JP6964127B2 - Her−2結合抗体 - Google Patents
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Description
本発明による用語「ウサギ」は、分類学上ウサギ目(taxonomic order)のメンバーの動物を意味し、それはファミリー(ノウサギおよびウサギ)およびナキウサギ科(Ochotonidae)(ナキウサギ)、好ましくはアナウサギ属(Oryctolagus)を含む。
本明細書において特に明記しない限り、Fc領域または定常領域におけるアミノ酸残基の番号付けは、Kabatら、Sequences of Proteins of Immunological Interest、第5版、Public Health Service、National Institutes of Health、Bethesda、MD(1991)に記載のEUインデックスとも呼ばれるEU付番方式にしたがう。
a)CDR−H1、CDR−H2、およびCDR−H3を含む重鎖可変領域(VH)であって、
CDR−H1領域が、配列番号13〜18の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR−H2領域が、配列番号19〜24の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR−H3領域が、配列番号25〜30の群から選択されるアミノ酸配列を含む、VHと、
b)CDR−L1、CDR−L2、CDR−L3を含む軽鎖可変領域(VL)であって、
CDR−L1領域が、配列番号31〜36の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR−L2領域が、配列番号37〜42の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR−L3領域が、配列番号43〜48の群から選択されるアミノ酸配列を含む、VLと
を含む、抗体に関する。
a)フレームワーク領域FR−H1、FR−H2、FR−H3、およびFR−H4を含み、
FR−H1領域が、配列番号49〜54の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
FR−H2領域が、配列番号55〜60の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
FR−H3領域が、配列番号61〜66の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
FR−H4領域が、配列番号67〜72の群から選択されるアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(VH)と、
b)フレームワーク領域FR−L1、FR−L2、FR−L3、およびFR−L4を含み、
FR−L1領域が、配列番号73〜78の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
FR−L2領域が、配列番号79〜84の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
FR−L3領域が、配列番号85〜90の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
FR−L4領域が、配列番号91〜96の群から選択されるアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(VL)と
を含んでいてよい。
a)FR−H1、CDR−H1、FR−H2、CDR−H2、FR−H3、CDR−H3およびFR−H4を含み、
CDR−H1領域が、式:
(S/N)1−(Y/S)2−(N/A/G/Y)3−(M/V/Y)4−(G/A/S/M)5−(0/C)6
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−H2領域が、式:
(I/C)1−(I)2−(N/S/Y)3−(H/A/S/G)4−(G/I/S)5−(D/G/S)6−(N/T/F/D/S)7−(T/A/N/S)8−(Y/H/T/S)9−(T/Y/W)10−(F/A/Y)11−(S/A/Y)12−(W/A/S)13−(W/A/S)14−(K/A/W)15−(G/A/K)16−(0/G/K)17−(0/AG)18
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−H3領域が、式:
(G/S/A/D)1−(A/Y/D/V/L/Q)2−(A/T/D/V/Y/I)3−(P/A/S/G/Y)4−(G/N/S/D)5−(D/G/S/Y)6−(G/T/N/L/S)7−(R/A/G)8−(Y/F/L/G)9−(0/N/G/Y)10−(0/I/Y/L)11−(0/F)12−(0/S)13−(0/L)14
によるアミノ酸配列を含む、
重鎖可変領域(VH)、
b)FR−L1、CDR−L1、FR−L2、CDR−L2、FR−L3、CDR−L3、およびFR−L4を含み、
CDR−L1領域が、式:
(Q)1−(A)2−(S)3−(Q)4−(S)5−(I)6−(G/S/Y)7−(T/N/S/I)8−(Y/A/L)9−(L)10−(G/A/S)11
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−L2領域が、式:
(G/Y/S/K)1−(A)2−(S)3−(N/S/T)4−(L)5−(E/A)6−(F/S)7
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−L3領域が、式:
(Q)1−(C/N/S)2−(S/T/N)3−(A/D/N/Y)4−(Y/V/A/G)5−(G/S)6−(G/S)7−(R/N/V/Y/S)8−(Y/S)9−(V/S/L)10−(G/A/W)11−(G/A/T/F/E)12−(0/G)13−(0/A)14
によるアミノ酸配列を含む、
軽鎖可変領域(VL)
を含む、抗体にも関する。
a)FR−H1、CDR−H1、FR−H2、CDR−H2、FR−H3、CDR−H3およびFR−H4を含み、
CDR−H1領域が、式:
(S/N)1−(Y/S)2−(N/A/G/Y)3−(M/V/Y)4−(G/A/S/M)5−(0/C)6
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−H2領域が、式:
(I/C)1−(I)2−(N/S/Y)3−(H/A/S/G)4−(G/I/S)5−(D/G/S)6−(N/T/F/D/S)7−(T/A/N/S)8−(Y/H/T/S)9−(T/Y/W)10−(F/A/Y)11−(S/A/Y)12−(W/A/S)13−(W/A/S)14−(K/A/W)15−(G/A/K)16−(0/G/K)17−(0/AG)18
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−H3領域が、式:
(G/S/A/D)1−(A/Y/D/V/L/Q)2−(A/T/D/V/Y/I)3−(P/A/S/G/Y)4−(G/N/S/D)5−(D/G/S/Y)6−(G/T/N/L/S)7−(R/A/G)8−(Y/F/L/G)9−(0/N/G/Y)10−(0/I/Y/L)11−(0/F)12−(0/S)13−(0/L)14
によるアミノ酸配列を含む、
重鎖可変領域(VH)、
b)FR−L1、CDR−L1、FR−L2、CDR−L2、FR−L3、CDR−L3、およびFR−L4を含み、
CDR−L1領域が、式:
(Q)1−(A)2−(S)3−(Q)4−(S)5−(I)6−(G/S/Y)7−(T/N/S/I)8−(Y/A/L)9−(L)10−(G/A/S)11
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−L2領域が、式:
(G/Y/S/K)1−(A)2−(S)3−(N/S/T)4−(L)5−(E/A)6−(F/S)7
によるアミノ酸配列を含み、
CDR−L3領域が、式:
(Q)1−(C/N/S)2−(S/T/N)3−(A/D/N/Y)4−(Y/V/A/G)5−(G/S)6−(G/S)7−(R/N/V/Y/S)8−(Y/S)9−(V/S/L)10−(G/A/W)11−(G/A/T/F/E)12−(0/G)13−(0/A)14
によるアミノ酸配列を含む、
軽鎖可変領域(VL)
を含む、FR−H1、CDR−H1、FR−H2、CDR−H2、FR−H3、CDR−H3およびFR−H4を含む重鎖可変領域(VH)を含むヒト化抗体、またはその断片もしくは誘導体、またはHER2結合特異性を付与するのに十分な前記抗体の少なくとも一部を含むポリペプチドである。
図および表と併せて、以下の実施例を使用して本発明について例示する。
例えばPromegaから市販されているFcγRIIIaシグナル伝達アッセイにより、FcγRIIIa受容体シグナル伝達の早期検出、それにより有効な抗体候補の選択が可能となる。
各抗原(HER2)を提示する標的細胞(Jurkat)を、試料抗体およびJIMT−1細胞とともにインキュベートする。Jurkat細胞株は、ヒトIgG Fc断片に対し高い親和性を有するFcγRIIIa受容体V158を安定に発現し、NFAT−RE−プロモーター部位を含み、それによりルシフェラーゼ発現の誘導を可能にする。抗体が標的(HER2発現)細胞に結合すると、抗体がFcγRIIIa受容体にFc媒介性結合することにより、NFAT経路、ゆえにルシフェラーゼ発現を活性化する。ルシフェラーゼ基質(ルシフェリン)を添加すると、フォトルミネセンスを生じる経路が活性化され、これを測定し、抗体の受容体への結合すなわちその免疫学的活性と定性的かつ半定量的に相関させることができる。ルシフェラーゼのシグナル強度は、活性化された受容体の数と相関する。
1日目
− マイクロタイタープレートの各ウェルに、例えば培地25μl中のJIMT−1細胞7500または15000個を添加する。
− 細胞を37℃および5%CO2で20〜24時間インキュベートする。
2日目
− ルシフェラーゼアッセイ緩衝液およびルシフェラーゼ基質を室温に平衡化する。
− 37℃のウォーターバスで、少量IgG含有FCS(「低IgG FCS」Hyclone der Firma Thermo Scientific SH 30898.03)を解凍する。
− 「低IgG FCS」をDMEM細胞培養培地(最終濃度:4%)に添加する
− ウォーターバスで37℃に温める。
− ピペットロボット(CyBi−Well vario、CyBio)で、各ウェルから培地23μLを除去する。
− 試料抗体(「低IgG FCS」培地で希釈)16μLおよびエフェクター細胞懸濁液(c=500000/mL、4000細胞/ウェル)8μLを添加する。
− 6時間インキュベートし、その後ルシフェラーゼアッセイ試薬(緩衝液および基質、Promega Corp.)20μLを添加し、室温で10分間インキュベートする。
− 発光を光度測定(Tecan infinite M1000 PRO)する
− NFAT経路の非特異的な自発的活性化から生じるランダムな発光を差し引く
試料:抗体試料
ブランク:ブラインド値(緩衝液のみ)
エフェクター:抗体不含の培地/緩衝液中のエフェクター細胞
FoI:x倍活性化としてのシグナル対ブランク比(誘導倍率)
RLU:光度計の尺度(相対的な発光単位)
アッセイ原理
− モノクローナル参照抗体に結合する抗ヒトFcで、NUNC Maxisorp 384ウェルマイクロタイタープレートをコーティングする。このプレートを「アッセイプレート」と呼ぶ。
− 標的抗原(ここでは:HER2、Hisタグで標識)および抗his抗体(PODで標識)とともに試料抗体を事前インキュベートする
− 事前インキュベーション混合物をアッセイプレートに添加する。
プレート:プレート1:384ウェルNUNC Maxisorpプレート;カタログ番号464718(アッセイプレート)
プレート2:事前インキュベート用プレート:AxygenまたはDeepwell 384プレートのいずれかからのPP−プレート
コーティングAb:ヤギ抗ヒトIgG(Fc特異的);Sigma;カタログ番号I2136;アッセイ濃度:0.5μg/ml
タンパク質:組換えヒトErbB2/HER2 Fcキメラ;R&D Systems;カタログ番号1129−ER;作用濃度:体積次第(アッセイ濃度0.3μg/mL)
基準Ab:ハーセプチン;Roche;濃度:希釈次第;
検出Ab:モノクローナル抗ポリヒスチジンペルオキシダーゼコンジュゲート;Sigma;カタログ番号A7058;作用濃度:体積次第(5.1.1を参照のこと/アッセイ濃度0.5μg/mL/例えば(90+5+5)μLでは=20*0.5μg/mL=6μg/mL)
PBS:Buffers in a Box、Premixed PBS Buffer、10x;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
BSA:ウシ血清由来ウシ血清アルブミンフラクションV;Roche Applied Sciences;カタログ番号10735086001
Tween20:Tween20;Sigma−Aldrich;カタログ番号P1379
TMB:TMB溶液;Merck;カタログ番号CL07
HCl:1M Titripur塩酸;Merck;カタログ番号1090571000
ELISA緩衝液:PBS、0.5%BSA、0.05%Tween
洗浄緩衝液:PBS、0.05%Tween
ブロッキング緩衝液:PBS、2%BSA、0.05%Tween
1.ヤギ抗ヒトIgG(Fc特異的)のPBS溶液20μlでNUNC Maxisorpプレートをコーティングし、室温で1時間インキュベートする(プレート1)。
2.1プレートあたり洗浄緩衝液90μlで洗浄ステップ3回
3.ブロッキング緩衝液90μlとともにプレートを室温で1時間インキュベートする
4.1プレートあたり洗浄緩衝液90μlで洗浄ステップ3回
5.一次抗体(0.2μg/ml)のELISA緩衝液溶液20μlとともにプレートをRTで1hインキュベートする。同時に、異なるプレート(プレート2)で、事前インキュベーション混合物を作製する:試料抗体のELISA緩衝液溶液(作用濃度:>2μg/ml;対照抗体でも同一濃度)、ELISA緩衝液のみ(ブランク)それぞれ90μlを、HIS−タグ含有タンパク質(例えばHER2−HIS−タグ)5μlと混合する。抗HIS POD−抗体5mlを添加し、混合物を室温で1hインキュベートする。
6.一次抗体含有プレートを洗浄緩衝液90μlで3回洗浄する。
7.事前インキュベーション混合物20μlをプレート2からプレート1のウェルに添加し、室温で1hインキュベートする
8.洗浄緩衝液で6回洗浄する
9.ウェルそれぞれにTMB25μlを添加する。
10.十分に発色させた後、HCl25μlで反応を停止させる。
11.450nm/620nmでの吸収を測定する。
材料:
プレート:384ウェルNUNC Maxisorpプレート;NUNC;カタログ番号464718
コーティングタンパク質:ヒトHer1(組換えヒトEGFR/ErbB1 Fcキメラ;R&D Systems;カタログ番号344−ER)
ヒトHer2(組換えヒトErbB2/HER2 Fcキメラ;R&D Systems;カタログ番号1129−ER)
ヒトHer3(組換えヒトErbB3/Her3 Fcキメラ;R&D Systems;カタログ番号348−RB)
ヒトHer4(組換えヒトErbB4/HER4 Fcキメラ;R&D Systems;カタログ番号1131−ER)
cyno Her2(カニクイザルHER2/ErbB2タンパク質;Sino Biological;カタログ番号90295−C08H)
ラットHer2(ラットHER2/ErbB2タンパク質;Sino Biological;カタログ番号80079−RCCH)
マウスHer2(マウスHer2/ErbB2タンパク質;Acro Biosystems;カタログ番号ER2−M5220)
一次Ab:トラスツズマブ
ペルツズマブ
MABD B100
MAB−16−0160
MAB−16−0161
MAB−16−0163
MAB−16−0165
検出Ab:抗ヒトFab2 POD−抗体;AbD Serotec;STAR126P
PBS:Buffers in a Box、Premixed PBS Buffer、10x;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
BSA:ウシ血清由来ウシ血清アルブミンフラクションV;Roche Applied Sciences;カタログ番号10735086001
Tween20:Tween20;Sigma−Aldrich;カタログ番号P1379
TMB:TMB溶液;Invitrogen;カタログ番号SB02
HCl:1M Titripur塩酸;Merck;カタログ番号1090571000
ELISA緩衝液:PBS、0.5%BSA、0.05%Tween
洗浄緩衝液:PBS、0.1%Tween
ブロッキング緩衝液:PBS、2%BSA、0.05%Tween
試料:ELISA緩衝液での希釈はプロジェクト次第である(高濃度IgGでは1:2希釈が推奨される)
1.望ましいコーティングタンパク質をPBSで0.5μg/mLに希釈し、12.5μLを384ウェルNUNC Maxisorpプレートに添加する。
2.室温で1hインキュベートする。
3.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
4.各ウェルにブロッキング緩衝液90μLを添加し、室温で1hインキュベートする。
5.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
6.ELISA緩衝液で希釈された望ましい一次抗体12.5μLを望ましい濃度になるまで添加する。
7.室温で1hインキュベートする。
8.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
9.ELISA緩衝液で1:5000に希釈された検出抗体12.5μLを添加し、室温で1hインキュベートする。
10.洗浄緩衝液で6回洗浄する。
11.TMB15μLを添加する。
12.十分な発色時間の後にHCl15μLを添加する。
13.450nm/620nmでの吸光度を読み取る。
14.Excel Fit(Fit Model:205、4つのパラメータ全てについてPre−Fitであり、いずれのパラメータにも制約はない。EC50=パラメータC)でデータを分析する
材料:
細胞培養プレート:黒色、384ウェル、透明平底Corning細胞培養プレート;Corning;カタログ番号3764
細胞:SK−BR−3;ATCC;カタログ番号HTB−30
一次Ab:トラスツズマブ
ペルツズマブ
MABD B100
MAB−16−0160
MAB−16−0161
MAB−16−0163
MAB−16−0165
検出Ab:AF488−conj.AffiniPure α−HuIgG(H&L)Fragm.Speci.;Dianova;カタログ番号109−546−003
蛍光色素:Hoechst;Invitrogen;カタログ番号H3570
FCS:既定HyCloneウシ胎児血清;Thermo Scientific;カタログ番号SH30070.03
細胞培地:安定グルタミン、2.2g/l NaHCO3含有McCoy’s;PAN Biotech;カタログ番号P04−06500+10%FCS
PBS:Buffers in a Box、Premixed PBS Buffer、10x;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
Tween20:Tween20;Sigma−Aldrich;カタログ番号P1379
細胞洗浄緩衝液:PBS、0.05%Tween
1.細胞培養プレートに、望ましい濃度になるまで細胞培地で希釈された一次抗体20μLを添加する。
2.同一のウェルに、細胞培地20μL中の細胞(1,000細胞/ウェル)を播種する。
3.37℃および5%CO2で4hまたは一晩インキュベートする。
4.細胞洗浄緩衝液75μlで3回洗浄する。
5.濃度250ng/mLになるまで細胞培地で検出抗体を希釈し、20μlを試験ウェルに添加する。
6.37℃および5%CO2で4hインキュベートする。
7.濃度22.5μg/mLになるまで細胞培地で蛍光色素を希釈し、5μlを試験ウェルに添加する。
8.室温で10分〜1hインキュベートする。
9.CellInsight(商標)High Content Screening Platform(1ウェルあたりの最少対象物:細胞250個)で、抗体の細胞への結合について分析する
10.Excel Fit(Fit Model:205、4つのパラメータ全てについてPre−Fitであり、いずれのパラメータにも制約はない。EC50:パラメータC)でデータを分析する
材料:
プレート:蓋付き白色平底384ウェルアッセイプレート;Corning;カタログ番号3570
標的細胞:SKBR−3;ATCC;カタログ番号HTB−30
エフェクター細胞:ADCCバイオアッセイエフェクター細胞;Promega;カタログ番号G7011
基準mAb:トラスツズマブ
ペルツズマブ
MABD B100
MAB−16−0160
MAB−16−0161
MAB−16−0163
MAB−16−0165
ADCCアッセイ緩衝液:RPMI1640培地および低IgG血清;Promega;カタログ番号G7010
FCS:既定HyCloneウシ胎児血清;Thermo Scientific;カタログ番号SH30070.03
標的細胞培地:安定グルタミン、2.2g/l NaHCO3含有McCoy’s;PAN Biotech;カタログ番号P04−06500+10%FCS
ルシフェラーゼアッセイ試薬:BioGlo(商標)ルシフェラーゼアッセイ緩衝液およびBioGlo(商標)ルシフェラーゼアッセイ基質;Promega;カタログ番号G7010
1日目:
1.標的細胞を播種する:標的細胞培地25μL中2500細胞/ウェル
2.37℃、5%CO2で20〜24hインキュベートする。
2日目:
3.製造業者の説明書に従ってルシフェラーゼアッセイ試薬を調製する。
4.製造業者の説明書に従ってADCCアッセイ緩衝液を調製する。
5.アッセイプレートの全てのウェルから培地23μLを除去する。1ウェルあたり8μLの事前に温めたADCCアッセイ緩衝液をプレートに穏やかに添加する。
6.望ましい濃度になるまでADCCアッセイ緩衝液で望ましい一次抗体を希釈し、ウェルに抗体希釈液8μLを添加する。ブランクとしてADCCアッセイ緩衝液を添加する。プレートをベンチで保存する。
7.ウォーターバス37℃でエフェクター細胞を解凍する(13x106細胞/バイアル;反転しない)。
8.ピペッティングにより細胞を穏やかに混合する。細胞懸濁液630μLを事前に温めたADCCアッセイ緩衝液24.57mLに添加する。
9.1ウェルあたり8μLのエフェクター細胞懸濁液をプレートに添加する(4000細胞/ウェル)。
10.プレートを覆い、37℃、5%CO2で6hインキュベートする。
11.インキュベーターからプレートを取り出し、室温に平衡化する(15分)。
12.試験中のウェル全てにルシフェラーゼアッセイ試薬20μLを添加する。
13.室温で5〜30分間インキュベートする。
14.プレートリーダーを使用して発光を測定し、BioGlo(商標)アッセイの製造業者の説明書に従って結果を算出する。
15.Excel Fit(Fit Model:205、4つのパラメータ全てについてPre−Fitであり、いずれのパラメータにも制約はない。EC50:パラメータC)でデータを分析する
材料:
細胞培養プレート:6ウェル細胞培養プレート、Nunclon表面;Nunc;カタログ番号:140685
アッセイプレート:96−DWP DNA LoBindプレート;Eppendorf;カタログ番号:0030602.307
細胞:SKBR−3;ATCC;カタログ番号HTB−30
FCS ウシ胎児血清南アフリカ低IgG(PAN;カタログ番号1552−P120909)
細胞およびアッセイ培地:DMEM;PAN;Cat.−No.:P04−04510+5%FCS
一次Ab:ペルツズマブ
トラスツズマブ
MABD B100
MAB−16−0160
MAB−16−0161
MAB−16−0163
MAB−16−0165
試薬:(A)アネキシンV FITC−コンジュゲート;Immunotools;カタログ番号:31490013X2
(C)カンプトテシン;Sigma−Aldrich;カタログ番号:C9911
(D)DRAQ7(商標);Abcam;カタログ番号:ab109202
結合緩衝液:0.1M HEPES;Gibco;カタログ番号:15630−106+1.4M NaCl;Sigma;カタログ番号:S7653−1kg+25mM CaCl2;Fluka;カタログ番号:21114−1L
1.細胞培養プレート1ウェルあたり2mLの細胞培地中に細胞を播種する(8x104細胞/ウェル)。72h;37℃;5%CO2でインキュベートする。
2.培地を除去する。
3.プレートに、アッセイ培地(対照ウェル)またはアッセイ培地で望ましい濃度になるまで希釈された一次抗体2mLを添加する。
4.48h;37℃;5%CO2でインキュベートする。
5.陽性対照として、1つまたは複数のウェルにカンプトテシン(2mM)5μlを添加する。
6.24h;37℃;5%CO2でインキュベートする。
7.各ウェルの上清を別々の15mlチューブに移行する
8.PBS1.5mlで各ウェルを洗浄し、同一の各15mlチューブに上清を移行する。
9.各ウェルにトリプシン0.5mlを添加し、37℃でインキュベートし、次いで細胞培地1.5mlで停止させ、液体を全て各15mlチューブに移行する。
10.各15mlチューブにPBS5mlを添加する。
11.15mlチューブを300g、3分間、4℃で遠心処理し、上清を捨てる。
12.事前に冷却した結合緩衝液(4℃)140μLを添加し、再懸濁して70μLをアッセイプレートに移行する。
13.事前に冷却したアネキシン(4℃)5μLを添加し、混合して氷上/暗所で20分間インキュベートする。
14.結合緩衝液で1:100に希釈されたDRAQ7(商標)2μLを添加する。
15.事前に冷却した結合緩衝液(4℃)120μLを添加し、混合して氷上/暗所で7分間インキュベートする。フローサイトメトリー分析を実施する。
[図1]配列(1文字コードでのアミノ酸)
可変領域(VR)の全配列:
重鎖:VH全配列:配列番号1〜6および配列番号100〜101
軽鎖:VL全配列:配列番号7〜12および配列番号102〜104
VL配列は90位にシステインからセリンへの突然変異を含んでいてよい。
相補性決定領域(CDR):
重鎖:CDR−H1:配列番号13〜18
CDR−H2:配列番号19〜24
CDR−H3:配列番号25〜30
軽鎖:CDR−L1:配列番号31〜36
CDR−L2:配列番号37〜42
CDR−L3:配列番号43〜48
フレームワーク領域(FR):
重鎖:FR−H1:配列番号49〜54
FR−H2:配列番号55〜60
FR−H3:配列番号61〜66
FR−H4:配列番号67〜72
軽鎖:FR−L1:配列番号73〜78
FR−L2:配列番号79〜84
FR−L3:配列番号85〜90
FR−L4:配列番号91〜96
定常領域(CR):
軽鎖:CR−L:配列番号97
重鎖:CR−H:配列番号98〜99
アッセイ手順の詳細については実施例1で開示されている。FcγRIIIaシグナル伝達の誘導倍率(FoI)に関して候補抗体を選択した。
a)抗体濃度に応じた、トラスツズマブによるFcγRIIIaシグナル伝達のFoI。最大FoIは約26である。
b)選択された候補抗体によるFcγRIIIaシグナル伝達のFoI。最大FoIは75超である。
c)組換えキメラ抗体を産生するため、それぞれのFoIに従って候補抗体を選択した。フォローアップ実験における、キメラ抗体のFcγRIIIaシグナル伝達結果が示される。
選択された本発明による抗体はいずれも、そのエピトープについてトラスツズマブと競合しないが、ハーセプチン(陽性対照)ではPODシグナルが80%超低下する(+++)。陽性対照として、事前インキュベーション混合物中にペルツズマブが存在すると、濃度依存的にPODシグナルが80%超低下する(+++)。B106はペルツズマブとのエピトープ競合を示し、B115はペルツズマブエピトープについて部分的な競合を示す。エピトープ競合は、選択されたその他の本発明による候補抗体ではいずれとも観察されない。
示される結果は、実施例3に記載される実験で得られた。
本発明による好ましい抗体、MABD B100は、トラスツズマブおよびペルツズマブのEC50と同等の5.2ng/mlのEC50を示す。
示される結果は、実施例4に記載される実験のものである。
本発明による好ましい抗体、MABD B100は、トラスツズマブおよびペルツズマブのEC50と同等の78ng/mlのEC50を示す。
示される結果は、実施例5に記載される実験で得られた。
本発明による好ましい抗体、MABD B100は、52ng/mlのEC50で132倍のFcRシグナル伝達刺激を示す。トラスツズマブは、81ng/mlのEC50で同等のシグナル伝達強度を示す。このことは、市販の抗体を上回る効力の改善を強調している。
生化学的ELISA実験で、様々な受容体への抗体結合について試験した。実験は、実施例3で詳述されるプロトコール(プロトコール1)に従って実施した。
a)ホモログHER受容体への結合
試験された抗体は全て、1ng/mL〜2000ng/mLの濃度範囲内でHER2への特異的な結合を示す。HER2 ELISAでのEC50の100倍を超える濃度であっても、HER1、HER3およびHER4への結合シグナルは検出されなかった。
b)HER2オルソログへの結合
本発明による抗体の、ヒトおよびカニクイザルHER2受容体への結合は、同様のEC50値で同等であった。抗体はラットHER2に対しても部分的な反応性を示した(EC50>100ng/mL)が、マウスHER2に対しては反応性を示さなかった。
図8は、実施例7のプロトコールに従って実施された実験の結果を示す。in−vitroでのインキュベーション後のアネキシン染色としてアポトーシス誘導を測定した。陽性対照としてカンプトテシンを使用した(100%に設定)。トラスツズマブ(10%)およびペルツズマブ(12%)とは対照的に、MABD B100は唯一強いアポトーシス誘導を示す(75%)。
実施例3に従って実施された実験の結果が示される。
4種の好ましいヒト化モノクローナル抗体候補は、キメラ形態の好適なin vitro特性を維持している。
実施例4に記載されるプロトコールに従って実験を実施した。
4種のヒト化リードは、キメラ形態のin vitro特性を維持している。
実施例5に記載されるプロトコールに従って実験を実施した。4種のヒト化リードは、キメラ形態のin vitro特性を維持している。
実施例7に記載されるプロトコールに従って実験を実施した。陽性対照としてカンプトテシン(2列目)を使用した(100%に設定)。本発明による好ましいヒト化抗体は、際立って強いアポトーシス誘導を示す(68%〜83%)。
十分に確立されたヒト移植マウスモデル(HTM)(Wegeら2011/2014/2016)で、in vivo実験を実施した。具体的には、SK−BR−3腫瘍細胞株を有するHTMモデルを使用した。このモデルはトラスツズマブ治療に対し抵抗性であり、強い広がりおよび転移を示す。実験は、9週間の免疫系、腫瘍および転移の確立、ならびに12週間の、抗体またはプラセボによる5mg/kg/週、i.p.での治療を含んでいた。
機能するヒト免疫系を有する動物を、治療終了時に分析した。
本発明による好ましい抗体、MABD B100による治療で、対照、トラスツズマブおよびペルツズマブ抗体による治療と比較して腫瘍量の強い減少が生じた。
MABD B100治療による寛解(4/5)または95%超の減少(1/5):対照に対してのp=0.037
トラスツズマブおよびペルツズマブ治療での効果はなし:有意でない
HTM−SK−BR−3モデルにおいて実験を実施し、結果を定性的に評価した
(Y/N):IHC(a)およびフローサイトメトリー(b)による転移
a)組織切片におけるHER2+腫瘍細胞
b)フローサイトメトリーで分析されたHER2+腫瘍細胞
2列目:対照:治療終了時の、機能するヒト免疫系を有する動物
3列目:トラスツズマブによる治療
4列目:MABD B100による治療
5列目:ペルツズマブによる治療
6+7列目:Wegeら2016より含まれる過去データ
HTM−SK−BR−3モデルにおいて実験を実施し、結果を定性的に評価した(Y/N)。骨髄から細胞を単離し、培養した。拡張させた後、FACSにより治療に対する抵抗性について細胞を試験した。
対照:治療終了時の、機能するヒト免疫系を有する動物。
MABD B100は、腫瘍細胞の骨髄への広がりに対する効率的な阻害を示す。
Claims (12)
- HER2に特異的に結合するモノクローナル抗体、またはその断片もしくは誘導体、またはHER2結合特異性を付与するのに十分な前記抗体の少なくとも一部を含むポリペプチドであって、前記抗体、抗体の前記断片もしくは抗体の前記誘導体が、
a)配列番号4の重鎖可変(VH)領域と少なくとも90%同一であり、且つ配列番号16のCDR−H1領域、配列番号22のCDR−H2領域及び配列番号28のCDR−H3領域を含む、VH領域、および
b)配列番号10の軽鎖可変(VL)領域と少なくとも90%同一であり、且つ配列番号34のCDR−L1領域、配列番号40のCDR−L2領域及び配列番号46のCDR−L3領域を含む、VL領域
を含む、抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。 - 抗体または断片もしくは誘導体が、ヒトFc受容体にも結合してFcR媒介性シグナル伝達経路を誘導する、請求項1に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体または断片もしくは誘導体が、FcγRIIIaアッセイにおいて、Fc受容体シグナル伝達活性を少なくとも10倍増大させる、請求項1または2に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体または断片もしくは誘導体が、トラスツズマブとは異なるエピトープに結合する、請求項1から3のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体または断片もしくは誘導体が、エピトープ競合アッセイにおいてトラスツズマブと競合しない、請求項1から4のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体または断片もしくは誘導体が、エピトープ競合アッセイにおいてペルツズマブと競合しない、請求項1から5のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体または断片もしくは誘導体が、アポトーシスを誘導することができる、請求項1から6のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体がヒト化抗体である、請求項1から7のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 抗体または断片もしくは誘導体が、腫瘍量、腫瘍の広がりおよび転移を減少させることができる、請求項1から8のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- HER−2媒介性疾患の治療に使用するための、請求項1から9のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチド。
- 薬学的に許容される担体、および治療有効量の請求項1から10のいずれか一項に記載の抗体、断片もしくは誘導体、またはポリペプチドを含む医薬組成物。
- HER−2媒介性疾患の治療に使用するための、請求項11に記載の医薬組成物。
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