JP7239265B2 - 遊離可能な結合部位を２つ有する接合体を用いた可逆的な細胞標識 - Google Patents

遊離可能な結合部位を２つ有する接合体を用いた可逆的な細胞標識 Download PDF

Info

Publication number
JP7239265B2
JP7239265B2 JP2017237900A JP2017237900A JP7239265B2 JP 7239265 B2 JP7239265 B2 JP 7239265B2 JP 2017237900 A JP2017237900 A JP 2017237900A JP 2017237900 A JP2017237900 A JP 2017237900A JP 7239265 B2 JP7239265 B2 JP 7239265B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
conjugate
different
target
moiety
binding
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2017237900A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2018138913A (ja
Inventor
パンクラッツ ジェニファー
ドーゼ クリスティアン
アッセンマッハー マリオ
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Miltenyi Biotec GmbH
Original Assignee
Miltenyi Biotec GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Miltenyi Biotec GmbH filed Critical Miltenyi Biotec GmbH
Publication of JP2018138913A publication Critical patent/JP2018138913A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7239265B2 publication Critical patent/JP7239265B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531—Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532—Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/533—Production of labelled immunochemicals with fluorescent label
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531—Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532—Production of labelled immunochemicals
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/30—Staining; Impregnating ; Fixation; Dehydration; Multistep processes for preparing samples of tissue, cell or nucleic acid material and the like for analysis
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/6402—Atomic fluorescence; Laser induced fluorescence
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/6486—Measuring fluorescence of biological material, e.g. DNA, RNA, cells
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531—Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532—Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/535—Production of labelled immunochemicals with enzyme label or co-enzymes, co-factors, enzyme inhibitors or enzyme substrates
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/536—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/30—Staining; Impregnating ; Fixation; Dehydration; Multistep processes for preparing samples of tissue, cell or nucleic acid material and the like for analysis
    • G01N2001/302—Stain compositions

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

背景技術
本発明は、抗原認識部と酵素分解性スペーサーを介して連結された検出部とを有する接合体と、共有結合によらない相互作用とを用いて標的部を標識することによって、生物学的検体のサンプル中の標的部を検出するための方法であって、前記標的部を検出または単離した後、前記共有結合によらない相互作用を破壊し、前記スペーサーを酵素で分解させ、それにより前記標的細胞を少なくとも前記検出部から遊離させる方法を対象とする。
細胞の検出および分離技術、例えば磁気細胞分離、フローサイトメトリーまたはフローソーティングは、ここ数年でバイオメディカルの研究および細胞療法の進歩に貢献した極めて重要なツールである。こうした技術では、標的部の特異的な標識と、磁場に細胞を保持し、したがって単離するための磁性粒子のような、または、顕微鏡法もしくはサイトメトリーにより細胞の検出および特性決定をするための蛍光色素または遷移金属同位体マスタグのような、検出可能なユニットを有する接合体と、を組み合わせている。技術的課題の１つとしては、標的部を検出した後になおも標識を遊離させることが挙げられる。残留標識によって、逐次的なソーティングの戦略、分子診断または細胞分析のような下流の用途が妨げられたり影響を受けたりすることがある。
ここ数年で、いくつかの可逆的な標識系が開発された。ある戦略は、共有結合によらない相互作用の特異的な競合を利用している。米国特許出願公開第２００８０２５５００４号明細書（ＵＳ ２００８０２５５００４）には、標的部を認識する抗体を用いて固体担体、例えば磁性粒子に可逆的に結合させるための方法であって、該抗体を、デスチオビオチンのような修飾ビオチンおよび修飾ストレプトアビジンまたは該固体担体に結合したアビジンと接合させる方法が開示されている。修飾された結合パートナーの結合相互作用は、ビオチンとストレプトアビジンとの間の強い特異的結合と比較して弱いため、こうした結合相互作用によって、これらの競合物の存在下で解離が促進される。欧州特許第２７２５３５９号明細書（ＥＰ ２７２５３５９）には、標的部を認識するリガンド－ＰＥＯ－ビオチン接合体と、競合分子ビオチン、ストレプトアビジンまたは補助試薬を添加することによって遊離されうる、磁性粒子に障害を生じさせる抗ビオチン抗体との共有結合によらない相互作用に基づく、可逆的な磁気細胞分離のための系が記載されている。
こうした競合的な遊離機序に加えて、機械的撹拌、化学的に開裂可能なまたは酵素分解性のリンカーによる標識の除去について言及がなされている。国際公開第９６／３１７７６号（ＷＯ ９６／３１７７６）には、粒子の被覆部分かまたは該被覆と抗原認識部との間の連結基の中に存在する部分を酵素で開裂させることによって標的細胞から磁性粒子を分離した後に遊離を行う方法が記載されている。一例として、デキストランで被覆されたおよび／またはデキストランを介して抗原認識部に連結された磁性粒子を適用することが挙げられる。引き続いて行われる、単離された標的細胞の磁性粒子からの開裂は、デキストラン分解酵素であるデキストラナーゼの添加により開始される。欧州特許第３０３７８２１号明細書（ＥＰ ３０３７８２１）における関連する方法は、例えば蛍光シグナルによる、酵素分解性スペーサーを有する接合体を用いた標的部の検出および分離を開示している。
近年、標的部への結合の親和定数が低いことによって特徴付けられる抗原認識部を利用した技術への関心が高まった。そうした低親和性の抗原認識部を有する特異的かつ安定な標識を確実なものとするため、標識接合体の構造は、高いアビディティーをもたらす抗原認識部の多量体化を含まねばならない。多量体化を破壊すると、低親和性の抗原認識部が標的部から解離することができ、それによって、最良の状態で検出部および抗原認識部を標的部から遊離させる可能性が生じる。
この可逆的な多量体染色は、最初に米国特許第７７７６５６２号明細書（ＵＳ ７７７６５６２）および米国特許第８２９８７８２号明細書（ＵＳ ８２９８７８２）に記載され、その際、この多量体化は、共有結合によらない相互作用により生じる。ＳｔｒｅｐｔａｇＩＩを有する例示的な低親和性ペプチド／ＭＨＣモノマーが、ストレプタクチン（ｓｔｒｅｐｔａｃｔｉｎ）を用いて多量体化され、この多量体化は、競合分子ビオチンの添加に際して可逆的である。
この方法は、米国特許第９０２３６０４号明細書（ＵＳ ９０２３６０４）において、抗原認識部と受容体結合試薬のそれぞれの特性に関して可逆的な標識が可能となるように改められた。結合パートナーＣに伴う解離速度定数が約０．５×１０－４秒－１以上であることを特徴とする受容体結合試薬は、少なくとも２つの結合部位Ｚを有する多量体化試薬により多量体化され、これらの結合部位Ｚが結合パートナーＣと可逆的にかつ共有結合によらずに相互作用することで、標的抗原に対して高いアビディティーを有する複合体が得られる。検出可能な標識が、多価結合複合体に結合される。多量体化の可逆性は、結合パートナーＣと多量体化試薬の結合部位Ｚとの間の結合が破壊された際に生じる。例えば、Ｆａｂ－ＳｔｒｅｐｔａｇＩＩ／Ｓｔｒｅｐｔａｃｔｉｎの多量体において、多量体化は、競合物ビオチンによって逆方向に進みうる。
こうした共有結合によらない相互作用に基づいて低親和性の抗原認識部を多量体化するという戦略は、共有結合によらない相互作用の動力学的および熱力学的な特性に依存するという欠点を抱えている。特異的に標識を行うためには試薬のプレインキュベーションが必要であるが、それによって、あまり規定通りでない再現性の低い接合体が生じてしまい、これには架橋および凝集体形成のリスクが伴う。あるいは、第１に抗原認識部を一時的なモノマー標識ステップにおいてインキュベートし、第２に多量体化化合物をインキュベートするというように、標識を逐次的に行うこともできる。しかし、非特異的な結合相互作用および高いバックグラウンドシグナルのリスクを減らすために洗浄ステップを行うと、モノマーが迅速に解離するという特性に基づき、標識効率が低下することになる。この望ましくない効果は、図２ｂ）および例３に示されている。さらに、こうした多量体は、単一のパラメーターにしか適用することができず、多重パラメーターの標識には適用することができない。
共有結合によらない多量体化の戦略に加えて、欧州特許第３０３７８２１号明細書（ＥＰ ３０３７８２１）の一実施形態には、酵素分解性スペーサーを介して共有結合され、したがって共有結合により多量体化される低親和性の抗原認識部と検出部、例えば蛍光色素とを提供する接合体が記載されている。この共有結合によって、安定でかつ規定通りの多量体化が可能となり、また多重パラメーターの標識も可能になる。スペーサーが酵素で分解される際に検出部が遊離されて、低親和性の抗原認識部が単量体化される。この実施形態の一例がＦａｂ－デキストラン－蛍光色素接合体であり、これは、標的細胞のフローソーティングへの適用が可能である。
概要
したがって本発明の一目的は、さらなる標識および検出の戦略を可能にするために、生物学的検体のサンプル中の標的部を特異的に標識し、検出しかつ標識を除去するための方法を提供することであった。
２つの遊離機序を可能にする接合体、すなわち、酵素分解性スペーサーを介して連結された抗原結合部と、２つの結合部の間での共有結合によらない相互作用とを含む接合体を、標的細胞から容易に遊離させうることが判明した。
したがって本発明の目的は、
ａ）一般式（Ｉ）
Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）
［式中、
Ａは、抗原認識部であり、
Ｐは、酵素分解性スペーサーであり、
Ｂは、第１の結合部であり、
Ｃは、第２の結合部であり、
Ｘは、検出部であり、
ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、１から１００まで整数である］
を有する少なくとも１つの接合体を準備すること、
ここで、ＢとＣとは、互いに共有結合によらずに結合しており、ＡおよびＢは、Ｐに共有結合しているものとする、
ｂ）前記抗原認識部Ａにより認識される標的部を、少なくとも１つの接合体で標識すること、
ｃ）前記標識された標的部を、検出部Ｘを介して検出すること、
ｄ）ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することにより、Ｃｑ－Ｘｏを、前記標識された標的部から開裂させること、
ｅ）スペーサーＰを酵素で分解することにより、前記標識された標的部から前記結合部Ｂｍを開裂させること
によって、生物学的検体のサンプル中の標的部を検出するための方法である。
従来技術と比較して、本方法によって、生物学的検体において標的部を標識および検出するための新たなフレキシビリティおよび制御が可能となる。
２つの遊離機序を組み合わせることによって、遊離手法全体にわたる制御が可能となり、それによって、引き続くステップにおいて、検出部の遊離および多量体化の可逆性が可能となる。したがって本方法によって、新規でかつフレキシブルな検出および単離の戦略が可能となり、例えば、第１の検出部を除去した後に、異なる検出部で、類似の標的部のみではなく同一の標的部を再標識することも可能となる。それにもかかわらず、最良の状態で２つの遊離機序により逐次的にまたは同時に除去した後に、検出部および抗原認識部を伴う完全な接合体が、標的部から遊離される。
本発明の方法を、標的部、すなわちそうした標的部を発現する標的細胞を検出するためだけでなく、そうした標的細胞を生物学的検体のサンプルから単離するためにも利用することができる。こうした単離手法では、標的部の検出が用いられる。例えば、蛍光による標的部の検出を用いることで、ＦＡＣＳまたはＴＹＴＯ分離系で行われるような適切な分離プロセスを生じさせることができる。本発明の方法においては、検出および分離の方法として周知の磁気細胞分離法を用いることもでき、その際、磁性粒子は磁場により検出される。
図１に、高親和性（ａ）または低親和性（ｂ）の抗原認識部Ａ、酵素分解性スペーサーＰ、結合部ＢおよびＣならびに検出部Ｘの接合体を用いた、生物学的検体としての標的細胞の特異的な標識および遊離による本発明の方法を図示する。 図２に、（本発明による）Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣ（ａ）と（比較のための）Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣ（ｂ）とを対比して用いた細胞表面標識のフローサイトメトリー分析の例示的な結果を示す。 図３に、Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチンマイクロビーズを用いた可逆的な細胞標識のフローサイトメトリー分析の結果の例示的なドットプロットを示す。
詳細な説明
本発明の方法において、結合パートナーＡ、Ｐ、Ｂ、ＣおよびＸの間の共有結合および共有結合によらない結合を、様々な方法によって破壊することができる。本発明では、共有結合とは、電子対を共有する原子の間の結合か、または１０－９Ｍ未満の解離定数を有する共有結合によらない相互作用パートナーの間の準共有結合であると定義される。共有結合によらない結合とは、１０－９Ｍを上回る解離定数を有する結合であると定義される。
「ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することによって、Ｃｑ－Ｘｏを開裂させる」という用語は、ＢとＣとの間の共有結合によらない結合を終わらせ、結合部Ｃｑおよび検出部Ｘｏを、例えば洗浄によって断片Ｃｑ－Ｘｏとして除去することを意味する。
「スペーサーＰを酵素で分解することにより、前記標識された標的部から前記結合部Ｂｍを開裂させる」という用語は、少なくとも結合部Ｂｍが例えば解離または洗浄によって標的部から除去されるように、スペーサーＰの分解によって断片Ａｎ－Ｐ－Ｂｍの共有結合を開裂させることを意味する。さらに、抗原認識部Ａｎが除去されうる。
本発明の方法は、認識部Ａｎを、接合体からのみならず標的部からも除去することを含みうる。この点で、本発明は、高親和性（ａ）または低親和性（ｂ）の抗原認識部Ａを有する接合体を使用することによる２つの実施形態を包含する。高親和性の抗原認識部Ａは、標的部に１：１の比で結合することができ、すなわち式（Ｉ）においてｎ＝１である。一方で、低親和性の抗原認識部は、標的部に１：１の比で結合することはできず、標的部に結合するには、１つの接合体において低親和性の抗原認識部が複数必要であり、すなわち式（Ｉ）においてｎは１を上回る。
図１に、高親和性（ａ）または低親和性（ｂ）の抗原認識部Ａ、酵素分解性スペーサーＰ、結合部ＢおよびＣならびに検出部Ｘの接合体を用いた、生物学的検体としての標的細胞上の標的部の特異的標識による本発明のこうした実施形態を図示する。どちらの実施形態とも、検出部Ｘおよび結合部Ｃは、結合部ＢとＣとの間の共有結合によらない相互作用が破壊された後に標的部から遊離される。スペーサーＰが酵素で分解される際に、高親和性の抗原認識部Ａ、例えば抗体は、なおも標的部への安定な結合をもたらすが、検出部Ｘ、結合部ＢおよびＣならびにスペーサーＰ（ａ）は、接合体／標識された標的細胞から除去される。低親和性の抗原認識部Ａは、スペーサーＰが酵素で分解される際に単量体化されることとなる。単量体としては、低親和性の抗原認識部Ａは、標的部への安定な結合をもたらすことができずに、標的部から解離することとなる。それに応じて、低親和性の抗原認識部は、標的部、検出部Ｘ、結合部ＢおよびＣから除去され、スペーサーＰおよび抗原認識部Ａは、そのまま標的細胞を去る。
本発明の方法を、ステップａ）～ｅ）までの１つまたは複数の序列で行うことができる。各序列の後に、検出部および場合により抗原認識部を標的部から遊離させる（除去する）。特に生物学的検体が生細胞であり、これをさらに処理すべきである場合には、本発明の方法は、無標識の細胞が得られるという利点を有する。
各ステップａ）～ｅ）の後および／または前に、１つまたは複数の洗浄ステップを行うことにより、未結合の接合体（Ｉ）のような不要な材料、または結合部Ｃおよび検出部Ｘもしくは抗原認識部Ａのような遊離された接合体部分、または破壊に使用された試薬を除去することができる。「洗浄」という用語は、生物学的検体のサンプルを、適切な手法、例えば沈降、遠心分離、排液またはろ過によって周囲の緩衝液から分離することを意味する。この分離の前に、洗浄緩衝液を加えて、任意にある時間にわたってインキュベートすることができる。この分離の後に、サンプルに再び緩衝液を充填することも、サンプルを緩衝液で再懸濁させることもできる。
標的部
本発明の方法により検出すべき標的部は、組織切片、細胞集合体、懸濁細胞または付着性細胞のようないずれの生物学的検体上に存在していてもよい。これらの細胞は、生細胞であっても死細胞であってもよい。好ましい標的部は、生物学的検体、例えば無脊椎動物（例えば、カエノラブディティス・エレガンス（Ｃａｅｎｏｒｈａｂｄｉｔｉｓ ｅｌｅｇａｎｓ）、ドロソフィラ・メラノガスター（Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒ））、脊椎動物（例えば、ダニオ・レリオ（Ｄａｎｉｏ ｒｅｒｉｏ）、キセノプス・レービス（Ｘｅｎｏｐｕｓ ｌａｅｖｉｓ））および哺乳類（例えば、ムス・ムスクラス（Ｍｕｓ ｍｕｓｃｕｌｕｓ）、ホモ・サピエンス（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ））の、動物全体、臓器、組織切片、細胞凝集体または単一の細胞において、細胞内または細胞外で発現された抗原である。
検出部
接合体の検出部Ｘは、細胞を検出する目的で使用できる特性または機能を有するいずれの部分であってもよい。好ましい検出部Ｘは、発色団部、蛍光部、リン光部、発光部、吸光部、放射性部、遷移金属および同位体マスタグ部、粒子の形状を有する固体担体、例えばシート、プレート、膜、チューブ、カラム、ウェルまたはマイクロアレイ、磁性粒子からなる群から選択される。
適切な蛍光部は、免疫蛍光技術、例えばフローサイトメトリーまたは蛍光顕微鏡法の技術から知られている蛍光部である。本発明のこうした実施形態においては、接合体で標識された標的部は、検出部Ｘを励起させ、得られた発光（光ルミネセンス）を検出することにより検出される。この実施形態においては、検出部Ｘは好ましくは、蛍光部である。
有用な蛍光部は、タンパク質ベースの蛍光部、例えばフィコビリタンパク質、ポリマー型蛍光部、例えばポリフルオレン、有機小分子色素、例えばキサンテン、例えばフルオレセインもしくはローダミン、シアニン、オキサジン、クマリン、アクリジン、オキサジアゾール、ピレン、ピロメテンまたは有機金属錯体、例えばＲｕ錯体、Ｅｕ錯体、Ｐｔ錯体であってよい。単分子実体の他に、蛍光性タンパク質または有機小分子色素のクラスターおよびナノ粒子、例えば量子ドット、アップコンバーティングナノ粒子、金ナノ粒子、色素付加ポリマーナノ粒子を、蛍光部として使用することもできる。
光ルミネセンス検出部のもう１つの群には、励起後の時間遅延型発光を伴うリン光部がある。リン光部には、金属有機錯体、例えばＰｄ錯体、Ｐｔ錯体、Ｔｂ錯体、Ｅｕ錯体またはリン光顔料が配合されたナノ粒子、例えばランタニドをドープしたＳｒＡｌ２Ｏ４が含まれる。
本発明のもう１つの実施形態において、接合体で標識された標的は、照射による事前の励起なしに検出される。この実施形態においては、検出部は、放射性標識であってよい。それらは、非放射性同位体を、その放射性対応物、例えばトリチウム、３２Ｐ、３５Ｓもしくは１４Ｃと交換することにより、または共有結合した標識、例えばチロシンに結合した１２５Ｉ、フルオロデオキシグルコース内の１８Ｆもしくは有機金属錯体、すなわち９９Ｔｃ－ＤＴＰＡを導入することにより、放射性同位体標識の形態で存在してよい。
もう１つの実施形態において、検出部は化学発光を引き起こすことができ、すなわち、ルミノールの存在下でのホースラディッシュペルオキシダーゼ標識である。
本発明のもう１つの実施形態において、接合体で標識された標的は、放射線放出によっては検出されずに、紫外線、可視光または近赤外線の吸収によって検出される。適切な吸光性検出部は、蛍光放出を伴わない吸光性色素、例えば有機小分子クエンチャー色素、例えばＮ－アリールローダミン、アゾ色素およびスチルベンである。
もう１つの実施形態において、吸光性検出部Ｘにパルスレーザ光を照射して、光音響シグナルを発生させることができる。
本発明のもう１つの実施形態において、接合体で標識された標的は、遷移金属同位体の質量分析的検出によって検出される。遷移金属同位体マスタグ標識を、共有結合した金属有機錯体またはナノ粒子成分として導入することができる。当技術分野では、ランタニドおよび隣接する後期遷移元素の同位体タグが知られている。
さらに、検出部Ｘは、細胞を検出する目的で使用できる特性または機能を有する固体担体であることができる。適切な固体担体は、細胞の固定化に関する生物工学において知られており、粒子の形状を有することができ、例えば、シート、プレート、膜、チューブ、カラム、ウェルまたはマイクロアレイであってよく、これらは、ポリスチレン（ＰＳ）、ポリメチルメタクリラート（ＰＭＭＡ）、ポリビニルトルエン（ＰＶＴ）、ポリエチレン（ＰＥ）またはポリプロピレン（ＰＰ）のような様々な材料から製造される。適切な材料は、市販されている。
固体担体はさらに、磁性粒子であってもよく、これは、当技術分野においてナノスケールないしマイクロスケールの磁性ビーズとしても知られている。こうしたビーズの平均直径は、１０ｎｍ～１０μｍの範囲であってよい。生体適合性の磁性粒子は市販されており、例えばデキストラン分子またはシリカのシェルでコーティングされた磁性酸化鉄の形態から成る。固体担体は、磁性材料を含むポリマーであってもよい。適切な粒子は、ドイツ連邦共和国Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより「ＭｉｃｒｏＢｅａｄｓ」および「ＭＡＣＳｉＢｅａｄｓ」の商品名で市販されており、これらはそれぞれ、５０～１００ｎｍまたは３～４μｍの流体力学的直径を有する。
検出部Ｘを、結合部Ｃに、共有結合によって結合させることも、共有結合によらずに結合させることもできる。共有結合によりまたは共有結合によらずに接合させるための方法は、当業者に知られている。検出部Ｘと結合部Ｃとの間が共有結合である場合には、検出部Ｘにあるまたは結合部Ｃにある活性化基と、結合部Ｃにあるまたは検出部Ｘにある官能基とが直接反応することも可能であるし、ヘテロ２官能性リンカー分子を介して、この分子がまず一方の結合パートナーと反応し、次にもう一方の結合パートナーと反応することも可能である。
例えば、実体への連結に、多数のヘテロ２官能性化合物を利用することができる。例示的な実体としては、次のものが挙げられる：アジドベンゾイルヒドラジド、Ｎ－［４－（ｐ－アジドサリチルアミノ）ブチル］－３’－［２’－ピリジルジチオ］プロピオンアミド）、ビス－スルホスクシンイミジルスベラート、ジメチルアジピミダート、ジスクシンイミジルタルトラート、Ｎ－ｙ－マレイミドブチリルオキシスクシンイミドエステル、Ｎ－ヒドロキシスルホスクシンイミジル－４－アジドベンゾアート、Ｎ－スクシンイミジル［４－アジドフェニル］－１，３’－ジチオプロピオナート、Ｎ－スクシンイミジル［４－ヨードアセチル］アミノベンゾアート、グルタルアルデヒド、スクシンイミジル－［（Ｎ－マレイミドプロピオンアミド）ポリエチレングリコール］エステル（ＮＨＳ－ＰＥＧ－ＭＡＬ）およびスクシンイミジル－４－［Ｎ－マレイミドメチル］シクロヘキサン－１－カルボキシラート。好ましい連結基は、３－（２－ピリジルジチオ）プロピオン酸Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＳＰＤＰ）または４－（Ｎ－マレイミドメチル）－シクロヘキサン－１－カルボン酸Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＳＭＣＣ）である。
１０－９Ｍ以下の解離定数をもたらす結合系、例えばビオチン－アビジン結合相互作用によって、検出部Ｘと結合部Ｃとの準共有結合を達成することができる。
本発明の方法において使用される接合体は、検出部Ｘを１～１００、好ましくは１～２０含むことができる。
第１および第２の結合部ＢおよびＣ
結合部Ｂおよび結合部Ｃは、互いに共有結合によらずに可逆的に結合しうる結合パートナーである。本発明では、共有結合によらない可逆的な結合とは、１０－９Ｍを上回る解離定数を有する結合であるものと定義する。
結合部ＢおよびＣはそれぞれ、ビオチン、その誘導体または類似体、例えばイミノビオチン、デスチオビオチン、ジアミノビオチン、ＨＡＢＡ（２－（４’－ヒドロキシフェニルアゾ）安息香酸）；ビオチンペプチド類似体、例えばｓｔｒｅｐｔａｇＩ（ＡＷＲＨＰＱＦＧＧ）もしくはｓｔｒｅｐｔａｇＩＩ（ＷＳＨＰＱＦＥＫ）であってよい。こうしたビオチン、その誘導体または類似体を、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＯ）またはアミノカプロン酸（いわゆる「ＬＣ」）からなるスペーサー基によって、検出部Ｘまたは酵素分解性スペーサーＰと引離すことができる。相応する結合パートナー、したがって結合部ＣおよびＢはそれぞれ、ストレプトアビジンもしくはアビジンまたはそれらの類似体、例えばニトロストレプトアビジンまたは変異体、例えばストレプタクチンまたはモノマー型ストレプトアビジン；抗体、例えば抗ビオチン抗体または抗Ｓｔｒｅｐ－ｔａｇＩＩ抗体であってよい。
さらに、結合部Ｂは、１～５００の繰返し単位を有するポリエチレングリコールからなるスペーサー基を有するビオチン誘導体であってよい。
その他の結合部は、文献から知られており、例えばオリゴヒスチジンタグおよび抗Ｈｉｓ抗体またはＮｉ－ＮＴＡ；ＦＬＡＧペプチドおよび抗ＦＬＡＧ抗体；カルモジュリン結合ペプチドおよび２価カチオンの存在下でのカルモジュリン；ポリマーおよび抗ポリマー抗体、例えばポリエチレングリコールおよび抗ポリエチレングリコール抗体；ハイブリダイズするオリゴヌクレオチド；マルトース結合タンパク質タグおよびマルトース結合タンパク質である。
結合部Ｂは、酵素分解性スペーサーＰに共有結合することができる。接合のための方法は、当業者に知られており、検出部Ｘと結合分子Ｃとの接合に関して述べたことと同一である。結合部の構造および官能基に応じて、接合を直接行うことも可能であるし、非特異的な連結が可能となるように改変した後に接合を行うことも可能である。スペーサー基、例えばアルキル鎖またはポリエチレングリコールを挿入してもよく、そうすることで、結合部ＢまたはＣと酵素分解性スペーサーＰおよび検出部Ｘとの間に、ある程度の間隔が生じる。
本発明の方法において使用される接合体は、結合部ＢおよびＣを１～１００、好ましくは１～２０含むことができる。
結合部ＢとＣとの間の共有結合によらない結合の破壊
ＢとＣとの間の共有結合によらない結合は、可逆的である。したがってこの結合を、遊離試薬としての競合分子を添加することにより破壊することができる。この遊離試薬としての競合分子は、結合部ＢおよびＣのうちの一方に結合することによって、これらの各部分と置き換わることができる。「結合部としてのＢおよびＣ」において例示的に挙げた結合部に関して、競合分子は、ビオチンまたはストレプトアビジン；ペプチド、例えばポリヒスチジン、ＦＬＡＧペプチド、カルモジュリン結合ペプチド；小分子、例えばイミダゾールまたはマルトース；キレート剤、例えばＥＤＴＡ；ポリマー、例えばポリエチレングリコール；相補的オリゴヌクレオチドであってよい。
競合反応の効率は、結合部ＢおよびＣと競合分子との間の相互作用の熱力学的および動力学的な特性、これらの成分の濃度、環境条件、例えば温度および反応時間に依存する。所望の効率により、特定の条件を評価しなければならない。
本発明の一変形形態において、結合部Ｃと置き換わる競合分子が異なる検出部Ｘに接合することもでき、それによって、破壊の際に検出部を交換することが可能となる。
さらに、結合部ＢとＣとの間の結合相互作用の強さが弱まるように構造変化を開始させることによって破壊を達成することができ、例えば、構造変化を誘導する、カルモジュリンに結合するキレート作用を有する２価カチオンによって、破壊を達成することができる。
この他に、せん断力を生じさせる機械的撹拌によって、または結合相互作用に影響を及ぼす環境条件、例えばｐＨ、温度もしくは塩濃度を変化させることによって、ＢとＣとの間の結合を開裂させることができる。
破壊のために、２つ以上の方法を組み合わせることができる。
通例的には、この開裂の有効性によって、Ｃ－Ｘでの標識が少なくとも約８０％、より通例的には少なくとも約９５％、好ましくは少なくとも約９９％減少する。遊離の条件を、温度、ｐＨなどの点で実験により最適化することができる。破壊は通例的には、少なくとも約１５分間で完了し、より通例的には少なくとも約１０分間で完了し、通常は約２時間を超えることにはならない。
酵素分解性スペーサーＰ
酵素分解性スペーサーＰは、特定の酵素、例えばヒドロラーゼにより開裂可能ないずれの分子であってもよい。酵素分解性スペーサーＰとして適しているのは例えば、多糖類、タンパク質、ペプチド、デプシペプチド、ポリエステル、核酸およびそれらの誘導体である。
適切な多糖類は例えば、デキストラン、プルラン、イヌリン、アミロース、セルロース、ヘミセルロース、例えばキシランまたはグルコマンナン、ペクチン、キトサンまたはキチンであり、これらを誘導体化することによって、結合部Ｂと抗原認識部Ａとを共有結合によりまたは共有結合によらずに結合するための官能基を生じさせることができる。こうした様々な改変は、当技術分野で知られており、例えば多糖類とＮ，Ｎ’－カルボニルジイミダゾールとを反応させることにより、イミダゾリルカルバマート基を導入することができる。次いで、このイミダゾリルカルバマート基をヘキサンジアミンと反応させることにより、アミノ基を導入することができる。過ヨウ素酸塩を用いて多糖類を酸化させてアルデヒド基を生じさせることも可能であるし、Ｎ，Ｎ’－ジシクロヘキシルカルボジイミドおよびジメチルスルホキシドを用いて多糖類を酸化させてケトン基を生じさせることも可能である。アルデヒド官能基またはケトン官能基を、次いで好ましくは還元アミノ化の条件下でジアミンと反応させてアミノ基を生じさせることも可能であるし、アルデヒド官能基またはケトン官能基を、タンパク質様の結合部にあるアミノ置換基と直接的に反応させることも可能である。多糖類をクロロ酢酸で処理することにより、カルボキシメチル基を導入してもよい。当技術分野で知られている方法を用いてカルボキシ基を活性化させて、活性化エステル、例えばＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステルまたはテトラフルオロフェニルエステルを得ることによって、ジアミンのアミノ基と反応させてアミノ基を得ることも可能であるし、タンパク質様の結合部のアミノ基と直接的に反応させることも可能である。アルカリ性条件下で多糖類をハロゲン化合物で処理することによってアルキル基を有する官能基を導入することは、一般に可能である。例えば、臭化アリルを用いることにより、アリル基を導入することができる。さらに、システアミンのようなチオールを有する化合物とのチオール－エン反応においてアリル基を使用することによりアミノ基を導入することも可能であるし、ジスルフィド結合の還元により遊離された、または例えば２－イミノチオランによるチオール化により導入されたチオール基を有するタンパク質様の結合部と直接的にチオール－エン反応においてアリル基を使用することも可能である。
酵素分解性スペーサーＰとして使用されるタンパク質、ペプチドおよびデプシペプチドを、アミノ酸の側鎖官能基を介して官能化させることによって、結合部Ｂと抗原認識部Ａとを結合させることができる。改変に適した側鎖官能基は例えば、リシン基により得られるアミノ基であるか、またはジスルフィド架橋の還元後のシステインにより得られるチオール基である。
酵素分解性スペーサーＰとして使用されるポリエステルおよびポリエステルアミドを、側鎖官能基をもたらすコモノマーを用いて合成することも可能であるし、その後に官能化させることも可能である。分岐状ポリエステルの場合には、官能化を、カルボキシル末端基またはヒドロキシル末端基により行うことができる。ポリマー鎖の重合後官能化を、例えば不飽和結合への付加、すなわちチオレン反応またはアジド－アルキン反応により行うことも、ラジカル反応による官能基の導入により行うこともできる。
酵素分解性スペーサーＰとして使用される核酸は好ましくは、結合部Ｂと抗原認識部Ａとの結合に適した３’末端および５’末端の官能基を用いて合成される。例えばアミノ官能性またはチオール官能性をもたらす核酸合成に適したホスホロアミダイト構成単位は、当技術分野で知られている。
酵素分解性スペーサーＰは、同一または異なる酵素によって分解可能な２つ以上の異なる酵素分解性単位から構成されていてよい。
スペーサーＰを分解させるための酵素
酵素分解性スペーサーＰは、適切な酵素の添加によって分解される。遊離試薬としての酵素の選択は、酵素分解性スペーサーＰの化学的性質によって決定され、１種の酵素であってもよいし、異なる複数の酵素の混合物であってもよい。
酵素は、好ましくはヒドロラーゼであるが、リアーゼまたはレダクターゼも可能である。好ましい酵素を、グリコシダーゼ、デキストラナーゼ、プルラナーゼ、アミラーゼ、イヌリナーゼ、セルラーゼ、ヘミセルラーゼ、ペクチナーゼ、キトサナーゼ、キチナーゼ、プロテイナーゼ、エステラーゼ、リパーゼおよびヌクレアーゼからなる群から選択することができる。
例えば、スペーサーＰが多糖類である場合には、グリコシダーゼ（ＥＣ ３．２．１）が遊離剤として最も適している。特定のグリコシド構造を認識するグリコシダーゼが好ましく、例えば、デキストランのα（１→６）結合を開裂させるデキストラナーゼ（ＥＣ ３．２．１．１１）、プルランのα（１→６）結合を開裂させるプルラナーゼ（ＥＣ ３．２．１．１４２）またはプルランのα（１→６）結合およびα（１→４）結合を開裂させるプルラナーゼ（ＥＣ ３．２．１．４１）、ネオプルラナーゼ（ＥＣ ３．２．１．１３５）ならびにプルラン中のα（１→４）結合を開裂させるイソプルラナーゼ（ＥＣ ３．２．１．５７）が好ましい。アミロースにおけるα（１→４）結合を開裂させるα－アミラーゼ（ＥＣ ３．２．１．１）およびマルトジェニックアミラーゼ（ＥＣ ３．２．１．１３３）、イヌリン中のβ（２→１）フルクトシド結合を開裂させるイヌリナーゼ（ＥＣ ３．２．１．７）、セルロースのβ（１→４）結合で開裂させるセルラーゼ（ＥＣ ３．２．１．４）、キシランのβ（１→４）結合で開裂させるキシラナーゼ（ＥＣ ３．２．１．８）、ペクチナーゼ、例えばα（１→４）Ｄ－ガラクツロナンメチルエステル結合で排除的に開裂させるエンドペクチンリアーゼ（ＥＣ ４．２．２．１０）、またはペクチンのα（１→４）Ｄ－ガラクトシドウロン結合で開裂させるポリガラクツロナーゼ（ＥＣ ３．２．１．１５）、キトサンのβ（１→４）結合で開裂させるキトサナーゼ（ＥＣ ３．２．１．１３２）およびキチンを開裂させるためのエンドキチナーゼ（ＥＣ ３．２．１．１４）。
タンパク質およびペプチドはプロテイナーゼによって開裂させることができるが、細胞上の標的構造の分解を避けるためには、プロテイナーゼが配列特異的である必要がある。配列特異的プロテアーゼは例えば、配列ＥＮＬＹＦＱ＼Ｓで開裂させるシステインプロテアーゼであるＴＥＶプロテアーゼ（ＥＣ ３．４．２２．４４）、配列ＤＤＤＤＫの後で開裂させるセリンプロテアーゼであるエンテロペプチダーゼ（ＥＣ ３．４．２１．９）、配列ＩＥＧＲもしくはＩＤＧＲの後で開裂させるセリンエンドペプチダーゼである第Ｘａ因子（ＥＣ ３．４．２１．６）、または配列ＬＥＶＬＦＱ＼ＧＰで開裂させるシステインプロテアーゼであるＨＲＶ３Ｃプロテアーゼ（ＥＣ ３．４．２２．２８）である。
ペプチド骨格にエステル結合を含むペプチドであるデプシペプチドまたはポリエステルは、エステラーゼ、例えばブタ肝臓エステラーゼ（ＥＣ ３．１．１．１）またはブタ膵臓リパーゼ（ＥＣ ３．１．１．３）によって開裂されうる。核酸は、配列特異的でありうるエンドヌクレアーゼによって開裂されることができ、例えば制限酵素（ＥＣ ３．１．２１．３、ＥＣ ３．１．２１．４、ＥＣ ３．１．２１．５）、例えばＥｃｏＲＩ、ＨｉｎｄＩＩもしくはＢａｍＨＩによって開裂されることができ、またはより一般的には例えば、ピリミジンに隣接するホスホジエステル結合を開裂させるＤＮＡｓｅＩ（ＥＣ ３．１．２１．１）によって開裂されうる。
添加される酵素の量は、所望の期間にスペーサーを大幅に分解するのに十分である必要がある。通例的には効率は、少なくとも約８０％であり、より通例的には少なくとも約９５％であり、好ましくは少なくとも約９９％である。遊離の条件を、温度、ｐＨ、金属補因子の有無、還元剤などの点で実験により最適化することができる。分解は通例的には、少なくとも約１５分間で完了し、より通例的には少なくとも約１０分間で完了し、通常は約２時間を超えることにはならない。
スペーサーＰを完全に分解させる必要はない。本発明の方法では、標識された標的部から洗浄または解離によって結合部Ｂおよび／または抗原認識部Ａを除去できる程度にスペーサーＰを分解させることが必要とされる。
抗原認識部Ａ
「抗原認識部分Ａ」という用語は、細胞上で細胞内または細胞外で発現された抗原のような、生物学的検体上で発現された標的部を標的とする抗体、断片化抗体または断片化抗体誘導体のいずれの種をも指す。この用語は、抗体、断片化抗体、断片化抗体誘導体、ペプチド／ＭＨＣ複合体を標的とするＴＣＲ分子、細胞接着受容体分子、共刺激分子のための受容体または人工的に設計された結合分子を指す。断片化抗体誘導体は例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、ｓｄＡｂ、ｓｃＦｖ、ｄｉ－ｓｃＦｖ、ナノボディである。こうした断片化抗体誘導体を、こうした種類の分子を含む共有結合によるおよび共有結合によらない接合体を含めた組換え手法によって合成することができる。抗原認識部のさらなる例は、ペプチド／ＭＨＣ複合体を標的とするＴＣＲ分子、細胞接着受容体分子、共刺激分子のための受容体、人工的に設計された結合分子、例えば細胞表面分子を標的とするペプチドまたはアプタマーである。
本発明の方法において使用される接合体は、抗原認識部Ａを１～１００、好ましくは１～２０含むことができる。抗原認識部と標的部との相互作用は、高親和性であっても低親和性であってもよい。単独の低親和性の抗原認識部の結合相互作用は、抗原との安定な結合を生じさせるには低すぎる。低親和性の抗原認識部を酵素分解性スペーサーＰとの接合によって多量体化することで、高アビディティーをもたらすことができる。
好ましくは、「抗原認識部Ａ」という用語は、生物学的検体（標的細胞）により細胞内で発現される抗原を標的とする抗体、例えばＩＬ２、ＦｏｘＰ３、ＣＤ１５４、または生物学的検体（標的細胞）により細胞外で発現される抗原を標的とする抗体、例えばＣＤ３、ＣＤ１４、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ２５、ＣＤ３４、ＣＤ５６およびＣＤ１３３を指す。
抗原認識部Ａ、特に抗体を、側鎖のアミノ基またはスルフヒドリル基を通じてスペーサーＰに結合させることができる。場合によっては、抗体のグリコシド側鎖を過ヨウ素酸塩により酸化させて、アルデヒド官能基を得ることができる。
抗原認識部Ａは、スペーサーＰに、共有結合してもよいし、共有結合によらずに結合してもよい。共有結合によるまたは共有結合によらない接合のための方法は、当業者に知られており、検出部Ｘの接合に関して述べたことと同一である。
本発明の方法は特に、複合体混合物から特定の細胞種を検出および／または単離するのに有用であり、本発明の方法は、ステップａ）～ｅ）のうちの２つ以上の逐次的なまたは並行する序列を含むことができる。本方法では、接合体の様々な組み合わせ物を用いることができる。例えば、１つの接合体が、異なる２つのエピトープに特異的な複数の抗体、例えば異なる２つの抗ＣＤ３４抗体を含むことが可能である。異なる抗原には、異なる抗体を含む異なる接合体で対処することができ、例えば２つの別個のＴ細胞集団を区別するには、抗ＣＤ４抗体および抗ＣＤ８抗体を含む異なる接合体で対処することができ、調節性Ｔ細胞のような異なる細胞亜集団の測定には、抗ＣＤ４抗体および抗ＣＤ２５抗体を含む異なる接合体で対処することができる。
本方法の変形形態
本発明の方法は、接合体を用いた特異的な標識および接合体の遊離に関して高いフレキシビリティを提供し、それによって異なる複数の検出戦略が提供される。
使用される検出部Ｘｏに応じて、または当業者に知られている他の適用可能な定量的もしくは定性的な方法により、例えば視覚的な計数により、いずれのステップも、定性的または定量的なモニタリングが可能である。こうしたモニタリングは、本発明の方法により提供される個々のステップの効率を決定するのに有用でありうる。さらに、定性的または定量的にモニタリングを行うために、ステップａ）～ｅ）のいずれかにおいて、またはステップａ）～ｅ）のいずれかの後に、生物学的検体のサンプルを標識することが可能である。例えば以下に説明する一般式（ＩＩ）～（Ｖ）による非分解性接合体を利用する標識方法は、当業者に知られている。
ステップａ）
本方法のステップａ）において、一般式（Ｉ）Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を有する少なくとも１つの接合体を準備する。異なる標的部または同一の標的部を異なる検出部によって検出するためには、一般式（Ｉ）Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏを有する異なる接合体を準備することができ、その際、これらの複数の接合体およびその成分Ａ、Ｐ、Ｂ、Ｃ、Ｘ、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の意味を有するが、同一もしくは異なる種類および／もしくは量の抗原認識部Ａならびに／または酵素分解性スペーサーＰならびに／または結合部Ｂならびに／または結合部Ｃならびに／または検出部Ｘであってもよい。
さらに、一般式（Ｉ）Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏを有する接合体の他に、開裂ステップｄ）および／またはｅ）のうちの少なくとも１つに耐え、また、さらなる検出に使用することのできる追加の接合体を準備することが可能である。
そのようなさらなる接合体は、一般式（ＩＩ）Ａｎ－Ｐ’－Ｂ’ｍ－Ｃ’ｑ－Ｘｏを有することができ、ここで、Ａ、Ｘ、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、式（Ｉ）と同一の化学的な意味を有するが、ＡおよびＢ’は、Ｐ’に共有結合しており、および／またはＣ’は、Ｘに共有結合しており、および／またはＰ’は、非酵素分解性スペーサーであり、および／またはＢ’は、Ｃ’に共有結合している。
もう１つの変形形態において、さらに、一般式（ＩＩＩ）Ａｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏを有する少なくとも１つの非酵素分解性接合体を準備することができ、ここで、Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｘ、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、式（Ｉ）と同一の意味を有する。
さらに、一般式（ＩＶ）Ａｎ－Ｐ－Ｘｏを有する少なくとも１つの接合体を準備することができ、ここで、Ａ、Ｐ、Ｘ、ｎ、ｏは、式（Ｉ）と同一の意味を有する。
さらに、一般式（Ｖ）Ａｎ－Ｘｏを有する少なくとも１つの接合体を準備することができ、ここで、Ａ、Ｘ、ｎ、ｏは、式（Ｉ）と同一の意味を有する。
一般式（ＩＩ）～（Ｖ）を有する接合体は、開裂ステップｄ）および／またはｅ）のうちの少なくとも１つに耐え、これらの接合体を、さらなる検出に使用することができる。
ステップｂ）
ステップｂ）において、この接合体で、生物学的検体のサンプルの標的部を標識する。
ステップｂ）の第１の実施形態では、接合体での標的部の標識を、第１に標的部を第１の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍで標識し、第２にこの第１に標識された標的部を第２の接合体Ｃｑ－Ｘｏで標識することによって行う。以下で、この実施形態を「ｉ）」と呼ぶ。この実施形態の一変形形態では、第１の標識と第２の標識との間に洗浄ステップを行うことで、第２のインキュベーションを行う前の未結合のＡｎ－Ｐ－Ｂｍの量を減少させる。この手法の一例を、図２ａ）および例３に示す。さらに、標識された標的部からステップｄ）においてＣｑ－Ｘｏを開裂させた後に、Ａｎ－Ｐ－Ｂｍで標識された標的部を、第２の接合体Ｃｑ－Ｘｏで標識する。
ステップｂ）の第２の実施形態では、標的部を接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏで直接標識し、すなわち抗原認識部Ａにより認識される標的部と接触する前に、接合体を集成させる。以下で、この実施形態を「ｉｉ）」と呼ぶ。
ステップｂ）の実施形態ｉ）およびｉｉ）を、複数の変形形態で行うことができる。
本発明の一変形形態では、一般式（Ｉ）の２つ以上の接合体との接触を、ｉ）とｉｉ）とをいかようにも組み合わせて進行させることができる。例えば、２つ以上の接合体を、ｉ）またはｉｉ）において同時にインキュベートすることも、２つ以上のステップｉ）またはｉｉ）において逐次的にインキュベートすることも可能であり、また、一方の接合体をｉ）によりインキュベートし、他方の接合体をｉｉ）によりインキュベートすることも可能である。
さらに、接合体で標識された標的部をステップｃ）において検出もしくは単離する前か、または次の接触ステップｂ）の前に、標的部により認識されない接合体を、例えば緩衝液での洗浄により除去することができる。
本発明の一変形形態では、一般式（ＩＩ）～（Ｖ）の少なくとも１つの接合体に加えて一般式（Ｉ）の少なくとも１つの接合体を用いて、複数のステップｂ）を行うことも単一のステップｂ）を行うこともできる。
インキュベーションの際の条件は当業者に知られており、時間、温度、ｐＨなどの点で実験により最適化することができる。通例的には、インキュベーション時間は、１時間までであり、より通例的には３０分間までであり、好ましくは１５分間までである。温度は通例的には、４～３７℃であり、より通例的には３７℃未満である。
ステップｃ）
接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏで標識された標的部をｃ）において検出するための方法および装置は、検出部Ｘによって決まる。
本発明の方法は、標的部、すなわちそうした標的部を発現する標的細胞の検出するためにだけでなく、そうした標的細胞を生物学的検体のサンプルから検出部Ｘにより単離するためにも利用することができる。本発明の方法において、「検出」という用語は、「単離」を包含する。
例えば、蛍光による標的部の検出を用いることで、ＦＡＣＳまたはＴＹＴＯ分離系で行われるような適切な分離プロセスを生じさせることができる。本発明の方法において、周知の磁気細胞分離法を検出および単離の方法として用いることもでき、その際、磁性粒子が磁場により検出される。
本発明の一変形形態において、検出部Ｘは蛍光部である。蛍光部Ｘを励起させ、得られた蛍光シグナルを分析することにより、蛍光色素を付与した接合体で標識された標的を検出する。励起の波長は通常は、蛍光部Ｘの吸収極大に応じて選択され、当技術分野で知られているレーザまたはＬＥＤの光源によって与えられる。多色／多重パラメーターでの検出に異なる検出部Ｘを使用する場合には、吸収スペクトルが重複しておらず、少なくとも吸収極大が重複していない蛍光部を選択するよう留意すべきである。蛍光部が検出部として存在する場合には、例えば蛍光顕微鏡下で、フローサイトメーター、分光蛍光光度計または蛍光スキャナーで、標的を検出することができる。化学発光によって放出された光を、励起を行わずに同様の機器により検出することができる。
本発明のもう１つの変形形態では、検出部は吸光部であり、これは、照射光強度と透過光強度または反射光強度との差によって検出される。吸光部を、光音響イメージングによって検出することもできる。この光音響イメージングでは、パルスレーザビームの吸収を用いることで、超音波シグナルのような音響が生成される。
放射性検出部は、放射性同位体によって放出された放射線によって検出される。放射性放射線の検出に適した計器には、例えばシンチレーションカウンターが含まれる。ベータ放出の場合には、電子顕微鏡法も検出に使用できる。
遷移金属同位体マスタグ部は、質量分析法により検出され、例えばマスサイトメトリー機器に組み込まれているＩＣＰ－ＭＳにより検出される。
本発明のさらなる一変形形態において、検出部は固体担体である。これは、サイズおよび密度に応じて、目視検査によりまたは顕微鏡で検出することができよう。
磁性粒子は、磁気により検出され、例えば、磁気リラクソメトリー、磁気共鳴イメージング（ＭＲＩ）、磁気力顕微鏡法（ＭＦＭ）、超伝導量子干渉計（ＳＱＵＩＤ）、磁力計により検出される。
標的部を、光学手段、静電力、圧電力、機械的分離、音響的手段または磁力によるそれらの検出シグナルによって単離することができる。
本発明の一変形形態において、蛍光シグナルによるこのような分離に適しているのは、特にフローソーターであり、例えばＥＰ １４１８７２１５．０またはＥＰ １４１８７２１４．３に開示されているような、例えばＦＡＣＳまたはＭＥＭＳをベースとするセルソーターシステムである。
検出部が固体担体であるもう１つの変形形態では、固体担体を例えばカラムもしくはシーブ中に機械的に捕捉することによって、またはそれらの密度に応じて例えば沈降もしくは遠心分離によって、単離を行うことができる。
さらに、磁性粒子で標識された標的部を、磁場の付与により単離することができる。磁気によるセルソーティングは、当業者に知られており、強磁性材料を含む強磁性カラムの使用の有無にかかわらず永久磁場または電磁場で行うことができる。強磁性材料を含むカラムによって磁場の勾配が高まる。こうしたカラムは、ドイツ連邦共和国Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより入手可能である。
本発明のさらなる変形形態では、少なくとも１つの検出および／または単離ステップｃ）を、同時にまたは引き続くステップにおいて組み合わせることが可能である。
さらに、標的部の単離の間または後に、生物学的検体のサンプルに混入した未標識部分を、例えば緩衝液を用いた洗浄により除去することができる。
ステップｄ）
検出ステップｃ）の後に、ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合をステップｄ）において破壊し、それにより結合部Ｃｑおよび検出部Ｘｏを接合体（Ｉ）から開裂させる。
第１の結合部Ｂに結合する遊離剤を添加し、それにより第２の結合部Ｃと置き換えることによって、および／または第２の結合部Ｃに結合する遊離剤を添加し、それにより第１の結合部Ｂと置き換えることによって、ステップｄ）におけるＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合の破壊を行うことができる。
本発明の一変形形態において、この破壊ステップを、検出系の外部で、例えば標的部の溶液中で行うことができる。例えば、蛍光部もしくは吸光部で標識された標的部を、チューブ内で破壊するためにインキュベートするか、または磁性粒子で標識された標的部を、分離カラムから洗浄し、磁場の外部に除去された磁気標識を得ることができる。
もう１つの変形形態では、破壊ステップを、検出セットアップ内で行うことができる。例えば破壊は、シグナルの検出時に生じることができ、例えば蛍光顕微鏡法、サイトメトリー、測光法またはＭＲＩの際に生じることができる。したがって、検出シグナルの減少を、リアルタイムで監視することができよう。もう１つの例では、磁場内でも破壊が起こりうる。例えば競合分子を磁場内に位置するカラムに加えることによって、磁気標識された標的部から標識を除去することができる。この変形形態では、標的部はカラム／磁場から溶出されるが、磁気標識はカラム上および磁場内に残る。
必要に応じて、ｄ）における破壊の後に、標的部の検出または単離を行う他のステップｃ）が存在してよい。
結合部Ｃおよび検出部Ｘ、および／またはなおも接合体（Ｉ）で標識されている残りの標的部、または接合体（Ｉ）の非開裂部分、および／またはｄ）において破壊に使用した試薬を、サンプルから分離することができる。この種の単離ステップを、洗浄ステップにより行うことも可能であるし、ステップｃ）の検出および／または単離に記載された方法を利用することにより行うことも可能である。この分離を、例えばカラムまたはシーブ中での固体担体の機械的な捕捉によって達成することができる。さらに、標的部の単離に関してすでに記載したように磁場を付与することによって、固体担体としての磁性粒子を除去することができる。強磁性カラムを使用する場合、これが、強磁性材料を含む少なくとも１つの（同一の）または特に２つの異なるカラム内で行われることが好ましい。
こうした１つもしくは複数の任意選択的な検出および／または単離ステップによって、遊離された標的部を分離することも、破壊ステップｄ）の効率を求めることもできる。
ステップｅ）
ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合をステップｄ）において破壊した後、ステップｅ）においてスペーサーＰを酵素で分解することによって、標識された標的部から結合部Ｂｍを開裂させ、すなわち、Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ内の共有結合を破壊する。
この破壊を、検出系の外部で、例えばチューブ内の標的部の溶液中で行うことができる。
抗原認識部Ａに応じて、スペーサーＰを酵素で開裂させると、低親和性の抗原認識部が単量体化されることとなり、かつ解離することができ、それによって、ステップｄ）＋ｅ）の後に、検出部Ｘ、スペーサーＰ、結合部ＢおよびＣならびに抗原認識部Ａが完全に除去される。高親和性の抗原認識部によって安定な結合が生じ、それによって、ステップｄ）＋ｅ）の後に、検出部Ｘ、スペーサーＰならびに結合部ＢおよびＣが除去される。
必要に応じて、ｅ）における破壊の後に、標的部の検出または単離を行う他のステップｃ）が存在してよい。
結合部Ｂおよび／または酵素で分解されたスペーサーＰおよび／または抗原認識部Ａおよび／またはｅ）において破壊に使用した試薬を、サンプルから例えば洗浄により分離することができる。
本発明の一変形形態において、破壊ステップｄ）およびｅ）とを、同時に行うことができる。したがって、破壊を、検出系の外部で行うことも、破壊ステップｄ）で記載したような検出セットアップ内で行うこともできる。
結合部Ｃ、および検出部Ｘ、および／または酵素で分解されたスペーサーＰ、および／または結合部Ｂ、および／または抗原認識部Ａ、および／または接合体（Ｉ）もしくは接合体（Ｉ）の非開裂部分でなおも標識されている残りの標的部、および／または、ｄ）やｅ）において破壊に使用した試薬を、サンプルから分離することができる。この種の単離ステップを、洗浄ステップにより行うことも可能であるし、ステップｃ）の検出および／または単離に記載された方法を利用することにより行うことも可能である。この分離を、例えばカラムまたはシーブ中での固体担体の機械的な捕捉によって達成することができる。さらに、標的部の単離に関してすでに記載したように磁場を付与することによって、固体担体としての磁性粒子を除去することができる。強磁性カラムを使用する場合、これが、強磁性材料を含む少なくとも１つの（同一の）または特に２つの異なるカラム内で行われることが好ましい。
こうした１つもしくは複数の任意選択的な検出および／または単離ステップによって、遊離された標的部を分離することも、破壊ステップｅ）またはｄ）＋ｅ）の効率を求めることもできる。
ステップａ）～ｅ）の序列
本発明の方法を、ステップａ）～ｅ）の１つ以上の序列で行うことができる。各序列の後に、検出部および必要に応じて抗原認識部を、標的部から遊離させる（除去する）。さらに、ステップａ）～ｅ）のうちのいずれかを組み合わせた序列も可能である。
本発明の方法を、以下の実施形態で行うことができる。
本発明の実施形態Ａは、ステップａ）～ｅ）を少なくとも２つの引き続く序列で行い、その際、それぞれの序列において、異なる検出部Ｘを有する複数の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を使用することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、第１のステップｂ）において第１の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこの接合体を開裂させる。（なおもＡで標識されているＡに応じて）この生物学的検体のサンプルを、次の序列で第２の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ２ｏと接触させ、検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこの接合体を開裂させる。Ａ、Ｐ、Ｂ、Ｃは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、異なるＸを提供するさらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、生物学的検体のサンプルから標的細胞集団を磁気標識して単離し、次いで蛍光標識を行うことであり、これによって、フローサイトメトリーもしくは顕微鏡法分析またはさらなる精製に向けた蛍光ベースのフローソーティングが可能となる。この変形形態では、第１の序列の後にＡを用いた残りの標識が行われるため、第２のステップにおける標識効率は低下する場合がある。
本発明の実施形態Ｂは、ステップａ）において、異なる検出部Ｘを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏを準備し、少なくとも２つのステップｃ）において、標識された標的部を、これらの異なる検出部Ｘを介して検出する。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ２ｏと接触させ、引き続く２つのステップｃ）において検出を行い、これらの接合体を双方共に、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において同時に開裂させる。Ａ、Ｐ、Ｂ、Ｃは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、異なるＸを提供するさらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、生物学的検体のサンプルから標的細胞集団を磁気細胞分離により磁気および蛍光により標識して単離し、次いでフローサイトメトリーもしくは顕微鏡法分析を行うかまたはさらなる精製に向けた蛍光ベースのフローソーティングを行うことである。この変形形態では、同一の抗原認識部を用いて二重に標識されるため、Ｘ１およびＸ２を用いた標識効率が低下する。
本発明の実施形態Ｃは、第１のステップａ）において、少なくとも１つの第１の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１を準備し、標識された標的部から第１のステップｄ）においてＣｑ－Ｘ１を開裂させた後、なおもＡｎ－Ｐ－Ｂｍで標識されている標的部を、少なくとも１つの第２のステップａ）において、少なくとも１つの第２の接合体Ｃｑ－Ｘ２で標識し、その際、この第１の接合体と第２の接合体とは、異なる検出部Ｘを有して提供されていることを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、この接合体を、ステップｄ）において開裂させ、それによってＣｑ－Ｘ１ｏを遊離させる。なおもＡｎ－Ｐ－Ｂｍで標識されている生物学的検体のサンプルを、次の序列でＣｑ－Ｘ２ｏと接触させ、検出を行い、この接合体を、さらなる序列を許容するステップｄ）において開裂させるか、または引き続くもしくは同時に行うステップｄ）およびｅ）において開裂させる。Ａ、Ｐ、Ｂ、Ｃは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態の一例は、生物学的検体のサンプルから標的細胞集団を磁気標識して単離し、次いで蛍光標識を行うことであり、これによって、フローサイトメトリーもしくは顕微鏡法分析またはさらなる精製に向けた蛍光ベースのフローソーティングが可能となる。実施形態ＡおよびＢと比較して、この変形形態では、第１の序列の同一のＡｎ－Ｐ－Ｂｍを再度扱うため、第２のステップにおける標識効率は低下しない。
本発明の実施形態Ｄは、ステップａ）～ｅ）を少なくとも２つの引き続く序列で行い、その際、それぞれの序列において、異なる抗原認識部Ａおよび同一または異なる検出部Ｘを有する複数の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を使用することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、この接合体を、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において開裂させる。この生物学的検体のサンプルまたは第１の序列の単離画分を、次の序列において第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ２ｏと接触させ、検出を行い、この接合体を、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において開裂させる。Ｐ、Ｂ、Ｃは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。Ｘ１とＸ２とは、同一であっても異なっていてもよい。この変形形態の第１の例は、Ａ１のみまたはＡ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから２つの標的細胞集団を順次、磁気標識して単離することである。第２の例は、Ａ１のみ、Ａ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから第１の標的細胞集団を磁気標識して単離し、第２の標的細胞集団を蛍光標識して検出することである。この変形形態の第３の例は、Ａ１のみ、Ａ２のみおよびＡ１＋Ａ２により認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから、Ａ１＋Ａ２により認識される標的細胞亜集団を磁気標識して単離することである。こうした単離戦略は、文献から知られている「Ａｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ」型（ここで、Ａは、高親和性の抗原認識部である）の可逆的な標識系を使用した場合には不可能である。こうした系を用いた第１の序列の後には、生物学的検体のサンプルは、なおもＡ１ｎ－Ｂｍで標識されており、これによって第２の序列において、Ａ１ｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－ＸｏおよびＡ２ｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏにより二重の標識が行われるとともに、Ａ１のみ、Ａ２のみおよびＡ１／Ａ２により認識されるすべての細胞集団が単離される。
本発明の実施形態Ｅは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、ステップｃ）において、標識された標的部を、同一の検出部Ｘを介して検出することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、これらの接合体の双方を、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において開裂させる。Ｐ、Ｂ、Ｃ、Ｘ１は、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態の第１の例は、Ａ１のみ、Ａ２のみまたはＡ１＋Ａ２により認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから、２つの標的細胞集団を同時に磁気標識して単離することである。この変形形態を、異なるＡを提供するさらなる接合体により拡張することができる。この変形形態を、ステップｄ）における接合体の開裂により変形形態Ｃと組み合わせることもでき、それによってＣｑ－Ｘ１ｏが遊離される。なおもそれぞれＡ１ｎ－Ｐ－ＢｍおよびＡ２ｎ－Ｐ－Ｂｍで標識されている生物学的検体のサンプルを、次の序列においてＣｑ－Ｘ２ｏなどと接触させる。Ｐ、Ｂ、Ｃは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。
本発明の実施形態Ｆは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる酵素分解性スペーサーＰを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、その際、別個のステップｅ）において異なるスペーサーＰを酵素で分解することにより、結合部Ｂｍを、異なる接合体により標識されたそれぞれの標的部から開裂させることを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ１－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ２－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、これらの接合体を、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において開裂させ、その際、ステップｅ）は、Ｐ１およびＰ２に関して異なる。したがって、実施形態Ｃによる第２の序列を行ってから、Ｐ２に関する開裂ステップｅ）を行うことができる。Ｂ、Ｃは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、さらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、Ａ１のみ、Ａ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから、２つの標的細胞集団を同時に磁気標識して単離することである。こうしてＰ１およびＰ２を逐次的に遊離させることによって、まずＰ１のみを開裂させることができ、したがって、実施形態Ｃによる第２の序列において、なおもＡ２ｎ－Ｐ２－Ｂｍで標識された細胞集団のみをＣｑ－Ｘ２ｏを用いて蛍光または磁気による標識で再度処理し、最後にこれら２つの細胞集団を分離することができる。第２の序列においてＡ２ｎ－Ｐ２－Ｂｍでの標識が存在していることから、実施形態Ｄと比較して、この実施形態のプロセス時間は短縮されることになる。
本発明の実施形態Ｇは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる第１の結合部Ｂまたは異なる第２の結合部Ｃを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、その際、別個のステップｄ）においてＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することによって、これらの異なる接合体により標識された標的部から断片Ｃｑ－Ｘｏを開裂させることを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂ１ｍ－Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ－Ｂ２ｍ－Ｃ２ｑ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこれらの接合体を開裂させ、その際、ステップｄ）は、Ｂ１－Ｃ１およびＢ２－Ｃ２に関して異なる。Ｐ、Ｘは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、さらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、Ａ１のみ、Ａ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから、２つの標的細胞集団を同時に磁気標識して単離することである。こうしてＣ１ｑ－Ｘ１ｏおよびＣ２ｑ－Ｘ１ｏを逐次的に遊離させることによって、Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏを遊離させた後に中間的にさらなる検出ステップを行って、これら２つの細胞集団を分離することができ、これらを、最後にステップｅ）において同一の機序により開裂させることができる。実施形態ＤおよびＦと比較して、この実施形態のプロセス時間はさらにより短縮されることになる。この実施形態を、実施形態Ｃと組み合わせることができる。
本発明の実施形態Ｈは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａ、異なる検出部Ｘおよび異なる第１の結合部Ｂまたは異なる第２の結合部Ｃを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、その際、別個のステップｄ）においてＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することによって、これらの異なる接合体により標識された標的部から断片Ｃｑ－Ｘｏを開裂させることを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂ１ｍ－Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ－Ｂ２ｍ－Ｃ２ｑ－Ｘ２ｏと接触させ、同時にまたは２つの引き続くステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこれらの接合体を開裂させ、その際、ステップｄ）は、Ｂ１－Ｃ１およびＢ２－Ｃ２に関して異なる。Ｐは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態の一例は、Ａ１のみ、Ａ２のみおよびＡ１＋Ａ２により認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから標的細胞亜集団を、２つのパラメーターおよび２つの蛍光色素を用いて蛍光標識して単離することである。Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏとＣ２ｑ－Ｘ２ｏとが異なることによって特異的な標識が可能になり、また、遊離を、同時に行ってもよいし、逐次的に異なるステップｄ）およびｅ）において行ってもよい。例えば、細胞亜集団を多重パラメーターにより蛍光標識し、検出し、単離しそして遊離させるために、この変形形態を、異なるＡおよびＸを提供するさらなる接合体により拡張することができる。この変形形態を、変形形態Ｃと組み合わせることもできる。
本発明の実施形態Ｉは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａ、異なる酵素分解性スペーサーＰ、異なる第１の結合部Ｂまたは異なる第２の結合部Ｃおよび異なる検出部Ｘを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ１－Ｂ１ｍ－Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ２－Ｂ２ｍ－Ｃ２ｑ－Ｘ２ｏと接触させ、同時にまたは２つの引き続くステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこれらの接合体を開裂させる。ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、さらなる接合体により拡張することができる。この変形形態を、変形形態Ｃと組み合わせることもできる。この実施形態によって、生物学的検体のサンプルから、少なくとも２つの標的細胞集団を逐次的にまたは同時に標識し、分離しそして遊離させるための複数の可能性が生じる。
Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）の少なくとも１つの接合体と、Ａｎ－Ｐ’－Ｂ’ｍ－Ｃ’ｑ－Ｘｏ （ＩＩ）および／またはＡｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （ＩＩＩ）および／またはＡｎ－Ｐ－Ｘｏ （ＩＶ）および／またはＡｎ－Ｘｏ （Ｖ）のうちの少なくとも１つの付加的な接合体とを用いて、本発明の方法、特に上記の実施形態を行うことができる。こうした付加的な接合体（ＩＩ）～（Ｖ）は、開裂ステップｄ）およびまたはｅ）のうちの少なくとも１つに耐える。したがって、本発明の方法を、以下の実施形態で行うことができる。
本発明の実施形態Ｊは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｘｏ （Ｖ）を準備することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｘ１ｏと接触させ、ステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において接合体このＡ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏを開裂させる。Ａ２ｎ－Ｘ１ｏは、ステップｄ）およびｅ）に耐える。Ｘ１は、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、さらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、Ａ１のみ、Ａ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから２つの標的細胞集団を同時に磁気標識して単離することである。こうしてＣ１ｑ－Ｘ１ｏを逐次的に遊離させることによって、Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏの遊離後にさらなる検出ステップを行って、これら２つの細胞集団を分離することが可能となる。Ａ１が標的とする細胞集団のみを、最後にステップｅ）において開裂させることができる。Ａ２が標的とする細胞集団を、Ａ２ｎ－Ｘ１ｏで非可逆的に標識する。この実施形態を、実施形態Ｃと組み合わせることができる。
本発明の実施形態Ｋは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる検出部Ｘを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｘｏ （Ｖ）を準備することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｘ２ｏと接触させ、同時にまたは２つの引き続くステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）において接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏを開裂させる。Ａ２ｎ－Ｘ２ｏは、ステップｄ）およびｅ）に耐える。ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、さらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、２つのパラメーターおよび２つの蛍光色素を用いた蛍光標識であり、その際、一方の標識は非可逆的であり、第２の標識は可逆的である。例えば、細胞亜集団を多重パラメーターにより蛍光標識し、検出し、単離しそして遊離させるために、この変形形態を、異なるＡおよびＸを提供するさらなる接合体により拡張することができる。この変形形態を、変形形態Ｃと組み合わせることもできる。
本発明の実施形態Ｌは、ステップａ）において、異なる複合の抗原認識部Ａを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｘｏ （ＩＶ）を準備することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ－Ｘ２ｏと接触させ、同時にまたは２つの引き続くステップｃ）において検出を行い、ステップｄ）において接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏを開裂させる。Ａ２ｎ－Ｐ－Ｘ２ｏは、ステップｄ）に耐えるが、ステップｅ）において同時にＡ１ｎ－Ｐ－Ｂｍへと遊離される。Ｘ１およびＸ２は、同一かまたは異なる種類であり、Ｐは、同一の種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態を、さらなる接合体により拡張することができる。この変形形態の一例は、Ａ１のみ、Ａ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから、２つの標的細胞集団を同時に磁気標識して単離することである。こうしてＣ１ｑ－Ｘ１ｏを逐次的に遊離させることによって、Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏの遊離後にさらなる検出ステップを行ってこれら２つの細胞集団を分離することができ、これらを、最後にステップｅ）において同一の機序により開裂させることができる。この変形形態を、変形形態Ｃと組み合わせることもできる。
本発明の実施形態Ｍは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる酵素分解性スペーサーＰを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｘｏ （ＩＶ）を準備することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ１－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｐ２－Ｘ２ｏと接触させ、同時にまたは２つの引き続くステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこれらの接合体を開裂させ、その際、ステップｅ）は、Ｐ１およびＰ２に関して異なる。Ａ２ｎ－Ｐ２－Ｘ２ｏは、Ｐ１のためのステップｅ）に耐える。Ｘ１およびＸ２は、同一かまたは異なる種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。この変形形態の一例は、Ａ１のみ、Ａ２のみにより認識される細胞集団を含む生物学的検体のサンプルから、２つの標的細胞集団を同時に磁気標識して単離することである。こうしてＣ１ｑ－Ｘ１ｏを逐次的に遊離させることによって、Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏの遊離後にさらなる検出ステップを行ってこれら２つの細胞集団を分離することができ、これらを、最後にステップｅ）において異なる機序により開裂させることができる。この変形形態を、変形形態Ｃと組み合わせることもできる。
本発明の実施形態Ｎは、ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる検出部Ｘを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （ＩＩＩ）を準備することを特徴とする。
この実施形態では、生物学的検体のサンプルを、ステップｂ）において第１の接合体Ａ１ｎ－Ｐ－Ｂ１ｍ－Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏおよび第２の接合体Ａ２ｎ－Ｂ２ｍ－Ｃ２ｑ－Ｘ２ｏ （ＩＩＩ）と接触させ、同時にまたは２つの引き続くステップｃ）において検出を行い、引き続くまたは同時に行うステップｄ）およびｅ）においてこれらの接合体を開裂させ、その際、ステップｄ）は、Ｂ１－Ｃ１およびＢ２－Ｃ２に関して異なり、最後にステップｅ）において、Ａ１が標的とする細胞集団を開裂させることができる。Ｘ１およびＸ２は、同一かまたは異なる種類であり、ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、同一の量であっても異なる量であってもよい。こうしてＣ１ｑ－Ｘ１ｏおよびＣ２ｑ－Ｘ２ｏを逐次的に遊離させることによって、Ｃ１ｑ－Ｘ１ｏの遊離後に中間的にさらなる検出ステップを行って、これら２つの細胞集団を分離することができる。この実施形態を、実施形態Ｃと組み合わせることができる。
本方法の使用
本発明の方法を、研究、診断および細胞療法における様々な用途に使用することができる。
本発明の第１の使用では、細胞のような生物学的検体を、計数目的で、すなわち接合体の抗原認識部により認識される特定の一連の抗原を有するサンプルからの細胞の量を確認するために、検出または単離する。
第２の使用では、１つまたは複数の生物学的検体集団を分離して、標的細胞を精製する。こうして単離した精製細胞を、分子診断、細胞培養または免疫療法のような下流の複数の用途に使用することができる。
本発明のもう１つの使用では、接合体の抗原認識部により認識される生物学的検体上の抗原のような標的部の位置を求める。高度なイメージング法は、「マルチエピトープリガンド地図作成（Ｍｕｌｔｉ Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｌｉｇａｎｄ Ｃａｒｔｏｇｒａｐｈｙ）」、「チップベースサイトメトリー（Ｃｈｉｐ－ｂａｓｅｄ Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ）」または「Ｍｕｌｔｉｏｙｍｘ」として知られており、例えば欧州特許第０８１０４２８号明細書（ＥＰ ０８１０４２８）、欧州特許第１１８１５２５号明細書（ＥＰ １１８１５２５）、欧州特許第１１３６８２２号明細書（ＥＰ １１３６８２２）または欧州特許第１２２４４７２号明細書（ＥＰ １２２４４７２）に記載されている。この技術では、生物学的検体のサンプルと、検出部に結合された抗原認識部とを連続サイクルで接触させ、この検出部によって抗原の位置を検出し、その後この検出部を除去する。したがって、標識－検出－除去の連続サイクルによって、タンパク質ネットワークをマッピングし、異なる細胞型を局在化させ、また疾患に関連するプロテオームの変化を分析することが可能となる。
実施例
例１ 抗体－またはＦａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンの接合
ＰＥＯ－ビオチンを用いて抗体－またはＦａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体を調製するために、アミノデキストランを、ＮＨＳ活性化ＰＥＯ－ビオチン（例えば、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ／Ｐｉｅｒｃｅより入手可能なＮＨＳ－ＰＥＧ４－ビオチン）と共にインキュベートした。室温で６０分間のインキュベーション時間が経過した後、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ緩衝液を用いたサイズ排除クロマトグラフィーにより、このデキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体を精製した。このデキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体を、室温での６０分間にわたるＳＭＣＣとのインキュベーションによってさらに活性化させ、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ緩衝液を用いたサイズ排除クロマトグラフィーによって精製した。抗体またはＦａｂを、ＭＥＳ緩衝液中の１０ｍＭ ＤＴＴで還元させた。室温で６０分間のインキュベーション時間が経過した後、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ緩衝液を用いたサイズ排除クロマトグラフィーにより、この抗体またはＦａｂを精製した。抗体－またはＦａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体を接合するために、活性化デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンに、活性化Ｆａｂまたは活性化抗体を加えた。室温で６０分間のインキュベーション時間が経過した後、β－メルカプトエタノール、続いてＮ－エチルマレイミドをモル過剰で加えて、未反応のマレイミドまたはチオール官能基をブロックした。この抗体－またはＦａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体を、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ緩衝液を用いたサイズ排除クロマトグラフィーにより精製した。抗体またはＦａｂの濃度を、２８０ｎｍでの吸光度および吸光度によって求めた。
例２ 抗体－またはＦａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンと比較するための、抗体－またはＦａｂ－ＰＥＯ－ビオチンの接合
抗体－またはＦａｂ－ＰＥＯ－ビオチン接合体を調製するために、抗体またはＦａｂを、ＭＥＳ緩衝液中の１０ｍＭ ＤＴＴで還元した。室温で６０分間のインキュベーション時間が経過した後、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ緩衝液を用いたサイズ排除クロマトグラフィーにより、この抗体またはＦａｂを精製した。抗体－またはＦａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体を接合するために、活性化Ｆａｂまたは活性化抗体を、モル過剰のチオール反応性マレイミド－ＰＥＯ－ビオチン（例えば、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ／Ｐｉｅｒｃｅより入手可能なマレイミド－ＰＥＧ２－ビオチン）と共にインキュベートした。室温で１５時間インキュベートした後、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ緩衝液を用いたサイズ排除クロマトグラフィーにより、この抗体－またはＦａｂ－ＰＥＯ－ビオチン接合体を精製した。抗体またはＦａｂの濃度を、２８０ｎｍでの吸光度および吸光度によって求めた。
例３ （本発明による）Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣと、Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣとを対比して用いた細胞表面標識
「洗浄ステップを行う」細胞表面染色手法１）： ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液中のＰＢＭＣを第１に、２．０μｇ／ｍＬの抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンまたは抗ＣＤ８－Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチンで、４℃で５分間標識した。これらの細胞を、冷ＰＢＳ／ＥＤＴＡ－ＢＳＡ緩衝液で洗浄し、第２に、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液中で、２倍モル過剰の抗ビオチン－ＡＰＣ（モル比Ｆａｂ：抗ビオチン＝１：２）（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより入手可能）を用いて４℃で１０分間標識した。これらの細胞を、冷ＰＢＳ／ＥＤＴＡ－ＢＳＡ緩衝液で洗浄し、フローサイトメトリーで分析した。
「洗浄ステップを行わない」細胞表面染色手法２）： ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液中のＰＢＭＣを第１に、２．０μｇ／ｍＬの抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンまたは抗ＣＤ８－Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチンで、４℃で５分間標識した。その後、これらの細胞を直ちに第２に、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液中で、２倍モル過剰の抗ビオチン－ＡＰＣ（モル比Ｆａｂ：抗ビオチン＝１：２）（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより入手可能）を用いて４℃で１０分間標識した。これらの細胞を、冷ＰＢＳ／ＥＤＴＡ－ＢＳＡ緩衝液で洗浄し、フローサイトメトリーで分析した。
図２に、（本発明による）Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣ（ａ）と、（比較のための）Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣ（ｂ）とを対比して用いた細胞表面標識のフローサイトメトリー分析の例示的な結果を示す。
第１に抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンおよび抗ＣＤ８－Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチンのそれぞれをインキュベートし、第２に抗ビオチン－ＡＰＣをインキュベートすることにより、ＰＢＭＣを逐次的に標識した。洗浄ステップを行わない標識手法２）によって、蛍光強度はそれぞれ７７．２および６８．２であり、同等であることが判明した。この抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体は、２つのＦａｂからなり、これらは、デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンを介して共有結合により多量体化される。抗ＣＤ８－Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチンは、モノマー型接合体であり、これを、抗ビオチン－ＡＰＣへの結合により二量体化させることができる。したがって、第１のインキュベーションと第２のインキュベーションとの中間に洗浄ステップを行う標識手法１）によって、抗ＣＤ８－Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣを用いた場合に、この低親和性のモノマー型抗ＣＤ８－Ｆａｂ－ＰＥＯ－ビオチンが迅速に解離するという特性ゆえに、蛍光強度が低下（２４．７）してしまう（ｂ）。対照的に、多量体化された抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンによる第１の標識は、洗浄ステップの間安定であり、得られる蛍光強度は、洗浄ステップを行わない標識手法（２）を用いて達成された値と同等である（ａ）。この洗浄ステップは、未結合のＦａｂ接合体を除去するのに有益であり、それによって非特異的結合のリスクが低くなる。
例４ （本発明による）Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチン－ＡＰＣによる可逆的な細胞標識
ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液中のＰＢＭＣを第１に、０．２５μｇ／ｍＬの抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンで４℃で５分間標識した。その後、これらの細胞を直ちに第２に、ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液中で抗ビオチンマイクロビーズ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより入手可能）で４℃で１５分間標識し、抗ＣＤ８－ＰＥで４℃で５分間標識した。これらの細胞を、冷ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液で洗浄し、５００μＬの冷緩衝液中に再懸濁させた。この懸濁液を、ＭＳカラム（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより入手可能）に付与し、磁気細胞分離のために磁場に付与した。これらの濃縮細胞を、磁場内で洗浄し、このカラムを分離器から取り出してから、これらの細胞を、冷ＰＢＳ／ＥＤＴＡ／ＢＳＡ緩衝液１ｍＬで溶出させた。この濃縮画分のアリコートを分離し、フローサイトメトリー分析のために抗デキストラン－ＡＰＣで染色した。残りの濃縮画分を分割し、一方の部分を２ｍＭのビオチンと共に２１℃で１０分間インキュベートした。もう一方の部分を、２ｍＭのビオチンおよびデキストラナーゼと共に、２１℃で１０分間インキュベートした。この細胞懸濁液を、第２のカラムに付与し、流出液を溶出細胞として収集した。この溶出画分のアリコートを分離し、フローサイトメトリー分析のために抗デキストラン－ＡＰＣで染色した。濃縮または溶出された画分のアリコートを、抗デキストラン－ＡＰＣ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨより入手可能）と共に４℃で１０分間インキュベートした。これらの細胞を、冷ＰＢＳ／ＥＤＴＡ－ＢＳＡ緩衝液で洗浄し、フローサイトメトリーで分析した。
図３に、Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン／抗ビオチンマイクロビーズを用いた可逆的な細胞標識のフローサイトメトリー分析の結果の例示的なドットプロットを示す。
第１に抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンをインキュベートし、第２に抗ビオチンマイクロビーズをインキュベートすることにより、ＰＢＭＣを逐次的に標識した。磁気標識したＣＤ８＋標的細胞を、磁場で単離した。これらの濃縮細胞を、抗デキストラン－ＡＰＣでの標識によって分析した。この抗体は、抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンのデキストランおよび抗ビオチンマイクロビーズのデキストランを認識する。したがって、これらの濃縮細胞から、ＡＰＣに関して蛍光強度が高いことが判明した（ａ）。競合分子ビオチンを添加した後、この抗ビオチンマイクロビーズは標的細胞から遊離して、これらの細胞は、もはや磁場に保持されなかった。抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチン接合体は、２つのＦａｂからなり、これらは、デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンを介して共有結合により多量体化されるため、細胞表面上に残った。抗デキストラン－ＡＰＣ標識後のフローサイトメトリー分析によって、抗ビオチンマイクロビーズが存在せずに抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンが残ることから、濃縮画分と比較してＡＰＣの蛍光強度が低下することが判明した（ｂ）。競合分子ビオチンおよびデキストラン分解酵素デキストラナーゼを添加した後、抗ビオチンマイクロビーズが遊離し、抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンが分解し、それにより抗ＣＤ８－Ｆａｂの単量体化が生じた。抗デキストラン－ＡＰＣ標識後のフローサイトメトリー分析によって、抗ビオチンマイクロビーズおよび抗ＣＤ８－Ｆａｂ－デキストラン－ＰＥＯ－ビオチンが存在しないことから、ＡＰＣの蛍光強度は検出限界の範囲内であることが判明した（ｃ）。

Claims (21)

  1. ａ）一般式（Ｉ）
    Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）
    ［式中、
    Ａは、抗原認識部であり、
    Ｐは、酵素分解性スペーサーであり、
    Ｂは、第１の結合部であり、
    Ｃは、第２の結合部であり、
    Ｘは、検出部であり、
    ｎ、ｍ、ｑ、ｏは、１から１００までの整数である］
    を有する少なくとも１つの接合体を準備すること、
    ここで、ＢとＣとは、互いに共有結合によらずに結合しており、ＡおよびＢは、Ｐに共有結合しており、かつ、前記酵素分解性スペーサーＰは多糖類である、
    ｂ）前記抗原認識部Ａにより認識される標的部を、前記少なくとも１つの接合体で標識すること、
    ｃ）前記標識された標的部を、検出部Ｘを介して検出すること、
    ｄ）ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することにより、Ｃｑ－Ｘｏを、前記標識された標的部から開裂させること、
    ｅ）スペーサーＰを酵素で分解することにより、前記標識された標的部から前記第１の結合部Ｂｍを開裂させること
    によって、生物学的検体のサンプル中の標的部を検出するための方法。
  2. スペーサーＰを酵素で分解することにより、前記標識された標的部から前記抗原認識部Ａｎを開裂させることを特徴とする、請求項１記載の方法。
  3. 前記第１の結合部Ｂに結合する遊離剤を添加し、それにより前記第２の結合部Ｃと置き換えることによって、および／または、前記第２の結合部Ｃに結合する遊離剤を添加し、それにより前記第１の結合部Ｂと置き換えることによって、ステップｄ）における前記ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合の破壊を行うことを特徴とする、請求項１または２記載の方法。
  4. 前記接合体での前記標的部の標識を、ステップｂ）において、接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）での前記標的部の標識により行うことを特徴とする、請求項１から３までのいずれか１項記載の方法。
  5. ステップｂ）における前記接合体での前記標的部の標識を、第１に前記標的部を第１の接合体断片Ａｎ－Ｐ－Ｂｍで標識する第１の標識する工程と、第２に前記第１に標識された標的部を第２の接合体断片Ｃｑ－Ｘｏで標識する第２の標識する工程によって行うことを特徴とする、請求項１から４までのいずれか１項記載の方法。
  6. 前記第１の標識する工程と前記第２の標識する工程との間に、洗浄ステップを行うことを特徴とする、請求項５記載の方法。
  7. ステップｄ）およびｅ）を同時に行うことを特徴とする、請求項１から６までのいずれか１項記載の方法。
  8. ステップａ）～ｅ）を少なくとも２つの引き続く序列で行い、その際、それぞれの序列において、異なる検出部Ｘを有する複数の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を使用することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  9. ステップａ）において、異なる検出部Ｘを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏを準備し、少なくとも２つのステップｃ）において、前記標識された標的部を、前記異なる検出部Ｘを介して検出することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  10. ステップａ）～ｅ）を少なくとも２つの引き続く序列で行い、その際、第１の序列におけるステップａ）において、少なくとも１つの第１の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘ１を準備し、第１の序列におけるステップｄ）において、前記標識された標的部からＣｑ－Ｘ１を開裂させた後、なおもＡｎ－Ｐ－Ｂｍで標識されている前記標的部を、少なくとも１つの第２の序列におけるステップａ）において、少なくとも１つの第２の接合体Ｃｑ－Ｘ２で標識し、その際、前記第１の接合体と第２の接合体とには、異なる検出部Ｘが付与されていることを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  11. ステップａ）において、異なる検出部Ｘおよび異なる抗原認識部Ａを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏを準備し、少なくとも２つのステップｃ）において、前記標識された標的部を、前記異なる検出部Ｘを介して検出することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  12. ステップａ）～ｅ）を少なくとも２つの引き続く序列で行い、その際、それぞれの序列において、異なる抗原認識部Ａを有する複数の接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を使用することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  13. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる酵素分解性スペーサーＰを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、その際、別個のステップｅ）において前記異なる酵素分解性スペーサーＰを酵素で分解することによって、前記第１の結合部Ｂｍを、前記少なくとも２つの異なる接合体により標識されたそれぞれの標的部から開裂させることを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  14. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる第１の結合部Ｂまたは異なる第２の結合部Ｃを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、その際、別個のステップｄ）において前記ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することによって、前記少なくとも２つの異なる接合体により標識された標的部から断片Ｃｑ－Ｘｏを開裂させることを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  15. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａ、異なる検出部Ｘおよび異なる第１の結合部Ｂまたは異なる第２の結合部Ｃを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備し、その際、別個のステップｄ）において前記ＢｍとＣｑとの間の共有結合によらない結合を破壊することによって、前記少なくとも２つの異なる接合体により標識された標的部から断片Ｃｑ－Ｘｏを開裂させることを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  16. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａ、異なる酵素分解性スペーサーＰ、異なる第１の結合部Ｂまたは異なる第２の結合部Ｃおよび異なる検出部Ｘを有する少なくとも２つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）を準備することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  17. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｘｏ （Ｖ）を準備することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  18. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる検出部Ｘを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｘｏ （Ｖ）を準備することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  19. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｘｏ （ＩＶ）を準備することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  20. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる酵素分解性スペーサーＰを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｘｏ （ＩＶ）を準備することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
  21. ステップａ）において、異なる抗原認識部Ａおよび異なる検出部Ｘを有する、少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｐ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （Ｉ）および少なくとも１つの接合体Ａｎ－Ｂｍ－Ｃｑ－Ｘｏ （ＩＩＩ）を準備することを特徴とする、請求項１から７までのいずれか１項記載の方法。
JP2017237900A 2016-12-13 2017-12-12 遊離可能な結合部位を２つ有する接合体を用いた可逆的な細胞標識 Active JP7239265B2 (ja)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP16203607.3A EP3336546B1 (en) 2016-12-13 2016-12-13 Reversible cell labelling with conjugates having two releasable binding sites
EP16203607.3 2016-12-13

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2018138913A JP2018138913A (ja) 2018-09-06
JP7239265B2 true JP7239265B2 (ja) 2023-03-14

Family

ID=57590311

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2017237900A Active JP7239265B2 (ja) 2016-12-13 2017-12-12 遊離可能な結合部位を２つ有する接合体を用いた可逆的な細胞標識

Country Status (4)

Country Link
US (1) US10890580B2 (ja)
EP (1) EP3336546B1 (ja)
JP (1) JP7239265B2 (ja)
CN (1) CN108226467B (ja)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113677995A (zh) * 2019-04-23 2021-11-19 美天施生物科技有限两合公司 使用具有用于增加荧光亮度的接头和酶促可释放荧光部分的缀合物的可逆细胞检测
WO2020241999A1 (ko) * 2019-05-24 2020-12-03 고려대학교 세종산학협력단 스위치 성 부착반응을 이용한 친화 분리 시스템 및 방법
CN113966394A (zh) 2019-05-28 2022-01-21 美天施生物科技有限两合公司 产生遗传修饰的t细胞的方法
US11604195B2 (en) 2019-08-22 2023-03-14 Michael IANNOTTI High throughput analysis and sorting, and sampling interface and assembly for high throughput analysis and sorting
WO2021047804A1 (en) 2019-09-11 2021-03-18 Miltenyi Biotec B.V. & Co. KG In vitro method for transduction of t cells in the presence of malignant cells
EP4075137A4 (en) 2019-12-02 2024-02-07 Sol Bio Corporation PREPARATION DEVICE AND METHOD FOR PREPARING AN EXOSOME LIQUID BIOPSY SAMPLE AND METHOD FOR ANALYZING AN EXOSOME LIQUID BIOPSY SAMPLE PRODUCED THEREFROM
US20230076164A1 (en) * 2020-02-17 2023-03-09 Miltenyi Biotec B.V. & Co. KG Method for providing personalized cells with chimeric antigen receptors (CAR) against tumor microenvironment cells
WO2022043023A1 (en) * 2020-08-27 2022-03-03 Miltenyi Biotec B.V. & Co. KG Releasable reagents for cell separation
WO2023209175A1 (en) 2022-04-28 2023-11-02 Bio-Recell Ltd. Method for separating target cells

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006049289A1 (ja) 2004-11-01 2006-05-11 Tokyo Metropolitan Organization For Medical Research 標的物質の検出方法
JP2008542783A (ja) 2005-06-07 2008-11-27 サントル、ナショナール、ド、ラ、ルシェルシュ、シアンティフィク、（セーエヌエルエス） 組織切片の質量分析法による分析のための光解離または断片化により開裂可能なリンカーとの接合体の使用
JP2014073092A (ja) 2012-10-03 2014-04-24 Hitachi High-Technologies Corp 細胞回収用デバイス、装置及び方法
US20150167064A1 (en) 2011-04-25 2015-06-18 University Of Washington Compositions and methods for multiplex biomarker profiling
JP2016519652A (ja) 2013-03-14 2016-07-07 カリブー・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド 核酸ターゲティング核酸の組成物および方法
JP2016136937A (ja) 2014-12-27 2016-08-04 ミルテニー バイオテック ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツングＭｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨ 酵素的に遊離可能な検出部を有する接合体による細胞検出

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1996031776A1 (en) 1995-04-06 1996-10-10 Miltenyi Bioteh, Inc. Multiparameter cell separation using releasable colloidal magnetic particles
ES2216080T3 (es) 1996-05-29 2004-10-16 Walter Dr. Schubert Dispositivo automatizado y procedimiento para medir y determinar moleculas o partes de moleculas.
WO2001036939A2 (de) 1999-11-04 2001-05-25 Meltec Multi-Epitope-Ligand-Technologies Gmbh Verfahren zur automatischen analyse von mikroskopaufnahmen
DE10014685B4 (de) 2000-03-24 2004-07-01 Schubert, Walter, Dr. Verfahren zur Identifizierung von zellspezifischen Zielstrukturen
DE10043470B4 (de) 2000-09-04 2006-01-19 Mpb Meltec Patent- Und Beteiligungsgesellschaft Mbh Verfahren zur Identifizierung von zellspezifischen Proteinen
EP1227321A1 (en) 2000-12-28 2002-07-31 Institut für Bioanalytik GmbH Reversible MHC multimer staining for functional purification of antigen-specific T cells
WO2006031815A2 (en) * 2004-09-13 2006-03-23 Monogram Biosciences, Inc. Methods and compositions for proximity assays
WO2008140573A2 (en) 2006-11-15 2008-11-20 Invitrogen Dynal As Methods for reversibly binding a biotin compound to a support
JP5721638B2 (ja) * 2009-02-19 2015-05-20 ダコ・デンマーク・エー／エス コンジュゲート分子
PT2734538T (pt) 2011-07-18 2018-08-02 Iba Gmbh Processo para corar, de forma reversível, uma célula-alvo
CN104620093B (zh) * 2012-08-23 2018-04-20 干细胞技术公司 用于快速可逆生物分子标记的组合物和方法
US10196631B2 (en) * 2012-10-23 2019-02-05 Miltenyi Biotec Gmbh Cell separation method using a release system for cell-antibody-substrate conjugates containing a polyethylene glycol spacer unit
EP2725358A1 (en) 2012-10-23 2014-04-30 Miltenyi Biotec GmbH Release system for cell-antibody-substrate conjugates containing a polyethylene glycol spacer unit

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006049289A1 (ja) 2004-11-01 2006-05-11 Tokyo Metropolitan Organization For Medical Research 標的物質の検出方法
JP2008542783A (ja) 2005-06-07 2008-11-27 サントル、ナショナール、ド、ラ、ルシェルシュ、シアンティフィク、（セーエヌエルエス） 組織切片の質量分析法による分析のための光解離または断片化により開裂可能なリンカーとの接合体の使用
US20150167064A1 (en) 2011-04-25 2015-06-18 University Of Washington Compositions and methods for multiplex biomarker profiling
JP2014073092A (ja) 2012-10-03 2014-04-24 Hitachi High-Technologies Corp 細胞回収用デバイス、装置及び方法
JP2016519652A (ja) 2013-03-14 2016-07-07 カリブー・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド 核酸ターゲティング核酸の組成物および方法
JP2016136937A (ja) 2014-12-27 2016-08-04 ミルテニー バイオテック ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツングＭｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ ＧｍｂＨ 酵素的に遊離可能な検出部を有する接合体による細胞検出

Also Published As

Publication number Publication date
CN108226467A (zh) 2018-06-29
EP3336546A1 (en) 2018-06-20
EP3336546B1 (en) 2020-07-01
CN108226467B (zh) 2022-11-01
US20180164296A1 (en) 2018-06-14
JP2018138913A (ja) 2018-09-06
US10890580B2 (en) 2021-01-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7239265B2 (ja) 遊離可能な結合部位を２つ有する接合体を用いた可逆的な細胞標識
EP3037821B1 (en) Cell detection with conjugates having an enzymatically releasable detection moiety
EP2538220B1 (en) Methods and arrays for target analyte detection and determination of target analyte concentration in solution
Mahmoud et al. Advanced procedures for labeling of antibodies with quantum dots
EP2725359A1 (en) Cell separation method using a release system for cell-antibody-substrate conjugates containing a polyethylene glycol spacer unit
WO2014052875A1 (en) Stimulus-sensitive microparticles and methods of use
EP4078178B1 (en) Reversible cell detection via mhc with conjugates having an enzymatically cleavable detection moiety
US20220206005A1 (en) Conjugates having an enzymmatically releasable detection moiety and a barcode moiety
US20210018498A1 (en) Reversible cell labelling with conjugates having two releasable binding sites
JP7354285B2 (ja) 蛍光輝度を増加させるためのリンカー及び酵素により遊離可能な蛍光部分を有する接合体での可逆的な細胞検出
US20230138285A1 (en) Bright and releasable labels for cell staining based on the conjugates with several sites of fluorophore release
US20180217151A1 (en) Reversible labeling of antigens in biological specimens
US20230324399A1 (en) Conjugates having an enzymmatically releasable detection moiety and a barcode moiety
US20230349891A1 (en) Releasable reagents for cell separation

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20201209

A711 Notification of change in applicant

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A712

Effective date: 20210506

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20211111

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20211129

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20220228

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20220705

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20221003

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20230201

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20230302

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7239265

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150