JP6802964B2 - 核酸鎖の四重螺旋構造の形成を可能にするデオキシヌクレオシド誘導体 - Google Patents

Description

本発明は、核酸鎖の四重螺旋構造を安定に形成できるデオキシヌクレオシド誘導体に関する。更に、本発明は、当該デオキシヌクレオシド誘導体を含むポリヌクレオチド、及び当該ポリヌクレオチドを利用して標的核酸と四重螺旋構造を形成する方法に関する。

ＲＮＡやＤＮＡ等の核酸鎖において、グアニンに富む塩基配列部分がグアニン四量体（Ｇ-ｑｕａｒｔｅｔ）を形成して四重螺旋構造を形成することが知られている。四重螺旋構造を形成できる塩基配列は、ＤＮＡでは３０万種類以上、ＲＮＡでは３千種類以上存在すると考えられており（非特許文献１参照）、特に、ガン関連遺伝子（例えば、Ｃ−ＭＹＣ、ＮＲＡＳ、ＢＣＬ２等）、細胞分化関連遺伝子（例えば、ＨＣＫ等）、血管新生関連遺伝子（例えば、ＶＥＧＦ等）、翻訳因子（例えば、ＦＯＳ等）のｍＲＮＡには、四重螺旋構造を形成できる配列が局在化していることも知られている。

核酸鎖の四重螺旋構造は、転写、逆転写、複製、翻訳、テロメア伸長反応等を抑制し、様々な遺伝子の発現や機能を制御することが知られている。そのため、ガン関連遺伝子等の疾患遺伝子において四重螺旋構造を安定に形成すると、当該遺伝子の発現を抑制できるため、当該遺伝子における四重螺旋構造の形成及び安定化は、疾患の予防及び治療にも有効になると考えられている。更に、ＨＩＶウイルス等の病原ウイルスの核酸鎖に四重螺旋構造を安定に形成すると、当該病原ウイルスの逆転写や複製を抑制し、当該病原ウイルスの感染予防にも有効であると考えられている。

従来、核酸鎖の四重螺旋構造を安定化させる手法として、四重螺旋構造に結合する低分子化合物を使用する方法が知られている（非特許文献２）。しかしながら、非特許文献２に開示されている低分子化合物では、四重螺旋構造のみならず、二重螺旋構造にも結合するという欠点がある。細胞内での多くの核酸は二重螺旋構造を形成するため、四重螺旋構に対して選択的に安定化できなければ、正常な生体機能に悪影響を及ぼすことが懸念される。

また、四重螺旋構造をとり得る塩基配列が種々報告されているが、非特許文献２に開示されている低分子化合物では、塩基配列の選択性が無いため、配列特異的に四重螺旋構造を安定化させることができないという欠点もある。

このように、従来技術では、核酸鎖の四重螺旋構造を安定化させる技術については知られているものの、二重螺旋構造に対しては安定化させずに、しかも配列特異的に四重螺旋構造を安定化させる技術は開発されていないのが現状である。

Nucleic acids Res., 2005; 24(9):2908 Curr. Opin. Struct. Biol., 2009, 19: 239

本発明の目的は、二重螺旋構造に対しては安定化させずに、四重螺旋構造を選択的に安定化させる技術を提供することである。更に、本発明の他の目的は、標的核酸鎖に対して配列特異的に四重螺旋構造を安定化させる技術を提供することである。

本発明者等は、前記課題を解決すべく鋭意検討を行ったところ、チミジンのピリジン環の５位の炭素に結合しているメチル基を、アルキレンオキサイドを含む基に置換したデオキシヌクレオシドは、二重螺旋構造を形成させても安定化せずに、四重螺旋構造を形成させると安定化できることを見出した。更に、当該ヌクレオシドを含むポリヌクレオチドにおいて、標的核酸鎖に対してハイブリダイズできる塩基配列を付加することによって、当該標的核酸鎖に対して特異的に四重螺旋構造を形成させ得ることをも見出した。本発明は、これらの知見に基づいて更に検討を重ねることにより完成したものである。

即ち、本発明は、下記に掲げる態様の発明を提供する。
項１． 下記一般式（１）で表されるアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
［一般式（１）中、Ｒ¹は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。
Ｒ²は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。
ＡＯはアルキレンオキサイドを示す。
ｍは１〜８の整数を示す。
ｎは１〜１０の整数を示す。
Ｌ¹は、ピリジン環の５位の炭素とＬ²とを連結するリンカー基を示す。
Ｌ²は、ｎが１の場合には単結合、ｎが２〜１０の場合にはＬ¹に対して１価の結合と基−（ＡＯ）_n−Ｒ²に対してｎ価の結合を持つ分岐リンカー基を示す。］
項２． 一般式（１）中、ＡＯがエチレンオキサイドである、項１に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
項３． 一般式（１）中、ｎが１である、項１又は２に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
項４． 一般式（１）中、ｎが２〜１０であり、
Ｌ²が、下記一般式（２）に示すリンカー基である項１又は２に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
［一般式（２）中、Ｌ²¹はＬ¹と結合するリンカー基であり、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれｐ個及びｑ個の基−（ＡＯ）_m−Ｒ²と結合するリンカー基である。
ｐ及びｑは０〜１０の整数であり、且つｐ＋ｑ＝ｎの関係を満たす。］
項５． 一般式（１）中、ｎが２であり、
Ｌ²が、下記一般式（２１）に示すリンカー基である項１、２又は４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
項６． 項１〜５に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドが他のデオキシヌクレオシドとリン酸ジエステル結合によって連結しているポリヌクレオチド。
項７． 下記塩基配列(i)を含む、項６に記載のポリヌクレオチド。
［塩基配列(i)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
Ａ₁、Ａ₂、Ａ₃、及びＡ₄は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(i)の５’末端側又は３’末端側に項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
項８． 下記塩基配列(ii)〜(iv)のいずれかを含み、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなる塩基配列を含む標的核酸鎖と四重螺旋構造を形成する、項６に記載のポリヌクレオチド。
［塩基配列(ii)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
Ｂ₁、及びＢ₂は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
Ｂ₁、及びＢ₂のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(ii)の５’末端側又は３’末端側に項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
［塩基配列(iii)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(iii)の５’末端側又は３’末端側に項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
［塩基配列(iv)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(iv)の５’末端側又は３’末端側に項１〜４に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
項９． 前記配列(ii)〜(iv)の５’末端側又は３’末端側に、標的核酸鎖の一部の塩基配列に対する相補的な塩基配列が付加されている、項８に記載のポリヌクレオチド。
項１０． 前記相補的な塩基配列が、
前記標的核酸鎖中の前記ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなる塩基配列の５’末端から５’末端側に数えて１〜５５番目までの塩基の領域内の塩基配列、或いは
前記標的核酸鎖中の前記ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなる塩基配列の３’末端から３’末端側に数えて１〜５５番目までの塩基の領域内の塩基配列
に対して相補的な塩基配列である、項９に記載のポリヌクレオチド。
項１１． 前記標的核酸鎖がＤＮＡ鎖又はＲＮＡ鎖である、項８〜１０のいずれかに記載のポリヌクレオチド。
項１２． ＧＧ又はＧＧＧからなる塩基配列を含む標的核酸鎖と、項８〜１１のいずれかに記載のポリヌクレオチドとを共存させる工程を含む、核酸鎖の四重螺旋構造の形成方法。

本発明のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを利用することによって、核酸鎖の四重螺旋構造を安定化させることができる。また、本発明の一態様では、標的核酸鎖に対して配列特異的に四重螺旋構造を安定化させることもできる。従って、本発明によれば、標的核酸に対して、特異的に安定な四重螺旋構造を形成させ、その転写、逆転写、複製、翻訳、テロメア伸長反応等を抑制し、当該標的核酸の機能性を制御することが可能になる。

更に、本発明のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを含むポリヌクレオチドでは、ヌクレアーゼに耐性も高く、優れた安定性も備えている。

実施例の欄で合成したポリヌクレオチド（Ｑ１、Ｑ１−Ｘ、Ｑ１−Ｙ、Ｑ１−Ｚ、及びＱ１−Ｘ２）がとり得る四重螺旋構造の概略図である。 実施例の欄で合成したポリヌクレオチド（Ｄ１及びＤ１−Ｘ）がとり得る二重螺旋構造の概略図である。 エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを導入したポリヌクレオチドの安定性を評価した結果を示す図である。 エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを導入したポリヌクレオチドを利用してHIV-1由来のRNAの逆転写反応の抑制効果を評価した結果を示す図である。 エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを導入したポリヌクレオチドのヌクレアーゼ耐性を評価した結果を示す図である。

１．アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド
本発明のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドは、下記一般式（１）で表される化合物である。

一般式（１）において、Ｒ¹は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。本発明のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドをポリヌクレオチドの合成原料として使用する際には、一般式（１）におけるＲ¹は保護基であればよく、ポリヌクレオチドの合成中又は後には、当該保護基が外されてＲ²はリン酸ジエステル結合を形成し、ポリヌクレオチドの５’末端部分ではＲ²は水素原子であればよい。

水酸基の保護基としては、酸性又は中性条件で安定であり、加水素分解、加水分解、電気分解、光分解等によって開裂し得る基であればよく、例えば、脂肪族アシル基、芳香族アシル基、置換されていてもよいアリール基が１〜３個置換されているメチル基、シリル基等が挙げられる。

前記脂肪族アシル基としては、例えば、炭素数２〜２０の脂肪族アシル基が挙げられ、より具体的には、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、イソブチリル基、ペンタノイル基、ピバロイル基、バレリル基、イソバレリル基、オクタノイル基、ノナノイル基、デカノイル基、３−メチルノナノイル基、８−メチルノナノイル基、３−エチルオクタノイル基、３，７−ジメチルオクタノイル基、ウンデカノイル基、ドデカノイル基、トリデカノイル基、テトラデカノイル基、ペンタデカノイル基、ヘキサデカノイル基、１−メチルペンタデカノイル基、１４−メチルペンタデカノイル基、１３，１３−ジメチルテトラデカノイル基、ヘプタデカノイル基、１５−メチルヘキサデカノイル基、オクタデカノイル基、１−メチルヘプタデカノイル基、ノナデカノイル基、アイコサノイル基、ヘナイコサノイル基等が挙げられる。

前記芳香族アシル基としては、例えば、ベンゾイル基、α−ナフトイル基、β−ナフトイル基等のアリールカルボニル基等が挙げられる。

前記置換されていてもよいアリール基が１〜３個置換されているメチル基におけるアリール基としては、例えば、フェニル基、ナフチル基、インデニル基、アズレニル基等が挙げられる。また、前記アリール基に必要に応じて置換している置換基としては、具体的には、炭素数１〜７の低級アルキル基、炭素数１〜７の低級アルコキシル基、ハロゲン原子、シアノ基等が挙げられる。前記アリール基に置換基が置換している場合、その置換基の数については、特に制限されないが、例えば、アリール基１個当たり、置換基が１〜３個置換されているものが挙げられる。前記置換されていてもよいアリール基が１〜３個置換されているメチル基として、より具体的には、トリチル基、ジメトキシトリチル基、モノメトキシトリチル基等が挙げられる。

前記シリル基としては、例えば、トリメチルシリル基、トリエチルシリル基、イソプロピルジメチルシリル基、ｔ−ブチルジメチルシリル基、メチルジイソプロピルシリル基、メチルジ−ｔ−ブチルシリル基、トリイソプロピルシリル基等のトリ低級アルキルシリル基；ジフェニルメチルシリル基、ジフェニルブチルシリル基、ジフェニルイソプロピルシリル基、フェニルジイソプロピルシリル基等の１又は２個のアリール基で置換されたトリ低級アルキルシリル基等が挙げられる。

前記保護基の好適な例として、アセチル基、ベンゾイル基、ベンジル基、ｐ−メトキシベンゾイル基、ジメトキシトリチル基、モノメトキシトリチル基、トリイソプロピルシリル基、ジフェニルブチルシリル基が挙げられる。

一般式（１）において、Ｒ₂は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。本発明のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドをポリヌクレオチドの合成原料として使用する際には、一般式（１）におけるＲ²は保護基であればよく、ポリヌクレオチドの合成後には当該保護基が外されてＲ²は水素原子であればよい。

Ｒ₂における水酸基の保護基は、酸性又は中性条件で安定であり、加水素分解、加水分解、電気分解、光分解等によって開裂し得る基であればよく、具体的には、Ｒ₁で例示した保護基が挙げられる。但し、Ｒ₁及びＲ₂が保護基である場合には、Ｒ₁及びＲ₂は、相互に異なる種類の保護基であることが望ましい。

一般式（１）において、ｎは１〜１０の整数を示す。より一層効果的に四重螺旋構造を安定化させるという観点から、ｎとして、好ましくは１〜５の整数、更に好ましくは１又は２が挙げられる。

一般式（１）において、ｍは、アルキレンオキサイドの付加モル数であり、１〜８の整数を示す。より一層効果的に四重螺旋構造を安定化させるという観点から、ｍとして、好ましくは１〜５の整数、更に好ましくは１〜４の整数が挙げられる。

一般式（１）において、ＡＯはアルキレンオキサイドを示し、具体的には、エチレンオキサイド（−ＣＨ₂−ＣＨ₂−Ｏ−）、プロピレンオキサイド（−ＣＨ₂−ＣＨ₂−ＣＨ₂−Ｏ−）、ブチレンオキサイド（−ＣＨ₂−ＣＨ₂−ＣＨ₂−ＣＨ₂−Ｏ−）等の炭素数１〜３のアルキレンオキサイドが挙げられる。また、アルキレンオキサイドにおけるアルキレン基は、直鎖状又は分岐状のいずれであってもよい。これらのアルキレンオキサイドの中でも、より一層効果的に四重螺旋構造を安定化させるという観点から、好ましくはエチレンオキサイドが挙げられる。

一般式（１）において、Ｌ¹は、ピリジン環の５位の炭素とＬ₂とを連結するリンカー基である。Ｌ¹としては、具体的には、−Ｏ−；−Ｓ−；−（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨＣＯ−；−ＮＨ（ＣＯ）Ｏ−；−Ｏ（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨ−；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数１〜７（好ましくは炭素数１〜５）のアルキレン基；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７（好ましくは炭素数２〜５）のアルキレン基；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７（好ましくは炭素数２〜５）のアルキニレン基が挙げられる。これらのＬ¹の中でも、合成の簡便性等の観点から、好ましくはエーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７のアルキニレン基、更に好ましくはエーテル結合を含む炭素数２〜５のアルキニレン基、特に好ましくはＬ²と結合する側の末端に−Ｏ−を含む炭素数２〜５のアルキニレン基が挙げられる。

一般式（１）において、Ｌ²は、ｎが１の場合には単結合、ｎが２〜１０の場合にはＬ¹に対して１価の結合と基−（ＡＯ）_m−Ｒ²に対してｎ価の結合を持つ分岐リンカー基である。

ｎが２〜１０の場合、Ｌ²としては、具体的には、下記一般式（２）に示すリンカー基が挙げられる。

一般式（２）において、Ｌ²¹はＬ¹と結合するリンカー基であり、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれｐ個及びｑ個の基−（ＡＯ）_m−Ｒ²と結合するリンカー基である。ここで、ｐ及びｑは０〜１０の整数であり、且つｐ＋ｑ＝ｎの関係を満たす。

一般式（２）において、Ｌ²¹、Ｌ²²及びＬ²³として、例えば、−Ｏ−；−Ｓ−；−（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨＣＯ−；−ＮＨ（ＣＯ）Ｏ−；−Ｏ（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨ−；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数１〜７（好ましくは炭素数１〜５）のアルキレン基；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７（好ましくは炭素数２〜５）のアルキレン基；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７（好ましくは炭素数２〜５）のアルキニレン基が挙げられる。Ｌ²¹、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれ同一であってもよく、また異なっていてもよい。

一般式（１）においてｎが２である場合に、一般式（２）に示すリンカー基の好適な一例として、Ｌ²¹が−Ｏ−ＣＨ₂−であり、且つＬ²²及びＬ²³がメチレン基である下記一般式（２１）に示すリンカー基が挙げられる。

一般式（１）で表される化合物は、デオキシチミンにおけるピリジン環の５位のメチル基を、−Ｌ¹−Ｌ²［−（ＡＯ）_m−Ｒ²］_nで置換することによって合成することができる。具体的には、デオキシチミンにおけるピリジン環の５位のメチル基を、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子等のハロゲン原子に置換し、カップリング反応を利用して−Ｌ₁−Ｌ₂［−（ＡＯ）_m−Ｒ₂］_nを導入すればよい。デオキシチミンにおけるピリジン環の５位のメチル基をハロゲン原子に置換する方法は、Khan, S. I.; Grinstaff, M. W. J. Am. Chem. Soc. 1999, 121, 4704-4705等で公知である。また、Ｌ¹、Ｌ²、及び基−（ＡＯ）_m−Ｒ₂の各結合反応も、基Ｌ¹及び基Ｌ²の種類に応じて公知のカップリング反応を利用して行うこともできる。

また、一般式（１）で表される化合物において、デオキシリボースの４位の水酸基をリン酸化することによって、ヌクレオチド誘導体に変換することもできる。

２．ポリヌクレオチド
本発明は、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを含むポリヌクレオチドを提供する。本発明のポリヌクレオチドは、少なくとも１つの前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを、他のデオキシヌクレオシドとリン酸ジエステル結合によって連結して得られるポリヌクレオチドである。本発明のポリヌクレオチドは、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドが導入されていることによって、安定な四重螺旋構造を形成することが可能になっている。

通常、１本鎖の核酸鎖による四重螺旋構造は、図１に示すように、グアニンが２〜４個連続する塩基からなり、グアニン四量体（Ｇ-ｑｕａｒｔｅｔ）を形成する塩基配列（Ｇカルテット形成配列）４つと、２又は３個の塩基からなり、Ｇカルテット形成配列を連結してループを形成する塩基配列（ループ配列）３つによって形成される。

本発明のポリヌクレオチドは、単独で四重螺旋構造を形成させるように構成（以下、「第１実施態様のポリヌクレオチド」）することもでき、また標的核酸鎖と共に四重螺旋構造を形成するように構成（以下、「第２実施態様のポリヌクレオチド」）することもできる。

第１実施態様のポリヌクレオチドの場合には、本発明のポリヌクレオチドは、下記の塩基配列(i)を含んでいればよい。

第２実施態様のポリヌクレオチドの場合には、本発明のポリヌクレオチドは、Ｇカルテット形成配列を有する標的核酸鎖と共に、当該標的核酸鎖のＧカルテット形成配列を利用して四重螺旋構造を形成する。即ち、第２実施態様のポリヌクレオチド中の３つのＧカルテット形成配列と、標的核酸鎖中の１つのＧカルテット形成配列によって、四重螺旋構造が形成される。第２実施態様のポリヌクレオチドの場合には、本発明のポリヌクレオチドは、下記の塩基配列(ii)〜(iv)のいずれかを含んでいればよい。

前記塩基配列(i)〜(iv)において、Ｇカルテット形成配列を示すＡ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、２〜４個のグアニンが連続して存在する塩基配列を示す。Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれグアニンの塩基数が同一であっても、異なっていてもよい。

また、前記塩基配列(i)〜(iv)において、ループ配列を示すＢ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、２つのＧカルテット形成配列間でループを形成する配列であり、１〜５個、好ましくは１〜４個、更に好ましくは１〜３個の塩基によって構成される配列である。ループ配列の塩基配列としては、Ｇカルテット形成配列間をループ（ヘアピン）を形成できることを限度として、特に制限されないが、安定なループを形成するという観点から、チミンを含む塩基で形成されていることが好ましく、より具体的には、ＴＴＴ、ＴＴＮ、ＮＴＴ、ＴＮＴ、ＡＮ、ＴＮ、及び／又はＮからなるループ配列が挙げられる。ここで、Ｎは、Ａ、Ｃ、Ｇ又はＴを示す。

本発明のポリペプチドにおいて、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの導入部位については、四重螺旋構造を安定化できることを限度として特に制限されず、例えば、前記塩基配列(i)〜(iv)におけるループ配列中、前記塩基配列(i)〜(iv)における５’末端側、及び前記塩基配列(i)〜(iv)における３’末端側のいずれであってもよい。

前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを前記塩基配列(i)〜(iv)における５’末端側に導入する場合、前記配列(i)〜(iv)の５’末端から５’末端側に１〜３番目に存在する塩基を担うヌクレオシドの少なくとも１つが前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドであればよい。

また、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを前記配列(i)〜(iv)における３’末端側に導入する場合、前記配列(i)〜(iv)の３’末端から３’末端側に１〜３番目に存在する塩基を担うヌクレオシドの少なくとも１つが前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドであればよい。

四重螺旋構造を効果的に安定化させるという観点から、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドは、前記塩基配列(i)〜(iv)におけるループ配列中に含まれていることが望ましい。より具体的には、ループ配列として、ＴＴＴ、ＴＴＮ、ＮＴＴ、ＴＮＴ、ＡＮ、ＴＮ、及び／又はＮからなる塩基配列（Ｎは前記と同様）を使用する場合であれば、これらの塩基配列中の塩基を担うヌクレオシドの少なくとも１つが、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドに置換されていることが望ましい。とりわに、少なくとも１つのループ配列として、ＴＴＴ、ＴＴＮ、ＮＴＴ、ＴＮＴ、はＴＮ、ＡＴ、及び／又はＴからなる塩基配列（Ｎは前記と同様）を使用し、且つこれらの塩基配列中のＴを担うヌクレオシドの少なくとも１つが、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドに置換されていることが特に望ましい。

また、本発明のポリペプチドに含まれる前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの数については、特に制限されないが、例えば１〜７個、好ましくは１又は２個、更に好ましくは１個が挙げられる。

また、第２実施態様のポリヌクレオチドの場合、標的核酸鎖に対して特異的に四重螺旋構造を形成できるように、標的核酸鎖に対してハイブリダイズできる塩基配列を有していることが好ましい。このような態様のポリヌクレオチドの塩基配列として、具体的には、前記配列(ii)〜(iv)の５’末端側又は３’末端側に、標的核酸鎖に対する相補的な塩基配列が付加されている塩基配列が挙げられる。

また、標的核酸鎖に対する相補的な塩基配列は、標的核酸鎖中のＧカルテット形成配列部分２〜４個のグアニンが連続して存在する塩基配列部分）の５’末端から５’末端側に数えて、１〜５５番目の塩基の領域内、好ましくは１〜３３番目の塩基の領域内の塩基配列にハイブリダイズできるもの；或いは標的核酸鎖中のＧカルテット形成配列部分（２又は３個のグアニンが連続して存在する塩基配列部分）の３’末端から３’末端側に数えて、１〜５５番目の塩基の領域内、好ましくは１〜３３番目の塩基の領域内の塩基配列にハイブリダイズできるものであればよい。

また、標的核酸鎖に対する相補的な塩基配列の塩基数については、標的核酸鎖にハイブリダイズして結合できることを限度として特に制限されないが、例えば、８〜３５個、好ましくは１５〜２３個が挙げられる。

第２実施態様のポリヌクレオチドが、標的核酸鎖中のＧカルテット形成配列部分の５’末端側の領域内の塩基配列に対してハイブリダイズする場合、第２実施態様のポリヌクレオチドにおける標的核酸鎖に対する相補的な塩基配列は、前記配列(ii)〜(iv)の３’末端側に、前記相補的な塩基配列が付加されていればよい。また、第２実施態様のポリヌクレオチドが、標的核酸鎖中のＧカルテット形成配列部分の３’末端側の領域内の塩基配列に対してハイブリダイズする場合、第２実施態様のポリヌクレオチドにおける標的核酸鎖に対する相補的な塩基配列は、前記配列(ii)〜(iv)の５’末端側に、前記相補的な塩基配列が付加されていればよい。

第２実施態様のポリヌクレオチドにおいて、標的核酸鎖に対して相補的な塩基配列は、前記配列(ii)〜(iv)の５’末端側又は３’末端側に直接連結してもよいが、１〜２０個、好ましくは１〜１０個のリンカー配列を介して結合していてもよい。当該リンカー配列の塩基数は、標的核酸鎖における、Ｇカルテット形成配列部分と第２実施態様のポリヌクレオチドがハイブリダイズする塩基配列部分との間の領域の塩基数と同程度（例えば、±１０）個、好ましくは±３個）であることが望ましい。また、当該リンカー配列は、任意の塩基配列で形成することができる。

また、前記標的核酸鎖は、ＲＮＡ、ＤＮＡのいずれであってもよい。標的核酸鎖がＲＮＡの場合、本発明のポリヌクレオチドによって四重螺旋構造を形成することにより、当該ＲＮＡの逆転写又は翻訳を抑制することが可能になる。また、標的核酸鎖がＤＮＡの場合、本発明のポリヌクレオチドによって四重螺旋構造を形成することにより、当該ＤＮＡの転写、複製、又はテロメア伸長反応を抑制することが可能になる。

前記標的核酸の種類については、機能発現の抑制が求められるものであればよいが、例えば、Ｃ−ＭＹＣ、ＮＲＡＳ、ＢＣＬ２等の癌関連遺伝子、これらのｍＲＮＡ等の癌関連核酸；ＨＩＶウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス等の病原性ＲＮＡウイルス由来のＲＮＡ；等が挙げられる。

本発明のポリヌクレオチドにおける総塩基数については、前述する塩基配列を備えることを限度として特に制限されないが、例えば、第１実施態様のポリヌクレオチドの場合であれば、例えば１２〜３２個、好ましくは１５〜２２個；第２実施態様のポリヌクレオチドの場合であれば、例えば１７〜７５個、好ましくは３１〜５５個が挙げられる。

第２実施態様のポリヌクレオチドは、疾患の発症や進行と関連性がある遺伝子を標的核酸鎖とする場合には、疾患の予防又は治療の目的で使用することができる。また、第２実施態様のポリヌクレオチドは、病原性ウイルスに内在する核酸鎖を標的核酸鎖とする場合には、当該病原性ウイルスによる感染症の予防又は治療の目的で使用することができる。また、本発明のポリヌクレオチドは、機能性の解明が求められる核酸を標的核酸鎖とすることにより、当該標的核酸の転写、逆転写、複製、翻訳、テロメア伸長反応等を抑制し、当該標的核酸が担っている機能の解明を行うこともできる。

第２実施態様のポリヌクレオチドを標的核酸鎖と四重螺旋構造を形成させるには、第２実施態様のポリヌクレオチドと標的核酸とをハイブリダイズ可能な条件下で共存させさればよい。例えば、疾患の治療又は用途で使用する場合であれば、本発明のポリヌクレオチドを、必要に応じて遺伝子導入剤と共に、患者に投与すればよい。また、in vitroにおいて、細胞内に存在する標的核酸と四重螺旋構造を形成させる場合であれば、第２実施態様のポリヌクレオチドを、必要に応じて遺伝子導入剤を用いて、細胞内に導入すればよい。

本発明のポリヌクレオチドは、公知の核酸合成方法に従って製造することができる。具体的には、本発明のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドと他のヌクレオシドを用いて、ホスホアミダイト法、固相法等によって製造することができる。

以下、本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の例に限定されるものではない。

１．エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの合成
１−１．直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの合成
（１−１−１）化合物１の合成
Khan, S. I.; Grinstaff, M. W. J. Am. Chem. Soc. 1999, 121, 4704-4705に記載の方法に従って、下記構造の化合物１を合成した。

（１−１−２）3,3-ジイプロピル-2-メチル-4,7,10,13,16-ペンタオキサ-3-シラノナデカ-18-インの合成
アルゴン雰囲気下、テトラエチレングリコール（10.37 g, 53.38 mmol）とイミダゾール（1.386 g, 20.36 mmol）の脱水テトラヒドロフラン溶液に対し、クロロイソプロピルシラン（1.842 g, 9.554 mmol）の脱水テトラヒドロフラン溶液を0℃で１５分かけて滴下した。得られた混合物を0℃で３０分撹拌後、25℃で１２時間撹拌し、そこに飽和食塩水（50 mL）を加えた。得られた混合物に対し、酢酸エチルを用いて３回抽出した（各100 mL）。酢酸エチル抽出液に対し無水硫酸ナトリウム（10 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて30 °Cで減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝25/75から50/50へ段階的に変化させた）によって3,3-ジイプロピル-2-メチル-4,7,10,13-テトラオキサ-3-シラペンタデカン-15-オールを無色油状物として得た（2.595 g, 7.414 mmol, 収率78%）。

アルゴン雰囲気下、水素化ナトリウム（91 mg, 3.8 mmol）の脱水テトラヒドロフラン懸濁液に対し、3,3-ジイプロピル-2-メチル-4,7,10,13-テトラオキサ-3-シラペンタデカン-15-オール（1.106 g, 3.154 mmol）の脱水テトラヒドロフラン溶液（10 mL）を0 °Cで１０分かけて滴下した。さらに３０分間0 °Cで撹拌後、プロパルギルブロミド（471 mg, 3.96 mmol）を0 °Cで加え、25 °Cで１２時間撹拌した。反応混合物を0 °Cに冷やし、水（100 mL）をそこに加え、塩化メチレンを用いて３回抽出した（各100 mL）。塩化メチレン抽出液を飽和食塩水（50 mL）で洗浄後、無水硫酸ナトリウム（10 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて30 °Cで減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝30/70から75/25へ段階的に変化させた）によって3,3-ジイプロピル-2-メチル-4,7,10,13,16-ペンタオキサ-3-シラノナデカ-18-インを無色油状物として得た（1.05 g, 2.70 mmol, 収率86%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 4.23 (d, J = 2.4 Hz, 2H), 3.86 (t, J = 5.6 Hz, 2H), 3.73-3.65 (m, 12H), 3.61 (t, J = 5.6 Hz, 2H), 2.44 (t, J = 2.4 Hz, 1H), 1.10 (sept, J = 4.4 Hz, 3H), 1.08 (d, J = 4.4 Hz, 18H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 79.80, 74.60, 72.88, 70.94, 70.82, 70.77, 70.73, 70.55, 69.26, 18.10, 12.10 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₂₀H₄₀KO₅Siの計算値: 427.2282 [M + K]⁺; 観測値: 427.2316.

（１−１−３）化合物２（直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数４））の合成
アルゴン雰囲気下、化合物１（2.512 g, 3.827 mmol）、ヨウ化銅(I)（146 mg, 0.767 mmol）、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)（442 mg, 0.382 mmol）を脱水N,N-ジメチルホルムアミド（35 mL）、N,N-ジイソプロピルエチルアミン（1.1 mL, 7.89 mmol）の混合溶液に分散させた混合物に対し、3,3-ジイプロピル-2-メチル-4,7,10,13,16-ペンタオキサ-3-シラノナデカ-18-イン（4.458 g, 11.48 mmol）の脱水N,N-ジメチルホルムアミド（30 mL）溶液を25℃で１５分かけて滴下した。得られた混合物を50℃で１２時間撹拌し、さらに70℃で３時間撹拌した。その後0℃に冷やし、水（2 mL）と飽和食塩水（100 mL）を加えた。得られた混合物に対し、酢酸エチルを用いて4回抽出した（各300 mL）。酢酸エチル抽出液に対し無水硫酸ナトリウム（10 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて50℃で減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝25/75から100/0へ段階的に変化させた）によって下記構造の化合物２（直鎖型ポリエチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド）を黄色油状物として得た（3.321 g, 3.626 mmol, 収率95%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 22 °C): δ 8.4 (broad s, 1H), 8.03 (s, 1H), 7.43 (d, J = 8.8 Hz, 2H), 7.34-7.22 (m, 7H), 6.84 (d, J = 8.8 Hz, 4H), 6.28 (dd, J = 7.6 and 6.0 Hz, 1H), 4.51 (secs, J = 3.2 Hz, 1H), 4.11 (d, J = 4.0 Hz, 2H), 4.06 (quart, J = 3.2 Hz, 1H), 3.83 (t, J = 5.6 Hz, 2H), 3.79 (s, 6H), 3.67-3.56 (m, 12H), 3.47 (t, J = 5.6 Hz, 2H), 3.45 (dd, J = 10.8 and 3.2 Hz, 1H), 3.40 (dd, J = 10.8 and 3.2 Hz, 1H), 2.49 (ddd, J = 13.6, 6.0 and 3.2 Hz, 1H), 2.27 (ddd, J = 13.6, 7.6 and 6.0, 1H), 1.10-1.08 (m, 21H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 161.39, 158.72, 149.25, 144.58, 142.89, 135.56, 130.05, 128.58, 128.13, 127.97, 127.07, 113.42, 99.84, 90.10, 87.08, 86.53, 85.84, 72.80, 72.28, 70.85, 70.70, 70.56, 70.33, 69.05, 63.57, 63.02, 58.85, 55.32, 41.55, 18.05, 12.03 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₅₀H₆₈N₂NaO₁₂Siの計算値: 939.4439 [M + Na]⁺; 観測値: 939.4435.

前記化合物２は、一般式（１）において、Ｒ¹が保護基、Ｒ²が保護基、ｍが４、ｎが１、Ｌ¹が−Ｃ≡Ｃ−ＣＨ₂−Ｏ−であり、Ｌ²が単結合である化合物に該当する。

（１−１−４）直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１）の合成
テトラエチレングリコールに代えてエチレングリコールを使用すること以外は、前記と同条件で合成を行い、直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１）を得た。

得られた直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１）は、一般式（１）において、Ｒ¹が保護基、Ｒ²が保護基、ｍが１、ｎが１、Ｌ¹が−Ｃ≡Ｃ−ＣＨ₂−Ｏ−であり、Ｌ²が単結合である化合物に該当する。

（１−１−５）直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）の合成
テトラエチレングリコールに代えてオクタエチレングリコールを使用すること以外は、前記と同条件で合成を行い、直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）を得た。

得られた直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）は、一般式（１）において、Ｒ¹が保護基、Ｒ²が保護基、ｍが８、ｎが１、Ｌ¹が−Ｃ≡Ｃ−ＣＨ₂−Ｏ−であり、Ｌ²が単結合である化合物に該当する。

１−２．分岐型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの合成
（１−２−１）3,3-ジイソプロピル-2-メチル-4,7,10,13-テトラオキサ-3-シラペンタデカン-15-イル 4-メチルベンゼンスルホネートの合成
3,3-ジイソプロピル-2-メチル-4,7,10,13-テトラオキサ-3-シラペンタデカン-15-イル 4-メチルベンゼンスルホネートを、Kawasaki, S.; Muraoka, T.; Obara, H.; Ishii, T.; Hamada, T.; Kinbara, K. Chem. Asian J. 2014, 9, 2778-2788に記載の方法に従って合成した。

（１−２−２）化合物４の合成
アルゴン雰囲気下、2-ヒドロキシメチル-1,3-プロパンジオール（0.9522 g, 8.97 mmol）の脱水ピリジン溶液（10 mL）に対し、トリチルクロリド（1.231 g, 4.41 mmol）を25 ℃で加えた。得られた混合物を25 ℃で１２時間撹拌し、そこに水（100 mL）を加えた。得られた混合物に対し、酢酸エチルを用いて３回抽出した（各100 mL）。酢酸エチル抽出液を飽和食塩水（80 mL）で１回洗浄した後、無水硫酸ナトリウム（10 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて30 ℃で減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝20/80から60/40へ段階的に変化させた）によって、下記構造の化合物４を白色固体として得た（1.785 g, 3.382 mmol, 収率77%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 7.46-7.41 (m, 6H), 7.31-7.22 (m, 9H), 3.81 (t, J = 5.6 Hz, 4H), 3.28 (d, J = 5.6 Hz, 2H), 2.05 (s, 2H), 2.03 (sept, J = 2.8 Hz, 1H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 23 °C): δ 143.79, 128.61, 127.94, 127.15, 86.99, 63.61, 63.04, 43.22 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₂₃H₂₄NaO₃の計算値: 371.1623 [M + Na]⁺; 観測値: 371.1661.

（１−２−３）化合物５の合成
アルゴン雰囲気下、水素化ナトリウム（411 mg, 17.12 mmol）の脱水テトラヒドロフラン懸濁液（10 mL）に対し、3,3-ジイソプロピル-2-メチル-4,7,10,13-テトラオキサ-3-シラペンタデカン-15-イル 4-メチルベンゼンスルホネート（3.502 g, 6.94 mmol）の脱水テトラヒドロフラン溶液（45 mL）を0 ℃で５０分かけて滴下した。得られた混合物を還流させ、化合物４（1.125 g, 3.23 mmol）の脱水テトラヒドロフラン溶液（40 mL）を３０分かけて滴下した。得られた混合物を１８時間還流させた。反応混合物を25 ℃に冷やし、塩化メチレン（200 mL）を加え、セライト濾過により不溶物を除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて30 ℃で減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝20/80から30/70へ段階的に変化させた）によって、下記構造の化合物５を無色油状物として得た（1.684 g, 1.66 mmol, 収率51%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 7.42-7.40 (m, 6H), 7.30-7.21 (m, 9H), 3.83 (t, J = 5.6 Hz, 4H), 3.67-3.51 (m, 32H), 3.16 (d, J = 5.2 Hz, 2H), 2.19 (sept, J = 6.0 Hz, 1H), 1.11-0.98 (m, 42H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 144.42, 128.85, 127.79, 126.95, 86.34, 72.86, 70.92, 70.79, 70.74, 70.61, 63.06, 61.39, 40.51, 18.09, 12.08 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₅₇H₉₆NaO₁₁Si₂の計算値: 1035.639 [M + Na]⁺; 観測値: 1035.637, C₅₇H₉₆KO₁₁Si₂の計算値: 1051.613 [M + K]⁺; 観測値: 1051.611.

（１−２−４）化合物６の合成
アルゴン雰囲気下、化合物５（1.481 g, 1.461 mmol）の脱水メタノール溶液（60 mL）に対し、氷酢酸（10 mL）を25 ℃で２０分かけて滴下した。得られた混合物を３時間還流させた後、ロータリーエバポレーターを用いて40 ℃で溶媒を減圧留去した。得られた残渣に塩化メチレン（200 mL）を加え、その懸濁液を飽和食塩水（各200 mL）で３回洗浄した後、無水硫酸ナトリウム（10 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて30 °Cで減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝20/80から100/0へ段階的に変化させた）によって、下記構造の化合物６を無色油状物として得た（0.740 g, 0.959 mmol, 収率66%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 29 °C): δ 3.83 (t, J = 5.6 Hz, 4H), 3.74 (dd, J = 6.0 and 4.8 Hz, 2H), 3.68-3.54 (m, 32H), 2.87 (t, J = 4.8 Hz, 1H), 2.13 (sept, J = 6.0 Hz, 1H), 1.12-1.03 (m, 42H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 29 °C): δ 72.83, 71.08, 70.90, 70.78, 70.72, 70.66, 70.51, 63.72, 63.05, 41.35, 18.05, 12.06 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₃₈H₈₂NaO₁₁Si₂の計算値: 793.5293 [M + Na]⁺; 観測値: 793.5350, C₃₈H₈₂KO₁₁Si₂の計算値: 809.5033 [M + K]⁺; 観測値: 809.5069.

（１−２−５）化合物７の合成
アルゴン雰囲気下、水素化ナトリウム（60 mg, 2.5 mmol）の脱水テトラヒドロフラン懸濁液（10 mL）に対し、化合物６（733 mg, 0.95 mmol）の脱水テトラヒドロフラン溶液（20 mL）を0 ℃で３０分かけて滴下した。得られた混合物にプロパルギルブロミド（0.10 mL, 1.33 mmol）を0 ℃で加えた。得られた混合物を１７時間25 °Cで撹拌した後、塩化メチレン（50 mL）を加え、セライト濾過により不溶物を除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて40 ℃で減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝50/50から70/30へ段階的に変化させた）によって、下記構造の化合物７を無色油状物として得た（0.602 g, 0.745 mmol, 収率78%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 4.11 (d, J = 2.4 Hz, 2H), 3.83 (t, J = 5.6 Hz, 4H), 3.67-3.55 (m, 28H), 3.49 (d, J = 6.0 Hz, 6H), 2.41 (t, J = 2.4 Hz, 1H), 2.29 (sept, J = 6.0 Hz, 1H), 1.12-1.03 (m, 42H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 29 °C): δ 80.10, 74.26, 72.84, 70.91, 70.78, 70.75, 70.72, 70.66, 70.58, 69.61, 68.59, 63.05, 58.47, 42.40, 40.18, 18.06, 12.07 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₄₁H₈₄NaO₁₁Si₂の計算値: 831.5450 [M + Na]⁺; 観測値: 831.5474, C₄₁H₈₄KO₁₁Si₂の計算値: 847.5189 [M + K]⁺; 観測値: 847.5216.

（１−２−６）化合物８の合成
アルゴン雰囲気下、化合物１（0.150 g, 0.229 mmol）、ヨウ化銅(I)（10 mg, 0.054 mmol）、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)（27 mg, 0.023 mmol）を脱水N,N-ジメチルホルムアミド（7 mL）、N,N-ジイソプロピルエチルアミン（0.07 mL, 0.42 mmol）の混合溶液に分散させた混合物に対し、化合物７（0.369 g, 0.456 mmol）の脱水N,N-ジメチルホルムアミド（8 mL）溶液を25℃で５分かけて滴下した。得られた混合物を50 ℃で１９時間撹拌し、さらに70 ℃で３時間撹拌した。その後50 ℃に冷やし、溶媒を油回転真空ポンプを用いて減圧留去した。得られた残渣に対し酢酸エチル（20 mL）を加え、飽和食塩水（各40 mL）で３回洗浄した後、無水硫酸ナトリウム（5 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて40 °Cで減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Silica Gel 60, 溶離液：酢酸エチル／ヘキサン＝50/50から100/0へ段階的に変化させた）によって、下記構造の化合物８（分岐型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（付加モル数４のエチレンオキサイドが２本結合））を茶色油状物として得た（0.283 g, 0.212 mmol, 収率93%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 22 °C): δ 8.2 (broad s, 1H), 7.94 (s, 1H), 7.42 (d, J = 8.8 Hz, 2H), 7.34-7.22 (m, 7H), 6.84 (d, J = 8.8 Hz, 4H), 6.28 (t, J = 7.6 Hz, 1H), 4.49 (secs, J = 3.2 Hz, 1H), 4.05 (d, J = 2.4 Hz, 2H), 3.83 (t, J = 5.6 Hz, 4H), 3.79 (s, 6H), 3.67-3.53 (m, 30H), 3.45-3.43 (m, 6H), 3.40-3.85 (m, 2H), 2.47 (m, 1H), 2.29 (ddd, J = 13.6, 6.0 and 3.2 Hz, 1H), 2.13 (ddd, J = 13.6, 7.6 and 6.0, 1H), 1.11-1.03 (m, 42H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 28 °C): δ 161.19, 158.76, 149.15, 144.61, 142.84, 135.59, 135.55, 130.09, 128.15, 128.01, 127.10, 113.45, 99.88, 90.46, 87.10, 86.35, 85.78, 72.83, 72.21, 70.90, 70.73, 70.71, 70.67, 70.57, 70.54, 69.61, 68.66, 63.65, 63.05, 60.50, 59.02, 55.33, 41.46, 40.18, 21.13, 18.07, 14.30, 12.07 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₇₁H₁₁₂N₂NaO₁₈Si₂の計算値: 1359.735 [M + Na]⁺; 観測値: 1359.732, C₇₁H₁₁₂N₂KO₁₈Si₂の計算値: 1375.709 [M + K]⁺; 観測値: 1375.705.

前記化合物８は、一般式（１）において、Ｒ¹が保護基、Ｒ²が保護基、ｍが４、ｎが２、Ｌ¹が−Ｃ≡Ｃ−ＣＨ₂−Ｏ−であり、Ｌ²が一般式（２１）に示すリンカー基である化合物に該当する。

２．エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを用いたポリヌクレオチドの合成
（２−１）化合物３（３’位水酸基がホスホロアミダイト化された直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数４））の合成
アルゴン雰囲気下、化合物２（2.509 g, 2.74 mmol）の脱水塩化メチレン溶液（50 mL）に対し、N,N-ジイソプロピルエチルアミン（1.9 mL, 11.1 mmol）と2-シアノエチル-N,N-ジイソプロピルクロロホスホアミダイト（0.8 mL, 3.58 mmol）を0 ℃で滴下した。得られた混合物を0 ℃で４０分撹拌した。その後、25℃で３時間半撹拌し、溶媒を油回転真空ポンプを用いて減圧留去した。得られた残渣物に対し、飽和重曹水（15 mL）を加え、塩化メチレンを用いて３回抽出した（各40 mL）。塩化メチレン抽出液に対し無水硫酸ナトリウム（10 g）を加え、不溶物を濾過で除いた。濾液を、ロータリーエバポレーターを用いて30℃で減圧留去し、得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Chromatorex NH silica, 溶離液：塩化メチレン／メタノール＝100/0から90/10へ段階的に変化させた）によって、下記構造の化合物３（３’位水酸基がホスホロアミダイト化された化合物２）を薄黄色油状物として得た（1.592 g, 1.42 mmol, 収率52%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 23 °C): δ 8.11 and 8.07 (s and s, total 1H), 7.42 (d, J = 8.8 Hz, 2H), 7.34-7.21 (m, 7H), 6.83 (dd, J = 8.8 and 3.8 Hz, 4H), 6.27 (dd, J = 7.6 and 6.0 Hz, 1H), 4.59 (secs, J = 3.2 Hz, 1H), 4.21 and 4.16 (d and d, J = 2.4 and 2.4 Hz, total 1H), 4.06 (m, 2H), 3.83 (t, J = 5.6 Hz, 2H), 3.79 and 3.78 (s and s, total 6H), 3.67-3.56 (m, 12H), 3.46-3.38 (m, 5H), 3.32 (m, 1H), 2.63 (m, 2H), 2.57 (m, 1H), 2.44 (t, J = 6.4 Hz, 2H), 2.29 (m, 1H), 1.18-1.14 (m, 12H), 1.10-1.05 (m, 21H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 161.37, 161.33, 158.43, 149.15, 149.08, 144.30, 144.26, 142.59, 135.27, 135.24, 135.21, 129.85, 129.81, 127.85, 127.76, 127.71, 126.79, 117.41, 117.21, 113.13, 99.67, 99.61, 89.77, 89.74, 86.77, 85.90, 85.60, 85.52, 73.63, 73.46, 73.23, 73.07, 72.53, 70.58, 70.43, 70.28, 70.03, 68.69, 63.01, 62.84, 62.75, 58.52, 58.25, 58.12, 58.06, 57.93, 55.07, 55.04, 43.16, 43.09, 43.04, 42.97, 24.47, 24.40, 24.36, 24.29, 20.25, 20.17, 20.06, 19.99, 17.79, 11.76 ppm. ³¹P NMR (162 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 149.04 and 148.64 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₅₉H₈₅N₄NaO₁₃PSiの計算値: 1139.5518 [M + Na]⁺; 観測値: 1139.5530.

（２−２）３’位水酸基がホスホロアミダイト化された直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１）の合成
化合物２に代えて直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１）を使用すること以外は、前記と同条件で合成を行い、３’位水酸基がホスホロアミダイト化された直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１）を得た。

（２−３）３’位水酸基がホスホロアミダイト化された直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）の合成
化合物２に代えて直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）を使用すること以外は、前記と同条件で合成を行い、３’位水酸基がホスホロアミダイト化された直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）を得た。

（２−４）３’位水酸基がホスホロアミダイト化された分岐型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（付加モル数４のエチレンオキサイドが２本結合）の合成
アルゴン雰囲気下、化合物８（0.306 g, 0.23 mmol）の脱水塩化メチレン溶液（25 mL）に対し、N,N-ジイソプロピルエチルアミン（0.160 mL, 0.92 mmol）と2-シアノエチル-N,N-ジイソプロピルクロロホスホアミダイト（0.061 mL, 0.27 mmol）を0 °Cで滴下した。得られた混合物を0 ℃で４０分撹拌した。その後、25 ℃で３時間半撹拌し、メタノール（0.5 mL）を加え、溶媒を油回転真空ポンプを用いて減圧留去した。得られた残渣から、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：Chromatorex NH silica, 溶離液：塩化メチレン／メタノール＝98/2から96/4へ段階的に変化させた）によって下記構造の化合物９（３’位水酸基がホスホロアミダイト化された化合物８）を薄黄色油状物として得た（0.184 g, 0.12 mmol, 収率52%）。
¹H NMR (400 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 8.05 and 8.01 (s and s, total 1H), 7.40 (m, 2H), 7.34-7.19 (m, 7H), 6.83 (dd, J = 8.8 and 3.8 Hz, 4H), 6.24 (dd, J = 7.6 and 6.0 Hz, 1H), 4.57 (m, 1H), 4.31 and 4.28 (d and d, J = 6.4 and 6.4 Hz, total 1H), 4.20-3.84 (m, 3H), 4.15 (s, 2H), 3.96 (d, J = 1.2 Hz, 2H), 3.82 (t, J = 5.6 Hz, 4H), 3.772 and 3.766 (s and s, total 6H), 3.67-3.56 (m, 28H), 3.43 and 3.39 (s and s, total 2H), 3.42-3.38 (m, 6H), 2.77 (m, 2H), 2.44 (t, J = 6.4 Hz, 2H), 2.27 (m, 1H), 1.18-1.14 (m, 6H), 1.10-1.05 (m, 48H) ppm. ¹³C NMR (125 MHz, CDCl₃, 25 °C): δ 161.15, 158.63, 149.10, 144.50, 142.75, 135.33, 132.95, 132.14, 132.04, 131.99, 131.96, 130.07, 130.02, 128.58, 128.46, 128.03, 127.93, 127.89, 126.97, 117.60, 117.36, 113.30, 99.77, 90.22, 86.99, 85.81, 85.73, 72.71, 70.79, 70.63, 70.61, 70.57, 70.46, 70.43, 69.49, 68.57, 62.93, 58.89, 58.54, 58.34, 58.22, 57.82, 55.24, 55.22, 50.73, 50.56, 45.36, 43.36, 43.30, 43.24, 43.18, 43.02, 42.90, 40.04, 24.70, 24.68, 24.62, 22.96, 22.90, 21.44, 20.41, 20.34, 20.13, 17.97 ppm. ³¹P NMR (162 MHz, CDCl₃, 26 °C): δ 149.68 and 148.87 ppm. ESI-TOF MS: m/z: C₈₀H₁₂₉N₄NaO₁₉PSi₂の計算値: 1559.842 [M + Na]⁺; 観測値: 1559.839, C₈₀H₁₂₉N₄KO₁₉PSi₂の計算値: 1575.816 [M + K]⁺; 観測値: 1575.817.

（２−５）ポリヌクレオチドの合成
５’位水酸基が4,4'-ジメトキシトリルで保護され、且つ３’位水酸基がホスホロアミダイト化されたヌクレオシド（アデノシン、グアノシン、シチジン、チミジン）と、３’位水酸基がホスホロアミダイト化されたエチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを用いて、ＤＮＡ自動合成機を利用して、ホスホロアミダイト法によって所定の塩基配列となるようにポリヌクレオチドを固相合成した。

３．用いた測定装置と試薬の情報
¹H, ¹³C, ³¹P核磁気共鳴（NMR）スペクトルは、400 MHz FT NMR Bruker BioSpin AVANCE III 400 spectrometerを用いて測定した。エレクトロスプレーイオン化飛行時間質量分析計 (ESI-TOF MS)スペクトルは、Bruker microTOF-Q II-S1を用い、ポジティブモードで、メタノールを溶媒として用いて測定した。N,N-ジイソプロピルエチルアミンはSigma-Aldrichから購入した。クロロイソプロピルシラン、ヨウ化銅（I）、イミダゾールはナカライテスクから購入した。N,N-ジイソプロピルクロロホスホアミダイト、水素化ナトリウム、2-ヒドロキシメチル-1,3-プロパンジオール、氷酢酸、プロパルギルブロミドは、和光純薬工業から購入した。テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)、トリチルクロリド、テトラエチレングリコールは東京化成工業から購入した。脱水塩化メチレン、脱水N,N-ジメチルホルムアミド、脱水テトラヒドロフランは関東化学から購入し、使用直前にGlass-Contourシステムの２本のカラムを通して使用した。シリカゲルカラムクロマトグラフィーは、関東化学から購入したSilica Gel 60 (球状, 中性, 粒径: 63-210 μm)、または富士シリシア化学から購入したChromatorex-NH silica (NH DM 1020, 球状, 粒径: 75-150 μm, 細孔径: 10 nm)を用いて行った。

４．四重鎖及び二重鎖構造の安定性の評価
エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドがＤＮＡ構造に及ぼす影響を検討するため、四重螺旋構造を形成するＤＮＡ鎖（Ｑ１）に直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数１、４、又は８）を導入したポリヌクレオチド（Ｑ１−Ｘ、Ｑ１−Ｙ、Ｑ１−Ｚ）を合成した。また、四重螺旋構造を形成するＤＮＡ鎖（Ｑ１）に分岐型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（付加モル数４のエチレンオキサイドが２本結合）を導入したポリヌクレオチド（Ｑ１−Ｘ２）を合成した。更に、重螺旋構造を形成するＤＮＡ鎖（Ｄ１）に直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数８）を導入したポリヌクレオチド（Ｑ１−Ｘ）も合成した。Ｑ１、Ｑ１−Ｘ、Ｑ１−Ｙ、Ｑ１−Ｚ、Ｑ１−Ｘ２、Ｄ１、及びＤ１−Ｘの塩基配列は表１に示す通りである。Ｑ１、Ｑ１−Ｘ、Ｑ１−Ｙ、Ｑ１−Ｚ、及びＱ１−Ｘ２は、図１に示すように四重螺旋構造を形成する。また、Ｄ１及びＤ１−Ｘは、図２に示すように二重螺旋構造を形成する。

100 mM KCl, 10 mM K₂HPO₄, 1 mM K₂EDTAを含む溶液に5 μMのポリヌクレオチドを溶解させ、90℃から0℃まで0.5℃/分で降温させたのち、15分以上静置した。その後、分光光度計で0.5℃/分昇温させ四重鎖は295 nmで、二重鎖は260 nmにおける融解挙動を測定した。

得られた結果を図３に示す。この結果、エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを導入したポリヌクレオチドでは、これを導入していないポリヌクレオチドに比べて、安定性が向上していることが確認された。特に、ＤＮＡ構造の融解温度(T_m)の値は、Ｄ１、Ｄ１−Ｘ、Ｑ１及び Ｑ１−Ｘでそれぞれ74.3、73.8、50.7及び 58.8 ^oCとなった。即ち、エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを導入することにより、二重螺旋構造は不安定化されるが、四重螺旋構造は安定化されることが明らかとなった。

５．逆転写反応の抑制
HIV-1由来のRNAを鋳型にして逆転反応を行い、エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドが付加された四重鎖が逆転写反応に及ぼす影響を解析した。HIV-1由来の鋳型RNA（配列番号１）は一部に、GGG（４９〜５１位）という配列をもつ（このGGGは通常は何の構造も形成しない）。先ず、このGGG部位の５’末端側に位置する塩基配列（１９〜３４位）に相補的な配列をもつDNA1（配列番号２）と、配列番号１の１９〜３４位の塩基配列に対して相補的な配列とリンカー部位、鋳型RNAのGGG部位と四重鎖を形成する配列をもつDNA2（配列番号３）を合成した。DNA2の塩基配列（配列番号３）において、１〜３位、７〜９位、及び１３〜１５位の各GGGがＧカルテット形成部位に該当し、４〜６位、１０〜１２位、及び１６〜１８位の各配列がループ配列に該当し、１９〜２８位の配列がリンカー部位に該当し、２９〜４４位の配列が配列番号１の１９〜３４位の塩基配列に対する相補的な配列に該当する。DNA2の塩基配列（配列番号３）において、ループ配列に位置する５位の塩基は、直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数４）の塩基（Ｘ）によって形成されている。鋳型RNA、DNA1、DNA2、及びプライマーDNAの塩基配列を表２に示す。

また、鋳型RNA（配列番号１）の４３〜５７位塩基配列に対して相補的なDNA（配列番号４）の５’末端にフルオレセイン修飾したDNAを逆転写反応のプライマーDNAとして用いて、以下の試験を行った。

30 mM KCl, 40 mM Tris-HCl (pH 8.0), 8 mM MgCl₂, and 2 mM spermidineを含む溶液に、0.5 μM primer DNA、1μM 鋳型RNA、2μM DNA1又はDNA2を添加し、90℃から37℃まで0.5℃/分で降温させ、15分以上静置した。その後、1 mM dNTPs, 2Uの逆転写酵素を添加し、60分間の逆転写反応を行った。10％変性アクリルアミドゲル電気泳動によって、生産されたDNAを解析した。

電気泳動を行った結果を図４に示す。図４中、レーン1には、DNA1及びDNA2いずれも添加せずに逆転写反応を行った結果を示しており、この場合には鋳型RNAの5'末端までプライマーDNAの伸長が起きたことを示すDNA産物が確認された。図４中、レーン2及び3にはDNA1又はDNA2を添加して逆転写反応を行った結果を示しており、レーン2では鋳型RNAの5'末端までプライマーDNAの伸長が起きたことを示すDNA産物が確認されたが、レーン3では逆転写反応によるプライマー伸長が確認されたかった。即ち、これらの結果から、DNA2がプライマーと結合し、安定な四重鎖が形成されることによって逆転写反応が抑制されることが示された。

６．ヌクレアーゼ耐性の評価
ヌクレアーゼが、エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドが付加されたポリヌクレオチドに及ぼす影響を検討するために、表３に示す35塩基のポリヌクレオチド（DNA3）、及びDNA3と同じ塩基配列で一か所のチミンを直鎖型エチレンオキサイド化デオキシヌクレオシド（エチレンオキサイドの付加モル数４）の塩基（X）に置き換えたポリヌクレオチド（DNA4）を設計した。これらのポリヌクレオチド5μMを、30 mM KCl, 40 mM Tris-HCl (pH 8.0), 8 mM MgCl₂及び2 mMジチオトレイトールを含む溶液に溶解させ、1 unitのDNase Iと共に、37℃において15分静置した。その後、20％変性アクリルアミドゲル電気泳動によって、DNAを解析した。

得られた結果を図５に示す。図５から明らかなように、DNA3はヌクレアーゼによって完全に分解されたが、DNA4はヌクレアーゼに対する耐性を示し、その構造を安定に維持できていた。即ち、本試験結果から、ポリヌクレオチドにエチレンオキサイド化デオキシヌクレオシドを導入することによって、ヌクレアーゼの耐性を付与できることが示された。

Claims (11)

1. 下記一般式（１）で表されるアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
   ［一般式（１）中、Ｒ¹は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。
   Ｒ²は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。
   ＡＯはアルキレンオキサイドを示す。
   ｍは１〜８の整数を示す。
   ｎは２〜１０の整数を示す。
   Ｌ¹は、ピリミジン環の５位の炭素とＬ²とを連結するリンカー基であって、下記一般式（Ａ）で表されるリンカー基（酸素原子がＬ²側に結合）を示す。
   Ｌ²は、下記一般式（２）で表されるリンカー基を示す。］
   ［一般式（２）中、Ｌ²¹はＬ¹と結合するリンカー基であり、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれｐ個及びｑ個の基−（ＡＯ）_m−Ｒ²と結合するリンカー基であり、
   Ｌ²¹、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれ同一又は異なって、−Ｏ−；−Ｓ−；−（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨＣＯ−；−ＮＨ（ＣＯ）Ｏ−；−Ｏ（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨ−；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数１〜７のアルキレン基；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７のアルキニレン基を示し、
   ｐ及びｑは０〜１０の整数であり、且つｐ＋ｑ＝ｎの関係を満たす。］
2. 一般式（１）中、ＡＯがエチレンオキサイドである、請求項１に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
3. 一般式（１）中、ｎが２であり、
   Ｌ²が、下記一般式（２１）に示すリンカー基である請求項１又は２に記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシド。
   
4. 請求項１〜３のいずれかに記載のアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドが他のデオキシヌクレオシドとリン酸ジエステル結合によって連結しているポリヌクレオチド。
5. 下記一般式（１）で表されるアルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドが他のデオキシヌクレオシドとリン酸ジエステル結合によって連結しており、下記塩基配列(i)を含む、ポリヌクレオチド。
   ［一般式（１）中、Ｒ¹は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。
   Ｒ²は、水素原子、又は水酸基の保護基を示す。
   ＡＯはアルキレンオキサイドを示す。
   ｍは１〜８の整数を示す。
   ｎは１〜１０の整数を示す。
   Ｌ¹は、ピリミジン環の５位の炭素とＬ²とを連結するリンカー基であって、下記一般式（Ａ）で表されるリンカー基（酸素原子がＬ²側に結合）を示す。
   Ｌ²は、ｎが１の場合には単結合、ｎが２〜１０の場合にはＬ¹に対して１価の結合と基−（ＡＯ）_m−Ｒ²に対してｎ価の結合を持つ分岐リンカー基であって下記一般式（２）に示すリンカー基を示す。］
   ［一般式（２）中、Ｌ²¹はＬ¹と結合するリンカー基であり、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれｐ個及びｑ個の基−（ＡＯ）_m−Ｒ²と結合するリンカー基であり、
   Ｌ²¹、Ｌ²²及びＬ²³は、それぞれ同一又は異なって、−Ｏ−；−Ｓ−；−（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨＣＯ−；−ＮＨ（ＣＯ）Ｏ−；−Ｏ（ＣＯ）Ｏ−；−ＮＨ−；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数１〜７のアルキレン基；エーテル結合、チオエーテル結合、エステル結合、アミド結合、ウレタン結合、カーボネート結合、及び２級アミノ基を１又は２個含んでいてもよい炭素数２〜７のアルキニレン基を示し、
   ｐ及びｑは０〜１０の整数であり、且つｐ＋ｑ＝ｎの関係を満たす。］
   ［塩基配列(i)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
   Ａ₁、Ａ₂、Ａ₃、及びＡ₄は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
   Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
   Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(i)の５’末端側又は３’末端側に前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
6. 一般式（１）中、ｎが２であり、
   Ｌ²が、下記一般式（２１）に示すリンカー基である、請求項５に記載のポリヌクレオチド。
   
7. 下記塩基配列(ii)〜(iv)のいずれかを含み、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなる塩基配列を含む標的核酸鎖と四重螺旋構造を形成する、請求項５又は６に記載のポリヌクレオチド。
   ［塩基配列(ii)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
   Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
   Ｂ₁、及びＢ₂は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
   Ｂ₁、及びＢ₂のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(ii)の５’末端側又は３’末端側に前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
   ［塩基配列(iii)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
   Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
   Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
   Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(iii)の５’末端側又は３’末端側に前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
   ［塩基配列(iv)において、左側が５’末端側、右側が３’末端側を示す。
   Ａ₁、Ａ₂、及びＡ₃は、それぞれ同一又は異なって、ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなるグアニン四量体形成配列を示す。
   Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃は、それぞれ同一又は異なって、１〜５個の塩基からなるループ配列を示す。
   Ｂ₁、Ｂ₂、及びＢ₃のループ配列に含まれる少なくとも１つの塩基が、前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基に置換されている；或いは塩基配列(iv)の５’末端側又は３’末端側に前記アルキレンオキサイド化デオキシヌクレオシドの塩基が付加されている。］
8. 前記配列(ii)〜(iv)の５’末端側又は３’末端側に、標的核酸鎖の一部の塩基配列に対する相補的な塩基配列が付加されている、請求項７に記載のポリヌクレオチド。
9. 前記相補的な塩基配列が、
   前記標的核酸鎖中の前記ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなる塩基配列の５’末端から５’末端側に数えて１〜５５番目までの塩基の領域内の塩基配列、或いは
   前記標的核酸鎖中の前記ＧＧ、ＧＧＧ、又はＧＧＧＧからなる塩基配列の３’末端から３’末端側に数えて１〜５５番目までの塩基の領域内の塩基配列
   に対して相補的な塩基配列である、請求項８に記載のポリヌクレオチド。
10. 前記標的核酸鎖がＤＮＡ鎖又はＲＮＡ鎖である、請求項７〜９のいずれかに記載のポリヌクレオチド。
11. ＧＧ又はＧＧＧからなる塩基配列を含む標的核酸鎖と、請求項７〜１０のいずれかに記載のポリヌクレオチドとを共存させる工程を含む、核酸鎖の四重螺旋構造の形成方法（但し、人間を治療する方法を除く）。