JP6789522B2 - マクロファージ活性化剤及びマクロファージ活性化用食品組成物 - Google Patents
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Description
[1]コリアンダーの抽出物を有効成分として含むことを特徴とするマクロファージ活性化剤、
[2]前記抽出物が、アルコール、水性溶媒、又はアルコールと水性溶媒との混合物による抽出物である、[1]に記載のマクロファージ活性化剤、
[3]前記抽出物が、エタノール、水性溶媒、又はエタノールと水性溶媒との混合物による抽出物である、[2]に記載のマクロファージ活性化剤、
[4]前記抽出物が、種子の抽出物である、[1]〜[3]のいずれかに記載のマクロファージ活性化剤、
[5]コリアンダーの抽出物を有効成分として含むことを特徴とするマクロファージ活性化用食品組成物、
[6]前記抽出物が、アルコール、水性溶媒、又はアルコールと水性溶媒との混合物による抽出物である、[5]に記載のマクロファージ活性化用食品組成物、
[7]前記抽出物が、エタノール、水性溶媒、又はエタノールと水性溶媒との混合物による抽出物である、[6]に記載のマクロファージ活性化用食品組成物、及び
[8]前記抽出物が、種子の抽出物である、[5]〜[7]のいずれかに記載のマクロファージ活性化用食品組成物
に関する。
本発明のマクロファージ活性化剤は、コリアンダーの抽出物を有効成分として含む。
本発明のマクロファージ活性化剤に含まれるコリアンダーの抽出物を抽出するための抽出溶媒は、抽出液中に有効成分が充分に抽出されることができる限りにおいては限定されないが、例えば、有機溶媒、水性溶媒、又は有機溶媒及び水性溶媒の混合物を使用することができる。
本発明のマクロファージ活性化剤に含まれるコリアンダーの抽出物は、有機溶媒、例えば、アルコール、アセトン、ベンゼン、エステル、酢酸エチル、ヘキサン、クロロホルム、及びジエチルエーテルなどにより抽出されることができるが、好ましくはアルコールにより抽出されることができる。アルコールとしては、抽出液中に有効成分が充分に抽出されることができる限りにおいては限定されないが、例えば、メタノール、エタノール、プロピルアルコール、イソプロピルアルコール、及びブチルアルコール等の炭素数1〜5の一価アルコールを使用することができる。1,3−ブチレングリコール、プロピレングリコール、ジプロピレングリコール、及びグリセリン等の炭素数2〜5の多価アルコールを使用することもできる。好ましいアルコールは、炭素数1〜5の一価アルコールであり、より好ましいアルコールは、メタノール及びエタノールであり、最も好ましいアルコールは、エタノールである。
本発明のマクロファージ活性化剤に含まれるコリアンダーの抽出物は、水性溶媒により抽出されることができる。水性溶媒としては、水を含んでいる限りにおいて限定されるものではなく、例えば水、生理食塩水、又は緩衝液などを使用することができる。緩衝液としては、リン酸緩衝液、リン酸ナトリウム緩衝液、炭酸ナトリウム緩衝液、クエン酸緩衝液、クエン酸リン酸緩衝液、酢酸緩衝液、及びトリス緩衝液などが挙げられる。好ましい水性溶媒は、リン酸ナトリウム緩衝液である。前記水性溶媒のpHは、特に制限されず、例えば、3〜10、好ましくは、5〜8、より好ましくは、7〜8である。
本発明のマクロファージ活性化剤に含まれるコリアンダーの抽出物は、有機溶媒と水性溶媒との混合物により抽出されることができる。抽出溶媒中に含まれる水性溶媒の量は、抽出液中に有効成分が充分に抽出されることができる限りにおいては限定されないが、抽出溶媒の全体量に対して、例えば、50%以下、40%以下、30%以下、20%以下、15%以下、10%以下、5.0%以下、4.0%以下、3.0%以下、2.0%以下、若しくは1.0%以下であることができ、又は、50%以上、60%以上、70%以上、80%以上、85%以上、90%以上、95%以上、96%以上、97%以上、98%以上、若しくは99%以上であることができる。
本発明のマクロファージ活性化剤が奏する具体的なマクロファージ活性化の作用としては、例えば、サイトカイン分泌促進、貪食活性促進、活性酸素(例えば、一酸化窒素)産生促進、及び/又は抗原提示作用の増強が挙げられる。
本発明のマクロファージ活性化用食品組成物は、コリアンダーの抽出物を有効成分として含む。具体的には、コリアンダーの抽出物を含む飲料、又はコリアンダーの抽出物を適当な手段(例えば、凍結乾燥)で水分を除去した乾燥体として含む、飲料又は食品を挙げることができる。
10mMリン酸ナトリウム緩衝液(NaPB;pH7.4)を溶媒として水溶性成分を抽出した。0.1g/mLとなるように、コリアンダー種子粉末を10mM NaPBに懸濁し、4℃で20時間、ローテーターで懸濁抽出した。抽出後、遠心(70,000rpmで20分間)した。上清を回収し、水酸化ナトリウム水溶液を用いてpHを7.4に調整した後、NaPBを再度添加して、タンパク質濃度が5mg/mLとなるように調整した。その後、0.45μmフィルターで濾過滅菌を行ったものを粗抽出サンプルとして実験に使用した。
本実施例では、コリアンダー水溶性抽出物が、マウスマクロファージ細胞株であるRAW264.7細胞及びマウス腹腔から回収した初代マクロファージ(P−Mac)において、インターロイキン(IL)−6及び腫瘍壊死因子(TNF)−α産生に及ぼす効果を評価した。10%ウシ胎児血清−DMEM培地に製造例1で調製したコリアンダー水溶性抽出物を、0μg/mL、125μg/mL、250μg/mL、500μg/mL、1000μg/mL、及び2000μg/mLの濃度で添加し、RAW264.7細胞又はP−Macを細胞密度1×105cells/mLとなるように接種した。6時間培養後、培養上清中のIL−6及びTNF−α濃度を、ELISAキット(Mouse IL−6 ELISA MAX Standard、BioLegend社製;Mouse TNF−α ELISA Ready−set−go、eBioscience社製)を用いて測定した。
コリアンダー水溶性抽出物が、マクロファージのサイトカイン産生を顕著に促進することから、その作用メカニズムを明らかにするため、サイトカインの遺伝子発現に及ぼす影響をリアルタイムRT−PCRにて検討した。
コリアンダー水溶性抽出物あるいは10mMリン酸ナトリウム緩衝液を添加した10%FBS−DMEM培地で3時間培養したRAW264.7細胞を回収し、1mLのSepasol−RNA I Super G(ナカライテスク社製)を加えて5分間室温静置し、その後、200μLのクロロホルム(和光純薬社製)を加えて、撹拌した。70,000rpm、15分間遠心した後、上層を回収した。回収した上層に2−プロパノール(和光純薬社製)を500μL添加し、10分間室温静置した。70,000rpm、10分間遠心した後、上層を除去し、75%エタノールを1mL加え、転倒混和した。70,000rpm、10分間遠心した後、上層を除去し、風乾した。DEPC水を適量添加し、氷上で15分以上静置することで、RNAの沈殿を完全に溶解させた。
PCR用チューブに1μgのRNAと10μMのオリゴdTを加え、サーマルサイクラー5分間70℃処理した後、氷冷した。そこに、逆転写酵素(Promega社製)、dNTPミックス(東洋紡社製)を加え、42℃で60分間インキュベートした。
Thunderbird SYBR qPCR Mix(東洋紡社製)、センスプライマー、アンチセンスプライマー及びcDNAを加え、StepOnePlus Real−time PCR System(Applied Biosystem社製)にて、95℃ 1分−(95℃ 3秒、60℃ 30秒)×40サイクルの条件で反応させ、遺伝子発現レベルを解析した。内部標準として、βアクチン遺伝子を用いた。
IL−6センスプライマー:AAGCCAGAGTCCTTCAGAGAGAT(配列番号1)
IL−6アンチセンスプライマー:TTGGATGGTCTTGGTCCTTAGC(配列番号2)
TNF−αセンスプライマー:CTACTCCCAGGTTCTCTTCAA(配列番号3)
TNF−αアンチセンスプライマー:GCAGAGAGGAGGTTGACTTTC(配列番号4)
βアクチンセンスプライマー:CATCCGTAAAGACCTCTATGCCAAC(配列番号5)
βアクチンアンチセンスプライマー:ATGGAGCCACCGATCCACA(配列番号6)
その結果、コリアンダー水溶性抽出物は、図3に示したように、RAW264.7細胞のIL−6及びTNF−αの遺伝子発現を濃度依存的に促進することが明らかになった。
コリアンダーの種子又は葉の粉末に10倍量の100%エタノールを加え、ボルテックスで十分に撹拌し、4℃で24時間震盪抽出後、直ちに3,000rpmで20分間遠心した。上清を回収しエバポレーターで濃縮乾固させ重量を測定した。濃度を1mg/mLとなるようにエタノールを加えて溶解し、0.22μmフィルターで濾過滅菌を行ったものを粗抽出サンプルとして実験に使用した。
本実施例では、コリアンダーアルコール抽出物が、RAW264.7細胞において、インターロイキン(IL)−6産生に及ぼす効果を評価した。10%FBS−DMEM培地に製造例2で調製したコリアンダーアルコール抽出物を種々の濃度で添加し、RAW264.7細胞を細胞密度1.5×105cells/mLとなるように接種した。12時間培養後、培養上清中のIL−6濃度をELISAキット(Mouse IL−6 ELISA MAX Standard、BioLegend社製)を用いて測定した。
その結果、図4に示したように、種子及び葉の各々のコリアンダーアルコール抽出物は、IL−6の産生を促進することが明らかになった。
本実施例では、コリアンダー水溶性抽出物が、RAW264.7細胞において貪食活性に及ぼす効果を、Texas Redで標識したザイモサンA(商品名:Zymosan A S.cerevisiae BioParticles,Texas Red、Invitrogen社製)を用いて評価した。蛍光強度は、フローサイトメーターにより測定した。製造例1で調製したコリアンダー水溶性抽出物をRAW264.7細胞に様々な濃度で24時間作用させた。上清除去後、37℃に温めたPBSで細胞を洗浄した。暗室にてザイモサンA存在下で1時間培養した。培養上清除去後、氷冷PBSで細胞を遠心(1000rpm、5分、4℃)により回収した。再度、氷冷PBSで洗浄後、1mLの2%FBS−PBSに懸濁し、BD FACSCalibur(BD Biosciences社製)により分析を行った。解析はWindows Multiple Document Interface for Flow Cytometry version 2.9で行った。
テキサスレッドで蛍光標識したザイモサンAの取込をフローサイトメーターで計測することで、貪食活性を評価した結果、コリアンダー水溶性抽出物は、RAW264.7細胞の貪食活性を促進することが明らかになった(図5)。
NOは活性酸素の一種であり、体内に侵入した微生物の殺傷のためにマクロファージによって産生される。本実施例では、RAW264.7細胞のNO産生に及ぼすコリアンダー水溶性抽出物の効果を検討するために、コリアンダー水溶性抽出物を0μg/mL、125μg/mL、250μg/mL、500μg/mL、1000μg/mL、及び2000μg/mLの濃度で添加してNO産生量を測定した。その結果、コントロールである0μg/mLにおいては、NOの産生量は、0.17±0.15μMとなったが、図6に示したように、コリアンダー水溶性抽出物は、濃度依存的にNO産生を促進することが明らかになった。その作用メカニズムを明らかにするため、NO産生に関与する誘導型一酸化窒素合成酵素(iNOS)の遺伝子発現に及ぼす効果をリアルタイムRT−PCRにて検討した。
コリアンダー水溶性抽出物が、マクロファージのサイトカイン産生を顕著に促進することから、その作用メカニズムを明らかにするため、サイトカインの遺伝子発現に及ぼす影響をリアルタイムRT−PCRにて検討した。
コリアンダー水溶性抽出物あるいは10mMリン酸ナトリウム緩衝液を添加した10%FBS−DMEM培地で3時間培養したRAW264.7細胞を回収し、1mLのSepasol−RNA I Super G(ナカライテスク社製)を加えて5分間室温静置し、その後、200μLのクロロホルム(和光純薬社製)を加えて、撹拌した。70,000rpm、15分間遠心した後、上層を回収した。回収した上層に2−プロパノール(和光純薬社製)を500μL添加し、10分間室温静置した。70,000rpm、10分間遠心した後、上層を除去し、75%エタノールを1mL加え、転倒混和した。70,000rpm、10分間遠心した後、上層を除去し、風乾した。DEPC水を適量添加し、氷上で15分以上静置することで、RNAの沈殿を完全に溶解させた。
PCR用チューブに1μgのRNAと10μMのオリゴdTを加え、サーマルサイクラーで5分間70℃処理した後、氷冷した。そこに、逆転写酵素(Promega社製)、dNTPミックス(東洋紡社製)を加え、42℃で60分間インキュベートした。
Thunderbird SYBR qPCR Mix(東洋紡社製)、センスプライマー、アンチセンスプライマー及びcDNAを加え、StepOnePlus Real−time PCR System(Applied Biosystem社製)にて、95℃ 1分−(95℃ 3秒、60℃ 30秒)×40サイクルの条件で反応させ、遺伝子発現レベルを解析した。内部標準として、実施例1と同様にβアクチン遺伝子を用いた。
iNOSセンスプライマー:CCAAGCCCTCACCTACTTCC(配列番号7)
iNOSアンチセンスプライマー:CTCTGAGGGCTGACACAAGG(配列番号8)
その結果、コリアンダー水溶性抽出物はiNOS遺伝子発現を促進しており(図7)、コリアンダー水溶性抽出物は、一酸化窒素合成酵素の発現を活性化することで、NO産生を促進したと考えられる。
コリアンダー水溶性抽出物は、遺伝子発現を活性化することで、IL−6、TNF−α、及びNO産生を促進していることが明らかになった。マクロファージ表面上には、活性化に関与するいくつかの受容体が存在する。その一つにToll様受容体(TLR)4がある。TLR4はリポ多糖(LPS)の受容体であり、その下流に転写活性の促進に関与するシグナル伝達系、すなわち、NF−κB経路及びMAPキナーゼ経路がある(図8)。そこで、コリアンダー水溶性抽出物のNF−κB経路及びMAPキナーゼ経路の活性化に及ぼす影響について解析した。なお、ポジティブコントロールとしてTLR4のリガンドであるLPSを用いた。
細胞質内においてはNF−κBはIκBと結合しており、不活性化状態にある。TLR4が活性化されるとシグナルが伝達され、IκBがリン酸化を受けることで分解が誘導され、NF−κBは遊離状態となる。遊離状態のNF−κBは核内に移行し、転写因子として作用する。そこで、コリアンダー水溶性抽出物の作用により、RAW264.7細胞内のNF−κBの核移行がどの様な影響を受けるかを抗マウスNF−κB抗体及び抗マウスHiston H3抗体(Cell Signalling Technology社製)を使用してウエスタンブロット法により解析した。
その結果、図9に示したように、コリアンダー水溶性抽出物の作用により、細胞質NF−κB量が減少し、核内NF−κB量が増加することが明らかになった。このことから、コリアンダー水溶性抽出物は、NF−κBの核移行を促進することにより、転写活性を上昇させ、サイトカイン産生及びNO産生を促進していることが明らかになった。
次に、MAPキナーゼ経路に及ぼすコリアンダー水溶性抽出物の効果を検討した。MAPキナーゼファミリーである、ERK、JNK、及びp38のリン酸化による活性化に及ぼす影響を、抗マウスERK抗体、抗マウスリン酸化ERK抗体、抗マウスJNK抗体、抗マウスリン酸化JNK抗体、抗マウスp38抗体、抗マウスリン酸化p38抗体、及び抗マウスActin抗体(Cell Signalling Technology社製)を使用してウエスタンブロット法により検討した。
その結果、コリアンダー水溶性抽出物の作用により、RAW264.7細胞のERK、JNK、及びp38のリン酸化による活性化が顕著に促進され、MAPキナーゼ経路が活性化されることが明らかになった(図10)。
以上の結果から、コリアンダー水溶性抽出物は、NF−κBの核移行及びMAPキナーゼを活性化することにより転写活性を促進し、サイトカイン産生を活性化していることが確認された。これら活性化経路は、TLR4受容体の下流に存在するシグナル経路であることから、コリアンダー水溶性抽出物がTLR4を刺激することで細胞内シグナル伝達系を活性化しているのかどうかについて検討した。RAW264.7細胞をTLR4の選択的阻害剤であるTAK−242(フナコシ社製)で処理した後にコリアンダー水溶性抽出物の効果を検討した。
その結果、TLR4のリガンドであるLPS及びコリアンダー水溶性抽出物の効果は、TLR4阻害剤処理により抑制され、IL−6及びTNF−α産生に対する促進効果は有意に低下した(図11)。このことから、コリアンダー水溶性抽出物は、TLR4を刺激することで、NF−κB経路とMAPキナーゼ経路を活性化することが明らかになった。
コリアンダー水溶性抽出がTLR4を刺激してマクロファージを活性化したことから、コリアンダー水溶性抽出物のマクロファージ促進効果が、抽出物に混入するエンドトキシンの影響である可能性が懸念される。そこで、エンドトキシン阻害剤でサンプルを処理した後に活性評価した。エンドトキシン阻害剤としてPolymyxin B硫酸塩(Sigma社製)を用いた。コリアンダー水溶性抽出物に50μg/mLとなるようPolymyxin Bを添加し、10分間室温で反応させた後に活性評価した。
その結果、図12に示したように、ポジティブコントロールとして用いたLPSのIL−6及びTNF−α産促進効果は、Polymyxin B処理により顕著に抑制された。一方、コリアンダー水溶性抽出物の促進効果は、Polymyxin B処理の影響を全く受けなかった。このことから、コリアンダー水溶性抽出物のマクロファージ活性化効果は、混入するエンドトキシンの影響ではなく、コリアンダー成分による効果であることが示唆された。
(1)サンプル調製
コリアンダー(Coriandrum sativum L.)種子粉末を10mM NaPBに0.1g/mLとなるよう調整し、24時間4℃の条件下で懸濁した。24時間後、28,000×g、4℃、20分の条件で遠心した。遠心後、上部の白濁層をアスピレーターで除去し、上清を回収した。再度28,000×g、4℃、20分の条件で遠心し、上部の白濁層をアスピレート除去して上清を回収した。回収した上清を分子量14kDaカットの透析膜を用いて10mM NaPBに対して一晩透析した。透析後のコリアンダー種子水溶性抽出物を0.22μmフィルターでフィルター滅菌し、NaPBを再度添加して、タンパク質濃度が3mg/mLとなるように調整したものを、コリアンダー種子水溶性抽出物(CAE)として用いた。
(1)で調製したCAEを、図13に示されている投与スケジュールに従い、マウスに投与した。1週間の馴化後、体重を基にマウスを1群5匹の3群に群分けした(Control=5、High dose=5、Low dose=5)。翌日から、Control群には10mM NaPBを1日1回20μLずつ1週間経口投与し、High dose群にはCAEの原液を1日1回、3mgタンパク質/kg体重/日で1週間経口投与し、Low dose群には1/5に希釈したCAEを1日1回、0.6mgタンパク質/kg体重/日で1週間経口投与した。
Day4に、マウスの腹腔内に3%チオグリコレート培地をマウス1匹あたり2mLずつ26Gニードルと5mLシリンジを用いて投与した。Day7の最終投与の1時間後、マウスをジエチルエーテルで麻酔死させ、氷冷PBSを腹腔内に26Gニードルと5mLシリンジを用いて注入した。1分間腹腔を揉み込み、22Gニードルと1mLシリンジを用いて腹腔内の細胞を回収した。回収した細胞を750×g、4℃、5分の条件で遠心した。上清の除去後、細胞をRPMI−1640培地で洗浄し、再度750×g、4℃、5分の条件で遠心した。上清の除去後、細胞を5mLの10% FBS−RPMI−1640培地で懸濁し、6cmディッシュに撒いてインキュベートした。1時間後、細胞を氷冷PBSで3回洗浄し、マクロファージ以外の細胞を除去した。(この方法で得られた接着細胞の90%以上が腹腔内マクロファージとされている。)
接着細胞を氷冷PBSで剥がし、遠心管に回収した。1200rpm、4℃、5分の条件で遠心した後、上清を除去し、RPMI−1640培地で細胞を再懸濁して洗浄した。再度1200rpm、4℃、5分の条件で遠心した後、上清を除去し、RPMI−1640培地で細胞数を1.0×106cells/mLになるよう調製した。48ウェル培養プレートに20% FBS−RPMI−1640培地を250μL/wellずつ添加し、その後、調製した細胞懸濁液を250μL/wellずつ添加した(培地の終濃度:10% FBS−RPMI−1640培地、最終細胞数:2.5×105cells/mL)。24ウェル培養プレートに20% FBS−RPMI−1640培地を500μL/wellずつ添加し、その後、調製した細胞懸濁液を500μL/wellずつ添加した(10% FBS−RPMI−1640培地、最終細胞数:5.0×105cells/mL)。各プレートを24時間培養した後、培養上清中のIL−6産生量をELISAキット(Mouse IL−6 ELISA MAX Standard、BioLegend社製)を用いて測定した。
有意差検定はDunnett法を用いた。*p<0.05、及び**p<0.01は統計学的に有意であると考えられる。
各マウス群の体重測定の結果を図14に示す。体重測定は、NaPB又はCAEの投与前に行った。Day5で体重の減少が見られるのは、Day4にチオグリコレート培地を腹腔内に注入したためと考えられる。3群の間で体重の減少に有意差は認められなかったことから、サンプル投与による体重への影響はないと考えられる。
Claims (4)
- コリアンダーの葉又は種子の、−50℃〜100℃のアルコール、水性溶媒、又はアルコールと水性溶媒との混合物による抽出物を有効成分として含むことを特徴とするマクロファージ活性化剤。
- 前記抽出物が、エタノール、水性溶媒、又はエタノールと水性溶媒との混合物による抽出物である、請求項1に記載のマクロファージ活性化剤。
- コリアンダーの葉又は種子の−50℃〜100℃のアルコール、水性溶媒、又はアルコールと水性溶媒との混合物による抽出物を有効成分として含むことを特徴とするマクロファージ活性化用食品組成物。
- 前記抽出物が、エタノール、水性溶媒、又はエタノールと水性溶媒との混合物による抽出物である、請求項3に記載のマクロファージ活性化用食品組成物。
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