JP7178075B2 - Akr1c3選択的阻害剤及びその用途 - Google Patents
Akr1c3選択的阻害剤及びその用途 Download PDFInfo
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Description
[1]以下の化学式1で表されるAKR1C3阻害剤:
[2]前記式中のR1が水素原子、フルオロ基、クロロ基、メチル基、エチル基、ヒドロキシ基(但し、2位及び4位を除く)、ジフルオロ基、トリフルオロ基、トリフルオロメチル基、ジトリフルオロメチル基又はイソプロピル基である、[1]に記載のAKR1C3阻害剤。
[3]前記式中のR1が水素原子、2-フルオロ、3-フルオロ、4-フルオロ、2-クロロ、3-クロロ、4-クロロ、2-メチル、3-メチル、4-メチル、2-エチル、3-エチル、4-エチル、3-ヒドロキシ、3,4-ジフルオロ、3,4,5-トリフルオロ、2-トリフルオロメチル、3-トリフルオロメチル、4-トリフルオロメチル、2,4-ジトリフルオロメチル、2-イソプロピル又は3-イソプロピルである、[1]に記載のAKR1C3阻害剤。
[4]以下の化学式2~4のいずれかで表される、[1]に記載のAKR1C3阻害剤:
[6]前立腺がん、乳がん、肝細胞がん、非小細胞肺がん又は白血病の治療又は予防に使用される、[5]に記載の抗がん薬。
[7]前立腺がんの治療又は予防に使用される、[5]に記載の抗がん薬。
[8]前立腺がんが、去勢抵抗性前立腺がんである、[7]に記載の抗がん薬。
[9]抗アンドロゲン薬と併用される、[7]又は[8]に記載の抗がん薬。
[10]がん患者に対して、[5]に記載の抗がん薬を治療上有効量投与するステップを含む、がんの治療又は予防法。
[11][1]~[4]のいずれか一項に記載のAKR1C3阻害剤を含む研究用試薬。
Ar雰囲気下、シアノ酢酸 (100 mg, 1.176 mmol) のCH2Cl2 (5 mL) 溶液に室温にて、アニリン (1.176 mmol)、EDC.HCl (450 mg, 2.352 mmol)、DMAP (29 mg, 0.235 mmol) を順次加え、室温にて24時間攪拌を行った。反応終了後、溶媒を留去し、得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (SiO2: 10 g, hexane : acetone = 5 : 1~1 : 1) により精製し、白色結晶 (1a-g 1), 1h 2), 1i 3), 1j-k 2), 1l 4), 1m 5), 1n-p 1), 1q 6), 1r 7), 1s 6), 1t 8), 1u 2), 1v, 1w 6), 1x 9)) を得た。
参考文献:1) Org. Biomol. Chem. 2015, 13, 7487. 2) J. Med. Chem. 2017, 60, 4626. 3) Bioorg. Med. Chem. Lett. 2009, 19, 1861. 4) Eur. J. Chem. 2012, 3, 228. 5) ChemCatChem 2016, 8, 3420. 6) J. Med. Chem. 2012, 55, 7378. 7) Commercially available: Aurora Building Blocks, A02.108.441. 8) Arch. Pharm. Res. 2003, 26, 197. 9) Commercially available: Aurora Building Blocks, A00.271.854.
収率: 51%; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 4.01 (2H, s), 7.85 (1H, d, J = 8.4 Hz), 8.08 (1H, s), 8.12 (1H, d, J = 8.4 Hz), 10.26 (1H, s)
Ar雰囲気下、アミド体 (1a-x, 0.432 mmol) のEtOH (3 mL) 溶液に室温にて、2,3-ジヒドロキシベンズアルデヒド (0.432 mmol)、ピペリジン (3滴) を順次加え、室温して24時間攪拌を行った。反応終了後、析出した結晶をろ取した後、翌日まで風乾し、淡黄色結晶2a-xを得た。
収率: 82%; mp: 235-237℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 7.04-7.14 (3H, m), 7.23 (1H, dd, J = 4.0, 3.0 Hz), 7.37 (1H, t, J = 8.5 Hz), 7.67 (2H, dd, J = 7.5, 1.0 Hz), 8.50 (1H, d, J = 1.5 Hz), 9.09 (1H, s), 10.23 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 119.9, 120.1, 120.2, 120.4, 120.5, 124.5, 124.6, 129.6, 138.8, 142.5, 142.6, 144.5, 156.5, 160.3; IR (KBr): 3298, 1674, 1598, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 280 (M+); HRMS: Calcd for C16H12N2O3 280.0848, Found 280.0847.
収率: 82%; mp: 247-249℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 7.10-7.17 (3H, m), 7.22-7.27 (2H, m), 7.31-7.35 (1H, m), 8.48 (1H, td, J = 3.5, 1.5 Hz), 8.55 (1H, d, J = 1.5 Hz), 9.14 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 115.6 (d, J = 23.1 Hz), 119.8, 120.2 (d, J = 23.1 Hz), 120.7, 121.9, 124.6, 125.0 (d, J = 8.5 Hz), 125.2 (d, J = 3.6 Hz), 127.0 (d, J = 8.5 Hz), 142.5, 143.1, 144.5, 153.0 (d, J = 241.8 Hz), 156.3, 160.6; IR (KBr): 3310, 1607, 1569, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 298 (M+); HRMS: Calcd for C16H11FN2O3 298.0754, Found 298.0754.
収率: 51%; mp: 225-227℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 6.96 (1H, m), 7.06-7.11 (2H, m), 7.22 (1H, dd, J = 4.5, 2.5 Hz), 7.28 (1H, d, J = 9.0 Hz), 7.39 (1H, q, J = 7.0 Hz), 7.74 (1H, d, J = 9.0 Hz), 8.50 (1H, s), 9.10 (1H, br), 10.22 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 107.0 (d, J = 23.1 Hz), 110.0 (d, J = 23.1 Hz), 116.0, 119.8, 120.1, 120.3, 120.6, 124.6 (d, J = 1.3 Hz), 131.1 (d, J = 10.3 Hz), 140.4 (d, J = 10.3 Hz), 142.5, 142.9, 144.5, 156.4, 160.7, 162.8 (d, J = 239.4 Hz); IR (KBr): 3305, 1609, 1579, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 298 (M+); HRMS: Calcd for C16H11FN2O3 298.0754, Found 298.0754.
収率: 65%; mp: 240-242℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 7.09-7.10 (2H, m), 7.22-7.24 (3H, m), 7.71 (1H, q, J = 5.0 Hz), 8.50 (1H, s), 9.09 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 116.1 (d, J = 23.1 Hz), 119.8, 120.2, 120.3, 120.5, 121.9 (d, J = 7.4 Hz), 124.6 (d, J = 3.6 Hz), 135.2, 142.4, 142.6, 144.5, 156.4, 158.9 (d, J = 239.0 Hz), 160.3; IR (KBr): 3298, 1674, 1511,1218 cm-1; MS (EI): m/z 298 (M+); HRMS: Calcd for C16H11FN2O3 298.0754, Found 298.0754.
収率: 67%; mp: 282-283℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ; 7.08-7.13 (2H, m), 7.16 (1H, td, J = 6.5, 1.5 Hz), 7.24 (1H, dd, J = 5.0, 2.0 Hz), 7.39 (1H, td, J = 7.0, 1.0 Hz), 7.54 (1H, dd, J = 6.5, 1.5 Hz), 8.52 (1H, dd, J = 7.0, 1.0 Hz), 8.55 (1H, s), 9.13 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 119.8, 120.2, 120.4, 120.7, 122.6, 123.6, 124.6, 125.5, 128.2, 129.9, 136.0, 142.5, 143.3, 144.5, 156.0, 160.8; IR (KBr): 3305, 1684, 1471, 1224 cm-1; MS (EI): m/z 314 (M+); HRMS: Calcd for C16H11ClN2O3 314.0458, Found: 314.0459.
収率: 65%; mp: 252-254℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 7.07 (2H, m), 7.18 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.23 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.39 (1H, t, J = 8.0 Hz), 7.44 (1H, t, J = 8.0 Hz), 7.95 (1H, s), 8.50 (1H, s), 9.12 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 118.6, 119.6, 119.8, 120.1, 120.3, 120.6, 124.2, 124.6, 131.2, 133.9, 140.1, 142.5, 142.9, 144.5, 156.4, 160.7; IR (KBr): 3301, 1681, 1595, 1482 cm-1; MS (EI): m/z 314 (M+); HRMS: Calcd for C16H11ClN2O3 314.0458, Found: 314.0458.
収率: 91%; mp: 272-273℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 7.07-7.11 (2H, m), 7.23 (1H, dd, J = 5.0, 2.5 Hz), 7.43 (1H, dd, J = 5.0, 2.0 Hz), 7.70 (1H, dd, J = 5.0, 2.0 Hz), 8.50 (1H, d, J = 1.5 Hz), 9.11 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 119.8, 120.2, 120.3, 120.6, 121.7, 124.6, 128.1, 129.5, 137.7, 142.5, 142.7, 144.5, 156.4, 160.5; IR (KBr): 3302, 1675, 1473, 1230 cm-1; MS (EI): m/z 314 (M+); HRMS: Calcd for C16H11ClN2O3 314.0458, Found: 314.0459.
収率: 90%; mp: 263-264℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 2.37 (3H, s), 7.08-7.16 (3H, m), 7.25-7.31 (3H, m), 8.25 (1H, d, J = 7.6 Hz), 8.52 (1H, d, J = 1.2 Hz), 9.11 (1H, s), 12.62 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 18.4, 119.4, 119.6, 120.0, 120.2, 120.8, 124.0, 124.1, 126.3, 127.8, 130.3 137.0, 141.9, 142.2, 144.0, 156.0, 159.7; IR (KBr): 3299, 1682, 1593, 1470 cm-1; MS (EI): m/z 294 (M+); HRMS: calcd for C17H14N2O3 294.1004, found 294.1008.
収率: 89%; mp: 241-242℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 2.28 (3H, s), 6.93 (1H, d, J = 7.3 Hz), 7.08-7.11 (2H, m), 7.20 (1H, d, J = 7.3 Hz), 7.26 (1H, d, J = 7.3 Hz), 7.43 (1H, s), 7.52 (1H, d, J = 7.3 Hz), 8.49 (1H, d, J = 2.5 Hz), 9.09 (1H, s), 12.81 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 21.1, 116.7, 119.4, 119.7, 120.0, 124.1, 124.8, 128.9, 138.2, 138.4 142.0, 142.1, 144.0, 156.0, 159.7; IR (KBr): 3295, 1678, 1606, 1467 cm-1; MS (EI): m/z 294 (M+); HRMS: calcd for C17H14N2O3 294.1004, found 294.1001.
収率: 89%; mp: 273-274℃; 1H-NMR (500 MHz, CDCl3) δ 2.36 (3H, s), 7.20 (2H, d, J = 8.1 Hz), 7.30-7.32 (3H, m), 7.63 (2H, d, J = 8.1 Hz), 9.04 (1H, s), 10.63 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 21.0, 119.9, 120.1, 120.2, 120.5, 124.6, 130.0, 133.6, 136.3, 142.4, 142.5, 143.5, 144.5, 156.5, 160.0; IR (KBr): 3292, 1674, 1564, 1472 cm-1; MS (EI): m/z 294 (M+); HRMS: calcd for C17H14N2O3 294.1004, found 294.1013.
収率: 66%; mp: 209-210℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 1.13 (3H, t, J = 7.7 Hz), 2.66 (2H, q, J = 7.7 Hz), 7.04-7.07 (3H, m), 7.16-7.23 (3H, m), 8.16 (1H, d, J = 8.5 Hz), 8.47 (1H, d, J = 1.5 Hz), 9.06 (1H, s), 12.61 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 15.6, 28.2, 117.0, 118.9, 119.4, 119.6, 120.0, 120,1, 123.6, 124.1, 129.0, 138.3, 141.9, 142.0, 144.0, 144.7, 155.9, 159.7; IR (KBr): 3297, 1669, 1569, 1472 cm-1; MS (EI): m/z 308 (M+); HRMS: calcd for C18H16N2O3 308.1161, found 308.1153.
収率: 78%; mp: 241-242℃; 1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ 1.14 (3H, t, J = 7.7 Hz), 2.65 (2H, q, J = 7.7 Hz), 6.99 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.11-7.12 (3H, m), 7.28 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.56 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.57 (1H, s), 8.60 (1H, br), 12.36 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 14.5, 24.6, 119.4, 119.6, 120.0, 120.1, 121.5, 124.1, 124.3, 126.3, 128.8, 134.0, 136.1, 141.9, 142.2, 144.0, 156.0, 159.8; IR (KBr): 3298, 1684, 1594, 1471 cm-1; MS (EI): m/z 308 (M+); HRMS: calcd for C18H16N2O3 308.1161, found 308.1153.
収率: 81%; mp: 259-260℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.18 (3H, t, J = 7.9 Hz), 2.58 (2H, q, J = 7.9 Hz), 7.08-7.10 (2H, m), 7.20-7.24 (3H, m), 7.59 (2H, d, J = 8.5 Hz), 8.49 (1H, d, J = 1.7 Hz), 9.08 (1H, s), 12.78 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 15.6, 27.6, 119.4, 119.6, 120.0, 120.8, 124.1, 124.1, 128.3, 136.0, 139.5, 141.9, 144.0, 146.1, 156.0, 159.1; IR (KBr): 3296, 1669, 1599, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 308 (M+); HRMS: calcd for C18H16N2O3 308.1161, found 308.1153.
収率: 48%; mp: 253-255℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 6.80 (1H, td, J = 6.0, 2.0 Hz), 6.88-6.93 (2H, m), 7.21 (1H, dd, J = 4.5, 2.5 Hz), 8.37 (1H, d, J = 8.0 Hz), 8.48 (1H, s), 8.98 (1H, s), 9.96 (1H, br), 10.20 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 115.23, 119.5, 119.97, 120.05, 120.5, 121.0, 124.5, 124.6, 127.5, 142.0, 142.4, 142.5, 144.4, 147.7, 155.8, 160.1; IR (KBr): 3313, 1668, 1558, 1471 cm-1; MS (EI): m/z 296 (M+); HRMS: Calcd for C16H12N2O4 296.0797, Found : 296.0798.
収率: 40%; mp: 202-204℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 6.52 (1H, dd, J = 4.5, 2.5 Hz), 6.97 (1H, dd, J = 7.0, 1.0 Hz), 7.08-7.11 (2H, m), 7.14 (1H, t, J = 8.0 Hz), 7.22 (1H, dd, J = 4.5, 2.5 Hz), 7.28 (1H, t, J = 2.0 Hz), 8.48 (1H, s), 9.08 (1H, s), 9.50 (1H, br), 10.20 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 107.1, 110.8, 111.7, 119.9, 120.2, 120.5, 120.6, 124.6, 130.3, 139.8, 142.5, 144.5, 156.5, 158.4, 160.1; IR (KBr): 3303, 1676, 1577, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 296 (M+); HRMS: Calcd for C16H12N2O3 296.0797, Found: 296.0799.
収率: 46%; mp: 231-233℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 6.76 (2H, d, J = 7.8 Hz), 7.06-7.10 (2H, m), 7.19-7.23 (1H, m), 7.47 (2H, d, J = 7.8 Hz), 8.46 (1H, s), 9.03 (1H, s), 9.34 (1H, br), 12.58 (1H, br); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 116.0, 119.96, 120.03, 120.5, 120.7, 121.7, 124.6, 130.5, 142.1, 142.4, 144.5, 154.5, 156.5, 159.6; IR (KBr): 3287, 1669, 1513, 1473 cm-1; MS (EI): m/z Calcd for C16H12N2O4 296.0797, Found: 296.0796.
収率: 83%; mp: 279-281℃; 1H-NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 7.07-7.12 (2H, m), 7.24 (1H, dd, J = 7.0, 2.5 Hz), 7.32-7.34 (1H, m), 7.44 (1H, q, J = 9.0 Hz), 7.95 (1H, ddd, J = 10.1, 7.5, 2.3 Hz), 8.50 (1H, d, J = 1.0 Hz), 9.11 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 109.3 (d, J = 22.0 Hz), 116.1, 117.2, 117.8 (d, J = 18.3 Hz), 118.6 (d, J = 15.9 Hz), 119.9 (dd, J = 33.0, 7.3 Hz), 121.2, 124.1, 125.3, 142.2, 142.5, 142.7, 143.5, 144.5, 156.4, 160.7; IR (KBr): 3301, 1679, 1517, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 316 (M+); HRMS: calcd for C16H10F2N2O3 316.0659, found 316.0654.
収率: 83%; mp: 277-279℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 7.08-7.12 (2H, m), 7.23 (1H, dd, J = 6.7, 2.4 Hz), 7.65 (2H, dd, J = 10.1, 6.5 Hz), 8.50 (1H, s), 9.13 (1H, s), 10.24 (1H, s), 13.12 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 104.7, 104.9, 119.7, 120.5, 120.7, 124.7, 134.8, 142.5, 143.2, 144.5, 149.8, 156.2, 161.1; IR (KBr): 3306, 1680, 1531, 1473 cm-1; MS (EI): m/z 334 (M+); HRMS: calcd for C16H9F3N2O3 334.0565, found 334.0560.
収率: 64%; mp: 244-245℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 7.07-7.14 (2H, m), 7.25 (1H, dd, J = 6.7, 2.4 Hz), 7.38 (1H, t, J = 8.0 Hz), 7.72 (1H, t, J = 8.0 Hz), 7.76 (1H, d, J = 8.0 Hz), 8.21 (1H, d, J = 8.0 Hz), 8.55 (1H, d, J = 1.2 Hz), 9.16 (1H, s), 10.25 (1H, br), 13.10 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 119.5, 119.6, 120.1, 120.5, 120.8, 124.4, 125.2, 125.7, 126.3, 133.4, 135.5, 142.3, 143.2, 144.2, 155.7, 160.9; IR (KBr): 3294, 1677, 1589, 1469 cm-1; MS (EI): m/z 348 (M+); HRMS: calcd for C17H11F3N2O3 348.0722, found 348.0732.
収率: 71%; mp: 256-257℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 7.06-7.15 (2H, m), 7.24 (1H, dd, J = 6.1, 2.5 Hz), 7.49 (1H, d, J=8.0 Hz), 7.62 (1H, t, J=8.0 Hz), 7.79 (1H, d, J = 8.0 Hz), 8.22 (1H, s), 8.52 (1H, s), 9.18 (1H, s), 13.20 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 115.7, 119.3, 119.6, 119.9, 120.2, 122.7, 123.3, 124.2, 129.6, 130.0, 130.3, 139.0, 142.0, 142.5, 144.0, 155.9, 160.4; IR (KBr): 3282, 1668, 1575, 1470 cm-1; MS (EI): m/z 348 (M+); HRMS: calcd for C17H11F3N2O3 348.0722, found 348.0732.
収率: 78%; mp: 271-272℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 7.07-7.13 (2H, m), 7.25 (1H, dd, J = 6.7, 2.4 Hz), 7.74 (2H, d, J = 8.6 Hz), 7.88 (2H, d, J = 8.6 Hz), 8.53 (1H, d, J = 1.8 Hz), 9.17 (1H, s), 13.24 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 119.3, 119.5, 119.6, 119.9, 120.2, 124.1, 126.3, 141.7, 142.0, 144.0, 155.9, 160.4; IR (KBr): 3335, 1687, 1579, 1474 cm-1; MS (EI): m/z 348 (M+); HRMS: calcd for C17H11F3N2O3 348.0722, found 348.0732.
収率: 60%; mp: 236-237℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 7.10-7.15 (2H, m), 7.27 (1H, dd, J = 7.0, 2.1 Hz), 8.04 (1H, s), 8.12 (1H, d, J = 8.6 Hz), 8.59 (1H, s), 8.62 (1H, d, J = 8.6 Hz), 9.23 (1H, s), 13.61 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 118.9, 119.2, 119.6, 120.0, 120.1, 120.3, 122.0, 123.3, 124.2, 124.6, 125.0, 130.3, 139.2, 142.1, 143.5, 144.0, 155.5, 160.0; IR (KBr): 3333, 1680, 1561, 1470 cm-1; MS (EI): m/z 416(M+); HRMS: calcd for C18H10F6N2O3 416.0596, found 416.0600.
収率: 76%; mp: 235-236℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.38 (6H, d, J = 6.7 Hz), 3.39 (1H, sept, J = 6.7 Hz), 7.25-7.49 (4H, m), 7.51 (1H, dd, J = 8.0, 1.5 Hz), 8.24 (1H, dd, J = 8.0, 1.5 Hz), 8.69 (1H, d, J = 1.5 Hz), 9.26 (1H, s), 12.78 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 22.9, 27.5, 119.4, 119.6, 120.0, 120.2, 122.6, 124.1, 124.8, 125.3, 126.0, 135.2, 139.0, 142.0, 142.2, 144.0, 156.0, 160.0; IR (KBr): 3305, 1676, 1564, 1474 cm-1; MS (EI): m/z 322(M+); HRMS: calcd for C19H18N2O3 322.1317, found 322.1321.
収率: 80%; mp: 235-236℃; 1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ 1.21 (6H, d, J = 6.7 Hz), 2.90 (1H, sept, J = 6.7 Hz), 7.02 (1H, d, J = 8.0 Hz), 7.08-7.10 (2H, m), 7.22 (1H, dd, J = 6.1, 3.1 Hz), 7.29 (1H, t, J = 8.0 Hz), 7.47 (1H, s), 7.55 (1H, d, J = 8.0 Hz), 8.49 (1H, d, J = 1.2 Hz), 9.08 (1H, s), 12.81 (1H, s); 13C-NMR (125 MHz, DMSO-d6) δ 23.8, 33.4, 117.2, 117.5, 119.4, 119.6, 120.0, 122.1, 124.1, 129.0, 138.3, 141.9, 142.0, 144.0, 149.4, 155.9, 159.7; IR (KBr): 3296, 1667, 1569, 1470 cm-1; MS (EI): m/z 322(M+); HRMS: calcd for C19H18N2O3 322.1317, found 322.1321.
AKR1C3 cDNAを組み込んだpkk223-3ベクターのプラスミドによって形質転換された大腸菌JM109を50μg/mLアンピシリンを含むLB培養液中に懸濁して37℃で一晩培養した。その大腸菌を1 LのLB培養液に植菌し、600 nmにおける濁度が0.4 - 0.6になるまで37℃で培養した後、isopropyl-β-D-galactopyranoside (IPTG) を終濃度が1 mMになるように添加し、37℃にてさらに8時間培養した。リコンビナント酵素の発現を誘導した大腸菌は、遠心分離 (5,000 x g、15分間、4℃) により集菌し、0.5 mM EDTAと5 mM 2-mercaptoethanol (2-ME) を含む10 mM Tris-HCl (pH 8.0) に懸濁した。この懸濁液を氷冷下超音波処理(150 W、5分間)した後、遠心分離 (12,000 x g、15分間、4℃) し、その上清を大腸菌粗抽出液とした。粗抽出液を0.15 M NaCl、20 % グリセロールを添加したbuffer A (10 mM Tris-HCl、0.5 mM EDTA、5 mM 2-ME; pH 8.0) で平衡化したSephadex G-100カラムを用いてゲル濾過を行った。溶出した酵素画分をYM-10限外濾過膜を用いて濃縮後、buffer Aに対して透析し、buffer Aで平衡化したQ-Sepharose カラムに添加した。未吸着タンパク質をbuffer Aで洗浄後、吸着した酵素を0 - 0.2 M NaClまでグラジエントにより溶出した。酵素活性画分をYM-10限外濾過膜を用いて濃縮後、buffer Aで平衡化したRed A-Sepharoseカラムに添加した。Buffer Aでカラムを洗浄後、酵素画分を0.5 mM NADP+を含むbuffer Aにより溶出した。AKR1C3精製標品はsodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) 分析後のcoomassie brilliant blue (CBB) R250染色において、単一のバンドを示した。
AKR1C1、AKR1C4はMatsuuraらの方法 [Matsuura et al., Biochem. J., 336, 429-436. (1998)]、AKR1C2はShiraishiらの方法 [Shiraishi et al., Biochem. J., 334, 399-405] に従って均一に精製した。
AKR1Cアイソフォーム (AKR1C1、AKR1C2、AKR1C3) の脱水素酵素活性は、以下の反応系におけるNADPHの生成速度を蛍光分光学的 (Ex. 340 nm、Em. 455 nm) に測定した。標準反応系は、0.1 M リン酸カリウム緩衝液 (pH 7.4)、0.25 mM NADP+、S-(+)-1,2,3,4-tetrahydro-1-naphthol (S-tetralol) および酵素を含む全量2.0 mLとした。酵素活性1 unit (U) は、25℃において1分間に1μmolのNADPHを生成する酵素量とした。阻害剤のIC50値は、0.1 M リン酸カリウム緩衝液 (pH 7.4)、0.25 mM NADP+、S-tetralol (AKR1C1の場合は0.1 mM、他のAKR1Cアイソフォームでは1 mM) および酵素を含む全量2.0 mLの反応系にて、5点の異なる濃度の阻害剤を添加した時の阻害率から算出した。これらの阻害定数は少なくとも3回以上の測定の平均値 ± 標準偏差で表した。
CWR22Rv1、PC3及びSC3細胞は37℃、5% CO2条件下の炭酸ガスインキュベーター内で培養した。増殖培地として、CWR22Rv1細胞は、10% (v/v) FBS、100 U/ml penicillin-G potassium、100μg/ml streptomycin sulfate及び10 mM [4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethane sulfonic acid] HEPES緩衝液 (pH 7.0) を含むRPMI1640を用いた。また、PC3及びSC3細胞の増殖培地としては、10% (v/v) FBS、100 U/ml penicillin-G potassiumおよび100μg/ml streptomycin sulfateを含むDMEM (pH 7.4) を用いた。細胞の剥離には0.25% trypsinおよび0.02% ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) を含むDulbecco's phosphate buffered saline (DPBS) (pH 7.4) を用いた。
増殖培地に懸濁した細胞を48-well multiplate中に3×104 cells / 300μLずつ播種し、CO2インキュベーター内で一晩培養した。CWR22Rv1細胞では、抗生物質と2%の活性炭処理済血清 (charcoal stripped fetal bovine serum; CS-FBS) を含み、フェノールレッド不含のRPMI培地に交換して、PC3細胞では、抗生物質と2% FBSを含む培地に交換して2時間培養後、培地中に試料を添加してさらに24時間培養した後、24および72時間後の生細胞数を細胞生存率の測定に従って測定した。各処理時間後のMTTの吸光度を、ヒトリンパ腫由来U937細胞を用いて標準化し、生細胞数を算出した。また、アンドロゲン受容体に対するアゴニスト活性とアンタゴニスト活性の評価には野生型アンドロゲン受容体を発現するSC-3細胞を用いた。増殖培地に懸濁したSC-3細胞を3.5mm dishに4×104 cells / 2mLずつ播種し、CO2インキュベーター内で一晩培養した。抗生物質と2% CS-FBSを含み、フェノールレッド不含のRPMI培地に交換して、2時間培養後、培地中に各種濃度の試料を添加してさらに24時間培養した後、生細胞数を細胞生存率の測定に従って測定した。
細胞からTRIzol試薬とRNAlater試薬を用いてtotal RNAを単離した。一本鎖complementary DNA (cDNA) はReverTra Ace qPCR RT Master Mix (Toyobo) を用いて調製した。調製したcDNA (5μg) を鋳型とし、PSAの特異的プライマー (Forward primer: 5’-CCTCCTGAAGAATCGATTCCT-3’(配列番号1)とreverse primer: 5’-GAGGTCCACACACTGAAGTT-3’ (配列番号2)) を用いてTHUNDERBIRD SYBR qPCR Mix (Toyobo) を用いてquantitative PCR (qPCR) を行った。内標準物質として、ヒトβ-actinのcDNAを増幅しqPCRにはTakara Thermal Cycler Dice Real-Time PCR Systemを用いた。
増殖培地に懸濁した細胞を96-well multiplate中に3×104 cells/200μLずつ播種し、CO2インキュベーター内で一晩培養した。抗生物質と2% CS-FBSを含み、フェノールレッド不含の培地に交換して2時間培養後、培地中に試料を添加して、さらに24時間培養し、培地を回収した。Testosterone EIA kit (Cayman) を用いて、培地中のtestosterone量を測定した。
処理した細胞をDPBSで2回洗浄後、セルスクレイパーを用いて細胞を剥離した。回収した細胞を遠心分離 (1,500 ×g、3分間) し、上清を除去した後、buffer A [1 M HEPES (pH 7.9)、1 M KCl、0.5 M EDTA、1 M dithiothreitol (DTT)、100 mM phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF)] 300μlで懸濁し、氷冷下で15分間、静置した。次に、10% NP-40を加え、遠心分離 (500 ×g、3分間) を行った。上清を除去した後、buffer A 600μlで懸濁し、遠心分離 (500 ×g、1分間) を行った。上清を除去した後、buffer B [1 M HEPES (pH 7.9)、5 M NaCl、0.5 M EDTA、1 M DTT、100 mM PMSF] 80μlで懸濁し、氷冷下で15分間、静置した。次に、懸濁液を遠心分離 (15,000 ×g、15分間) し、上清を除去した後、8 M Urea、10 mM Tris (hydroxymethyl) aminomethane、50 mM Na2H2PO4を含むUrea bufferで懸濁したものを核抽出液とした。抗アンドロゲン受容体 (AR) 抗体を用いたウエスタンブロットにて核内AR量を測定した。
細胞をDPBSで3回洗浄後、セルスクレイパーを用いて細胞を剥離した。回収した細胞は、細胞溶解buffer [1 M Tris-HCl (pH 7.4)、0.5 M EDTA (pH 8.0)、10% Triton X-100] 100μLに溶解し、DNA断片を抽出した。4℃にて10分間静置後、遠心して得られた上清に10 mg/ml TE buffer [1M Tris-HCl (pH 7.4)、0.5 M EDTA (pH 8.0)] に溶解したRNase A 溶液2μLを加え、37℃で60分間インキュベートした。次に、10 mg/ml proteinase K 溶液2μLを加え、50℃、30分間インキュベートした後、5 M NaClとイソプロバノールをそれぞれ5μLと120μL加え、-30℃で一晩置いた。遠心分離して、単離したDNAをTEバッファー20μLに溶解し、2% アガロースゲルで電気泳動後、エチジウムブロマイド染色し、UV照射下にて検出した。
処理した細胞をDPBSで3回洗浄後、セルスクレイパーを用いて細胞を剥離した。回収した細胞は、Urea bufferで懸濁してソニケーションにより細胞膜を破壊した。細胞破砕液を遠心分離 (15,000 ×g、15分間、4℃) し、その上清を細胞抽出液とした。cleaved PARPとβ-actinは 12.5%ポリアクリルアミドゲルを、Bax、Bcl-2は15%ポリアクリルアミドゲルを用いたSDS-PAGEにより分離後、ゲル上のタンパク質を電気的にPVDF膜に転写した。PVDF膜は、BSA又はスキムミルクを用いてブロッキング後、Bcl-2、Bax、Cleaved PARP、ヒトβ-actinに対する一次抗体とhorseradish peroxidase標識二次抗体と順次反応させた。抗体反応性タンパク質はECL enhanced chemiluminescence detection kit (GE healthcare) を用いた化学発光法により検出した。
増殖培地に懸濁した細胞を24-well multiplate中に7.5×104 cells/500μLずつ播種し、37℃、5% CO2条件下で一晩培養した。培地を除去後、DPBSで細胞を2回洗浄した。4% paraformaldehyde phosphate buffer solution 300μLを加え、10分間固定し、0.1% Triton X-100、100 mM glycineを含むDPBS 300μLを加え、10分間静置した。0.1 % Tween 20、1% BSAを含むDPBS 300μLを加え、1時間ブロッキングし、DPBSで2回洗浄後、DPBSに300 : 1 に希釈した一次抗体 (抗Caspase-3抗体) 液中に、4℃で一晩インキュベートした。PBSで2回洗浄後、DPBSに500 : 1 で希釈したAlexa Fluoro-488標識したウサギ二次抗体液中に、室温で1時間遮光してインキュベートした。PBSで2回洗浄後、余分な水分を除去し、スライドグラス上にマウント剤 (DAPI fluoromount-G) を用いてカバーグラスを固定した。蛍光免疫染色した細胞を、共焦点レーザー顕微鏡LSM700 (Carl Zeiss) にセットし、蛍光観察を行った。倒立型蛍光顕微鏡の100倍油浸対物レンズを用いて、画像を取り込んだ。
6週齢Balb/c nu/nuマウスの皮下に5×105個のCWR22Rv1細胞を移植し、ランダムにコントロールとしてDMSOを投与した群 (n=15) と100 mg/kgの化合物2lを投与した群 (n=10) を用意し、週に2回腹腔内投与した。週に一回体重および腫瘍径 (長径、短径) を計測し、腫瘍体積は近似値として(長径)2×短径/2の式で算出した。
1. クロメン誘導体を基にした新規AKR1C3阻害剤の創製研究
予備的に見出したAKR1C3阻害活性を有するクロメン骨格を有する化合物をリード化合物とし、構造最適化研究を行った。8位の水産基がAKR1C3阻害活性に必須であることが明らかとなったため24種の8-ヒドロキシクロメン誘導体を合成し、AKR1C3阻害活性を評価した (表1)。4位にフルオロ基を有する2dと同様に無置換体である2aに加えて、ベンゼン環にフルオロ基、クロル基、メチル基、エチル基を導入した誘導体2b-mはいずれも強力なAKR1C3阻害活性を有し、中でも4位にメチル基を有する2jはIC50値が9.1 nMと最も強力な阻害活性を示した。フルオロ基の数を2つあるいは3つに増やした誘導体2qと2rの阻害活性は2dよりも若干低下した。ベンゼン環のメチル基をフルオロメチル基に置換しても2s-vの阻害効果はほとんど変わらなかった。また2jより炭素鎖を一つ伸ばした誘導体2wと2xの阻害活性は低下した。一方、3位に水酸基を有する2oが強い阻害活性を示したのに対して、2位及び4位に水酸基を有する2nと2pはほとんどAKR1C3を阻害しなかった。
精製酵素を用いた検討において強力なAKR1C3阻害活性を示した2d、2jと2lの前立腺がん細胞増殖抑制効果について、AKR1C3が高発現するCWR22Rv1細胞を用いて種々検討を行った。アンドロゲンの供給源をプレグネノロン(pregnenolone)またはアンドロステンジオン(androstenedione)に限定するため、培地には2% CS-FBSを含むフェノールレッド不含のRPMI1640を用いた。まず、CWR22Rv1細胞に細胞増殖を誘導するpregnenolone濃度の最適化を行った。Pregnenoloneは濃度依存的に細胞の生細胞数を増加させ、その効果は20 nMで最も高かった (図1A)。そこで、この後の検討には、最も細胞増殖の誘導が認められた20 nM pregnenoloneを使用した。Pregnenolone誘導性細胞増殖は、ARアンタゴニストであるフルタミド(flutamide)とエンザルタミド(enzalutamide)やCYP17A1阻害剤であるアビラテロン(abiraterone)と同様に、AKR1C3阻害剤2d、2jと2lによって抑制された (図1B)。これらAKR1C3阻害剤による増殖抑制効果はabirateroneほどではないが、flutamideとenzalutamideに匹敵した。
強力且つ選択的なAKR1C3阻害活性を示す複数の8-ヒドロキシクロメン誘導体が見出された。即ち、有用性の高い新規AKR1C3阻害剤の開発に成功した。新規AKR1C3阻害剤は前立腺がん細胞の増殖を抑制した。また、代表的な化合物を用いた実験によって、in vivoでの抗腫瘍効果も確認された。重要なことの一つは、新規AKR1C3阻害剤は、ARを発現していない前立腺がん細胞に対しても細胞増殖抑制活性を示し、CRPCの治療への適用も期待されるものであった。
配列番号2:人工配列の説明:リバースプライマー
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