JP7038361B2 - 多能性幹細胞から体細胞への分化誘導方法 - Google Patents
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Description
[1]多能性幹細胞を、ヘパリン結合性増殖因子を含む培地を用いて体細胞に分化誘導する方法において、ラミニンE8フラグメントとヘパラン硫酸プロテオグリカンの増殖因子結合部位を含むフラグメントとが連結したコンジュゲートを細胞に接触させることを特徴とする分化誘導方法。
[2]前記ヘパラン硫酸プロテオグリカンの増殖因子結合部位を含むフラグメントが、パールカンのドメイン1を含むフラグメントである前記[1]に記載の分化誘導方法。
[3]前記コンジュゲートが、ラミニンE8フラグメントのα鎖のC末端にヘパラン硫酸プロテオグリカンの増殖因子結合部位を含むフラグメントが連結しているコンジュゲートである前記[1]または[2]に記載の分化誘導方法。
[4]前記コンジュゲートがコーティングされた細胞培養容器を用いて多能性幹細胞を体細胞に分化誘導することを特徴とする前記[1]~[3]のいずれかに記載の分化誘導方法。
[5]ヘパリン結合性増殖因子が、骨形成タンパク質2、骨形成タンパク質4、骨形成タンパク質7、塩基性線維芽細胞増殖因子、線維芽細胞増殖因子4、線維芽細胞増殖因子8、線維芽細胞増殖因子10、肝細胞増殖因子、血小板由来増殖因子BB、Wnt3aタンパク質、ソニック・ヘッジホッグ、血管内皮細胞増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β、アクチビンA、オンコスタチンM、ケラチノサイト成長因子およびグリア細胞株由来神経栄養因子から選択される1種以上である前記[1]~[4]のいずれかに記載の分化誘導方法。
[6]多能性幹細胞がヒトiPS細胞である前記[1]~[5]のいずれかに記載の分化誘導方法。
[7]前記体細胞が、中胚葉由来の体細胞である前記[1]~[6]のいずれかに記載の分化誘導方法。
[8]ヒトiPS細胞を、骨形成タンパク質4またはアクチビンAを含む培地を用いて心筋細胞に分化誘導する方法において、ヒトラミニンα4β2γ1E8フラグメントのα鎖のC末端またはヒトラミニンα5β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端にパールカンのドメイン1が連結しているコンジュゲートを細胞に接触させて分化誘導することを特徴とする前記[1]~[7]のいずれかに記載の分化誘導方法。
[9]ヒトiPS細胞を、塩基性線維芽細胞増殖因子および肝細胞増殖因子を含む培地を用いて骨格筋細胞に分化誘導する方法において、ヒトラミニンα4β2γ1E8フラグメントのα鎖のC末端、ヒトラミニンα5β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端、ヒトラミニンα4β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端またはヒトラミニンα5β2γ1E8フラグメントのα鎖のC末端にパールカンのドメイン1が連結しているコンジュゲートを細胞に接触させて分化誘導することを特徴とする前記[1]~[7]のいずれかに記載の分化誘導方法。
[10]ヒトiPS細胞を、血管内皮細胞増殖因子を含む培地を用いて血管内皮細胞に分化誘導する方法において、ヒトラミニンα4β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端にパールカンのドメイン1が連結しているコンジュゲートを細胞に接触させて分化誘導することを特徴とする前記[1]~[7]のいずれかに記載の分化誘導方法。
(2) Yang L et al., Nature, 2008 May 22;453(7194):524-8, doi: 10.1038/nature06894, Epub 2008 Apr 23.
(3) WO2016/108288A1
(4) Ohta R et al., Scientific Reports, 2016 Nov 02; 6:35680, doi: 10.1038/srep35680.
(5) Cameron K et al., Stem Cell Reports, 2015 Dec 8; 5:1250-1262. doi: 10.1016/j.stemcr.2015.10.016. Epub 2015 Nov 25.
(6) Hayashi et al., Nature. 2016 Mar 17;531(7594):376-80. doi: 10.1038/nature17000. Epub 2016 Mar 9.
(7) Toyoda T et al., Stem Cell Res. 2015 Mar;14(2):185-97. doi: 10.1016/j.scr.2015.01.007. Epub 2015 Jan 28.
(8) Thatava T et al., Gene Ther. 2011 Mar;18(3):283-93. doi: 10.1038/gt.2010.145. Epub 2010 Nov 4.
(9) Fukuta M et al., PLoS One. 2014 Dec 2;9(12):e112291. doi: 10.1371/journal.pone.0112291. eCollection 2014.
(10) Kimura T et al., TISSUE ENGINEERING: Part A Volume 22, Numbers 23 and 24, 2016. DOI: 10.1089/ten.tea.2016.0189
(11) Doi D et al., Stem Cell Reports. 2014 Mar 6;2(3):337-50. doi: 10.1016/j.stemcr.2014.01.013. eCollection 2014.
(12) Mae S et al., Nat Commun. 2013;4:1367. doi: 10.1038/ncomms2378.
(13) Egawa N et al., Sci Transl Med. 2012 Aug 1;4(145):145ra104. doi: 10.1126/scitranslmed.3004052.
(14) Niwa A et al., PLoS One. 2011;6(7):e22261. doi: 10.1371/journal.pone.0022261. Epub 2011 Jul 27.
<実験材料・実験方法>
(1)ラミニンE8およびラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲート
ヒトラミニン511E8(以下「LN511E8」と表記する)、LN511E8のα5鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-511E8(D1;a-C)」と表記する)、ヒトラミニン421E8(以下「LN421E8」と表記する)およびLN421E8のα4鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-421E8(D1;a-C)」と表記する)を使用した。LN511E8は井戸らの方法(Hiroyuki Ido et al., J. Biol. Chem., 282, 11144-11154, 2007)に従って作製した(WO2014/199754A1の実施例参照)。P-511E8(D1;a-C)は、WO2014/199754A1の実施例の「Plus#5ラミニンE8」と同一分子であり、その作製方法はWO2014/199754A1に記載されている。LN421E8は、上記井戸らの方法において、α5鎖E8をα4鎖E8に、β1鎖E8をβ2鎖E8にそれぞれ変更して作製した。α4鎖E8発現ベクターおよびβ2鎖E8発現ベクターの作製方法はWO2014/103534A1に記載されている。P-421E8(D1;a-C)は、P-511E8(D1;a-C)の作製方法において、α5鎖E8をα4鎖E8に変更し、β1鎖E8をβ2鎖E8に変更して作製した。
ヒトiPS細胞(以下「hiPS細胞」と表記する)として、253G1株および201B7株をRIKEN BRCから購入して使用した。hiPS細胞は、中川らの方法(Nakagawa et al., Sci. Rep. 4:3594, doi:10.1038/srep03594, 2014)を一部変更したプロトコールを用いて維持培養した。253G1株はLN511E8またはP-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートに播種して分化誘導させた。201B7株はLN421E8またはP-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートに播種して分化誘導させた。
維持培養中のhiPS細胞に細胞剥離液(TrypLE Select(Life Technologies)を0.5mM EDTA/PBS(-)で1:1に希釈した液)を添加し、37℃5分間インキュベートしてhiPS細胞を剥がし、hiPS細胞懸濁液を調製した。詳細には、インキュベート後に細胞剥離液を吸引除去し、PBS(-)で洗浄した後、10μMのROCK阻害剤(Y-27632、和光純薬)を含有するStemFitAK02N培地(味の素)を1ml/well加え、セルスクレーパーを用いてhiPS細胞を回収した。繰り返しのピペッティングで単一細胞まで分散させた後、Countess自動セルカウンター(Life Technologies)を用いて細胞数を測定した。
前日に、培養用6穴プレート(BD biosciences)に22nM P-511E8(D1;a-C) コーティング液、22nM P-421E8(D1;a-C) コーティング液、22nM LN511E8 コーティング液または22nM LN421E8 コーティング液を1.5ml/well添加し、4℃で一夜静置してコーティングを行った。当日、コーティングされたラミニンE8の乾燥による失活を防止するために、PBS(-)で調製したリコンビナントヒト血清アルブミン(Novozymes)溶液(1mg/ml)を1.5ml/well添加した。
ウェルに残った溶液を吸引除去し、単一細胞に分散した253G1株hiPS細胞および201B7株hiPS細胞を、それぞれ5.0×105cells/wellで播種し、前培養を開始した。培地には、10μMのROCK阻害剤(Y-27632)を含有するStemFitAK02N培地を使用した。37℃、0.5%CO2条件下で3日間培養し、50~60%コンフルエントに達した時点で分化誘導を開始した。
hiPS細胞から心筋細胞への分化誘導方法として、Kadariらの方法(Kadari et al., Stem Cell Rev and Rep (2015) 11:560-569)を一部変更したプロトコールを用いた。分化誘導に使用した培地、および添加した因子を以下の表5に示した。
253G1株hiPS細胞から分化誘導した細胞の拍動を観察した。PrimoVert倒立顕微鏡(ZEISS)の低倍レンズ(4倍)でウェル全体を観察し、拍動細胞塊の位置を確認した。次に、BZ-X700オールインワン蛍光顕微鏡(Keyence)のタイムラプスモジュールを用いて同倍率(4倍)で拍動細胞塊を10秒間にわたって動画撮影した。次いで、KeyenceのBZ-X700オールインワン蛍光顕微鏡のMotion Analyzerを用いて10秒間の動画を291枚の静止画像に変換し、個々の拍動細胞塊の伸縮している箇所を選択して拍動に伴う移動距離(振幅:μm)を定量測定した。そのデータをExcelにエクスポートしてグラフを作成した。
FACS解析は、山田らの方法 (Yamada et al., Biochem J. 2008 Nov 1;415(3):417-427)を一部変更した方法で実施した。253G1株hiPS細胞から分化誘導した細胞および201B7株hiPS細胞から分化誘導した細胞をFACS解析に供した。一次抗体には、マウス抗トロポニンT抗体(クローン1C11、Abcam)を使用し、二次抗体にはAlexa Fluor488標識ヤギ抗マウスIgG抗体を使用した。
12日間分化誘導した細胞を細胞剥離液(TrypLE Select(Life Technologies)を0.5mM EDTA/PBS(-)で1:1に希釈した液)で剥がし、繰り返しのピペッティングで単一細胞まで分散させた。PBS(-)で希釈したホルマリン(ホルマリン:PBS(-)=1:10)を用いて室温で10分間固定処理を行った。ホルマリンを除去し、PBS(-)で2回洗浄した後、800μlのPBS(-)に懸濁した。
10日間分化誘導した細胞を用いた。上記(6-1)に記載のとおり、細胞を剥離、分散、固定、洗浄した後、400μlのPBS(-)に懸濁し、細胞懸濁液200μlを用いて(6-1)に記載のとおり一次抗体反応、二次抗体反応を行い、FACScan フローサイトメーター(Becton Dickinson)を用いてトロポニンT陽性細胞の解析を行った。
(1)拍動細胞の観察
hiPS細胞(253G1株)から心筋細胞へ分化誘導した細胞の拍動を観察した結果を図1、図2、図3に示した。図1は拍動細胞塊を10秒間動画撮影した1コマの静止画像であり、(A)はLN511E8をコーティングしたプレートを用いて分化誘導した細胞、(B)はP-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いて分化誘導した細胞の結果である。破線で囲っている部分が1個の拍動細胞塊である。LN511E8をコーティングしたプレートを用いた場合は1視野内に1か所のみ拍動細胞塊が観察されたのに対し、P-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合は1視野内に12か所の拍動細胞塊が観察された。
(2-1)hiPS細胞(253G1株)から分化誘導した細胞の結果
結果を図4に示した。(A)はLN511E8をコーティングしたプレートを用いた結果であり、(B)P-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた結果である。(A)では15.1%のcTnT陽性細胞が認められた。一方、(B)では71.6%のcTnT陽性細胞が認められた。
結果を図5に示した。(A)はLN421E8をコーティングしたプレートを用いた結果であり、(B)はP-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた結果である。(A)では10.4%のcTnT陽性細胞が認められた。一方、(B)では33.9%のcTnT陽性細胞が認められた。
<実験材料・実験方法>
(1)ラミニンE8およびラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲート
LN421E8、P-421E8(D1;a-C)およびP-511E8(D1;a-C)を使用した。これらはいずれも実施例1で使用したものと同じである。
hiPS細胞201B7株を使用した。当該201B7株を常法に従ってCRISPR/CAS9システムを用いた相同組換えにより、MYF5遺伝子座の開始コドンの5'側へtdTomato配列を連結させ、MYF5の発現と連携してtdTomatoを発現するiPS細胞株(MYF5-tdTomato C3 iPSCs、以下「MYF5-tdTomato」と表記する)を作製した。MYF5-tdTomatoは、片アレルのみに遺伝子組み換えが行われたことを確認している。
6穴プレートで維持培養中のhiPS細胞のウェルから培地を吸引除去し、PBS(-) 1mlを添加して洗浄し、Accutaseを500μl添加し、37℃10分間インキュベートした。ピペッティングにより細胞を剥離し、StemFitAK02N培地(味の素)を2ml添加してチューブに回収した。900rpmで5分間遠心分離し、上清を除去して10μMのY-27632を含有するStemFitAK02N培地を1~2ml加えて再懸濁し、細胞数を測定した。
培養用6穴プレートに、22nM P-511E8(D1;a-C) コーティング液、22nM P-421E8(D1;a-C) コーティング液または22nM LN421E8 コーティング液を1.5ml/well添加し、37℃で1時間静置してコーティングを行った。マトリゲルはhiPS細胞維持培地(KSR培地、bFGF不含)で100倍に希釈してウェルに添加し、37℃で一夜静置してコーティングを行った。ウェルに残ったコーティング溶液を吸引除去し、単一細胞に分散したhiPS細胞(MYF5-tdTomatoまたは201B7株)を、1×104cells/wellで播種し、前培養を開始した(Day -3)。翌日(Day -2)10μM Y-27632含有StemFitAK02Nで培地交換し、2日間培養を続けた。
分化誘導開始日(Day 0)に、分化培地A(2ml/well)に培地交換した。分化培地Aは、5μMのSB431542、10μMのCHIR99021を含有するCDMi基本培地(Iscove's Modified Dulbecco's Medium (12440053, Invitrogen)とHam's F-12 Nutrient Mixture (11765054, Invitrogen) を1:1で混合した培地に1% Penicillin-Streptomycin Mixed Solution (ナカライテスク)、1% CD Lipid Concentrate (Invitrogen)、1% Insulin-Transferrin-Selenium (Invitrogen)、450μM 1-Thioglycerol (SIGMA)を添加したもの)である。その後、2日目(Day 2)および5日目(Day 5)に培地交換を行った。
分化誘導38日目の細胞をプレート上に接着したまま、PBS(-)で希釈した2%パラホルムアルデヒド溶液を用いて4℃で10分間固定処理を行った。パラホルムアルデヒドを除去し接着細胞をPBS(-)で3回洗浄した後、ブロッキングワン液(ナカライテスク)にて1時間室温でブロッキングした。一次抗体にはマウス抗ミオシン重鎖(MHC)抗体(eBiosciense)およびウサギ抗MyoD抗体(Abcam)を使用した。当該抗体を0.1% Triton-X 100/PBS(-)で10倍に希釈したブロッキングワン液で400倍希釈し、ブロッキングワン液を除去した接着細胞に添加し、室温で60分間インキュベートした。0.1% Triton-X 100/PBS(-)で3回洗浄した後、0.1% Triton-X 100/PBS(-)で10倍に希釈したブロッキングワン液で500倍希釈したAlexa Fluor488標識抗ウサギIgG抗体およびAlexa Fluor568標識抗マウスIgG抗体を添加し、遮光下室温で60分間インキュベートした。0.1% Triton-X 100/PBS(-)で3回洗浄した後、PBS(-)で50000倍希釈したDAPI(Thermo Fisher)で、遮光下室温で5分間カウンター染色を行った。PBS(-)で3回洗浄した後、BZ-X700オールインワン蛍光顕微鏡を用いてMHCおよびMyoD陽性細胞を観察した。
分化14日目の細胞を回収し、SIX1およびSox1の遺伝子発現量を定量した。また、分化38日目の細胞を回収し、MyoD、Myosin Heavy Chain(MHC)、MyogeninおよびPax7の遺伝子発現量を定量した。具体的には、ReliaPrep RNA Cell Miniprep System(Promega)を用いて、回収した細胞からRNAを精製した。精製したRNA 1μgより、ReverTraAce-a-キット(東洋紡)を用いてcDNAを合成した。得られたcDNAをテンプレートとして、PowerSYBR Green Master Mix(Thermo Fisher)を用いて、各遺伝子特異的プライマーとともに定量的PCRを実施した。PCR反応および解析は、StepOnePlusリアルタイムPCRシステム(Thermo Fisher)を用いて標準プロトコールにて実施した。別途、未分化hiPS細胞を免疫不全マウスに移植して形成させた奇形腫からRNAを精製してcDNAを合成し、標準曲線作成用のポジティブコントロールとして使用した。奇形腫における各遺伝子の発現量を1とし、分化誘導後の細胞における各遺伝子の相対発現量を算出した。なお、total RNA量を内因性コントロールであるβアクチンの発現量で補正した。
分化18日目あるいは85日目の細胞を0.2% Collagenase I(Sigma)にて37℃、30分反応させ細胞をディッシュから剥離し、さらにAccutase(ナカライテスク)にて37℃、10分間反応させ、繰り返しのピペッティングで単一細胞まで分散させた。遠心後上清を除去し、細胞ペレットを1%BSA含有HBSS(-)(Thermo Fisher)1mlにて懸濁し、LSRFortessaセルアナライザー(BD Biosciences)を用いてtdTomatoの発現量を解析した。
hiPS細胞としてMYF5-tdTomatoを用い、マトリゲル、LN421E8、P-421E8(D1;a-C)またはP-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートで、上記の方法により骨格筋細胞への分化誘導を行った。14日目の細胞におけるSIX1遺伝子(骨格筋に発現)とSox1遺伝子(神経に発現)の発現量を定量した。18日目および85日目の細胞におけるMyf5(骨格筋幹細胞マーカー)陽性細胞の出現率をFACSで解析した。38日目の細胞におけるMHCとMyoDの発現を免疫染色により観察した。
38日目の細胞におけるMHCとMyoDの発現を免疫染色により観察した結果を図6に示した。マトリゲルをコーティングしたプレートを用いた場合は(上段:MG)、観察視野の中にMHC陽性細胞およびMyoD陽性細胞が存在する領域と存在しない領域(黒い部分)が観察された。LN421E8をコーティングしたプレートを用いた場合は(2段目:421)、観察視野の一部にMHC陽性細胞およびMyoD陽性細胞が存在したに過ぎず、マトリゲルより分化効率が劣ることが示された。一方、P-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合は(3段目:p421)、観察視野の全体にMHC陽性細胞およびMyoD陽性細胞が観察され、分化効率はマトリゲルより顕著に優れていることが示された。P-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合は(下段:p511)、マトリゲルと同様にMHC陽性細胞およびMyoD陽性細胞が存在する領域と存在しない領域(黒い部分)が混在したが、存在する領域はマトリゲルより多かった。
14日目の細胞におけるSIX1遺伝子およびSox1遺伝子の発現量を定量した結果を図7に示した。(A)はSIX1遺伝子の結果、(B)はSox1遺伝子の結果である。骨格筋に発現するSIX1遺伝子は、P-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合(図中p421)、マトリゲルをコーティングしたプレートを用いた場合(図中MG)より2倍以上発現量が高かった。P-511E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合は(図中p511)マトリゲルと同程度の発現量であり、LN421E8をコーティングしたプレートを用いた場合は(図中421)ほとんど発現していなかった。神経に発現するSox1遺伝子は、LN421E8をコーティングしたプレートを用いた場合(図中421)に発現量が高かったが、それ以外では、ほとんど発現していなかった。
18日目および85日目の細胞におけるMyf5(骨格筋幹細胞マーカー)陽性細胞の出現率をFACSで解析した結果を図8に示した。左は18日目の結果、右は85日目の結果である。P-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合(図中p421)、18日目の時点でMyf5陽性細胞6.9%出現しており、マトリゲルをコーティングしたプレートを用いた場合(図中MG)の出現率(1.6%)より顕著に高かった。85日目では、マトリゲルをコーティングしたプレートを用いた場合が4.6%であるのに対して、P-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いた場合は22.8%であった。
hiPS細胞として、未分化性が安定しており分化誘導が難しいことが知られている201B7株を用い、マトリゲルまたはP-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートで、上記の方法により骨格筋細胞への分化誘導を行った。38日目の細胞におけるMHCとMyoDの発現を免疫染色により観察した。また、38日目の細胞における骨格筋マーカー遺伝子(MyoD、MHC、Myogenin、Pax7)の発現量を定量した。
<実験材料・実験方法>
(1)ラミニンE8およびラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲート
実施例2で用いたLN421E8、P-421E8(D1;a-C)およびP-511E8(D1;a-C)以外に、ヒトラミニン111E8(以下「LN111E8」)およびLN111E8のα1鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-111E8(D1;a-C)」)、ヒトラミニン211E8(以下「LN211E8」)およびLN211E8のα2鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-211E8(D1;a-C)」)、ヒトラミニン332E8(以下「LN332E8」)およびLN332E8のα3鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-332E8(D1;a-C)」)、ヒトラミニン411E8(以下「LN411E8」)およびLN411E8のα4鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-411E8(D1;a-C)」)、ヒトラミニン511E8(以下「LN511E8」)、ならびに、ヒトラミニン521E8(以下「LN521E8」)およびLN521E8のα5鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-521E8(D1;a-C)」)を使用した。各ラミニンE8は、井戸らの方法(Hiroyuki Ido et al., J. Biol. Chem., 282, 11144-11154, 2007)を適宜変更して作製した。各ラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲートは、WO2014/199754A1に記載の方法を適宜変更して作製した。
hiPS細胞201B7株を使用した。
(3)hiPS細胞の前培養
上記の各ラミニンE8、上記の各コンジュゲートおよびマトリゲルをコーティングしたプレートを用いて、実施例2(3)と同じ方法で行った。
(4)骨格筋細胞への分化誘導
上記の各ラミニンE8、上記の各コンジュゲートおよびマトリゲルをコーティングしたプレートを用いて、実施例2(4)と同じ方法で行った。
ウサギ抗MyoD抗体(Abcam)およびAlexa Fluor488標識抗ウサギIgG抗体を使用しなかったこと以外は、実施例2(5)と同じ方法で行った。
(6)遺伝子発現量の定量
分化14日目の細胞を回収し、皮筋節(dermomyotome)マーカーであるSIX1遺伝子およびDMRT2遺伝子の発現量を定量した。遺伝子発現量の定量は、実施例2(6)と同じ方法で行った。
(1)免疫染色
分化誘導38日目の細胞におけるMHCの発現を免疫染色により観察した結果を図11に示した。マトリゲルをコーティングしたプレートを用いた場合は(左1段目:MG)、観察視野の中にMHC陽性細胞が存在する領域と存在しない領域(黒い部分)が観察された。各ラミニンE8(左2~8段目、111~521)をコーティングしたプレートを用いた場合は、MHC陽性細胞がほとんど存在しなかった。各コンジュゲート(右1~7段目、p111~p521)をコーティングしたプレートを用いた場合はいずれもMHC陽性細胞が存在したが、実施例2の結果と同様に、P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合(右5段目、p421)、観察視野の全体にMHC陽性細胞が観察され、分化効率はマトリゲルより顕著に優れていることが示された。P-411E8(D1;a-C)コーティングプレート、P-511E8(D1;a-C)コーティングプレートおよびP-521E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合(右4、6、7段目、p411、p511、p521)は、マトリゲルコーティングプレート(左1段目:MG)を用いた場合と同程度の領域にMHC陽性細胞が観察された。P-111E8(D1;a-C)コーティングプレート、P-211E8(D1;a-C)コーティングプレートおよびP-3321E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合(右1-3段目、p111、p211、p322)は、マトリゲルコーティングプレートを用いた場合より、MHC陽性細胞の領域は少なかった。
14日目の細胞におけるSIX1遺伝子およびDMRT2遺伝子の発現量を定量した結果を図12に示した。(A)はSIX1遺伝子の結果、(B)はDMRT2遺伝子の結果である。両遺伝子とも、各ラミニンE8(図中Perlecan -)、P-111E8(D1;a-C)(図中111+)およびP-332E8(D1;a-C)(図中332+)をそれぞれコーティングしたプレートを用いた場合は、マトリゲルコーティングプレートを用いた場合と同程度の発現量であった。両遺伝子とも、P-211E8(D1;a-C)(図中211+)、P-411E8(D1;a-C)(図中411+)、P-421E8(D1;a-C)(図中421+)、P-511E8(D1;a-C)(図中511+)およびP-521E8(D1;a-C)(図中521+)をそれぞれコーティングしたプレートを用いた場合は、マトリゲルコーティングプレートを用いた場合より顕著に発現量が高かった。なかでも、P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合が、最も発現量が高かった。
以上の結果から、hiPS細胞から骨格筋細胞への分化誘導において、P-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いることの有用性および優位性が明らかになった。また、P-411E8(D1;a-C)、P-511E8(D1;a-C)およびP-521E8(D1;a-C)をそれぞれコーティングしたプレートを用いた場合は、マトリゲルをコーティングしたプレートを用いた場合と同等の分化誘導効率が得られることが明らかになった。
<実験材料・実験方法>
(1)ラミニンE8およびラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲート
LN421E8およびP-421E8(D1;a-C)を使用した。
(2)hiPS細胞
hiPS細胞201B7株を使用した。
培養用6穴プレートに、22nM P-421E8(D1;a-C)コーティング液または22nM LN421E8 コーティング液を1.5ml/well添加し、4℃で一夜静置してコーティングを行った。
(4)P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートのヘパリチナーゼ処理
22nM P-421E8(D1;a-C)コーティング液を1.5ml/well添加して4℃で一夜静置したプレートを、0.1%リコンビナントヒト血清アルブミン(rHSA)を含むTris Buffered Saline(TBS)で3回洗浄した。続いて、1%スキムミルクを含むTBSを添加して室温で1時間静置し、ブロッキングを行った。0.1%rHSA/TBSで3回洗浄した後、ヘパリチナーゼ液(生化学工業製Heparitinase(Code#:100703)8 mU/ml;0.22μmフィルターでろ過滅菌したもの)を1.5ml添加し、37℃で6時間インキュベートした。0.1%rHSA/PBSで3回洗浄した。ヘパリチナーゼ処理後のプレートにおいてパールカンドメイン1からヘパラン硫酸鎖が除去されていることを、一次抗体として抗ヘパラン硫酸抗体(Ab Heparan Sulfate, purified (clone F58-10E4) Mouse IgM, κ-chain; AMS Biotechnology)、二次抗体としてAlexa Fluor 488 Goat Anti-Mouse IgM μchain(Invitrogen)を用いた免疫染色により確認した。
LN421E8、P-421E8(D1;a-C)およびヘパリチナーゼ処理したP-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いて、実施例2(3)と同じ方法で行った。
(6)骨格筋細胞への分化誘導
LN421E8、P-421E8(D1;a-C)およびヘパリチナーゼ処理したP-421E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いて、実施例2(4)と同じ方法で行った。
実施例2(5)と同じ方法で行った。
(8)遺伝子発現量の定量
分化14日目の細胞を回収し、皮筋節(dermomyotome)マーカーであるSIX1遺伝子の発現量を定量した。遺伝子発現量の定量は、実施例2(6)と同じ方法で行った。
(1)免疫染色
38日目の細胞におけるMHCとMyoDの発現を免疫染色により観察した結果を図13に示した。P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合(左:p421)は観察視野の全体にMHC陽性細胞およびMyoD陽性細胞が観察されたが、ヘパリチナーゼ処理P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合(中央:p421+Hepa)は、LN421E8コーティングプレートを用いた場合(右:421)と同様に、MHC陽性細胞およびMyoD陽性細胞は観察されなかった。
14日目の細胞におけるSIX1遺伝子の発現量を定量した結果を図14に示した。ヘパリチナーゼ処理P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合(p421+Hepa)の発現量は、LN421E8コーティングプレートを用いた場合(421)と同程度の低い発現量であったが、P-421E8(D1;a-C)コーティングプレートを用いた場合は、有意に高い発現量を示した。
以上の結果から、ラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲートを用いて多能性幹細胞を体細胞に分化誘導する方法において、パールカンドメイン1のヘパラン硫酸鎖が重要な役割を演じていることが明らかになった。
<実験材料・実験方法>
(1)ラミニンE8およびラミニンE8とパールカンドメイン1が連結したコンジュゲート
ヒトラミニン411E8(以下「LN411E8」と表記する)、LN411E8のα4鎖のC末端にヒトパールカンのドメイン1を融合させたコンジュゲート(以下「P-411E8(D1;a-C)」と表記する)およびLN511E8を使用した。LN511E8は井戸らの方法(Hiroyuki Ido et al., J. Biol. Chem., 282, 11144-11154, 2007)に従って作製した(WO2014/199754A1の実施例参照)。LN411E8は、上記井戸らの方法において、α5鎖E8をα4鎖E8に変更して作製した。P-411E8(D1;a-C)は、WO2014/199754A1に記載のP-511E8(D1;a-C)の作製方法(実施例1参照)において、α5鎖E8をα4鎖E8に変更して作製した。
京都大学の山中伸弥教授より受領したhiPS細胞409B2株を使用した。
(3)プレートのコーティング
LN511E8、LN411E8およびP-411E8(D1;a-C)をそれぞれPBS(-)で溶解してコーティング溶液を調製し、コーティング濃度が0.4μg/cm2になるように培養用6穴プレート(BD Falcon)に分注し、37℃で2時間静置してコーティングを行った。
維持培養中のhiPS細胞に細胞剥離液(TrypLE Select(Life Technologies)を0.5mM EDTA/PBS(-)で1:1に希釈した液)を添加し、37℃5分間インキュベートしてhiPS細胞を剥がした。hiPS細胞の細胞塊をLN511E8でコーティングした6穴プレートに5細胞塊/cm2の密度で播種し、mTeSR1培地で培養した。コロニーの直径が約750μmになったら、培地をCHIR99021(4μM)、BMP4(80ng/mL)およびVEGF(80ng/mL)を含むEssential8培地(Thermo Fisher)に交換し、中胚葉前駆細胞への分化を誘導した。
培地交換後51時間目に、TrypLE Expressを37℃の条件で20分間反応させて全ての細胞を剥がし、繰り返しのピペッティングで単一細胞まで分散させた。LN411E8またはP-411E8(D1;a-C)でコーティングした6ウェルプレートに、単一細胞に分散した中胚葉前駆細胞を2×105/wellの密度で播種した。その後、VEGF(20μg/mLまたは80μg/mL)を含むStemPro-34 SFM培地(Thermo Fisher)で4日間培養した。
血管内皮細胞への分化誘導4日目におけるマーカーの発現をフローサイトメトリーで解析した。詳細には、細胞をTrypLE Expressで37℃で20分間処理し、StemPro-34 SFM培地で抗体反応を行った。抗ヒトVE-カドヘリン抗体(eBioscience、1:100で希釈)および抗ヒトCD31抗体(R&D systems、1:10で希釈)を用いた。
(1)血管内皮細胞(VE-カドヘリン陽性/CD31陽性細胞)数
結果を図15に示した。いずれのVEGF濃度条件においても、VE-カドヘリン陽性/CD31陽性細胞数は、P-411E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いたほうがLN411E8をコーティングしたプレートを用いた場合より有意に増加していた。
結果を図16に示した。いずれのVEGF濃度条件においても、VE-カドヘリン陽性/CD31陽性細胞率は、P-411E8(D1;a-C)をコーティングしたプレートを用いたほうがLN411E8をコーティングしたプレートを用いた場合より高い傾向を示した。
Claims (9)
- 多能性幹細胞を、ヘパリン結合性増殖因子を含む培地を用いて体細胞に分化誘導する方法において、ラミニンE8フラグメントとヘパラン硫酸プロテオグリカンの増殖因子結合部位を含むフラグメントとが連結したコンジュゲートを細胞に接触させることを特徴とし、前記ヘパラン硫酸プロテオグリカンの増殖因子結合部位を含むフラグメントが、パールカンのドメイン1を含むフラグメントである分化誘導方法。
- 前記コンジュゲートが、ラミニンE8フラグメントのα鎖のC末端にヘパラン硫酸プロテオグリカンの増殖因子結合部位を含むフラグメントが連結しているコンジュゲートである請求項1に記載の分化誘導方法。
- 前記コンジュゲートがコーティングされた細胞培養容器を用いて多能性幹細胞を体細胞に分化誘導することを特徴とする請求項1または2に記載の分化誘導方法。
- 前記ヘパリン結合性増殖因子が、骨形成タンパク質2、骨形成タンパク質4、骨形成タンパク質7、塩基性線維芽細胞増殖因子、線維芽細胞増殖因子4、線維芽細胞増殖因子8、線維芽細胞増殖因子10、肝細胞増殖因子、血小板由来増殖因子BB、Wnt3aタンパク質、ソニック・ヘッジホッグ、血管内皮細胞増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β、アクチビンA、オンコスタチンM、ケラチノサイト成長因子およびグリア細胞株由来神経栄養因子から選択される1種以上である請求項1~3のいずれかに記載の分化誘導方法。
- 前記多能性幹細胞がヒトiPS細胞である請求項1~4のいずれかに記載の分化誘導方法。
- 前記体細胞が、中胚葉由来の体細胞である請求項1~5のいずれかに記載の分化誘導方法。
- ヒトiPS細胞を、骨形成タンパク質4またはアクチビンAを含む培地を用いて心筋細胞に分化誘導する方法において、ヒトラミニンα4β2γ1E8フラグメントのα鎖のC末端またはヒトラミニンα5β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端にパールカンのドメイン1が連結しているコンジュゲートを細胞に接触させて分化誘導することを特徴とする請求項1~6のいずれかに記載の分化誘導方法。
- ヒトiPS細胞を、塩基性線維芽細胞増殖因子および肝細胞増殖因子を含む培地を用いて骨格筋細胞に分化誘導する方法において、ヒトラミニンα4β2γ1E8フラグメントのα鎖のC末端、ヒトラミニンα5β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端、ヒトラミニンα4β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端またはヒトラミニンα5β2γ1E8フラグメントのα鎖のC末端にパールカンのドメイン1が連結しているコンジュゲートを細胞に接触させて分化誘導することを特徴とする請求項1~6のいずれかに記載の分化誘導方法。
- ヒトiPS細胞を、血管内皮細胞増殖因子を含む培地を用いて血管内皮細胞に分化誘導する方法において、ヒトラミニンα4β1γ1E8フラグメントのα鎖のC末端にパールカンのドメイン1が連結しているコンジュゲートを細胞に接触させて分化誘導することを特徴とする請求項1~6のいずれかに記載の分化誘導方法。
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