JP6785769B2 - 脂質の製造方法 - Google Patents
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Description
例えば、炭素原子数12〜18前後の高級脂肪酸を還元して得られる高級アルコールの誘導体は、界面活性剤として用いられている。アルキル硫酸エステル塩やアルキルベンゼンスルホン酸塩等は陰イオン性界面活性剤として利用されている。また、ポリオキシアルキレンアルキルエーテルやアルキルポリグリコシド等は非イオン性界面活性剤として利用されている。そしてこれらの界面活性剤は、いずれも洗浄剤や殺菌剤等に利用されている。同じ高級アルコールの誘導体であるアルキルアミン塩やモノ又はジアルキル4級アミン塩等のカチオン性界面活性剤は、繊維処理剤、毛髪リンス剤、殺菌剤等に日常的に利用されている。また、ベンザルコニウム型4級アンモニウム塩は殺菌剤や防腐剤等に日常的に利用されている。さらに、植物油脂はバイオディーゼル燃料の原料としても利用されている。
また、炭素原子数が18以上の長鎖脂肪酸、特に不飽和結合が複数導入された長鎖多価不飽和脂肪酸(以下、「PUFA」ともいう)の多くは、動物の生体内では合成できない必須脂肪酸であることが知られている。したがって、このようなPUFAは、栄養学的用途に特に有用であり、機能性食品などに用いられている。
さらに、炭素原子数18以上の長鎖脂肪酸、特にPUFAは、葉緑体外にて多数のデサチュラーゼ(Desaturase)やエロンガーゼ(Elongase)によって合成されると言われている。
一般的にPUFAの生産性向上には、デサチュラーゼやエロンガーゼの強化が有効であると考えられており、様々な生物からこれらの酵素群が同定されている(特許文献1参照)。例えば、次世代の油脂生産源として注目を集めている微細藻類の一種であるナンノクロロプシス(Nannochloropsis)属に属する藻類由来のデサチュラーゼやエロンガーゼが、長鎖脂肪酸の合成に使用できることが知られている(特許文献2及び3参照)。
このように、油糧生物において所望の長鎖脂肪酸(特にPUFA)に富む脂質を効率的に産生させる方法に対しては、当技術分野における需要がある。
(A)配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
(B)前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が70%以上のアミノ酸配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性(以下、「KAS活性」ともいう)を有するタンパク質。
また本発明は、前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子に関する。
さらに本発明は、前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子の発現を促進させた形質転換体に関する。
また本発明は、長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産性を向上させた形質転換体に関する。
本発明はこれらの知見に基づいて完成するに至ったものである。
また本発明の形質転換体は、長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産性に優れる。
本発明の上記及び他の特徴及び利点は、下記の記載からより明らかになるであろう。
また本明細書において、脂肪酸や、脂肪酸を構成するアシル基の表記において「Cx:y」とあるのは、炭素原子数xで二重結合の数がyであることを表す。「Cx」は炭素原子数xの脂肪酸やアシル基を表す。
さらに本明細書において、塩基配列及びアミノ酸配列の同一性は、Lipman-Pearson法(Science,1985,vol.227,p.1435-1441)によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアGenetyx-Winのホモロジー解析(Search homology)プログラムを用いて、Unit size to compare(ktup)を2として解析を行うことにより算出される。
また本明細書において「ストリンジェントな条件」としては、例えばMolecular Cloning−A LABORATORY MANUAL THIRD EDITION[Joseph Sambrook,David W.Russell.,Cold Spring Harbor Laboratory Press]記載の方法が挙げられる。例えば、6×SSC(1×SSCの組成:0.15M塩化ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム、pH7.0)、0.5%SDS、5×デンハート及び100mg/mLニシン精子DNAを含む溶液にプローブとともに65℃で8〜16時間恒温し、ハイブリダイズさせる条件が挙げられる。
さらに明細書において、遺伝子の「上流」とは、翻訳開始点からの位置ではなく、対象として捉えている遺伝子又は領域の5'側に続く領域を示す。一方、遺伝子の「下流」とは、対象として捉えている遺伝子又は領域の3'側に続く領域を示す。
脂肪酸合成の第一段階では、アセチル−ACP(又はアセチル−CoA)とマロニルACPとの縮合反応により、アセトアセチルACPが生成する。この反応をKASが触媒する。次いで、β−ケトアシル−ACPレダクターゼによりアセトアセチルACPのケト基が還元されてヒドロキシブチリルACPが生成する。続いて、β−ヒドロキシアシル−ACPデヒドラーゼによりヒドロキシブチリルACPが脱水され、クロトニルACPが生成する。最後に、エノイル−ACPレダクターゼによりクロトニルACPが還元されて、ブチリルACPが生成する。これら一連の反応により、アセチル−ACPからアシル基の炭素鎖が2個伸長されたブチリルACPが生成する。以下、同様の反応を繰り返すことで、アシル−ACPの炭素鎖が伸長し、最終的に炭素原子数16又は18のアシル−ACPが合成される。
タンパク質がKAS活性を有することは、例えば、宿主細胞内で機能するプロモーターの下流に前記タンパク質をコードする遺伝子を連結したDNAを、脂肪酸分解系が欠損した宿主細胞へ導入し、導入した遺伝子が発現する条件下で細胞を培養し、宿主細胞内又は培養液中の脂肪酸組成の変化を常法により分析することで確認できる。あるいは、宿主細胞内で機能するプロモーターの下流に前記タンパク質をコードする遺伝子を連結したDNAを宿主細胞へ導入し、導入した遺伝子が発現する条件下で細胞を培養した後、細胞の破砕液に対し、各種アシル−ACPを基質とした鎖長伸長反応を行うことにより確認できる。
後述の実施例で示すように、前記タンパク質(A)をコードする遺伝子の発現を促進した形質転換体では、炭素原子数18や20の長鎖脂肪酸の生産性が向上する。よって前記タンパク質(A)及び(B)は、炭素原子数18以上の長鎖β−ケトアシル−ACP合成活性を有する、KAS II型のKASであると考えられる。また、ChloroP(http://www.cbs.dtu.dk/services/ChloroP/)を用いた局在予測より、前記タンパク質(A)は葉緑体局在型のKASであり、N末端側のアミノ酸33残基は葉緑体移行シグナル配列であると考えられる。なお本明細書において「長鎖β−ケトアシル−ACP合成活性」とは、主に炭素原子数16以上のアシル−ACPを基質とし、炭素原子数18以上の長鎖アシル−ACP合成の伸長反応を触媒する活性のことをいう。また本明細書において「長鎖」とは、アシル基の炭素原子数が18以上、好ましくは炭素原子数が18又は20であることをいう。
アミノ酸配列に変異を導入する方法としては、例えば、アミノ酸配列をコードする塩基配列に変異を導入する方法が挙げられる。変異を導入する方法としては、部位特異的な変異導入法が挙げられる。具体的な部位特異的変異の導入方法としては、SOE-PCR反応を利用した方法、ODA法、Kunkel法等が挙げられる。また、Site-Directed Mutagenesis System Mutan-SuperExpress Kmキット(タカラバイオ社)、Transformer TM Site-Directed Mutagenesisキット(Clonetech社)、KOD-Plus-Mutagenesis Kit(東洋紡社)等の市販のキットを利用することもできる。また、ランダムな遺伝子変異を与えた後、適当な方法により酵素活性の評価及び遺伝子解析を行うことにより目的遺伝子を取得することもできる。
なお、ナンノクロロプシス・オキュラータ等の藻類は、私的又は公的な研究所等の保存機関より入手することができる。例えば、ナンノクロロプシス・オキュラータNIES-2145株は、国立環境研究所(NIES)から入手することができる。
(a)配列番号2で表される塩基配列からなるDNA。
(b)前記DNA(a)の塩基配列と同一性が70%以上の塩基配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性を有する前記タンパク質(A)又は(B)をコードするDNA。
配列番号2の塩基配列は、配列番号1のアミノ酸配列からなるタンパク質(ナンノクロロプシス・オキュラータNIES2145株由来のKAS)をコードする遺伝子の塩基配列である。
また前記DNA(b)として、配列番号2で表される塩基配列において1又は複数個(例えば1個以上428個以下、好ましくは1個以上357個以下、より好ましくは1個以上285個以下、より好ましくは1個以上214個以下、より好ましくは1個以上142個以下、より好ましくは1個以上114個以下、より好ましくは1個以上71個以下、より好ましくは1個以上28個以下、さらに好ましくは1個以上14個以下)の塩基が欠失、置換、挿入、又は付加されており、かつKAS活性を有するタンパク質をコードするDNAも好ましい。
さらに前記DNA(b)として、前記DNA(a)と相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつKAS活性を有するタンパク質をコードするDNAも好ましい。
以下本明細書において、目的のタンパク質をコードする遺伝子の発現を促進させたものを「形質転換体」ともいい、目的のタンパク質をコードする遺伝子の発現を促進させていないものを「宿主」又は「野生株」ともいう。
本発明で用いる形質転換体は、宿主自体に比べ、長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産性(長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産量、生産される全脂肪酸中又は全脂質中に占める長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の割合(比率))が有意に向上する。またその結果、当該形質転換体では、脂質中の脂肪酸組成が改変される。そのため、当該形質転換体を用いた本発明は、特定の炭素原子数の脂質、特に長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質、好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA又はこれを構成成分とする脂質、より好ましくは炭素原子数20のPUFA又はこれを構成する脂質、より好ましくはC20:4若しくはC20:5、又はこれを構成する脂質、よりさらに好ましくはエイコサペンタエン酸(以下、「EPA」ともいう)又はこれを構成成分とする脂質、の生産に好適に用いることができる。
さらに本発明の形質転換体は、宿主と比較して、脂肪酸、及びそのエステル化合物を構成する脂肪酸エステルの総量に占める、長鎖脂肪酸量及びそのエステル化合物量の比率が向上する。前記長鎖脂肪酸は、炭素原子数18以上の脂肪酸が好ましく、炭素原子数18〜22の脂肪酸がより好ましく、炭素原子数18〜20の脂肪酸がより好ましく、炭素原子数18又は20の脂肪酸がより好ましく、炭素原子数18又は20の不飽和脂肪酸がより好ましく、C18:1、C18:2、C18:3、C20:4又はC20:5がより好ましく、炭素原子数18若しくは20のPUFAがより好ましく、炭素原子数20のPUFAがより好ましく、C20:4若しくはC20:5がより好ましく、EPAがより好ましい。
なお、宿主や形質転換体の脂肪酸及び脂質の生産性については、実施例で用いた方法により測定することができる。
前記KAS遺伝子は、通常の遺伝子工学的手法により得ることができる。例えば、配列番号1に示すアミノ酸配列又は配列番号2に示す塩基配列に基づいて、KAS遺伝子を人工的に合成できる。KAS遺伝子の合成は、例えば、インビトロジェン社等のサービスを利用することができる。また、ナンノクロロプシス・オキュラータからクローニングによって取得することもできる。例えば、Molecular Cloning−A LABORATORY MANUAL THIRD EDITION[Joseph Sambrook,David W.Russell,Cold Spring Harbor Laboratory Press(2001)]記載の方法等により行うことができる。また、実施例で用いたナンノクロロプシス・オキュラータNIES-2145は、国立環境研究所(NIES)より入手することができる。
前記微生物は原核生物、真核生物のいずれであってもよく、エシェリキア(Escherichia)属の微生物やバシラス(Bacillus)属の微生物、シネコシスティス(Synechocystis)属の微生物、シネココッカス(Synechococcus)属の微生物等の原核生物、又は酵母や糸状菌等の真核微生物を用いることができる。なかでも、脂質生産性の観点から、大腸菌(Escherichia coli)、枯草菌(Bacillus subtilis)、赤色酵母(Rhodosporidium toruloides)、又はモルチエレラ・エスピー(Mortierella sp.)が好ましく、大腸菌がより好ましい。
前記藻類や微細藻類としては、遺伝子組換え手法が確立している観点から、クラミドモナス(Chlamydomonas)属の藻類、クロレラ(Chlorella)属の藻類、ファエオダクティラム(Phaeodactylum)属の藻類、又はナンノクロロプシス属の藻類が好ましく、ナンノクロロプシス属の藻類がより好ましい。ナンノクロロプシス属の藻類の具体例としては、ナンノクロロプシス・オキュラータ、ナンノクロロプシス・ガディタナ(Nannochloropsis gaditana)、ナンノクロロプシス・サリナ(Nannochloropsis salina)、ナンノクロロプシス・オセアニカ(Nannochloropsis oceanica)、ナンノクロロプシス・アトムス(Nannochloropsis atomus)、ナンノクロロプシス・マキュラタ(Nannochloropsis maculata)、ナンノクロロプシス・グラニュラータ(Nannochloropsis granulata)、ナンノクロロプシス・エスピー(Nannochloropsis sp.)等が挙げられる。なかでも、脂質生産性の観点から、ナンノクロロプシス・オキュラータ、又はナンノクロロプシス・ガディタナが好ましく、ナンノクロロプシス・オキュラータがより好ましい。
前記植物体としては、種子に脂質を高含有する観点から、シロイヌナズナ(Arabidopsis thaliana)、西洋アブラナ(Brassica napus)、アブラナ(Brassica rapa)、ココヤシ(Cocos nucifera)、パーム(Elaeis guineensis)、クフェア、ダイズ(Glycine max)、トウモロコシ(Zea mays)、イネ(Oryza sativa)、ヒマワリ(Helianthus annuus)、クスノキ(Cinnamomum camphora)、又はヤトロファ(Jatropha curcas)が好ましく、シロイヌナズナがより好ましい。
本発明で好ましく用いることができる発現用ベクターとしては、微生物を宿主とする場合には、例えば、pBluescript(pBS) II SK(-)(Stratagene社製)、pSTV系ベクター(タカラバイオ社製)、pUC系ベクター(宝酒造社製)、pET系ベクター(タカラバイオ社製)、pGEX系ベクター(GEヘルスケア社製)、pCold系ベクター(タカラバイオ社製)、pHY300PLK(タカラバイオ社製)、pUB110(Mckenzie,T.et al.,1986,Plasmid 15(2),p.93-103)、pBR322(タカラバイオ社製)、pRS403(ストラタジーン社製)、及びpMW218/219(ニッポンジーン社製)が挙げられる。特に、宿主が大腸菌の場合は、pBluescript II SK(-)、又はpMW218/219が好ましく用いられる。
藻類又は微細藻類を宿主とする場合には、例えば、pUC19(タカラバイオ社製)、P66(Chlamydomonas Center)、P-322(Chlamydomonas Center)、pPha-T1(Yangmin Gong,et al.,Journal of Basic Microbiology,2011,vol.51,p.666-672参照)、及びpJET1(コスモ・バイオ社製)が挙げられる。特に、宿主がナンノクロロプシス属に属する藻類の場合は、pUC19、pPha-T1、又はpJET1が好ましく用いられる。また、宿主がナンノクロロプシス属に属する藻類の場合には、Oliver Kilian,et al.,Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2011,vol.108(52)の記載の方法を参考にして、目的の遺伝子、プロモーター及びターミネーターからなるDNA断片(遺伝子発現カセット)を用いて宿主を形質転換することもできる。このDNA断片としては、例えば、PCRにより増幅したDNA断片や制限酵素で切断したDNA断片が挙げられる。
植物細胞を宿主とする場合には、例えば、pRI系ベクター(タカラバイオ社製)、pBI系ベクター(クロンテック社製)、及びIN3系ベクター(インプランタイノベーションズ社製)が挙げられる。特に、宿主がシロイヌナズナの場合は、pRI系ベクター又はpBI系ベクターが好ましく用いられる。
また、目的のタンパク質をコードする遺伝子が組み込まれたことを確認するための選択マーカーの種類も、使用する宿主の種類に応じて適宜選択することができる。本発明で好ましく用いることができる選択マーカーとしては、アンピシリン耐性遺伝子、クロラムフェニコール耐性遺伝子、エリスロマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、スペクチノマイシン耐性遺伝子、テトラサイクリン耐性遺伝子、ブラストサイジンS耐性遺伝子、ビアラフォス耐性遺伝子、ゼオシン耐性遺伝子、パロモマイシン耐性遺伝子、及びハイグロマイシン耐性遺伝子等の薬剤耐性遺伝子が挙げられる。さらに、栄養要求性に関連する遺伝子の欠損等を選択マーカー遺伝子として使用することもできる。
また、形質転換方法は、使用する宿主の種類に応じて常法より適宜選択することができる。例えば、カルシウムイオンを用いる形質転換方法、一般的なコンピテントセル形質転換方法、プロトプラスト形質転換法、エレクトロポレーション法、LP形質転換方法、アグロバクテリウムを用いた方法、パーティクルガン法等が挙げられる。宿主としてナンノクロロプシス属の藻類を用いる場合、Randor Radakovits, et al.,Nature Communications,DOI:10.1038/ncomms1688,2012等に記載のエレクトロポレーション法を用いて形質転換を行うこともできる。
「発現調節領域」とは、プロモーターやターミネーターを示し、これらの配列は一般に隣接する遺伝子の発現量(転写量、翻訳量)の調節に関与している。ゲノム上に前記KAS遺伝子を有する宿主においては、当該遺伝子の発現調節領域を改変して前記KAS遺伝子の発現を促進させることで、長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産性を向上させることができる。
宿主としてナンノクロロプシスを用いる場合には、チューブリンプロモーター、ヒートショックプロテインプロモーター、上述のビオラキサンチン/クロロフィルa結合タンパク質遺伝子のプロモーター(VCP1プロモーター、VCP2プロモーター)、又はナンノクロロプシス属由来のオレオシン様タンパクLDSP遺伝子のプロモーター(配列番号6)を好ましく用いることができる。長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産性向上の観点から、ビオラキサンチン/クロロフィルa結合タンパク質遺伝子のプロモーター又はLDSP遺伝子のプロモーターがより好ましく、LDSP遺伝子のプロモーターがさらにより好ましい。
このような相同組換えによる標的プロモーターの改変方法は、例えば、Besher et al.,Methods in molecular biology,1995,vol.47,p.291-302等の文献を参考に行うことができる。特に、宿主がナンノクロロプシス属に属する藻類の場合、Oliver Kilian,et al.,Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2011,vol.108(52)等の文献を参考にして、相同組換え法によりゲノム中の特定の領域を改変することができる。
前述したように、TEは、KAS等の脂肪酸合成酵素によって合成されたアシル−ACPのチオエステル結合を加水分解し、遊離の脂肪酸を生成する酵素である。TEの作用によってACP上での脂肪酸合成が終了し、切り出された脂肪酸はPUFAの合成やトリアシルグリセロール(以下、「TAG」ともいう)等の合成に供される。そのため、KAS遺伝子に加えてTE遺伝子の発現を促進することで、脂質の製造に用いる形質転換体の脂質の生産性、特に脂肪酸の生産性を一層向上させることができる。
本発明で用いることができるTEは、アシル−ACPチオエステラーゼ活性(以下、「TE活性」ともいう)を有するタンパク質であればよい。ここで「TE活性」とは、アシル−ACPのチオエステル結合を加水分解する活性をいう。
本発明で用いることができるTEは、通常のTEや、それらと機能的に均等なタンパク質から、宿主の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、シロイヌナズナ由来FatA(配列番号24)、シロイヌナズナ由来FatB(配列番号25)、マンゴスチン(Garcinia mangostana)由来FatA(配列番号26)、ナンノクロロプシス・ガディタナ由来TE(配列番号27)、ナンノクロロプシス・オキュラータ由来TE(配列番号28又は30)、ナンノクロロプシス・グラニュラータ由来TE(配列番号29)、大腸菌由来tesA(配列番号31)などを用いることができる。長鎖アシル−ACPに対する基質特異性の観点から、シロイヌナズナ由来FatA、マンゴスチン由来FatAがより好ましい。
また、TE遺伝子の発現を促進させた形質転換体は、常法により作製できる。例えば、前述のKAS遺伝子の発現を促進させる方法と同様、TE遺伝子を宿主に導入する方法、TE遺伝子をゲノム上に有する宿主において当該遺伝子の発現調節領域を改変する方法、などにより形質転換体を作製することができる。
前述したように、炭素原子数18以上の長鎖脂肪酸、特にPUFAは、葉緑体外にて多数のデサチュラーゼやエロンガーゼによって合成されると言われている。そのため、KAS遺伝子に加えデサチュラーゼやエロンガーゼをコードする遺伝子の発現を促進することで、長鎖脂肪酸、特にPUFAの生産性を一層向上させることができる。
なお本発明において、これらのデサチュラーゼを単独で用いてもよいし、2種以上を組合せて用いてもよい。
本発明で好ましく用いることができるΔ12-DESは、通常のΔ12-DESや、それらと機能的に均等なタンパク質から、宿主の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、ナンノクロロプシス・オキュラータ由来のΔ12-DES(以下、「NoΔ12-DES」ともいう)(配列番号32)やナンノクロロプシス・ガディタナ由来のΔ12-DES(以下、「NgΔ12-DES」ともいう)(配列番号34)等が挙げられる。また、これと機能的に均等なタンパク質として、NoΔ12-DESやNgΔ12-DESのアミノ酸配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)のアミノ酸配列からなり、かつΔ12-DES活性を有するタンパク質も用いることができる。NoΔ12-DESをコードする遺伝子としては、配列番号33で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号33で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ12-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。NgΔ12-DESをコードする遺伝子としては、配列番号35で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号35で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ12-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。
本発明で好ましく用いることができるΔ6-DESは、通常のΔ6-DESや、それらと機能的に均等なタンパク質から、宿主の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、ナンノクロロプシス・オキュラータ由来のΔ6-DES(以下、「NoΔ6-DES」ともいう)(配列番号36)やナンノクロロプシス・ガディタナ由来のΔ6-DES(以下、「NgΔ6-DES」ともいう)(配列番号38)等が挙げられる。また、これと機能的に均等なタンパク質として、NoΔ6-DESやNgΔ6-DESのアミノ酸配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)のアミノ酸配列からなり、かつΔ6-DES活性を有するタンパク質も用いることができる。NoΔ6-DESをコードする遺伝子としては、配列番号37で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号37で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ6-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。NgΔ6-DESをコードする遺伝子としては、配列番号39で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号39で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ6-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。
本発明で好ましく用いることができるω3-DESは、通常のω3-DESや、それらと機能的に均等なタンパク質から、宿主の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、ナンノクロロプシス・オキュラータ由来のω3-DES(以下、「Noω3-DES」ともいう)(配列番号40)やナンノクロロプシス・ガディタナ由来のω3-DES(以下、「Ngω3-DES」ともいう)(配列番号42)等が挙げられる。また、これと機能的に均等なタンパク質として、Noω3-DESやNgω3-DESのアミノ酸配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)のアミノ酸配列からなり、かつω3-DES活性を有するタンパク質も用いることができる。Noω3-DESをコードする遺伝子としては、配列番号41で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号41で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつω3-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。Ngω3-DESをコードする遺伝子としては、配列番号43で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号43で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつω3-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。
本発明で好ましく用いることができるΔ5-DESは、通常のΔ5-DESや、それらと機能的に均等なタンパク質から、宿主の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、ナンノクロロプシス・オキュラータ由来のΔ5-DES(以下、「NoΔ5-DES」ともいう)(配列番号44)やナンノクロロプシス・ガディタナ由来のΔ5-DES(以下、「NgΔ5-DES」ともいう)(配列番号46)等が挙げられる。また、これと機能的に均等なタンパク質として、NoΔ5-DESやNgΔ5-DESのアミノ酸配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)のアミノ酸配列からなり、かつΔ5-DES活性を有するタンパク質も用いることができる。NoΔ5-DESをコードする遺伝子としては、配列番号45で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号45で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ5-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。NgΔ5-DESをコードする遺伝子としては、配列番号47で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号47で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ5-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。
本発明で好ましく用いることができるΔ9-DESは、通常のΔ9-DESや、それらと機能的に均等なタンパク質から、宿主の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、ナンノクロロプシス・オキュラータ由来のΔ9-DES(以下、「NoΔ9-DES」ともいう)(配列番号48)やナンノクロロプシス・ガディタナ由来のΔ9-DES(以下、「NgΔ9-DES」ともいう)(配列番号50)等が挙げられる。また、これと機能的に均等なタンパク質として、NoΔ9-DESやNgΔ9-DESのアミノ酸配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)のアミノ酸配列からなり、かつΔ9-DES活性を有するタンパク質も用いることができる。NoΔ9-DESをコードする遺伝子としては、配列番号49で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号49で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ9-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。NgΔ9-DESをコードする遺伝子としては、配列番号51で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号51で表される塩基配列との同一性が60%以上(好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、さらに好ましくは90%以上)の塩基配列からなり、かつΔ9-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子が挙げられる。
また、宿主としてシロイヌナズナを用いる場合、シロイヌナズナの培養は、例えば、土壌で温度条件20〜25℃、白色光を連続照射又は明期16時間・暗期8時間等の光条件下で1〜2か月間栽培することができる。
培地に接種する形質転換体の量は適宜選択することができ、生育性の点から培地当り1〜50%(vol/vol)が好ましく、1〜10%(vol/vol)がより好ましい。培養温度は、藻類の増殖に悪影響を与えない範囲であれば特に制限されないが、通常、5〜40℃の範囲である。藻類の生育促進、脂肪酸の生産性向上、及び生産コストの低減の観点から、好ましくは10〜35℃であり、より好ましくは15〜30℃である。
また藻類の培養は、光合成ができるよう光照射下で行うことが好ましい。光照射は、光合成が可能な条件であればよく、人工光でも太陽光でもよい。光照射時の照度としては、藻類の生育促進、脂肪酸の生産性向上の観点から、好ましくは100〜50000ルクスの範囲、より好ましくは300〜10000ルクスの範囲、さらに好ましくは1000〜6000ルクスの範囲である。また、光照射の間隔は、特に制限されないが、前記と同様の観点から、明暗周期で行うことが好ましく、24時間のうち明期が好ましくは8〜24時間、より好ましくは10〜18時間、さらに好ましくは12時間である。
また藻類の培養は、光合成ができるように二酸化炭素を含む気体の存在下、又は炭酸水素ナトリウムなどの炭酸塩を含む培地で行うことが好ましい。気体中の二酸化炭素の濃度は特に限定されないが、生育促進、脂肪酸の生産性向上の観点から0.03(大気条件と同程度)〜10%が好ましく、より好ましくは0.05〜5%、さらに好ましくは0.1〜3%、よりさらに好ましくは0.3〜1%である。炭酸塩の濃度は特に限定されないが、例えば炭酸水素ナトリウムを用いる場合、生育促進、脂肪酸の生産性向上の観点から0.01〜5質量%が好ましく、より好ましくは0.05〜2質量%、さらに好ましくは0.1〜1質量%である。
培養時間は特に限定されず、脂質を高濃度に蓄積する藻体が高い濃度で増殖できるように、長期間(例えば150日程度)行なってもよい。藻類の生育促進、脂肪酸の生産性向上、及び生産コストの低減の観点から、培養期間は、好ましくは3〜90日間、より好ましくは3〜30日間、さらに好ましくは7〜30日間である。なお、培養は、通気攪拌培養、振とう培養又は静置培養のいずれでもよく、通気性の向上の観点から、通気撹拌培養又は振とう培養が好ましく、通気撹拌培養がより好ましい。
脂質中に含まれる脂肪酸又は脂肪酸エステル化合物は、界面活性剤等への利用性や栄養学的観点から、長鎖脂肪酸又はそのエステル化合物が好ましく、炭素原子数18以上の脂肪酸又はそのエステル化合物がより好ましく、炭素原子数18〜22の脂肪酸又はそのエステル化合物がより好ましく、炭素原子数18〜20の脂肪酸又はそのエステル化合物がより好ましく、炭素原子数18若しくは20の脂肪酸又はそのエステル化合物がさらに好ましく、炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸又はそのエステル化合物がさらに好ましく、C18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、又はそのエステル化合物がより好ましく、炭素原子数18若しくは20のPUFA又はそのエステル化合物がより好ましく、炭素原子数20のPUFA又はそのエステル化合物がより好ましく、C20:4若しくはC20:5、又はそのエステル化合物がより好ましく、EPA又はそのエステル化合物がより好ましい。
脂肪酸エステル化合物は、生産性の点から、単純脂質又は複合脂質が好ましく、単純脂質がさらに好ましく、トリアシルグリセロールがさらにより好ましい。
(A)配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
(B)前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が70%以上、好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは92%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは98%以上、さらに好ましくは99%以上、のアミノ酸配列からなり、かつKAS活性を有するタンパク質。
<3>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子の発現を促進させて、形質転換体の細胞内で生産される長鎖脂肪酸、好ましくは長鎖脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA、より好ましくは炭素原子数20のPUFA、より好ましくはC20:4若しくはC20:5、より好ましくはEPA、又はこれを構成成分とする脂質の生産性を向上させ、生産される全脂肪酸中又は全脂質中の脂肪酸又は脂質の組成を改変する、脂質の組成の改変方法。
<4>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子の発現を促進させた形質転換体を培養し、脂肪酸、及びそのエステル化合物を構成する脂肪酸エステルの総量に占める、長鎖脂肪酸(好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA、より好ましくは炭素原子数20のPUFA、より好ましくはC20:4若しくはC20:5、より好ましくはEPA)量及びそのエステル化合物量の比率を向上させる方法。
<5>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子を宿主に導入して前記遺伝子の発現を促進させる、前記<1>〜<4>のいずれか1項記載の方法。
<7>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子を宿主に導入して形質転換体を作製し、形質転換体の細胞内で生産される長鎖脂肪酸、好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA、より好ましくは炭素原子数20のPUFA、より好ましくはC20:4若しくはC20:5、より好ましくはEPA、又はこれを構成成分とする脂質の生産性を向上させる、脂質生産性の向上方法。
<8>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子を導入して形質転換体を作製し、形質転換体の細胞内で生産される長鎖脂肪酸、好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA、より好ましくは炭素原子数20のPUFA、より好ましくはC20:4若しくはC20:5、より好ましくはEPA、又はこれを構成成分とする脂質の生産性を向上させ、生産される全脂肪酸中又は全脂質中の脂肪酸又は脂質の組成を改変する、脂質の組成の改変方法。
<9>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子を導入した形質転換体を培養し、脂肪酸、及びそのエステル化合物を構成する脂肪酸エステルの総量に占める、長鎖脂肪酸(好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA、より好ましくは炭素原子数20のPUFA、より好ましくはC20:4若しくはC20:5、より好ましくはEPA)量及びそのエステル化合物量の比率を向上させる方法。
<11>前記タンパク質(B)が、前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が92%以上のアミノ酸配列からなり、かつKAS活性を有するタンパク質である、前記<1>〜<10>のいずれか1項記載の方法。
<12>前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子が、下記DNA(a)又は(b)からなる遺伝子である、前記<1>〜<11>のいずれか1項記載の方法。
(a)配列番号2で表される塩基配列からなるDNA。
(b)前記DNA(a)の塩基配列と同一性が70%以上、好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは92%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは98%以上、さらに好ましくは99%以上、の塩基配列からなり、かつKAS活性を有する前記タンパク質(A)又は(B)をコードするDNA。
<13>前記DNA(b)が、前記DNA(a)の塩基配列に、1若しくは複数個、好ましくは1個以上428個以下、より好ましくは1個以上357個以下、より好ましくは1個以上285個以下、より好ましくは1個以上214個以下、より好ましくは1個以上142個以下、より好ましくは1個以上114個以下、より好ましくは1個以上71個以下、より好ましくは1個以上28個以下、よりさらに好ましくは1個以上14個以下、の塩基が欠失、置換、挿入、若しくは付加された塩基配列からなり、かつKAS活性を有する前記タンパク質(A)又は(B)をコードするDNA、又は前記DNA(a)と相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつKAS活性を有する前記タンパク質(A)又は(B)をコードするDNAである、前記<1>〜<12>のいずれか1項記載の方法。
<14>前記タンパク質(A)及び(B)が、長鎖β−ケトアシル−ACP合成活性を有するKASである、前記<1>〜<13>のいずれか1項記載の方法。
<15>前記形質転換体において、TEをコードする遺伝子の発現を促進させた、前記<1>〜<14>のいずれか1項記載の方法。
<16>前記形質転換体において、デサチュラーゼをコードする遺伝子の発現を促進させた、前記<1>〜<15>のいずれか1項記載の方法。
<17>デサチュラーゼをコードする遺伝子を前記形質転換体に導入した、前記<1>〜<16>のいずれか1項記載の方法。
<18>前記デサチュラーゼが、Δ12-DES、Δ6-DES、ω3-DES、Δ5-DES、及びΔ9-DESからなる群より選ばれる少なくとも1つのデサチュラーゼである、前記<16>又は<17>項記載の方法。
<19>前記Δ12-DESが、配列番号32若しくは34で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、又は配列番号32若しくは34で表されるアミノ酸配列と同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、のアミノ酸配列からなり、かつΔ12-DES活性を有するタンパク質である、前記<18>項記載の方法。
<20>前記Δ12-DESをコードする遺伝子が、配列番号33若しくは35で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号33若しくは35で表される塩基配列との同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、の塩基配列からなり、かつΔ12-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子である、前記<18>又は<19>項記載の方法。
<21>前記Δ6-DESが、配列番号36若しくは38で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、又は配列番号36若しくは38で表されるアミノ酸配列と同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、のアミノ酸配列からなり、かつΔ6-DES活性を有するタンパク質である、前記<18>〜<20>のいずれか1項記載の方法。
<22>前記Δ6-DESをコードする遺伝子が、配列番号37若しくは39で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号37若しくは39で表される塩基配列との同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、の塩基配列からなり、かつΔ6-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子である、前記<18>〜<21>のいずれか1項記載の方法。
<23>前記ω3-DESが、配列番号40若しくは42で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、又は配列番号40若しくは42で表されるアミノ酸配列と同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、のアミノ酸配列からなり、かつω3-DES活性を有するタンパク質である、前記<18>〜<22>のいずれか1項記載の方法。
<24>前記ω3-DESをコードする遺伝子が、配列番号41若しくは43で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号41若しくは43で表される塩基配列との同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、の塩基配列からなり、かつω3-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子である、前記<18>〜<23>のいずれか1項記載の方法。
<25>前記Δ5-DESが、配列番号44若しくは46で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、又は配列番号44若しくは46で表されるアミノ酸配列と同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、のアミノ酸配列からなり、かつΔ5-DES活性を有するタンパク質である、前記<18>〜<24>のいずれか1項記載の方法。
<26>前記Δ5-DESをコードする遺伝子が、配列番号45若しくは47で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号45若しくは47で表される塩基配列との同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、の塩基配列からなり、かつΔ5-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子である、前記<18>〜<25>のいずれか1項記載の方法。
<27>前記Δ9-DESが、配列番号48若しくは50で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、又は配列番号48若しくは50で表されるアミノ酸配列と同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、のアミノ酸配列からなり、かつΔ9-DES活性を有するタンパク質である、前記<18>〜<26>のいずれか1項記載の方法。
<28>前記Δ9-DESをコードする遺伝子が、配列番号49若しくは51で表される塩基配列からなるDNAからなる遺伝子、又は配列番号49若しくは51で表される塩基配列との同一性が60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、の塩基配列からなり、かつΔ9-DES活性を有するタンパク質をコードするDNAからなる遺伝子である、前記<18>〜<27>のいずれか1項記載の方法。
<29>前記形質転換体において、エロンガーゼをコードする遺伝子の発現を促進させた、前記<1>〜<28>のいずれか1項記載の方法。
<30>前記形質転換体が微生物又は植物である、前記<1>〜<29>のいずれか1項記載の方法。
<31>前記微生物が微細藻類、好ましくはナンノクロロプシス属に属する藻類、より好ましくはナンノクロロプシス・オキュラータ、である、前記<30>項記載の方法。
<32>前記微生物が大腸菌である、前記<30>項記載の方法。
<33>前記植物がシロイヌナズナである、前記<30>項記載の方法。
<34>前記脂質が、長鎖脂肪酸又はそのエステル化合物、好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数20のPUFA又はそのエステル化合物、より好ましくはC20:4若しくはC20:5又はそのエステル化合物、よりさらに好ましくはEPA又はそのエステル化合物、を含む、前記<1>〜<33>のいずれか1項記載の方法。
<35>前記長鎖脂肪酸が長鎖多価不飽和脂肪酸である、前記<1>〜<34>のいずれか1項記載の方法。
<37>前記<36>項記載のタンパク質をコードする遺伝子。
<38>前記<1>〜<35>のいずれか1項で規定した、前記DNA(a)又は(b)からなる遺伝子。
<39>前記<37>又は<38>項記載の遺伝子を含有する、組換えベクター。
<41>長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質の生産性が、宿主と比較して向上している、前記<40>項記載の形質転換体。
<42>前記<37>若しくは<38>項記載の遺伝子、又は前記<39>項記載の組換えベクターを宿主に導入してなる、形質転換体。
<43>前記<37>若しくは<38>項記載の遺伝子、又は前記<39>項記載の組換えベクターを宿主に導入する、形質転換体の作製方法。
<44>TEをコードする遺伝子の発現を促進させた、前記<40>〜<43>のいずれか1項記載の形質転換体又はその作製方法。
<45>デサチュラーゼをコードする遺伝子の発現を促進させた、前記<40>〜<44>のいずれか1項記載の形質転換体又はその作製方法。
<46>デサチュラーゼをコードする遺伝子を形質転換体に導入した、前記<40>〜<45>のいずれか1項記載の形質転換体又はその作製方法。
<47>前記デサチュラーゼが、Δ12-DES、Δ6-DES、ω3-DES、Δ5-DES、及びΔ9-DESからなる群より選ばれる少なくとも1つのデサチュラーゼである、前記<45>又は<46>項記載の形質転換体又はその作製方法。
<48>前記デサチュラーゼ、又はデサチュラーゼをコードする遺伝子が、前記<19>〜<28>項のいずれか1項で規定したデサチュラーゼ、又はデサチュラーゼをコードする遺伝子、である、前記<45>〜<47>のいずれか1項記載の形質転換体又はその作製方法。
<49>エロンガーゼをコードする遺伝子の発現を促進させた、前記<40>〜<48>のいずれか1項記載の形質転換体又はその作製方法。
<50>前記形質転換体又は宿主が微生物又は植物である、前記<40>〜<49>のいずれか1項記載の形質転換体又はその作製方法。
<51>前記微生物が微細藻類、好ましくはナンノクロロプシス属に属する藻類、より好ましくはナンノクロロプシス・オキュラータ、である、前記<50>項記載の形質転換体又はその作製方法。
<52>前記微生物が大腸菌である、前記<50>項記載の形質転換体又はその作製方法。
<53>前記植物がシロイヌナズナである、前記<50>項記載の形質転換体又はその作製方法。
<55>前記脂質が、長鎖脂肪酸又はそのエステル化合物、好ましくは炭素原子数18以上の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18〜22の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18〜20の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18若しくは20の不飽和脂肪酸又はそのエステル化合物、より好ましくはC18:1、C18:2、C18:3、C20:4若しくはC20:5、又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数18若しくは20のPUFA又はそのエステル化合物、より好ましくは炭素原子数20のPUFA又はそのエステル化合物、より好ましくはC20:4若しくはC20:5又はそのエステル化合物、よりさらに好ましくはEPA又はそのエステル化合物、を含む、前記<54>項記載の使用。
<56>前記長鎖脂肪酸が長鎖多価不飽和脂肪酸である、前記<55>項記載の使用。
(1)ゼオシン耐性遺伝子発現用プラスミドの構築
ゼオシン耐性遺伝子(配列番号3)、及び文献(Randor Radakovits,et al.,Nature Communications,DOI:10.1038/ncomms1688,2012)に記載されている、ナンノクロロプシス・ガディタナCCMP526株由来のチューブリンプロモーター配列(配列番号4)を人工合成した。
合成したDNA断片を鋳型として、表1に示すプライマー番号8及びプライマー番号9のプライマー対、並びにプライマー番号10及びプライマー番号11のプライマー対をそれぞれ用いてPCRを行い、ゼオシン耐性遺伝子及びチューブリンプロモーター配列をそれぞれ増幅した。
また、ナンノクロロプシス・オキュラータNIES2145株のゲノムを鋳型として、表1に示すプライマー番号12及びプライマー番号13のプライマー対を用いてPCRを行い、ヒートショックプロテインターミネーター配列(配列番号5)を増幅した。
さらに、プラスミドベクターpUC19(タカラバイオ社製)を鋳型として、表1に示すプライマー番号14及びプライマー番号15のプライマー対を用いたPCRを行い、プラスミドベクターpUC19を増幅した。
なお、本発現プラスミドは、チューブリンプロモーター配列、ゼオシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列の順に連結したインサート配列と、pUC19ベクター配列からなる。
ナンノクロロプシス・オキュラータNIES2145株(独立行政法人国立環境研究所(NIES)より入手)の全RNAを抽出し、SuperScript(商標)III First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR(invitrogen社製)を用いて逆転写を行ってcDNAを得た。このcDNAを鋳型として、表1に示すプライマー番号16及びプライマー番号17のプライマー対を用いたPCRにより、配列番号2に示す塩基配列からなる遺伝子断片を取得した。
また、ナンノクロロプシス・オキュラータNIES2145株のゲノムを鋳型として、表1に示すプライマー番号18及びプライマー番号19のプライマー対、並びにプライマー番号20及びプライマー番号21のプライマー対をそれぞれ用いたPCRを行い、LDSPのプロモーター配列(配列番号6)及びVCP1(violaxanthin/chlorophyll a-binding protein 1)のターミネーター配列(配列番号7)を取得した。
さらに、前述のゼオシン耐性遺伝子発現用プラスミドを鋳型として、表1に示すプライマー番号22及びプライマー番号15のプライマー対を用いたPCRを行い、ゼオシン耐性遺伝子発現カセット(チューブリンプロモーター配列、ゼオシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列)及びpUC19ベクター配列からなる断片を増幅した。
なお、本発現プラスミドは、LDSPプロモーター配列、NoKASII遺伝子、VCP1ターミネーター配列、チューブリンプロモーター配列、ゼオシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列の順で連結したインサート配列と、pUC19ベクター配列からなる。
前記NoKASII遺伝子発現用プラスミドを鋳型として、表1に示すプライマー番号13及びプライマー番号18のプライマー対を用いたPCRを行い、NoKASII遺伝子発現カセット(LDSPプロモーター配列、NoKASII遺伝子、VCP1ターミネーター配列、チューブリンプロモーター配列、ゼオシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列からなるDNA断片)を増幅した。
増幅したDNA断片を、High Pure PCR Product Purification Kit(Roche Applied Science社製)を用いて精製した。なお、精製の際の溶出には、キットに含まれる溶出バッファーではなく、滅菌水を用いた。
f/2液体培地(NaNO3 75mg、NaH2PO4・2H2O 6mg、ビタミンB12 0.5μg、ビオチン 0.5μg、チアミン 100μg、Na2SiO3・9H2O 10mg、Na2EDTA・2H2O 4.4mg、FeCl3・6H2O 3.16mg、FeCl3・6H2O 12μg、ZnSO4・7H2O 21μg、MnCl2・4H2O 180μg、CuSO4・5H2O 7μg、Na2MoO4・2H2O 7μg/人工海水1L)にて1日間回復培養を行った。その後に、2μg/mLのゼオシン含有f/2寒天培地に塗布し、25℃、0.3%CO2雰囲気下、12h/12h明暗条件にて3週間培養した。得られたコロニーの中から、NoKASII遺伝子発現カセットを含むナンノクロロプシス・オキュラータ株をPCR法により選抜した(独立した2ラインを取得)。
選抜した株を、f/2培地の窒素濃度を15倍、リン濃度を5倍に増強した培地(以下、「N15P5培地」という)20mLに播種し、25℃、0.3%CO2雰囲気下、12h/12h明暗条件にて4週間振盪培養し、前培養液とした。前培養液2mLを、N15P5培地18mLに植継ぎ、25℃、0.3%CO2雰囲気下、12h/12h明暗条件にて3週間振盪培養した。なお、陰性対照として、野生株であるナンノクロロプシス・オキュラータNIES2145株についても同様に実験を行った。
得られたクロロホルム層に窒素ガスを吹き付けて乾固し、14%三フッ化ホウ素−メタノール溶液(SIGMA社製)1mLを添加し、80℃にて30分間恒温した。その後、ヘキサン0.5mL、飽和食塩水1mLを添加して激しく撹拌し、室温にて10分間放置し、上層であるヘキサン層を回収して脂肪酸メチルエステルを得た。
<ガスクロマトグラフィー条件>
分析装置:7890A(Agilent technology社製)
キャピラリーカラム:DB-WAX(10m×100μm×0.10μm、J&W Scientific社製)
移動相:高純度ヘリウム
オーブン温度:100℃ 保持0.5分→100〜250℃(20℃/min昇温)→250℃保持3分(ポストラン:1分)
注入口温度:300℃
注入方法:スプリット注入(スプリット比:50:1)
注入量:5μL
洗浄バイアル:メタノール
検出方法:FID
検出器温度:350℃
ガスクロマトグラフィー解析により得られた波形データのピーク面積より、各脂肪酸のメチルエステル量を定量した。各ピーク面積を、内部標準である7-ペンタデカノンのピーク面積と比較することで試料間の補正を行い、培養液1Lあたりの各脂肪酸量を算出した。さらに、各脂肪酸量の総和を総脂肪酸量とし、総脂肪酸量に占める各脂肪酸量の割合を算出した。
その結果(各脂肪酸量の割合、及びC20:5生産量)を表2に示す。なお、以下の表において、「脂肪酸組成(%TFA)」は総脂肪酸の重量に対する各脂肪酸量の割合(重量パーセント)を示す。
また、C20:5生産量の結果から、NoKASII_line1、NoKASII_line2のいずれの株においても、野生株と比較してEPAの生産性が向上していた。
前述の培養液1mLに、クロロホルム0.5mL、及びメタノール1mLを添加して激しく攪拌し、10分間放置した。その後さらに、クロロホルム0.5mL及び1.5%KCl 0.5mLを添加して攪拌し、3,000rpmにて5分間間遠心分離を行い、パスツールピペットにてクロロホルム層(下層)を回収した。得られたクロロホルム層に窒素ガスを吹き付けて乾固し、クロロホルム20μLに溶解した。
このようにして得られた脂質抽出液全量、及び3種類の標準溶液{トリミリスチン(和光純薬工業社製)、ジオレイン酸グリセロール(和光純薬工業社製)、オレイン酸(和光純薬工業社製)、10mg/mLクロロホルム溶液}3μLをそれぞれTLCプレートシリカゲル60F254(メルク社製)上にスポットし、TLC展開槽DT-150(三菱化学メディエンス社製)を用い、展開溶媒(ヘキサン:ジエチルエーテル:ギ酸=42:28:0.3(体積比))で約15分展開した。展開後プレートを乾燥させ、メタノールに溶解させた0.1%プリムリン(和光純薬工業社製)を噴霧して乾燥させた後、ハンデイ型UVランプUVL-21(相互理化学硝子製作所社製)でTAG画分を検出した。
前述の方法と同様の方法にて、得られた脂肪酸メチルエステルをガスクロマトグラフィー解析に供した。その結果を脂肪酸組成として表3に示す。
さらに、ナンノクロロプシス・オキュラータは生育期にEPAを生産するものの、油脂蓄積期ではEPAは生産されない。よって、蓄積脂質であるTAG中には、EPAは約4%程度しか存在しないことが知られている。これに対して、NoKASII遺伝子を強制的に発現させた形質転換体ではTAG中にもEPAが多く取り込まれ、EPAの含有率が最大で19.5%にまで達した。
(1)デサチュラーゼ遺伝子の取得、及びデサチュラーゼ遺伝子発現用プラスミド(ゼオシン耐性)の構築
実施例1で取得したナンノクロロプシス・オキュラータNIES2145株のcDNAを鋳型として、表1に示すプライマー番号52及びプライマー番号53のプライマー対、並びにプライマー番号54及びプライマー番号55のプライマー対、をそれぞれ用いたPCRを行い、配列番号33に示す塩基配列からなる遺伝子断片、及び配列番号41に示す塩基配列からなる遺伝子断片、をそれぞれ取得した。
得られた増幅断片を、実施例1と同様の方法で、LDSPプロモーター配列、VCP1ターミネーター配列、及びゼオシン耐性遺伝子発現カセットと融合し、NoΔ12-DES遺伝子発現用プラスミド及びNoω3-DES遺伝子発現用プラスミドをそれぞれ構築した。なお、本発現プラスミドは、LDSPプロモーター配列、各デサチュラーゼ遺伝子、VCP1ターミネーター配列、チューブリンプロモーター配列、ゼオシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列の順で連結したインサート配列と、pUC19ベクター配列からなる。
人工合成したパロモマイシン耐性遺伝子(配列番号56)を鋳型として、表1に示すプライマー番号57及びプライマー番号58のプライマー対を用いてPCRを行い、パロモマイシン耐性遺伝子断片を増幅した。
また、前記NoΔ12-DES遺伝子発現用プラスミド及びNoω3-DES遺伝子発現用プラスミドをそれぞれ鋳型として、表4に示すプライマー番号59及びプライマー番号60のプライマー対を用いたPCRを行った。得られた増幅断片をそれぞれパロモマイシン耐性遺伝子断片と融合し、NoΔ12-DES遺伝子発現用プラスミド(パロモマイシン耐性)及びNoω3-DES遺伝子発現用プラスミド(パロモマイシン耐性)をそれぞれ構築した。なお、本発現用プラスミドは、LDSPプロモーター配列、各デサチュラーゼ遺伝子、VCP1ターミネーター配列、チューブリンプロモーター配列、パロモマイシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列の順で連結したインサート配列と、pUC19ベクター配列からなる。
前記NoΔ12-DES遺伝子発現用プラスミド(パロモマイシン耐性)及びNoω3-DES遺伝子発現用プラスミド(パロモマイシン耐性)をそれぞれ鋳型として、表1に示すプライマー番号13及びプライマー番号18のプライマー対を用いたPCRを行い、デサチュラーゼ遺伝子発現カセット(LDSPプロモーター配列、各デサチュラーゼ遺伝子、VCP1ターミネーター配列、チューブリンプロモーター配列、パロモマイシン耐性遺伝子、ヒートショックプロテインターミネーター配列からなるDNA断片)を増幅した。
増幅したDNA断片を、実施例1と同様の方法でそれぞれ精製し、実施例1で作製した形質転換体NoKASII_line2(以降、「NoKASII遺伝子導入株」ともいう)に、精製した断片をエレクトロポレーションによりそれぞれ導入した。
実施例1と同様の方法にて回復培養を行った後、2μg/mLゼオシン及び100μg/mLパロモマイシン含有f/2寒天培地に塗布し、25℃、0.3%CO2雰囲気下、12h/12h明暗条件にて2〜3週間培養した。得られたコロニーの中から、各種デサチュラーゼ遺伝子発現カセットを含むナンノクロロプシス・オキュラータ株を選抜した。
選抜した株を、N15P5培地20mLに播種し、25℃、0.3%CO2雰囲気下、12h/12h明暗条件にて3〜4週間振盪培養し、前培養液とした。前培養液2mLをf/2培地の窒素濃度を5倍、リン濃度を5倍に増強した培地(以下、「N5P5培地」という)18mLに植継ぎ、25℃、0.3%CO2雰囲気下、12h/12h明暗条件にて10日間振盪培養した。なお、陰性対照として、野生株及びNoKASII遺伝子導入株についても同様の実験を行った。
得られた培養液について、実施例1と同様の方法にて脂質の抽出及び構成脂肪酸の分析を行った。その結果を表4に示す。
Claims (13)
- 下記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子の発現を促進させた、微細藻類又は大腸菌の形質転換体を培養し、脂肪酸、又はそのエステル化合物を構成する脂肪酸エステルの総量に占める、長鎖脂肪酸又はそのエステル化合物量の比率を向上させる方法。
(A)配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
(B)前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が90%以上のアミノ酸配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性を有するタンパク質。 - 前記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子を微細藻類又は大腸菌に導入して前記遺伝子の発現を促進させる、請求項1に記載の方法。
- 下記タンパク質(A)又は(B)をコードする遺伝子を導入した、微細藻類又は大腸菌の形質転換体を培養し、炭素原子数が20の長鎖脂肪酸又はこれを構成成分とする脂質を生産させる、脂質の製造方法。
(A)配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
(B)前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が90%以上のアミノ酸配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性を有するタンパク質。 - 前記脂質がトリアシルグリセロールである、請求項3に記載の方法。
- 前記長鎖脂肪酸が長鎖多価不飽和脂肪酸である、請求項1〜4のいずれか1記載の方法。
- デサチュラーゼをコードする遺伝子を前記形質転換体に導入した、請求項1〜5のいずれか1項記載の方法。
- 前記タンパク質(B)が、前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が92%以上のアミノ酸配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性を有するタンパク質である、請求項1〜6のいずれか1項記載の方法。
- 前記微細藻類がナンノクロロプシス(Nannochloropsis)属に属する藻類である、請求項1〜7のいずれか1項記載の方法。
- 下記タンパク質(A)若しくは(B)をコードする遺伝子、又は下記DNA(a)若しくは(b)からなる遺伝子を、微細藻類若しくは大腸菌に導入してなる、形質転換体。
(A)配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
(B)前記タンパク質(A)のアミノ酸配列と同一性が92%以上のアミノ酸配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性を有するタンパク質。
(a)配列番号2で表される塩基配列からなるDNA。
(b)前記DNA(a)の塩基配列と同一性が85%以上の塩基配列からなり、かつβ−ケトアシル−ACPシンターゼ活性を有する前記タンパク質(A)又は(B)をコードするDNA。 - デサチュラーゼをコードする遺伝子を導入した、請求項9記載の形質転換体。
- 前記微細藻類がナンノクロロプシス(Nannochloropsis)属に属する藻類である、請求項9又は10記載の形質転換体。
- 前記遺伝子の導入により、生産される、脂肪酸、及びそのエステル化合物を構成する脂肪酸エステルの総量に占める、長鎖脂肪酸又はそのエステル化合物量の比率が向上している、請求項9〜11のいずれか1項記載の形質転換体。
- 請求項3〜8のいずれか1項記載の脂質の製造方法に用いるための、請求項9〜12のいずれか1項記載の形質転換体。
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