JP6782252B2 - Gm3促進炎症抑制剤及び炎症性サイトカイン産生抑制剤 - Google Patents
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Description
しかしながら、この報告は、分画されていないヒト末梢血単核球を用いた実験に基づいており、自然免疫系細胞又はリンパ系細胞の何れの寄与によるものかは全く明らかではないため、ガングリオシドと免疫系の相互作用とその影響の程度について正確に規定することが難しい。
しかしながら、この報告で用いられた実験系は、主にTLR4の内在化を測定するフローサイトメトリー解析に終始しており、実際のTLR4シグナル伝達の活性化を直接反映したものではない。一部のガングリオシドについては、TLR4活性化によって産生されるTumor Necrosis Factor-alpha(TNF−α)のmRNAの増加が示されているが、RT−PCR法によって微弱な増加を非定量的解析によって捉えた結果に終始しており、ミクログリア活性化を実際に証明するTNF−αの分泌を示すデータは確認されていない。
その結果、GM3は、「LPS(lipopolysaccharide;リポ多糖)によるマクロファージの活性化が惹起する炎症反応」を促進することを初めて見出し、そして、糖鎖部分に関し特定の糖鎖構造を有するGD3、GD1a、GD1b、GT1b、GQ1b等は、「GM3依存性のマクロファージ活性化」に拮抗する抗炎症作用を有することも見出した。
[1]GM3により促進された炎症を抑制する物質を有効成分として含有することを特徴とするGM3促進炎症抑制剤。
R2−C(=O)−が、炭素数18以下の脂肪酸残基、又は炭素数20以上の不飽和脂肪酸残基を示す。]
本発明のGM3促進炎症抑制剤は、GM3により促進された炎症を抑制する物質を有効成分として含有することを特徴とする。GM3による強力な炎症惹起作用は、これまで明らかになっていなかったので、「『GM3により促進された炎症』を抑制する剤」は、本発明において初めて見出された。
本明細書において、「GM3」とは、「ガングリオシドGM3」のことをいい、ヒトの場合には、スフィンゴ糖脂質の糖鎖が、下記「 」内であるものをいう。
「α−Neu5Ac−(2−3)β−Gal−(1−4)−β−Glc−(1−1)−セラミド」
ここで、「α−Neu5Ac」は、N−アセチル−α−ノイラミン酸;「β−Gal」は、β−ガラクトース;「β−Glc」は、β−グルコースを示す。
また、「置換基としてOH基を有していてもよい、脂肪酸残基が炭素数24の飽和脂肪酸残基であるGM3」で上記炎症は促進されるので、上記「GM3により促進された炎症」とは、「置換基としてOH基を有していてもよい、脂肪酸残基が炭素数24の飽和脂肪酸残基であるGM3により促進された炎症」であることがより好ましい(炎症を促進するGM3が括弧「 」内に特定される場合がある)。
また、該GM3により促進された炎症を抑制する物質は、天然物から単離・精製されたものでもよく、合成されたものであってもよい。該「合成されたもの」には、自然界に存在する物質(の誘導体)の合成物、自然界に存在が確認されていない物質の合成物が含まれる。
また、該GM3により促進された炎症を抑制する物質は、前記スフィンゴ糖脂質と同様の効果を有する、前記スフィンゴ糖脂質の誘導体であってもよい。
これらから選ばれる1種を単独で又は2種以上を組み合わせて使用することができる。
R2−C(=O)−が、炭素数18以下の脂肪酸残基、又は炭素数20以上の不飽和脂肪酸残基を示す。]
また、同様の点から、該脂肪酸残基の炭素数が16又は18であるGM3、又は、該不飽和脂肪酸残基の炭素数が24であり、該不飽和脂肪酸残基の炭化水素基中に1つの二重結合を有するGM3であることが好ましい。
かかる担体としては、特に制限はなく、例えば、後述する剤型等に応じて適宜選択することができる。また、前記GM3促進炎症抑制剤中の前記「その他の成分」の含有量としても、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
具体的には、例えば、経口固形剤(錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等)、経口液剤(内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤等)、注射剤(溶剤、懸濁剤等)、軟膏剤、貼付剤、ゲル剤、クリーム剤、外用散剤、スプレー剤、吸入散布剤等が挙げられる。
前記賦形剤としては、例えば、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、微結晶セルロース、珪酸等が挙げられる。
前記結合剤としては、例えば、水、エタノール、プロパノール、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン液、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、エチルセルロース、シェラック、リン酸カルシウム、ポリビニルピロリドン等が挙げられる。
前記崩壊剤としては、例えば、乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、乳糖等が挙げられる。
前記滑沢剤としては、例えば、精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコール等が挙げられる。
前記着色剤としては、例えば、酸化チタン、酸化鉄等が挙げられる。
前記矯味・矯臭剤としては、例えば、白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。
前記矯味・矯臭剤としては、例えば、白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。前記緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム等が挙げられる。前記安定化剤としては、例えば、トラガント、アラビアゴム、ゼラチン等が挙げられる。
前記pH調節剤及び前記緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウム等が挙げられる。前記安定化剤としては、例えば、ピロ亜硫酸ナトリウム、EDTA、チオグリコール酸、チオ乳酸等が挙げられる。前記等張化剤としては、例えば、塩化ナトリウム、ブドウ糖等が挙げられる。前記局所麻酔剤としては、例えば、塩酸プロカイン、塩酸リドカイン等が挙げられる。
また、前記GM3促進炎症抑制剤の投与量としては、特に制限はなく、投与対象である個体の年齢、体重、所望の効果の程度等に応じて適宜選択することができるが、例えば、成人への1日の投与量は、有効成分の量として、1mg〜30gが好ましく、10mg〜10gがより好ましく、100mg〜3gが特に好ましい。
また、前記GM3促進炎症抑制剤の投与時期としても、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、予防的に投与されてもよいし、治療的に投与されてもよい。
本発明の炎症性サイトカイン産生抑制剤は、GM3により促進された炎症性サイトカインの産生を抑制する物質を有効成分として含有することを特徴とする。
これらから選ばれる1種を単独で又は2種以上を組み合わせて使用することができる。
R2−C(=O)−が、炭素数18以下の脂肪酸残基、又は炭素数20以上の不飽和脂肪酸残基を示す。]
また、同様の点から、該脂肪酸残基の炭素数が16又は18であるGM3、又は、該不飽和脂肪酸残基の炭素数が24であり、該不飽和脂肪酸残基の炭化水素基中に1つの二重結合を有するGM3であることが好ましい。
また、その剤型も特に制限はなく、例えば、前述するような所望の投与方法に応じて適宜選択することができる。
本発明の他の態様は「炎症を抑制又は治療する方法」に係るものである。本発明の炎症を抑制又は治療する方法は、GM3により促進された炎症を抑制又は治療する方法であって、セラミドに「シアル酸を2個以上有する糖鎖」がグリコシド結合したスフィンゴ糖脂質を投与することによって、該スフィンゴ糖脂質の血中濃度を上昇させる工程を含むことを特徴とする。
また、前記スフィンゴ糖脂質と同様の効果を有すれば、前記スフィンゴ糖脂質の誘導体を投与してもよい。
これらから選ばれる1種を単独で又は2種以上を組み合わせて使用することができる。
また、前記式(1)で表される構造を有するガングリオシド同様の効果を有すれば、前記式(1)で表される構造を有するガングリオシドの誘導体を投与してもよい。
R2−C(=O)−が、炭素数18以下の脂肪酸残基、又は炭素数20以上の不飽和脂肪酸残基を示す。]
また、同様の点から、該脂肪酸残基の炭素数が16又は18であるGM3、又は、該不飽和脂肪酸残基の炭素数が24であり、該不飽和脂肪酸残基の炭化水素基中に1つの二重結合を有するGM3であることが好ましい。
上記スフィンゴ糖脂質(ガングリオシド、又はGM3促進炎症抑制剤)の投与量は、症状、年齢、性別、剤形、投与方法、1日の投与回数等を考慮して適宜選択すればよい。
[GM3以外の血清ガングリオシドの炎症抑制作用]
非特許文献3の報告に基づくヒト血清中のガングリオシド組成を表1に示す。ヒト血清中には主にGM3が含まれており、続いてGD3、GM2、GD1a、GD1b、GT1b、「GQ1b以上の複合ガングリオシド」の順で含まれている。
上記これらのガングリオシド組成を模した血清ガングリオシドミミックを用いて、培地中血清を除去・低減したマクロファージ様培養細胞株:RAW264.7細胞(0.5%ウシ胎児由来血清)を処理した。そして、TLR4リガンド(LPS)刺激による実際のTNF−α産生に対する影響を検討した。
0.5%ウシ胎児血清含有DMEM中で一晩培養したRAW264.7細胞に対して、0.5ng/mLのLPS(lipopolysaccharide;リポ多糖)と血清ガングリオシド組成を模した濃度のガングリオシド(血清ガングリオシドミミック)で共刺激を行い、18時間後の培養上清中のTNF−αをELISA法によって定量した。
血清ガングリオシドミミック処理によって、LPSによるマクロファージからのTNF−α産生は、ほぼ完全に抑制されることが分かった。この結果は、血清中のガングリオシド組成は、循環血液中におけるマクロファージ系細胞(主に単球等)の不用意な活性化を抑制するためのものであることを示唆している。
0.5%ウシ胎児血清含有DMEM中で一晩培養したRAW264.7細胞に対して、LPS(0.5ng/mL)と各スフィンゴ糖脂質(1.0μM)で共刺激を行い、18時間後の培養上清中のTNF−αをELISA法によって定量した。
驚くべきことに、GM3単独による処理は、LPSによるTNF−α産生を著しく増大させることが分かった。
その一方で、GM3以外の血清ガングリオシド分子種は、LPSによるTNF−α産生を強力に抑制する作用を示した。LacCerとGM1は、LPSのみを添加した結果と同等のTNF−αであった。
シアル酸を2個以上有する、GD1a、GD1b、GT1b、GQ1b及びGD3は、LPSによるTNF−α産生を強力に抑制していた。特に、GD1b、GT1b及びGQ1bは著しく強力にLPSによるTNF−α産生を抑制していた。
また、以上の結果は、健常人の循環血液中では、GM3及びGD3、GD1a、GD1b、GT1b、GQ1bが共存することで、血中におけるマクロファージの好ましくない炎症反応が抑制されていることを強く示唆した。
[RAW264.7細胞における各種ガングリオシドの炎症抑制作用]
次に、LPS及びGM3によって誘導される炎症性サイトカインの産生に対する、複合型ガングリオシド分子種による抑制作用における濃度依存性を検討した。上記に示したように、マウスマクロファージ様RAW264.7細胞は、大腸菌由来成分であるLPS及び肥満時に発現上昇するGM3に対して多量のTNF−αを産生する。
0.5%ウシ胎児血清含有DMEM中で一晩培養したRAW264.7細胞に対して、LPS(2.0ng/mL)と各スフィンゴ糖脂質(0.25〜2.0μM)で共刺激を行い、18時間後の培養上清中のTNF−αをELISA法によって定量した。
LPSにより促進された炎症が、各ガングリオシド(GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1b)を添加することにより、濃度依存的に抑制されることが分かった。
0.5%ウシ胎児血清含有DMEM中で一晩培養したRAW264.7細胞に対して、各スフィンゴ糖脂質(0.25〜1.0μM)、LPS(0.5ng/mL)、GM3(5.0μM)で共刺激を行い、18時間後の培養上清中のTNF−αをELISA法によって定量した。
GM3及びLPSによる相乗的なTNF−αの産生増加(炎症促進)が、各ガングリオシド(GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1b)を添加することにより、濃度依存的に抑制されることが分かった。
各複合型ガングリオシドの抑制効果を比較した結果、LPS刺激に対する各ガングリオシドの50%阻害濃度は、GD1a:0.5μM、GD1b:0.5μM、GT1b:0.5μM、GQ1b:0.25μMであるのに対し(図4)、LPSとGM3の協調的活性化に対する50%阻害濃度は、GD1a:0.5μM、GD1b:0.5μM、GT1b:0.25μM、GQ1b:0.125μMであった(図5)。これらのシアル酸を2個以上その分子内に有するガングリオシド分子は、LPSとGM3による協調的活性化に対しての抑制作用が大きいことが分かった。
[マウス骨髄由来マクロファージにおける各種ガングリオシドの炎症抑制作用]
次に、骨髄由来マクロファージにおけるLPS依存的なTNF−α産生に対する血清中の抑制性ガングリオシドによる抑制作用について検討した。
C57/BL6マウスの大腿骨および脛骨より採取した骨髄由来細胞に対し、20ng/mLの組み換えマクロファージコロニー刺激因子(recombinant macrophage colony-stimulating factor(M−CSF))を用いて1週間分化誘導した。得られた骨髄由来マクロファージ(BMDM、bone marrow-derived macrophage)を、0.5%ウシ胎児血清含有DMEM中で一晩培養したのち、LPS(0.5ng/mL)と各スフィンゴ糖脂質(10μM)で共刺激を行い、18時間後の培養上清中のTNF−αをELISA法によって定量した。
骨髄由来マクロファージにおけるLPS依存的なTNF−α産生(炎症促進)が、各ガングリオシド(GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1b)を添加することにより抑制されることが分かった。
C57/BL6マウスの大腿骨および脛骨より採取した骨髄由来細胞に対し、20ng/mLの組み換えマクロファージコロニー刺激因子(recombinant macrophage colony-stimulating factor(M−CSF))を用いて1週間分化誘導して得た骨髄由来マウロファージ(BMDM)を、0.5%ウシ胎児血清含有DMEM中で一晩培養したのち、LPS(0.5ng/mL)、GM3(10μM)、各スフィンゴ糖脂質(10μM)で共刺激を行い、18時間後の培養上清中のTNF−αをELISA法によって定量した。
骨髄由来マクロファージにおける「LPS及びGM3による協調的なTNF−α産生(炎症促進)」が、各ガングリオシド(GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1b)を添加することにより強力に抑制されることが分かった(図7)。
また、図6と図7を比較すると、各ガングリオシド(GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1b)による炎症抑制効果は、肥満時等に発現上昇するGM3によって惹起されたマクロファージ活性化に対して、より強力に奏されることが示唆された。
[GM3促進炎症抑制剤の製剤化]
<<錠剤>>
GD1b20.0mg、ラクトース40mg、デンプン20mg、及び、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース5mgを均一に混合した後、ヒドロキシプロピルメチルセルロース8質量%水溶液を結合剤として湿式造粒法で打錠用顆粒を製造した。該打錠用顆粒に滑沢性を与えるのに必要なステアリン酸マグネシウムを0.5mg〜1.5mg加えてから打錠機を用いて打錠し錠剤とした。
GT1b10.0mgを、2質量%の2−ヒドロキシプロピル−β−サイクロデキストリン水溶液10mLに溶解し注射用液剤とした。
[ヒトにおける各種ガングリオシドの炎症亢進又は抑制作用]
ヒト末梢血由来単球(CD14陽性細胞)を、0.5%FCS及び25ng/mL顆粒球・マクロファージコロニー刺激因子含有DMEM(Low Glucose)中、0.125ng/mL大腸菌由来リポ多糖(LPS、E.coliO111:B4)、及び、1.25、2.5、5.0μMのN−mix(中性スフィンゴ糖脂質混合物(Glc−Cer、Lac−Cer、Gb3、Gb4))又は各ガングリオシド分子種を用いて共刺激した。18時間後にELISA法を用いて、培養上清中に分泌された炎症性サイトカイン(IL−6、IL−1β、TNF−α)を定量した。結果を図8〜10に示す。
各GM3種の構造について、例えば「GM3C16」の場合、GM3の脂肪酸が炭素数16の炭化水素基であることを示す。また、「GM3hC24」は、GM3の脂肪酸が炭素数24の炭化水素基であり、該脂肪酸に置換基としてOH基を有することを示す。また、「GM3C24:1」は、GM3の脂肪酸が炭素数24の炭化水素基であり、該炭化水素基中に1つの二重結合を有することを示す。
一方、GM3分子種のうち、脂肪酸にOH基を有さず、炭化水素基中に二重結合を有さない、「GM3C22」、「GM3C24」、及び脂肪酸にOH基を有する「GM3hC24」は、LPSによるIL−6、IL−1β及びTNF−α産生を著しく増大させた。
[ヒトにおける、GM3C16、GM3C18及びGM3C24:1の炎症抑制作用]
次に、GM3分子種のうち、脂肪酸にOH基を有さず、炭化水素基中に二重結合を有さない、「GM3C22」及び「GM3C24」によって生じるTLR4選択的な炎症性サイトカイン産生の促進に対して、「GM3C16」、「GM3C18」及び、炭化水素基中に二重結合を有する「GM3C24:1」が拮抗的に炎症抑制作用を示すかどうかを、ヒト単球において調べた。
実施例5と同様の培養条件下、炎症を促進する「GM3C22」又は「GM3C24」に対して、炎症を抑制する「GM3C16」、「GM3C18」又は「GM3C24:1」を組み合わせて単球に添加し、さらにTLR4活性化因子である0.06ng/mLのLPSで刺激した。18時間後にELISA法を用いて、培養上清中に分泌された炎症性サイトカインIL−6を定量した。結果を図11に示す。
[GM3によるToll様受容体選択的な炎症促進および炎症抑制効果]
ヒト単球の活性化に伴う炎症は、ヒト単球上のToll様受容体(TLR)の活性化によって生じることが知られており、TLR4に対する活性化因子であるLPS以外にも、その他のTLRに対する様々な活性化因子が存在する。
そこで、実施例5と同様の培養条件下、TLR4活性化因子である0.125ng/mLのLPS、TLR4及びTLR2活性化因子である5.0μg/mLのHigh Mobility Group Box 1(HMGB1)、TLR1及びTLR2活性化因子である20ng/mLのPam3Csk4、TLR2及びTLR6活性化因子である1.0ng/mLのMALP−2、TLR5活性化因子である50ng/mLのフラジェリン(Flagellin)、並びにTLR7及びTLR8活性化因子である250ng/mLのR−848のいずれかと、5μMのGM3分子種を用いて、ヒト単球を刺激した。18時間後にELISA法を用いて、培養上清中に分泌された炎症性サイトカインIL−6を定量した。結果を図12A及びBに示す。
さらに、GM3分子種のうち、「GM3C16」、「GM3C18」及び「GM3C24:1」が、TLR4を活性化する因子であるLPSおよびHMGB1によるIL−6産生を抑制する作用を示した(図12A)。この抑制作用は、TLR2を活性化する因子であるPam3Csk4によるIL−6産生に対しても見られたが、TLR4を活性化する因子であるLPS及びHMGB1によるIL−6産生に対する抑制作用の方が、より顕著であった。
ヒト血清中のガングリオシド組成に注目すると、最も優勢なGM3(5μM)に対して、およそ0.5〜1.0μMのGD1a、GD1b、GT1bが含まれることが報告されている(表1)。このことから、GM3及び複合体ガングリオシドを含むヒト血液中では、LPSによる自然免疫細胞の活性化は、非常に強力な抑制を受けていると考えられる。
また、実施例で非常に強力にLPSによるTNF−α産生を抑制していた、GD1b、GT1b及びGQ1bは、哺乳動物において、GD3から生合成される点で共通している(図1)。
これらの結果から、GM3及びGM3構造をもとにした炎症抑制剤は、敗血症、慢性炎症及びメタボリックシンドローム等で生じるTLR4活性化や、GM3によって促進されたTLR4活性化を選択的かつ強力に抑制できるという特性をもつ。さらに、その他のTLRの活性化を阻害しにくいことから、これまでに知られている免疫抑制剤で顕著に見られるような、免疫系全体に対する抑制に伴う免疫不全等の副作用を生じにくいという、画期的な特性を併せ持つ。
「GM3C24」や「GM3hC24」は、TLR4/MD2複合体と直接又は間接に作用することにより、TLR4/MD2複合体の結合によるNF−κB活性化を亢進し、炎症性サイトカイン(IL−6、IL−1β、TNF−α)の産生を促進していると考えられる。
一方、「GM3C16」、「GM3C18」及び「GM3C24:1」は、TLR4/MD2複合体又は他のTLR(Toll-like receptor)と直接又は間接に作用することにより、NF−κB活性化を抑制し、炎症性サイトカイン(IL−6、IL−1β、TNF−α)の産生を抑制していると考えられる。
また、シアル酸を2個以上有するガングリオシド(GD1a、GD1b、GT1b、GQ1b、GD3等)は、シアル酸結合グロブリン様レクチンであるシグレック(Siglecs, sialic acid-binding immunoglobulin-like lectin)と直接又は間接に作用することにより、NF−κB活性化を抑制し、炎症性サイトカイン(IL−6、IL−1β、TNF−α)の産生を抑制していると考えられる。
Claims (6)
- 肥満時に発現上昇するGM3により促進された炎症性サイトカインの産生を抑制する物質を有効成分として含有する肥満時用炎症性サイトカイン産生抑制剤であって、該物質が、GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1bよりなる群から選ばれる少なくとも1種のガングリオシドであることを特徴とする肥満時用炎症性サイトカイン産生抑制剤。
- 肥満時における慢性炎症を促進するGM3が、脂肪酸残基が炭素数20以上の飽和脂肪酸残基であるGM3、又は、置換基としてOH基を有していてもよい、脂肪酸残基が炭素数24の飽和脂肪酸残基であるGM3である、請求項1又は請求項2に記載の肥満時用炎症性サイトカイン産生抑制剤。
- 肥満時に発現上昇するGM3により促進された肥満時における慢性炎症を抑制する物質を有効成分として含有するGM3促進肥満時慢性炎症抑制剤であって、該物質が、GD1a、GD1b、GT1b及びGQ1bよりなる群から選ばれる少なくとも1種のガングリオシドであることを特徴とするGM3促進肥満時慢性炎症抑制剤。
- 肥満時における慢性炎症を促進するGM3が、脂肪酸残基が炭素数20以上の飽和脂肪酸残基であるGM3、又は、置換基としてOH基を有していてもよい、脂肪酸残基が炭素数24の飽和脂肪酸残基であるGM3である、請求項1又は請求項2に記載のGM3促進肥満時慢性炎症抑制剤。
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