JP6990522B2 - 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 - Google Patents
免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 Download PDFInfo
- Publication number
- JP6990522B2 JP6990522B2 JP2017078407A JP2017078407A JP6990522B2 JP 6990522 B2 JP6990522 B2 JP 6990522B2 JP 2017078407 A JP2017078407 A JP 2017078407A JP 2017078407 A JP2017078407 A JP 2017078407A JP 6990522 B2 JP6990522 B2 JP 6990522B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- immune
- measured
- cell
- immune cell
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 210000002865 immune cell Anatomy 0.000 title claims description 324
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 title claims description 314
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 85
- 210000000428 immunological synapse Anatomy 0.000 title claims description 54
- 230000004044 response Effects 0.000 title claims description 9
- 230000003308 immunostimulating effect Effects 0.000 claims description 153
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 145
- 210000001744 T-lymphocyte Anatomy 0.000 claims description 118
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 96
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 claims description 89
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 87
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims description 87
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims description 87
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 claims description 69
- 230000004043 responsiveness Effects 0.000 claims description 63
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 claims description 49
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 37
- 230000000735 allogeneic effect Effects 0.000 claims description 34
- 238000009826 distribution Methods 0.000 claims description 33
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims description 28
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims description 26
- 108010029697 CD40 Ligand Proteins 0.000 claims description 19
- 102100032937 CD40 ligand Human genes 0.000 claims description 19
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 claims description 18
- 210000000612 antigen-presenting cell Anatomy 0.000 claims description 18
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 claims description 18
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims description 16
- 238000002073 fluorescence micrograph Methods 0.000 claims description 16
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 claims description 15
- 101710165473 Tumor necrosis factor receptor superfamily member 4 Proteins 0.000 claims description 11
- 102100022153 Tumor necrosis factor receptor superfamily member 4 Human genes 0.000 claims description 11
- 210000000822 natural killer cell Anatomy 0.000 claims description 11
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 claims description 9
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 8
- 230000004807 localization Effects 0.000 claims description 8
- 102000008394 Immunoglobulin Fragments Human genes 0.000 claims description 7
- 108010021625 Immunoglobulin Fragments Proteins 0.000 claims description 7
- 210000000225 synapse Anatomy 0.000 claims description 7
- 238000011282 treatment Methods 0.000 claims description 7
- 108091023037 Aptamer Proteins 0.000 claims description 5
- 101710089372 Programmed cell death protein 1 Proteins 0.000 claims description 5
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 3
- 108700018351 Major Histocompatibility Complex Proteins 0.000 claims description 2
- 230000020382 suppression by virus of host antigen processing and presentation of peptide antigen via MHC class I Effects 0.000 claims description 2
- 238000009210 therapy by ultrasound Methods 0.000 claims description 2
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 claims 5
- 238000002372 labelling Methods 0.000 claims 2
- 102100023990 60S ribosomal protein L17 Human genes 0.000 claims 1
- 102000017420 CD3 protein, epsilon/gamma/delta subunit Human genes 0.000 claims 1
- 108050005493 CD3 protein, epsilon/gamma/delta subunit Proteins 0.000 claims 1
- 102100039498 Cytotoxic T-lymphocyte protein 4 Human genes 0.000 claims 1
- 101000889276 Homo sapiens Cytotoxic T-lymphocyte protein 4 Proteins 0.000 claims 1
- 101000914514 Homo sapiens T-cell-specific surface glycoprotein CD28 Proteins 0.000 claims 1
- 102100027213 T-cell-specific surface glycoprotein CD28 Human genes 0.000 claims 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 56
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 37
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 25
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 23
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 20
- 230000010365 information processing Effects 0.000 description 18
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 15
- 108010004729 Phycoerythrin Proteins 0.000 description 14
- 229960001438 immunostimulant agent Drugs 0.000 description 11
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 10
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 10
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 10
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 8
- 238000004590 computer program Methods 0.000 description 7
- 239000000047 product Substances 0.000 description 7
- 102000004634 CD30 Ligand Human genes 0.000 description 6
- 108010017987 CD30 Ligand Proteins 0.000 description 6
- 229930040373 Paraformaldehyde Natural products 0.000 description 6
- 238000004891 communication Methods 0.000 description 6
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 6
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 5
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 5
- 230000000139 costimulatory effect Effects 0.000 description 5
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 5
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 5
- 239000000834 fixative Substances 0.000 description 5
- 210000005259 peripheral blood Anatomy 0.000 description 5
- 239000011886 peripheral blood Substances 0.000 description 5
- 102000005962 receptors Human genes 0.000 description 5
- 108020003175 receptors Proteins 0.000 description 5
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 5
- YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N (+)-Biotin Chemical compound N1C(=O)N[C@@H]2[C@H](CCCCC(=O)O)SC[C@@H]21 YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N 0.000 description 4
- 102100040678 Programmed cell death protein 1 Human genes 0.000 description 4
- 108091008874 T cell receptors Proteins 0.000 description 4
- 102000016266 T-Cell Antigen Receptors Human genes 0.000 description 4
- 238000007405 data analysis Methods 0.000 description 4
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 4
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 4
- 229940127174 UCHT1 Drugs 0.000 description 3
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 3
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 230000016396 cytokine production Effects 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 238000010191 image analysis Methods 0.000 description 3
- 230000020287 immunological synapse formation Effects 0.000 description 3
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 3
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 3
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 3
- 108090001008 Avidin Proteins 0.000 description 2
- -1 CTLA4 Proteins 0.000 description 2
- 108010088652 Histocompatibility Antigens Class I Proteins 0.000 description 2
- 102000008949 Histocompatibility Antigens Class I Human genes 0.000 description 2
- 108010027412 Histocompatibility Antigens Class II Proteins 0.000 description 2
- 102000018713 Histocompatibility Antigens Class II Human genes 0.000 description 2
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 2
- 101001002657 Homo sapiens Interleukin-2 Proteins 0.000 description 2
- 102100037850 Interferon gamma Human genes 0.000 description 2
- 108010074328 Interferon-gamma Proteins 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 108010090804 Streptavidin Proteins 0.000 description 2
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 2
- 229960002685 biotin Drugs 0.000 description 2
- 235000020958 biotin Nutrition 0.000 description 2
- 239000011616 biotin Substances 0.000 description 2
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 2
- 238000003320 cell separation method Methods 0.000 description 2
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 2
- 210000001151 cytotoxic T lymphocyte Anatomy 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 210000003162 effector t lymphocyte Anatomy 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 210000004700 fetal blood Anatomy 0.000 description 2
- 230000006870 function Effects 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 2
- 210000002443 helper t lymphocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000003100 immobilizing effect Effects 0.000 description 2
- 230000001976 improved effect Effects 0.000 description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 210000003819 peripheral blood mononuclear cell Anatomy 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- 238000010079 rubber tapping Methods 0.000 description 2
- 239000004065 semiconductor Substances 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 2
- 239000012099 Alexa Fluor family Substances 0.000 description 1
- 101150013553 CD40 gene Proteins 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 102000043129 MHC class I family Human genes 0.000 description 1
- 108091054437 MHC class I family Proteins 0.000 description 1
- 102000043131 MHC class II family Human genes 0.000 description 1
- 108091054438 MHC class II family Proteins 0.000 description 1
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 102000018697 Membrane Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010052285 Membrane Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 241000187479 Mycobacterium tuberculosis Species 0.000 description 1
- 108091008877 NK cell receptors Proteins 0.000 description 1
- 102000010648 Natural Killer Cell Receptors Human genes 0.000 description 1
- 102100040245 Tumor necrosis factor receptor superfamily member 5 Human genes 0.000 description 1
- 208000026935 allergic disease Diseases 0.000 description 1
- 238000011316 allogeneic transplantation Methods 0.000 description 1
- 210000003719 b-lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 230000001461 cytolytic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000433 cytotoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000001472 cytotoxic effect Effects 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 1
- 230000001747 exhibiting effect Effects 0.000 description 1
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 102000034287 fluorescent proteins Human genes 0.000 description 1
- 108091006047 fluorescent proteins Proteins 0.000 description 1
- 238000009652 hydrodynamic focusing Methods 0.000 description 1
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 1
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 1
- 238000012744 immunostaining Methods 0.000 description 1
- 238000009169 immunotherapy Methods 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 230000010354 integration Effects 0.000 description 1
- 102000006495 integrins Human genes 0.000 description 1
- 108010044426 integrins Proteins 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 239000003446 ligand Substances 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 210000002540 macrophage Anatomy 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000001404 mediated effect Effects 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 230000004899 motility Effects 0.000 description 1
- 210000002569 neuron Anatomy 0.000 description 1
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 1
- 101710135378 pH 6 antigen Proteins 0.000 description 1
- 230000008288 physiological mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000003672 processing method Methods 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 239000001397 quillaja saponaria molina bark Substances 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 210000003289 regulatory T cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000000844 retinal pigment epithelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 229930182490 saponin Natural products 0.000 description 1
- 150000007949 saponins Chemical class 0.000 description 1
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000000527 sonication Methods 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 230000001629 suppression Effects 0.000 description 1
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 1
- 230000000946 synaptic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
- G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
- G01N33/5044—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
- G01N33/5047—Cells of the immune system
- G01N33/505—Cells of the immune system involving T-cells
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
- G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
- G01N33/5044—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
- G01N33/5047—Cells of the immune system
-
- G01N15/1433—
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
- G01N15/1434—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers using an analyser being characterised by its optical arrangement
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
- G01N15/1468—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers with spatial resolution of the texture or inner structure of the particle
- G01N15/147—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers with spatial resolution of the texture or inner structure of the particle the analysis being performed on a sample stream
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
- G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
- G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
- G01N21/6486—Measuring fluorescence of biological material, e.g. DNA, RNA, cells
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
- G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
- G01N33/5044—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
- G01N33/5058—Neurological cells
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N2015/1006—Investigating individual particles for cytology
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
- G01N2015/1497—Particle shape
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
- G01N33/582—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with fluorescent label
Description
本発明は、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置に関する。
免疫は、生体が体内の自己又は非自己を識別して非自己を排除するために行う細胞性及び体液性の生物学的反応の総称である。免疫系は、生命活動において非常に重要な生理的メカニズムである。免疫系の細胞は、サイトカインと呼ばれるタンパク質を分泌したり、細胞傷害性機能を発揮したりすることで、免疫系の活性化や抑制に関与する。
免疫系は、移植療法の成否を左右し得る他家細胞に対する拒絶反応に深く関わっている。近年、ヒトにおける疾患を、免疫系を利用して治療を行う免疫療法の有用性が示され、免疫系の状態を把握する重要性がますます高まっている。
免疫系の状態の分析方法として、サイトカイン分泌に基づいた分析方法が知られている。この分析方法では、免疫系の細胞の免疫刺激後に前記細胞を培養する必要があり、免疫刺激後からサイトカインの検出まで多大な時間(数十時間)と労力を要する。
近年、免疫細胞と標的細胞とが接触した場合に、その接触面で免疫細胞に形成される構造体が注目されている。この構造体は、神経細胞により形成されるシナプス構造と機能的及び形態学的に類似していることから免疫シナプスと呼ばれる。免疫シナプスは、免疫刺激シグナルの増幅に関与することが示唆され、免疫シナプスの形成能はサイトカインを分泌する能力と相関することが知られている(非特許文献１)。また、免疫シナプスの形成は、サイトカイン分泌に比べて短時間(数十分)で生じることが知られている(非特許文献１)。
免疫シナプスを測定する方法として、例えば、ガラス基板上の免疫刺激因子を用いて免疫細胞を刺激し、ガラス基板との接触面を維持した状態で、Ｔ細胞における免疫シナプスを全反射照明蛍光顕微鏡にて測定する方法が知られている(非特許文献２)。また、標的細胞との間で形成された接触面を維持した状態で、Ｔ細胞における免疫シナプスをイメージングフローサイトメトリーにて測定する方法が知られている(非特許文献３)。非特許文献２において、免疫シナプスの検出は共刺激分子CD28を指標にして行われ、非特許文献３では免疫シナプスの検出はCD3を指標にして行われている。非特許文献２及び非特許文献３では、いずれも免疫細胞は対象物との間の接触面が維持された状態で観察されている。
Carlin LM.ら, Blood, vol.106, p.3874-3879, 2005
Yokosuka T.ら, Immunity, vol.29, p.589-601, 2008
Hosseini BH.ら, Proc Natl Acad Sci USA, vol.106, p.17852-17857, 2009
免疫系の状態を把握すること、すなわち、各種免疫刺激に対する免疫系の細胞の応答性を迅速かつ簡便に把握することは、様々な免疫系に関わる治療を行う上で非常に重要である。
従来、免疫刺激に対する免疫系の細胞の応答性を分析するために、サイトカインの分泌を指標とした分析方法が用いられていた。しかしながら、この分析方法では、免疫刺激後、サイトカインが分泌されるまで免疫細胞を培養しなければならず、煩雑で時間を要していた。
免疫系の細胞の各種免疫刺激に対する応答性の測定に、全反射照明蛍光顕微鏡を用いた場合、測定できる細胞数は少なく、測定に手間もかかるため、簡便に測定することができず、自動化装置には適してはいなかった。
したがって、当該分野には、各種免疫刺激に対する免疫系の細胞の応答性を迅速かつ簡便に把握することに関する要求があった。
本発明者らは、前記課題を解消すべく、サイトカイン分泌に比べて短時間で変化が生じ、免疫刺激シグナルの増幅に関与することが示唆されていた免疫シナプスに着目した。しかしながら、免疫シナプスは、標的細胞との結合面で免疫細胞に形成される緩やかな結合であるため(非特許文献３)、測定前及び測定中に解離することが懸念された。実際、免疫シナプスは、これまで、標的細胞と免疫細胞との接触面が解消された状態では、免疫細胞の免疫刺激に対する応答性の指標として用いられていなかった。
本発明者らは、免疫刺激に対する免疫細胞の応答性を迅速に検出する方法について、免疫シナプスの形成に関与することが知られていた各種因子に着目して検討を重ねた。その結果、各種因子の中で共刺激分子などの表面抗原を指標にした場合、免疫細胞と対象物との接触面が解消されたとしても免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定できることを見出し、本発明を成した。
本発明の第１の態様は、(i)測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)測定対象の免疫細胞に、測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させる工程と、(iii)測定対象の免疫細胞と、接触面における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、(iv)捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づいて、光学シグナルを検出するまでに接触面が解消された測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する工程とを含む、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法を提供する。
本発明の第２の態様は、(i)測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)測定対象の免疫細胞に、測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させる工程と、(iii)測定対象の免疫細胞と、接触面における共刺激分子に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、(iv)捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づいて、測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを自動的に判定する工程とを含む、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法を提供する。
本発明の第３の態様は、(i)測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)測定対象の免疫細胞に、測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させる工程と、(iii)測定対象の免疫細胞と、接触面における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、(iv)捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づいて、光学シグナルを検出するまでに接触面が解消された測定対象の免疫細胞における表面抗原の局在を判定する工程とを含む、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法を提供する。
本発明の第４の態様は、免疫刺激を受けた測定対象の免疫細胞と、前記免疫細胞の表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体との複合体であって、前記捕捉体が、前記免疫細胞と前記免疫細胞とは異なる物質との接触面における表面抗原に結合されている前記複合体を導入する導入部と、該導入部から供給された複合体を撮像する撮像部と、撮像部により撮像された画像に基づいて、撮像を実施するまでに接触面が解消された測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する解析部とを含む、細胞分析装置を提供する。
本発明の第５の態様は、免疫刺激を受けた測定対象の免疫細胞と、前記免疫細胞の表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体との複合体であって、前記捕捉体が、前記免疫細胞と前記免疫細胞とは異なる物質との接触面における表面抗原に結合されている前記複合体を導入する導入部と、該導入部から供給された複合体に光を照射し、生じた複合体からの光学シグナルを検出する検出部と、検出した光学シグナルに基づいて、光学シグナルを検出するまでに接触面が解消された測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する解析部とを含む、細胞分析装置を提供する。
本発明によれば、各種免疫刺激に対する免疫細胞の応答性を、免疫シナプスの形成能に基づいて分析することを可能にする。
本発明の一の態様は、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法に関する。この態様において、工程(i)及び(ii)は、免疫刺激因子の存在下で、測定対象の免疫細胞に、測定対象の免疫細胞とは異なる物質との間で接触面を形成させることを含む。この実施形態において、測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程(i)に続いて、測定対象の免疫細胞に、前記物質との接触面を形成させる工程(ii)が行われてもよい。あるいは、前記物質の表面に免疫刺激因子が存在する場合には、工程(i)と工程(ii)を同時に行ってもよい。この場合でも、厳密には、工程(i)の後に工程(ii)が行われている。工程(i)及び(ii)を行うことにより、活性化した免疫細胞の上記接触面において免疫シナプスが形成される。
工程(iii)では、形成した免疫シナプスを検出するために、上記の接触面を形成させた免疫細胞に対して、接触面における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体(以下、単に「捕捉体」ともいう)を接触させる。該捕捉体は、接触面における表面抗原のうち、免疫シナプスを構成する分子と結合することが好ましい。工程(iii)を行うことにより、免疫細胞において、免疫シナプスを構成する分子と、捕捉体との複合体が形成される。
次いで、工程(iv)では、免疫細胞上の該複合体に含まれる捕捉体からの光学シグナルを検出する。光学シグナルの検出手段は、特に限定されないが、個々の細胞について分析可能な手段が好ましい。そのような光学シグナルの検出手段としては、例えばフローサイトメーター及びイメージングサイトメーターなどが挙げられる。好ましい実施形態において、工程(iv)は、フローサイトメーター又はイメージングサイトメーターを用いて、免疫細胞の表面抗原に結合した捕捉体から生じた光学シグナルを検出する。
後述の工程(v)では、接触面が解消された免疫細胞について免疫刺激応答性を判定するので、工程(vi)における光学シグナルの検出を行う前に、免疫細胞に対して、後述の接触面を解消させる操作を行ってもよい。免疫細胞とは異なる物質として、後述の非生物材料の物質(例えば容器、マルチウェルプレート、スライドなど)を用い、工程(iv)をフローサイトメーター又はイメージングサイトメーターを用いて行う場合、本実施形態の方法は、接触面を解消させる工程を含むことが好ましい。必要に応じて、接触面の解消後、免疫細胞を常法により固定してもよい。固定により、接触面が解消された免疫細胞において、表面抗原の局在を維持できる。細胞の固定には、パラホルムアルデヒド、低級アルコールなどを含む固定液を用いることが好ましい。
さらなる実施形態では、検出された光学シグナルに基づいて、免疫細胞が、接触面が解消された免疫細胞であるか否かを判別してもよい。これにより、接触面が解消された免疫細胞に由来する光学シグナルを抽出して、工程(v)の判定に用いることができる。例えば、免疫細胞とは異なる物質として他家細胞を用いた場合、フローサイトメーターによる測定では、接触面が解消された免疫細胞と、他家細胞との接触が維持された免疫細胞と間で、細胞の大きさに関する光学シグナル(例えば前方散乱光の強度又はパルス幅)に差異が生じる。イメージングサイトメーターによる測定では、撮像した細胞の画像から、接触面が解消された免疫細胞と、他家細胞との接触が維持された免疫細胞とを区別できる。
例示を目的として、本実施形態に係る工程(i)～(iii)を模式的に示した図１ａを参照する。図１ａは、免疫刺激因子として後述の免疫刺激抗体を用い、免疫細胞とは異なる物質としてプレートを用いる例を示す。該プレートは、例えば、細胞培養に用いられる容器の底面、マルチウェルプレートのウェル底面、顕微鏡観察に用いられるスライドの表面などに相当する。図１ａでは、工程(i)において免疫細胞と免疫刺激抗体とを接触させる。この例において、免疫刺激抗体は、免疫細胞の表面抗原の一種である共刺激分子に結合する抗体である。工程(i)に続いて、工程(ii)では、免疫刺激抗体と接触した状態の免疫細胞をプレートに接触させて、免疫細胞にプレートとの間の接触面を形成させる。工程(iii)では、免疫細胞における共刺激分子を検出するために、工程(i)で用いた免疫刺激抗体に対する二次抗体を用いる。この二次抗体は、光学シグナルを生じうる物質で標識されている。この例では、工程(iii)において接触面は解消されているが、接触面が維持された状態で免疫細胞と捕捉体とを接触させてもよい。なお、図１ａは、本発明の１つの実施形態にかかる工程(i)～(iii)の例示であって、本発明はこれに限定されない。
工程(v)において、工程(iv)で検出された光学シグナルに基づいて、接触面が解消された免疫細胞が、免疫刺激応答性を有するか否かを判定する。本実施形態において、工程(v)は、検出された光学シグナルに基づいて、免疫細胞における表面抗原の分布を反映する値を計測し、計測した値を閾値と比較することにより、免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定してもよい。ここで、表面抗原の分布を反映する値としては、例えば、捕捉体が蛍光物質を含む場合、表面抗原に結合した捕捉体からの蛍光シグナルのパルス幅、その蛍光パルスの高さ及びパルス面積などが挙げられる。
捕捉体が蛍光物質を含む場合、工程(v)では、工程(iv)で検出した蛍光シグナルに基づいて蛍光画像を取得し、該蛍光画像に基づいて判定を行ってもよい。すなわち、蛍光画像において、表面抗原の分布を反映する蛍光シグナルを示すエリアを計測して、計測した値を閾値と比較することにより、免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する。本明細書において、「蛍光シグナルを示すエリア」とは、蛍光画像において所定の閾値を超える輝度値を示す画素(ピクセル)の数を意味する。この実施形態において、限定するものではないが、前記エリアが閾値よりも小さい場合に、免疫細胞が免疫刺激応答性を有すると判定してもよい。
さらなる実施形態において、工程(v)は、前記エリア内の総蛍光シグナル強度、免疫細胞のサイズ及びそのアスペクト比を含む群から選択される少なくとも１つをさらに計測し、その計測した値を閾値と比較することを含んでもよい。本明細書において、前記エリアの又は細胞の「総蛍光シグナル強度」は、蛍光画像において所定の閾値を超える輝度値を示すエリア内の各ピクセルの輝度値の積分値を意味する。本明細書において、「細胞のサイズ」は、透過光画像において所定の閾値よりも低い輝度値を示す細胞膜の領域が検出され、検出された細胞膜で囲まれた細胞を反映した画像のピクセル数を意味する。本明細書において、細胞の「アスペクト比」は、透過光画像における細胞粒子を反映する画像の縦と横の長さ(ピクセル数)の比を意味する。
さらなる実施形態において、検出された光学シグナルに基づいた、免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かの判定は、蛍光シグナルのパルス幅、散乱光シグナルのパルス幅、細胞あたりの蛍光シグナル領域を反映する値、及び細胞の大きさを反映する値から選択される少なくとも１つを計測し、その計測した値を閾値と比較することにより、免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定することを含む。
本明細書において、「免疫シナプス」は、免疫細胞と標的細胞との間の接触面において該免疫細胞に形成される、免疫細胞活性化に役割を果たす部分とされる分子複合体を意味する。この分子複合体は、受容体(例えば、Ｔ細胞受容体(TCR)又はNK細胞受容体)、該受容体の補助因子(例えばCD3)、種々の共刺激分子(例えばCD28)、接着分子(例えばインテグリン)及びシグナル分子が集まって形成されることが知られている。
本明細書において、「接触面」は、測定対象の免疫細胞と、測定対象の免疫細胞とは異なる物質とが接触している領域を意味する。ここで、測定対象の免疫細胞と、測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触は、測定対象の免疫細胞の表面上に存在する分子と、測定対象の免疫細胞とは異なる物質の表面上に存在する分子との相互作用を介した間接的な接触も含む。上述のとおり、本実施形態の方法では、接触面において免疫シナプスが形成される。よって、免疫細胞上の接触面は、免疫シナプスが形成されている領域ともいえる。接触面は、限定するものではないが、測定対象の免疫細胞が自己とは異なる物質に自発的に接触することで形成されてもよい。あるいは、接触面は、測定対象の免疫細胞を、測定対象の免疫細胞とは異なる物質に接触させることで形成されてもよい。
本明細書において、「測定対象の免疫細胞」は、自己と非自己を識別し非自己を排除する機構を担う細胞種を意味する。測定対象の免疫細胞は、限定するものではないが、Ｔ細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞及びそれらの混合物であってよい。なお、抗原提示細胞は、本明細書でいう測定対象の免疫細胞には含まれず、後述の「測定対象の免疫細胞とは異なる物質」に含まれる。
本明細書において、「測定対象の免疫細胞とは異なる物質」は、免疫細胞と接触した場合に該免疫細胞に対して接触面を提供し得る物質をいう。測定対象の免疫細胞とは異なる物質は、非生物材料であってもよいし、生物材料であってもよい。非生物材料である物質は、限定するものではないが、容器、マルチウェルプレート、スライド、ビーズなどであってよい。生物材料である物質は、限定するものではないが、他家細胞、抗原提示細胞、癌細胞などであってよい。他家細胞、抗原提示細胞及び癌細胞は、株化細胞であってもよい。また、他家細胞及び癌細胞は、それらを含む組織の形態にあってもよい。「他家細胞」は非自己の細胞であり、Ｔ細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞及びそれらの混合物であってもよい。
本実施形態において、測定対象の免疫細胞と、測定対象の免疫細胞とは異なる物質とを接触させる手法は、特に限定されない。例えば、測定対象の免疫細胞を、培地と共に容器又はマルチウェルプレートのウェルに入れて沈降させることで接触させてもよい。この場合、測定対象の免疫細胞を入れた容器又はマルチウェルプレートを遠心してもよい。また、免疫細胞をスライド上に載せて接触させてもよい。さらなる実施形態において、測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、ビーズ、他家細胞、抗原提示細胞、癌細胞などの粒子の形状にある場合、それらの物質を測定対象の免疫細胞に添加することにより接触させてもよい。接触面は、測定対象の免疫細胞と、測定対象の免疫細胞とは異なる物質とが接触した状態を維持することにより形成できる。接触状態を維持する時間としては、例えば２分以上60分以下、好ましくは10分以上45分以下、より好ましくは20分以上40分以下、特に好ましくは30分間である。
本明細書において、「表面抗原」は、細胞膜上に存在するタンパク質、糖鎖、脂質及びそれらの組み合わせである。表面抗原の種類は、表面抗原に結合可能な捕捉物質が存在するか、又はそのような捕捉物質を製造できるかぎり、特に限定されない。好ましい表面抗原は、免疫細胞における免疫シナプスを構成する分子である。そのような分子としては、例えば、TCRα/β、CD3、CD28、CD40L(CD40 ligand)、OX40、CTLA4(cytolytic T lymphocyte associated antigen-4)、PD-1(programmed cell death-1)及びICOS(inducible co-stimulatory molecule)などが挙げられる。後述の共刺激分子も、免疫細胞の表面抗原の一種である。
本実施形態において、測定対象の免疫細胞は、Ｔ細胞及びNK細胞から選択される少なくとも１種である。さらなる実施形態において、測定対象の免疫細胞はＴ細胞又はNK細胞である。好ましい実施形態において、測定対象の免疫細胞はＴ細胞である。
Ｔ細胞は、限定するものではないが、ヘルパーＴ細胞(「CD4+Ｔ細胞」とも称される)、サプレッサーＴ細胞、制御性Ｔ細胞、細胞傷害性Ｔ細胞(cytotoxic T lymphocyte(CTL)、「CD8+Ｔ細胞」とも称される)などのエフェクターＴ細胞、ナイーブＴ細胞、及び遺伝子改変された細胞であってよい。エフェクターＴ細胞は、限定するものではないが、インビボ及びインビトロで活性化された細胞であってよい。これらのＴ細胞は、１種単独で用いてもよく、又は２種以上を含むＴ細胞亜集団として用いてもよい。
本実施形態において、測定対象の免疫細胞は、生物試料から調製してもよい。例えば、血液(例えば末梢血及び臍帯血)又は骨髄液から、公知の細胞分離法により、免疫細胞を単離してもよい。そのような細胞分離法としては、細胞の大きさ、凝集度及び／又は比重に基づいて、細胞を含む生物試料から所望の細胞を分取する方法が挙げられる。例えば、市販のセルソーターを用いれば、細胞の大きさ又は凝集度に基づいて細胞を分取できる。また、比重勾配遠心法により、細胞の比重に基づいて細胞を分取できる。本実施形態では、生物試料から単離した細胞を、常法にしたがって培養して増殖させてもよい。さらなる実施形態において、免疫細胞は、生物試料、例えば血液(例えば末梢血及び臍帯血)又は骨髄液の形態で用いられてよい。生物試料は、限定するものではないが、哺乳動物から、例えばヒト及び非ヒト哺乳動物(例えばイヌ、ネコなどのコンパニオン動物、ウマ、ウシなどの家畜動物)から得られた試料であってよい。
さらなる実施形態において、測定対象の免疫細胞は試料中に存在してよい。したがって、この実施形態は、本発明の方法を、測定対象の免疫細胞を含む試料に対して実施する方法を提供する。より具体的には、この実施形態は、(i)前記試料中の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)前記試料中の免疫細胞に、前記免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させる工程と、(iii)前記試料中の免疫細胞と、接触面における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づいて、前記試料中の接触面が解消された免疫細胞が免疫刺激応答性であるか否かを判定する工程とを含む、免疫細胞を含む試料の免疫応答性を測定する方法を提供する。免疫細胞を含む試料は、上記の生物試料であってもよい。
この実施形態において、工程(v)では、工程(iv)で検出した光学シグナルに基づいて、免疫細胞における、捕捉体が結合した表面抗原の分布を反映する値を計測し、計測した値を閾値と比較することにより、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定してもよい。捕捉体が蛍光物質を含む場合、工程(v)では、工程(iv)で検出した蛍光シグナルに基づいて蛍光画像を取得し、該蛍光画像に基づいて判定を行ってもよい。蛍光画像において、表面抗原の分布を反映する蛍光シグナルを示すエリアを計測して、該エリアに基づいて、例えば、前記試料における免疫刺激応答性を有する細胞の割合を算出してもよい。そして、その割合を、健常者由来の試料について標準化された免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合と比較することで、判定を行ってもよい。例えば、その試料の前記割合が、標準化された割合よりも高い値である場合、その試料は免疫応答性が高い又は免疫応答性があると判定されてよい。
本明細書中において、免疫細胞に対する「免疫刺激」は、免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させること、及び該免疫細胞に、免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させることを含む。本実施形態では、免疫刺激は、免疫細胞と免疫刺激因子単独とを接触させることにより行ってもよい。さらなる実施形態では、免疫刺激は、免疫細胞と、前記物質上に存在する免疫刺激因子と接触させることにより行ってもよい。この場合、免疫細胞は、免疫刺激因子と接触すると同時に、前記物質にも接触する。
本明細書において、「免疫刺激因子」は、免疫細胞に作用して該免疫細胞の活性化を誘導し得る物質を意味する。免疫細胞の活性化は、例えば、免疫細胞の増殖、その運動性の亢進又はサイトカイン分泌を意味する。免疫刺激因子は、限定するものではないが、免疫刺激抗体、免疫刺激ペプチド、主要組織適合性分子(Major histocompatibility molecule(MHC分子))、ならびに他家細胞、抗原提示細胞及び癌細胞上に存在する各種免疫刺激因子であってよい。免疫刺激因子は、１種単独で又は２種以上を組み合わせてもよく、あるいは免疫刺激因子単体又は他の物質もしくは物質との複合体の形態で用いられてもよい。免疫刺激因子は、例えば、MHC分子と抗原ペプチドの複合体の形態、ビーズ、容器などの非生物材料上に固定された形態、抗原提示細胞上に提示された形態であってもよい。
本実施形態において、免疫刺激因子は、免疫刺激抗体、免疫刺激ペプチド、MHC分子、及びMHC分子と抗原ペプチドの複合体から選択される少なくとも１種である。さらなる実施形態において、免疫刺激因子は、免疫刺激抗体、免疫刺激ペプチド、MHC分子、又はMHC分子と抗原ペプチドの複合体であってよい。特定の実施形態において、免疫刺激因子は免疫刺激抗体である。
本明細書において、「免疫刺激抗体」は、免疫細胞を特異的に刺激して、免疫細胞の活性化を誘導し得る抗体を意味する。免疫刺激抗体は、限定するものではないが、抗TCRα/β抗体、抗CD3抗体、抗CD40L抗体、抗OX40抗体、抗CD2抗体、抗CD28抗体、抗CD137抗体、抗CTLA4抗体、抗PD-1抗体、抗ICOS抗体及び抗インテグリン抗体(抗CD2抗体)であってよい。これらの免疫刺激抗体は１種単独で又は２種以上を組み合わせて用いてもよい。免疫刺激抗体は、抗体単体で又は他の物質、例えばビーズ、マルチウェルプレート、スライド、容器などの非生物材料上に固相化された状態で用いられてもよい。
１つの実施形態において、免疫刺激抗体は、抗TCRα/β抗体、抗CD3抗体、抗CD40L抗体、抗OX40抗体、抗CD2抗体、抗CD28抗体、抗CD137抗体、抗CTLA4抗体、抗PD-1抗体、抗ICOS抗体及び抗インテグリン抗体(抗CD2抗体)から選択される少なくとも１種である。さらなる実施形態において、免疫刺激抗体は、抗CD3抗体及び抗CD28抗体から選択される少なくとも１種である。特定の実施形態において、免疫刺激抗体は、抗CD3抗体及び抗CD28抗体である。
抗体は、特に限定しない限り、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体のいずれであってもよい。また、抗体は、抗体フラグメント、一本鎖抗体及びそれらの誘導体であってもよい。
本明細書において、「免疫刺激ペプチド」は、免疫細胞を刺激して、免疫細胞の活性化を誘導し得るペプチドを意味する。免疫刺激ペプチドは、例えば抗原ペプチド(結核菌の抗原ペプチドなど)である。
本実施形態において、免疫刺激ペプチドは、抗原ペプチドである。抗原ペプチドは、１種単独で又は２種以上を組み合わせて用いてもよい。特定の実施形態において、抗原ペプチドは、MHC分子上に提示されたMHC分子との複合体の形態で用いられてもよい。
本明細書において、「主要組織適合性分子(MHC分子)」は、臓器、組織及び細胞の同種移植に際し、最も強い拒絶反応をひき起こすアロ抗原性を担う分子を意味する。ヒトではHLA分子、マウスではH-2分子がMHC分子に相当する。MHC分子には、クラスＩ分子とクラスII分子がある。MHCクラスＩ分子は、ほとんどすべての有核細胞上に発現し、細胞内で産生されるペプチドと複合体を形成し、これをCTL(CD8陽性Ｔ細胞)の受容体に提示する。MHCクラスII分子は、マクロファージ、Ｂ細胞などのいわゆる抗原提示細胞上にのみ発現し、外来抗原由来のペプチドをヘルパーＴ細胞(CD4陽性Ｔ細胞)の受容体に提示する。
本実施形態において、免疫刺激因子が、MHC分子又はMHC分子と抗原ペプチドの複合体である場合、該MHC分子は、MHCクラスＩ分子及びMHCクラスII分子のいずれであってもよい。MHC分子又はMHC分子と抗原ペプチドの複合体は、例えば、抗原提示細胞、癌細胞などの細胞膜に存在する形態で用いられてよい。
本明細書において、「表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体」は、免疫細胞の表面抗原に結合する物質と、光学シグナルを生じうる物質とを含む。表面抗原に結合する物質としては、限定するものではないが、免疫細胞の表面抗原に結合する抗体、抗体フラグメント、一本鎖抗体、アプタマーなどが例示される。本実施形態において、捕捉体は、光学シグナルを生じるうる物質と、表面抗原に結合する抗体、抗体フラグメント、一本鎖抗体又はアプタマーとを含む。
表面抗原に結合する物質は、表面抗原に直接的に結合してもよく、又は表面抗原に間接的に結合してもよい。本明細書において、「表面抗原に間接的に結合する」とは、一又は複数の分子を介して表面抗原に結合することを意味する。表面抗原に間接的に結合する物質は、限定するものではないが、表面抗原に結合した他の物質に結合する。即ち、表面抗原に間接的に結合する物質は、該他の物質を介して表面抗原に間接的に結合する。
光学シグナルを生じうる物質としては、限定するものではないが、蛍光物質が例示される。蛍光物質としては、公知の蛍光色素、蛍光タンパク質などを特に制限なく用いることができる。光学シグナルを生じうる物質は、限定するものではないが、表面抗原に結合する捕捉体に化学的に結合されてよい。そのような捕捉体としては、例えば、表面抗原に直接結合する蛍光標識抗体などが挙げられる(図1ｂ及びｃの捕捉体を参照)。
本実施形態において、表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体は、表面抗原に直接的に結合する物質と、光学シグナルを生じうる物質とを含む。この実施形態において、捕捉体は、限定するものではないが、表面抗原に直接的に結合する抗体、抗体フラグメント、一本鎖抗体、又はアプタマーであって、光学シグナルを生じうる物質が結合されたものであってよい。
あるいは、捕捉体は、表面抗原に間接的に結合する物質と、光学シグナルを生じうる物質とを含んでもよい。この実施形態において、捕捉体は、表面抗原に結合した他の物質に結合する抗体、抗体フラグメント、一本鎖抗体、又はアプタマーであって、光学シグナルを生じうる物質が結合されたものであってよい。限定するものではないが、たとえば、表面抗原に特異的に結合する抗体を、表面抗原に対して一次抗体として結合させ、次いで、該一次抗体に特異的に結合する抗体を二次抗体として結合させる。ここで、光学シグナルを生じうる物質は、該二次抗体に結合されている。この例において、二次抗体が、表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体となる(図1ａの捕捉体を参照)。また、一次抗体は、免疫刺激抗体であってもよい。
上記の捕捉体が結合する表面抗原は、免疫細胞の共刺激分子であってもよい。本明細書において、「共刺激分子」は、免疫細胞が活性化するに際してＴ細胞受容体(TCR)を介した抗原特異的なシグナルに加えて、Ｔ細胞を活性化するための補助シグナルをＴ細胞に与え得るＴ細胞に存在する物質を意味する。本明細書において、「共刺激分子」は、NK細胞に存在する場合、NK細胞の活性化受容体を介した標的細胞のリガンド特異的なシグナルに加えて、NK細胞を活性化するための補助シグナルをNK細胞に与え得る物質を包含する。共刺激分子は、限定するものではないが、CD28、OX40、CD40L、CTLA4、PD-1及びICOSであってよい。
本実施形態において、免疫細胞とは異なる物質は、生物材料、例えば他家細胞、抗原提示細胞、及び癌細胞から選択される少なくとも１種である。さらなる実施形態において、免疫細胞とは異なる物質は、他家細胞、抗原提示細胞又は癌細胞である。特定の実施形態において、免疫細胞とは異なる物質は、他家細胞である。特定の実施形態において、免疫細胞とは異なる物質は、抗原提示細胞である。特定の実施形態において、免疫細胞とは異なる物質は、癌細胞である。
免疫細胞とは異なる物質として、他家細胞、抗原提示細胞、癌細胞などの免疫細胞以外の細胞を用いる場合、工程(i)における免疫刺激因子は、前記細胞上に存在するMHC分子などの各種免疫刺激因子である。例えば、免疫細胞と異なる物質が他家細胞の場合、限定するものではないが、免疫刺激因子は、少なくともMHC分子を含む。免疫細胞と異なる物質が抗原提示細胞の場合、限定するものではないが、免疫刺激因子は、少なくともMHCクラスII分子と抗原ペプチドの複合体を含む。免疫細胞と異なる物質が癌細胞の場合、限定するものではないが、免疫刺激因子は、少なくともMHCクラスＩ分子と癌抗原ペプチドの複合体を含む。
工程(i)は、免疫細胞と、他家細胞、抗原提示細胞及び癌細胞から選択される少なくとも１種の免疫細胞とは異なる物質とを接触させることで、前記免疫細胞と前記物質上の免疫刺激因子とを接触させることを含む。工程(ii)は、工程(i)で接触させた免疫細胞と前記物質との接触状態を維持することで、前記免疫細胞に、前記物質との接触面を形成させることを含む。
本実施形態において、免疫細胞とは異なる物質は、非生物材料、例えば、ライフサイエンス分野において通常用いられる器具が好ましい。そのような器具としては、容器、マルチウェルプレート、スライド、又はビーズなどが挙げられる。容器としては、例えばディッシュ、ボトル、チューブなどが挙げられる。この実施形態によれば、前記物質は非生物材料であるため、前記物質として生物材料を用いる場合に比べて、取り扱いが容易であり、また長期保管が可能である等の産業上の利点を有する。特定の実施形態において、前記物質である容器、マルチウェルプレート、スライド又はビーズは、免疫刺激因子をその表面に含んでいる。例えば、免疫刺激因子が免疫刺激抗体である場合、容器、マルチウェルプレート、スライド又はビーズの表面に該抗体を固相化してもよい。あるいは、前記物質である容器、マルチウェルプレート、スライド又はビーズは、免疫刺激因子をその表面に含んでいない。
本実施形態において、工程(i)において、免疫刺激因子と免疫細胞とを接触させた後に、工程(ii)における前記免疫細胞とは異なる物質は、その表面にさらなる免疫刺激因子を含んでいてもよい。この実施形態では、付加的な免疫刺激を目的として、工程(i)の免疫刺激因子と同種又は異種の免疫刺激因子を、その表面に有する物質を工程(ii)に用いてもよい。例えば、工程(i)において、免疫刺激因子として、共刺激分子に対する抗体を用い、工程(ii)において、免疫細胞とは異なる物質として、抗CD3抗体をウェル表面に固相化したマルチウェルプレートを用いることができる。あるいは、工程(ii)における前記物質は、その表面にさらなる免疫刺激因子を含まなくてもよい。
本実施形態において、工程(i)の免疫刺激因子として免疫刺激抗体を用いる場合、この免疫刺激因子は、工程(iii)の捕捉体として共用されてよい。この実施形態において、免疫刺激因子は、例えば、抗CD28抗体、抗CD3抗体、抗CD40L抗体、抗OX40抗体、抗CTLA4抗体、抗PD-1抗体、抗ICOS抗体、それらの抗体フラグメント、一本鎖抗体、及びそれらの１種以上の組み合わせに、光学シグナルを生じうる物質が標識された複合体であってよい。そのような標識された免疫刺激抗体を用いれば、工程(i)での免疫細胞への免疫刺激と、工程(iii)での該免疫細胞の表面抗原の捕捉とを同時に行うことができる。
したがって、本発明のさらなる実施形態は、(i)免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)免疫細胞に、前記免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させる工程と、(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づいて、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する工程とを含み、前記免疫刺激因子が、光学シグナルを生じうる物質で標識された免疫刺激抗体である、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法を提供する。この実施形態によれば、免疫刺激因子が、免疫細胞における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体としての役割も果たすので、試薬の数及び工程数を削減できる。このため、この実施形態はコスト面及び労力の面での利点を有する。
本実施形態において、工程(i)の免疫刺激因子は、工程(ii)における免疫細胞とは異なる物質上に存在してもよい。この実施形態において、免疫刺激因子は、免疫刺激抗体、免疫刺激ペプチド、MHC分子などの分子、又はMHC分子と抗原ペプチドなどの複合体であることが好ましい。前記免疫刺激因子は、限定するものではないが、容器、マルチウェルプレート、スライド又はビーズ上に固相化されていてよい。例えば、免疫刺激因子が、免疫刺激抗体又は免疫刺激ペプチドである場合、固相化の態様は特に限定されず、例えば物理的吸着であってもよい。あるいは、免疫刺激因子をビオチンで修飾し、免疫細胞とは異なる物質の表面にアビジン(又はストレプトアビジン)を固定すれば、ビオチンとアビジン(又はストレプトアビジン)との結合を介して、免疫刺激因子を前記物質に固相化できる。また、免疫刺激因子が、他家細胞、抗原提示細胞、癌細胞などが有するMHC分子、又はMHC分子と抗原ペプチドなどの複合体である場合、該細胞を、容器、マルチウェルプレート、スライド又はビーズに接着又は堆積させてもよい。この実施形態において、前記物質上の免疫刺激因子は、免疫細胞と接触して、前記免疫細胞の活性化を誘導し得る。この実施形態によれば、工程(i)は、免疫細胞と、免疫刺激因子を表面に固相化した前記物質とを接触させることで、前記免疫細胞と前記物質上の免疫刺激因子とを接触させることを含む。工程(ii)は、工程(i)で接触させた前記免疫細胞と前記物質との接触状態を維持することで、前記免疫細胞に、前記物質との接触面を形成させることができる。
したがって、本発明のさらなる実施形態は、(i)免疫細胞と、前記免疫細胞とは異なる物質上の免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)免疫細胞に、前記物質との接触面を形成させる工程と、(iii)前記免疫細胞と、表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づき、接触面が解消された前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する工程とを含む、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法を提供する。この実施形態によれば、免疫細胞を、免疫刺激因子を表面に固相化した物質と接触させるだけで、工程(i)及び工程(ii)を実質的に同時に行うことができる。したがって、この実施形態は、工程数を削減できるという利点を有する。
図１ｂは、上記の実施形態に関する工程(i)～(iii)を模式的に示した図である。図１ｂにおいて、免疫刺激因子は免疫刺激抗体であり、免疫細胞とは異なる物質はプレートであり、免疫刺激抗体はプレート上に固相化されていることを示す。図１ｂに示されるように、免疫細胞と、免疫刺激抗体が固相化されたプレートとを接触させることにより、該抗体による免疫刺激(工程(i))と、接触面の形成(工程(ii))とを実質的に同時に行うことができる。次いで、工程(iii)では、表面抗原に直接的に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体を、免疫細胞上の免疫シナプスに結合させる。この例では、工程(iii)において接触面は解消されているが、接触面が維持された状態で免疫細胞と捕捉体とを接触させてもよい。図１ｂは、本発明の１つの実施形態にかかる工程(i)～(iii)の例示であって、本発明はこれに限定されない。
さらなる実施形態において、免疫刺激因子は、限定するものではないが、ビーズ上に固相化されてもよい。例えば、免疫刺激抗体が固相化されたビーズを用いれば、免疫細胞の刺激と、免疫細胞の単離とを同時に行うことができる。免疫細胞が生物試料に含まれる場合、該試料に上記のビーズを添加すると、該試料中の免疫細胞は、免疫刺激抗体によりビーズに捕捉される。そして、ビーズを含む生物試料を遠心分離することにより、該試料から免疫細胞を分離できる。ビーズが磁性ビーズであれば、ビーズを含む生物試料を磁気分離してもよい。このとき、分離された免疫細胞は、ビーズ上の免疫刺激抗体により免疫刺激されている。この実施形態では、免疫細胞と上記ビーズとの接触面が測定前及び測定中に解消されてもよい。
図１ｃは、上記の実施形態に関する工程(i)～(iii)を模式的に示した図である。図１ｃにおいて、免疫刺激因子は免疫刺激抗体であり、免疫細胞とは異なる物質はビーズであり、免疫刺激抗体はビーズ上に固相化されていることを示す。図１ｃに示されるように、免疫細胞と、免疫刺激抗体が固相化されたビーズとを接触させることにより、該抗体による免疫刺激(工程(i))と、接触面の形成(工程(ii))とを実質的に同時に行うことができる。次いで、工程(iii)では、表面抗原に直接的に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体を、免疫細胞上の免疫シナプスに結合させる。この例では、工程(iii)において接触面は解消されていないが、接触面が解消された免疫細胞と捕捉体とを接触させてもよい。図１ｃは、本発明の１つの実施形態にかかる工程(i)～(iii)の例示であって、本発明はこれに限定されない。
本明細書において、「接触面が解消された免疫細胞」は、免疫細胞と、免疫細胞とは異なる物質との間で形成された接触領域が消失した状態にある免疫細胞を意味する。すなわち、免疫細胞が、免疫細胞とは異なる物質から分離した状態にあることを意味する。接触面を解消させる手法としては、限定するものではないが、免疫細胞及び培養液等を含む容器に対するピペッティング、タッピング、攪拌、振盪、超音波処理などの物理的処理、界面活性剤などの化学薬品を用いる化学的処理、及び酵素などの生化学品を用いる生化学的処理であってよい。
好ましい実施形態において、接触面は、ピペッティング、タッピング、攪拌、振盪、超音波処理などの物理的処理により解消させる。特定の実施形態において、前記手法はピペッティングである。本実施形態において、接触面を解消させた場合、工程(iv)は、フローサイトメーターを用いて捕捉体から生じた光学シグナルを検出してもよい。
本明細書において「フローサイトメーター」は、水流中の細胞に励起光を照射し、個々の細胞から発せられる蛍光や散乱光を測定することで、細胞集団中の個々の細胞の大きさや膜タンパク質の発現量の分布を測定するための測定装置を意味する。フローサイトメーターは、一般に、一般的な蛍光顕微鏡観察と比べ、短時間に多くの細胞数を客観的に測定でき(最大数万細胞／秒)、高感度に定量的な測定が可能で同時に多重パラメータを取得できる等の利点を有する。本明細書において、フローサイトメーターは、細胞を個別に測定できるように液中に細胞を整列させた状態での、細胞測定を可能にする流路系を有する。そのような流路系はフローセルと呼ばれる流体力学に基づいた部品により実現されてよい。フローセルは、一般的に、試料液の流れ(sample flow)を包むようなシース液の流れ(sheath flow)を利用した流体力学的絞込み(hydrodynamic focusing)により実現されるが、これに限定されるものではない。例えば、マイクロキャピラリーや音響絞込み(acoustic focusing)により実現されてもよい。
本発明において、フローサイトメーターは、市販品を特に制限なく使用することができる。本明細書において、フローサイトメーターは、カメラを利用した撮像部を備え、液中を流れる細胞の画像を取得可能な、いわゆる「イメージングフローサイトメーター」を含む。実施形態１で後述するように、イメージングフローサイトメーターによれば、撮像された細胞の画像に基づいて、細胞のサイズやアスペクト比を含む多重パラメータを得ることができる。本明細書において、フローサイトメーターは、イメージングフローサイトメーター又は撮像を行わないフローサイトメーターの両方を含む。好ましい実施形態において、フローサイトメーターは、イメージングフローサイトメーターである。本発明において、フローサイトメーターは市販品であっても特に制限なく使用できる。
本実施形態において、工程(iv)は、免疫細胞とは異なる物質が、他家細胞、抗原提示細胞、及び癌細胞から選択される少なくとも１種であるか、又はビーズである場合、免疫細胞と、免疫細胞とは異なる物質と、捕捉体との複合体を、フローサイトメーター又はイメージングサイトメーターで測定して、該複合体中の捕捉体から生じた光学シグナルを取得してもよい。あるいは、免疫細胞とは異なる物質が、容器、マルチウェルプレート又はスライドである場合、免疫細胞と、免疫細胞とは異なる物質との接触面を解消させ、免疫細胞と捕捉体との複合体を、フローサイトメーター又はイメージングサイトメーターで測定して、該複合体中の捕捉体から生じた光学シグナルを取得してもよい。
本明細書において「イメージングサイトメーター」は、短時間(数秒から数分)に多数(数千個から数百万個)の細胞個々の蛍光イメージや、散乱光、透過光イメージを取得して、定量測定できる統計的に精度の高い細胞測定装置を意味する。細胞画像処理にて、１個の細胞毎の情報を抽出できる測定装置である。本発明において、イメージングサイトメーターは市販品を特に制限なく使用できる。
さらなる実施形態において、対象における免疫系の活性化状態を評価する方法が提供される。この実施形態において、上記した本発明を、前記対象から得られた免疫細胞を含む生物試料に対して実施する工程を含む。すなわち、この実施形態の評価方法は、(i)生物試料中の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、(ii)生物試料中の免疫細胞に、前記免疫細胞とは異なる物質との接触面を形成させる工程と、(iii)生物試料中の免疫細胞と、免疫細胞における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、(v)検出した光学シグナルに基づいて、前記試料が免疫刺激応答性であるか否かを判定する工程を含む。
さらに、この実施形態の評価方法は、捕捉体が蛍光物質を含み、工程(v)において、工程(iv)で検出した蛍光シグナルに基づいて蛍光画像を取得し、該蛍光画像に基づいて判定を行ってもよい。蛍光画像において、表面抗原の分布を反映する蛍光シグナルを示すエリアを計測して、該エリアに基づいて、例えば、前記生物試料における免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合を算出してもよい。そして、その割合を、健常者由来の生物試料について標準化された免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合と比較することで、判定を行ってもよい。この実施形態において、例えば、その試料の前記割合が、標準化された割合よりも高い値である場合、その試料は免疫応答性が高い又は免疫応答性があると判定されてよい。あるいは、この評価方法では、対象から得られた免疫細胞を含む生物試料における免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合と、同一の対象由来の従前の生物試料についての割合と比較してもよい。例えば、その試料の前記割合が、従前の割合よりも高い値である場合、その対象の免疫応答性が向上した又は免疫応答性があると判定されてよい。
本発明の他の態様は、免疫細胞における共刺激分子に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体を用いる、免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法に関する。
この態様の方法では、捕捉体として、免疫細胞における共刺激分子に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体を用いることを除いて、上述した態様の方法で述べたことと同様である。捕捉体が結合する共刺激分子としては、例えば、CD28、OX40、CD40L、CTLA4、PD-1及びICOSが挙げられる。
本発明の他の態様は、免疫細胞の活性化状態を分析するための細胞分析装置に関する。本発明のこの態様に係る実施形態について、添付する図面を参照しつつ説明する。なお、以下の説明はすべて例示であって制限的なものではなく、添付する特許請求の範囲に記載の発明をいかようにも限定するものではない。
＜細胞分析装置の実施形態１＞
図２を参照して、細胞分析装置１は、測定装置２と情報処理装置３を備える。測定装置２は、免疫細胞の表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体と、免疫細胞との複合体を含む試料を、フローサイトメーターにより光学的に測定する。情報処理装置３は、測定装置２による測定結果を解析し、解析結果を表示部３２０に表示する。
図２を参照して、細胞分析装置１は、測定装置２と情報処理装置３を備える。測定装置２は、免疫細胞の表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体と、免疫細胞との複合体を含む試料を、フローサイトメーターにより光学的に測定する。情報処理装置３は、測定装置２による測定結果を解析し、解析結果を表示部３２０に表示する。
図３を参照して、測定装置２は、導入部２０１と、撮像部２０３と、信号処理部２１０と、ＣＰＵ２０４と、通信インターフェース２０５と、メモリ２０６とを有する。信号処理部２１０は、アナログ信号処理部２１１と、Ａ／Ｄコンバータ２１２と、デジタル信号処理部２１３と、メモリ２１４とを有する。
この実施形態において、導入部２０１は、容器とポンプ(図示せず)を備えている。容器中の試料は、ポンプにより、シース液と共に撮像部２０３のフローセル２０３ｃ(図４参照)に供給される。導入部２０１は、ＣＰＵ２０４の指示に従って、撮像部２０３に試料を供給する。実施形態１において、測定試料は、ヒト末梢血由来のクローンＴ細胞に抗CD28抗体との接触を含む免疫刺激を与えた後に、細胞を固定化して、前記抗CD28抗体に結合するフィコエリトリン(PE)標識抗マウスIgG抗体を用いて２次染色した複合体を用いる。
撮像部２０３は、導入部２０１から供給された試料に対してレーザー光を照射し、複合体を撮像し、生成された透過光画像と蛍光画像の画像情報を電気信号としてアナログ信号処理部２１１に出力する。アナログ信号処理部２１１は、ＣＰＵ２０４の指示に従って、撮像部２０３から出力された電気信号を増幅し、Ａ／Ｄコンバータ２１２に出力する。
Ａ／Ｄコンバータ２１２は、アナログ信号処理部２１１によって増幅された電気信号をデジタル信号に変換し、デジタル信号処理部２１３に出力する。デジタル信号処理部２１３は、ＣＰＵ２０４の指示に従って、Ａ／Ｄコンバータ２１２から出力されるデジタル信号に対して所定の信号処理を施し、測定データが生成される。生成された測定データはメモリ２１４に格納される。
メモリ２１４に格納された測定データは、フローセル２０３ｃを複合体が通過した際に生じた透過光及び蛍光に基づく透過光画像及び蛍光画像を含む。
ＣＰＵ２０４は、メモリ２１４に格納された測定データを通信インターフェース２０５に出力する。ＣＰＵ２０４は、通信インターフェース２０５を介して情報処理装置３から制御信号を受信し、その制御信号に従って測定装置２の各部を制御する。
通信インターフェース２０５は、ＣＰＵ２０４から出力された測定データを情報処理装置３に送信し、情報処理装置３から出力される制御信号を受信する。メモリ２０６は、ＣＰＵ２０４の作業領域として用いられる。
図４を参照して、撮像部２０３は、光源２０３ａ、２０３ｂと、フローセル２０３ｃと、集光レンズ２０３ｄ、２０３ｅと、対物レンズ２０３ｆと、光学ユニット２０３ｇと、集光レンズ２０３ｈと、カメラ２０３ｉとを備えている。
この実施形態において、光源２０３ａは、半導体レーザー光源である。光源２０３ａから照射される光は、波長λ１のレーザー光である。集光レンズ２０３ｄは、光源２０３ａから照射された光を集光してフローセル２０３ｃ中の試料に導く。光源２０３ａから照射された波長λ１の光は、フローセル２０３ｃの内部を通過する試料に照射され、これにより、免疫細胞から波長λ１の透過光が生じる。
光源２０３ｂは、半導体レーザー光源である。光源２０３ｂから照射される光は、波長λ２のレーザー光である。この実施形態において、波長λ２は約488 nmである。集光レンズ２０３ｅは、光源２０３ｂから照射された光を集光して、フローセル２０３ｃ中の試料に導く。光源２０３ｂから照射された波長λ２の光は、フローセル２０３ｃの内部を通過する試料に照射され、これによりPEから波長λ３の蛍光が生じる。
対物レンズ２０３ｆは、波長λ１の透過光と波長λ３の蛍光を集光する。光学ユニット２０３ｇは、２枚のダイクロイックミラーが組み合わせられた構成を有する。光学ユニット２０３ｇの２枚のダイクロイックミラーは、波長λ１の透過光及び波長λ３の蛍光を、互いに異なる角度で反射し、後述するカメラ２０３ｉの受光面２０３ｉａ(図５参照)上において分離される。集光レンズ２０３ｈは、波長λ１の透過光及び波長λ３の蛍光を集光する。カメラ２０３ｉは、波長λ１の透過光及び波長λ３の蛍光を受光して、フローセル２０３ｃ中の試料の画像情報を電気信号として、アナログ信号処理部２１１に出力する。カメラ２０３ｉは、TDI(Time Delay Integration)カメラであってよい。TDIカメラであれば、より精度の高い画像情報を取得できる。
図５に示すように、カメラ２０３ｉは、受光面２０３ｉａ上の受光領域２０３ｉｂ、２０３ｉｃにおいて、それぞれ、波長λ１の透過光及び波長λ３の蛍光を受光する。受光面２０３ｉａは、カメラ２０３ｉに配されたＣＭＯＳイメージセンサ等の撮像素子の受光面である。受光面２０３ｉａに照射される光の位置は、試料がフローセル２０３ｃの移動に合わせて、矢印で示すように、それぞれ受光領域２０３ｉｂ、２０３ｉｃ内で移動する。このように、光学ユニット２０３ｇによって、２つの光が受光面２０３ｉａ上において分離されるため、ＣＰＵ２０４は、カメラ２０３ｉが出力する画像信号から各光に対応する信号を抽出できる。
図６を参照して、情報処理装置３は、本体３００と、入力部３１０と、表示部３２０から構成される。本体３００は、ＣＰＵ３０１と、ＲＯＭ３０２と、ＲＡＭ３０３と、ハードディスク３０４と、読出装置３０５と、入出力インターフェース３０６と、画像出力インターフェース３０７と、通信インターフェース３０８とを有する。
ＣＰＵ３０１は、ＲＯＭ３０２に格納されているコンピュータプログラム及びＲＡＭ３０３にロードされたコンピュータプログラムを実行する。ＲＡＭ３０３は、ＲＯＭ３０２及びハードディスク３０４に記録されているコンピュータプログラムの読み出しに用いられる。ＲＡＭ３０３は、これらのコンピュータプログラムを実行するときに、ＣＰＵ３０１の作業領域としても利用される。
ハードディスク３０４には、オペレーティングシステム及びアプリケーションプログラムなど、ＣＰＵ３０１に実行させるための種々のコンピュータプログラム及びコンピュータプログラムの実行に用いられるデータが格納されている。また、ハードディスク３０４には、測定装置２から受信した測定データが格納されている。
ハードディスク３０４には、測定データに基づいて試料に含まれる免疫細胞の数、細胞のサイズ、アスペクト比、蛍光シグナルを示すエリア、前記エリア内の総蛍光シグナル強度などを含む解析用パラメータを計測し、試料についての解析を行うためのプログラムや、解析結果を表示部３２０に表示させる表示プログラムが格納されている。これらプログラムが格納されることで、後述の解析処理や表示処理が行われる。すなわち、ＣＰＵ３０１は、前記プログラムにより、後述する図７ｂの処理を実行する機能が付与されている。
読出装置３０５は、ＣＤドライブ、ＤＶＤドライブ等によって構成される。読出装置３０５は、ＣＤ、ＤＶＤなどの記録媒体に記録されたコンピュータプログラム及びデータを読み出すことができる。
入出力インターフェース３０６には、マウス、キーボードなどで構成される入力部３１０が接続されており、ユーザが入力部３１０を使用して、情報処理装置３に対する指示を入力する。画像出力インターフェース３０７は、ディスプレイ等で構成される表示部３２０に接続されており、画像データに応じた映像信号を、表示部３２０に出力する。表示部３２０は、入力された映像信号をもとに、画像を表示する。
情報処理装置３は、通信インターフェース３０８により測定装置２から送信された測定データの受信が可能となる。受信された測定データは、ハードディスク３０４に格納される。
図７は、測定装置２のＣＰＵ２０４と情報処理装置３のＣＰＵ３０１の制御を示すフローチャートである。図７ａは、測定装置２のＣＰＵ２０４による制御処理を示すフローチャートであり、図７ｂは、情報処理装置３のＣＰＵ３０１による制御処理を示すフローチャートである。
情報処理装置３のＣＰＵ３０１の制御処理に関して、図７ｂを参照する。ＣＰＵ３０１は、入力部３１０を介してユーザからの測定開始指示があると(ステップＳ１１：ＹＥＳ)、測定装置２に測定開始信号を送信する(ステップＳ１２)。続いて、ＣＰＵ３０１は、測定データを受信したかを判定する(ステップＳ１３)。測定データが受信されていないと(ステップＳ１３：ＮＯ)、処理が待機される。
測定装置２のＣＰＵ２０４の制御処理に関して、図７ａを参照する。ＣＰＵ２０４は、情報処理装置３から測定開始信号を受信すると(ステップＳ２１：ＹＥＳ)、前記試料の測定を行う(ステップＳ２２)。測定処理(ステップＳ２２)では、導入部２０１からフローセル２０３ｃへシース液と共に、前記捕捉体と免疫細胞との複合体を含む測定試料が供給され、フローセル２０３ｃにおいてシース液に包まれた測定試料の試料流が形成される。形成された試料流に光源２０３ａ、２０３ｂからのレーザビームが照射され、フローセル２０３ｃにビームスポットが形成される。前記免疫細胞がビームスポットを通過すると、透過光及び蛍光が発生する。生じた透過光及び蛍光はカメラ２０３ｉによりそれぞれ撮像されて、電気信号に変換される。
これらの電気信号は、Ａ／Ｄコンバータ２１２によって、デジタル信号に変換され、デジタル信号処理部２１３によって、信号処理が施される。これにより、フローセル２０３ｃを通過した複合体ごとに、透過光画像及び蛍光画像を含む測定データが得られる。測定データはメモリ２１４に格納される。試料の測定が終了すると、ＣＰＵ２０４は、測定処理により生成された測定データを情報処理装置３へ送信し(ステップＳ２３)、処理を終了する。
再び、図７ｂを参照する。情報処理装置３のＣＰＵ３０１は、測定装置２から測定データを受信すると(ステップＳ１３：ＹＥＳ)、ハードディスク３０４に測定データを格納し、かかる測定データに基づいて解析処理を行う(ステップＳ１４)。続いて、ＣＰＵ３０１は、Ｓ１４で取得した解析結果を表示部３２０に表示する(ステップＳ１５)。その後、処理は終了する。
図８～図１０を参照し、情報処理装置３のＣＰＵ３０１が測定データに基づいて行う解析処理(図７ｂのステップＳ１４)の１例についてさらに説明する。図８は、前記免疫細胞を測定して得られた測定データのうち、透過光画像、蛍光画像(CD28)及びそれらの重ね合せ画像を示す。図８ａの蛍光画像で示されるように、免疫刺激を与えない場合、共刺激分子CD28は免疫細胞の細胞膜上に一様に分布する傾向を示す。図８ｂの蛍光画像で示されるように、免疫刺激を与えた場合、共刺激分子CD28は免疫細胞の細胞膜上の一部に局在する傾向を示す。理論に拘泥されることを意図するものではないが、共刺激分子が局在を示す細胞膜部分が、その免疫細胞とは異なる物質との間で、その免疫細胞に形成されていた接触面と考えられる。すなわち、この共刺激分子が局在を示す部分が、この細胞がそれと異なる物質との間で形成された免疫シナプスを示すと考えられる。
ＣＰＵ３０１は、図７ａのステップＳ２２において撮像した全ての細胞の透過光画像及び蛍光画像に基づいて、解析用パラメータを計測する(図７ｂのステップＳ１４)。解析用パラメータは、限定するものではないが、細胞のサイズ(ピクセル数)、細胞のアスペクト比、細胞における蛍光シグナルを示すエリア(ピクセル数)、前記エリア内の総蛍光シグナル強度(細胞の総蛍光シグナル強度)及びそれらの比が挙げられる。図９は、情報処理装置３のＣＰＵ３０１が図８ｂで示した透過光画像及び蛍光画像の計測処理(図７ｂのステップＳ１４)の模式図を示す。得られた測定データは、ハードディスク３０４に格納される。なお、細胞のサイズ、アスペクト比、蛍光シグナルを示すエリア、及び総蛍光シグナル強度の各用語の意味については、上述のとおりである。
図10は、情報処理装置３のＣＰＵ３０１のステップＳ１５における解析処理を示すフローチャートである。ＣＰＵ３０１は、ステップＳ１４で計測した解析用パラメータをＸ軸とＹ軸にそれぞれ割り当てた２次元ヒストグラム(2Dスキャッタグラム)を作成して、所定の範囲内に存在するドットに対応する細胞の測定データを抽出して解析する。
この実施形態において、ＣＰＵ３０１は、最初に、Ｘ軸に細胞サイズを割り当て、Ｙ軸に細胞のアスペクト比を割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し(図11ａ)、所定の範囲(Ｒ１)にある細胞の測定データを抽出する(ステップＳ５１)。範囲(Ｒ１)は、細胞サイズ(Ｘ軸)において細胞単独の大きさを反映する所定の範囲でゲーティングし、かつアスペクト比(Ｙ軸)において細胞が単独で存在することを反映する所定の範囲でゲーティングする。これにより、細胞より小さい細胞片などの物質や細胞単独よりも大きい細胞の凝集塊に由来するデータが除外される。
2Dスキャッタグラムに表示されたドットの１つ１つが個々の細胞の計測値を示す。ＣＰＵ３０１は画像中のＲ１と表示された領域内にある計測値を示す細胞の測定データを抽出する。なお、この実施形態において、2Dスキャッタグラムに表示されたドットには、図７ａのステップＳ２２で測定された個々の細胞の測定データがリンクされている。ＣＰＵ３０１は、ユーザにより2Dスキャッタグラムに表示されたドットが指定された場合、そのドットに対応する細胞の測定データ(透過光画像及び／又は蛍光画像)をハードディスク３０４から読み出して、表示部３２０に表示する。
ＣＰＵ３０１は、ステップＳ５１で抽出された細胞の測定データについて、Ｘ軸に細胞の総蛍光シグナル強度を割り当て、Ｙ軸に蛍光画像のシャープネス(画像の鮮明さ)を割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し(図11ｂ)、所定の範囲(Ｒ２)にある細胞の測定データをさらに抽出する(ステップＳ５２)。範囲(Ｒ２)は、細胞の総蛍光シグナル強度(Ｘ軸)において所定量の共刺激分子CD28の発現量を反映する範囲でゲーティングし、シャープネス(Ｙ軸)において所定の画像のシャープネスを反映する範囲でゲーティングする。これにより、所定量の共刺激分子CD28を発現している細胞のデータが抽出され、所定量の共刺激分子CD28を発現していない細胞のデータは除外される。
続いて、ＣＰＵ３０１は、ステップＳ５２で抽出された細胞の測定データについて、Ｘ軸に蛍光シグナルを示すエリアを割り当て、Ｙ軸に細胞のサイズを割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し(図11ｃ)、所定の範囲(Ｒ４)にあるドットの数を計数する(ステップＳ５３)。範囲(Ｒ４)は、蛍光シグナルを示すエリア(Ｘ軸)において共刺激分子CD28の局在を反映する所定の範囲でゲーティングし、かつ細胞サイズ(Ｙ軸)において細胞単独の大きさを反映する所定の範囲でゲーティングする。範囲(Ｒ４)にあるドットの数を計数することにより、免疫刺激に対して応答性を有する免疫細胞の数が計数される。この実施形態において、範囲(Ｒ４)にあるドットに対応する細胞は、免疫シナプスが形成されている傾向があり、その細胞はこの実施形態における免疫刺激に対して応答性を有すると判定される。
ＣＰＵ３０１は、さらに、図11ｃ全体に示されたドットの数(図11ｂの範囲(Ｒ２)にあるドットの数に対応する)を計数し、範囲(Ｒ２)内のドットの数に対する範囲(Ｒ４)内のドットの数の割合([範囲(Ｒ４)内のドット数]／[範囲(Ｒ２)内のドット数])を算出する(ステップＳ５４)。これにより、所定量の共刺激分子CD28を発現する個々の免疫細胞のうち、免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合が算出される。
以上の解析処理により得られた各範囲内のドット数や割合についての解析結果が表示部３２０に表示される。
この解析結果は、例えば健常者由来の生物試料について標準化された免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合と比較することで、さらに解析されてよい。このさらなる解析において、例えばその試料の前記割合が標準化された割合よりも高い値である場合、その試料は免疫応答性が高いと判定され得る。別には、この解析結果は、同一の対象由来の従前の生物試料についての免疫刺激応答性の免疫細胞の割合と比較することで、さらに解析されてよい。このさらなる解析において、例えばその試料の前記割合が従前の割合よりも高い値である場合、その対象の免疫応答性が向上したと判定され得る。
かくして、１つの実施形態において、免疫細胞と、前記免疫細胞における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体との複合体を導入する導入部と、前記導入部から供給された前記複合体を撮像する撮像部と、前記撮像部により撮像された画像に基づいて、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する解析部とを含む、細胞分析装置が提供される。特定の実施形態において、前記解析部は、前記画像に基づいて、前記表面抗原の分布を反映する値を取得し、取得した値を閾値と比較することにより、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する。他の実施形態において、前記捕捉体が蛍光物質を含み、前記画像が蛍光画像を含み、前記表面抗原の分布を反映する値が、前記蛍光画像に基づいた表面抗原の分布を反映する蛍光シグナルを示すエリアを含み、前記エリアが前記閾値よりも小さい場合に、前記免疫細胞は免疫刺激応答性を有すると判定する、細胞分析装置が提供される。他の実施形態において、前記画像が透過光画像を含み、前記解析部が、前記透過光画像に基づいて前記免疫細胞の大きさを反映した値を取得し、前記免疫細胞の大きさを反映した値と前記表面抗原の分布を反映する値とに基づいて、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する、細胞分析装置が提供される。
以上に示した解析処理は、測定データに基づく解析処理の一例に過ぎず、異なる解析処理を用いることができる。
＜細胞分析装置の実施形態２＞
実施形態１の解析処理のステップＳ５３に代えて、ＣＰＵ３０１は、ステップＳ５２で抽出された測定データについて、Ｘ軸に細胞の総蛍光シグナル強度を割り当て、Ｙ軸に蛍光シグナルを示すエリアを割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し(図11ｄ)、所定の範囲(Ｒ３)にある測定データ数を計数してもよい。範囲(Ｒ３)は、細胞の総蛍光シグナル強度(Ｘ軸)において細胞あたりの共刺激分子CD28の所定の発現量を反映する範囲でゲーティングし、かつ蛍光シグナルを示すエリア(Ｙ軸)において共刺激分子CD28の局在を反映する所定の範囲でゲーティングする。範囲(Ｒ３)における測定データを計数することにより、免疫刺激に対して応答性の免疫細胞の数が計数される。この実施形態において、範囲(Ｒ３)にあるドットに対応する細胞は、免疫シナプスが形成されている傾向があり、その細胞はこの実施形態における免疫刺激に対して応答性を有すると判定される。
実施形態１の解析処理のステップＳ５３に代えて、ＣＰＵ３０１は、ステップＳ５２で抽出された測定データについて、Ｘ軸に細胞の総蛍光シグナル強度を割り当て、Ｙ軸に蛍光シグナルを示すエリアを割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し(図11ｄ)、所定の範囲(Ｒ３)にある測定データ数を計数してもよい。範囲(Ｒ３)は、細胞の総蛍光シグナル強度(Ｘ軸)において細胞あたりの共刺激分子CD28の所定の発現量を反映する範囲でゲーティングし、かつ蛍光シグナルを示すエリア(Ｙ軸)において共刺激分子CD28の局在を反映する所定の範囲でゲーティングする。範囲(Ｒ３)における測定データを計数することにより、免疫刺激に対して応答性の免疫細胞の数が計数される。この実施形態において、範囲(Ｒ３)にあるドットに対応する細胞は、免疫シナプスが形成されている傾向があり、その細胞はこの実施形態における免疫刺激に対して応答性を有すると判定される。
この実施形態において、ＣＰＵ３０１は、さらに、ステップＳ５４に代えて、図11ｄ全体に示されたドットの数(図11ｂの範囲(Ｒ２)にあるドットの数に対応する)を計数し、範囲(Ｒ２)内のドットの数に対する範囲(Ｒ３)内のドットの数の割合([範囲(Ｒ３)内のドット数]／[範囲(Ｒ２)内のドット数])を算出してもよい。これにより、所定量の共刺激分子CD28を発現する個々の免疫細胞のうち、免疫刺激応答性を有する免疫細胞の割合が算出される。
＜細胞分析装置の実施形態３＞
実施形態１の解析処理のステップＳ５３に代えて、ＣＰＵ３０１は、ステップＳ５２で抽出された細胞の測定データについて、Ｘ軸に蛍光シグナルを示すエリアについての階級値を割り当て、Ｙ軸に度数を割り当てたヒストグラムを作成して、表示部３２０に表示してもよい。ＣＰＵ３０１は、さらにステップＳ５４に代えて、このヒストグラムから、ステップＳ５２で抽出された測定データの、蛍光シグナルを示すエリアの平均値、中央値、最頻値を算出してもよい。得られた平均値、中央値、最頻値を、例えば、健常者由来の生物試料から得られた、免疫細胞において蛍光シグナルを示すエリアの標準化された平均値、中央値、最頻値と比較することで、さらに解析されてよい。このさらなる解析において、例えばその試料の前記最頻値を示す階級値(蛍光シグナルを示すエリア)が、標準化された最頻値を示す階級値(蛍光シグナルを示すエリア)よりも小さい場合、これは共刺激分子CD28が局在していることを示唆し、結果的に、その試料は免疫刺激に対して応答性が高いと判定され得る。
実施形態１の解析処理のステップＳ５３に代えて、ＣＰＵ３０１は、ステップＳ５２で抽出された細胞の測定データについて、Ｘ軸に蛍光シグナルを示すエリアについての階級値を割り当て、Ｙ軸に度数を割り当てたヒストグラムを作成して、表示部３２０に表示してもよい。ＣＰＵ３０１は、さらにステップＳ５４に代えて、このヒストグラムから、ステップＳ５２で抽出された測定データの、蛍光シグナルを示すエリアの平均値、中央値、最頻値を算出してもよい。得られた平均値、中央値、最頻値を、例えば、健常者由来の生物試料から得られた、免疫細胞において蛍光シグナルを示すエリアの標準化された平均値、中央値、最頻値と比較することで、さらに解析されてよい。このさらなる解析において、例えばその試料の前記最頻値を示す階級値(蛍光シグナルを示すエリア)が、標準化された最頻値を示す階級値(蛍光シグナルを示すエリア)よりも小さい場合、これは共刺激分子CD28が局在していることを示唆し、結果的に、その試料は免疫刺激に対して応答性が高いと判定され得る。
実施形態３で示したように、測定データの解析において2Dスキャッタグラムを作成しなくても免疫細胞の免疫応答性を解析できる。しかしながら、実施形態１において説明したように、2Dスキャッタグラムで示されるドットは個々の免疫細胞の測定データをリンクさせることができ、例えば、各ドットを指定してその免疫細胞の透過光画像及び蛍光画像を含む測定データを表示させることできる。したがって、2Dスキャッタグラムによる解析では追加して画像に基づいた詳細な解析を個々の細胞に対して実施し得る点で、好ましい解析処理方法である。
＜細胞分析装置の実施形態４＞
以上の解析処理では、撮像された画像データに基づいた解析を例に示したが、撮像された画像データ以外の測定データからも免疫刺激応答性の免疫細胞を解析することができる。例えば、実施形態１における測定装置２(図４)において、光学ユニット２０３ｇと、カメラ２０３に代えて、ダイクロイックミラー２０３ｊ、２０３ｋと、前方散乱受光部２０３ｌと蛍光受光部２０３ｍを用いる。光源２０３ａから照射された波長λ１の光は、フローセル２０３ｃの内部を通過する試料に照射され、これにより、免疫細胞から波長λ１の前方散乱光が生じる。光源２０３ｂから照射された波長λ２の光は、フローセル２０３ｃの内部を通過する試料に照射され、これによりPEから波長λ３の蛍光が生じる。なお、実施形態４における試料は実施形態１で用いた複合体である。波長λ１の前方散乱光はダイクロイックミラー２０３ｊにより反射されて、前方散乱受光部２０３ｌにより受光される。波長λ３の蛍光はダイクロイックミラー２０３ｊを透過して、ダイクロイックミラー２０３ｋにより反射されて蛍光受光部２０３ｋにより受光される。前方散乱受光部２０３ｌ及び蛍光受光部２０３ｍはフォトマルチプライヤである。この例において、図７ａのステップＳ２２で得られる光学シグナルは前方散乱光シグナル及び蛍光シグナルであり、図７ｂのステップＳ１４では解析用パラメータとして「パルス幅(ｗ)」、「パルス面積(Ａ)」及び「パルスの高さ(Ｈ)」が得られる。図12を参照しつつ、これらの解析用パラメータについて説明する。
以上の解析処理では、撮像された画像データに基づいた解析を例に示したが、撮像された画像データ以外の測定データからも免疫刺激応答性の免疫細胞を解析することができる。例えば、実施形態１における測定装置２(図４)において、光学ユニット２０３ｇと、カメラ２０３に代えて、ダイクロイックミラー２０３ｊ、２０３ｋと、前方散乱受光部２０３ｌと蛍光受光部２０３ｍを用いる。光源２０３ａから照射された波長λ１の光は、フローセル２０３ｃの内部を通過する試料に照射され、これにより、免疫細胞から波長λ１の前方散乱光が生じる。光源２０３ｂから照射された波長λ２の光は、フローセル２０３ｃの内部を通過する試料に照射され、これによりPEから波長λ３の蛍光が生じる。なお、実施形態４における試料は実施形態１で用いた複合体である。波長λ１の前方散乱光はダイクロイックミラー２０３ｊにより反射されて、前方散乱受光部２０３ｌにより受光される。波長λ３の蛍光はダイクロイックミラー２０３ｊを透過して、ダイクロイックミラー２０３ｋにより反射されて蛍光受光部２０３ｋにより受光される。前方散乱受光部２０３ｌ及び蛍光受光部２０３ｍはフォトマルチプライヤである。この例において、図７ａのステップＳ２２で得られる光学シグナルは前方散乱光シグナル及び蛍光シグナルであり、図７ｂのステップＳ１４では解析用パラメータとして「パルス幅(ｗ)」、「パルス面積(Ａ)」及び「パルスの高さ(Ｈ)」が得られる。図12を参照しつつ、これらの解析用パラメータについて説明する。
図12は、例示として、共刺激分子CD28が細胞膜上に一様に分布している細胞(図12ａ)及び細胞膜上で局在を示す細胞(図12ｂ)が、蛍光シグナルを検出する領域(図示せず)を矢印方向に通過する間に検出される蛍光シグナルをそれぞれ示す模式図である(図12ｃ及び12ｄ)。
本明細書において、図12ｃ及び12ｄで示すような蛍光強度のパルスにおいて、閾値としたベースラインを超えて蛍光シグナルが得られた時間が「パルス幅(ｗ)」といい、蛍光強度においてパルスのピークを示した場合の蛍光強度を「パルスの高さ(Ｈ)」という。「パルス面積(Ａ)」は、ベースラインと蛍光シグナル強度曲線との間の面積をいう。
この例において、図12ａの細胞と図12ｂの細胞とで同じ量の共刺激分子CD28が細胞膜上に発現されており、図12ｃと図12ｄのパスル面積(Ａ)は等しい値となる。ここで、パルス幅(ｗ)及びパルス高さ(Ｈ)は、共刺激分子の分布パターンにより相違する。共刺激分子が細胞膜上に一様に分布している場合に比べて(図12ａ)、共刺激分子が細胞膜上に局在している場合(図12ｂ)、そのパルス幅(ｗ)は狭くなり、一方で、パルスの高さ(Ｈ)は高くなる(図12ｃ及び12ｄ)。
図13は、この実施形態において複数の免疫細胞を測定して2Dスキャッタグラムを作成した場合の模式図である。図13ａは、Ｘ軸にパルスの高さ(Ｈ)を割り当て、Ｙ軸にパルス幅(ｗ)を割り当てた2Dスキャッタグラムであり、図13ｂは、Ｘ軸にパルスの高さ(Ｈ)を割り当て、Ｙ軸にパルス面積(Ａ)を割り当てた2Dスキャッタグラムである。
上記したように、共刺激分子が細胞膜上に一様に分布している場合(図12ａ)、共刺激分子が細胞膜上で局在している場合と比べて(図12ｂ)、そのパルス幅(ｗ)は広がる傾向を示し、パルスの高さ(Ｈ)は低くなる傾向を示す(図12ｃ及び12ｄ)。そのため、図13ａで示される2Dスキャッタグラムでは、破線の丸で囲われた領域に入るデータが、共刺激分子が細胞膜上に一様に分布している細胞を反映するデータであり、一方、実線の四角で囲った領域に入るデータが、共刺激分子が細胞膜上で局在している細胞を反映するデータである傾向を示す。図13ｂで示される2Dスキャッタグラムでは、破線の四角で囲われた領域に入るデータが、共刺激分子が細胞膜上に一様に分布している細胞を反映するデータであり、一方、実線の四角で囲った領域に入るデータが、共刺激分子が細胞膜上で局在している細胞を反映するデータである傾向を示す。
かくして、１つの実施形態において、免疫細胞と、前記免疫細胞における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体との複合体を導入する導入部と、前記導入部から供給された前記複合体に光を照射し、生じた前記複合体からの光学シグナルを検出する検出部と、検出した光学シグナルに基づいて、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する解析部とを含む、細胞分析装置が提供される。特定の実施形態において、前記捕捉体が蛍光物質を含み、前記検出部は、前記複合体から生じた蛍光シグナルを検出し、前記解析部が、前記蛍光シグナルに基づいて、前記表面抗原の分布を反映する値を取得し、取得した値を閾値と比較することにより、前記免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定し、前記表面抗原の分布を反映する値が、前記複合体からの蛍光シグナルのパルス幅、その蛍光パルスの高さ及びパルス面積の少なくとも一つを含む、細胞分析装置が提供される。
実施例で示されるように、捕捉体が結合した表面抗原や共刺激分子が細胞膜上で局在を示す細胞は、免疫応答性を示す免疫細胞と判定される。したがって、図13ａ及び13ｂにおいて、実線の四角で囲われた領域に入るデータを示す細胞は、免疫応答性を示す細胞であると判定され得る。この実施形態において例示されるように、撮像された画像データに基づいた解析処理だけでなく、上記したような解析処理によっても免疫刺激応答性を有する免疫細胞を測定できることが理解される。
なお、ここに示す解析用パラメータ及び解析処理は一例に過ぎず、測定データから異なる解析用パラメータを計測してもよく、また計測された解析用パラメータに対して異なる解析処理が行われてもよい。例えば、パルス面積は、パルスの時間曲線下面積を反映する値であれば近似値であってもよく、時間積分値には限定されない。パルス面積は、パルス幅とピークの高さの積であってもよいし、パルス幅とピークの高さから求めた三角形の面積であってもよい。また、時間積分値を計測する形態において、底辺はベースラインでなくてもよく、適宜設定できる。例えば、ベースラインから所定の閾値を越えた値を底辺としてもよい。
以下、具体的な実施例を記載するが、それらは本発明の好ましい実施形態を示すものであり、添付する特許請求の範囲に記載の発明をいかようにも限定するものではない。本明細書に記載の具体的な実施形態、材料、組成物及び方法から容易に認識される均等物、又は変更、改変もしくは変形が本発明の範囲内にあることが意図される。
実施例１： CD28を指標とする免疫細胞の免疫刺激応答性の測定
(１) クローンＴ細胞の調製
5×106のCD4陽性細胞(Stemcell Technologies: ST-70026)およびCD8陽性細胞(フナコシ: 0508-100, コスモバイオ: PB08C-1)を、1μg/mLのLEAF(商標) Purified anti-human CD3 Antibody(Biolegend: 317315)、10 ng/mLのRecombinant human IL-2(rhIL-2)(R&D systems: 202-IL-500)、0.2μg/ mL のPhytohemagglutinin-L(PHA)(SIGMA: L4144-5MG)と2%ヒト血清(SIGMA: H4522-100ML)を添加したYssel’s培地(Gemini Bio-Products：400102)に播種し、1×106の末梢血単核球細胞および1×104 のJY細胞と14日間、共培養した。14日後、Ｔ細胞を限界希釈法にて0.3、1.0及び3.0 cells/ wellとなるように96 ウェルプレートに播種し、1×104の末梢血単核球細胞とコロニーが形成されるまで培養した。コロニーが形成されたウェルからＴ細胞を回収し、クローンＴ細胞を得た。以下、得られたＴ細胞を「調製クローンＴ細胞」とも呼ぶ。
(１) クローンＴ細胞の調製
5×106のCD4陽性細胞(Stemcell Technologies: ST-70026)およびCD8陽性細胞(フナコシ: 0508-100, コスモバイオ: PB08C-1)を、1μg/mLのLEAF(商標) Purified anti-human CD3 Antibody(Biolegend: 317315)、10 ng/mLのRecombinant human IL-2(rhIL-2)(R&D systems: 202-IL-500)、0.2μg/ mL のPhytohemagglutinin-L(PHA)(SIGMA: L4144-5MG)と2%ヒト血清(SIGMA: H4522-100ML)を添加したYssel’s培地(Gemini Bio-Products：400102)に播種し、1×106の末梢血単核球細胞および1×104 のJY細胞と14日間、共培養した。14日後、Ｔ細胞を限界希釈法にて0.3、1.0及び3.0 cells/ wellとなるように96 ウェルプレートに播種し、1×104の末梢血単核球細胞とコロニーが形成されるまで培養した。コロニーが形成されたウェルからＴ細胞を回収し、クローンＴ細胞を得た。以下、得られたＴ細胞を「調製クローンＴ細胞」とも呼ぶ。
(２) 抗体の固相化
24ウェルプレートに、抗CD3抗体(BioLegend ＃300414 Clone：UCHT1)の溶液(0.01 mg/ml)を１ウェルあたり300μl添加して、抗CD3抗体をウェル表面に固相化した。以下、得られたプレートを「抗CD3抗体固相化プレート」とも呼ぶ。
24ウェルプレートに、抗CD3抗体(BioLegend ＃300414 Clone：UCHT1)の溶液(0.01 mg/ml)を１ウェルあたり300μl添加して、抗CD3抗体をウェル表面に固相化した。以下、得られたプレートを「抗CD3抗体固相化プレート」とも呼ぶ。
(３) 免疫細胞の刺激及び測定
抗CD3抗体固相化プレートに、調製クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そして、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)を終濃度0.01 mg/mlとなるようにウェル中の細胞に加えた。そのプレートを遠心分離した後(200 G、30秒)、37℃で30分間インキュベートした。調製クローンＴ細胞を、ピペッティングによりウェル表面から回収した。回収したＴ細胞を、１％パラホルムアルデヒド(PFA)を含む固定液を用いて固定化した。固定化したＴ細胞を、PE標識抗マウスIgG抗体(BioLegend ＃405307)を用いて免疫染色した。染色したＴ細胞(5×105 cells/20μl)を、Imaging FCM(ImageStreamX MarkII Imaging Flow Cytometer：Amnis)を用いて測定した。
抗CD3抗体固相化プレートに、調製クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そして、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)を終濃度0.01 mg/mlとなるようにウェル中の細胞に加えた。そのプレートを遠心分離した後(200 G、30秒)、37℃で30分間インキュベートした。調製クローンＴ細胞を、ピペッティングによりウェル表面から回収した。回収したＴ細胞を、１％パラホルムアルデヒド(PFA)を含む固定液を用いて固定化した。固定化したＴ細胞を、PE標識抗マウスIgG抗体(BioLegend ＃405307)を用いて免疫染色した。染色したＴ細胞(5×105 cells/20μl)を、Imaging FCM(ImageStreamX MarkII Imaging Flow Cytometer：Amnis)を用いて測定した。
比較のため、Ｔ細胞の表面抗原に結合する抗体(抗CD28抗体及び抗CD3抗体)との接触及び異なる物質(プレートのウェル)との接触による免疫刺激を細胞に与えない場合についても検討した。上記(１)で調製したクローンＴ細胞を、上記の免疫刺激を行わずに、上記の固定液を用いて固定した後、抗CD28抗体を用いて染色した。固定したＴ細胞を、PE標識抗マウスIgG抗体を用いて２次染色し測定した。
Ｔ細胞に対して、上記の免疫刺激を与えなかった場合、Ｔ細胞においてCD28は細胞膜上に一様に分布した(図14ａ参照)。上記の免疫刺激を与えた後に、Ｔ細胞とウェルとの接触面を解消させた場合、CD28はＴ細胞の細胞膜上で局在を示した(図14ｂ参照)。このように、上記の免疫刺激を与えた後にＴ細胞とウェルとの接触面が解消された状態であっても、共刺激分子CD28を指標にすることで、免疫シナプスの検出ができた。
(４) データ解析
Imaging FCMを用いて測定して得られた、上記の免疫刺激なしのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図15ａ及びｂ)と、上記の免疫刺激ありのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図15ｃ及びｄ)の多重パラメータ解析を行った。
Imaging FCMを用いて測定して得られた、上記の免疫刺激なしのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図15ａ及びｂ)と、上記の免疫刺激ありのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図15ｃ及びｄ)の多重パラメータ解析を行った。
詳細な計測処理及び解析処理は、実施形態１において示した。簡単には、Imaging FCMを用いて測定した透過光画像、蛍光画像(CD28)に基づいて画像解析し(図９)、細胞のサイズ(ピクセル数)、細胞のアスペクト比、細胞における蛍光シグナルを示すエリア(ピクセル数)及び前記エリア内の総蛍光シグナル強度(細胞の総蛍光シグナル強度)を計測した。最初に、Ｘ軸に細胞サイズを割り当て、Ｙ軸に細胞のアスペクト比を割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し、所定の範囲(Ｒ１)にあるドットに対応する細胞の測定データを抽出する(図10のステップＳ５１)。次いで、範囲(Ｒ１)内の測定データについて、細胞の総蛍光シグナル強度が所定の範囲(Ｒ２)にあるドットに対応する測定データをさらに抽出した(図10のステップＳ５２)。範囲(Ｒ２)内の測定データについて、Ｒ４と表示された領域内(図15ｂ及び15ｄ)にあるドットの数をそれぞれ計数した(図10のステップＳ５３)。また、図15ｂ及び15ｄのスキャッタグラム上にあるドットの数(範囲(Ｒ２)内にあるドットの数)を計数した。そして、範囲(Ｒ２)内のドットの数に対する範囲(Ｒ４)内のドットの数の割合を、下記の式(１)により算出した(図10のステップＳ５４)。この結果を以下の表１にまとめる。
[割合(R4/R2)]＝｛[範囲(R4)内のドット数]／[範囲(R2)内のドット数]｝×100 ・・・式(１)
本明細書の実施例によれば、免疫細胞に対して、免疫刺激因子との接触及び異なる物質との間の接触面形成を含む免疫刺激を与えた場合に形成され得る免疫シナプスは、共刺激分子を指標にその検出を行えば、たとえその接触面が維持されていない状態であっても、その免疫細胞の持つ免疫応答性の情報が正確に得られることが分かった。このことは、免疫シナプスが、標的細胞との結合面で免疫細胞に形成される緩やかな結合であることを考慮すれば、驚くべき結果であった。
かくして、本願発明によれば、免疫シナプスに基づいて免疫細胞の免疫刺激応答性を測定できるため、従来のサイトカイン産生に基づく免疫細胞の応答性の分析方法よりも、迅速かつ簡便に、免疫細胞の活性化状態を測定できることが理解される。
本明細書の実施例において、イメージングフローサイトメーターを用いて免疫細胞の免疫刺激応答性を測定できたことにより、多数の細胞を測定でき、統計的に精度の高い免疫応答性の測定が可能であることが実証された。上記実施例では、イメージングフローサイトメーターを用いて免疫細胞の免疫刺激応答性を測定したが、実施例で用いた測定装置と同様に多数の細胞を測定できるイメージングサイトメーターによっても測定可能であることが理解される。また、上記実施形態４で述べたように、撮像を行わないフローサイトメーターによっても、実施例で用いた測定装置と同様に多数の免疫細胞の免疫刺激応答性を測定できることが理解される。かくして、本願発明によれば、免疫細胞の活性化状態を、多数の細胞で迅速かつ簡便に測定できるため、統計的に精度の高い薬効評価に有用であることが理解される。
上記実施例では、イメージングフローサイトメーターを使用したため、各細胞の測定データの解析において、各測定データには個々の細胞の画像データをリンクさせることができる。したがって、測定データに基づいて、所定の解析処理を行って細胞を選抜した後に、さらに、その細胞の画像データを併せて免疫刺激応答性を評価できる。例えば、上記実施例の、免疫シナプスが形成されている傾向の高い細胞を選抜するための解析処理において、免疫刺激ありのサンプルにおいて範囲(Ｒ４)に入った細胞が約81％存在した(表１)。ここで、図15ｄにおいて、範囲(Ｒ４)に入った細胞に対応するドットを指定して、その細胞の画像データを表示させ、その画像データを併せて評価することで、より詳細に免疫細胞の免疫刺激に対する応答性を評価できる。このさらなる評価は、イメージングフローサイトメーターと同様、細胞の画像を撮像するイメージングサイトメーターによっても評価可能であることが理解される。
本発明に係る測定方法及び細胞分析装置によれば、例えば、免疫刺激因子として免疫刺激抗体を用いた場合には、がん免疫や自己疾患などに関連する対象の体内の免疫細胞の活性化状態を、特異抗原ペプチドを用いた場合には感染症やアレルギー疾患などに関連する対象の体内の免疫細胞の活性化状態を、加えて、他家細胞もしくは他家MHCを用いた場合には移植医療や再生医療に対する対象の免疫応答性を、迅速かつ簡便に評価し得るため有用である。上記したように、解析処理に、個々の細胞の画像データをさらに利用可能なイメージングフローサイトメーター及びイメージングサイトメーターはさらなる利点を有することが理解される。
参考例： 免疫細胞における免疫シナプスの形成とサイトカイン産生との間の相関
(１) サイトカイン産生細胞の測定
実施例１と同様にして、プレートの各ウェルに抗CD3抗体を固相化して、抗CD3抗体固相化プレートを作製した。また、実施例１と同様にして、ヒト末梢血からクローンＴ細胞を調製した。抗CD3抗体固相化プレートに、クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そして、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)を終濃度0.01 mg/mlとなるようにウェル中の細胞に加え、37℃で４時間インキュベートした。その後、各ウェルにブレフェルジンＡを終濃度10μg/mlとなるように加え、２時間インキュベートした。その後、プレートを氷上に静置し、各ウェル中の細胞を回収した。回収したＴ細胞を、1%PFAを含む固定液で固定し、次いで、0.5%サポニン及び１%BSAを含むPBS溶液で膜透過処理を行った。処理後の細胞を、Alexa Fluor(登録商標)488標識抗IFN-γ抗体(BioLegend # 502517 Clone:4S.B3)を用いて免疫染色した。染色したＴ細胞をフローサイトメーター(BD biosciences：Accuri(商標))で測定した。測定データを常法により解析して、測定したＴ細胞におけるIFN-γ陽性細胞の割合を取得した。
(１) サイトカイン産生細胞の測定
実施例１と同様にして、プレートの各ウェルに抗CD3抗体を固相化して、抗CD3抗体固相化プレートを作製した。また、実施例１と同様にして、ヒト末梢血からクローンＴ細胞を調製した。抗CD3抗体固相化プレートに、クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そして、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)を終濃度0.01 mg/mlとなるようにウェル中の細胞に加え、37℃で４時間インキュベートした。その後、各ウェルにブレフェルジンＡを終濃度10μg/mlとなるように加え、２時間インキュベートした。その後、プレートを氷上に静置し、各ウェル中の細胞を回収した。回収したＴ細胞を、1%PFAを含む固定液で固定し、次いで、0.5%サポニン及び１%BSAを含むPBS溶液で膜透過処理を行った。処理後の細胞を、Alexa Fluor(登録商標)488標識抗IFN-γ抗体(BioLegend # 502517 Clone:4S.B3)を用いて免疫染色した。染色したＴ細胞をフローサイトメーター(BD biosciences：Accuri(商標))で測定した。測定データを常法により解析して、測定したＴ細胞におけるIFN-γ陽性細胞の割合を取得した。
(２) 免疫シナプスを形成した細胞の測定
上記(１)で使用したT細胞と同一のウェルから播種したＴ細胞を用い、CD28を指標として、免疫シナプスを形成した細胞を測定した。測定データを解析して、測定したＴ細胞における免疫シナプスを形成した細胞の割合を取得した。なお、測定及びデータ解析は、実施例１と同様にして行った。
上記(１)で使用したT細胞と同一のウェルから播種したＴ細胞を用い、CD28を指標として、免疫シナプスを形成した細胞を測定した。測定データを解析して、測定したＴ細胞における免疫シナプスを形成した細胞の割合を取得した。なお、測定及びデータ解析は、実施例１と同様にして行った。
(３) 結果
縦軸をIFN-γ陽性細胞の割合(%)とし、横軸を免疫シナプス形成細胞の割合(%)として、データをプロットした。得られたグラフを図16に示す。図16から分かるように、免疫刺激を受けたクローンＴ細胞において、免疫シナプスの形成とINF-γ産生との間に相関が認められた(R2=0.8371)。よって、接触面が解消された免疫細胞における免疫シナプスを検出することにより、サイトカイン産生に基づく従来法と同様に、免疫刺激により活性化された免疫細胞を検出できることが示された。
縦軸をIFN-γ陽性細胞の割合(%)とし、横軸を免疫シナプス形成細胞の割合(%)として、データをプロットした。得られたグラフを図16に示す。図16から分かるように、免疫刺激を受けたクローンＴ細胞において、免疫シナプスの形成とINF-γ産生との間に相関が認められた(R2=0.8371)。よって、接触面が解消された免疫細胞における免疫シナプスを検出することにより、サイトカイン産生に基づく従来法と同様に、免疫刺激により活性化された免疫細胞を検出できることが示された。
実施例２： CD3及びCD40を指標とする免疫細胞の免疫刺激応答性の測定
(１) 免疫細胞の刺激及び測定
実施例１と同様にして、プレートの各ウェルに抗CD3抗体を固相化して、抗CD3抗体固相化プレートを作製した。また、実施例１と同様にして、ヒト末梢血からクローンＴ細胞を調製した。抗CD3抗体固相化プレートに、調製クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そして、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)及びPE標識抗CD40L抗体(BD biosciences # 340477 Clone: 89-76)をそれぞれ終濃度が0.01 mg/ml及び0.01mg/mlとなるようにウェル中の細胞に加えた。そのプレートを遠心分離した後(200 G、60秒)、37℃で30分間インキュベートした。ウェル中の上清みを除去した後、調製クローンＴ細胞をピペッティングにより分散させ、ウェル表面から回収した。回収したＴ細胞を、1％PFAを含む固定液を用いて固定化した。固定化したＴ細胞を、APC標識抗CD3抗体(BioLegend # 300411 Clone: UCHT1)を用いて免疫染色した。なお、このＴ細胞は、PE標識抗CD40L抗体で免疫刺激されたので、抗CD40L抗体でも免疫染色された状態にある。染色したＴ細胞(5×105 cells/20μl)を、Imaging FCM(ImageStreamX MarkII Imaging Flow Cytometer：Amnis)を用いて測定した。
(１) 免疫細胞の刺激及び測定
実施例１と同様にして、プレートの各ウェルに抗CD3抗体を固相化して、抗CD3抗体固相化プレートを作製した。また、実施例１と同様にして、ヒト末梢血からクローンＴ細胞を調製した。抗CD3抗体固相化プレートに、調製クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そして、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)及びPE標識抗CD40L抗体(BD biosciences # 340477 Clone: 89-76)をそれぞれ終濃度が0.01 mg/ml及び0.01mg/mlとなるようにウェル中の細胞に加えた。そのプレートを遠心分離した後(200 G、60秒)、37℃で30分間インキュベートした。ウェル中の上清みを除去した後、調製クローンＴ細胞をピペッティングにより分散させ、ウェル表面から回収した。回収したＴ細胞を、1％PFAを含む固定液を用いて固定化した。固定化したＴ細胞を、APC標識抗CD3抗体(BioLegend # 300411 Clone: UCHT1)を用いて免疫染色した。なお、このＴ細胞は、PE標識抗CD40L抗体で免疫刺激されたので、抗CD40L抗体でも免疫染色された状態にある。染色したＴ細胞(5×105 cells/20μl)を、Imaging FCM(ImageStreamX MarkII Imaging Flow Cytometer：Amnis)を用いて測定した。
比較のため、抗CD40L抗体、抗CD28抗体及び抗CD3抗体との接触及びプレートのウェルとの接触による免疫刺激を細胞に与えない場合についても検討した。上記(１)で調製したクローンＴ細胞を、上記の免疫刺激を行わずに、氷上で上記の固定液を用いて固定した。固定したＴ細胞を、APC標識抗CD3抗体及びPE標識抗CD40L抗体を用いて免疫染色し、Imaging FCMを用いて測定した。
調製クローンＴ細胞に上記の免疫刺激を与えなかった場合、Ｔ細胞においてCD3及びCD40Lはいずれも、細胞膜上に一様に分布した(図17ａ及びｃ、図18ａ及びｂ、図19ａ及びｂ参照)。上記の免疫刺激を与えた後に、Ｔ細胞とウェルとの接触面を解消させた場合、CD3及びCD40Lはいずれも、Ｔ細胞の細胞膜上で局在を示した(図17ｂ及びｄ、図18ｃ及びｄ、図19ｃ及びｄ参照)。このように、上記の免疫刺激を与えた後にＴ細胞とウェルとの接触面が解消された状態であっても、Ｔ細胞の表面抗原であるCD3又はCD40Lを指標にすることで、免疫シナプスの検出ができた。
(２) データ解析
Imaging FCMを用いて測定して得られた、上記の免疫刺激なしのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ａ及びｂ)と、上記の免疫刺激ありのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ｃ及びｄ)の多重パラメータ解析を行った。実施例２における計測処理及び解析処理の一例を、図20に示した。簡単には、Imaging FCMを用いて測定した透過光画像、蛍光画像(CD3及びCD40L)に基づいて画像解析し、細胞のサイズ(ピクセル数)、細胞のアスペクト比、細胞における蛍光シグナルを示すエリア(ピクセル数)及び該エリア内の総蛍光シグナル強度(細胞の総蛍光シグナル強度)を計測した。最初に、Ｘ軸に細胞サイズを割り当て、Ｙ軸に細胞のアスペクト比を割り当てた2Dスキャッタグラム(図20ａ参照)を作成し、所定の範囲(Cells)にあるドットに対応する細胞の測定データを抽出した。次いで、範囲(Cells)内の測定データについて、細胞の総蛍光シグナル強度が所定の範囲(Tcells)にあるドットに対応する測定データをさらに抽出した(図20ｂ参照)。範囲(Tcells)内の測定データについて、IS_CD3及びIS_CD40Lと表示された領域内(図18ｃ及びｄ、図19ｃ及びｄ参照)にあるドットの数をそれぞれ計数した。また、図18ｃ及びｄ、図19ｃ及びｄのスキャッタグラム上にあるドットの数(範囲(Tcells)内にあるドットの数)を計数した。そして、範囲(Tcells)内のドットの数に対する範囲(IS_CD3又はIS_CD40L)内のドットの数の割合を、下記の式(２)より算出した。結果を以下の表２及び表３に示した。なおISはImmune Synapseの略語である。
Imaging FCMを用いて測定して得られた、上記の免疫刺激なしのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ａ及びｂ)と、上記の免疫刺激ありのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ｃ及びｄ)の多重パラメータ解析を行った。実施例２における計測処理及び解析処理の一例を、図20に示した。簡単には、Imaging FCMを用いて測定した透過光画像、蛍光画像(CD3及びCD40L)に基づいて画像解析し、細胞のサイズ(ピクセル数)、細胞のアスペクト比、細胞における蛍光シグナルを示すエリア(ピクセル数)及び該エリア内の総蛍光シグナル強度(細胞の総蛍光シグナル強度)を計測した。最初に、Ｘ軸に細胞サイズを割り当て、Ｙ軸に細胞のアスペクト比を割り当てた2Dスキャッタグラム(図20ａ参照)を作成し、所定の範囲(Cells)にあるドットに対応する細胞の測定データを抽出した。次いで、範囲(Cells)内の測定データについて、細胞の総蛍光シグナル強度が所定の範囲(Tcells)にあるドットに対応する測定データをさらに抽出した(図20ｂ参照)。範囲(Tcells)内の測定データについて、IS_CD3及びIS_CD40Lと表示された領域内(図18ｃ及びｄ、図19ｃ及びｄ参照)にあるドットの数をそれぞれ計数した。また、図18ｃ及びｄ、図19ｃ及びｄのスキャッタグラム上にあるドットの数(範囲(Tcells)内にあるドットの数)を計数した。そして、範囲(Tcells)内のドットの数に対する範囲(IS_CD3又はIS_CD40L)内のドットの数の割合を、下記の式(２)より算出した。結果を以下の表２及び表３に示した。なおISはImmune Synapseの略語である。
[割合(IS形成細胞/Tcells)]＝｛[範囲(IS_CD3又はIS_CD40L)内のドット数]／[範囲(Tcells)内のドット数]｝×100 ・・・(２)
表２及び３に示されるように、免疫刺激抗体による刺激をしたＴ細胞では、免疫シナプスを形成したＴ細胞の割合が、免疫刺激をしなかった場合に比べて、明らかに高くなることが示された。よって、CD3又はCD40Lを指標とする免疫シナプスの検出により、免疫刺激抗体による免疫刺激に対する免疫細胞の応答性を測定できることが示された。
実施例３： 他家細胞による免疫刺激に応答する免疫細胞の測定
(１) 他家細胞及びクローンＴ細胞
他家細胞として、所定のドナー由来のiPS細胞(他家iPS細胞)から作製した網膜色素上皮細胞(RPE細胞)を用いた。RPE細胞は、株式会社ヘリオスより提供された。24ウェルプレートにRPE細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように播種し、37℃、５%CO2にて7日間インキュベートした。これにより、ウェル底面にRPE細胞を接着させたプレートを得た。クローンＴ細胞は、以下の方法で調整した。5×106のCD4陽性細胞(Stemcell Technologies: ST-70026)およびCD8陽性細胞(フナコシ: 0508-100, コスモバイオ: PB08C-1)を、1μg/mLのLEAF(商標) Purified anti-human CD3 Antibody(Biolegend: 317315)、10 ng/mLのRecombinant human IL-2(rhIL-2)(R&D systems: 202-IL-500)、0.2 μg/ mL のPhytohemagglutinin-L (PHA)(SIGMA: L4144-5MG)と2% ヒト血清(SIGMA: H4522-100ML)を添加したYssel’s培地(Gemini Bio-Products：400102)に播種し、1.2×105のRPE細胞と14日間、共培養した。
14日後、T細胞を限界希釈法にて0.3, 1.0および3.0 cells/ wellとなるように96 ウェルプレートに播種し、1×104のRPE細胞とコロニーが形成されるまで培養した。コロニーが形成されたウェルからT細胞を回収し、クローンT細胞を得た。
(１) 他家細胞及びクローンＴ細胞
他家細胞として、所定のドナー由来のiPS細胞(他家iPS細胞)から作製した網膜色素上皮細胞(RPE細胞)を用いた。RPE細胞は、株式会社ヘリオスより提供された。24ウェルプレートにRPE細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように播種し、37℃、５%CO2にて7日間インキュベートした。これにより、ウェル底面にRPE細胞を接着させたプレートを得た。クローンＴ細胞は、以下の方法で調整した。5×106のCD4陽性細胞(Stemcell Technologies: ST-70026)およびCD8陽性細胞(フナコシ: 0508-100, コスモバイオ: PB08C-1)を、1μg/mLのLEAF(商標) Purified anti-human CD3 Antibody(Biolegend: 317315)、10 ng/mLのRecombinant human IL-2(rhIL-2)(R&D systems: 202-IL-500)、0.2 μg/ mL のPhytohemagglutinin-L (PHA)(SIGMA: L4144-5MG)と2% ヒト血清(SIGMA: H4522-100ML)を添加したYssel’s培地(Gemini Bio-Products：400102)に播種し、1.2×105のRPE細胞と14日間、共培養した。
14日後、T細胞を限界希釈法にて0.3, 1.0および3.0 cells/ wellとなるように96 ウェルプレートに播種し、1×104のRPE細胞とコロニーが形成されるまで培養した。コロニーが形成されたウェルからT細胞を回収し、クローンT細胞を得た。
(２) 免疫細胞の刺激及び測定
RPE細胞を播種したプレートに、調製クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そのプレートを遠心分離した後(200 G、120秒)、37℃で30分間インキュベートした。ウェル中の上清みを除去した後、調製クローンＴ細胞をピペッティングにより分散させ、ウェル表面から回収した。回収したＴ細胞を、1％PFAを含む固定液を用いて固定化した。固定化したＴ細胞を、APC標識抗CD3抗体(BioLegend # 300411 Clone: UCHT1)、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)、PE標識抗CD40L抗体(BD biosciences # 340477 Clone: 89-76)又はPE標識抗OX40抗体(BioLegend #350003 Clone: Ber-ACT35)を用いて免疫染色した。抗CD28抗体で免疫染色したＴ細胞は、さらにPE標識抗マウスIgG抗体(BioLegend ＃405307)を用いて免疫染色した。染色したＴ細胞(5×105 cells/20μl)を、Imaging FCM(ImageStreamX MarkII Imaging Flow Cytometer：Amnis)を用いて測定した。
RPE細胞を播種したプレートに、調製クローンＴ細胞を１ウェルあたり約5×105 cellsとなるように加えた。そのプレートを遠心分離した後(200 G、120秒)、37℃で30分間インキュベートした。ウェル中の上清みを除去した後、調製クローンＴ細胞をピペッティングにより分散させ、ウェル表面から回収した。回収したＴ細胞を、1％PFAを含む固定液を用いて固定化した。固定化したＴ細胞を、APC標識抗CD3抗体(BioLegend # 300411 Clone: UCHT1)、抗CD28抗体(BioLegend ＃302914 Clone：CD28.2)、PE標識抗CD40L抗体(BD biosciences # 340477 Clone: 89-76)又はPE標識抗OX40抗体(BioLegend #350003 Clone: Ber-ACT35)を用いて免疫染色した。抗CD28抗体で免疫染色したＴ細胞は、さらにPE標識抗マウスIgG抗体(BioLegend ＃405307)を用いて免疫染色した。染色したＴ細胞(5×105 cells/20μl)を、Imaging FCM(ImageStreamX MarkII Imaging Flow Cytometer：Amnis)を用いて測定した。
比較のため、他家細胞との接触による免疫刺激を細胞に与えない場合についても検討した。上記(１)で調製したクローンＴ細胞を、他家細胞との接触を行わずに、氷上で上記の固定液を用いて固定した。固定したＴ細胞を、APC標識抗CD3抗体、抗CD28抗体、PE標識抗CD40L抗体又はPE標識抗OX40抗体を用いて免疫染色し、Imaging FCMを用いて測定した。
調製クローンＴ細胞に、他家細胞との接触による免疫刺激を与えなかった場合、Ｔ細胞においてCD3、CD28、CD40L及びOX40はいずれも、細胞膜上に一様に分布した(図21ａ、ｃ、ｅ及びｇ、図22ａ及びｂ、図23ａ及びｂ、図24ａ及びｂ、図25ａ及びｂ参照)。上記の免疫刺激を与えた後に、Ｔ細胞と他家細胞との接触面を解消させた場合、CD3、CD28、CD40L及びOX40は、Ｔ細胞の細胞膜上で局在を示した(図21ｂ、ｄ、ｆ及びｈ、図22ｃ及びｄ、図23ｃ及びｄ、図24ｃ及びｄ、図25ｃ及びｄ参照)。このように、他家細胞との接触による免疫刺激を与えた後に、Ｔ細胞と該他家細胞との接触面が解消された状態であっても、Ｔ細胞の表面抗原であるCD3、CD28、CD40L又はOX40を指標にすることで、免疫シナプスの検出ができた。
(３) データ解析
Imaging FCMを用いて測定して得られた、上記の免疫刺激なしのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ａ及びｂ)と、上記の免疫刺激ありのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ｃ及びｄ)の多重パラメータ解析を行った。計測処理及び解析処理は、実施例２と同様である。簡単には、Imaging FCMを用いて測定した透過光画像、蛍光画像(CD3、CD28、CD40L又はOX40)に基づいて画像解析し、細胞のサイズ(ピクセル数)、細胞のアスペクト比、細胞における蛍光シグナルを示すエリア(ピクセル数)及び該エリア内の総蛍光シグナル強度(細胞の総蛍光シグナル強度)を計測した。最初に、Ｘ軸に細胞サイズを割り当て、Ｙ軸に細胞のアスペクト比を割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し、所定の範囲(Cells)にあるドットに対応する細胞の測定データを抽出した。次いで、範囲(Cells)内の測定データについて、細胞の総蛍光シグナル強度が所定の範囲(Tcells)にあるドットに対応する測定データをさらに抽出した。範囲(Tcells)内の測定データについて、IS_CD3、IS_CD28、IS_CD40L及びIS_OX40と表示された領域内(図22ｂ及びｄ、図23ｂ及びｄ、図24ｂ及びｄ、図25ｂ及びｄ参照)にあるドットの数をそれぞれ計数した。また、各スキャッタグラム上にあるドットの数(範囲(Tcells)内にあるドットの数)を計数した。そして、範囲(Tcells)内のドットの数に対する範囲(IS_CD3、IS_CD28、IS_CD40L及びIS_OX40)内のドットの数の割合を、下記の式(３)より算出した。結果を以下の表４～７に示した。
Imaging FCMを用いて測定して得られた、上記の免疫刺激なしのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ａ及びｂ)と、上記の免疫刺激ありのＴ細胞を含むサンプルの測定データ(図18ｃ及びｄ)の多重パラメータ解析を行った。計測処理及び解析処理は、実施例２と同様である。簡単には、Imaging FCMを用いて測定した透過光画像、蛍光画像(CD3、CD28、CD40L又はOX40)に基づいて画像解析し、細胞のサイズ(ピクセル数)、細胞のアスペクト比、細胞における蛍光シグナルを示すエリア(ピクセル数)及び該エリア内の総蛍光シグナル強度(細胞の総蛍光シグナル強度)を計測した。最初に、Ｘ軸に細胞サイズを割り当て、Ｙ軸に細胞のアスペクト比を割り当てた2Dスキャッタグラムを作成し、所定の範囲(Cells)にあるドットに対応する細胞の測定データを抽出した。次いで、範囲(Cells)内の測定データについて、細胞の総蛍光シグナル強度が所定の範囲(Tcells)にあるドットに対応する測定データをさらに抽出した。範囲(Tcells)内の測定データについて、IS_CD3、IS_CD28、IS_CD40L及びIS_OX40と表示された領域内(図22ｂ及びｄ、図23ｂ及びｄ、図24ｂ及びｄ、図25ｂ及びｄ参照)にあるドットの数をそれぞれ計数した。また、各スキャッタグラム上にあるドットの数(範囲(Tcells)内にあるドットの数)を計数した。そして、範囲(Tcells)内のドットの数に対する範囲(IS_CD3、IS_CD28、IS_CD40L及びIS_OX40)内のドットの数の割合を、下記の式(３)より算出した。結果を以下の表４～７に示した。
[割合(IS形成細胞/Tcells)]＝｛[範囲(IS_CD3、IS_CD28、IS_CD40L又はIS_OX40)内のドット数]／[範囲(Tcells)内のドット数]｝×100 ・・・(３)
表４～７に示されるように、他家細胞による免疫刺激をしたＴ細胞では、免疫シナプスを形成したＴ細胞の割合が、免疫刺激をしなかった場合に比べて、明らかに高くなることが示された。よって、CD3、CD28、CD40L又はOX40を指標とする免疫シナプスの検出により、他家細胞による免疫刺激に対する免疫細胞の応答性を測定できることが示された。
Claims (24)
- (i)測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、
(ii)前記測定対象の免疫細胞に、前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触により接触面を形成させ、前記接触を物理的及び／又は化学的に解消する工程と、
(iii)前記測定対象の免疫細胞と、前記接触をしていた面における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体とを接触させる工程と、
(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、
(v)検出した光学シグナルに基づいて、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する工程と
を含み、
前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、非生物材料の固相及び／又は前記測定対象の免疫細胞とは異なる細胞であり、
前記測定対象の免疫細胞が、Ｔ細胞及び／又はNK細胞である、
免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法。 - 工程(i)の免疫刺激因子が、工程(iii)の前記接触をしていた面における表面抗原に結合し且つ光学シグナルを生じうる捕捉体として共用され、
工程(i)と工程(iii)とが同時に実施される、請求項１に記載の方法。 - 工程(i)の免疫刺激因子が、工程(ii)の前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質上に存在する、請求項１又は２に記載の方法。
- 前記接触を、攪拌、超音波処理又は化学的処理により解消させる、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
- 前記測定対象の免疫細胞を、細胞の大きさ、凝集度及び／又は比重に基づいて、細胞を含む試料から分取する工程をさらに含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
- 前記表面抗原が、TCRα/β、CD3、CD40L、OX40、CD28、CTLA4、PD-1及びICOSの少なくとも１つを含む、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
- 前記表面抗原が共刺激分子である、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
- 前記捕捉体が、光学シグナルを生じうる物質と、前記接触面における表面抗原に直接的または間接的に結合する物質とを含む、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
- 前記接触面における表面抗原に直接的又は間接的に結合する物質が、抗体、抗体フラグメント、一本鎖抗体又はアプタマーである、請求項８に記載の方法。
- 前記免疫刺激因子が、免疫刺激抗体、免疫刺激ペプチド、主要組織適合性分子(MHC分子)、及びMHC分子と抗原ペプチドの複合体の少なくとも１つを含む、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
- 前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、他家細胞、抗原提示細胞、癌細胞、容器、マルチウェルプレート、スライド又はビーズである、請求項１～１０のいずれか一項に記載の方法。
- 前記測定対象の免疫細胞がＴ細胞である、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
- 工程(v)において、前記光学シグナルに基づいて、前記接触をしていた面における、捕捉体が結合した表面抗原の分布を反映する値を計測し、計測した値を閾値と比較することにより、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する、請求項１～１２のいずれか一項に記載の方法。
- 前記捕捉体が蛍光物質を含み、
工程(iv)において、前記捕捉体から生じた蛍光シグナルを検出し、
工程(v)において、前記検出した蛍光シグナルに基づいて蛍光画像を取得し、前記蛍光画像において表面抗原の分布を反映する蛍光シグナルを示すエリアを計測して、前記エリアを閾値と比較することにより、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する、請求項１３に記載の方法。 - 工程(v)において、前記エリアが閾値よりも小さい場合に、前記測定対象の免疫細胞は免疫刺激応答性を有すると判定する、請求項１４に記載の方法。
- 前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、他家細胞、抗原提示細胞、癌細胞、又はビーズである場合、前記測定対象の免疫細胞と、前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質と、前記捕捉体との複合体に対して、フローサイトメーター又はイメージングサイトメーターを用いて前記工程(iv)を実行するか、あるいは
前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、容器、マルチウェルプレート又はスライドである場合、前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質と前記測定対象の免疫細胞との接触を解消させ、前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質から離れた、前記測定対象の免疫細胞と前記捕捉体との複合体に対して、フローサイトメーター又はイメージングサイトメーターを用いて前記工程(iv)を実行する、
請求項１～１５のいずれか一項に記載の方法。 - (i)測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、
(ii)前記測定対象の免疫細胞に、前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触により接触面を形成させ、前記接触を物理的及び／又は化学的に解消する工程と、
(iii)前記測定対象の免疫細胞上の前記接触をしていた面に形成された免疫シナプス、又は前記接触をしていた面において前記測定対象の免疫細胞に結合した免疫刺激因子を、光学シグナルを生じうる捕捉体により標識する工程と、
(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、
(v)検出した光学シグナルに基づいて、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを自動的に判定する工程と
を含み、
前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、非生物材料の固相及び／又は前記測定対象の免疫細胞とは異なる細胞であり、
前記測定対象の免疫細胞が、Ｔ細胞及び／又はNK細胞である、
免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法。 - (i)測定対象の免疫細胞と免疫刺激因子とを接触させる工程と、
(ii)前記測定対象の免疫細胞に、前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質との接触により接触面を形成させ、前記接触を物理的及び／又は化学的に解消する工程と、
(iii)前記測定対象の免疫細胞上の前記接触をしていた面に形成された免疫シナプス、又は前記接触をしていた面において前記測定対象の免疫細胞に結合した免疫刺激因子を、光学シグナルを生じうる捕捉体により標識する工程と、
(iv)前記捕捉体から生じた光学シグナルを検出する工程と、
(v)検出した光学シグナルに基づいて、前記測定対象の免疫細胞における免疫シナプスの局在を判定する工程と
を含み、
前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、非生物材料の固相及び／又は前記測定対象の免疫細胞とは異なる細胞であり、
前記測定対象の免疫細胞が、Ｔ細胞及び／又はNK細胞である、
免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法。 - 免疫刺激因子による免疫刺激を受けた測定対象の免疫細胞と、光学シグナルを生じうる捕捉体との複合体であって、前記免疫細胞が、前記免疫細胞とは異なる物質との接触により接触面が形成された後、前記接触が物理的及び／又は化学的に解消された細胞であり、前記捕捉体が、前記免疫細胞と前記免疫細胞とは異なる物質とが接触していた面に形成された免疫シナプス、又は前記接触をしていた面において前記免疫細胞に結合した前記免疫刺激因子に結合されている前記複合体を導入する導入部と、
前記導入部から供給された前記複合体を撮像する撮像部と、
前記撮像部により撮像された画像に基づいて、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する解析部と
を含み、
前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、非生物材料の固相及び／又は前記測定対象の免疫細胞とは異なる細胞であり、
前記測定対象の免疫細胞が、Ｔ細胞及び／又はNK細胞である、細胞分析装置。 - 前記解析部が、前記画像に基づいて、前記接触をしていた面における免疫シナプスを構成する分子の分布を反映する値を取得し、取得した値を閾値と比較することにより、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する、請求項１９に記載の装置。
- 前記捕捉体が蛍光物質を含み、
前記画像が蛍光画像を含み、
前記免疫シナプスを構成する分子の分布を反映する値が、前記蛍光画像に基づいた前記分子の分布を反映する蛍光シグナルを示すエリアを含み、
前記エリアが前記閾値よりも小さい場合に、前記測定対象の免疫細胞は免疫刺激応答性を有すると判定する、請求項１９又は２０に記載の装置。 - 前記画像が透過光画像を含み、
前記解析部が、前記透過光画像に基づいて前記測定対象の免疫細胞の大きさを反映した値を取得し、前記測定対象の免疫細胞の大きさを反映した値と前記免疫シナプスを構成する分子の分布を反映する値とに基づいて、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する、請求項２０又は２１に記載の装置。 - 免疫刺激因子による免疫刺激を受けた測定対象の免疫細胞と、光学シグナルを生じうる捕捉体との複合体であって、前記免疫細胞が、前記免疫細胞とは異なる物質との接触により接触面が形成された後、前記接触が物理的及び／又は化学的に解消された細胞であり、前記捕捉体が、前記免疫細胞と前記免疫細胞とは異なる物質とが接触していた面に形成された免疫シナプス、又は前記接触をしていた面において前記免疫細胞に結合した前記免疫刺激因子に結合されている前記複合体を導入する導入部と、
前記導入部から供給された前記複合体に光を照射し、生じた前記複合体からの光学シグナルを検出する検出部と、
検出した光学シグナルに基づいて、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定する解析部と
を含み、
前記測定対象の免疫細胞とは異なる物質が、非生物材料の固相及び／又は前記測定対象の免疫細胞とは異なる細胞であり、
前記測定対象の免疫細胞が、Ｔ細胞及び／又はNK細胞である、細胞分析装置。 - 前記捕捉体が蛍光物質を含み、
前記検出部は、前記複合体から生じた蛍光シグナルを検出し、
前記解析部が、前記蛍光シグナルに基づいて、前記免疫シナプスを構成する分子の分布を反映する値を取得し、取得した値を閾値と比較することにより、前記測定対象の免疫細胞が免疫刺激応答性を有するか否かを判定し、
前記分子の分布を反映する値が、前記複合体からの蛍光シグナルのパルス幅、その蛍光パルスの高さ及びパルス面積の少なくとも一つを含む、請求項２３に記載の装置。
Priority Applications (8)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2017078407A JP6990522B2 (ja) | 2017-04-11 | 2017-04-11 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
| US15/949,577 US11125740B2 (en) | 2017-04-11 | 2018-04-10 | Method for measuring immunostimulatory response of immune cell, method for determining ability to form immune synapse in immune cell, and cell analyzer |
| EP23165901.2A EP4224162A1 (en) | 2017-04-11 | 2018-04-10 | Method for measuring immunostimulatory response of immune cell, method for determining ability to form immune synapse in immune cell, and cell analyzer |
| EP18166512.6A EP3388832B1 (en) | 2017-04-11 | 2018-04-10 | Method for measuring immunostimulatory response of immune cell, method for determining ability to form immune synapse in immune cell, and cell analyzer |
| CN202211132806.7A CN115508550A (zh) | 2017-04-11 | 2018-04-10 | 免疫细胞免疫刺激应答性的测定、免疫细胞免疫突触形成能力的判定、以及细胞分析装置 |
| CN201810314681.7A CN108761054B (zh) | 2017-04-11 | 2018-04-10 | 免疫细胞免疫刺激应答性的测定、免疫细胞免疫突触形成能力的判定、以及细胞分析装置 |
| US17/388,223 US11808761B2 (en) | 2017-04-11 | 2021-07-29 | Method for measuring immunostimulatory response of immune cell, method for determining ability to form immune synapse in immune cell, and cell analyzer |
| JP2021197992A JP7165802B2 (ja) | 2017-04-11 | 2021-12-06 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2017078407A JP6990522B2 (ja) | 2017-04-11 | 2017-04-11 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2021197992A Division JP7165802B2 (ja) | 2017-04-11 | 2021-12-06 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2018179709A JP2018179709A (ja) | 2018-11-15 |
| JP6990522B2 true JP6990522B2 (ja) | 2022-02-03 |
Family
ID=62063277
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2017078407A Active JP6990522B2 (ja) | 2017-04-11 | 2017-04-11 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US11125740B2 (ja) |
| EP (2) | EP4224162A1 (ja) |
| JP (1) | JP6990522B2 (ja) |
| CN (2) | CN115508550A (ja) |
Families Citing this family (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP6990522B2 (ja) * | 2017-04-11 | 2022-02-03 | シスメックス株式会社 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
| WO2020083398A1 (zh) * | 2018-10-26 | 2020-04-30 | 山东大学 | 细胞特异性光敏效应的实时筛查与测量系统及方法 |
| CN113167786A (zh) * | 2018-11-29 | 2021-07-23 | 希森美康株式会社 | 免疫细胞的分析方法及细胞分析装置 |
| EP3812765A1 (en) * | 2019-10-23 | 2021-04-28 | Deutsches Krebsforschungszentrum, Stiftung des öffentlichen Rechts | Method and system for closed-loop live-cell imaging |
| KR102339338B1 (ko) * | 2020-03-09 | 2021-12-15 | 주식회사 더웨이브톡 | 영상 정보 획득 장치 |
| WO2023153016A1 (ja) * | 2022-02-09 | 2023-08-17 | 浜松ホトニクス株式会社 | 信号処理方法、信号処理装置、及び信号処理システム |
| CN116026806B (zh) * | 2023-03-30 | 2023-06-09 | 山东德渡生物技术有限公司 | 一种荧光显微系统 |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2007104944A (ja) | 2005-10-13 | 2007-04-26 | Institute Of Physical & Chemical Research | クラスターを形成し得る細胞表面レセプターを有する細胞の活性化制御剤およびそのスクリーニング方法 |
| JP2013183664A (ja) | 2012-03-07 | 2013-09-19 | Toyama Univ | Ｔ細胞の刺激方法およびその利用 |
| US20150030619A1 (en) | 2011-09-06 | 2015-01-29 | The Trustees Of Columbia University In The City Of New York | Activation and Expansion of T Cell Subsets Using Biocompatible Solid Substrates with Tunable Rigidity |
Family Cites Families (20)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7807377B2 (en) * | 1998-10-20 | 2010-10-05 | Salvatore Albani | Method of isolating antigen-specific T cells employing artificial antigen presenting cells |
| WO2001042296A2 (en) * | 1999-12-13 | 2001-06-14 | Arbor Vita Corporation | Clasp-5 transmembrane protein |
| JP5059271B2 (ja) * | 2000-03-31 | 2012-10-24 | パーデュー・リサーチ・ファウンデイション | リガンド免疫原複合体を用いる処置方法 |
| AUPR807101A0 (en) * | 2001-10-03 | 2001-10-25 | University Of Queensland, The | Csf-1 immunomodulation |
| WO2004087754A1 (en) * | 2003-04-03 | 2004-10-14 | Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem | Broad-spectrum in-vivo effective superantigen toxin antagonists based on the interaction between cd28 and the superantigen and uses thereof |
| CN1444043A (zh) * | 2002-12-25 | 2003-09-24 | 帕弗瑞生物技术(北京)有限公司 | 一种个体化特异性免疫细胞功能测定方法 |
| WO2005044840A2 (en) * | 2003-10-17 | 2005-05-19 | The Cbr Institute For Biomedical Research, Inc. | Modulation of anergy and methods for isolating anergy-modulating compounds |
| RU2006134631A (ru) * | 2004-03-02 | 2008-04-10 | Чирон Корпорейшн (Us) | Иммуногенные композиции против chlamidia pneumoniae |
| CN100591761C (zh) * | 2004-08-19 | 2010-02-24 | 加的夫大学学院咨询有限公司 | 呈递抗原的人γδT细胞的制备和在免疫治疗中的用途 |
| CN1996015A (zh) * | 2006-01-06 | 2007-07-11 | 林远 | 流式细胞仪生物芯片：免疫监测及药物研发 |
| US20080317724A1 (en) * | 2007-01-18 | 2008-12-25 | Lance Kam | Micropatterned T cell stimulation |
| EP2045595B1 (en) * | 2007-10-03 | 2022-03-23 | Sysmex Corporation | Cell analyser and cell analysing method |
| EP2264182A1 (en) * | 2008-02-28 | 2010-12-22 | Sysmex Corporation | Marker for detection of il-17-producing helper t-cell, and method for detection of il-17-producing helper t-cell |
| JP5946605B2 (ja) * | 2011-01-28 | 2016-07-06 | シスメックス株式会社 | ヒトｉｌ−１７産生ヘルパーｔ細胞の検出方法 |
| JP2013024629A (ja) * | 2011-07-19 | 2013-02-04 | Sysmex Corp | フローサイトメータ |
| CA2886647A1 (en) * | 2012-10-01 | 2014-04-10 | Adaptive Biotechnologies Corporation | Immunocompetence assessment by adaptive immune receptor diversity and clonality characterization |
| CN104357393B (zh) * | 2014-11-14 | 2017-05-31 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种鸡肠道上皮γδT细胞的分离培养方法 |
| CN108700582B (zh) * | 2015-07-31 | 2021-10-22 | 米圣生物 | 免疫突触的质量预测了嵌合抗原受体（car）t细胞的效能 |
| CN105547791B (zh) * | 2015-12-22 | 2018-03-02 | 湖南人康生命科技有限公司 | 一种神经系统突触位点的免疫荧光染色方法 |
| JP6990522B2 (ja) * | 2017-04-11 | 2022-02-03 | シスメックス株式会社 | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 |
-
2017
- 2017-04-11 JP JP2017078407A patent/JP6990522B2/ja active Active
-
2018
- 2018-04-10 CN CN202211132806.7A patent/CN115508550A/zh active Pending
- 2018-04-10 EP EP23165901.2A patent/EP4224162A1/en active Pending
- 2018-04-10 EP EP18166512.6A patent/EP3388832B1/en active Active
- 2018-04-10 CN CN201810314681.7A patent/CN108761054B/zh active Active
- 2018-04-10 US US15/949,577 patent/US11125740B2/en active Active
-
2021
- 2021-07-29 US US17/388,223 patent/US11808761B2/en active Active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2007104944A (ja) | 2005-10-13 | 2007-04-26 | Institute Of Physical & Chemical Research | クラスターを形成し得る細胞表面レセプターを有する細胞の活性化制御剤およびそのスクリーニング方法 |
| US20150030619A1 (en) | 2011-09-06 | 2015-01-29 | The Trustees Of Columbia University In The City Of New York | Activation and Expansion of T Cell Subsets Using Biocompatible Solid Substrates with Tunable Rigidity |
| JP2013183664A (ja) | 2012-03-07 | 2013-09-19 | Toyama Univ | Ｔ細胞の刺激方法およびその利用 |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| HOSSEINI BH、外９名，Immune synapse formation determines interaction forces between T cells and antigen-presenting cells measured by atomic force microscopy，Proc Natl Acad Sci U S A，米国，2009年10月20日，Vol.106,no.42，Page.17852-17857，doi: 10.1073/pnas.0905384106. Epub 2009 Oct 12. |
| T YOKOSUKA、外7名 ，Spatiotemporal regulation of T cell costimulation by TCR-CD28 microclusters and protein kinase C theta translocation，Immunity，2008年10月17日，Vol.29,No.4，Page.589-601，doi: 10.1016/j.immuni.2008.08.011. Epub 2008 Oct 9. |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US20180292385A1 (en) | 2018-10-11 |
| US11125740B2 (en) | 2021-09-21 |
| US11808761B2 (en) | 2023-11-07 |
| EP4224162A1 (en) | 2023-08-09 |
| US20210356454A1 (en) | 2021-11-18 |
| EP3388832A1 (en) | 2018-10-17 |
| EP3388832B1 (en) | 2023-07-05 |
| CN108761054A (zh) | 2018-11-06 |
| CN115508550A (zh) | 2022-12-23 |
| JP2018179709A (ja) | 2018-11-15 |
| CN108761054B (zh) | 2022-09-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP6990522B2 (ja) | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 | |
| Motamedi et al. | Correlation of transferrin receptor (CD71) with Ki67 expression on stimulated human and mouse T cells: The kinetics of expression of T cell activation markers | |
| JP5550182B2 (ja) | 複合試料マトリクスからの細胞の単離および計数の方法 | |
| EP2726879B1 (en) | Requlatory t cells and methods of identifying and isolating them using cd6 -expression or the combination of cd4, cd25 and cd127 | |
| Moon et al. | Tracking epitope-specific T cells | |
| US20100248257A1 (en) | Compiled Methods for Analysing and Sorting Samples | |
| Markey et al. | Imaging the immunological synapse between dendritic cells and T cells | |
| JP2023178361A (ja) | 非常に低レベルのｃｄ１９を発現する骨髄腫細胞を除去するｃｄ１９ｃａｒｔ細胞 | |
| CA2795403C (en) | B-cell antigen presenting cell assay | |
| US10114011B2 (en) | Antigen presenting cell assay | |
| IL291859A (en) | A high-throughput method for screening t-cell cognate and epitope reactivity in primary human cells | |
| US20210270812A1 (en) | Method for analyzing immune cells | |
| WO2009110614A1 (ja) | エフェクター細胞の機能測定法及び測定用キット並びに測定システム | |
| JP7165802B2 (ja) | 免疫細胞の免疫刺激応答性を測定する方法、免疫細胞における免疫シナプスの形成能を判定する方法及び細胞分析装置 | |
| US20230194410A1 (en) | Method for detecting antigen-specific activated t cell | |
| US20170356901A1 (en) | T cell-bound cytokine assay for antigen-specific tolerance | |
| Moran et al. | Fate mapping and transcript profiling of germinal center cells by two-photon photoconversion | |
| CA2893068A1 (en) | Method for determining compatibility between a donor and a recipient by means of the flow cytometric detection of alloreactive t cells | |
| US10379118B2 (en) | Quantification of antigen molecules using dynamic flow cytometry | |
| Camisaschi et al. | Monitoring the frequency and function of regulatory T cells and summary of the approaches currently used to inhibit regulatory T cells in cancer patients | |
| Glass | Optical Tweezers: A tool to control, manipulate and quantify immune cell interaction | |
| Nguyen | Investigating transendocytosis mediated by CTLA4 | |
| US20090075296A1 (en) | Methods and compositions for assaying regulatory t cells | |
| Williams | Role of TCR affinity in function, proliferation, memory generation, and exhaustion during human viral infection |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20200219 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20201210 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20210104 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20210302 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20210713 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20210831 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20211102 |
|
| A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20211201 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20211206 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6990522 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |