JP7138989B1

JP7138989B1 - メソテリンに特異的に結合する抗メソテリンキメラ抗原受容体

Info

Publication number: JP7138989B1
Application number: JP2021560580A
Authority: JP
Inventors: ジェヒョンアン，; ナギョンハン，
Original assignee: セレンジーンインコーポレイテッド
Priority date: 2020-08-04
Filing date: 2021-04-30
Publication date: 2022-09-20
Anticipated expiration: 2041-04-30
Also published as: CA3133678A1; CA3133678C; US11795215B2; AU2021245153A1; CN114364702A; JP2022543333A; US20230151082A1; EP4194467A1; CN114364702B; AU2021245153B2

Abstract

メソテリンに特異的に結合する抗メソテリンキメラ抗原受容体に係り、該抗メソテリンキメラ抗原受容体は、メソテリンに対する特異的結合能を示し、メソテリンが過発現される癌の予防または治療に有用に使用されうる。

Description

本発明は、メソテリンに特異的に結合する抗メソテリンキメラ抗原受容体に関する。

最近、免疫チェックポイント阻害剤、ＣＡＲ－Ｔ細胞治療剤のような免疫抗癌剤が、多様な癌において、効果を立証しているが、固形癌は、そのような新たな形態の免疫抗癌剤にも、治療効率が大きく反応しないと報告される。それは、腫瘍を覆い包む繊維組織が、免疫治療反応を妨害し、薬物伝達が困難であるためであると推定される。従って、特異的であり、さらに効果的なＣＡＲ－Ｔ癌治療方法として、固形癌細胞表面に特異的に過発現される蛋白質を、癌抗原をもって標的とする抗体を開発し、それを利用し、効果的に固形癌を治療することができる方法に係わる研究の必要性が高まっている。

一方、メソテリンとは、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）ドメインにより、細胞表面にアンカリングされた糖蛋白質であり、人体の腔（cavity）と内部器官とを取り囲む中皮（mesothelium）に制限的に低く発現することが正常であるが、膵臓癌、中皮腫、卵巣癌、非小細胞性肺癌などの癌で多量に発現されると知られている。

一態様は、抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片を提供するものである。

他の態様は、前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片をコーディングする分離された核酸を提供するものである。

さらに他の態様は、前記分離された核酸を含むベクターを提供するものである。

さらに他の態様は、前記ベクターで形質転換された宿主細胞を提供するものである。

さらに他の態様は、前記宿主細胞を培養し、抗体を発現させる段階を含む抗メソテリン抗体を製造する方法を提供するものである。

さらに他の態様は、抗原結合ドメイン、ヒンジ（hinge）ドメイン、膜貫通ドメイン及び細胞内信号伝逹ドメインを含むキメラ抗原受容体を提供するものである。

さらに他の態様は、前記キメラ抗原受容体をコーディングするポリヌクレオチドを提供するものである。

さらに他の態様は、前記ポリヌクレオチドを含むベクターを提供するものである。

さらに他の態様は、前記ベクターで形質転換された細胞を提供するものである。

さらに他の態様は、前記細胞を含む薬学的組成物、前記細胞の医薬的用途、及び治療学的有効量の前記細胞を個体に投与する段階を含む、癌を予防または治療する方法を提供するものである。

本出願の他の目的、及び利点は、添付された請求範囲及び図面と共に、下記の詳細な説明により、さらに明確になるであろう。本明細書に記載されてない内容は、本出願の技術分野、または類似した技術分野における当業者であるならば、十分に認識して類推することができるでものであるので、その説明を省略する。

本出願で開示されたそれぞれの説明及び実施例は、それぞれの他の説明及び実施例にも適用されうる。すなわち、本出願で開示された多様な要素の全ての組み合わせが、本出願の範疇に属する。また、下記の具体的な敍述により、本出願の範疇が制限されると見ることはできない。

一態様は、抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片を提供する。

前記「メソテリン（ＭＳＬＮ：mesothelin）」とは、総アミノ酸長が６３０ａａである細胞表面糖蛋白質（ＮＣＢＩＧｅｎｅＩＤ：１０２３２）であり、一部細胞、特に、特定腫瘍細胞で選択的に発現されるが、以下に、メソテリン蛋白質のアミノ酸配列を示す。

MALPTARPLLGSCGTPALGSLLFLLFSLGWVQPSRTLAGETGQEAAPLDGVLANPPNISSLSPRQLLGFPCAEVSGLSTERVRELAVALAQKNVKLSTEQLRCLAHRLSEPPEDLDALPLDLLLFLNPDAFSGPQACTRFFSRITKANVDLLPRGAPERQRLLPAALACWGVRGSLLSEADVRALGGLACDLPGRFVAESAEVLLPRLVSCPGPLDQDQQEAARAALQGGGPPYGPPSTWSVSTMDALRGLLPVLGQPIIRSIPQGIVAAWRQRSSRDPSWRQPERTILRPRFRREVEKTACPSGKKAREIDESLIFYKKWELEACVDAALLATQMDRVNAIPFTYEQLDVLKHKLDELYPQGYPESVIQHLGYLFLKMSPEDIRKWNVTSLETLKALLEVNKGHEMSPQAPRRPLPQVATLIDRFVKGRGQLDKDTLDTLTAFYPGYLCSLSPEELSSVPPSSIWAVRPQDLDTCDPRQLDVLYPKARLAFQNMNGSEYFVKIQSFLGGAPTEDLKALSQQNVSMDLATFMKLRTDAVLPLTVAEVQKLLGPHVEGLKAEERHRPVRDWILRQRQDDLDTLGLGLQGGIPNGYLVLDLSMQEALSGTPCLLGPGPVLTVLALLLASTLA（配列番号４０）

メソテリンは、正常中皮細胞（mesothelial cells）においては、低い発現を示すが、固形癌（固形腫瘍）において高く発現され、食道癌（esophageal cancer）、乳癌（breast cancer）、三重陰性乳癌（ＴＮＢＣ：triple-negative breast cancer）、胃癌（gastric cancer）、胆管癌（cholangiocarcinoma）、膵臓癌（pancreatic cancer）、大腸癌（colon cancer）、肺癌（lung cancer）、胸腺癌（thymic carcinoma）、中皮腫（mesothelioma）、卵巣癌（ovarian cancer）、子宮内膜癌（endometrial cancer）、子宮頸癌（cervical cancer）、子宮体部漿液性腺癌（ＵＳＣ：uterine serous carcinoma）及び小児急性骨髄性白血病（ＡＭＬ：acute myeloid leukemia）などで過発現が確認された（Cancer Discov. 2016 Feb; 6(2): 133-46; J Reprod Immunol. 2020, 139: 103115; Gynecol Oncol. 2007, 105(3): 563-570; Eur J Haematol. 2007, 79(4): 281-286）。

一実施例においては、ファージディスプレイ抗体ライブラリーパニングを介し、標的抗原であるメソテリンに特異的に結合する抗体として、ＭＳＬＮ３４、ＭＳＬＮ３７及びＭＳＬＮ３８を製造した。

本明細書において、用語「抗体」とは、抗原に選択的に作用し、生体免疫に関与する蛋白質の総称を言うものであり、その種類は、特別に制限されるものではない。抗体の重鎖と軽鎖は、可変領域を含むエピトープを認識する抗原結合部位を有しており、可変領域の配列変化により、抗原特異性がしめされることになる。抗原結合部位の可変領域は、可変性が少ない構造領域（ＦＲ：framework region）と、可変性が大きい相補性決定領域（ＣＤＲ：complementarity determining region）とに分けら、重鎖と軽鎖とのいずれも、ＣＤＲ１，２，３に分けられる、３個のＣＤＲ部位と、４個のＦＲ部位とを有する。それぞれの鎖のＣＤＲは、典型的に、Ｎ末端から始め、順次にＣＤＲ１、ＣＤＲ２、ＣＤＲ３と命名され、また特定ＣＤＲが位置している鎖によって識別される。

本明細書において、用語「相補性決定領域」とは、抗体の可変領域において、抗原との結合特異性を付与する部位を意味する。

本明細書において、用語「エピトープ」とは、抗体が特異的に結合することができる抗原分子内の特定立体分子構造を意味する。

前記抗体は、単一クローン抗体、多特異性抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体（例えば、ヒト化ミュリン抗体）をいずれも含む。また、前記抗体は、ダイアボディ、トリアボディ、及びテトラボディを含むものでもある。

本明細書において、抗体とは、抗原結合能を保有した抗体の「抗原結合断片」または「抗体断片」を含む。前記抗原結合断片は、相補性決定領域を１以上含む抗体断片、例えば、ｓｃＦｖ、（ｓｃＦｖ）２、ｓｃＦｖ－Ｆｃ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’及びＦ（ａｂ’）２からなる群のうちからも選択される。抗体断片においてＦａｂは、軽鎖及び重鎖の可変領域、軽鎖の不変領域、及び重鎖の最初不変領域（ＣＨ１）を有する構造であり、１個の抗原結合部位を有する。Ｆａｂ’は、重鎖ＣＨ１ドメインのＣ末端に、１以上のシステイン残基を含むヒンジ領域（hinge region）を有するという点において、Ｆａｂと違いがある。Ｆ（ａｂ’）２抗体は、Ｆａｂ’のヒンジ領域のシステイン残基が、ジスルフィド結合をなしながら生成される。Ｆｖは、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域だけを有している最小の抗体切片である。二本鎖Ｆｖ（two-chain Ｆｖ）は、非共有結合により、重鎖可変領域と軽鎖可変領域とが連結されている。一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ：single-chain Ｆｖ）は、一般的に、ペプチドリンカを介し、重鎖の可変領域と、軽鎖の可変領域とが共有結合で連結されるか、あるいはＣ末端で直に連結されており、二本鎖Ｆｖのように、ダイマーのような構造をなすことができる。

一態様の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号１からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号２からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号５からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３；または

配列番号１３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号１４からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号１５からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号１６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号１７からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号１８からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３を含むことを特徴ともする。

前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号１９または２３からなるアミノ酸配列と、８０％以上の配列相同性（sequence homology）、望ましくは、９０％以上の配列相同性、さらに望ましくは、９５％以上の配列相同性、さらに一層望ましくは、１００％の相同性を有する配列を含む重鎖可変領域を含むことを特徴ともする。

前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号２０または２４からなるアミノ酸配列と、８０％以上の配列相同性、望ましくは、９０％以上の配列相同性、さらに望ましくは、９５％以上の配列相同性、さらに一層望ましくは、１００％の相同性を有する配列を含む軽鎖可変領域を含むことを特徴ともする。

前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号１９からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２０からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含むことを特徴ともする。

前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含むことを特徴ともする。

一具体例において、前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号１９からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２０からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリンｓｃＦｖでもある（抗ＭＳＬＮ３４ｓｃＦｖ）。

他の具体例において、前記抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片は、配列番号２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリンｓｃＦｖでもある（抗ＭＳＬＮ３８ｓｃＦｖ）。

前記一態様による抗体、またはその抗原結合断片は、メソテリンを特異的に認識することができる範囲内において、本明細書に記載された抗メソテリン特異的結合抗体の配列だけではなく、その生物学的均等物も含んでもよい。例えば、抗体の結合親和度及び／またはその他生物学的特性をさらに一層改善させるために、抗体のアミノ酸配列にさらなる変化を与えることができる。

例えば、前記抗体は、保存的置換を介し、抗体のアミノ酸配列が置換されうる。ここで、「保存的置換」とは、１個以上のアミノ酸を、当該ポリペプチドの生物学的または生化学的な機能の損失を引き起こさない類似した生化学的特性を有するアミノ酸で置換されることを含むポリペプチドの変形を称する。「保存的アミノ酸置換」とは、アミノ酸残基を、類似した側鎖を有するアミノ酸残基で代替させる置換である。類似した側鎖を有するアミノ酸残基部類は、当業界に規定されている。それら部類は、塩基性側鎖を有するアミノ酸（例えば、リシン、アルギニン、ヒスチジン）、酸性側鎖を有するアミノ酸（例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸）、帯電されていない極性側鎖を有するアミノ酸（例えば、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、チロシン、システイン）、非極性側鎖を有するアミノ酸（例えば、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン）、ベータ分枝された側鎖を有するアミノ酸（例えば、トレオニン、バリン、イソロイシン）、及び芳香族側鎖を有するアミノ酸（例えば、チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）を含む。一態様による抗体が、保存的アミノ酸置換を介し、抗体の一部アミノ酸配列が置換されても、依然として本来の活性を保有することができるということを予想することができる。

前述の生物学的均等活性を有する変異を考慮するならば、一態様の抗体、またはそれをコーディングする核酸分子は、配列番号に記載された配列と実質的な同一性（substantial identity）を示す配列も含むと解釈される。前述の実質的な同一性は、前述の配列と、任意の他の配列とを、最大限対応されるように整列させ、当業界で一般的に利用されるアルゴリズムを利用して整列された配列を分析した場合、最小６１％の相同性、望ましくは、７０％の相同性、さらに望ましくは、８０％の相同性、さらに一層望ましくは、９０％の相同性、さらに一層望ましくは、９５％の相同性、最も望ましくは、９８％の相同性を示す配列を意味する。配列比較のためのアラインメント方法は、当業界に公知されている。

他の態様は、前記抗体、またはその抗原結合断片をコーディングする分離された核酸を提供する。

本明細書において、用語「核酸」とは、ＤＮＡ分子及びＲＮＡ分子を包括的に含む意味であり、核酸において基本構成単位であるヌクレオチドは、自然のヌクレオチドだけではなく、糖部位または塩基部位が変形された類似体（analogue）も含む。一態様の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域をコーディングする核酸の配列は、変形されうる。前記変形は、ヌクレオチドの追加、欠失、または非保存的置換または保存的置換を含む。

前記核酸は、前記核酸のヌクレオチド配列につき、実質的な同一性を示すヌクレオチド配列も含むと解釈される。実質的な同一性は、一態様のヌクレオチド配列と、任意の他の配列とを、最大限対応されるように整列させ、当業界で一般的に利用されるアルゴリズムを利用して整列された配列を分析した場合、最小８０％の相同性、さらに望ましくは、最小９０％の相同性、最も望ましくは、最小９５％の相同性を示すヌクレオチド配列を意味する。

さらに他の態様は、前記分離された核酸を含むベクターを提供する。前記ベクターは、適する宿主細胞（host cell）において、抗体、またはその抗体断片の発現のために、部分的であるか、または全長である軽鎖及び重鎖をコーディングするＤＮＡを、標準分子生物学技術（例えばＰＣＲ増幅、または目的抗体を発現するハイブリドーマを使用したｃＤＮＡクローニング）によって得ることができ、ＤＮＡ（遺伝子）挿入物が発現されうるように、作動可能に連結された必須な調節要素を含んでもよい。「作動可能に連結された（operably linked）」とは、一般的機能を遂行するように、核酸発現調節配列と、目的とする蛋白質またはＲＮＡをコーディングする核酸配列とが、機能的に連結（functional linkage）されていることであり、発現調節配列によって遺伝子が発現されうるように連結されたことを意味する。前記「発現調節配列（expression control sequence）」とは、特定の宿主細胞において、作動可能に連結されたＤＮＡ配列の発現を調節するＤＮＡ配列を意味する。そのような調節配列は、転写を実施するためのプローモーター、転写を調節するための任意のオペレーター配列、適するｍＲＮＡリボゾーム結合部位をコーディングする配列、転写及び解読の終結を調節する配列、開始コドン、終結コドン、ポリアデニル化シグナル、及びエンハンサなどを含む。当業者であるならば、形質転換させる宿主細胞の選択、蛋白質の発現レベルのような因子により、調節配列を異なって選択し、発現ベクターのデザインが異なりうるということを認識することができるであろう。

前記ベクターは、クローニングと抗体製造との分野において、一般的に使用されるベクターであるならば、その種類が特別に制限されるものではなく、その例としては、プラスミドベクター、コスミドベクター、バクテリオファージベクター及びウイルスベクターなどを含むが、それらに制限されるものではない。前記プラスミドには、大腸菌由来プラスミド（ｐＢＲ３２２、ｐＢＲ３２５、ｐＵＣ１１８及びｐＵＣ１１９、並びにｐＥＴ－２１ｂ（＋））、枯草菌（Bacillus subtilis）由来プラスミド（ｐＵＢ１１０及びｐＴＰ５）並びに酵母由来プラスミド（ＹＥｐ１３、ＹＥｐ２４及びＹＣｐ５０）などがあり、前記ウイルスは、レトロウイルス、アデノウイルスまたはワクシニアウイルスのような動物ウイルス；バキュロウイルスのような昆虫ウイルスなどが使用されうる。ファージ表示などに一般的に使用されるｐＣｏｍｂ３系のベクターを使用することもでき、抗体を哺乳類細胞で発現させるために、哺乳類細胞において、蛋白質を発現するために一般的に使用されるベクター、例えば、ｐｃＤＮＡやｐＶＩＴＲＯのようなベクターを使用することができる。

さらに他の態様は、前記ベクターで形質転換された宿主細胞を提供する。

本明細書において、用語「形質転換（transformation）」とは、本来の細胞が有していたところと異なる種類の外来遺伝子が存在するＤＮＡ鎖切片またはプラスミドが細胞間に浸透され、本来の細胞に存在したＤＮＡと結合することにより、細胞の遺伝形質を変化させる分子生物学的技術を意味する。前記ベクターは、宿主細胞に形質注入またはトランスフェクション（transfection）される。形質注入またはトランスフェクションさせるために、原核または真核の宿主細胞内に、外因性核酸（ＤＮＡまたはＲＮＡ）を導入するのに、一般的に使用されるさまざまな種類の多様な技術、例えば、電気泳動法、リン酸カルシウム沈澱法、ＤＥＡＥ・デキストラントランスフェクションまたはリポフェクション（lipofection）などを使用することができる。一態様による抗体、またはその抗原結合断片は、バクテリア（Ｅ．ｃｏｌｉ）や酵母（yeast）のような微生物、または哺乳類細胞への適用可能性を考慮し、真核細胞、望ましくは、哺乳類宿主細胞においても発現される。前記哺乳類宿主細胞は、例えば、中国ハムスター卵巣（ＣＨＯ：Chinese hamster ovary）細胞、ＮＳＯ骨髄腫細胞、ＣＯＳ細胞、ＳＰ２細胞、Ｆ２Ｎ細胞、ＨＥＫ２９３細胞及び抗体生産ハイブリドーマ細胞からなる群のうちから選択されたいずれか一つでもあるが、それらに制限されるものではない。

さらに他の態様は、前記宿主細胞を培養し、抗体を発現させる段階を含む抗メソテリン抗体を製造する方法を提供する。

前記方法は、一態様の抗体、またはその抗原結合断片を生産するための宿主細胞を、前記抗体、またはその抗原結合断片を暗号化するＤＮＡが作動可能に連結されたベクターで形質転換する段階を含んでもよい。選択された宿主細胞と組み換え発現ベクターとの種類は、前述の通りであり、適切な形質転換方法を選択し、本段階を実施することができる。前記抗体遺伝子をコーディングする組み換え発現ベクターが哺乳類宿主細胞内に導入される場合、抗体は、宿主細胞において、抗体が発現させるのに十分な期間の間、またはさらに望ましくは、宿主細胞が培養される培養培地内に抗体を分泌させるのに十分な期間の間、宿主細胞を培養することによっても製造される。

また、前記方法は、さらには、前記形質転換された宿主細胞を培養し、宿主細胞に導入された組み換え発現ベクターから、一態様による抗体、またはその抗原結合断片のポリペプチドが生産されるようにする段階を含んでもよい。選択された宿主細胞を培養するための培地組成、培養条件、培養時間などを適切に選択することができ、宿主細胞で生産される抗体分子は、細胞の細胞質内に蓄積されるか、あるいは適切な信号配列により、細胞外部または培養培地に分泌されるか、あるいはペリプラズムなどに標的化されるようにする。また、一態様による抗体が、メソテリンに対する結合特異性を維持するように、当業界に公知されている方法を利用し、蛋白質リフォールディングさせ、機能性構造を有するようにすることができる。また、ＩｇＧ形態の抗体を生産する場合、重鎖と軽鎖は、別個の細胞で発現させ、別途の段階において、重鎖と軽鎖とを接触させ、完全な抗体を構成するように製造することもでき、重鎖と軽鎖とを、同一細胞で発現されるようにし、細胞内部において、完全な抗体を形成するようにすることもできる。

また、前記方法は、宿主細胞で生産された抗体、またはその抗原結合断片を得る段階をさらに含んでもよい。宿主細胞で生産された抗体、またはその抗原結合断片のポリペプチドの特性、宿主細胞の特性、発現方式、またはポリペプチドの標的化いかんなどを考慮し、得る方法を適切に選択して調節することができる。例えば、培養培地に分泌された抗体、またはその抗原結合断片は、宿主細胞を培養した培地を得て、遠心分離して不純物を除去するような方法で抗体を回収することができ、必要によっては、細胞内特定小器官や、細胞質に存在する抗体を細胞外部に放出させて回収するために、抗体、またはその抗原結合断片の機能的構造に影響を及ぼさない範囲において、細胞を溶解させることもできる。

得られた抗体は、クロマトグラフィ、フィルタなどによる濾過、透析などの方法を介し、不純物をさらに除去して濃縮する過程をさらに経ることができる。得られた抗体の分離または精製は、一般的な蛋白質で使用されている分離方法、精製方法、例えば、クロマトグラフィによっても遂行される。前記クロマトグラフィは、例えば、蛋白質Ａカラム、蛋白質Ｇカラム、蛋白質Ｌカラムを含む親和性クロマトグラフィ、イオン交換クロマトグラフィ、または疎水性クロマトグラフィを含んでもよい。前記クロマトグラフィ以外に、さらには、濾過、超濾過、塩析、透析などを組み合わせることにより、抗体を分離、精製することができる。

さらに他の態様は、抗原結合ドメイン、ヒンジ（hinge）ドメイン、膜貫通ドメイン及び細胞内信号伝逹ドメインを含むキメラ抗原受容体を提供する。

前記キメラ抗原受容体は、メソテリンに特異的に結合することを特徴とするので、メソテリンに特異的に結合する抗原結合ドメインを含む。

前記抗原結合ドメインは、配列番号１からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号２からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号５からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３；あるいは

配列番号１３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号１４からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号１５からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号１６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号１７からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号１８からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３を含んでもよく、それらは、一態様による抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片と同一であるので、重複説明は省略する。

本明細書において、用語「キメラ抗原受容体（ＣＡＲ：chimeric antigen receptor）」とは、抗原結合（認識）ドメイン、膜貫通ドメイン及び細胞内信号伝逹ドメインが含まれ、キメラ抗原受容体の構造をなしているものを意味する。

一具体例において、前記抗原結合断片は、ｓｃＦｖ（single chain variable fragment）でもある。

前記キメラ抗原受容体に含まれるヒンジドメイン、膜貫通ドメイン及び細胞内信号伝逹ドメインは、当該技術分野に周知されている。

前記ヒンジドメインは、抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片と膜貫通ドメインとを連結するドメインであり、スペーサ（spacer）とも命名され、Ｔ細胞膜から、抗原結合ドメインを拡張させるための目的を有する。前記ヒンジドメインは、ＣＤ８ヒンジドメイン、ＩｇＧ１ヒンジドメイン、Ｉｇ４ヒンジドメイン、ＣＤ２８細胞外領域、ＫＩＲ（killer immunoglobulin-like receptor）細胞外領域、及びその組み合わせでもあるが、それらに制限されるものではなく、本技術分野で一般的に使用するヒンジドメインを使用することができる。

前記膜貫通ドメインは、キメラ抗原受容体分子の支持台役割を行うと共に、ヒンジドメインと細胞内信号伝逹ドメインとを連結することができる。該膜貫通ドメインは、キメラ抗原受容体の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片が細胞表面に位置し、細胞内信号伝逹ドメインが細胞内に位置するように、細胞の細胞膜を貫通することができる。前記膜貫通ドメインは、ＣＤ３ゼータ（ＣＤ３ｚ）、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ２８またはＫＩＲ蛋白質の膜貫通領域でもあり、望ましくは、ＣＤ８またはＣＤ２８の膜貫通ドメインを使用することができるが、キメラ抗原受容体製造に使用される一般的な膜貫通ドメインであるならば、制限なしに使用することができる。

前記細胞内信号伝逹ドメインは、抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片によって伝達された信号を受け、キメラ抗原受容体が結合された細胞内にそれを伝達する役割を行う。前記細胞内信号伝逹ドメインは、細胞外に存在する抗原結合部位に抗体が結合すれば、Ｔ細胞活性化をもたらすことができる信号を伝達する部分であるならば、特別にその種類に制限がなく、多様な種類の細胞内信号伝逹ドメインが使用されうる。前記細胞内信号伝逹ドメインは、例えば、免疫受容活性化チロシンモチーフ（immunoreceptor tyrosine-based activation motif）またはＩＴＡＭでもあり、前記ＩＴＡＭは、ＣＤ３ゼータ、ＦｃＲガンマ、ＦｃＲベータ、ＣＤ３ガンマ、ＣＤ３デルタ、ＣＤ３イプシロン、ＣＤＳ、ＣＤ２２、ＣＤ７９ａ、ＣＤ７９ｂ、ＣＤ６６ｄまたはＦｃεＲＩγに由来するものを含むが、それらに制限されるものではない。

また、一態様によるキメラ抗原受容体は、細胞内信号伝逹ドメインと共に、共刺激ドメイン（costimulatory domain）をさらに含んでもよい。

前記共刺激ドメインは、細胞内信号伝逹ドメインによる信号に加え、Ｔ細胞に信号を伝達する役割を行う部分であり、共刺激分子の細胞内ドメインを含む、キメラ抗原受容体の細胞内部分を意味する。

前記共刺激分子は、細胞表面分子として、抗原に対するリンパ球の十分な反応をもたらすのに必要な分子を意味し、その例として、ＣＤ２７、ＣＤ２８、４－１ＢＢ、ＯＸ４０、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＰＤ－１、ＩＣＯＳ、ＬＦＡ－１（lymphocyte function-associated antigen－１）、ＣＤ２、ＣＤ７、ＬＩＧＨＴ、ＮＫＧ２ＣまたはＢ７－Ｈ３でもあるが、それらに制限されるものではない。前記共刺激ドメインは、そのような共刺激分子、及びその組み合わせからなる群から選択された分子の細胞内部分でもある。

前記膜通過ドメイン、細胞内信号伝逹ドメインを含むキメラ抗原受容体の各ドメインは、選択的に、短いオリゴペプチドまたはポリペプチドのリンカによっても連結される。前記リンカは、細胞外に位置した抗体に抗原が結合したとき、細胞内ドメインを介するＴ細胞活性化を誘導することができるものであるならば、特別にその長さに制限されるものではなく、当業界に知られたリンカを使用することができる。

また、前記キメラ抗原受容体は、前述のような抗体及びドメインの変形された形態を含んでもよい。このとき、前記変形は、前記抗体及びドメインの機能を変形させず、野生型の抗体及びドメインのアミノ酸配列において、１以上のアミノ酸を置換、欠失または追加しても遂行される。一般的に、前記置換は、アラニンや、全体蛋白質の電荷、極性または疎水性に影響を与えない保存的アミノ酸置換（conservative amino acid substitution）によっても遂行される。

さらに他の態様は、前記キメラ抗原受容体をコーディングするポリヌクレオチドを提供する。

前記ポリヌクレオチドは、コドンの縮退性（degeneracy）により、または前記抗原受容体を発現させようとする生物において選好されるコドンを考慮し、コーディング領域から発現される抗原受容体のアミノ酸配列を変化させない範囲内において、コーディング領域に多様な変形がなされ、コーディング領域を除いた部分においても、遺伝子の発現に影響を及ぼさない範囲内において、多様な変形または修飾がなされ、そのような変形遺伝子も、本発明の範囲に含まれるということは、当業者であるならば、十分に理解することができるであろう。すなわち、一態様によるポリヌクレオチドは、それと同等な活性を有する蛋白質をコーディングする限り、１以上の核酸塩基が、置換、欠失、挿入、またはそれらの組み合わせによって変異され、それらも、本発明の範囲に含まれる。

さらに他の態様は、前記ポリヌクレオチドを含むベクター、及び前記ベクターで形質転換された細胞を提供する。

前記ベクターは、当分野に公知されたベクターを多様に使用することができ、前記抗原受容体を生産する宿主細胞の種類により、プローモーター（promoter）、ターミネーター（terminator）、エンハンサ（enhancer）のような発現調節配列、膜標的化または分泌のための配列などを適切に選択し、目的によって多様に組み合わせることができる。本発明のベクターは、プラスミドベクター、コスミドベクター、バクテリオファージベクター及びウイルスベクターなどを含むが、それらに制限されるものではない。適するベクターは、プローモーター、オペレーター、開始コドン、終結コドン、ポリアデニル化シグナル及びエンハンサのような発現調節エレメント以外にも、膜標的化または分泌のためのシグナル配列またはリーダー配列を含み、目的によって多様にも製造されえる。

また、前記ベクターを細胞に導入し、細胞を形質転換させることができ、前記細胞は、以下のところに制限されるものではないが、Ｔ細胞、ＮＫ細胞、ＮＫＴ細胞またはガンマデルタＴ細胞（gamma delta（γδ）Ｔ cells）でもある。前記細胞は、骨髄、末梢血液、末梢血液単核細胞または臍帯血から得たり製造されたりもする。

さらに他の態様は、前記細胞を含む薬学的組成物、前記細胞の医薬的用途、及び治療学的有効量の前記細胞を個体に投与する段階を含む癌を予防または治療する方法を提供する。

前記薬学的組成物は、前述の細胞を利用するために、それらの間に共通する内容は、本明細書の過度な複雑性を避けるために、その記載を省略する。

前記薬学的組成物または医薬的用途は、癌の予防または治療のためのものでもある。

本明細書において、用語「予防」とは、本発明による薬学的組成物の投与により、癌（腫瘍）を抑制させるか、あるいは発病を遅延させる全ての行為を意味する。

本明細書において、用語「治療」とは、本発明による薬学的組成物の投与により、癌（腫瘍）に対する症状が好転したり、望ましく変更される全ての行為を意味する。

本明細書において、用語「個体」とは、疾病の治療を必要とする対象を意味し、さらに具体的には、ヒトまたは非ヒトである霊長類、齧歯類（ラット、マウス、モルモットなど）、マウス（mouse）、犬、猫、馬、牛、羊、豚、山羊、らくだ、羚羊などの哺乳類を意味する。

本明細書において、用語「癌」とは、細胞が、正常な成長限界を無視し、分裂及び成長する攻撃的（aggressive）特性、周囲組織に侵透する浸透的（invasive）特性、及び体内外の他部位に広がる転移的（metastatic）特性を有する細胞による疾病を総称する。本明細書において、前記癌は、悪性腫瘍（malignant tumor）と同一の意味で使用され、望ましくは、メソテリン陽性、またはメソテリンを過発現する癌でもある。

前記癌は望ましくは、固形癌でもあり、例えば、さらに望ましくは、メソテリン陽性、またはメソテリンを過発現する固形癌でもある。例えば、前記固形癌は、食道癌（esophageal cancer）、乳癌（breast cancer）、三重陰性乳癌（ＴＮＢＣ：triple-negative breast cancer）、胃癌（gastric cancer）、胆管癌（cholangiocarcinoma）、膵臓癌（pancreatic cancer）、大腸癌（colon cancer）、肺癌（lung cancer）、胸腺癌（thymic carcinoma）、中皮腫（mesothelioma）、卵巣癌（ovarian cancer）、子宮内膜癌（endometrial cancer）、子宮頸癌（cervical cancer）、子宮体部漿液性腺癌（ＵＳＣ：uterine serous carcinoma）及び小児急性骨髄性白血病（ＡＭＬ：acute myeloid leukemia）からなる群から選択されるいずれか一つでもあるが、それらに制限されるものではない。

一具体例としては、メソテリンを過発現する固形癌を対象に、一態様による抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の投与による、卵巣癌、中皮腫及び膵臓癌に対する細胞死滅効果を確認した。

前記薬学的組成物は、薬学的組成物全体重量につき、有効成分である一態様の細胞を、１０ないし９５重量％で含んでもよい。また、本発明の薬学的組成物は、前記有効成分以外に、さらに、同一であるか、あるいは類似した機能を示す有効成分を１種以上含んでもよい。

前記細胞の投与量は、疾患の種類、疾患の重症度、薬学的組成物に含有された有効成分と、他の成分との種類及び含量、剤形の種類、患者の年齢・体重・一般健康状態・性別及び食餌、投与時間、投与経路、治療期間、並びに同時に使用される薬物を含めた多様な因子によっても調節される。しかし、望ましい効果のために、本発明による薬学的組成物に含まれる細胞の有効量は、１ｘ１０^５ないし１ｘ１０^１１セル／ｋｇでもある。このとき、投与は、一日に１回投与することができ、数回に分けて投与することもできる。本願に提示された細胞または薬学的組成物の有効量は、過度な実験なしも、経験的にも決定される。

前記薬学的組成物は、薬学的分野において通常の方法により、目的に適する剤形を有する製剤でもある。また、前記組成物は、薬学的分野において、通常の方法により、患者の身体内投与に適する単位投与型の製剤に剤形化させて投与することができる。前記薬学的製剤には、前記有効成分以外に、１またはそれ以上の薬学的に許容可能な一般的な不活性担体、一例として、注射剤の場合には、保存剤、無痛化剤、可溶化剤または安定化剤などを、局所投与用製剤の場合には、基剤（base）、賦形剤、潤滑剤または保存剤などをさらに含んでもよい。

また、前記細胞、またはそれを含む薬学的組成物は、当業界に公知された多様な方法によっても個体に投与され、例えば、腹腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与、皮下投与、皮内投与、経口投与、局所投与、鼻内投与、肺内投与、直腸内投与などによっても投与されるが、それらに制限されるものではない。

一態様による抗メソテリンキメラ抗原受容体は、メソテリンに対する特異的結合能を示し、メソテリンが過発現される癌の予防または治療に有用に使用されうる。

ファージディスプレイ抗体ライブラリーパニングを介する抗体スクリーニング過程を模式化した図である。

固相パニング（solid phase panning）による結果として、パニング回数目によるファージ算出力価（output titer）を示した図である。

固相パニング（solid phase panning）による結果として、パニング回数目によるファージ溶離力価比率（elution titer ratio）を示した図である。

マグネチックビード媒介ソリューションパニング（magnetic bead-mediated solution panning）による結果であり、パニング回数目によるファージ算出力価（output titer）を示した図である。

マグネチックビード媒介ソリューションパニング（magnetic bead-mediated solution panning）による結果であり、パニング回数目によるファージ溶離力価比率（elution titer ratio）を示した図である。

ファージＥＬＩＳＡを介して得られたクローンの抗原ＭＳＬＮに対する特異的結合を比較分析した結果を示した図である。

メソテリン過発現細胞株を利用して選別されたクローンが、実際の細胞膜に存在するメソテリンに結合するか否かということを、流細胞分析（flow cytometry）を介して確認した結果を示した図である。

メソテリン過発現細胞株を利用して選別されたクローンのメソテリンに対する結合特異性を、相対的ピーク移動（peak shift）値で示した図である。

精製された抗ＭＳＬＮ－ｓｃＦｖ抗体を、ＳＤＳ－ＰＡＧＥで分析した結果を示した図である（各蛋白質当たり、２μｇずつローディング）；ＮＲ：非還元条件（non-reducing condition），Ｒ：還元条件（reducing condition）（１００℃、１０分）。

ＥＬＩＳＡを介し、抗ＭＳＬＮ－ｓｃＦｖ抗体の抗原ＭＳＬＮに対する親和度を分析した結果を示した図である（ＭＳＬＮ３４クローン）。

ＥＬＩＳＡを介し、抗ＭＳＬＮ－ｓｃＦｖ抗体の抗原ＭＳＬＮに対する親和度を分析した結果を示した図である（ＭＳＬＮ３７クローン）。

ＥＬＩＳＡを介し、抗ＭＳＬＮ－ｓｃＦｖ抗体の抗原ＭＳＬＮに対する親和度を分析した結果を示した図である（ＭＳＬＮ３８クローン）。

ＭＳＬＮ特異的抗原結合ドメインを含む一態様による抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ発現システムの模式図である。

形質導入１回目以後、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲが導入されたＴ細胞におけるＣＡＲの発現確認、及びＣＤ３陽性Ｔ細胞における、ＣＤ４＋Ｔ細胞及びＣＤ８＋Ｔ細胞の比率を測定した結果を示した図である。

形質導入２回目以後、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲが導入されたＴ細胞における、ＣＡＲの発現確認、及びＣＤ３陽性Ｔ細胞における、ＣＤ４＋Ｔ細胞及びＣＤ８＋Ｔ細胞の比率を測定した結果を示した図である。

多様な癌細胞株を利用して抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲが導入されたＴ細胞の細胞死滅効果を確認した結果を示した図である。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとのメソテリン特異的細胞死滅効果を確認した結果を示した図である。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの、中皮腫動物モデルにおける癌細胞殺傷効能、及び体重変化に対する結果を示した図である（腫瘍体積変化）。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの、中皮腫動物モデルにおける癌細胞殺傷効能、及び体重変化に対する結果を示した図である（体重変化）。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの、中皮腫動物モデルにおける癌細胞殺傷効能、及び体重変化に対する結果を示した図である（腫瘍重さ変化）。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの、膵臓癌動物モデルにおける癌細胞殺傷効能、及び体重変化に対する結果を示した図である（腫瘍体積変化）。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの、膵臓癌動物モデルにおける癌細胞殺傷効能、及び体重変化に対する結果を示した図である（体重変化）。

抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの、膵臓癌動物モデルにおける癌細胞殺傷効能、及び体重変化に対する結果を示した図である（腫瘍重さ変化）。

以下な態様を実施例を介し、さらに詳細に説明する。しかし、それら実施例は、一態様について例示的に説明するためのものであり、一態様の範囲は、それら実施例に限定されるものではなく、一態様の実施例は、当業界で当業者に、一態様についてさらに完全に説明するために提供されるものである。

実施例１：ファージディスプレイ抗体ライブラリーパニング
標的抗原であるメソテリン（ＭＳＬＮ：mesothelin）に結合する抗体を選別するために、ＫＢＩＯヒト合成ｓｃＦｖファージディスプレイライブラリーＫｓｃＦｖ－Ｉを利用し、五松（Osong）尖端医療産業振興財団新薬開発支援センターで構築したファージパニングプロトコルにより、ＭＳＬＮ（Acro Biosystems）に対するファージパニングを４回目まで行った。ファージディスプレイ抗体ライブラリーパニング過程を図１に模式化して示した。

該パニングは、抗原を固定する方式により、２つの方法（solid、bead）で遂行した。固相パニング（solid phase panning）の場合、ヒトメソテリン蛋白質（ＰＢＳにおいて、１回目：１０μｇ／ｍＬ、２回目：５μｇ／ｍＬ、３回目：２．５μｇ／ｍＬ、４回目：１．２５μｇ／ｍＬ１ｍＬを、免疫チューブ（immuunotube）に固定させ、前記免疫チューブに、５％脱脂乳（skim milk）が含まれたＰＢＳ（ＭＰＢＳ）５ｍＬでブロッキングしたファージライブラリー１．３ｘ１０^１３ｃ．ｆ．ｕ．を混ぜた後、３７℃で１．５時間結合させた。その後、ＰＢＳ－Tween（登録商標）２０（０．０５％）（ＰＢＳ－Ｔ）５ｍＬで洗浄し、結合されていないファージを除去した（１回目：３回洗浄、２～４回目：５回洗浄）。そこに、１００ｍＭトリメチルアミン（ＴＭＡ：trimethylamine）１ｍＬをチューブに添加し、常温で１０分間反応させて結合されたファージを溶出させ、溶出されたファージは、５０ｍＬファルコンチューブ（Falcon tube）に移し、１Ｍ Tris－ＨＣｌ（ｐＨ７．４）０．５ｍＬと十分に混ぜて中和させた。前記溶出されたファージを、中間ログ段階のＥ．ｃｏｌｉＴＧ１（ＯＤ６００＝０．５～０．８）８．５ｍＬに感染させた。形質感染されたＥ．ｃｏｌｉＴＧ１の一部は、配列確認のために、プラスミドＤＮＡを抽出し、一部は、ファージＥＬＩＳＡを介し、抗体スクリーニングを進めた。マグネチックビード媒介ソリューションパニング（magnetic bead-mediated solution panning）の場合、固相パニングと同一プロトコルで遂行するが、メソテリン抗原を、免疫チューブの代わりに、マグネチックビード（magnetic bead）に処理して固定させた。共通して、パニング時、ＭＳＬＮ蛋白質が固定されていないＰＢＳ対照群パニングも共に並行して行い、それぞれの算出力価（output titer）を、回数目ごとに比較し、溶離力価比率（elution titer ratio）（算出力価を、対照群の算出力価で割った値）を介し、ファージの濃縮（enrichment）程度をモニタリングした。その結果を、図２及び図３に示した。

固相パニングの場合、３回目から濃縮が始まり、抗原ＭＳＬＮに係わる算出力価は、ＰＢＳ対照群対比で、約５３．４倍（３回目）、１，０６１．６倍（４回目）の大差を示した（図２）。マグネチックビードを利用したパニングの場合、３回目及び４回目の濃縮程度が、抗原ＭＳＬＮに対し、ＰＢＳ対照群対比で、約２．０倍（３回目）、１．６倍（４回目）と、違いを示していない（図３）。
実施例２：ファージＥＬＩＳＡ（phage-specific ＥＬＩＳＡ）を介する陽性クローンの選別

前記実施例１のファージパニングによって得られたファージのうち、抗原ＭＳＬＮに特異的に結合するクローン（clone）を選別するために、免疫チューブを利用したパニング２回目で得た２８２個（９４コロニーｘ３プレート）クローンにつき、単一クローンファージＥＬＩＳＡを遂行した。具体的には、９６ハーフ（half）ウェルＥＬＩＳＡプレートに、１μｇ／ｍＬのヒトＭＳＬＮ蛋白質（抗原）を、ウェル当たり３０μＬずつ入れ、４℃で一晩培養してコーティングした。陰性対照群として、他のプレートには、ＰＢＳを、ウェル当たり３０μＬずつ入れ、４℃で一晩培養した。翌日、プレート内容物を除去し、５％ＭＰＢＳ１５０μＬを使用し、プレートを室温で１時間ブロッキングした。その後、プレート内容物を除去し、ファージ（～１０１１ｃ．ｆ．ｕ．）３０μＬを添加し、常温で１．５時間培養した。陰性対照群の場合、ファージの代わりに、ＰＢＳ３０μＬを添加した。ＰＢＳ－Ｔ（ＰＢＳ－０．０５％ Tween（登録商標）２０）溶液で、プレートを４回洗浄し、抗Ｍ１３－ＨＲＰ（ＰＢＳで１：５，０００に希釈）を添加し、３７℃で１時間培養した。ＰＢＳ－Ｔ溶液でプレートを４回洗浄し、各ウェル当たりＴＭＢ基質試薬（ＴＭＢ substrate）を３０μＬずつ添加し、室温で８分間培養し、発色反応を誘導した。ウェル当たり、２ＮＨ_２ＳＯ_４３０μＬを添加し、発色反応を停止させた後、４５０ｎｍにおける吸光度（Ｏ．Ｄ．）を測定した。

その結果、抗原ＭＳＬＮにつき、吸光度カットオフ（cut-off）を、それぞれ０．４以上と定めて選別したとき、２回目で総５６個の陽性クローンを確保した。さらには、免疫チューブを利用したパニングの３回目及び４回目で得たクローンについても、同一方法で、単一クローンファージＥＬＩＳＡを遂行した。パニング３回目で得た７５２個（９４コロニーｘ８プレート）クローンにつき、ファージＥＬＩＳＡを遂行し、吸光度カットオフを、それぞれ０．７以上または０．４以上と定めて選別した結果、総１７３個の陽性クローンを確保した。また、パニング４回目で得た１８８個（９４コロニーｘ２プレート）クローンにつき、ファージＥＬＩＳＡを遂行し、吸光度カットオフを０．４以上と定めて選別した結果、総２個の陽性クローンを確保した（表１ないし表４）。

次に、前記実施例１のファージパニングによって得られたファージのうり、抗原ＭＳＬＮに特異的に結合するクローンを追加してさらに選別するために、マグネチックビードを利用したパニングの３回目及び４回目で得たクローンについても、同一方法で、単一クローンファージＥＬＩＳＡを遂行した。パニング３回目で得た１８８個（９４コロニーｘ２プレート）クローンにつき、ファージＥＬＩＳＡを遂行し、吸光度カットオフを、それぞれ０．４以上と定めて選別した結果、総４個の陽性クローンを確保した。また、パニング４回目で得た３７６個（９４コロニーｘ４プレート）クローンにつき、ファージＥＬＩＳＡを遂行し、吸光度カットオフを０．４以上と定めて選別した結果、総７個の陽性クローンを確保した（表５ないし表７）。

実施例３：抗ＭＳＬＮ抗体断片候補選別のための配列分析及びＥＬＩＳＡ

前記実施例２で選別した総４１５種の陽性クローンからファージを回収した後、ＤＮＡ配列分析を進め、カバット（Kabat）ナンバリングシステムによって配列を整列させ、グルーピングした。その結果、ＣＤＲ配列が異なる抗原ＭＳＬＮに係わる１６種の特異クローン（unique clone）を選別した。前記１６種クローンの抗原ＭＳＬＮに係わる特異的結合を確認するために、各ファージを精製し、ファージ力価（phage titer）を同一に合わせた後（１．２Ｅ＋１１ｐｆｕ／ウェル）、ＥＬＩＳＡを介して比較した。陰性対照群としては、ＭＳＬＮと同一に、ヒスチジンタグ（Ｈｉｓ tag）に接合されたＴＬＲ４抗原を使用し、陽性対照群としては、以前研究において、メソテリンとのすぐれた結合能を確認したクローンＭＳＬＮ３を使用した（下記表８参照）。その結果を、図４に示した。

図４に示されているように、１６種クローンのうち、ＭＳＬＮ２６、ＭＳＬＮ３０及びＭＳＬＮ３１を除いた１３種クローンが、抗原ＭＳＬＮに特異的に結合するということを確認した。
実施例４：メソテリン過発現細胞株を利用した結合能確認

前記実施例３で選別した１６種のファージクローンが、実際の細胞膜に存在するメソテリンに結合するか否かということを調べるために、メソテリン過発現細胞株である膵臓癌細胞株ＡｓＰＣ－１、及び対照群として、ヒト慢性骨髄白血病細胞株Ｋ５６２を使用し、流細胞分析（flow cytometry analysis）を行った。

具体的には、Ｋ５６２細胞及びＡｓＰＣ－１細胞を、１０^６セル／ウェルになるように準備し、ＰＢＳ３００μＬで洗浄した。４％ＭＰＢＳ（脱脂乳が含まれたＰＢＳ）３００μＬで、４℃で３０分間細胞をブロッキングし、同時に、ファージクローン（１０^１２／ウェル）を、常温で１時間同一にブロッキングした後、ファージと細胞とを、４℃で２時間共に培養した。ＰＢＳで細胞を洗浄した後、抗Ｍ１３－ＦＩＴＣ１μｇ／ｍＬで処理し、４℃で１時間培養した。ＰＢＳで細胞を洗浄した後、ＰＢＳに細胞を再懸濁させ、流細胞分析器（ＢＤ biosciences）を利用して結果を分析した。その結果を、図５及び図６に示した。

図５に示されているように、ＭＳＬＮ３４、ＭＳＬＮ３７及びＭＳＬＮ３８が膵臓癌細胞株ＡｓＰＣ－１から、５．０％以上の相対的ピーク移動（peak shift）値を示すということを確認した。対照群であるＫ５６２細胞株においては、有意レベルのピーク移動が示されていない。前記結果を介し、１６種のクローンのうち、ＭＳＬＮ３４、ＭＳＬＮ３７及びＭＳＬＮ３８が実際の細胞膜に存在するメソテリンに対し、高い結合親和性を示すということが分かった。

また、図６に示されているように、流細胞分析結果を定量化した結果、ＭＳＬＮ３４、ＭＳＬＮ３７及びＭＳＬＮ３８は、対照群であるＫ５６２細胞に比べ、それぞれ１６．２％、５．９％及び３０．８％の相対的ピーク移動値を示すということを確認した。前記結果を介し、３個クローンのいずれもが、メソテリンが過発現された細胞株に特異的に結合するということを確認し、抗ＭＳＬＮ抗体断片生産のためのクローンとして最終選別した。
実施例５：抗ＭＳＬＮ抗体断片の生産及び精製

前記実施例４で選別した３種クローンを使用し、抗体断片発現菌株であるＴｏｐ１０Ｆ’ competent Ｅ．ｃｏｌｉを形質転換（transformation）した。その後、３種クローンで形質転換されたＥ．ｃｏｌｉ菌株を、それぞれＴＢ培地２００ｍＬで培養しながら、ＩＰＴＧ（最終濃度０．５ｍＭ）で蛋白質発現を誘導した後、３０℃で一晩培養した。前記培養液を遠心分離して細胞を獲得し、細胞形質抽出（periplasmic extraction）を介し、水溶性蛋白質を確保した後、蛋白質Ｌレジン（protein Ｌ resin）を利用した親和度クロマトグラフィ（affinity chromatography）を介し、抗ＭＳＬＮ－ｓｃＦｖ抗体を精製した。前記精製された抗体蛋白質をＳＤＳ－ＰＡＧＥで分析し、その結果を図７に示した。

前記精製された３種抗体（ＭＳＬＮ３４、ＭＳＬＮ３７及びＭＳＬＮ３８）のアミノ酸配列を確認し、下記表９に示した。具体的には、ＭＳＬＮ３４の重鎖ＣＤＲ１－３アミノ酸配列を、それぞれ配列番号１ないし３に、軽鎖ＣＤＲ１－３アミノ酸配列を、それぞれ配列番号４ないし６に示し、ＭＳＬＮ３７の重鎖ＣＤＲ１－３アミノ酸配列を、それぞれ配列番号７ないし９に、軽鎖ＣＤＲ１－３アミノ酸配列を、それぞれ配列番号１０ないし１２に示し、ＭＳＬＮ３８の重鎖ＣＤＲ１－３アミノ酸配列を、それぞれ配列番号１３ないし１５に、軽鎖ＣＤＲ１－３アミノ酸配列を、それぞれ配列番号１６ないし１８に示した。

実施例６：抗ＭＳＬＮ抗体の抗原に対する親和度分析

前記実施例５で製造した３種の抗ＭＳＬＮ抗体蛋白質を利用したＥＬＩＳＡを介し、各抗体の抗原ＭＳＬＮに対する親和度を比較分析した。具体的には、ＭａｘｉＳｏｒｂＥＬＩＳＡプレート（Ｎｕｎｃ）に、ヒトメソテリン蛋白質３０μＬを、ウェル当たり１μｇ／ｍＬの濃度でコーティングし、４℃で一晩培養した。プレート内容物を除去し、５％ＭＰＢＳ３００μＬを使用し、プレートを室温で１時間ブロッキングした。精製された抗体を、ＰＢＳで連続的に希釈し、各ウェルに３０μＬずつ添加し、室温で２時間培養した。陰性対照群としては、精製された抗体の代わりに、ＰＢＳ６０μＬを添加し、３７℃で２時間培養した。

ＰＢＳ－Ｔ（ＰＢＳ－０．０５％ Tween（登録商標）２０）溶液でプレートを４回洗浄し、抗ＳｔｒｅｐＭＡＢＨＲＰ（ＰＢＳで、１：５，０００に希釈）３０μＬを添加し、室温で１時間培養した。ＰＢＳ－Ｔ溶液でプレートを４回洗浄、て各ウェル当たりＴＭＢ基質試薬を３０μＬずつ添加し、室温で８分間培養し、発色反応を誘導した。ウェル当たり２ＮＨ_２ＳＯ_４３０μＬを添加し、発色反応を停止させた後、４５０ｎｍにおける吸光度（Ｏ．Ｄ．）を測定した。その結果を図８（図８Ａ、図８Ｂ、図８Ｃ）に示した。

図８に示されているように、３種抗体の中においては、ＭＳＬＮ３４において、ＥＣ_５０値が８３ｎＭと、最も高い結合親和度を示すということを確認した。
実施例７：抗ＭＳＬＮキメラ抗原受容体構築

前記実施例５で製造した抗ＭＳＬＮ抗体蛋白質において、メソテリンが過発現された細胞株と高い結合特異性を示したＭＳＬＮ３４及びＭＳＬＮ３８を基に、抗ＭＳＬＮキメラ抗原受容体を構築した（抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ）。
７－１：抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲレンチウイルスベクタークローニング

ベクターとしては、新薬開発支援センターで保有した２世代ＣＡＲレンチウイルス用ベクター（ｐＬＶ lentiviral vector）システムに属するものであり、前記システムは、ｇａｇ／ｐｏｌをコーディングするｐＭＤＬｇ／ｐＲＲＥ（addgene）、Ｒｅｖ蛋白質をコーディングする外被（envelope）プラスミドｐＲＳＶ－Ｒｅｖ（addgene）、及びＶＳＶ－Ｇ蛋白質をコーディングする外被プラスミドｐＭＤ２．Ｇ（addgene）をいずれも含む。

まず、実施例５で製造した抗ＭＳＬＮｓｃＦｖ（抗原結合ドメイン）につき、遺伝子クローニングを実施した。ＭＳＬＮ３４及びＭＳＬＮ３８それぞれの抗ＭＳＬＮｓｃＦｖと、レンチウイルスベクターとを、ＸｈｏＩ（Ｒ０１４６Ｓ、ＮＥＢ）とＥｃｏＲＩ（Ｒ０１０１、ＮＥＢ）とで、３７℃で２時間切断（digestion）し、アガロースゲル電気泳動した後、確認された産物を、ＦａｖｏｒＰｒｅｐＧｅｌ／ＰＣＲ purification Mini kit（Favorgen）を使用して精製した。精製されたそれぞれの抗ＭＳＬＮｓｃＦｖ（１００ｎｇ）とベクター（５０ｎｇ）とを、２：１の比率で１６℃で１６時間反応させ、ライゲーション（ligation）を進めた後、Ｓｔｂｌ３コンピテントセル（competent cell）で形質転換させ、コロニーを得た。前記コロニーを取り、ＬＢ培地（アンピシリン）５ｍＬで育て、ＤＮＡプラスミドミニプレップ（ｍｉｎｉ－ｐｒｅｐ）法を利用し、プラスミドＤＮＡを得た。前記プラスミドＤＮＡを、ＸｈｏＩ、ＥｃｏＲＩで切断して挿入させたそれぞれの抗ＭＳＬＮｓｃＦｖが、ベクター内に好ましくクローニングされているか否かということを確認した。その後、シークエンシングを行い、最終的にＤＮＡ配列を確認した。

前記抗ＭＳＬＮｓｃＦｖに、ＣＤ８ヒンジ及びＣＤ８ＴＭ（transmembrane）を、膜貫通領域に、４－１ＢＢの細胞質領域を、信号伝逹ドメインに、ＣＤ３ゼータ（ＣＤ３ｚ）の細胞内ドメインを、Ｔ細胞活性化ドメインに順次に連結し、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲを構成した。具体的には、ＣＤ８信号配列（ＳＰ：signal peptide）（配列番号２５）、抗ＭＳＬＮ３４ｓｃＦｖ（配列番号２６）または抗ＭＳＬＮ３８ｓｃＦｖ（配列番号２７）、ＣＤ８ヒンジ領域（配列番号２８）、ＣＤ８膜貫通領域（配列番号２９）、４－１ＢＢ信号伝逹ドメイン（配列番号３０）、及びＣＤ３ゼータ信号伝逹ドメイン（配列番号３１）で構成される。前記各ドメインを、それぞれの制限酵素を利用して順次に連結し、各ドメインに対応する具体的な塩基配列情報を、下記表１０に整理した。

７－２：抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲが搭載されたレンチウイルス生産

前記実施例７－１で作製した組み換えベクターをＨＥＫ２９３Ｔ細胞に導入し、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲレンチウイルスを生産した。ＭＳＬＮ特異的抗原結合ドメインを含む一態様による抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ発現システムの模式図を、図９に示した。まず、ＤＮＡ形質転換の前日、１００ｍｍ組織培養ディッシュに、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を６ｘ１０^６セル／ディッシュでシーディングした。翌日、細胞密度が７０～８０％に逹したとき、試薬マニュアルにより、リポフェクタミン３０００（Lipofectamine（登録商標）３０００、Thermofisher）で、ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－ｐＬＶ、ｐＭＤＬｇ／ｐＲＲＥ（addgene）、ｐＲＳＶ－Ｒｅｖ（addgene）、ｐＭＤ２．Ｇ（addgene）（５．５μｇ：３．５μｇ：１．５μｇ：２μｇ）の形質転換を進めた。対照群としては、ＣＤ１９（ＦＭＣ６３）を使用した。形質転換遂行４時間後、３％ＦＢＳ（Gibco）が含まれたＤＭＥＭ培地に替え、４８時間後、ウイルス培養液を収穫した。遠心分離用チューブに２０％スクロース溶液１０ｍＬを入れ、その上に、収穫されたウイルス培養液２０ｍＬを慎重に載せた後、ＳＷ３２Ｔロータに装着し、２５，０００ｒｐｍで４℃で９０分間、超高速遠心分離を実施した。遠心分離が終わった後、チューブ底にあるウイルスペレットが落ちないように、注意して上澄み液を捨て、ＲＰＭＩ１６４０培地（Ｇｉｂｃｏ）４００μＬを入れ、冷蔵庫で１６時間培養した後、再浮遊させ、１００μＬずつ分注して－８０℃で保管した。
７－３：レンチウイルス力価測定（titration）

レンチウイルス感染の前日、ＨｅＬａ細胞を６ウェルプレートに、１．５ｘ１０^５セル／ウェルでシーディングした。翌日、ウイルス感染培地５００μＬに、ウイルスを、１／１００及び１／１，０００に希釈して添加し、ポリブレン（polybrene）を、８μｇ／ｍＬで共に添加し、細胞に感染させた。１つのウェルにおいて、細胞をトリプシン（trypsin）ＥＤＴＡ（０．０５％）で処理して収穫した後、セルカウンティングした。４時間後、細胞培養液１ｍＬを添加し、４８時間後、ＦＡＣＳ分析を介してウイルス力価を測定した。ウイルス力価は、下記数式で計算した。

その結果、ウイルス力価は、それぞれＭＳＬＮ３４－ＣＡＲｓｃＦｖ９．６ｘ１０^７ＴＵ／ｍＬ、ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲｓｃＦｖ１．６ｘ１０^８ＴＵ／ｍＬと確認された。
実施例８：抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲが導入された細胞の作製
８－１：レンチウイルス形質導入（transduction）

形質導入は、総２回にわたって進めた。ＤＰＢＳ５ｍＬに、抗ＣＤ３（１μｇ／ｍＬ）抗体、抗ＣＤ２８（３μｇ／ｍＬ）抗体を、それぞれ指定された濃度になるように製造してボルテキシングした後、２４ウェルプレートに、５００μｌ／ウェルにコーティングし、４℃冷蔵庫で一晩保管した。翌日、Ｔ細胞培養液（１０％ＦＢＳ＋ＲＰＭＩ１６４０＋２００ＩＵＩＬ－２）９ｍＬに、ＰＢＭＣ（ヒト一次ＰＢＭＣ）を溶かし、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離した。その後、上澄み液を除去し、培養液１ｍＬに再浮遊させ、セルカウンティングし、１ｘ１０^６セル／ｍＬに希釈し、抗体がコーティングされた２４ウェルプレートにシーディングした後、３７℃、ＣＯ_２培養器に入れて培養した。３日後、ＰＢＭＣ細胞をいずれも収穫し、レンチウイルス感染のために、５ｘ１０^５セル／５００μＬに、レンチウイルスを、ＭＯＩ（multiple of infection）５になるように合わせ、プロタミン硫酸塩（protamine sulfate）１０μｇ／ｍＬを添加し、新たな２４ウェルプレートにシーディングした（ａ）。前記２４ウェルプレートを、３００ｇ、３２℃で９０分間遠心分離した後、３７℃、ＣＯ_２培養器に入れて培養した（ｂ）。翌日、Ｔ細胞をいずれも収穫し、前述の（ａ），（ｂ）段階をさらに１回遂行した。その後、Ｔ細胞をいずれも収穫し、１，５００ｒｐｍで５分間遠心分離し、上澄み液を除去し、Ｔ細胞を培養液に再浮遊させ、さらに培養した。
８－２：抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲの発現確認

前記実施例８－１で製造した抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲが導入されたＴ細胞において、ＣＡＲの発現有無を確認した。Ｔ細胞のレンチウイルス形質導入完了５日後、一部抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞を収穫し、ビオチンＭＳＬＮ（AcrobiosystemsまたはBiolegend）を入れ、２０分間、氷上で培養した後、細胞を洗浄し、ＰＥ抗ビオチン１μＬを添加し、２０分間、氷上で培養した。細胞洗浄後、ＦＡＣＳＣａｎｔｏＩＩ（ＢＤ）を利用し、ＣＡＲ発現率を確認した。また、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔを１４日間培養しながら、最終的に分化されたＴ細胞（ＣＤ３）の発現を、ＦＡＣＳを介して分析し、ＣＤ３陽性Ｔ細胞における、ＣＤ４＋Ｔ細胞及びＣＤ８＋Ｔ細胞の比率を測定した。その結果を、下記表１１及び図１０、図１１に示した。

図１０及び図１１に示されているように、形質導入１回目の結果、ＣＤ４＋：ＣＤ８＋のの比率は、平均して２０％：７０％であり、２回目の結果、ＣＤ４＋：ＣＤ８＋のの比率は、１０％：８０％と測定された。
実施例９：抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の細胞死滅効果の確認

前記実施例８で製造した抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞を利用し、癌細胞に対する細胞死滅効果をカルセインＡＭ法を介して確認した。

まず、多様な癌細胞株（ＡｓＰＣ－１、ＭＩＡＰａＣａ－２、ＮＣＩ－Ｈ２０５２、ＯＶＣＡＲ－３）のＭＳＬＮ発現程度を確認するために、培養中の細胞一部を取り、ビオチン抗ＭＳＬＮ抗体を利用して細胞と結合させ、ＦＡＣＳ分析を行った。その結果、膵臓癌細胞株であるＡｓＰＣ－１、卵巣癌細胞株であるＯＶＣＡＲ－３、及び悪性胸膜中皮腫細胞株であるＮＣＩ－Ｈ２０５２のいずれにもおいて、ＭＳＬＮの発現を確認した。ただし、膵臓癌細胞株であるＭＩＡＰａＣａ－２は、他の癌細胞株に比べ、ＭＳＬＮ発現が顕著に低く測定された（図１２）。

前記癌細胞株（ＡｓＰＣ－１、ＭＩＡＰａＣａ－２、ＮＣＩ－Ｈ２０５２、ＯＶＣＡＲ－３）を各培養培地に、１ｘ１０^６セル／ｍＬに再浮遊させ、カルセインＡＭ（１ｍｇ／ｍＬ）５μＬを添加し、十分に混ぜた後、３７℃培養器で１時間培養した。エフェクタ細胞であるＣＤ１９－ＣＡＲ－Ｔ細胞、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞は、細胞培養液を添加しながら、多様なＥ：Ｔ（effector cell：target cell）比率で希釈して準備した。癌細胞株に、カルセインＡＭ染色１時間後、１，２００ｒｐｍで５分間遠心分離して洗浄し、培養培地１０ｍＬを添加し、再浮遊させた。その後、染色された癌細胞株を、９６ウェルラウンドプレートに、１００μＬ（１ｘ１０^４セル／１００μＬ）でシーディングしてくれ、その上に、エフェクタ細胞を１００μＬずつシーディングした。対照群としては、カルセインＡＭが染色された癌細胞株に、培養培地１００μＬだけ処理した群（spontaneous value）と、２％トリトンＸ－１００（maximum value）を処理した群とを使用した。９６ウェルラウンドプレートを、１００ｇで１分間遠心分離した後、３７℃培養器で４時間培養した。４時間後、ウェルにある細胞を、ピペットで５回ほど混ぜ、１００ｇで５分間遠心分離した後、上澄み液だけ１００μＬずつ取り、黒色９６ウェルプレートに移した。前記上澄み液が入っている９６ウェルプレートを使用し、蛍光マイクロプレートリーダで、励起波長（excitation wavelength）４８５ｎｍ及び放出波長（emission wavelength）５３５ｎｍでカルセイン放出を測定した。測定値につき、下記数式２を使用して細胞死滅効果を計算した。その結果を図１３ないし図１５に示した。

図１３ないし図１５に示されているように、抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとのいずれも、ＭＳＬＮの高い発現を確認した卵巣癌細胞株ＯＶＣＡＲ－３及び悪性胸膜中皮腫細胞株ＮＣＩ－Ｈ２０５２において、陰性対照群ＣＤ１９（ＦＭＣ６３）－ＣＡＲ－Ｔに比べ、有意味に抗原特異的な細胞死滅効果があることを確認した。ただし、抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとのいずれも、ＭＳＬＮを少なく発現する癌細胞株であるＭＩＡＰａＣａ－２においては、陰性対照群対比で、特異的な細胞死滅効果が観察されていない。前記結果を介し、一態様による抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の細胞死滅効果は、癌細胞が発現するメソテリンに特異的であるということを確認した。

また、前記実施例８で製造した抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞、及びＧＦＰ（green fluorescent protein）を発現する癌細胞株を利用し、癌細胞に対する細胞死滅効果を確認した。ＧＦＰを発現する膵臓癌細胞株ＡｓＰＣ－１を、各培養培地に、１ｘ１０^６セル／ｍＬで再浮遊して培養した後、エフェクタ細胞であるＣＤ１９－ＣＡＲ－Ｔ細胞、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞は、細胞培養液を添加しながら、１０：１のＥ：Ｔ比率で共培養した。Incucyte（登録商標）を利用し、４８時間までＧＦＰを、リアルタイム測定した結果を図１６に示した。図１６に示されているように、一態様による抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の処理により、膵臓癌細胞株であるＡｓＰＣ－１の細胞死滅効果が示されるということを確認した。
実施例１０：腫瘍動物モデル基盤抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の癌細胞死滅効果の確認

前記実施例９で確認した抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の癌細胞に対する細胞死滅効果を基に腫瘍動物モデルを構築し、腫瘍殺傷能を確認した。

本試験において、５週齢の雄ＮＯＧ（ＮＯＤ／Ｓｈｉ－ｓｃｉｄ／ＩＬ－２Ｒγｎｕｌｌ）マウスを使用し、該動物入手時、供給先から提供された試験システムのヘルスモニタリング成績書を参照し、入手動物の検疫検査を実施し、１週間の順化後、実験を進めた。飼育環境は、本試験は、温度２２±２℃、相対湿度５０±１０％、換気回数１０～２０回／ｈｒ、照明時間１２時間（午前８時点灯～午後８時消灯）及び照度１５０～３００Ｌｕｘであり、チップタイプ敷藁を、高圧蒸気滅菌（１２１℃、滅菌時間２０分、乾燥時間５分）した後、適量の敷藁をポリカーボネート飼育箱（幅２７８（ｍｍ）ｘ長さ４２０（ｍｍ）ｘ高さ２３０（ｍｍ））に入れて飼育した。実験に供給された飼料は、放射線照射で滅菌した実験動物用固形飼料（＋４０ＲＭＭ－ＳＰ－１０、Ｕ８２３９Ｇ１０Ｒ、ＳＡＦＥ－ＤＩＥＴＳ、フランス）を利用し、水は、ＲＯ数を水ボトルに入れ、高圧滅菌器で滅菌した後、自由に摂取することができるようにした。

膵臓癌動物モデル、中皮腫動物モデルに使用された細胞は、肺炎マイコプラズマ（Mycoplasma pneumoniae），マウスコロナウイルス（Murine coronavirus）（ＭＨＶ：mouse hepatitis virus），Murine respirovirus（ＳｅＶ：Sendai virus）検査を進め、陰性と確認された後で使用した。移植された癌細胞及びＣＡＲ－Ｔ細胞と、試験群との構成を、下記表１２に示した。

各細胞は、ＰＢＳを利用して細胞濃度を調節し、マウスに２００μＬずつ皮下移植し、腫瘍サイズにより、ランダム配分法により、群分離を実施し、個体識別は、試験期間の間、イヤーパンチ（ear-punch）法を使用し、飼育箱には、各群別識別カードを付着させた。

実験群分離後、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞を、尾静脈に単回投与し、試験群の体重と、腫瘍サイズは、投与開始日から週２回測定した。投与開始日の体重を基準にし、試験終了日まで体重変化を観察した。体重増減（％）は、下記数式３を使用して算出した。

腫瘍体積（ｍｍ^３）は、ノギス（calipers）を利用し、腫瘍の短軸（Ａ）、長軸（Ｂ）を測定し、以下数式４を利用して算出した。

体重及び腫瘍体積は、最後の測定後、膵臓癌、中皮腫それぞれの、ＨＢＳＳ投与群と、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ投与群とを比較し、一元配置分散分析（one-way ＡＮＯＶＡ）のpost-hoc Dunnett’s testを利用し、統計分析を進めた（＊：ｐ＜０．０５、＊＊：ｐ＜０．０１、＊＊＊：ｐ＜０．００１）。

中皮腫腫瘍（ＮＣＩ－Ｈ２０５２）モデルにおいて、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の腫瘍殺傷能有効性を評価した結果、抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔ投与群と、抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔ投与群とにおいて、１個体（Ｇ４－４）を除いた全ての動物において、腫瘍が観察されておらず、ＨＢＳＳ投与群と比較し、投与１３日目から、抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔ投与群と抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔ投与群とにおいて、腫瘍サイズが顕著に小さくなった（ｐ＜０．０５）。対照群（Ｇ１（ＨＢＳＳ投与群））と比較し、抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔ投与群は、体重減少（ｐ＜０．０５）、痙攣症状が観察され、投与後２０日目に２匹が死亡した。前記結果を図１７に示した。

膵臓癌腫瘍（ＡｓＰＣ－１）モデルにおいて、抗ＭＳＬＮ－ＣＡＲ－Ｔ細胞の腫瘍殺傷能有効性を評価した結果、ＨＢＳＳ投与群と比較し、ＣＡＲ－Ｔ投与後１３日目から、抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔ投与群と抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔ投与群とにおいて、腫瘍サイズが顕著に小さくなり（ｐ＜０．０５）、剖検時、同一に２つの群において、腫瘍重さが減少することを確認した（ｐ＜０．０５）。対照群（Ｇ６（ＨＢＳＳ投与群））と比較し、抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔ投与群は、体重が減少し（ｐ＜０．０５）、痙攣症状が観察され、投与後３４日目に１匹が死亡した。前記結果を図１８に示した。

前述の結果を総合すれば、膵臓癌、中皮腫のいずれも癌細胞だけではなく、動物モデルにおいても、いずれも抗ＭＳＬＮ３４－ＣＡＲ－Ｔと抗ＭＳＬＮ３８－ＣＡＲ－Ｔとの癌細胞殺傷効能を確認することができた。

前述の説明は、例示のためのものであり、本発明が属する技術分野の当業者であるならば、本発明の技術的思想や必須特徴を変更せずとも、他の具体的な形態に容易に変形が可能であるということを理解することができるであろう。従って、以上で記述された実施例は、全ての面において、例示的なものであり、限定的ではないと理解されなければならない。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
(項目１)
次の重鎖ＣＤＲを含む重鎖可変領域、及び軽鎖ＣＤＲを含む軽鎖可変領域を含む、抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片：
配列番号１からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号２からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号５からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３、または
配列番号１３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号１４からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号１５からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号１６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号１７からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号１８からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３。
(項目２)
配列番号１９または２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含む、項目１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
(項目３)
配列番号２０または２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、項目１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
(項目４)
配列番号１９からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２０からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、項目１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
(項目５)
配列番号２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含むことである、項目１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
(項目６)
項目１ないし５のうちいずれか１項に記載の抗体、またはその抗原結合断片をコーディングする、分離された核酸。
(項目７)
項目６の分離された核酸を含む、ベクター。
(項目８)
項目７に記載のベクターで形質転換された、宿主細胞。
(項目９)
項目８に記載の宿主細胞を培養し、抗体を発現させる段階を含む、抗メソテリン抗体を製造する方法。
(項目１０)
抗原結合ドメイン、ヒンジドメイン、膜貫通ドメイン及び細胞内信号伝逹ドメインを含むキメラ抗原受容体であり、
前記抗原結合ドメインは、次の重鎖ＣＤＲを含む重鎖可変領域、及び軽鎖ＣＤＲを含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片である、キメラ抗原受容体：
配列番号１からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号２からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号５からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３；または
配列番号１３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号１４からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号１５からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号１６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号１７からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号１８からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３。
(項目１１)
前記抗原結合ドメインは、配列番号１９からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２０からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片である、項目１０に記載のキメラ抗原受容体。
(項目１２)
前記抗原結合ドメインは、配列番号２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片である、項目１０に記載のキメラ抗原受容体。
(項目１３)
前記抗原結合断片は、ｓｃＦｖ（single chain variable fragment）である、項目
１０に記載のキメラ抗原受容体。
(項目１４)
項目１０に記載のキメラ抗原受容体をコーディングする、ポリヌクレオチド。
(項目１５)
前記ポリヌクレオチドは、配列番号２６または２７からなる塩基配列を含む、項目１４に記載のポリヌクレオチド。
(項目１６)
項目１４に記載のポリヌクレオチドを含む、ベクター。
(項目１７)
項目１６に記載のベクターで形質転換された、細胞。
(項目１８)
前記細胞は、Ｔ細胞、ＮＫ細胞、ＮＫＴ細胞またはガンマデルタＴ細胞（γδＴセル）である、項目１７に記載の細胞。
(項目１９)
項目１８に記載の細胞を含む、癌の予防用または治療用の薬学的組成物。

Claims

次の重鎖ＣＤＲを含む重鎖可変領域、及び軽鎖ＣＤＲを含む軽鎖可変領域を含む、抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片：
配列番号１からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号２からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号５からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３、または
配列番号１３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号１４からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号１５からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号１６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号１７からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号１８からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３。
配列番号１９または２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
配列番号２０または２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
配列番号１９からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２０からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
配列番号２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片。
請求項１ないし５のうちいずれか１項に記載の抗体、またはその抗原結合断片をコーディングする、分離された核酸。
請求項６の分離された核酸を含む、ベクター。
請求項７に記載のベクターで形質転換された、分離された宿主細胞。
請求項８に記載の宿主細胞を培養し、抗体を発現させる段階を含む、抗メソテリン抗体を製造する方法。
抗原結合ドメイン、ヒンジドメイン、膜貫通ドメイン及び細胞内信号伝逹ドメインを含むキメラ抗原受容体であり、
前記抗原結合ドメインは、次の重鎖ＣＤＲを含む重鎖可変領域、及び軽鎖ＣＤＲを含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片である、キメラ抗原受容体：
配列番号１からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号２からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号５からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３；または
配列番号１３からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ１、配列番号１４からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ２、配列番号１５からなるアミノ酸配列を含む重鎖ＣＤＲ３、及び配列番号１６からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ１、配列番号１７からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ２、配列番号１８からなるアミノ酸配列を含む軽鎖ＣＤＲ３。
前記抗原結合ドメインは、配列番号１９からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２０からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片である、請求項１０に記載のキメラ抗原受容体。
前記抗原結合ドメインは、配列番号２３からなるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び配列番号２４からなるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む抗メソテリン抗体、またはその抗原結合断片である、請求項１０に記載のキメラ抗原受容体。
前記抗原結合断片は、ｓｃＦｖ（single chain variable fragment）である、請求項１０に記載のキメラ抗原受容体。
請求項１０に記載のキメラ抗原受容体をコーディングする、ポリヌクレオチド。
前記ポリヌクレオチドは、配列番号２６または２７からなる塩基配列を含む、請求項１４に記載のポリヌクレオチド。
請求項１４に記載のポリヌクレオチドを含む、ベクター。
請求項１６に記載のベクターで形質転換された、分離された細胞。
前記分離された細胞は、Ｔ細胞、ＮＫ細胞、ＮＫＴ細胞またはガンマデルタＴ細胞（γδＴセル）である、請求項１７に記載の分離された細胞。
請求項１８に記載の分離された細胞を含む、癌の予防用または治療用の薬学的組成物。