JP7182815B2 - プログラム細胞死リガンドに対する結合物およびその使用 - Google Patents
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Description
配列番号3で示されるCDR1、
配列番号4で示されるCDR2、および
配列番号5で示されるCDR3。
配列番号6で示されるCDR1'、
アミノ酸配列がGISのCDR2'、および
配列番号7で示されるCDR3'。
(1) 本発明の第一の側面に記載の重鎖可変領域、および/または
(2) 本発明の第三の側面に記載の軽鎖可変領域、
あるいは、本発明の第二の側面に記載の重鎖、および/または本発明の第四の側面に記載の軽鎖
を有する抗体を提供する。
(i) 本発明の第一の側面に記載の重鎖可変領域、本発明の第二の側面に記載の重鎖、本発明の第三の側面に記載の軽鎖可変領域、本発明の第四の側面に記載の軽鎖、または本発明の第五の側面に記載の抗体、ならびに
(ii) 任意の発現および/または精製を補助するタグ配列
を有する組み換えタンパク質を提供する。
(a) 本発明の第一の側面に記載の重鎖可変領域、本発明の第二の側面に記載の重鎖、本発明の第三の側面に記載の軽鎖可変領域、本発明の第四の側面に記載の軽鎖、または本発明の第五の側面に記載の抗体からなる群から選ばれる抗体部分、ならびに
(b) 検出可能なマーカー、薬物、毒素、サイトカイン、放射性核種、酵素、またはこれらの組み合わせからなる群から選ばれる、前記抗体部分とカップリングするカップリング部分
を含む抗体薬物複合体を提供する。
(a)検出試薬またはキットの製造、
(b)PD-L1関連疾患を予防および/または治療する薬物または製剤の製造、ならびに/あるいは
(c)癌または腫瘍を予防および/または治療する薬物または製剤の製造
に用いられる使用を提供する。
(i) 本発明の第一の側面に記載の重鎖可変領域、本発明の第二の側面に記載の重鎖、本発明の第三の側面に記載の軽鎖可変領域、本発明の第四の側面に記載の軽鎖、または本発明の第五の側面に記載の抗体、本発明の第六の側面に記載の組み換えタンパク質、本発明の第八の側面に記載の免疫細胞、本発明の第九の側面に記載の抗体薬物複合体、またはこれらの組み合わせからなる群から選ばれる活性成分、ならびに
(ii) 薬学的に許容される担体
を含む薬物組成物を提供する。
(1) 本発明の第一の側面に記載の重鎖可変領域、本発明の第二の側面に記載の重鎖、本発明の第三の側面に記載の軽鎖可変領域、本発明の第四の側面に記載の軽鎖、または本発明の第五の側面に記載の抗体、あるいは
(2) 本発明の第六の側面に記載の組み換えタンパク質、
(3) 本発明の第七の側面に記載のCAR構築物
からなる群から選ばれるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを提供する。
(1) 体外において、前記サンプルを本発明の第五の側面に記載の抗体と接触させる工程、ならびに
(2) 抗原-抗体複合体が形成したか検出し、ここで、複合体が形成したというのはサンプルにPD-L1タンパク質が存在することを意味する工程
を含む方法を提供する。
(1) 本発明の第五の側面に記載の抗体を含有する第一の容器、および/または
(2) 本発明の第五の側面に記載の抗体に対する二次抗体を含有する第二の容器を含むか、
あるいは、本発明の第十六の側面に記載の検出プレートを含有する
ことを特徴とするキットを提供する。
(a) 発現に適切な条件において、本発明の第十四の側面に記載の宿主細胞を培養する工程、ならびに
(b) 培養物から、本発明の第五の側面に記載の抗体または本発明の第六の側面に記載の組み換えタンパク質である、組み換えポリペプチドを単離する工程
を含むことを特徴とする方法を提供する。
以下、本発明がより理解しやすくなるように、具体的に、一部の技術および科学用語を定義する。本明細書で別途に明確に定義しない限り、本明細書で用いられるすべてのほかの技術および科学用語はいずれも本発明が属する分野の普通の技術者が通常理解する意味と同様である。
プログラム細胞死1(PD-1)はCD28受容体ファミリーのメンバーで、当該ファミリーはCD28、CTLA-4 、ICOS 、PD-1およびBTLAを含む。当該ファミリーの最初のメンバーであるCD28およびICOSはモノクローナル抗体を添加すると、T細胞の増殖機能が増強することで見出された(Hutloffら,(1999),Nature 397:263-266;Hansenら,(1980),Immunogenics10:247-260)。PD-1の2種類の細胞表面糖タンパク質リガンドであるPD-L1およびPD-L2が既に同定され、これらがPD-1と結合するとT細胞の活性化およびサイトカインの分泌が下方調節されることが明らかになった(Freemanら,(2000),J Exp Med192:1027-34;Latchmanら,(2001),Nat Immunol 2:261-8;Caterら,(2002),Eur J Immunol32:634-43;Ohigashiら,(2000),Cl in Cancer Res 11:2947-53)。PD-L1(B7-H1)およびPD-L2(B7-DC)はいずれもPD-1と結合するが、ほかのCD28ファミリーのメンバーと結合しないB7ホモログである(Blankら,2004)。
本明細書で用いられるように、用語「抗体」とは免疫グロブリンのことで、2本の同様の重鎖および2本の同様の軽鎖がジスルフィド結合を介して連結してなる4本ペプチド鎖の構造である。免疫グロブリンの重鎖定常領域のアミノ酸の構成および配列順序により、その抗原性が異なる。これによって、免疫グロブリンは5種類に分かれ、あるいは免疫グロブリンのアイソタイプと呼ばれ、すなわち、IgM、IgD、IgG、IgAおよびIgEで、その相応する重鎖はそれぞれμ鎖、δ鎖、γ鎖、α鎖、およびε鎖である。同一のIgはそのヒンジ領域のアミノ酸の組成および重鎖ジスルフィド結合の数と位置の違いにより、異なるサブタイプに分かれ、たとえばIgGはIgG1、IgG2、IgG3、IgG4に分かれる。軽鎖は定常領域によってκ鎖またはλ鎖に分かれる。5種類のIgのうち、いずれのIgもκ鎖またはλ鎖を有してもよい。各クラスの免疫グロブリンのサブユニット構造および三次元構造は本分野の技術者熟知である。本発明に記載の抗体の軽鎖はさらに軽鎖定常領域を含んでもよく、前記の軽鎖定常領域はヒト由来またはマウス由来のκ鎖、λ鎖またはそのバリアントを含む。
(i)VL、VH、CLおよびCH1ドメインからなる1価の断片である、Fab断片;
(ii)ヒンジ領域におけるジスルフィド架橋で連結した2つのFab断片を含む2価の断片である、F(ab’)2断片;
(iii)VHおよびCH1ドメインからなるFd断片;
(iv)抗体の一方のアームのVHおよびVLドメインからなるFv断片。
本発明は抗ヒトPD-L1抗体(以下、PD-L1抗体と略す)を提供する。具体的に、本発明は、PD-L1に対する高特異性で高親和力の抗体であって、重鎖および軽鎖を含み、前記重鎖は重鎖可変領域(VH)のアミノ酸配列を、前記軽鎖は軽鎖可変領域(VL)のアミノ酸配列を含有する抗体を提供する。
a1)配列番号3;
a2)配列番号4;
a3)配列番号5;
a4)配列番号6;
a5)GIS;
a6)配列番号7;
a7)上記アミノ酸配列のうちの任意の一つのアミノ酸配列が少なくとも1個(たとえば1~5、1~3個、好ましくは1~2個、より好ましくは1個)のアミノ酸の付加、欠失、修飾および/または置換を経たもので、PD-L1結合親和力を有する配列。
QVQLQQSGAELVKPGASVKLSCKASGYAFTGYTIHWVKQRSGLGLEWLGWFYPGSGTLKYNEKFKDKATLTADKSSSTVYLELSRLTSEDSAVYFCARHGTGTLMAMDYWGQGTSVTVSS (配列番号1)
QVQLVQSGAEVKKPGASVKVSCKASGYAFTGYTIHWVRQAPGQRLEWMGWFYPGSGTLKYSEKFQGRVTITRDKSLSTAYMELSSLRSEDTAVYYCARHGTGTLMAMDYWGQGTLVTVSS (配列番号8)
DVVVTQTPLSLPVSFGDQVSISCRSSQSLANSYGNTYLSWYLHKPGQSPQLLIYGISNRFSGVPDRFSGSGSGTDFTLKISTIKPEDLGMYYCLQGTHQPPTFGGGTKLEIK (配列番号2)
DVVMTQTPLSLSVTPGQPASISCKSSQSLANSYGNTYLSWYLHKPGQSPQLLIYGISNRFSGVPDRFSGSGSGTDFTLKISRVEAEDVGVYYCLQGTHQPPTFGQGTKLEIK (配列番号9)
モノクローナル抗体の生成に適する方法のいずれも本発明のPD-L1抗体の生成に使用することができる。たとえば、連接または天然に存在するPD-L1タンパク質またはその断片で動物を免疫させることができる。アジュバント、免疫刺激剤、重複免疫強化接種を含む、適切な免疫接種方法を使用してもよく、一つまたは複数の手段をしようしてもよい。
さらに、本発明は組成物を提供する。好適な例において、前記の組成物は薬物組成物で、上記の抗体またはその活性断片あるいはその融合タンパク質またはそのADCまたは相応するCAR-T細胞と、薬学的に許容される担体とを含有する。通常、これらの物質を無毒で不活性で薬学的に許容される水系担体で配合し、pH値は配合される物質の性質および治療しようとする疾患にもよるが、pH値は通常5~8程度、好ましくは6~8程度である。配合された薬物組成物は通常の経路で給与することができ、腫瘍内、腹膜内、静脈内、あるいは局部給与が含まれるが、これらに限定されない。
本発明の抗体は検出に有用で、たとえば検体を検出することによって診断情報を提供することができる。
本発明のPD-L1結合分子のPD-L1に対する遮断は患者における癌細胞に対する免疫応答を増強することができる。PD-L1は多くのヒトの癌において大量に存在する(Dongら,(2002) Nat Med. 8: 78 7-9) 。PD-1とPD-L1の相互作用により、腫瘍に浸潤するリンパ球が減少し、T細胞受容体が仲介する増殖が減少し、そして癌細胞の免疫逃避が生じる。CN106397592Aの明細書16/31頁(Dongら,(2003)J Mol Med 81:281-7;Konishiら,(2004)Clin Cancer Res 10:5094-5100)。PD-L1とPD-1の局部における相互作用に対する抑制は免疫抑制を逆転させることができ、PD-L2とPD-1の相互作用も遮断されると、効果が協同のものになる(Iwaiら,(2002)PNAS 99 :12293-7;Brownら,(2003) J Immunol 170: 1257-66)。本発明のPD-L1結合分子は単独で使用することにより、癌性腫瘍の生長を抑制してもよい。あるいは、後記のように、本発明のPD-L1結合分子はほかの抗腫瘍の治療手段、たとえばほかの免疫原性剤、標準の癌療法またはほかの抗体分子と併用してもよい。
本発明のほかの方法は、特定の毒素または病原体に露出する患者の治療に使用される。そのため、本発明のもう一つの側面では、対象における感染性疾患を予防および/または治療する方法であって、当該対象に本発明のPD-L1結合分子を施用し、前記対象の感染性疾患を予防および/または治療することを含む方法を提供する。
抗PD-L1抗体は自己免疫応答を起こして増幅することができる。そのため、抗PD-L1抗体で多くの自己タンパク質と併用して接種案を設計し、有効にこれらの自己タンパク質に対する免疫応答を起こし、疾患の治療に使用することが考えられる。
抗PD-L1抗体は、たとえば扁平苔癬、T細胞が仲介する慢性炎症性皮膚粘膜病などの慢性炎症性疾患のような疾患の治療に使用することができる。そのため、一つの側面では、本発明は、T細胞で慢性炎症性疾患を除去する方法であって、対象に本発明のPD-L1結合分子を施用することを含む方法を提供する。本発明は、抗PD-L1抗体および眼部疾患、自己免疫疾患の治療におけるその使用を提供する。前記の疾患は、乾癬、乾癬性関節炎、強直性脊椎炎、多発性硬化症、炎症性腸疾患(たとえばクローン病、潰瘍性大腸炎など)、骨関節炎、関節リウマチ(RA)、リウマチ性関節炎または骨粗鬆症、炎症性線維化(たとえば強皮症、肺線維化および硬変)、喘息(アレルギー性喘息を)、アレルギー反応および癌を含むが、これらに限定されない。
(a) 本発明の抗体は優れた生物活性および特異性を有する。
(b) マウス由来抗体およびキメラ抗体と比べ、本発明のヒト化抗体はPD-L1に相当する親和力を維持しながら、より低い免疫原性を有する。
(c) 本発明の抗体のPD-L1に対する遮断は患者における癌細胞に対する免疫応答を顕著に増強することができる。
(d) 本発明の抗体と一部のヒト以外の哺乳動物(たとえばサル)のPD-L1はヒトPD-L1に相当する親和力を有することで、動物モデルにおいてテストおよび品質管理の検出を行うことが便利である。
(e) 本発明の抗体はPD-L1の免疫細胞(たとえばT細胞)活性に対する抑制を解消することにより、有効に抗原特異性T細胞の活性を活性化させ、T細胞の抗腫瘍作用を顕著に増強することができ、そしてヒトIFN-γおよびIL-2の分泌に対する刺激がより有効であることで、患者自身の腫瘍に対する免疫系の反応を向上させ、腫瘍細胞を殺傷する目的を果たす。
マウス由来モノクローナル抗体を製造する方法はKohlerとMilsteinによって1975年に発明されたハイブリドーマ製造技術が使用された(Nature,1975,256:495-497)。まず、ヒトPD-L1-Hisタンパク質(Sino Biological, #10084-H08H)をフロイントアジュバントと乳化し、さらにBALB/c、CD1、C57BL/6、SJLの各系のそれぞれ5匹のマウスに対して複数の箇所で皮下免疫を行った。3回の免疫後、血清を取ってELISA法によって力価を検出し、力価が所定の標準に達すると、脾臓細胞を取ってSP2/0骨髄腫細胞と融合させた。HATによってハイブリドーマのポリクローナル細胞をスクリーニングし、ELISA方法を使用し、特異的にヒトPD-L1と結合するポリクローナル細胞株をスクリーニングした後、モノクローナル化し、さらにELISA方法によって特異的に結合するモノクローナル細胞株をスクリーニングし、そしてサルPD-L1との結合力を検出し、ES-2細胞でFACSスクリーニングを行い、選ばれたモノクローナル細胞株に対して親和力(SPR)スクリーニングを行い、最終的にヒトPD-L1抗体を発現するモノクローナルハイブリドーマ細胞36C06/D8をえたが、スクリーニングデータを表1に示す。
2.1 ハイブリドーマ細胞における免疫グロブリンのcDNA配列のクローニング
タカラバイオの5’RACE技術原理に基づき、ハイブリドーマ36C06/D8によって発現されるマウス抗体の可変領域をコードするDNA配列を測定した。つまり、SMART 5’RACE合成キット(TAKARA、#634859)を使用してメーカーの使用説明に従って重鎖および軽鎖の遺伝子特異性cDNAを製造した。アガロースゲル電気泳動によってPCR産物を分析した。重鎖と軽鎖の両者の可変領域の増幅の予想の大きさは約500 bpである。反応で得られたバンドの大きさに適するPCR増幅産物をベクターpEASY-Blunt Simple vector(TransGen Biotech、#CB111-02)にクローニングし、そしてStellar大腸菌の感受性細胞(TAKARA、#636763)に形質転換させた。汎用のM13フォワードまたはリバースプライマーを使用した集落PCRによってクローンをスクリーニングし、各反応からクローンを2~3個選択してDNAシークエンシング分析に使用した。Expasy-translate tool(http://web.expasy.org/translate/)によって各クローンの各シークエンシングの反応結果を分析した。シークエンシングの結果から、36C06/D8によって発現される抗PD-L1抗体のV領域の配列が以下の通りであることが示された。
QVQLQQSGAELVKPGASVKLSCKASGYAFTGYTIHWVKQRSGLGLEWLGWFYPGSGTLKYNEKFKDKATLTADKSSSTVYLELSRLTSEDSAVYFCARHGTGTLMAMDYWGQGTSVTVSS
900289-VL 配列番号2
DVVVTQTPLSLPVSFGDQVSISCRSSQSLANSYGNTYLSWYLHKPGQSPQLLIYGISNRFSGVPDRFSGSGSGTDFTLKISTIKPEDLGMYYCLQGTHQPPTFGGGTKLEIK
ここで、下線の領域はCDRである(IMGT定義で、それぞれ以下の通りである)。
PCRによってクローニングされたマウス36C06/D8のVHとVL領域のcDNAをそれぞれヒトIgG1およびk定常領域と連結することで、キメラ重鎖と軽鎖を構築した。PCRプライマーでマウスcDNA配列の5’と3’末端を修飾し、前記プライマーは各鎖に適切なリード配列が加わり、そして既存の組み換え抗体がクローニングで得られる発現ベクターpHB-Fcにおける制限部位が加わるように設計された。pHB-Fcプラスミドベクターの製造方法は以下の通りである。pcDNA/HA-FLAG(Accession、#FJ524378)ベクターを出発プラスミドとし、制限酵素EcoRIの下流にヒトIgG1またはkの定常領域の配列を付加し、制限酵素HindIIIの上流にヒトサイトメガロウイルス(HCMV)のプロモーター配列(Accession、#X17403)を付加し、アンピシリン耐性遺伝子の下流で、HCMVプロモーターの上流にチャイニーズハムスターグルタミン合成酵素遺伝子(Accession、X03495)を加えた。
抗体のヒト化は以下の方法が使用された。抗体の可変領域の配列をNCBIタンパク質データベースにおける使用可能な配列と比較し、同定および分析により、最終的にCDR移植重鎖と軽鎖の構築に適するヒトフレームワーク領域が確認された。
QVQLVQSGAEVKKPGASVKVSCKASGYAFTGYTIHWVRQAPGQRLEWMGWFYPGSGTLKYSEKFQGRVTITRDKSLSTAYMELSSLRSEDTAVYYCARHGTGTLMAMDYWGQGTLVTVSS
900339-VL 配列番号9
DVVMTQTPLSLSVTPGQPASISCKSSQSLANSYGNTYLSWYLHKPGQSPQLLIYGISNRFSGVPDRFSGSGSGTDFTLKISRVEAEDVGVYYCLQGTHQPPTFGQGTKLEIK
3.1 PD-L1抗体の異なる種由来のPD-L1タンパク質に対する結合特異性の測定(ELISA)
3.1.1 キメラ抗体900289、ヒト化抗体900339および対照huIgG1(900201)とヒトPD-L1タンパク質の結合活性の測定
具体的に、huPD-L1-hisタンパク質(Sino Biologicalから購入、#10084-H08H)を1 μg/ml、50μl/ウェルでマイクロプレートに入れ、2~8℃で12時間以上コーティングさせてプレートコーティング残留液を捨て、3%牛乳を200μL/ウェル入れ、室温で1時間ブロッキングした。各ウェルに200μL以上のPBSTを入れて1回洗浄し、被験抗体サンプルを100μg/mlに希釈し、さらに5倍希釈で11段階の勾配にし、100μL/ウェルでマイクロプレートに入れた。室温で1時間インキュベートした後、各ウェルに200μL以下のPBSTを入れ、4回洗浄した後、3%牛乳-PBSTを入れて25000倍に希釈したHRP結合ウサギ抗ヒトIgG Fc抗体(Luoyang Baiaotong Experimental Materials Center、#C030222)を、100μL/ウェルで仕込んだ。室温で1時間インキュベートした後、各ウェルに200μL以下のPBSTを入れ、6回洗浄し、乾燥した。TMB呈色液を100μL/ウェル入れた。室温で5分間反応させた後、2M H2SO4を50μL/ウェル入れて反応を停止させた。反応を停止させたマイクロプレートをマイクロプレートリーダーにセットし、波長450 nmで吸光度OD450値を読み取った。
実験方法はヒトPD-L1結合実験の測定に類似する。テスト例において、huPD-L1-hisをrhPD-L1-hisタンパク質(Sino Biological、#90251-C08H)またはmoPD-L1-his蛋白(Sino Biological、#50010-M8H)に変更した以外、ほかの工程は同様である。
本試験では、SPR方法によって抗体-抗原結合の動態学および親和力を測定した。
抗原huPD-L1-moFc(800023、Huabo Biopharm)を1%BSAを含有するPBS溶液(1%BSA/PBS)で15μg/mlに希釈し、20μL/ウェルで96ウェルU型プレートに入れ、段階希釈された抗PD-L1抗体と体積比1:1で均一に混合し、室温で15min反応させ、同期に陰性対照(1%BSA/PBS添加のみ)、陽性対照(PD-L1-moFc添加のみ)を設けた。対数期にあるヒトPD-1を発現する細胞(3C2-huPD-1-6F4、Huabo Biopharm)懸濁液を取り、遠心(1000rpm×5min)で培養液を捨て、1%BSA/PBSで生細胞密度が1×106/mLになるように再懸濁させ、20μL/ウェル(2×104個細胞)でPD-L1-moFcと抗PD-L1抗体で予備インキュベートされた96ウェルU型プレートに入れて室温で15min反応させた。反応後の96ウェルU型プレートを1%BSA/PBSで再懸濁させ、遠心(300g×3min)で上層液を捨て、このように2回洗浄し、1:300で希釈されたAlexa488-ヒツジ抗マウス-Fc(Jackson ImmunoResearch、#115-545-071)を入れ、室温で光を避けて15min反応させた。反応後の96ウェルU型プレートを1%BSA/PBSで再懸濁させ、遠心(300g×3min)で上層液を捨て、このように3回洗浄し、最終的に100μL/ウェルの1%BSA/PBSで再懸濁させ、フローサイトメーター(BD、#Accuri C6)によって第1チャネルの蛍光強度を検出した。
本試験では、SPR方法によって抗体と非標的分子の非特異性吸着効果を測定した。
無菌の状態において、1μg/mlの被験抗体を1μg/ml抗ヒトCD3抗体(BioLegend、#300314)と併用して96ウェル細胞培養プレートに、200μL/ウェルで2~8℃で一晩コーティングさせた。翌日に、コーティング液を捨て、PBSで2回洗浄した後、ピペットでウェル内に残った液体を全部吸い取った。培地でPBMCを生細胞密度が5×105/mLになるように希釈し、200μL/ウェル(1×105個細胞/ウェル)で、コーティングしておいた96ウェル細胞培養プレートに入れ、37℃、5%CO2の条件において5日培養した。培養終了後、96ウェル細胞培養プレートを300g×10minで遠心し、ヒトIFN-γ ELISA MAXTM Standardキット(BioLegend、#430101)によって上層細胞培養液におけるヒトIFN-γの分泌量を検出した。
EasySepTM Human Monocyte Enrichment Kit without CD16 Depletionキット(STEMCELLTM、#19058)によってPBMCから単核細胞を単離し、ImmunoCultTM Dendritic Cell Culture Kit(STEMCELLTM、#10985)に従って培養し、成熟した樹状細胞を回収して使用に備えた。EasySepTM Human CD4+T Cell Enrichment Kit(STEMCELLTM、#19052)によって別の個体由来のPBMCからCD4+T細胞を単離して使用に備えた。培地で成熟樹状細胞を生細胞密度が2×105/ mLの細胞懸濁液に再懸濁させ、50μL/ウェル(1×104個細胞/ウェル)で96ウェル細胞培養プレートに入れた。同時に、培地でCD4+T細胞を生細胞密度が2×106/ mLの細胞懸濁液に再懸濁させ、50μL/ウェル(1×105個細胞/ウェル)で樹状細胞を含有する96ウェル細胞培養プレートに入れて十分に混合し、MLR反応系を得た。MLR系に最終濃度が1μg/mlになるように抗PD-L1抗体を入れて十分に混合し、37℃、5%CO2の条件において5日培養した。培養終了後、96ウェル細胞培養プレートを300g×10minで遠心し、ヒトIFN-γ ELISA MAXTM Standardキット(BioLegend、#430101)およびヒトIL-2 ELISA MAXTM Standardキット(BioLegend、#431801)によってそれぞれ上層細胞培養液におけるヒトIFN-γおよびIL-2の分泌量を検出した。
Claims (7)
- 抗体の重鎖可変領域が、以下の3つの相補性決定領域またはCDR:
配列番号3で示されるCDR1、
配列番号4で示されるCDR2、および
配列番号5で示されるCDR3
を含み、抗体の軽鎖可変領域が、以下の3つの相補性決定領域またはCDR:
配列番号6で示されるCDR1'、
アミノ酸配列がGISのCDR2'、および
配列番号7で示されるCDR3'
を含む、抗PD-L1抗体。 - 前記抗体は、キメラ抗体またはヒト化抗体であることを特徴とする請求項1に記載の抗体。
- 前記抗体の重鎖可変領域の配列は配列番号1で示され、ならびに、
前記抗体の軽鎖可変領域の配列は配列番号2で示される
ことを特徴とする請求項1に記載の抗体。 - 前記抗体の重鎖可変領域の配列は配列番号8で示され、ならびに、
前記抗体の軽鎖可変領域の配列は配列番号9で示される
ことを特徴とする請求項1に記載の抗体。 - (i) 請求項1から4のいずれか一項に記載の抗体、ならびに
(ii) 任意の発現および/または精製を補助するタグ配列
を含むことを特徴とする組み換えタンパク質。 - CAR構築物であって、前記のCAR構築物の抗原結合領域はPD-L1と特異的に結合するscFvで、かつ前記scFvは請求項1に記載の抗体の重鎖可変領域および軽鎖可変領域を有することを特徴とする構築物。
- 請求項1に記載の抗体または請求項5に記載の組み換えタンパク質からなる群から選ばれる活性成分の使用であって、前記活性成分は、
(a)PD-L1の検出のための検出試薬またはキットの製造、
(b)PD-L1関連疾患を予防および/または治療する薬物または製剤の製造、ならびに/あるいは
(c)癌または腫瘍を予防および/または治療する薬物または製剤の製造
に用いられることを特徴とする使用。
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