加えて、ＮＬＲＰ２／３は、ＡＤ：肥満、２型糖尿病の同時罹患を示す病理学において変化する。本発明者らは、ＰＳＥＮ１^{Ａ２４６Ｅ}およびＰＳＥＮ１^{Ｍ１４６Ｌ}変異を有する対象に由来する保存された線維芽細胞に由来するｉＰＳＣからもたらされた神経細胞におけるインフラマソーム遺伝子ＮＬＲＰ２の発現上昇の予測できない関連性を既に報告した［７７］。この関連性は、プレセニリン１、ニカストリン、ＡＰＨ－１およびＰＥＮ－２における変異と炎症性皮膚疾患ざ瘡（ＡＩ）との関連性を本発明者らに連想させ、これが、本発明者らの心において、一部のγ－セクレターゼ成分の変異が、アミロイド形成促進作用ばかりでなく、炎症促進性機序と関連し得るかどうかの疑問を生じさせた。

ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異細胞は対照と比較して高いＮＬＲＰ２を有したという本発明者らの知見にも関わらず、遺伝子修正がＮＬＲＰ２レベルを有意に低減させなかったので、本発明者らは、家族性ＰＳＥＮ２変異が原因でこのアップレギュレーションが起こるとみなすことはできなかった。本発明者らの結果は、ＥＯＦＡＤ患者の脳においてインフラマソームの調節不全が生じ得るが、この現象を引き起こす要因として、リプログラミングされたＰＳＥＮ２変異細胞株において反転される、インフラマソーム生物学に対するＰＳＥＮのいずれの効果とも異なる要因が存在し得ることを示唆している。このＰＳＥＮ２とは独立したＮＬＲＰ２のアップレギュレーションについてのいくつかの可能性のある説明には、両方のＰＳＥＮ２対象に存在するａｐｏＥ４対立遺伝子（対照には存在しない）の効果、またはリプログラミングプロセスを通じて維持される、ＥＯＦＡＤ対象から集められた線維芽細胞におけるエピジェネティック効果が含まれる。

神経細胞における電気生理学的異常は、ＰＳＥＮ１およびＰＳＥＮ２の変異と関連付けられている。これらの異常ののうちのいくつかは、電位開口型Ｋ＋チャネルの機能の変化が原因で起こり、それは潜在的に、ＰＳ／γ－セクレターゼ装置により仲介されるチャネル成分の切断を通じて起こる［４４、７２］。プレセニリン変異はまた、カルシウム流入の変化よりむしろ、小胞体に保存されたカルシウムのレベルを増大させる（ひいては、刺激により誘導される細胞質への放出を増大させる）ことにより、カルシウムシグナル伝達を破壊する。神経細胞のカルシウム調節異常の背景にある機序の１つは、ＰＳＥＮ１Ｍ１４６Ｖマウス由来の皮質神経細胞において説明されており、それはイノシトール三リン酸塩（ＩＰ３）により仲介され［７９］；より直接的には、プロセシングされていないＰＳＥＮ１およびＰＳＥＮ２自体による二重機能タンパク質－イオンチャネルの形成であり、それにより小胞体からのカルシウムの流出が調節される［２９、５５、８０、８４］。カリウムおよびカルシウムの流入ならびに神経細胞興奮性におけるプレセニリンの重要な役割を考慮すると、ＰＳＥＮ１およびＰＳＥＮ２における変異が、低減した神経細胞興奮性および神経細胞毒性を導き得る。変異型のＡＰＰを有するマウスは、斑負荷量が相当量であった後にのみ、カリウム電流の変化を伴わずに、ナトリウム電流の減少と関連する異常な活動電位を示した［９］。ＡＰＰ過剰発現がマウス皮質神経細胞において興奮性亢進を引き起こすという証拠がある［７５、８６、９２］。

ＭｕｃｋｅおよびＳｅｌｋｏｅ［５２］は、シナプスおよびネットワークの機能障害を生じさせるＡβの毒性効果を明らかにした。線維芽細胞および神経細胞株において、変異型のＰＳ１が発現したとき、Ａβにより仲介されるミトコンドリアＣａ^２＋の沈着が上昇した［３１］。マウス海馬の神経細胞における神経細胞発火パターンは、Ａβへの暴露により変化した［６７、６９］。Ａβ暴露はまた、錐体神経細胞におけるＫ^＋チャネルコンダクタンスの変化と関連した［５４］。ＰＳＥＮ１変異が小脳におけるミトコンドリアのＣａ^２＋チャネルの変化と関連し、それにより、アミロイド斑沈着の不存在下でプルキンエ細胞においてスパイク活性の低減が引き起こされるようであることが観察されている［７４］。Ａβ４２は、さらなる電位依存性イオンチャネルの調節により、Ｃａ^２＋ホメオスタシスに存在する異常を悪化させ得る［８、２５、７６、８８］。

マウスデータおよび不死化神経細胞株を除き、Ａβへの暴露の際にｉＰＳＣに由来する神経細胞において電気生理学的異常が示され：ｈｉＰＳＣに由来する皮質錐体神経細胞およびＧＡＢＡ作動性介在神経細胞は、Ａβへの暴露の際に活動電位の異常を有し［５６］、ＰＳ１^{Ａ４２６Ｅ}変異を有するｈｉＰＳＣから分化した神経細胞はまた、異常な発火パターンを示した［４７］。しかしながら、ＰＳＥＮ２変異ｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮの電気生理学的特性の特徴決定について既に公開されたデータは存在しない。

高興奮性または低興奮性効果および発火頻度の差は、遺伝子変異と共に変動し、神経細胞サブタイプに高度に依存する［３７、４８］。全てのこれらの現象は、ＡＤの病因に存在する進行性神経変性に関与し得、本発明者らは、ＥＯＦＡＤヒト病因の早期段階と関連する神経細胞異常を説明し得る現象を具体的に記載する。本明細書において、本発明者らは、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}家族性変異と具体的に関連するｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮにおける電気生理学的特性の異常を報告する。興味深いことに、従前の研究のいくつかは、神経細胞活性におけるこの機能障害はＡＤマウスの脳における斑の集積が原因で起こるとしているが、本発明者らは、他の報告［１８］と一致して、単に培地中に分離した過剰のＡβ４２オリゴマーが存在し、アミロイド斑は存在しない状況で、活動電位の誘導が実質的に低下することを見出した。この点変異の修正は、発火パターンを、野生型のｉＰＳＣに由来する神経細胞の発火パターンへと回復させた。

神経細胞におけるカリウムチャネルのモジュレーターは、ＡＤマウスモデルにおいて記憶の改善における有効性を証明した［４４］。Ｃａ^２＋チャネルおよび興奮毒性の調節は、ＡＤ薬のニューウェーブを切り開き得る。ＰＳＥＮ２変異が神経細胞集団の異なるサブセットにおける電気生理学的活性に影響を与える機序を理解すること、およびＰＳＥＮ２と、他の遺伝子調節因子と、炎症との間の結び付きを解明することが、別の症状の治療だけでなく、早期段階にて投与した場合に、Ｃａ^２＋により仲介されるＲＯＳに対する脆弱性を低減し、かつ神経細胞の喪失および疾患の進行を停止させる新規薬物につながる可能性がある。

変異プレセニリンが、Ａβ斑の形成の前でさえ、神経細胞興奮性を変化させることは明らかである［１８、７４］。１つの真実味のある仮説は、ＡＰＰおよびプレセニリンが、Ａβの生合成におけるそれらの役割とは別に作用する現時点では分かっていない機序を通じて神経細胞興奮性を調節する効果を発揮し得ることである。Ａβの蓄積は、ＡＤへとつながる経路において、変化した電気生理学的機序と相乗的に作用し得る。ＡＤに関係付けられる鍵となる機序として神経細胞の興奮毒性を支持する豊富なデータを用いて、生理学的もしくは病理学的現象におけるＰＳＥＮおよび／またはＡβの可能性のある役割を明らかにすることに焦点を当てるさらなる研究が、所望される。

結論
本発明者らは、プレセニリン２（ＰＳＥＮ２）変異キャリアおよび対照に由来するｉＰＳＣからヒトＢＦＣＮを生成するようにインビトロプロトコールを最適化した。予想通り、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}は、ｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮにおいてＡβ４２／４０の増大と関連し、これを、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９により仲介される遺伝子編集により元に戻した。予想外に、ＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}キャリア由来のｉＰＳＣに由来するＢＦＣＮまたは皮質神経細胞は、活動電位頻度と活動電位振幅の両方の低減により定量される、基礎となる興奮性の低下を示した。また、この電気生理学的表現型はＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}変異のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９による修正後に消失した。遺伝子編集データにより、全ての予想される知見および全ての細胞由来の遺伝子型を特徴付ける変異関連変化の強い一貫性が存在することが立証される。

略語
ＡＤ：アルツハイマー病；
ＡｐｏＥ：アポリポタンパク質Ｅ；
ＡＰＰ：アミロイドタンパク質前駆体；
ＡＶＧ：平均；
Ａβ：アミロイドベータ；
ＢＤＮＦ：脳由来神経栄養因子；
ＢＦ１：脳因子１；
ＢＦＣＮ：前脳基底部コリン作動性神経細胞；
ＣｈＡＴ：アセチルコリントランスフェラーゼ；
ＤＡＰＴ：（Ｎ－［Ｎ－（３，５－ジフルオロフェンアセチル）－Ｌ－アラニル］－Ｓ－フェニルグリシンｔ－ブチルエステル）；
ＤＩＶ：インビトロでの日数；
ＤＮＡ：デオキシリボ核酸；
ＤＰＢＳ：ダルベッコのリン酸緩衝食塩水；
ＤＰＢＳＴ：ダルベッコのリン酸緩衝食塩水＋０．１％トリトンＸ－１００；
ＥＧＴＡ：エチレン－ビス（オキシエチレンニトリロ）テトラ酢酸；
ＥＯＦＡＤ：早期発症型家族性アルツハイマー病；
ＥＳＣ：胚性幹細胞；
ＦＡＣＳ：蛍光標示式細胞分取；
ＧＡＰＤＨ：グリセルアルデヒド－３－リン酸脱水素酵素；
ＧＦＰ：緑色蛍光タンパク質；
ＨＤＲ：相同組換え修復；
ＨＦＩＰ：１，１，１，３，３，３－ヘキサフルオロ－２－プロパノール；
ＨＲＰ：西洋ワサビペルオキシダーゼ；
ＩＰＳＣ：人工多能性幹細胞；
ＬＤＨ：乳酸脱水素酵素；
ＭＡＰ２：微小管関連タンパク質２；
ＭＧＥ：淡蒼球原基；
ＮＥＢ：神経胚様体；
ＮＧＦ：神経成長因子；
ＮＬＲＰ２：ＮＬＲ家族性ピリンドメイン含有２；
ＮＰＣ：神経前駆細胞；
ＰＦＡ：パラホルムアルデヒド；
ＰＳＥＮ：プレセニリン；
ＲＮＡ：リボ核酸；
Ｒｏｃｋ：Ｒｈｏ関連、コイルドコイル含有タンパク質キナーゼ；
ＲＴ：逆転写酵素；
ＲＴ－ｑＰＣＲ：リアルタイム定量的ポリメラーゼ連鎖反応；
ＳＡＧ：スムーズンドアゴニスト；
ＳＤＳ－ＰＡＧＥ：ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動；
ＳＥＭ：平均の標準誤差；
ｓｇＲＮＡ：シングルガイドＲＮＡ；
Ｓｈｈ：ソニックヘッジホッグ；
ＳＮＰ：一塩基多型；
ｓｓＯＤＮ：１本鎖オリゴヌクレオチド；
ＴＢＳＴ：トリス緩衝食塩水＋０．１％Ｔｗｅｅｎ；
ＶＡＣｈｔ：小胞アセチルコリン輸送体；
ＷＴ：野生型

参考文献（それぞれが、参照により本明細書に組み込まれる）

本発明は、本明細書における実施例を参照して記載されているが、修飾およびバリエーションが、本発明の精神および範囲内に包含されることは理解される。従って、本発明は、次の請求の範囲によってのみ制限される。

Claims (22)

1. 前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）を生成する方法であって、
   神経外胚葉性分化を誘導するためにトランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を含む基礎培地中で多能性幹細胞（ＰＳＣ）を培養する工程であって、前記Ｓｈｈシグナル伝達の活性化因子が３－クロロ－Ｎ－［（１ｒ，４ｒ）－４－（メチルアミノ）シクロヘキシル］－Ｎ－［３－（ピリジン－４－イル）ベンジル］ベンゾ［ｂ］チオフェン－２－カルボキサミドおよびプルモルファミンであり、かつ前記基礎培地が、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を欠く、工程
   を含み、それによりＢＦＣＮが生成される、方法。
2. 前記阻害剤が、ＳＭＡＤ阻害剤である、請求項１に記載の方法。
3. 前記阻害剤が、ＳＢ４３１５４２およびＬＤＮ１９３１８９である、請求項１に記載の方法。
4. 培養が、約４～９日間行われる、請求項１に記載の方法。
5. ＣＤ２７１＋細胞を選択する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
6. 前記細胞を前記活性化因子または阻害剤と接触させる前に、ｍＴｅＳＲ１基礎培地中でコンフルエントになるまで前記細胞を培養する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
7. 前記ＰＳＣが、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）である、請求項１に記載の方法。
8. 前記培養された細胞が、培養の８日目までにＮｋｘ２．１の均一な発現を示す、請求項１に記載の方法。
9. 前記培養された細胞が、培養の８日目までに記録可能な活動電位を示す、請求項１に記載の方法。
10. 前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）における神経細胞興奮性の低下と関連する疾患もしくは障害の治療または予防のための化合物を同定する方法であって、
    ａ）神経外胚葉性分化を誘導するためにトランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を含む基礎培地中で多能性幹細胞（ＰＳＣ）を培養する工程であって、前記Ｓｈｈシグナル伝達の活性化因子が３－クロロ－Ｎ－［（１ｒ，４ｒ）－４－（メチルアミノ）シクロヘキシル］－Ｎ－［３－（ピリジン－４－イル）ベンジル］ベンゾ［ｂ］チオフェン－２－カルボキサミドおよびプルモルファミンであり、かつ前記基礎培地が、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を欠き、それによりＢＦＣＮが生成される、工程；
    ｂ）前記ＢＦＣＮを候補化合物と接触させる工程であって、前記ＢＦＣＮが、前記ＢＦＣＮの神経細胞興奮性の障害を生じさせるプレセニリン２（ＰＳＥＮ２）における変異を含む、接触させる工程；および
    ｃ）前記候補化合物との接触後に前記ＢＦＣＮの神経細胞興奮性を検出する工程
    を含む、方法。
11. 前記変異がＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}である、請求項１０に記載の方法。
12. 前記疾患または障害が、アルツハイマー病である、請求項１０に記載の方法。
13. ハイスループットな方法である、請求項１０に記載の方法。
14. 前記阻害剤が、ＳＭＡＤ阻害剤である、請求項１０に記載の方法。
15. 前記阻害剤が、ＳＢ４３１５４２およびＬＤＮ１９３１８９である、請求項１０に記載の方法。
16. 前記ＰＳＣが、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）である、請求項１０に記載の方法。
17. トランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ－β）シグナル伝達の阻害剤およびソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）シグナル伝達の活性化因子を有する培地を含む、前脳基底部コリン作動性神経細胞（ＢＦＣＮ）を生成するためのキットであって、前記基礎培地が、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、ＴＧＦ－β、塩化リチウム（Ｌｉ－Ｃｌ）、ＧＡＢＡ、およびピペコリン酸を欠き、前記阻害剤が、ＳＭＡＤ阻害剤を含み、かつ前記活性化因子が、３－クロロ－Ｎ－［（１ｒ，４ｒ）－４－（メチルアミノ）シクロヘキシル］－Ｎ－［３－（ピリジン－４－イル）ベンジル］ベンゾ［ｂ］チオフェン－２－カルボキサミドおよびプルモルファミンを含む、キット。
18. 前記ＳＭＡＤ阻害剤が、ＳＢ４３１５４２およびＬＤＮ１９３１８９である、請求項１７に記載のキット。
19. 人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）を生成するための試薬をさらに含む、請求項１７に記載のキット。
20. 遺伝子編集試薬をさらに含む、請求項１７に記載のキット。
21. 遺伝子変異を検出するための試薬をさらに含む、請求項１７に記載のキット。
22. 前記変異がＰＳＥＮ２^{Ｎ１４１Ｉ}である、請求項２１に記載のキット。

Images