JP6726656B2 - クローディン6特異的免疫受容体およびt細胞エピトープ - Google Patents
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Description
抗原特異的免疫療法は、感染性疾患または悪性疾患を抑制するために患者における特異的免疫応答を増強するまたは誘導することを目指す。ますます多くの病原体関連抗原および腫瘍関連抗原(TAA)が同定されることにより、免疫療法の適切な標的が幅広く収集されるに至った。これらの抗原に由来する免疫原性ペプチド(エピトープ)を提示する細胞は、能動免疫または受動免疫戦略のいずれかによって特異的に標的とすることができる。
ACTに基づく免疫療法は、低い前駆体頻度から臨床的に適切な細胞数までエクスビボで増殖させた後に非免疫受容者または自己宿主に移入される、以前に感作されたT細胞での受動免疫の1つの形態であると広く定義することができる。ACT実験に使用されてきた細胞型は、リンホカイン活性化キラー(LAK)細胞(Mule,J.J.et al.(1984)Science 225,1487−1489;Rosenberg,S.A.et al.(1985)N.Engl.J.Med.313,1485−1492)、腫瘍浸潤リンパ球(TIL)(Rosenberg,S.A.et al.(1994)J.Natl.Cancer Inst.86,1159−1166)、造血幹細胞移植(HSCT)後のドナーリンパ球ならびに腫瘍特異的T細胞株またはクローン(Dudley,M.E.et al.(2001)J.Immunother.24,363−373;Yee,C.et al.(2002)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A 99,16168−16173)である。
ACTの限界を克服する1つのアプローチは、短期間のエクスビボ培養の間に定められた特異性を有する腫瘍反応性免疫受容体を発現するように再プログラム化し、患者への再注入する自己T細胞の養子移入である(Kershaw M.H.et al.(2013)Nature Reviews Cancer 13(8):525−41)。この戦略は、腫瘍反応性T細胞が患者に存在しない場合でも、ACTを様々な一般的悪性疾患に適用可能にする。T細胞の抗原特異性は全面的にTCR α鎖およびβ鎖のヘテロ二量体複合体に基づくので、クローン化されたTCR遺伝子のT細胞への移入は、対象とする任意の抗原へとそれらを再指向させる潜在的可能性を提供する。それゆえ、TCR遺伝子療法は、処置選択肢として自己リンパ球による抗原特異的免疫療法を開発するための魅力的な戦略を提供する。TCR遺伝子導入の主たる利点は、治療量の抗原特異的T細胞を数日以内に生成できることおよび患者の内因性TCRレパートリーには存在しない特異性を導入できることである。
キメラ抗原受容体(CAR)は、モノクローナル抗体の一本鎖可変フラグメント(scFv)を、T細胞活性化のための1つ以上のシグナル伝達ドメインから成る細胞内部分と組み合わせた、遺伝子操作された受容体である。CARはMHC非拘束的に天然抗原を認識し、それゆえどのようなHLA型であってもすべての個体で使用することができ、CD4+ならびにCD8+T細胞において機能性である。
多数の腫瘍関連抗原(TAA)の発見は、抗原特異的免疫療法という概念の根拠を提供した(Novellino,L.et al.(2005)Cancer Immunol.Immunother.54,187−207)。TAAは、その遺伝子不安定性に起因して腫瘍細胞上に発現される異常なタンパク質であり、正常細胞では全く発現しないかまたは発現が限られている。これらのTAAは、免疫系による悪性細胞の特異的認識をもたらすことができる。
(i)配列番号:6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択されるT細胞受容体α鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体α鎖、ならびに
(ii)配列番号:6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択されるT細胞受容体α鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体α鎖
から成る群より選択される。
(i)配列番号:7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27および29から成る群より選択されるT細胞受容体β鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体β鎖、ならびに
(ii)配列番号:7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27および29から成る群より選択されるT細胞受容体β鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体β鎖
から成る群より選択される。
(I)(i)配列番号:xのT細胞受容体α鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体α鎖、および
(ii)配列番号:x+1のT細胞受容体β鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体β鎖
[ここでxは、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択される]
を含むT細胞受容体、ならびに
(II)(i)配列番号:xのT細胞受容体α鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体α鎖、および
(ii)配列番号:x+1のT細胞受容体β鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体β鎖
[ここでxは、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択される]
を含むT細胞受容体
から成る群より選択されるT細胞受容体に関する。
NH2−シグナルペプチド−CLDN6に対する結合ドメイン−スペーサー領域−膜貫通ドメイン−T細胞シグナル伝達ドメイン−COOH
を含む。
(i)本発明のペプチド、
(ii)本発明の核酸、
(iii)本発明の細胞、
(iv)本発明の免疫反応性細胞、
(v)本発明の結合物質、
(vi)本発明のT細胞受容体、および
(vi)本発明の人工T細胞受容体
の1つ以上を含む医薬組成物に関する。
(a)被験体から単離したT細胞を含む試料を、
(i)本発明のペプチド、
(ii)本発明のペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む本発明の核酸、および
(iii)前記核酸を含む本発明の細胞または本発明のペプチドもしくはそのプロセシング産物を提示する本発明の細胞
の1つ以上と共にインキュベートする工程、ならびに
(b)T細胞の特異的活性化を検出し、そこから前記被験体における免疫応答の存在または不在を判定する工程
を含み得る。
(i)VHは配列番号:30によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:31によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
(ii)VHは配列番号:32によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:33によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
(iii)VHは配列番号:34によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:35によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
(iv)VHは配列番号:36によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:37によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
(v)VHは配列番号:32によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:31によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
(vi)VHは配列番号:32によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:38によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
(vii)VHは配列番号:32によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:39によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む。
VHは配列番号:32によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびVLは配列番号:39によって表されるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む。
以下、実施形態の例を付記する。
1. 配列番号:3、4および5から成る群より選択されるアミノ酸配列または前記アミノ酸配列の変異体を含むペプチド。
2. 100以下、50以下、20以下または10以下のアミノ酸長である、1.に記載のペプチド。
3. 配列番号:3、4および5から成る群より選択されるアミノ酸配列または前記アミノ酸配列の変異体から成る、1.または2.に記載のペプチド。
4. 1.から3.のいずれかに記載のペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む核酸。
5. 組換え核酸である、4.に記載の核酸。
6. 4.または5.に記載の核酸を含む細胞。
7. 1.から3.のいずれかに記載のペプチドまたはそのプロセシング産物を提示する細胞。
8. 1.から3.のいずれかに記載のペプチドと反応性である免疫反応性細胞。
9. 場合によりMHC分子との複合体中で、1.に記載のペプチドに結合する結合物質。
10. 場合によりMHC分子との複合体中で、1.に記載のペプチドに結合し、および好ましくは前記ペプチドと反応性であるT細胞受容体、または前記T細胞受容体のポリペプチド鎖。
11. T細胞受容体α鎖または前記T細胞受容体α鎖を含むT細胞受容体であって、ここで前記T細胞受容体α鎖が、
(i)配列番号:6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択されるT細胞受容体α鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体α鎖、ならびに
(ii)配列番号:6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択されるT細胞受容体α鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体α鎖
から成る群より選択される、T細胞受容体α鎖または前記T細胞受容体α鎖を含むT細胞受容体。
12. T細胞受容体β鎖または前記T細胞受容体β鎖を含むT細胞受容体であって、ここで前記T細胞受容体β鎖が、
(i)配列番号:7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27および29から成る群より選択されるT細胞受容体β鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体β鎖、ならびに
(ii)配列番号:7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27および29から成る群より選択されるT細胞受容体β鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体β鎖
から成る群より選択される、T細胞受容体β鎖または前記T細胞受容体β鎖を含むT細胞受容体。
13. (I)(i)配列番号:xのT細胞受容体α鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体α鎖、および
(ii)配列番号:x+1のT細胞受容体β鎖またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つ全部を含むT細胞受容体β鎖
[ここでxは、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択される]
を含むT細胞受容体、ならびに
(II)(i)配列番号:xのT細胞受容体α鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体α鎖、および
(ii)配列番号:x+1のT細胞受容体β鎖配列もしくはそのフラグメント、または前記配列もしくはフラグメントの変異体を含むT細胞受容体β鎖
[ここでxは、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択される]
を含むT細胞受容体
から成る群より選択されるT細胞受容体。
14. クローディン6(CLDN6)に結合する人工T細胞受容体。
15. CLDN6の細胞外ドメインに結合する、14.に記載の人工T細胞受容体。
16. 前記結合が特異的結合である、14.または15.に記載の人工T細胞受容体。
17. CLDN6に対する結合ドメインを含む、14.から16.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
18. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、前記人工T細胞受容体のエキソドメインに含まれる、17.に記載の人工T細胞受容体。
19. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、CLDN6抗体の一本鎖可変フラグメント(scFv)を含む、17.または18.に記載の人工T細胞受容体。
20. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、CLDN6に特異性を有する免疫グロブリンの重鎖の可変領域(VH)(VH(CLDN6))およびCLDN6に特異性を有する免疫グロブリンの軽鎖の可変領域(VL)(VL(CLDN6))を含む、17.から19.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
21. 前記重鎖可変領域(VH)と対応する軽鎖可変領域(VL)がペプチドリンカーによって、好ましくはアミノ酸配列(GGGGS)3を含むペプチドリンカーによって連結されている、20.に記載の人工T細胞受容体。
22. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:32によって表されるアミノ酸配列もしくはそのフラグメント、または前記アミノ酸配列もしくはフラグメントの変異体を含むVH(CLDN6)を含有する、17.から21.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
23. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:33、38もしくは39によって表されるアミノ酸配列もしくはそのフラグメント、または前記アミノ酸配列もしくはフラグメントの変異体を含むVL(CLDN6)を含有する、17.から22.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
24. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:32によって表されるアミノ酸配列もしくはそのフラグメント、または前記アミノ酸配列もしくはフラグメントの変異体を含むVH(CLDN6)および配列番号:39によって表されるアミノ酸配列もしくはそのフラグメント、または前記アミノ酸配列もしくはフラグメントの変異体を含むVL(CLDN6)を含有する、17.から23.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
25. 前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:40によって表されるアミノ酸配列もしくはそのフラグメント、または前記アミノ酸配列もしくはフラグメントの変異体を含む、17.から24.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
26. 膜貫通ドメインを含む、14.から25.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
27. T細胞シグナル伝達ドメインを含む、14.から26.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
28. 前記T細胞シグナル伝達ドメインが、場合によりCD28と組み合わせて、CD3−ζ、好ましくはCD3−ζのエンドドメインを含む、27.に記載の人工T細胞受容体。
29. 新生タンパク質を小胞体内に向かわせるシグナルペプチドを含む、14.から28.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
30. 前記CLDN6に対する結合ドメインを前記膜貫通ドメインに連結するスペーサー領域を含む、14.から29.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
31. 構造:
NH2−シグナルペプチド−CLDN6に対する結合ドメイン−スペーサー領域−膜貫通ドメイン−T細胞シグナル伝達ドメイン−COOH
を含む、14.から30.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
32. 配列番号:46に従うアミノ酸配列もしくはそのフラグメント、または前記アミノ酸配列もしくはフラグメントの変異体を含む、14.から31.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
33. 10.から13.のいずれかに記載のT細胞受容体鎖もしくはT細胞受容体をコードする、または14.から32.のいずれかに記載の人工T細胞受容体をコードするヌクレオチド配列を含む核酸。
34. 10.から13.のいずれかに記載のT細胞受容体鎖もしくはT細胞受容体または14.から32.のいずれかに記載の人工T細胞受容体を含む、および/または前記T細胞受容体鎖もしくはT細胞受容体をコードするまたは前記人工T細胞受容体をコードするヌクレオチド配列を含有する核酸を含む、細胞。
35. 33.に記載の核酸でT細胞を形質導入する工程を含む、免疫反応性細胞を作製する方法。
36. (i)1.から3.のいずれかに記載のペプチド、
(ii)4.、5.および33.のいずれかに記載の核酸、
(iii)6.、7.および35.のいずれかに記載の細胞、
(iv)8.に記載の免疫反応性細胞、
(v)9.に記載の結合物質、
(vi)10.から13.のいずれかに記載のT細胞受容体、ならびに
(vi)14.から32.のいずれかに記載の人工T細胞受容体
の1つ以上を含む医薬組成物。
37. 医薬的に許容される担体をさらに含む、36.に記載の医薬組成物。
38. 36.または37.に記載の医薬組成物を患者に投与することを含む、癌疾患を処置するまたは予防する方法。
39. 治療法における使用、特に癌を処置するまたは予防するうえでの使用のための、1.から3.のいずれかに記載のペプチド、4.、5.および33.のいずれかに記載の核酸、6.、7.および35.のいずれかに記載の細胞、8.に記載の免疫反応性細胞、9.に記載の結合物質、10.から13.のいずれかに記載のT細胞受容体、または14.から32.のいずれかに記載の人工T細胞受容体。
40. 被験体において免疫応答を誘導する方法であって、36.に記載の医薬組成物を前記被験体に投与することを含む方法。
41. T細胞を、1.から3.のいずれかに記載のペプチド、4.もしくは5.に記載の核酸および/または6.もしくは7.に記載の細胞の1つ以上と接触させることを含む、T細胞を刺激する、プライミングするおよび/または増殖させる方法。
42. 被験体において癌細胞を死滅させる方法であって、1.から3.のいずれかに記載のペプチド、4.、5.および33.のいずれかに記載の核酸、6.、7.および35.のいずれかに記載の細胞、8.に記載の免疫反応性細胞、9.に記載の結合物質、10.から13.のいずれかに記載のT細胞受容体、または14.から32.のいずれかに記載の人工T細胞受容体の治療有効量を前記被験体に提供する工程を含む方法。
43. 被験体における免疫応答を判定する方法であって、前記被験体から単離した生物学的試料中で1.から3.のいずれかに記載のペプチドと反応性のT細胞を測定することを含む方法。
実験材料および方法
細胞株および試薬
ヒト慢性骨髄性白血球細胞株K562(Lozzio,C.B.& Lozzio,B.B(1975),Blood 45,321−334)を標準的な条件下で培養した。HLA−A*0201で安定にトランスフェクトしたK562細胞(Britten,C.M.et al.(2002),J.Immunol.Methods 259,95−110)(例えばK562−A*0201と称される)を検証アッセイに使用した。初代ヒト新生児包皮線維芽細胞株CCD−1079Sk(ATCC No.CRL−2097)を製造者の指示に従って培養した。
PBMCをFicoll−Hypaque(Amersham Biosciences,Uppsala,Sweden)密度勾配遠心分離によってバフィーコートから単離した。HLAアレロタイプをPCR標準法によって決定した。単球を抗CD14マイクロビーズ(Miltenyi Biotech,Bergisch−Gladbach,Germany)で濃縮した。未熟DC(iDC)を、Kreiter et al.(2007),Cancer Immunol.Immunother.,CII,56,1577−87に記載されているようにサイトカイン添加培地中で単球を5日間分化させることによって得た。
クローディン6またはHIV−gagの配列に対応する11のアミノ酸オーバーラップを有するN末端およびC末端遊離15量体ペプチドのプール(抗原ペプチドプールと称する)を標準的な固相化学(JPT GmbH,Berlin,Germany)によって合成し、DMSOに溶解して、最終濃度を0.5mg/mlにした。9量体ペプチドをPBS 10%DMSOに再溶解した。刺激細胞をパルスするため、細胞を、種々のペプチド濃度を用いて培地中で37℃にて1時間インキュベートした。
すべての構築物は、以前に記述されているpST1−sec−insert−2βgUTR−A(120)−Sap1プラスミド(Holtkamp,S.et al.(2006),Blood 108,4009−4017)の変異体である。ヒトTCR鎖をコードするプラスミドを得るため、TCR−αまたはTCR−β1およびTCR−β2定常領域をコードするcDNAをヒトCD8+T細胞から増幅し、この骨格にクローニングした。マウスTCR鎖をコードするプラスミドの作製のために、TCR−α、TCR−β1およびTCR−β2定常領域をコードするcDNAを商業的供給者から調達し、同様にクローニングした(それぞれGenBankアクセッション番号M14506、M64239およびX67127)。特異的V(D)J PCR産物をそのようなカセットに導入し、完全長TCR鎖(pST1−ヒト/マウスTCRαβ−2βgUTR−A(120)と称する)を生成した。
IVT RNAの作製を、以前に記述されているように(Holtkamp,S.et al.(2006),Blood 108,4009−4017)実施し、予冷した4mmギャップの滅菌電気穿孔キュベット(Bio−Rad Laboratories GmbH,Munich,Germany)においてX−VIVO 15培地(Lonza,Basel,Switzerland)に懸濁した細胞に添加した。Gene−Pulser−II装置(Bio−Rad Laboratories GmbH,Munich,Germany)で電気穿孔を実施した(T細胞:450V/250μF;IVSB T細胞:350V/200μF;SupT1(ATCC No.CRL−1942):300V/200μF;ヒトDC:300V/150μF;K562:200V/300μF)。
A2/DR1マウス(Pajot A.et al.(2004),Eur.J.Immunol.34,3060−69)のT細胞を、抗原をコードするIVT RNAを使用した反復リンパ節内免疫により、対象とする抗原に対してインビボでプライミングした(Kreiter S.et al.(2010),Cancer Research 70,9031−40)。リンパ節内免疫のために、マウスをキシラジン/ケタミンで麻酔した。鼠径部リンパ節を外科的に露出させ、リンガー液およびRNアーゼ不含水に希釈したRNA 10μL(20μg)を、超微細針(31G、BD Biosciences)を備えた使い捨て0.3mlシリンジを使用して緩やかに注射し、創傷を閉鎖した。6回の免疫サイクル後、マウスを犠死させ、脾細胞を単離した。
無菌条件下での切開後、脾臓を、PBSを含有するファルコンチューブに移した。鉗子で脾臓を機械的に分断し、セルストレーナー(40μm)を用いて細胞懸濁液を得た。脾細胞をPBSで洗浄し、遠心分離して、赤血球の溶解のために低張緩衝液に再懸濁した。室温で5分間インキュベートした後、培地またはPBS 20〜30mlを添加して反応を停止させた。脾細胞を遠心分離し、PBSで2回洗浄した。
抗原特異的再刺激のために、免疫A2/DR1マウスからの2.5×106/ウェルの脾細胞を24穴プレートに接種し、対象とする抗原または対照抗原をコードするオーバーラッピングペプチドのプールでパルスした。24時間のインキュベーション後、細胞を採取し、FITC結合抗CD3抗体、PE結合抗CD4抗体、PerCP−Cy5.5結合抗CD8抗体およびDylight−649結合抗CD137抗体で染色した。BD FACS Ariaフローサイトメータ(BD Biosciences)で選別を実施した。CD137、CD3およびCD8に陽性の細胞を選別し、各ウェルにつき1細胞を、ヒトCCD−1079Sk細胞をフィーダー細胞として含む96穴V底プレート(Greiner Bio−One)に採取し、4℃で遠心分離して、直ちに−80℃で保存した。
選別したT細胞からのRNAを、RNeasy Micro Kit(Qiagen,Hilden,Germany)を用いて供給者の指示に従って抽出した。修正BD SMARTプロトコルをcDNA合成のために使用した:BD PowerScript Reverse Transcriptase(BD Clontech,Mountain View,CA)を、一本鎖合成反応のプライミングのためのオリゴ(dT)−T−primer longならびに逆転写酵素の末端トランスフェラーゼ活性による伸長した鋳型の作製および鋳型スイッチを可能にするオリゴ(リボG)配列を導入するTS−short(Eurogentec S.A.Seraing,Belgium)と組み合わせた(Matz,M.et al.(1999)Nucleic Acids Res.27,1558−1560)。製造者の指示に従って合成した一本鎖cDNAを、dNTP 200μMの存在下に5U PfuUltra Hotstart High−Fidelity DNA Polymerase(Stratagene,La Jolla,CA)およびTS−PCRプライマー0.48μMでの21サイクルの増幅に供した(サイクリング条件:95℃ 2分、94℃ 30秒、65℃ 30秒、72℃ 1分、72℃ 6分の最終伸長)。TCR遺伝子の増幅の成功をヒトまたはマウスTCR−β定常領域特異的プライマーで制御し、強いバンドが検出された場合のみ、連続的なクローン型特異的ヒトまたはマウスVα−PCR/Vβ−PCRを実施した。
ヒトTCRコンセンサスプライマーの設計のために、ImMunoGeneTics(IMGT)データベース(http://www.imgt.org)に列挙されている67個のTCR−Vβ遺伝子および54個のTCR−Vα遺伝子(オープンリーディングフレームおよび偽遺伝子)全部を、それらの対応するリーダー配列と共にBioEdit Sequence Alignment Editor(例えばhttp://www.bio−soft.net)で整列した。最大3個の縮重塩基、40〜60%のGC含量および3'末端にGまたはCを有する24〜27bp長の正プライマーを、できるだけ多くのリーダー配列にアニーリングするように設計し、数少ない制限酵素部位およびコザック配列を特徴とする15bpの5'伸長を備えさせた。逆プライマーは、定常領域遺伝子の第1エクソンにアニーリングし、プライマーTRACex1_asはCαのアミノ酸7〜16に対応する配列に結合し、TRBCex1_asはCβ1およびCβ2のアミノ酸(aa)8〜16に対応する配列に結合するように設計した。どちらのオリゴヌクレオチドも5'リン酸を用いて合成した。プライマーを同じアニーリング温度で2〜5個の正オリゴのプールにまとめた。
単離されたT細胞からのあらかじめ増幅したcDNA 3〜6μlを、0.6μM Vα/Vβ特異的オリゴプール、0.6μM CαまたはCβオリゴ、200μM dNTPおよび5U Pfuポリメラーゼの存在下で40サイクルのPCRに供した(サイクリング条件:95℃ 2分、94℃ 30秒、アニーリング温度30秒、72℃ 1分、72℃ 6分の最終伸長時間)。Qiagenのキャピラリー電気泳動システムを使用してPCR産物を分析した。400〜500bpのバンドを有する試料をアガロースゲルでサイズ分画し、バンドを切り出して、Gel Extraction Kit(Qiagen,Hilden,Germany)を使用して精製した。TRBCex1_asおよびmTRBCex1_asプライマーがそれぞれ、ヒトおよびマウスにおけるTCR定常領域遺伝子β1およびβ2の両方にそれぞれマッチするので、V(D)Jドメインおよびβ定常領域の両方の配列を明らかにするために配列解析を実施した。DNAを消化し、完全なTCR−α/β鎖のために適切な骨格を含むIVTベクターにクローニングした。
トランスフェクトTCR遺伝子の細胞表面発現を、適切な可変領域ファミリーまたはTCR β鎖の定常領域に対するPE結合抗TCR抗体(Beckman Coulter Inc.,Fullerton,USA)およびFITC/APC標識抗CD8/抗CD4抗体(BD Biosciences)を使用してフローサイトメトリによって分析した。トランスフェクトCARの細胞表面発現を、すべてのCLDN6−CAR構築物に含まれるscFvフラグメントを認識するDylight−650結合イディオタイプ特異的抗体(Ganymed Pharmaceuticals)を使用して分析した。FITC標識HLAクラスII特異的抗体(Beckman Coulter Inc.,Fullerton,USA)およびPE標識HLAクラスI特異的抗体(BD Biosciences)での染色によってHLA抗原を検出した。標的細胞上のCLDN6表面発現を、Alexa−Fluor647結合CLDN6特異的抗体(Ganymed Pharmaceuticals)での染色によって分析した。FACS Divaソフトウェアを使用してFACS CANTO IIフローサイトメータ(BD Biosciences)でフローサイトメトリ分析を実施した。
細胞媒介性細胞傷害の評価のために、51Cr放出の代替法および最適化として生物発光に基づくアッセイを確立した。標準的なクロム放出アッセイと異なり、このアッセイは、共インキュベーション後に生存可能なルシフェラーゼ発現標的細胞の数を計算することによってエフェクター細胞の溶解活性を測定する。標的細胞を、ホタルホティナス・ピラリス(Photinus pyralis)(EC 1.13.12.7)からのホタルルシフェラーゼをコードするルシフェラーゼ遺伝子で安定にまたは一過性にトランスフェクトした。ルシフェラーゼはルシフェリンの酸化を触媒する酵素である。反応はATP依存性であり、2段階で起こる:
ルシフェリン+ATP → ルシフェリルアデニレート+PP i
ルシフェリルアデニレート+O 2 → オキシルシフェリン+AMP+光
(1−(CPSexp−CPSmin)/(CPSmax−CPSmin)))×100。
マイクロタイタープレート(Millipore,Bedford,MA,USA)を抗IFNγ抗体1−D1k(Mabtech,Stockholm,Sweden)で室温にて一晩被覆し、2%ヒトアルブミン(CSL Behring,Marburg,Germany)でブロックした。電気穿孔の24時間後、2〜5×104/ウェルの抗原提示刺激細胞を0.3〜3×105/ウェルのTCRトランスフェクトCD4+またはCD8+エフェクター細胞と共に3組接種した。プレートを一晩インキュベートし(37℃、5%CO2)、PBS 0.05%Tween 20で洗浄して、抗IFNγビオチン化mAB 7−B6−1(Mabtech)と共に1μg/mlの最終濃度で37℃にて2時間インキュベートした。アビジン結合ホースラディッシュペルオキシダーゼH(Vectastain Elite Kit;Vector Laboratories,Burlingame,USA)をウェルに添加し、室温で1時間インキュベートして、3−アミノ−9−エチルカルバゾール(Sigma,Deisenhofen,Germany)で発色させた。
CD8+T細胞をTCRまたはCAR RNAでトランスフェクトし、CFSE 2.5μMで標識した。標識T細胞を洗浄し、RNAトランスフェクト自己単球またはiDCと共培養した(E:T(エフェクター細胞:標的(腫瘍)細胞)=10:1)。共培養の4日後、細胞を採取し、細胞分裂後の娘細胞内のCFSE蛍光の漸進的半減に基づきフローサイトメトリによって増殖を分析した。
CLDN6−CARまたは陰性対照として使用した無関係な腫瘍抗原に対するCARの安定発現のために、レトロウイルスSINベクターES12.6を使用した(図19)。
マウス養子細胞移入(ACT)実験のために、ヒトTリンパ球を、2時間のプラスチック接着後に単球の除去によって健常ドナーのPBMCから濃縮した。Tリンパ球を、5%ヒトAB血清(Invitrogen)、100U/ml IL2(Proleukin S,Novartis)、20ng/ml IL7(Miltenyi)、10ng/ml IL15(Miltenyi)を添加したX−Vivo15(Lonza)培地で培養し、磁気抗CD3/抗CD28ビーズ(Dynabeads;Invitrogen)を用いて1:3のCD3細胞対ビーズ比で刺激して、刺激後3日目と4日目にレトロウイルス上清で形質導入した。5%ヒトAB血清、300U/ml IL2、20ng/ml IL7および10ng/ml IL15を添加したX−Vivo15培地で細胞を増殖させた。37℃、5%CO2、95%相対湿度でのインキュベーション(図20)。
1×107のOV90−SC12ヒト卵巣腫瘍細胞を8〜14週齢のNOD.Cg−Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ(NSG)マウス(The Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に皮下注射することによって異種移植腫瘍を確立した。4日後、マウスを1×107のCAR形質導入T細胞(20〜37%CAR陽性)の単回静脈内注射で処置した。カリパスを使用した体積測定によって腫瘍モニタリングを週1回実施した(図21(a))。
クローディン6に特異的な高親和性HLA−A*02拘束性マウスTCRの単離
A2/DR1マウスにおけるCLDN6の免疫原性を、CLDN6をコードするIVT−RNAでの反復リンパ節内免疫によって検証し、これらのマウスの脾細胞をCLDN6特異的T細胞の単離およびその後の対応するTCR遺伝子のクローニングのために使用した(図5)。免疫マウスの脾細胞を、CLDN6特異的T細胞の誘導の成功およびエクスビボでの予測されたHLA−A*02結合CLDN6ペプチドに対するそれらの反応性に関してIFNγ−ELISPOTアッセイによって分析した(図6)。
CLDN6 91−99に特異的なマウスTCRの比較試験
すべてHLA−A*02拘束性エピトープCLDN6−91−99を認識する合計6のマウスTCRを同定した。このエピトープが天然にプロセシングされ、内因性にCLDN6を発現する腫瘍細胞株によって提示されることを確認するため、および同定されたマウスTCRの、そのような細胞の死滅を媒介する潜在能を評価するために、ルシフェラーゼに基づく細胞傷害アッセイを実施した。ヒト予備活性化CD8+T細胞をTCR RNAでトランスフェクトし、表面発現をフローサイトメトリによって分析した(図9)。マウスTCR−β鎖の定常ドメインに特異的な蛍光色素結合抗体での染色によって示されたように、RNA移入後にすべてのマウスTCRが高い割合のヒトCD8+T細胞上に発現された。TCRトランスフェクトT細胞を、CLDN6発現腫瘍細胞株PA1(奇形腫)およびNIH−Ovcar3(卵巣癌)と共にルシフェラーゼに基づく細胞傷害アッセイに供した。CLND6陰性乳癌細胞株MDA−MB−231を陰性対照として使用した。すべてのTCRが、PA1の38〜94%およびNIH−Ovcar3の29〜76%に及ぶCLDN6発現腫瘍細胞株の効率的な溶解を媒介し、一方非トランスフェクトT細胞では溶解は全く観察できなかった(図10)。mTCRCD8−CLDN6 No.1、No.8またはNo.18を使用した場合、大部分の標的細胞が溶解した。
クローディン6特異的CARの作製およびインビトロ検証
CLDN6を発現する標的細胞上のCLDN6を特異的に標的とする2つの異なるCAR形式を評価した。その1つは、マウスTCRβ鎖の定常ドメインとscFvの結合およびTCRα鎖の定常ドメインの共発現に基づく新規形式(CAR/Cα)である(Voss RH et al.,(2011)Molecular Therapy 19,supplement,S86)(図3)。2番目の形式は、それぞれCD3ζおよびCD28のシグナル伝達および共刺激部分を含む古典的第2世代CAR(CAR−28ζ)である。CD28エンドドメイン内のlck結合部分の欠失は、CAR係合後のIL2分泌を排除し、制御性T細胞の誘導を妨げる(Kofler D.M.et al.,(2011)Molecular Therapy 19(4),760−767)。CARの細胞外部分内のIgG1 Fc「スペーサー」ドメインの修飾は、「オフターゲット」活性化および先天性免疫応答の意図せぬ開始を回避する(Hombach A.et al.,(2010)Gene Therapy 17,1206−1213)。
前臨床および臨床試験のためのCLDN6−CAR−28ζリード構造選択
抗原認識を担うCLDN6−CAR−28ζ scFvフラグメントは不対システインを含む。そのような遊離システインは、特定の状況下でCARタンパク質のミスフォールディングまたはジスルフィド結合の形成による他のシステインとの望ましくない相互作用をもたらし得るので、このシステインを排除し、セリン、グリシンまたはアラニンに交換することを決定した。
CLDN6−CARのインビボ抗腫瘍活性
CLDN6発現腫瘍細胞株に対する抗腫瘍活性をインビトロで決定した後、腫瘍担持マウスにおける抗腫瘍能を測定した。そのため、CLDN6−CAR形質導入ヒトT細胞の潜在能を、異種移植モデルにおいて無関係な腫瘍抗原に対する対照CARで形質導入したT細胞および非形質導入T細胞と比較した。ヒト卵巣癌細胞株OV90−SC12の合計1×107細胞をNSGマウスに皮下注射した。腫瘍移植の4日後にマウスを1×107のCAR形質導入T細胞の単回静脈内注射で処置した。カリパスを使用した体積測定によって腫瘍モニタリングを週1回実施した。CLDN6−CAR形質導入T細胞でのマウスの処置は、無関係な腫瘍抗原−CAR形質導入T細胞、非形質導入T細胞で処置した対照群またはT細胞を摂取しなかった群と比較して腫瘍増殖を有意に遅らせた(図21(b)および(c))。
CLDN6発現標的細胞に応答したCLDN6−CAR T細胞のインビトロ増殖
RNA免疫による内因性T細胞の増殖と同様に、天然CLND6を提供するための標的細胞のRNAワクチン接種を用いたCAR T細胞の刺激および増殖をインビトロ増殖アッセイによって分析した。CD8+T細胞を、CLDN6または陰性対照として無関係な腫瘍抗原に対するCARをコードするIVT−RNAでトランスフェクトし、CFSE(カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル)で標識して、CLDN6トランスフェクト自己iDCと共に4日間共培養した(図22)。CLDN6トランスフェクトiDCに応答してほぼすべてのCD8+T細胞のCLDN6−CAR媒介性増殖を観察することができ(95%)、一方無関係な腫瘍抗原CARトランスフェクトT細胞に関してはバックグラウンド増殖(1.5%)しか観察できず、増殖はCAR骨格に依存するのではなく、CLDN6特異的であることを示した。
A2−1 (aa 91−99)
ALFGLLVYL
TLLGWVNGL
QILGVVLTL
TCRCD8−mCl6#1:
配列番号:6; > Vα9N.3 J13 C
MLLALLSVLGIHFLLRDAQAQSVTQPDARVTVSEGASLQLRCKYSYFGTPYLFWYVQYPRQGLQLLLKYYPGDPVVQGVNGFEAEFSKSNSSFHLRKASVHWSDWAVYFCAVSMSSGTYQRFGTGTKLQVVPNIQNPEPAVYQLKDPRSQDSTLCLFTDFDSQINVPKTMESGTFITDKTVLDMKAMDSKSNGAIAWSNQTSFTCQDIFKETNATYPSSDVPCDATLTEKSFETDMNLNFQNLSVMGLRILLLKVAGFNLLMTLRLWSS
MRVRLISAVVLCFLGTGLVDMKVTQMPRYLIKRMGENVLLECGQDMSHETMYWYRQDPGLGLQLIYISYDVDSNSEGDIPKGYRVSRKKREHFSLILDSAKTNQTSVYFCASSSQNQDTQYFGPGTRLLVLEDLRNVTPPKVSLFEPSKAEIANKQKATLVCLARGFFPDHVELSWWVNGKEVHSGVSTDPQAYKESNYSYCLSSRLRVSATFWHNPRNHFRCQVQFHGLSEEDKWPEGSPKPVTQNISAEAWGRADCGITSASYHQGVLSATILYEILLGKATLYAVLVSGLVLMAMVKKKNS
配列番号:8; > Vα6N.6 J23 C
MDSFPGFVAVILLILGRTHGDSVTQTEGQVTVSESKSLIINCTYSATSIGYPNLFWYVRYPGEGLQLLLKVITAGQKGSSRGFEATYNKEATSFHLQKASVQESDSAVYYCALNNQGKLIFGQGTKLSIKPNIQNPEPAVYQLKDPRSQDSTLCLFTDFDSQINVPKTMESGTFITDKTVLDMKAMDSKSNGAIAWSNQTSFTCQDIFKETNATYPSSDVPCDATLTEKSFETDMNLNFQNLSVMGLRILLLKVAGFNLLMTLRLWSS
MGSRLFFVLSSLLCSKHMEAAVTQSPRNKVAVTGGKVTLSCNQTNNHNNMYWYRQDTGHGLRLIHYSYGAGSTEKGDIPDGYKASRPSQENFSLILELATPSQTSVYFCASGGDSQNTLYFGAGTRLSVLEDLRNVTPPKVSLFEPSKAEIANKQKATLVCLARGFFPDHVELSWWVNGKEVHSGVSTDPQAYKESNYSYCLSSRLRVSATFWHNPRNHFRCQVQFHGLSEEDKWPEGSPKPVTQNISAEAWGRADCGITSASYHQGVLSATILYEILLGKATLYAVLVSGLVLMAMVKKKNS
配列番号:18; > Vα16N J6 C
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配列番号:28; > Vα6N.7 or Vα6D.7_4 J26 C
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配列番号:10; > Vα16N J13 C
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配列番号:20; > Vα13D.4_03 J42 C
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配列番号:12; > Vα3.3 J50 C
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配列番号:22; > Vα16N J22 C
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配列番号:14; > Vα4N.4 or Vα4D.4_03 J6 C
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配列番号:24; > Vα3.1 J39 C
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配列番号:26; > Vα14.3 or Vα14D.3/DV8_08 J22 C
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配列番号:16; > Vα6D.6_02 J4 C
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Claims (28)
- 配列番号:3、4および5から成る群より選択されるアミノ酸配列を含むペプチドであって、当該ペプチドの長さが、100以下、50以下、20以下または10以下のアミノ酸長である、ペプチド。
- 配列番号:3、4および5から成る群より選択されるアミノ酸配列から成る、請求項1に記載のペプチド。
- 請求項1または2に記載のペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む核酸。
- 組換え核酸である、請求項3に記載の核酸。
- 請求項3または4に記載の核酸を含む細胞。
- 請求項1または2に記載のペプチドまたはそのプロセシング産物を提示する細胞。
- 請求項1または2に記載のペプチドと反応性である免疫反応性細胞。
- 請求項1または2に記載のペプチドに結合するT細胞受容体であって、
当該T細胞受容体が、
(I)(i)配列番号:xのT細胞受容体α鎖のCDR配列の3つ全部を含むT細胞受容体α鎖、および
(ii)配列番号:x+1のT細胞受容体β鎖のCDR配列の3つ全部を含むT細胞受容体β鎖
[ここでxは、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択される]
を含むT細胞受容体、ならびに
(II)(i)配列番号:xのT細胞受容体α鎖配列を含むT細胞受容体α鎖、および
(ii)配列番号:x+1のT細胞受容体β鎖配列を含むT細胞受容体β鎖
[ここでxは、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26および28から成る群より選択される]
を含むT細胞受容体
から成る群より選択されるT細胞受容体。 - クローディン6(CLDN6)に結合し、CLDN6に対する結合ドメイン、膜貫通ドメインおよびT細胞シグナル伝達ドメインを含む、人工T細胞受容体であって、
前記CLDN6に対する結合ドメインが、CLDN6に特異性を有する免疫グロブリンの重鎖の可変領域(VH)(VH(CLDN6))およびCLDN6に特異性を有する免疫グロブリンの軽鎖の可変領域(VL)(VL(CLDN6))を含み、
前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:32によって表されるアミノ酸配列を含むVH(CLDN6)を含有し、
前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:33、38もしくは39によって表されるアミノ酸配列を含むVL(CLDN6)を含有する、人工T細胞受容体。 - 前記重鎖可変領域(VH)と前記軽鎖可変領域(VL)がペプチドリンカーによって連結されている、請求項9に記載の人工T細胞受容体。
- 前記ペプチドリンカーが、アミノ酸配列(GGGGS)3を含む、請求項10に記載の人工T細胞受容体。
- 前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:32によって表されるアミノ酸配列を含むVH(CLDN6)および配列番号:39によって表されるアミノ酸配列を含むVL(CLDN6)を含有する、請求項9から11のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体。
- 前記CLDN6に対する結合ドメインが、配列番号:40によって表されるアミノ酸配列を含む、請求項9から12のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体。
- 前記T細胞シグナル伝達ドメインが、CD3−ζを含む、請求項9から13のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体。
- 前記T細胞シグナル伝達ドメインが、CD3−ζのエンドドメインを含む、請求項14に記載の人工T細胞受容体。
- 前記T細胞シグナル伝達ドメインが、CD28と組み合わせて前記シグナル伝達ドメインを含む、請求項14または15に記載の人工T細胞受容体。
- 新生タンパク質を小胞体内に向かわせるシグナルペプチドを含む、請求項9から16のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体。
- 前記CLDN6に対する結合ドメインを前記膜貫通ドメインに連結するスペーサー領域を含む、請求項9から17のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体。
- 配列番号:46に従うアミノ酸配列を含む、請求項9から18のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体。
- 請求項8に記載のT細胞受容体をコードする、または請求項9から19のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体をコードするヌクレオチド配列を含む核酸。
- 請求項8に記載のT細胞受容体または請求項9から19のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体を含む、および/または前記T細胞受容体をコードするまたは前記人工T細胞受容体をコードするヌクレオチド配列を含有する核酸を含む、細胞。
- 請求項20に記載の核酸でT細胞を形質導入する工程を含む、免疫反応性細胞を作製する方法。
- (i)請求項1または2に記載のペプチド、
(ii)請求項3、4および20のいずれか一項に記載の核酸、
(iii)請求項5、6および21のいずれか一項に記載の細胞、
(iv)請求項7に記載の免疫反応性細胞、
(v)請求項8に記載のT細胞受容体、ならびに
(vi)請求項9から19のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体
の1つ以上を含む医薬組成物。 - 医薬的に許容される担体をさらに含む、請求項23に記載の医薬組成物。
- 癌を処置するまたは予防する方法において使用するための医薬の調製のための、請求項23または24に記載の医薬組成物の使用。
- 癌を処置するまたは予防する方法において使用するための医薬の調製のための、請求項1または2に記載のペプチド、請求項3、4および20のいずれか一項に記載の核酸、請求項5、6および21のいずれか一項に記載の細胞、請求項7に記載の免疫反応性細胞、請求項8に記載のT細胞受容体、または請求項9から19のいずれか一項に記載の人工T細胞受容体の使用。
- 被験体において免疫応答を誘導するための医薬の調製のための、請求項23または24に記載の医薬組成物の使用。
- 被験体における免疫応答を判定する方法であって、前記被験体から単離した生物学的試料中で請求項1または2に記載のペプチドと反応性のT細胞を測定することを含む方法。
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