JP6499016B2 - 膵機能障害の治療または予防方法 - Google Patents

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Description

発明の分野
本発明は、それを必要とする被験体において膵機能を改善する方法に関する。本方法は
、膵機能障害によりもたらされる、または膵機能障害と関連する障害、例えば、膵臓の内
分泌機能または外分泌機能の異常によりもたらされる障害の治療および／または予防およ
び／または発症もしくは進行の遅延のために使用できる。
発明の背景
膵臓は、脊椎動物の消化器系および内分泌系における多機能性腺器官である。膵臓は、
内分泌腺（インスリン、グルカゴンおよびソマトスタチンを含むいくつかのホルモンを産
生する）および外分泌腺（小腸を通る消化酵素を含有する膵液を分泌する）の両方である
。膵液中の酵素は、糜粥中で炭水化物、タンパク質および脂肪のさらなる分解において役
に立つ。
内分泌機能を有する膵臓部分は、ランゲルハンス島と呼ばれる多数の細胞クラスターか
ら構成されている。この島には分泌により分類される４種の主要な細胞型がある。α細胞
はグルカゴンを分泌し、β細胞はインスリンを分泌し、δ細胞はソマトスタチンを分泌し
、ＰＰ細胞は膵臓ポリペプチドを分泌する。この島は、クラスターおよびコードに配置さ
れた内分泌細胞の密な集合体であり、毛細血管のネットワークもさらに含有する。この島
の毛細血管に対しては、血管に直接接触する内分泌細胞の層が並んでおり、大部分の内分
泌細胞は、細胞質突起または直接並置のどちらかにより、直接血管に接触している。
血液中にホルモンを分泌する膵臓内分泌腺とは対照的に、膵臓外分泌腺は、消化酵素（
例えば、トリプシノーゲン、キモトリプシノーゲン、エラスターゼ、カルボキシペプチダ
ーゼ、膵リパーゼおよびアミラーゼ）およびアルカリ性液を産生し、小腸のホルモンであ
るセクレチンおよびコレシストキニンに反応して、外分泌管系を介してこれらを小腸に分
泌する。消化酵素は、膵臓外分泌腺の腺房細胞により産生され、分泌される。腺房中心細
胞（centroacinar cell）と呼ばれる膵管と並んでいる特殊な細胞は、重炭酸塩および塩
分に富んだ溶液を、小腸に分泌する。
膵機能障害は、膵臓によって産生されるホルモンおよび／または酵素の産生過剰または
産生不足をもたらし得る。膵機能障害に関連する、または膵機能障害により引き起こされ
る病態は、糖尿病（diabetes mellitus）、急性もしくは慢性の膵炎、膵臓の酵素欠乏症
または膵腫瘍を含む。
糖尿病（ＤＭ）は、すべての年齢群および集団にわたって、最も一般的な慢性の内分泌
障害の１つであり、膵機能障害が原因で起こる。ＤＭは、世界中で１億人を超える人々が
患っている。米国だけでも、１２００万人を超える被験体がＤＭであると診断され、毎年
６００，０００例の新規の症例が診断されている。
ＤＭは、血糖の上昇をもたらす、炭水化物（例えばグルコース）の恒常性または代謝の
異常を特徴とする障害群に対する診断用語である。これらの障害は、いくつかの相関のあ
る代謝、血管および神経障害性の構成要素を含む。ＤＭの様々な要素は、膵臓の内分泌機
能および／または外分泌機能が原因で起こる。例えば、一般的に高血糖を特徴とする代謝
要素は、ホルモン、特にインスリン（すなわち内分泌機能）分泌の不在または著しい減少
が原因で起こる、炭水化物、脂肪およびタンパク質の代謝の変化、および／またはインス
リン作用の無効を含む。外分泌レベルにおいて、膵臓は、食物の消化に関与する様々な酵
素を産生する。例えば、膵臓はアミラーゼを産生し、ＤＭにおいて、炭水化物を消化する
ために十分なレベルのこの酵素を分泌できず、膵臓の外分泌腺の機能不全、栄養失調およ
び体重減少をもたらす恐れがある。したがって、膵臓の内分泌機能および外分泌機能の両
方がＤＭの代謝要素に寄与している。ＤＭの血管要素は、心血管、網膜および腎臓の合併
症をもたらす血管の異常を含む。末梢系および自律神経系の異常もまた、ＤＭの要素であ
る。
ＤＭは、一般的に、インスリンの量または循環の減少、および／または被験体における
インスリンに対する細胞の反応性の減少が原因で起こる。インスリンは、炭水化物、脂肪
およびタンパク質の代謝において必須である。インスリンは、筋肉細胞および脂肪細胞に
グルコースを進入させることによって、および炭水化物貯蔵としての、グルコースのグリ
コーゲンへの転換（グリコーゲン生成）を刺激することによって、血糖値を低下させる。
インスリンはさらに、肝臓グリコーゲンからの貯蔵グルコースの放出（グリコーゲン分解
）を阻害し、脂肪のトリグリセリド、遊離の脂肪酸およびケトンへの分解を遅延させる。
加えて、インスリンは、グルコース産生のためのタンパク質の分解（グルコース新生）を
遅延させる。インスリンは、膵臓のランゲルハンス島において、β細胞によって産生され
、分泌される。
糖尿病には、Ｉ型（インスリン依存性糖尿病またはＩＤＤＭとも称される）およびＩＩ
型（非インスリン依存性糖尿病またはＮＩＤＤＭとも称される）、妊娠糖尿病および糖尿
病前症（またはグルコース代謝障害）を含むいくつかの型がある。これらのうち、糖尿病
の最も一般的な２つの形態がＩ型およびＩＩ型糖尿病である。Ｉ型糖尿病（またはインス
リン依存性糖尿病；ＩＤＤＭ）は、インスリンの完全な欠乏をもたらす、膵臓β細胞の不
在、破壊または喪失が原因で起こる。ＩＩ型糖尿病（非インスリン依存性糖尿病；ＮＩＤ
ＤＭ）は、インスリン抵抗性を特徴とする異質な障害である。
Ｉ型糖尿病
Ｉ型糖尿病の全発生率は、ＵＳだけでおよそ１５例／１００，０００個体である。ＵＳ
において、糖尿病の全症例のおよそ５から１５パーセントがＩ型糖尿病であり、医師によ
り、毎年約１０，０００の新規の症例が診断される。国際的にはＩ型糖尿病の発生率は、
中国における約０．６１症例／１００，０００個体から、サルジニアにおける約３４．５
症例／１００，０００およびフィンランドにおける４０超症例／１００，０００と様々で
ある。多くの国により、Ｉ型糖尿病の発生率がこの２０年の間に２倍になっていることが
さらに報告されている。
Ｉ型糖尿病の急性臨床的発症は、高血糖、多尿、多渇、体重減少または視力障害などの
単独または組み合わせた症状、それに続く数日または数週間後のケトアシドーシスを特徴
とする。一般的に、疾患の急性の発症には、長い無症候性の発症前の期間が先行し、その
間に、インスリン分泌β細胞は被験体の免疫系によって徐々に破壊されると考えられてい
る。
健康な個体において、膵臓は通常１００万から１５０万の島（islet）を含み、島細胞
のおよそ８０パーセントがインスリン産生β細胞である。臨床的糖尿病の症状は、それら
のβ細胞の１０パーセント未満しか残存しないときに現れる。
インスリンの供給と需要との間の不釣り合いは、膵臓β細胞の喪失が原因で起こり、グ
ルコース、脂質およびタンパク質の代謝の異常をもたらす。インスリンの欠乏は、高血糖
および高血糖性脱水症状、遊離脂肪酸レベルの上昇、血清中ケトンレベルの上昇、トリグ
リセリドレベルの増加、超低密度リポタンパク質（ＶＬＤＬ）レベルの増加、分枝鎖アミ
ノ酸レベルの増加、タンパク質合成の減少ならびにケトアシドーシスをもたらし得る。Ｉ
型糖尿病を有する被験体は、任意の１種または複数種の様々な血管系および神経系の合併
症を患う可能性が高い。例えば、Ｉ型糖尿病の患者は、心臓発作を有する可能性が糖尿病
でない患者より２倍高く、壊疽を患う可能性が５倍高く、完全な腎不全を有する可能性が
１７倍高く、視覚を失う可能性が２５倍高い。
Ｉ型糖尿病の治療／予防
現在、Ｉ型糖尿病は、外因性インスリンの投与、運動および食事管理によって治療され
る。これらの治療形態は、膵臓の損傷を直さない（すなわち、破壊されたβ−島細胞を補
充しない）が、β島細胞によって産生される成長因子を補充する、またはこれらの因子の
必要性の回避が試みられる。
Ｉ型糖尿病を患う被験体の大部分は、何らかの形態のインスリン療法を必要とする。現
時点において、このような療法は一般的に、血糖値および／またはインスリンレベルをモ
ニターすること、および必要に応じて、組換えインスリンまたは精製インスリンを注射す
ることを被験体に要求する。経鼻または経口投与可能なインスリンの新しい形態も、開発
されている。しかし、この形態の療法は、被験体による継続モニタリングおよび被験体の
一生の間、少なくとも１日１回のインスリン投与を必要とする。被験体がインスリン投与
を怠る、またはインスリンを過剰に投与すると、例えば、高血糖、低血糖またはケトアシ
ドーシスの発症の危険性があるであろう。
Ｉ型糖尿病の治療に現在使用されるその他の化合物には、例えば、スルホニル尿素、ビ
グアニド、α−グルコシダーゼ阻害剤またはチアゾリジンジオンが含まれる。しかし、こ
れらの化合物もそれぞれ、重大な欠点を有する。例えば、スルホニル尿素は低血糖および
高インスリン血症を引き起こし、ビグアニドは乳酸アシドーシスを引き起こし、α−グル
コシダーゼ阻害剤は胃腸の副作用を引き起こし、チアゾリジンジオンは作用の発現が遅く
、体重増加を伴い、頻繁な肝機能試験を必要とする。
グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）も、糖尿病用の治療薬候補として特定されて
いる。このペプチドは、膵臓の発生、β細胞の分化およびβ細胞機能の維持において重要
な役割を果たす転写因子である膵十二指腸ホメオボックス因子−１（pancreatic and duo
denal homeobox factor-1）（ＰＤＸ−１）の発現を誘導する（Ｂａｂｕら、Ｍｏｌ Ｅ
ｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．２０巻：３１３３〜３１４５頁、２００６年）。ＰＤＸ−１は、Ｇ
ＬＵＴ２、グルコキナーゼおよびインスリンなどの、グルコースの感知および代謝の発現
の誘導に関与する。ＧＬＰ−１は、インスリンの発現の刺激に加えて、被験体において膵
臓ベータ細胞の増殖を誘導できるので、治療薬としての可能性が示唆されている（Ｂｕｔ
ｅａｕ、Ｄｉａｂｅｔｅｓ ａｎｄ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ、３４巻：Ｓ７３〜Ｓ７７頁
、２００８年）。しかし、ＧＬＰ−１の細胞内利用性を増加させる臨床的に利用可能な薬
剤、例えば経口的に活性なジペプチジルペプチダーゼ−４（ＤＰＰＩＶ）阻害剤または注
射可能なＧＬＰ−１類似体の使用は、軽症型のＩＩ型糖尿病の治療に限定されている。こ
れらの薬剤の比較的短い半減期、これらの頻繁な投与の必要性および重度のベータ細胞喪
失の場合の効果の相対的な欠如によって、Ｉ型糖尿病または他のインスリン依存性の患者
用のインスリン保持薬（insulin-sparing agent）としての使用は排除されている。経口
的に利用可能なＧＬＰ−１類似体でさえ半減期は短く、毎日の高用量の投与を必要とする
。
他の治療の選択肢は、膵臓のランゲルハンス島の移植を含み、これにより、インスリン
依存性が減少することが示されている（Ｓｈａｐｉｒｏら、Ｎｅｗ Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ
．、３４３巻：２３０〜２３８頁、２０００年）。しかし、この治療の適用は、ドナー由
来の一次ヒト島（primary human islet）の利用性が非常に限られていることによって制
限され、移植の間の細胞の生存を確実にするためにドナーは心臓が鼓動していなければな
らない。（Ｂｕｒｎｓら、Ｊ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ、１０３巻：４３７〜４４３
頁、２００４年）。
幹細胞、例えば胚性幹細胞（ＥＳ）細胞もまた、治療に適切な量のインスリン産生細胞
の産生のための適切な供給源として提唱されている。しかし、インスリン分泌β細胞は、
２〜４×１０９β細胞／移植と予測される必要レベルでさえ、幹細胞から産生されなかっ
た。このような細胞ベースの療法は、高インスリン血症または低血糖症を引き起こすポイ
ントを拡大しないことを確実にするために、置き換えた細胞の増殖能力が厳密に調節され
なければならず、移植細胞はレシピエントの免疫系によって破壊されることを避けなけれ
ばならないという困難もさらに克服しなければならない。さらに、ＥＳ細胞ベースの療法
の場合、奇形種の形成の危険性を避けるために、残存ＥＳ細胞を除去しなければならない
。
ＩＩ型糖尿病
ＩＩ型糖尿病は、糖尿病の症例のおよそ９０〜９５％を占め、米国だけで約１９３，０
００人／年が死亡している。ＩＩ型糖尿病は、すべての死亡の７番目の主原因である。西
洋社会において、ＩＩ型糖尿病は、現在成人人口の６％が侵されており、予想される世界
中の頻度は６％／年で成長している。特定の個人がＩＩ型糖尿病を発症しやすくする可能
性のある特定の遺伝形質があるにもかかわらず、この疾患の発生率が現在増加している主
な原因は、現在先進国において多い、座っていることの多いライフスタイル、食事および
肥満の増加である。ＩＩ型糖尿病は、ヒトの健康の重大な脅威の１つとして、現在国際的
に認識されている。
筋肉、脂肪および肝臓の細胞が、インスリンに正常に反応できない場合、ＩＩ型糖尿病
が発症している。この反応ができないこと（failure to respond）（インスリン抵抗性と
呼ばれる）は、これらの細胞におけるインスリン受容体の数の減少、または細胞内のシグ
ナル伝達経路の機能障害または両方による可能性がある。β細胞は、まず、それらのイン
スリン産出の増加により、このインスリン抵抗性を補う。時間とともに、これらの細胞は
正常なグルコースレベルを維持するための十分なインスリンを産生できなくなり、ＩＩ型
糖尿病の進行を示す（Ｋａｈｎら、Ａｍ．Ｊ．Ｍｅｄ．１０８巻：２Ｓ〜８Ｓ頁）、２０
００年）。
ＩＩ型糖尿病の治療
ＩＩ型糖尿病に対する従来の治療は非常に限定されており、合併症を最小にする、また
は遅延させるために血糖値を調節する試みに集中している。現在の治療は、インスリン抵
抗性（メトホルミン、チアゾリジンジオン（「ＴＺＤ」））またはβ細胞からのインスリ
ン放出（スルホニル尿素、エクセナチド）のどちらかを標的としている。スルホニル尿素
およびベータ細胞の極性をなくすことにより作用する他の化合物は、循環グルコースレベ
ルとは独立してインスリン分泌を引き起こすので、低血糖の副作用を有する。現在の療法
の他の副作用は、体重増加、療法に対する反応性の継時的喪失、胃腸の問題および浮腫を
含む。
現在承認されている薬剤の１つであるＪａｎｕｖｉａ（シタグリプチン）はインクレチ
ンホルモンの血中レベルを増加させ、インクレチンホルモンは、インスリンの分泌を増加
させ、グルカゴンの分泌を減少させることができ、あまり特徴付けられていない他の効果
を有する。しかし、Ｊａｎｕｖｉａおよび他のジペプチジルペプチダーゼＩＶ阻害剤もま
た、他のホルモンおよびペプチドの組織中レベルに影響を与えることがあり、この広範囲
の作用の長期的結果は完全には調査されていない。さらに、この化合物はインスリン抵抗
性に関連する問題に対処しない。
Ｉ型糖尿病と同様に、ＧＬＰ−１は、インスリン分泌を誘導し、ベータ細胞の増殖を誘
導し、グルコース耐性ベータ細胞において耐糖能（glucose tolerance）を回復するその
能力のために、ＩＩ型糖尿病に対する治療薬の可能性が示唆されている。しかし、上述の
ように、ＧＬＰ−１およびそれらの類似体は、それらの非常に短い半減期が原因で、それ
らの治療薬の可能性は非常に限定されている。
膵機能に関連する障害の治療もしくは予防もしくは発症もしくは進行の遅延の方法およ
び／または膵機能の改善方法が当分野において必要であることが、前述より明らかである
。
発明の要旨
本発明までの研究において、本発明者らは、膵機能障害の発生および／または進行にお
ける間葉前駆細胞（ＭＰＣ）の特定のサブセットの効果を決定することを探索した。本発
明者らは、ストレプトゾトシン（ＳＴＺ）をマウスに投与することによって膵機能障害が
誘導された、認められたモデルを使用した。この化合物は、最終的に細胞死および膵機能
障害をもたらす、膵島の炎症および免疫細胞の浸潤を誘導する。ＳＴＺは、膵臓の内分泌
機能（例えば、インスリン産生の減少）および膵臓の外分泌機能（例えば、アミラーゼ産
生の減少）の両方において機能障害を引き起こす。このモデルは、グルコースの代謝障害
、例えばＩ型糖尿病またはＩＩ型糖尿病のモデルとしても認められる。
本明細書に例示されるように、本発明者らは、ＳＴＲＯ−１＋細胞のＳＴＺ処置マウス
への投与は、ＳＴＲＯ−１＋細胞を与えなかったＳＴＺ処置マウスと比較して、血清中イ
ンスリンレベルを増加させ、血糖値を減少させることを実証した。本発明者らは、ＳＴＲ
Ｏ−１＋細胞による、被験体における、膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数の誘導もし
くは増加ならびに／または膵臓ベータ細胞および／もしくは島の数の増加（例えば、膵臓
ベータ細胞の再生を促進する）をさらに実証した。本発明者らは、ＳＴＲＯ−１＋細胞が
、ベータ細胞数の増加および／またはアルファ細胞数の減少によって、膵臓アルファ細胞
に対する膵臓ベータ細胞の比を回復することをさらに見出した。本発明者らは、ＳＴＲＯ
−１＋細胞による処置が、被験体の膵臓において血管形成を誘導することをさらに見出し
た。これらのデータを合わせると、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞およ
び／またはそれらから分泌された因子が、膵臓の再生を誘導もしくは促進する、および／
または膵機能を改善することを示す。したがって、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはその子孫細
胞またはそれらに由来する因子は、膵臓のＳＴＺの毒性作用を治療および／または予防お
よび／または減少することができる。これらのデータは、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはその
子孫細胞またはそれらに由来する１種以上の因子は、膵機能障害の治療もしくは予防もし
くは発症の遅延もしくは重症度の減少および／または膵機能の改善および／または膵臓ま
たはそれらの細胞の再生の誘導および／またはグルコース代謝の改善（例えば、循環イン
スリンレベルを増加することによって）が可能であることを示すことになる。
本発明者らの発見は、膵機能障害、例えば糖尿病の治療および／または予防および／ま
たは発症の遅延および／または進行の遅延のための方法に関する基盤を提供する。
したがって、本発明は、それを必要とする被験体において、膵機能を改善する方法を提
供し、本方法は、被験体にＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／また
はそれらに由来する可溶性因子を投与するステップを含む。
本発明は、さらにまたは代替として、被験体において（例えば、膵機能障害を患う被験
体において）、膵臓の再生を促進または誘導する方法を提供し、前記方法は、ＳＴＲＯ−
１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を被験
体に投与するステップを含む。例えば、この方法は、膵臓において新しいベータ細胞およ
び／または微小血管の産生を誘導または促進する。
本発明は、さらにまたは代替として、膵臓ベータ細胞および／または膵島（pancreatic
islet）の再生を誘導または促進する方法を提供し、この方法は、ＳＴＲＯ−１＋細胞お
よび／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を被験体に投与す
るステップを含む。
本発明は、さらにまたは代替として、被験体において、血糖値を減少させる、および／
または血中／血清インスリンレベルを増加させる方法を提供し、この方法は、ＳＴＲＯ−
１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を被験
体に投与するステップを含む。
本発明は、さらにまたは代替として、被験体において、膵臓ベータ細胞の数を増加させ
る、および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ細胞の数を増加させる、および
／または膵臓アルファ細胞の数を減少させる、および／または膵島の数を増加させる方法
を提供し、この方法は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／または
それらに由来する可溶性因子を被験体に投与するステップを含む。
本発明は、さらにまたは代替として、被験体の膵臓において、膵十二指腸ホメオボック
ス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現を増加させる、および／またはＰＤＸ−１発現細胞の数
を増加させる方法を提供し、この方法は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細
胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を被験体に投与するステップを含む。
本発明は、さらにまたは代替として、被験体の膵臓において動脈形成（arteriogenesis
）または血管形成（angiogenesis）を誘導または促進する方法を提供し、この方法は、Ｓ
ＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因
子を被験体に投与するステップを含む。
本発明は、さらにまたは代替として、被験体において、膵臓ベータ細胞前駆体の数を増
加させる、または膵臓ベータ細胞前駆体の増殖を誘導もしくは促進する方法を提供し、こ
の方法は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来
する可溶性因子を被験体に投与するステップを含む。
一例において、被験体は膵機能障害を患っている。
一例において、膵機能障害は、膵臓の内分泌機能および／または膵臓の外分泌機能の機
能障害に関連する、またはそれによってもたらされる。好ましくは、膵機能障害は、膵機
能の低下（例えば、膵臓内分泌機能の低下または膵臓外分泌機能の低下）をもたらす、ま
たはそれに関連する。
本発明の一例において、膵機能障害は炭水化物代謝障害に関連する、またはそれを引き
起こす。このような炭水化物代謝障害は、膵臓の内分泌機能障害および／または外分泌機
能障害が原因で起こりうる。一例において、炭水化物代謝障害は、膵臓によるインスリン
産生の減少が原因で起こる。別の例において、炭水化物代謝障害は、グルカゴンレベルの
増加が原因で起こる（例えば、アルファ細胞の数の増加ならびに／あるいはグルカゴンの
発現および／または産生および／または分泌の増加）。別の例において、炭水化物代謝障
害は、膵臓によるアミラーゼ産生の減少が原因で起こる。当業者は、本明細書の記述をも
とに、炭水化物代謝障害（または膵機能障害）が、必ずしも、単に膵機能によって特徴付
けられるものではないことに気付くであろう。例えば、炭水化物代謝障害は、インスリン
抵抗性および／または血管系要素および／または神経系要素によってもまた、特徴付ける
ことができる。本発明の一例において、膵機能障害は糖尿病（例えば、Ｉ型糖尿病または
ＩＩ型糖尿病）である。
好ましくは、本発明の方法は、有効量または治療有効量もしくは予防有効量のＳＴＲＯ
−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を投
与するステップを含む。一例において、本方法は、被験体においてインスリン産生を誘導
するために十分な、好ましくは少なくとも約１週間または２週間または３週間または４週
間の間インスリン産生を誘導するために十分な量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはそ
の子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を投与するステップを含む。
一例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれら
に由来する可溶性因子は、直接被験体の血流に投与されるが、他の部位の投与も除外され
ない。好ましくは、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれ
らに由来する可溶性因子は、全身に投与される。例えば、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／ま
たはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子は、大動脈内、心臓の心房
内もしくは心室内または膵臓に連結する血管（例えば、腹部大動脈、上腸間膜動脈、膵十
二指腸動脈または脾動脈）の中に静脈内投与、動脈内投与される。好ましい例において、
ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性
因子は、例えばカテーテルを使用して、例えば、大腿動脈内または腹腔動脈内に動脈内投
与される。
代替的に、または追加で、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／ま
たはそれらに由来する可溶性因子は、被験体の膵臓またはそれらの一部に投与される。
一例において、被験体に投与されるＳＴＲＯ−１＋細胞は、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉであり
、および／または組織非特異的アルカリホスファターゼ（ＴＮＡＰ）を発現する。特異的
細胞表面マーカーまたはそれらの組み合わせによって特徴付けられるＳＴＲＯ−１＋細胞
のさらなる集団を本明細書に記載する。この例に従って、子孫細胞および／または可溶性
因子は、ＳＴＲＯ−１を発現する細胞またはＳＴＲＯ−１ｂｒｉである細胞および／また
はＴＮＡＰを発現する細胞に由来し得る。このような子孫細胞は、ＳＴＲＯ−１も発現し
得る、またはＳＴＲＯ−１ｂｒｉでもあり得る、および／またはＴＮＡＰも発現し得る。
膵機能障害の治療または進行の遅延を対象とする本発明の例に従って、ＳＴＲＯ−１＋
細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子は、障害の
診断後、例えば当分野において公知の標準的な方法を使用して投与されることが好ましい
。膵機能障害の予防または発症の遅延を対象とするそれらの例では、ＳＴＲＯ−１＋細胞
および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子は、障害の臨床
診断前に、例えば、被験体が耐糖能障害および／または空腹時高血糖（fasting glycemia
）を患ったとき、ならびに／あるいはＩ型糖尿病の場合、Ｔ細胞および／もしくはＢ細胞
集団の増殖によって、および／または自己抗体の産生によって示されるような自己免疫反
応（例えば、Ｉ型糖尿病の発症または進行において、膵臓β−島細胞に対する細胞障害性
Ｔ細胞の増殖および／または１種以上の膵臓β−島細胞のマーカーに対する自己抗体の増
加）の前に、またはこれと同時に投与される。
好ましくは、任意の例に従った、本明細書に記載の方法は、膵機能障害の発症および／
もしくは進行および／または血糖値および／または血中／血清中インスリンレベルおよび
／またはベータ細胞の数および／またはアルファ細胞の数および／または膵島の数および
／またはＰＤＸ−１発現細胞の数および／またはＰＤＸ−１発現の量および／または血管
の数を、モニタリングするステップまたは検出するステップをさらに含む。例えば、本方
法は、耐糖能を試験するステップおよび／または空腹時血糖を試験するステップおよび／
または膵臓によって産生されるホルモンもしくは酵素のレベルを測定するステップ、およ
び／または膵臓の試料を得て、β細胞の数および／もしくはアルファ細胞の数および／も
しくは膵島の数および／もしくはＰＤＸ−１発現細胞の数および／もしくはＰＤＸ−１発
現の量および／もしくは血管の数を決定するステップをさらに含む。このようなモニタリ
ングは、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来す
る可溶性因子のその後の投与が、必要または望ましいことを示すことができる。
前の段落により当業者には明らかであろうように、任意の例に従った本明細書に記載の
方法は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来す
る可溶性因子の単回投与に限定されると考えられるべきではない。本発明は、同一もしく
は異なる部位のどちらかに、または同一もしくは異なる経路のどちらかを介した複数回投
与を明確に包含する。本発明は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および
／またはそれらに由来する可溶性因子の単回投与もさらに企図する。
一例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれら
に由来する可溶性因子は、組成物、例えば、前記ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその
子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子ならびに担体および／または賦形剤
を含む組成物の形態で投与される。適切な担体および／または賦形剤は、当業者には明ら
かとなろう、および／または本明細書に記載されよう。
このような組成物は、炭水化物代謝障害の治療または予防に有用な追加の因子、例えば
、インスリンもしくはアミラーゼおよび／または正常な膵機能に関連するペプチドもしく
はポリペプチド（例えば、コレシストキニンオクタペプチドまたはソマトスタチンまたは
グルカゴンまたはトリプシノーゲンまたはキモトリプシノーゲンまたはエラスターゼまた
はカルボキシペプチダーゼまたは膵リパーゼ）を含み得る。代替的には、またはさらに、
ＳＴＲＯ−１＋細胞またはその子孫細胞は遺伝子操作により、追加の因子、例えばインス
リンもしくはアミラーゼおよび／または正常な膵機能に関連するペプチドもしくはポリペ
プチド（例えば、コレシストキニンオクタペプチドまたはソマトスタチンまたはグルカゴ
ンまたはトリプシノーゲンまたはキモトリプシノーゲンまたはエラスターゼまたはカルボ
キシペプチダーゼまたは膵リパーゼ）を、発現および好ましくは分泌させることができる
。
本発明は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由
来する可溶性因子あるいはそれらを含む組成物の、
（ｉ）膵機能障害の治療；および／または
（ｉｉ）膵機能の改善；および／または
（ｉｉｉ）膵臓ベータ細胞および／もしくは膵島の再生の誘導または促進；および／ま
たは
（ｉｖ）血糖値の減少および／または血中／血清中インスリンレベルの増加；および／
または
（ｖ）膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ
細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞の数の減少および／または膵島の数の増
加；および／または
（ｖｉ）膵十二指腸ホメオボックス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現の増加および／また
は膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数の増加；および／または
（ｖｉｉ）膵臓における動脈形成または血管形成の誘導または促進、
のための使用をさらに提供する。
本発明は、医薬の製造における、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞およ
び／またはそれらに由来する可溶性因子の、
（ｉ）膵機能障害の治療；および／または
（ｉｉ）膵機能の改善；および／または
（ｉｉｉ）膵臓ベータ細胞および／または膵島の再生の誘導または促進；および／また
は
（ｉｖ）血糖値の減少および／または血中／血清中インスリンレベルの増加；および／
または
（ｖ）膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ
細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞の数の減少および／または膵島の数の増
加；および／または
（ｖｉ）膵十二指腸ホメオボックス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現の増加および／もし
くは膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数の増加；および／または
（ｖｉｉ）膵臓における動脈形成または血管形成の誘導または促進、
のための使用をさらに提供する。
本発明は、広範囲の動物に適用可能である。例えば、被験体は、ヒト、イヌ、ネコ、ウ
マ、ウシまたはヒツジなどの哺乳動物であり、好ましくは、被験体はヒトである。一例に
おいて、被験体はヒトである。別の例において、被験体は非ヒト哺乳動物である。
図１はＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける血糖値（ＢＧＬ）に対するＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を表すグラフ表示である。血糖値は、ＳＴＺ療法後１０日目に左心室にＳＴＲＯ−１＋細胞を注射した（ＣＭ）、またはビヒクルを注射した（ＣＶ）糖尿病マウスにおいて決定した。血糖値は、平均グルコース（mean glucose）（ｍＭ）＋／−ＳＥである。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図２はＳＴＺ処置１０日後のベースラインと比較した、処置後７、１４および２１日目のＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける血糖値（ＢＧＬ）に対するＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。血糖値は、左心室にビヒクルを注射した（ＣＶ）またはＳＴＲＯ−１＋細胞を注射した（ＣＭ）糖尿病マウスにおいて決定した。結果は、１０日目の細胞療法の開始時に対するＢＧＬの変化の％として表す。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図３は細胞療法投与の２１日後のＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおけるインスリンレベルに対するＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。血清中マウスインスリンレベルは、左心室にビヒクルを注射した（ＣＶ）またはＳＴＲＯ−１＋細胞を注射した（ＣＭ）、糖尿病マウスにおいて決定した。マウスインスリン値は、μｇ／Ｌ＋／−ＳＥである。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図４Ａは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける膵臓の微小血管密度に対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。抗平滑筋アクチン（ＳＭＡ）により染色された微小血管の合計数を、膵臓切片のサイズ分布／断面積に基づき決定した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８であり、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図４ＢはＳＴＲＯ−１細胞を用いて処置したマウスの膵臓組織において、様々な直径の、マウス抗平滑筋アクチンＩｇＧ２ａ−ＦＩＴＣにより染色された微小血管を示す顕微鏡写真（２００×）のコピーである。 図５Ａは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける膵臓のｍＲＮＡのプロファイルに対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。ＲＮＡは、ビヒクル群（ＣＶ）およびＳＴＲＯ−１療法群（ＣＭ）の膵臓組織から抽出し、逆転写し、ベータ細胞の再生に関連する転写因子、Ｍａｆａ、Ｎｇｎ３、Ｐｄｘ−１に関してＰＣＲ増幅した。ＲＮＡの合計含有量を、ハウスキーピング遺伝子のベータアクチンを基準にして正規化した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８およびＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図５Ｂは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおけるＰＤＸ−１陽性細胞に対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。抗ＰＤＸ−１により染色された膵臓組織を、島面積のＰＤＸ−１陽性細胞／ｍｍ２に関して分析した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６および未処理対照（ＳＴＺなし）はＮ＝３であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図５Ｃはマウス抗ＰＤＸ−１（ＩｇＧ２ｂ）を用いて染色し、ヤギ抗マウスＩｇＧ２ｂ−Ａｌｅｘａ５５５コンジュゲートを用いて検出した、抗原検索し、ホルマリン固定し、パラフィン包埋した切片を示す、一連の顕微鏡写真（４００×）のコピーである。 図６Ａは細胞療法の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける膵島の特徴に対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。Ｈ＆Ｅにより染色した膵臓組織を、島密度に関して分析し、試験した断面積を基準にして正規化した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８であり、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図６Ｂは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける膵島の特徴に対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。Ｈ＆Ｅにより染色した膵臓組織を、平均島直径に関して分析し、試験した断面積を基準にして正規化した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８であり、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６であった。 図６Ｃは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける膵島の特徴に対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。Ｈ＆Ｅにより染色した膵臓組織を、平均島面積に関して分析し、試験した断面積を基準にして正規化した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８であり、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６であった。 図７Ａは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、島の特徴に関する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。抗インスリンにより染色した膵臓組織を、インスリン陽性細胞／島面積ｍｍ２に関して分析した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６および未処理対照（ＳＴＺなし）はＮ＝３であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図７Ｂはモルモット抗インスリンを用いて染色し、抗モルモットＩｇＧ−Ｒｈｏｄａｍｉｎｅコンジュゲートを用いて検出した、抗原検索し、ホルマリン固定し、パラフィン包埋した切片を示す、一連の顕微鏡写真（２００×）のコピーである。処置群を、個々の顕微鏡写真の下に示す。 図７Ｃは細胞療法投与の２１日後の、ＳＴＺ誘導性糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける島の特徴に対する動脈内ＳＴＲＯ−１＋細胞の効果を示すグラフ表示である。抗グルカゴンにより染色した膵臓組織を、グルカゴン陽性細胞／島面積ｍｍ２に関して分析した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６および未処理対照（ＳＴＺなし）はＮ＝３であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。 図７Ｄはマウス抗グルカゴンを用いて染色し、ヤギ抗マウスＩｇＧ−ＦＩＴＣコンジュゲートを用いて検出した、抗原検索し、ホルマリン固定し、パラフィン包埋した切片を示す、一連の顕微鏡写真（２００×）のコピーである。処置群を、個々の顕微鏡写真の下に示す。 図７Ｅは合計アルファ＋ベータ細胞の割合としての島内ベータ細胞の数を示すグラフ表示である。表示したデータは、インスリン陽性細胞の数／島面積ｍｍ２およびグルカゴン陽性細胞の数／島面積ｍｍ２から計算した。データは平均＋／−ｓｅｍで表し、動物は、ビヒクル群はＮ＝８、ＳＴＲＯ−１療法はＮ＝６および未処理対照（ＳＴＺなし）はＮ＝３であった。スチューデントｔ検定を実施し、ｐ＜０．０５において有意であった。
好ましい実施形態の詳細な説明
一般的技術および選択した定義
本明細書を通して、特に明記しない限り、または文脈が求めない限り、１つのステップ
、組成物（composition of matter）、ステップの群または組成物の群は、１つおよび複
数（すなわち１つ以上）のそれらのステップ、組成物、ステップの群または組成物の群を
包含するものとして解釈するべきである。
本明細書に記載の個々の実施形態または例は、特に明記されない限り各々およびすべて
の他の実施形態に必要な変更を加えて適用される。例えば、被験体における膵機能障害の
治療および／または予防および／または発症の遅延および／または進行の遅延を対象とす
る、本明細書に記載の個々の実施形態または例は、それらの実施形態が本明細書に明確に
列挙されたかのように、膵機能の改善および／または膵臓再生の誘導または促進のための
方法に必要な変更を加えて適用される。
膵機能障害の治療に関する本明細書に記載の個々の実施形態は、それらの実施形態が本
明細書に明確に列挙されたかのように、炭水化物代謝障害の治療に必要な変更を加えて適
用されると解釈されるべきである。
膵機能障害の治療に関する本明細書に記載の個々の実施形態は、それらの実施形態が本
明細書に明確に列挙されたかのように、糖尿病、例えばＩ型糖尿病またはＩＩ型糖尿病の
治療に必要な変更を加えて適用されると解釈されるべきである。
当業者は、本明細書に記載の発明は、具体的に明記した以外の変更および改変が可能で
あることを理解するであろう。本発明がこのような変更および改変のすべてを含むことは
理解されるべきである。本発明は、本明細書に言及された、または示されたステップ、特
徴、組成物および化合物のすべてを個別に、または集合的にさらに含み、前記ステップも
しくは特徴のありとあらゆる組み合わせまたは任意の２つ以上をさらに含む。
本発明の範囲は、本明細書に記載の具体的な実施形態に限定されるものではなく、これ
らは単なる例示目的を意図している。機能的に同等の生成物、組成物および方法は、本明
細書に記載されたように、明確に本発明の範囲内である。
本発明は、明記されない限り、分子生物学、微生物学、ウィルス学、組換えＤＮＡ技術
、溶液中のペプチド合成、固相ペプチド合成および免疫学の従来技術を使用して、過度な
実験を行うことなく実施される。このような手順は、例えばSambrook、Fritsch&Maniatis
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Fenichel,R.L.(1976年).Biochem.Biophys.Res.Commun.73 336〜342頁;Merrifield,R.B.(
1963年).J.Am.Chem.Soc.85、2149〜2154頁;Barany,G.およびMerrifield,R.B.(1979年)のT
he Peptides(Gross,E.およびMeienhofer,J.編)、vol.2、1〜284頁、Academic Press、New
York.12.Wunsch,E.編(1974年)Synthese von Peptiden in Houben-Weyls Metoden der Or
ganischen Chemie(Muler,E.編)、vol.15、第4版、パート1および2、Thieme、Stuttgart;B
odanszky,M.(1984年)Principles of Peptide Synthesis、Springer-Verlag、Heidelberg;
Bodanszky,M.&Bodanszky,A.(1984年)The Practice of Peptide Synthesis、Springer-Ver
lag、Heidelberg;Bodanszky,M.(1985年)Int.J.Peptide Protein Res.25、449〜474頁;Han
dbook of Experimental Immunology、Vol.I〜IV(D.M.WeirおよびC.C.Blackwell編、1986
年、Blackwell Scientific Publications);ならびにAnimal Cell Culture:Practical App
roach、第3版(John R.W.Masters編、2000年)、ISBN0199637970のテキスト全体に記載され
ている。
本明細書を通して、文脈が必要としない限り、「含む（comprise）」という用語または
「含む（comprises）」もしくは「含むこと（comprising）」などの変形は、表記のステ
ップもしくは要素もしくは整数またはステップもしくは要素もしくは整数の群を含むこと
を意味し、任意の他のステップもしくは要素もしくは整数または要素もしくは整数の群を
排除することを意味しないと理解される。
本明細書において使用する場合、「に由来する」という用語は、特定の完全なもの（in
teger）は特定の供給源から得ることができるが、必ずしもその供給源から直接ではない
ことを示すと解釈されるべきである。ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞に
由来する可溶性因子に関しては、この用語は１種以上の因子、例えば、ＳＴＲＯ−１＋細
胞および／またはその子孫細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで培養する間に産生されるタンパク質
、ペプチド、炭水化物などを意味すると解釈されるべきである。
本明細書において使用する場合、「膵機能の改善」という用語は、被験体における１つ
以上の膵臓の機能が、本発明に従って治療されたことのない被験体における（好ましくは
治療前の上記被験体における）同じ機能と比較して強化されることを意味すると解釈され
るべきである。このような用語は、例えば、グルコースの代謝障害を患っている恐れのあ
る、または患っている恐れのない被験体において、インスリン分泌のレベルが増加するこ
とまたはインスリン分泌の制御が改善することを包含する。この用語は、例えば、そのホ
ルモンのレベルが増加した被験体において（例えば、グルカゴン分泌腫瘍の結果として）
および／または低血糖を患う被験体において、グルカゴンの分泌が減少することをさらに
包含する。
本明細書において使用する場合、「膵機能障害（pancreatic dysfunction）」という用
語は、被験体における１つまたは複数の膵臓の機能が、正常および／または健康な個体に
おける同じ機能と異なる任意の病態を意味すると解釈されるべきである。例えば、「膵機
能障害」という用語は、被験体における膵臓の内分泌機能および／または外分泌機能が、
正常および／または健康な個体と比較して強化される、または減少する病態を包含する。
例えば、「膵機能障害」は、インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、膵臓ポリペプチ
ド、トリプシノーゲン、キモトリプシノーゲン、エラスターゼ、カルボキシペプチダーゼ
、膵リパーゼまたはアミラーゼのレベルによって特徴付けられる、それらに関連し得る、
またはそれらの異常（すなわち増加または減少）によって引き起こされ得る。「膵機能障
害を治療する」という用語が、膵機能の正常化（例えば、１つまたは複数の膵機能の異常
が、正常な、および／または健康な個体におけるそれらの機能とより近くなるように減少
または強化されるような被験体の治療）を包含することは、前述から当業者には明らかで
あろう。例えば、このような治療は、インスリンおよび／またはベータ細胞および／また
は島のレベルが異常に減少した被験体において、インスリンレベルの増加および／または
膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵島の数の増加をもたらし得る。このような治
療は、例えば膵臓のグルカゴン分泌腫瘍の場合、例えば、グルカゴン分泌アルファ細胞の
数の減少によって、および／またはグルカゴンの発現、産生および／もしくは分泌の減少
によって、異常に増加したグルカゴンレベルを同等に減少させることができる。「膵機能
障害の予防または遅延」という用語の意味は、前述に基づいて当業者には明らかであろう
。
膵機能障害は、例えば膵臓によって産生される消化酵素（例えば、リパーゼもしくはア
ミラーゼ）のレベルの減少の結果として、および／または膵液の産生の減少によって、栄
養（例えば、炭水化物、脂質またはタンパク質）の吸収不良をもたらす病態に関連し得る
、またはそれを引き起こす。このような病態には、膵炎、膵機能不全（pancreatic insuf
ficiency）、後天性自己免疫不全症候群（acquired autoimmune deficiency syndrome）
、がん、嚢胞性線維症またはゾリンジャー・エリソン症候群が含まれる。好ましい例にお
いて、この病態は、膵臓によって産生されるアミラーゼまたはリパーゼの減少が原因で起
こる、またはそれに関連する。
膵機能障害は、被験体による栄養素の使用または代謝の異常に関連する病態、例えば高
血糖もしくは低血糖、血清中アミノ酸レベルの減少、タンパク質尿、壊死融解性移動性紅
斑（necrolytic migratory erythema）をもたらす病態にさらに関連し得る、またはその
原因であり得る。このような病態は、炭水化物代謝障害、例えば糖尿病を含む。他の病態
は、例えば、腫瘍（例えば、高血糖の原因となりうるグルカゴン分泌腫瘍）を含む。例示
的腫瘍は、グルカゴノーマを含む。
本明細書において使用する場合、「炭水化物代謝障害」という用語は、被験体が、炭水
化物の１種または複数種の形態を分解もしくは代謝または摂取もしくは使用できない、あ
るいは炭水化物の１種または複数種の形態を分解もしくは代謝または摂取もしくは使用す
る能力が減少した、一般的に、被験体の血流中のその／それらの炭水化物（複数可）のレ
ベルの増加をもたらす任意の障害を意味すると解釈されるべきである。好ましくは、炭水
化物代謝障害は、炭水化物の分解に関与するホルモンの膵臓による産生（例えば、アミラ
ーゼの産生）を減少させることに関連する、またはそれが原因で起こる。さらに好ましく
は、炭水化物代謝障害は、炭水化物の摂取に関与するホルモンの膵臓による産生（例えば
、インスリンの産生）を減少させることに関連する、またはそれが原因で起こる。例示的
炭水化物代謝障害には、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、特発性Ｉ型糖尿病（Ｉｂ型）、早期
発症性ＩＩ型糖尿病（ＥＯＤ）、若年性非定型糖尿病（ＹＯＡＤ）、若年発症型成人糖尿
病（ＭＯＤＹ）、栄養障害関連糖尿病、妊娠性糖尿病、耐糖能障害（ＩＧＴ）の病態、空
腹時血糖異常の病態、代謝性アシドーシス、ケトーシス、Ｘ症候群、高血糖、低インスリ
ン血症、インスリン抵抗性、アルファマンノース症、ベータマンノース症、フルクトース
不耐症、フルコシド蓄積症、ガラクトース血症、リー病、ムコリピドーシス、ムコ多糖症
または前述の任意の１つまたは複数の合併症が含まれる。好ましくは、炭水化物代謝障害
は、糖尿病、例えばＩ型糖尿病またはＩＩ型糖尿病である。
好ましくは、糖尿病を患う被験体は、
− ７ｎｍｏｌ／Ｌまたは１２６ｍｇ／ｄｌ以上の空腹時血糖、
− 糖尿病の症状を伴う、１１．１ｎｍｏｌ／Ｌまたは２００ｍｇ／ｄｌ以上の随時血糖
（一日の任意の時間に採取）
− ２時間の間隔で測定した、１１．１ｎｍｏｌ／Ｌまたは２００ｍｇ／ｄｌ以上の経口
耐糖能試験（ＯＧＴＴ）値、ＯＧＴＴは、２または３時間の時間間隔で得る、
などの臨床的に容認された糖尿病マーカーを有する。
本明細書において使用する場合、「有効量」という用語は、投与前のそれらの膵機能と
比較して、および／もしくはＳＴＲＯ−１＋細胞および／もしくはその子孫細胞および／
もしくはそれらに由来する可溶性因子が投与されない被験体と比較して、ＳＴＲＯ−１＋
細胞および／もしくはその子孫細胞および／もしくはそれらに由来する可溶性因子が投与
された被験体において膵機能を改善するために十分な量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／も
しくはその子孫細胞および／もしくはそれらに由来する可溶性因子を意味すると解釈され
るべきである。例えば、有効量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／もしくはその子孫細胞およ
び／もしくはそれらに由来する可溶性因子は、基礎または安静時のグルコースレベル（血
糖（glycemia））の減少、および／または耐糖能の改善、および／または血中インスリン
レベルの増加、および／または血清中、もしくは膵臓中もしくは消化系におけるグルカゴ
ン、ソマトスタチン、膵臓ポリペプチド、トリプシノーゲン、キモトリプシノーゲン、エ
ラスターゼ、カルボキシペプチダーゼ、膵リパーゼもしくはアミラーゼのレベルの増加を
可能にする。有効量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそ
れらに由来する可溶性因子は、例えば、膵臓またはその領域の周辺または内部の血管系を
増加することによって、膵臓またはその領域への血液供給の増加をさらに可能にする。当
業者は、このような量は、例えば、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞およ
び／またはそれらに由来する可溶性因子および／または特定の被験体および／または膵機
能障害の型もしくは重症度に依存して変動するであろうことに気が付くと思われる。した
がって、この用語は、特定の量、例えば、細胞もしくは可溶性因子の重量もしくは数に本
発明を限定するものと解釈されるべきではなく、むしろ、本発明は被験体において膵機能
を改善するために十分な、任意の量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞お
よび／またはそれらに由来する可溶性因子を包含する。膵機能を検出する方法、および／
または膵機能を改善するために十分なＳＴＲＯ−１＋細胞および／もしくはその子孫細胞
および／もしくはそれらに由来する可溶性因子の量を決定する方法は、当業者には明らか
である、および／または本明細書に記載されている。有効量は、必ずしも膵機能障害を治
療または予防する必要はない。
本明細書において使用する場合、「治療有効量」という用語は、膵機能障害に関連する
、またはそれが原因である臨床的病態の１つまたは複数の症状を、その病態の臨床的診断
として観察される、および容認されるレベルより低いレベルに減少させる、または阻害す
るために十分な量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれ
らに由来する可溶性因子を意味すると解釈されるべきである。例えば、治療有効量のＳＴ
ＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子
は、糖尿病の被験体において観察されるレベルから、発症前の被験体（例えば、耐糖能障
害または安静時血糖の障害）または正常もしくは健康な被験体において観察されるレベル
に、被験体において耐糖能を減少できる。
本明細書において使用する場合、「予防有効量」という用語は、膵機能障害に関連する
、またはそれが原因である臨床的病態の１つまたは複数の検出可能な症状の発症を予防ま
たは阻害するために十分な量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／
またはそれらに由来する可溶性因子を意味すると解釈されるべきである。例えば、予防有
効量のＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する
可溶性因子は、被験体が糖尿病と臨床的に診断される程度の障害になる被験体において、
耐糖能を予防できる。
本明細書において使用する場合、「治療（treat）」または「治療（treatment）」また
は「治療（treating）」という用語は、治療有効量の可溶性因子および／または細胞の投
与ならびに膵機能障害に関連する、またはそれが原因である臨床的病態の少なくとも１つ
の症状の減少または阻害を意味すると解釈されるべきである。
本明細書において使用する場合、「予防（prevent）」または「予防（preventing）」
または「予防（prevention）」という用語は、予防有効量の可溶性因子および／または細
胞の投与ならびに膵機能障害に関連する、またはそれが原因である臨床的病態の少なくと
も１つの症状の発症の停止または妨害を意味すると解釈されるべきである。
「膵機能障害の進行の遅延」は、治療が被験体において膵機能障害の重症度を減少させ
ることを意味する。このような重症度の減少は、例えば、膵機能障害の１つまたは複数の
合併症、例えば、栄養の吸収不良、低血糖、高血糖、ケトアシドーシス、網膜障害、白内
障、高血圧、腎不全、冠状動脈疾患、末梢血管疾患、神経障害（例えば、末梢神経障害ま
たは自立神経障害）または感染症の危険性の増加などの予防であり得る。代替的には、ま
たはさらに、膵機能障害の重症度の減少は、本発明の方法を使用した治療を受けたことが
ない被験体と比較した、治療的処置（therapeutic treatment）（例えば、インスリン投
与）の必要条件または被験体の治療的処置の規則性の減少を特徴とする。代替的には、ま
たはさらに、「膵機能障害の進行の減少」は、膵機能障害の進行を減少させる化合物を用
いた治療を受けたことがない糖尿病被験体と比較した、膵機能障害の１つまたは複数の検
出可能な症状の発症における遅延である。
本明細書において使用する場合、「可溶性因子」という用語は、ＳＴＲＯ−１＋細胞お
よび／またはその子孫細胞によって産生される、水溶性である任意の分子、例えば、タン
パク質、ペプチド、糖タンパク質、糖ペプチド、リポタンパク質、リポペプチド、炭水化
物などを意味すると解釈されるべきである。このような可溶性因子は、細胞内にあっても
よい、および／または細胞から分泌されていてもよい。このような可溶性因子は、複合混
合物（例えば、上清）および／もしくはそれらの分画であってよく、および／または精製
された因子であってよい。本発明の一例において、可溶性因子は上清である、または上清
に含有される。したがって、１種または複数種の可溶性因子の投与を対象とする本明細書
における任意の例は、上清の投与に必要な変更を加えた適用と解釈されるべきである。
本明細書において使用する場合、「上清」という用語は、適切な培地、好ましくは液体
培地において、間葉前駆細胞および／またはその子孫細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ培養後に産
生される非細胞性材料を指す。通常、上清は、適切な条件および時間の下で培地において
細胞を培養し、その後、例えば遠心分離などの方法によって、細胞性材料を除去すること
によって作製される。上清は、投与前にさらなる精製ステップに供与されても、されなく
てもよい。好ましい例において、上清は、１０５未満、より好ましくは１０４未満、より
好ましくは１０３未満の生細胞を含み、さらにより好ましくは生細胞を含まない。
本明細書において使用する場合、「正常または健康な個体」という用語は、当分野にお
いて公知の任意の方法、および／または本明細書に記載の任意の方法によって評価された
膵機能障害を患っていない被験体を意味すると解釈されるべきである。
ＳＴＲＯ−１＋細胞または子孫細胞、それらに由来する上清または１種もしくは複数種
の可溶性因子
ＳＴＲＯ−１＋細胞は、骨髄、血液、歯髄細胞、脂肪組織、皮膚、脾臓、膵臓、脳、腎
臓、肝臓、心臓、網膜、脳、毛包、腸、肺、リンパ節、胸腺、骨、靭帯、腱、骨格筋、真
皮および骨膜に見出される細胞であり、生殖細胞系、例えば、中胚葉および／または内胚
葉および／または外胚葉に分化できる。
一実施形態において、ＳＴＲＯ−１＋細胞は、限定するものではないが、脂肪、骨、軟骨、弾性、筋肉および線維結合の組織を含む多くの細胞型に分化できる多能性細胞（multipotential cell）である。これらの細胞が進入する特定の分化系列決定（lineage-commitment）および分化経路は、機械的影響および／または内因性生物活性因子、例えば成長因子、サイトカインおよび／または宿主組織により確立される局所的微小環境条件からの様々な影響に依存する。したがってＳＴＲＯ−１＋多能性細胞は、分裂し、時がたてば非可逆的に分化して表現型細胞を得るであろう、幹細胞または前駆細胞のどちらかである娘細胞を得る非造血祖先細胞（非造血前駆細胞（non-hematopoietic progenitor cell））である。
好ましい例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞は、被験体、例えば、治療される被験体また
は関係する被験体または無関係の被験体（同じ種または異なる種のどちらであっても）か
ら得られた試料から濃縮される。「濃縮された（enriched）」、「濃縮（enrichment）」
という用語またはそれらの変形は、１種の特定の細胞型の比率または多数の特定の細胞型
の比率が、未処理集団と比較した場合増加している細胞集団を記載するために本明細書に
おいて使用する。
好ましい例において、本発明において使用される細胞は、ＴＮＡＰ＋、ＶＣＡＭ−１＋
、ＴＨＹ−１＋、ＳＴＲＯ−２＋、ＣＤ４５＋、ＣＤ１４６＋、３Ｇ５＋またはそれらの
任意の組み合わせからなる群から個別に、または集合的に選択される１種または複数種の
マーカーを発現する。
「個別に」は、本発明が、列挙したマーカーまたはマーカーの群を別々に包含すること
を意味し、個別のマーカーまたはマーカーの群が本明細書に別々に載せることができなく
ても、添付の特許請求の範囲は、このようなマーカーまたはマーカーの群を、別々に、か
つ互いに分割可能に定義できることを意味する。
「集合的に」は、本発明が、任意の数の、または組み合わせた列挙したマーカーまたは
ペプチドの群を包含することを意味し、このような数または組み合わせのマーカーまたは
マーカーの群が、本明細書に具体的に載せられなくても、添付の特許請求の範囲がこのよ
うな組み合わせまたは従属する組み合わせ（sub-combination）を、別々に、かつ任意の
他のマーカーの組み合わせまたはマーカーの群から分割可能に定義できることを意味する
。
好ましくは、ＳＴＲＯ−１＋細胞はＳＴＲＯ−１ｂｒｉｇｈｔ（同義語ＳＴＲＯ−１ｂ
ｒｉ）である。好ましくは、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉｇｈｔ細胞は、さらに、ＴＮＡＰ＋、Ｖ
ＣＡＭ−１＋、ＴＨＹ−１＋、ＳＴＲＯ−２＋および／またはＣＤ１４６＋の１つまたは
複数である。
一例において、間葉前駆細胞は、WO2004/85630に定義されるように、血管周囲の間葉前
駆細胞である。
所与のマーカーに対して「陽性」であると称される細胞は、マーカーが細胞表面に存在
する程度に依存する、そのマーカーのレベルが低い（ｌｏまたはｄｉｍ）か、または高い
（ｂｒｉｇｈｔ、ｂｒｉ）かのどちらかを表し、ここでこの用語は、細胞の分類方法にお
いて使用される蛍光または他のマーカーの強度に関係し得る。ｌｏ（またはｄｉｍもしく
はｄｕｌｌ）およびｂｒｉの区別は、分類される特定の細胞集団に使用するマーカーに関
連すると理解されるであろう。所与のマーカーに対して「陰性」と称される細胞は、必ず
しも完全にその細胞に不在なわけではない。この用語は、マーカーがその細胞によって相
対的に非常に低いレベルで発現されることを意味し、検出可能に標識された場合、マーカ
ーは非常に低いシグナルを発生する、またはバックグラウンドのレベルを超えて検出でき
ないことを意味する。
本明細書において使用する場合、「bright」という用語は、検出可能に標識された場合
、比較的高いシグナルを発生する細胞表面上のマーカーを指す。理論に縛られることを望
むわけではないが、「bright」細胞は、試料中の他の細胞より多くの標的マーカータンパ
ク質（例えば、ＳＴＲＯ−１により認識される抗原）を発現することが提唱されている。
例えば、ＦＩＴＣ−コンジュゲートＳＴＲＯ−１抗体を用いて標識した場合、蛍光活性化
細胞分類（ＦＡＣＳ）分析によって決定して、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉ細胞は、非bright細胞
（ＳＴＲＯ−１ｄｕｌｌ／ｄｉｍ）より多くの蛍光シグナルを発生する。好ましくは、「
bright」細胞は、開始試料中に含有される、最も明るく標識された骨髄単核細胞の少なく
とも約０．１％を構成する。他の例において、「bright」細胞は、開始試料中に含有され
る、最も明るく標識された骨髄単核細胞の少なくとも約０．１％、少なくとも約０．５％
、少なくとも約１％、少なくとも約１．５％または少なくとも約２％を構成する。好まし
い例において、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉｇｈｔ細胞は、「バックグラウンド」、すなわちＳＴ
ＲＯ−１―である細胞に対して２ｌｏｇの大きさ分高い発現のＳＴＲＯ−１表面発現を有
する。比較すると、ＳＴＲＯ−１ｄｉｍおよび／またはＳＴＲＯ−１ｉｎｔｅｒｍｅｄｉ
ａｔｅ細胞は、２ｌｏｇ未満の大きさ分高い、通常約１ｌｏｇまたは「バックグラウンド
」より低い発現のＳＴＲＯ−１表面発現を有する。
本明細書において使用する場合、「ＴＮＡＰ」という用語は、組織非特異的アルカリホ
スファターゼのすべてのアイソフォームを包含することを意図する。例えば、この用語は
、肝臓のアイソフォーム（ＬＡＰ）、骨のアイソフォーム（ＢＡＰ）および腎臓のアイソ
フォーム（ＫＡＰ）を包含する。好ましい例において、ＴＮＡＰはＢＡＰである。特に好
ましい例において、本明細書において使用する場合、ＴＮＡＰは、寄託番号ＰＴＡ−７２
８２で、ブダペスト条約の規定を下に、２００５年１２月１９日にＡＴＣＣに寄託された
ハイブリドーマ細胞系によって産生されるＳＴＲＯ−３抗体に結合できる分子を指す。
さらに、好ましい例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞は、クローン原性ＣＦＵ−Ｆを生じ
ることができる。
かなりの割合のＳＴＲＯ−１＋多能性細胞が、少なくとも２種の異なる生殖細胞系に分
化できることが好ましい。多能性細胞が分化決定され得る（committed）系列の非限定例
は、骨前駆体細胞、胆管上皮細胞および肝細胞に関して多能である肝細胞の祖先；乏突起
膠細胞および星状細胞に進行するグリア細胞前駆体を発生できる神経制限細胞（neural r
estricted cells）；ニューロンに進行する神経前駆体；心筋および心筋細胞の前駆体、
グルコース反応性インスリン分泌膵臓ベータ細胞系を含む。他の細胞系は、限定するもの
ではないが、象牙芽細胞、象牙質産生細胞および軟骨細胞ならびに以下の前駆細胞：網膜
色素上皮細胞、線維芽細胞、ケラチノサイトなどの皮膚細胞、樹状細胞、毛包細胞、腎管
上皮細胞、平滑筋細胞および骨格筋細胞、精巣の祖先、血管内皮細胞、腱、靭帯、軟骨、
含脂肪細胞、線維芽細胞、骨髄基質、心筋、平滑筋、骨格筋、周皮細胞、血管、上皮、グ
リア、ニューロン、星状細胞および乏突起膠細胞の細胞を含む。
別の例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞は、培養において造血細胞を発生できない。
一例において、治療されるべき被験体から細胞を採取し、標準的技術を使用してｉｎ
ｖｉｔｒｏで培養し、自己移植または同種異系の組成物として被験体に投与するための、
上清または可溶性因子または増殖細胞を得るために使用する。代替の例において、確立さ
れたヒト細胞系の１種または複数種の細胞を使用する。本発明の別の有用な例において、
非ヒト動物（または患者がヒトでない場合、別の種から）の細胞を使用する。
本発明は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ培養により産生されたＳＴＲＯ−１＋細胞および／または
その子孫細胞（後者はさらに増殖細胞とも称される）から得られる、または由来する上清
または可溶性因子の使用をさらに企図する。本発明の増殖細胞は、培養条件（培養培地中
の刺激因子の数および／または型を含む）、継代数などに依存して広範囲の表現型を有し
得る。特定の例において、子孫細胞は、約２、約３、約４、約５、約６、約７、約８、約
９または約１０継代後に、親集団から得る。しかし、子孫細胞は、任意の継代数後に親集
団から得てもよい。
子孫細胞は、任意の適切な培地における培養によって得ることができる。細胞培養に関
して使用する場合、「培地」という用語は、細胞を取り囲む環境の成分を含む。培地は、
固体、液体、気体または相および材料の混合物であってよい。培地は、液体成長培地およ
び細胞成長を維持しない液体培地を含む。培地は、寒天、アガロース、ゼラチンおよびコ
ラーゲンマトリックスなどのゼラチン状培地も含む。例示的気体培地は、ペトリ皿または
他の固体もしくは半固体支持体上で成長する細胞が晒されている気相を含む。「培地」と
いう用語は、それが細胞に接触していなくても、細胞培養における使用を意図する材料を
さらに指す。言い換えれば、細菌培養のために調製された栄養豊富な液体は培地である。
水または他の液体と混合した場合に細胞培養に適切となる粉末混合物は、「粉末培地」と
呼ぶことができる。
例において、本発明の方法に有用な子孫細胞は、ＳＴＲＯ−３抗体によって標識された
磁気ビーズを使用して骨髄からＴＮＡＰ−ＳＴＲＯ−１＋細胞を単離し、その後、単離細
胞を培養増殖することによって、得られる（適切な培養条件の例として、Ｇｒｏｎｔｈｏ
ｓら、Ｂｌｏｏｄ ８５：９２９〜９４０頁、１９９５年を参照されたい）。
一例において、このような増殖細胞（子孫）（好ましくは、少なくとも５継代後）は、
ＴＮＡＰ−、ＣＣ９−、ＨＬＡクラスＩ＋、ＨＬＡクラスＩＩ−、ＣＤ１４−、ＣＤ１９
−、ＣＤ３−、ＣＤ１１ａ−ｃ−、ＣＤ３１−、ＣＤ８６−、ＣＤ３４−および／または
ＣＤ８０−であり得る。しかし、様々なマーカーの発現が変動し得る本明細書に記載の培
養条件とは異なる培養条件下も可能である。さらに、これらの表現型の細胞は増殖細胞集
団において優勢であり得るが、この表現型（複数可）を有さない細胞の小型の集団（例え
ば、ごくわずかなパーセントの増殖細胞は、ＣＣ９−であり得る）が存在することを意味
するものではない。好ましい一例において、増殖細胞は、異なる細胞型に分化する能力も
また有する。
一例において、上清もしくは可溶性因子または細胞それ自体を得るために使用する増殖
細胞集団は、細胞の少なくとも２５％、より好ましくは少なくとも５０％がＣＣ９＋であ
る細胞を含む。
別の例において、上清もしくは可溶性因子または細胞それ自体を得るために使用する増
殖細胞集団は、細胞の少なくとも４０％、より好ましくは少なくとも４５％がＳＴＲＯ−
１＋である細胞を含む。
さらなる例において、増殖細胞は、ＬＦＡ−３、ＴＨＹ−１、ＶＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ
−１、ＰＥＣＡＭ−１、Ｐ−セレクチン、Ｌ−セレクチン、３Ｇ５、ＣＤ４９ａ／ＣＤ４
９ｂ／ＣＤ２９、ＣＤ４９ｃ／ＣＤ２９、ＣＤ４９ｄ／ＣＤ２９、ＣＤ９０、ＣＤ２９、
ＣＤ１８、ＣＤ６１、インテグリンベータ６〜１９、トロンボモジュリン、ＣＤ１０、Ｃ
Ｄ１３、ＳＣＦ、ＰＤＧＦ−Ｒ、ＥＧＦ−Ｒ、ＩＧＦ１−Ｒ、ＮＧＦ−Ｒ、ＦＧＦ−Ｒ、
レプチン−Ｒ（ＳＴＲＯ−２＝レプチン−Ｒ）、ＲＡＮＫＬ、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉｇｈｔ
およびＣＤ１４６またはこれらのマーカーの任意の組み合わせからなる群から集合的に、
または個別に選択される、１種または複数種のマーカーを発現できる。
一例において、子孫細胞は、ＷＯ２００６／０３２０９２において多能性拡大ＳＴＲＯ
−１＋多能性細胞の子孫（Multipotential Expanded STRO-1+ Multipotential cell）（
ＭＥＭＰ）として定義および／または記載されている。子孫が由来し得るＳＴＲＯ−１＋
多能性細胞の豊富な集団を調製するための方法は、ＷＯ０１／０４２６８およびＷＯ２０
０４／０８５６３０に記載されている。ｉｎ ｖｉｔｒｏ環境において、ＳＴＲＯ−１＋
多能性細胞が絶対的に純粋な調製品として存在することはまれであり、一般的に、組織特
異的単分化能細胞（ＴＳＣＣ）である他の細胞と共に存在すると思われる。ＷＯ０１／０
４２６８は、このような細胞を、純度レベル約０．１％から９０％で骨髄から回収するこ
とを述べている。子孫が由来するＭＰＣを含む集団は、組織供給源から直接回収でき、ま
たは代替的に、ｅｘ ｖｉｖｏですでに拡大されている集団であってもよい。
例えば、子孫は、回収された、拡大されていない、実質的に精製された、それらが存在
する集団の合計細胞の少なくとも約０．１、１、５、１０、２０、３０、４０、５０、６
０、７０、８０または９５％を含むＳＴＲＯ−１＋多能性細胞の集団から得ることができ
る。このレベルは、例えば、ＴＮＡＰ、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉｇｈｔ、３Ｇ５＋、ＶＣＡＭ
−１、ＴＨＹ−１、ＣＤ１４６およびＳＴＲＯ−２からなる群から、個別に、または集合
的に選択される少なくとも１種のマーカーに対して陽性である細胞を選択することによっ
て達成できる。
ＭＥＭＰＳは、マーカーのＳＴＲＯ−１ｂｒｉに対して陽性であり、マーカーのアルカ
リホスファターゼ（ＡＬＰ）に対して陰性である点で、採取したばかりのＳＴＲＯ−１＋
多能性細胞と識別可能である。対照的に、単離したばかりのＳＴＲＯ−１＋多能性細胞は
、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉおよびＡＬＰの両方に対して陽性である。本発明の好ましい例にお
いて、投与された細胞の少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、
７０％、８０％、９０％または９５％が、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉ、ＡＬＰ−の表現型を有す
る。さらに好ましい例において、ＭＥＭＰＳは、Ｋｉ６７、ＣＤ４４および／またはＣＤ
４９ｃ／ＣＤ２９、ＶＬＡ−３、α３β１の１つまたは複数のマーカーに対して陽性であ
る。この上さらに好ましい例において、ＭＥＭＰはＴＥＲＴ活性を示さず、および／また
はマーカーのＣＤ１８に対して陰性である。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の出発集団は、ＷＯ０１／０４２６８またはＷＯ２００４／０８５
６３０に提示される任意の１つまたは複数の組織型、すなわち、骨髄、歯髄細胞、脂肪組
織および皮膚に由来することができ、または、さらに広範囲には、脂肪組織、歯、歯髄、
皮膚、肝臓、腎臓、心臓、網膜、脳、毛包、腸、肺、脾臓、リンパ節、胸腺、膵臓、骨、
靭帯、骨髄、腱および骨格筋、に由来することができる。
本発明の実施において、任意の所与の細胞表面マーカーを担持する細胞の分離は、多数
の異なる方法によってもたらされ得るが、好ましい方法は、結合剤（例えば、抗体または
それらの抗原結合断片）と関連するマーカーとの結合、それに続く、高レベルの結合また
は低レベルの結合または結合なしのいずれかである結合を示すものの分離によることは理
解されるであろう。最も簡便な結合剤は、抗体または抗体に基づく分子であり、特異性の
ために、モノクローナル抗体である、またはモノクローナル抗体に基づく分子が好ましい
。抗体は、両方のステップに使用できるが、他の薬剤もまた使用でき、したがって、これ
らのマーカーに対するリガンドを、抗体を担持する細胞または抗体を欠いた細胞を濃縮す
るためにも使用できる。
抗体またはリガンドは、固体支持体と結合して粗分離を可能にする。分離技術は、好ま
しくは回収される分画の生存力を最大に保有する。有効性の異なる様々な技術を用いて、
比較的未精製の分離物を得ることができる。用いる特定の技術は、分離の有効性、付随す
る細胞障害性、実施の容易さおよび速度ならびに精巧な装置および／または技術能力の必
要性に依存するであろう。分離手順は、限定するものではないが、抗体コーティング磁気
ビーズを使用した磁気分離、アフィニティクロマトグラフィーおよび固体マトリックスに
結合した抗体を用いた「パニング」を含み得る。正確な分離を提供する技術は、限定する
ものではないが、ＦＡＣＳを含む。ＦＡＣＳを実施する方法は、当業者には明らかである
と思われる。
本明細書に記載の個々のマーカーに対する抗体は市販されており（例えば、ＳＴＲＯ−
１に対するモノクローナル抗体は、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ＵＳＡから購入可能である
）、ＡＴＣＣまたは他の寄託組織から利用可能であり、および／または当分野により認識
された技術を使用して作製できる。
ＳＴＲＯ−１＋細胞を単離する方法は、例えば、ＳＴＲＯ−１の高レベル発現を認識す
る例えば磁気活性化細胞分類（ＭＡＣＳ）を利用する、固相分類ステップである第１ステ
ップを含むことが好ましい。特許明細書ＷＯ０１／１４２６８に記載のように、必要に応
じて第２分類ステップを次に続けて、高レベルの前駆細胞発現をもたらすことができる。
この第２分類ステップは、２種以上のマーカーの使用を含み得る。
ＳＴＲＯ−１＋細胞を得る方法は、公知の技術を使用した第１の濃縮ステップの前に、
細胞供給源の回収ステップも含み得る。したがって、組織を外科的に取り出すことになる
。供給源組織を含む細胞は、その後、いわゆる単一細胞懸濁液に分離されるであろう。こ
の分離は、物理的方法および／または酵素的方法によって達成され得る。
一度適切なＳＴＲＯ−１＋細胞集団が得られたら、任意の適切な方法によって細胞を培
養または拡大し、ＭＥＭＰを得ることができる。
一例において、細胞を、治療されるべき被験体から採取し、標準的技術を使用してｉｎ
ｖｉｔｒｏで培養し、自己組成物または同種異系組成物として被験体に投与するための
、上清または可溶性因子、または増殖細胞を得るために使用する。代替の例において、確
立されたヒト細胞系の１種または複数種の細胞を、上清または可溶性因子を得るために使
用する。本発明の別の有用な例において、非ヒト動物（または患者がヒトでない場合、別
の種から）の細胞を、上清または可溶性因子を得るために使用する。
本発明は、限定するものではないが、非ヒト霊長類細胞、有蹄類、イヌ、ネコ、ウサギ
、げっ歯類、鳥類、および魚類の細胞を含む任意の非ヒト動物種由来の細胞を使用して実
践できる。本発明を実践できる霊長類細胞は、限定するものではないが、チンパンジー、
ヒヒ、カニクイザルおよび任意の他の新世界ザルまたは旧世界ザルの細胞を含む。本発明
を実施できる有蹄類細胞は、限定するものではないが、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウマ
、水牛およびバイソンを含む。本発明を実施できるげっ歯類細胞は、限定するものではな
いが、マウス、ラット、モルモット、ハムスターおよびアレチネズミの細胞を含む。本発
明を実施できるウサギ種の例は、家畜ウサギ、ジャックウサギ、野ウサギ、ワタオウサギ
、カンジキウサギおよびナキウサギを含む。ニワトリ（Gallus gallus）は、本発明を実
施できる鳥類の例である。
本発明の方法に有用な細胞は、使用前、または上清もしくは可溶性因子を得る前に貯蔵
できる。真核細胞、特に哺乳動物細胞の保存および貯蔵のための方法およびプロトコルは
、当分野において公知である（例えば、Pollard,J.W.およびWalker,J.M.(1997年)Basic C
ell Culture Protocols、第2版、Humana Press、Totowa,N.J.;Freshney,R.I.(2000年)Cul
ture of Animal Cells、第4版、Wiley-Liss、Hoboken、N.J.を参照されたい）。単離幹細
胞、例えば間葉幹細胞／祖先細胞またはそれらの子孫の生物学的活性を維持する任意の方
法は、本発明に関連して利用できる。好ましい一例において、細胞は、凍結保存を使用す
ることによって、維持し、貯蔵される。
遺伝子改変細胞
一例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞は、例えば、目的とな
るタンパク質、例えば、治療効果および／または予防効果をもたらすタンパク質、例えば
、インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、トリプシノーゲン、キモトリプシノーゲン
、エラスターゼ、カルボキシペプチダーゼ、膵リパーゼもしくはアミラーゼまたは血管形
成の強化と関係のあるまたはその原因となるポリペプチド、または細胞の膵臓細胞または
血管細胞への分化と関連のあるポリペプチドを発現および／または分泌するように遺伝子
改変される。
細胞の遺伝子改変方法は、当業者には明らかであると思われる。例えば、細胞において
発現される核酸を、細胞における発現を誘導するために動作可能にプロモーターに連結す
る。例えば、核酸を、被験体の様々な細胞において、プロモーター、例えばウィルスプロ
モーター、例えば、ＣＭＶプロモーター（例えば、ＣＭＶ−ＩＥプロモーター）またはＳ
Ｖ−４０プロモーターと動作可能に連結する。さらに適切なプロモーターは当分野におい
て公知であり、本発明の例に必要な変更を加えて適用されると解釈されるべきである。
好ましくは、核酸は、発現構築体の形態で提供される。本明細書において使用する場合
、「発現構築体」という用語は、細胞において動作可能に連結される核酸（例えば、レポ
ーター遺伝子および／または対選択可能なレポーター遺伝子（counter-selectable repor
ter gene））において発現する能力を有する核酸を指す。本発明に関連して、発現構築体
は、プラスミド、バクテリオファージ、ファージミド、コスミド、ウィルスサブゲノム断
片もしくはウィルスゲノム断片または発現可能なフォーマットにおいて異種ＤＮＡを維持
および／または複製できる他の核酸を含むことができる、またはそれらであることは理解
されるべきである。
本発明の実践のために適切な発現構築体の構築方法は、当業者には明らかであると思わ
れ、例えば、Ausubelら (Current Protocols in Molecular Biology. Wiley Interscienc
e、ISBN 047 150338、1987年)またはSambrookら(Molecular Cloning: Molecular Cloning
: A Laboratory Manual、Cold Spring Harbor Laboratories、New York、第3版2001年）
に記載されている。例えば、発現構築体の個々の構成要素は、適切な鋳型核酸から、例え
ばＰＣＲ、続いて、適切な発現構築体、例えばプラスミドまたはファージミドなどへのク
ローニングを使用して増幅される。
このような発現構築体に適したベクターは、当分野において公知であり、および／また
は本明細書に記載した。例えば、哺乳動物細胞における本発明の方法に適切な発現ベクタ
ーは、例えば、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎにより供給されるｐｃＤＮＡベクタースイート（ｖ
ｅｃｔｏｒ ｓｕｉｔｅ）のベクター、ｐＣＩベクタースイートのベクター（Ｐｒｏｍｅ
ｇａ）、ｐＣＭＶベクタースイートのベクター（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）、ｐＭベクター（Ｃ
ｌｏｎｔｅｃｈ）、ｐＳＩベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）、ＶＰ１６ベクター（Ｃｌｏｎｔ
ｅｃｈ）またはｐｃＤＮＡベクタースイートのベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）のベク
ターである。
当業者は、さらなるベクターおよびこのようなベクターの供給業者、例えば、Invitrog
en Corporation、ClontechまたはPromegaを承知しているであろう。
単離核酸分子またはそれを含む遺伝子構築体を、発現のために細胞に導入する方法は、
当業者には公知である。所与の生物に使用する技術は、公知の成功した技術に依存する。
組換えＤＮＡを細胞に導入する方法は、マイクロインジェクション、ＤＥＡＥ−デキスト
ランによって仲介されるトランスフェクション、リポソームにより仲介される、例えば、
リポフェクタミン（Gibco、MD、USA）および／またはセルフェクチン（Gibco、MD、USA）
を使用することによるトランスフェクション、ＰＥＧにより仲介されるＤＮＡの取り込み
、エレクトロポレーションおよび例えば、とりわけＤＮＡコーティングタングステンまた
は金粒子（Agracetus Inc.、WI、USA）を使用することによる微粒子射突法（micropartic
le bombardment）を含む。
代替的には、本発明の発現構築体は、ウィルスベクターである。適切なウィルスベクタ
ーは、当分野において公知であり、市販されている。核酸送達およびその核酸の宿主細胞
ゲノムへの統合のための、従来のウィルスに基づく系は、例えば、レトロウィルスベクタ
ー、レンチウィルスベクターまたはアデノ関連ウィルスベクターを含む。代替的には、ア
デノウィルスベクターは、エピソーム性のままである核酸を宿主細胞に導入するために有
用である。ウィルスベクターは、標的の細胞および組織における遺伝子導入の有効かつ多
目的な方法である。加えて、高いトランスダクション効率が、多くの様々な細胞型および
標的組織において観察されている。
例えば、レトロウィルスベクターは、最大６〜１０ｋｂの外来配列に対するパッキング
能力を有するシス作用性の長鎖末端反復（ＬＴＲ）を、一般的に含む。最小シス作用性Ｌ
ＴＲは、ベクターの複製およびパッキングに十分であり、その後、発現構築体を標的細胞
に統合し、長期発現を提供するために使用される。広範囲に使用されるレトロウィルスベ
クターは、マウス白血病ウィルス（ＭｕＬＶ）、テナガザル白血病ウィルス（ＧａＬＶ）
、サル免疫不全ウィルス（ＳｒＶ）、ヒト免疫不全ウィルス（ＨＩＶ）およびそれらの組
み合わせに基づくベクターを含む（例えば、Buchscherら、J Virol.56:2731〜2739頁(199
2年);Johannら、J.Virol.65:1635〜1640頁(1992年);Sommerfeltら、Virol.76:58〜59頁(1
990年);Wilsonら、J.Virol.63:274〜2318頁(1989年);Millerら、J.Virol.65:2220〜2224
頁(1991年);PCT/US94/05700;MillerおよびRosman BioTechniques 7:980〜990頁、1989年;
Miller,A.D. Human Gene Therapy 7:5〜14頁、1990年;Scarpaら、Virology75:849〜852頁
、1991年;Burnsら、Proc.Natl.Acad.Sci USA 90:8033〜8037頁、1993年）。
様々なアデノ関連ウィルス（ＡＡＶ）ベクター系も、核酸送達のために開発されている
。ＡＡＶベクターは、当分野において公知の技術を使用して容易に構築できる。例えば、
米国特許第5,173,414号および第5,139,941号;国際公開番号WO92/01070およびWO93/03769;
Lebkowskiら、Molec.Cell.Biol.5:3988〜3996頁、1988年;Vincentら、(1990年)Vaccines
90(Cold Spring Harbor Laboratory Press);Carter Current Opinion in Biotechnology
5:533〜539頁、1992年;Muzyczka.Current Topics in MicrobiolおよびImmunol.158:97〜1
29頁、1992年;Kotin、Human Gene Therapy 5:793〜801頁、1994年;ShellingおよびSmith
Gene Therapy 7:165〜169頁、1994年;ならびにZhouら、J Exp.Med.179:1867〜1875頁、19
94年を参照されたい。
本発明の発現構築体を送達するために有用なさらなるウィルスベクターは、例えば、ワ
クチニアウィルスおよび鳥ポックスウィルスなどのポックファミリーのウィルスまたはア
ルファウィルスに由来するウィルスベクターまたはコンジュゲートウィルスベクター（例
えば、Fisher-Hochら、Proc.Natl Acad.Sci.USA 56:317~321頁、1989年に記載されたもの
）を含む。
細胞および可溶性因子の治療的／予防的可能性のアッセイ
膵機能障害の治療または予防または発症もしくは進行を遅延する、細胞または可溶性因
子の能力の決定方法は、当業者に明らかとなろう。
例えば、細胞または可溶性因子（例えば、因子の混合物または単一の因子または因子の
分画（例えば、アフィニティ精製またはクロマトグラフィーに由来する））を、被験対象
、例えば被験動物に、治療効果／予防効果を提供するために十分な時間および条件下で投
与し、安静時もしくは基礎もしくは空腹時グルコースレベルを評価した、および／または
耐糖能試験を実施した。このような試験は、市販のキットおよび／またはデバイスを使用
して実施する。基礎グルコースレベルまたは空腹時グルコースレベルは、絶食後、例えば
、約８時間から約１４時間後に評価する。耐糖能試験では、被験体を約８から約１４時間
絶食させ、その後グルコース（例えば、約１．７５グラムのグルコース／体重キログラム
）を摂取させ、約２〜３時間後に血糖のレベルを評価する。世界保健機関（Ｗｏｒｌｄ
Ｈｅａｌｔｈ Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ）によれば、空腹時血漿中グルコースは６．１
ｍｍｏｌ／ｌ（１００ｍｇ／ｄｌ）より低くなければならない。６．１および７．０ｍｍ
ｏｌ／ｌ（１００および１２６ｍｇ／ｄｌ）の間の空腹時レベルが境界（「空腹時高血糖
障害（impaired fasting glycaemia）」）であり、空腹時レベルが繰り返し７．０ｍｍｏ
ｌ／ｌ（１２６ｍｇ／ｄｌ）以上であると糖尿病と診断される。２時間グルコースレベル
は、７．８ｍｍｏｌ／ｌ（１４０ｍｇ／ｄｌ）より低くなければならない。７．８ｍｍｏ
ｌ／ｌ（１４０ｍｇ／ｄｌ）および１１．１ｍｍｏｌ／ｌ（２００ｍｇ／ｄｌ）の間のレ
ベルは、耐糖能障害を示す。２時間で１１．１ｍｍｏｌ／ｌ（２００ｍｇ／ｄｌ）を超え
るグルコースレベルは糖尿病の診断を確実にする。
好ましくは、被験対象は膵機能障害を患っている。例えば、被験対象は、非肥満糖尿病
（ＮＯＤ）マウス（Ｉ型糖尿病のモデル）またはストレプトゾトシンを投与されたことの
あるマウスもしくはラット（Ｉ型および／またはＩＩ型糖尿病のモデル；Ｌｕｋｉｃら、
Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌ．６：１１９〜１２８頁、１９９８年およ
びＡｒｕｌｍｏｚｈｉら、Ｉｎｄｉａｎ Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．、３６：２１７〜２
２１頁、２００４年を参照されたい）、Ｇｏｔｏ Ｋａｋｉｚａｋｉ（ＧＫ）ラット（Ｉ
Ｉ型糖尿病のモデル）、Ｎｅｗ Ｚｅａｌａｎｄ Ｏｂｅｓｅ（ＮＺＯ）マウス（ＩＩ型
糖尿病のモデル）である。Ｉ型糖尿病および／またはＩＩ型糖尿病の他のモデルは、例え
ば、ＲｅｅｓおよびＡｌｃｏｌａｄｏ、Ｄｉａｂｅｔ．Ｍｅｄ．２２：３５９〜７０頁、
２００５年に記載されている。
未処置動物または処置前の被験動物と比較して、膵機能障害のこのようなモデルにおい
て基礎グルコースレベルを減少させた、および／または耐糖能を改善した細胞および／ま
たは可溶性因子は、膵機能障害の治療または予防または発症もしくは進行の遅延を行う可
能性が高いと考えられる。
代替的に、またはさらに、インスリンレベルを、被験対象の循環において、例えば酵素
結合免疫吸着法または蛍光結合免疫吸着法を使用して評価した。被験対象の循環において
インスリンレベルを増加させる細胞および／または可溶性因子は、膵機能障害の治療また
は予防または発症もしくは進行の遅延を行う可能性があると考えられる。
血清中グルカゴンまたはソマトスタチンレベルを決定するキットおよびアッセイは、当
分野において公知である、および／または例えば、Ｉｍｍｕｎｏ−Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＩｎｃまたはＭｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏ
ｎ．から市販されている。
代替的に、またはさらに、アミラーゼの血清中レベルを、Ｃａｒａｗａｙ、Ａｍ．Ｊ．
Ｃｌｉｎ．Ｐａｔｈｏｌ．、３２：９７〜９９頁、１９５９年に記載のように比色分析を
使用して、またはＲｉｎｄｅｒｋｎｅｃｈｔおよびＭａｒｂａｃｈ、Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ
．Ａｃｔａ．、２９：１０７〜１１０頁、１９７２年に記載のように蛍光分析を使用して
決定する。血清中アミラーゼレベルを正常レベル（例えば、２１〜１０１Ｕ／Ｌ）に維持
する因子または細胞は、膵機能障害の治療または予防または発症もしくは進行の遅延を行
う可能性が高いと考えられる。
アミラーゼレベルは、膵臓の切片または例えば、経口十二指腸挿管によって得られる膵
液においてもまた決定できる。これらの試料は、トリプシノーゲン、キモトリプシノーゲ
ン、エラスターゼ、カルボキシペプチダーゼ、膵リパーゼのレベルを測定するための試料
も提供する。例えば、Ｃｏｎｎｏｎら、Ｄｉｇｅｓｔｉｖｅ Ｄｉｓｅａｓｅｓ ａｎｄ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、２３：４７２〜４７５頁、１９７８年は、膵液中の膵リパーゼレベ
ルを決定するためのアッセイを記載している。
前項に記載のアッセイは、任意の例に従った本明細書に記載の治療を受ける被験体の継
続的モニタリングにもまた適している。
本発明は、膵機能障害の治療のための細胞または可溶性因子を特定または単離する方法
をさらに提供することが、前述から当業者には明らかであると思われ、前記方法は、
（ｉ）細胞または可溶性因子を、膵機能障害を患う被験対象に投与し、被験体の膵機能
を評価するステップ、
（ｉｉ）（ｉ）の被験体の膵機能と、細胞または可溶性因子を投与されたことがない、
対照である膵機能障害を患う被験体の膵機能とを比較するステップ、
を含み、
対照である被験体と比較した、被験対象における膵機能の改善は、その細胞または可溶性
因子が膵機能障害を治療したことを示す。
本発明は、膵機能障害の予防または遅延のための細胞または可溶性因子を特定または単
離する方法をも提供し、前記方法は、
（ｉ）細胞または可溶性因子を被験対象に投与し、次いで被験対象において膵機能障害
を誘導するステップ、
（ｉｉ）（ｉ）の被験体の膵機能と、細胞または可溶性因子を投与されたことがない、
対照である膵機能障害を患う被験体の膵機能とを比較するステップ、
を含み、
対照である被験体と比較した、被験対象における膵機能の改善は、細胞または可溶性因子
が膵機能障害の発症を予防または遅延することを示す。
細胞は、任意の例に従った、本明細書に記載の任意の細胞であってよい。
細胞組成物
本発明の一例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞は、組成物の
形態で投与される。好ましくは、このような組成物は、医薬として許容可能な担体および
／または賦形剤を含む。
「担体」および「賦形剤」という用語は、貯蔵、投与および／または活性化合物の生物
学的活性を容易にするために、当分野において従来から使用される組成物を指す（例えば
、Remington’s Pharmaceutical Sciences、第16版、Mac Publishing Company（１９８０
年）を参照されたい）。担体はさらに、活性化合物の任意の望ましくない副作用を減少で
きる。適切な担体は、例えば、安定である、例えば、担体中の他の成分と反応できない。
一例において、担体は、治療に用いる投与量および濃度においてレシピエントにおいて有
意な局所性または全身性の有害作用を生み出さない。
本発明に適切な担体は、従来から使用されてきた担体、例えば、水、生理食塩水、水性
デキストロース、ラクトース、リンゲル溶液、緩衝溶液、ヒアルロン酸およびグリコール
を含み、（等張の場合）特に溶液に好ましい液体担体である。適切な医薬担体および賦形
剤は、デンプン、セルロース、グルコース、ラクトース、スクロース、ゼラチン、麦芽、
米、小麦粉、白亜、シリカゲル、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸ナトリウム、
モノステアリン酸グリセロール、塩化ナトリウム、グリセロール、プロピレングリコール
、水、エタノールなどを含む。
別の例において、担体は、例えば、細胞を成長させる、または細胞を懸濁する培地組成
物である。好ましくは、このような培地組成物は、投与された被験体において任意の有害
作用を誘導しない。
好ましい担体および賦形剤は、細胞の生存能力および／または膵機能障害を減少、予防
または遅延する細胞の能力に有害な影響を与えない。
一例において、担体または賦形剤は緩衝活性を提供し、細胞および／または可溶性因子
を適切なｐＨに維持し、その結果生物学的活性を発揮する、例えば担体または賦形剤はリ
ン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）である。ＰＢＳは、細胞および因子との相互作用が最小限
であり、細胞および因子の急速な放出を可能にするので、ＰＢＳは魅力的な担体または賦
形剤を表し、このような場合、本発明の組成物は血流または組織または組織を取り囲む、
もしくは組織に隣接する領域に、例えば注射によって直接適用するための液体として作製
され得る。
ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞はさらに、レシピエントが適合可能で
あり、レシピエントに有害でない生成物に分解される足場に組み込む、または包埋するこ
とができる。これらの足場は、レシピエント被験体に移植される細胞のための支持体およ
び保護を提供する。天然および／または合成の生分解性の足場は、このような足場の例で
ある。
様々な異なる足場が、本発明の実践において良好に使用できる。好ましい足場は、限定
するものではないが、生物学的に分解可能な足場である。天然の生分解性の足場は、コラ
ーゲン、フィブロネクチンおよびラミニンの足場を含む。細胞移植の足場のために適切な
合成材料は、広範囲の細胞成長および細胞機能を支持できなければならない。このような
足場は吸収性であってもよい。適切な足場は、例えば、Vacantiら、J.Ped.Surg.23:3〜9
頁1988年;Cimaら、Biotechnol.Bioeng.38:145頁 1991年;Vacantiら、Plast.Reconstr.Sur
g.88:753〜9頁 1991年に記載のようにポリグリコール酸の足場を含み、またはポリ酸無水
物、ポリオルトエステルおよびポリ乳酸などの合成ポリマーを含む。
別の例において、細胞はゲルの足場において投与され得る（Ｕｐｊｏｈｎ Ｃｏｍｐａ
ｎｙによるＧｅｌｆｏａｍなど）。
本発明にとって有用な細胞組成物は、単独または他の細胞との混合物として投与され得
る。本発明の組成物と一緒に投与され得る細胞は、限定するものではないが、他の多能性
細胞もしくは多分化能細胞または幹細胞あるいは骨髄細胞を含む。異なる型の細胞は、投
与直前もしくは短時間前に本発明の組成物と混合でき、またはそれらは投与前に少しの間
一緒に共培養できる。
好ましくは、この組成物は、有効量または治療有効量もしくは予防有効量の細胞を含む
。例えば、この組成物は、約１×１０５のＳＴＲＯ−１＋細胞／ｋｇから約１×１０７の
ＳＴＲＯ−１＋細胞／ｋｇまたは約１×１０６のＳＴＲＯ−１＋細胞／ｋｇから約５×１
０６のＳＴＲＯ−１＋細胞／ｋｇを含む。投与されるべき細胞の正確な量は、患者の年齢
、体重および性別ならびに膵機能障害の程度および重症度を含む、様々な要因に依存する
。
いくつかの例において、細胞は、被験体の循環内に細胞が出て行くことはできないが、
細胞によって分泌された因子が循環内に進入できるチャンバー内に含有される。この手法
において、細胞に被験体の循環内に因子を分泌させることによって、可溶性因子が被験体
に投与され得る。このようなチャンバーは、被験体内の部位に同様に埋め込み、例えば、
膵臓の中または近くに埋め込み、可溶性因子の局所レベルを増加させることができる。
本発明のいくつかの例において、細胞組成物を用いた療法の開始前に、患者を免疫抑制
することは、必要または望ましいとは言えない。したがって、同種異系またはたとえ異系
であっても、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそれらの子孫の移植は、症例によっては忍容性で
あり得る。
しかし、他の症例において、細胞療法を開始する前に患者を薬理学的に免疫抑制するこ
とは望ましい、または適切である場合がある。このことは、全身性または局所性免疫抑制
剤の使用を介して達成でき、または細胞をカプセル化デバイス中で送達することによって
達成できる。細胞は、細胞および治療因子によって必要とされる栄養および酸素に対して
は透過性であるが、細胞は免疫液性因子および細胞に対して不透過性であるカプセル内に
カプセル化できる。好ましくは、カプセル化材は低アレルギー性であり、標的組織中に容
易にかつ安定に位置し、埋め込まれた構造に追加の保護を提供する。移植細胞に対する免
疫応答を減少または除去するための、これらおよび他の方法は、当分野において公知であ
る。代替として、細胞を遺伝子改変し、それらの免疫原性を減少できる。
可溶性因子の組成物
本発明の一例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来するおよび／または子孫細胞に由来
する上清または可溶性因子は、例えば、適切な担体および／または賦形剤を含む組成物の
形態で投与される。好ましくは、担体または賦形剤は、可溶性因子または上清の生物学的
作用に有害な影響を与えない。
一例において、この組成物は、可溶性因子または上清の成分を安定化する組成物、例え
ばプロテアーゼ阻害剤を含む。好ましくは、プロテアーゼ阻害剤は、被験体に対して有害
作用を有するほどの十分な量は含まれない。
ＳＴＲＯ−１細胞に由来するおよび／または子孫細胞に由来する上清または可溶性因子
を含む組成物は、例えば培養培地または安定な担体または緩衝溶液、例えばリン酸緩衝生
理食塩水中の、適切な懸濁液として調製され得る。適切な担体は、本明細書内の上に記述
している。別の例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来するおよび／または子孫細胞に由
来する上清または可溶性因子を含む懸濁液は、注射用の油性懸濁液である。適切な親油性
の溶媒またはビヒクルは、ゴマ油などの脂肪油または合成の脂肪酸エステル、例えばオレ
イン酸エチルもしくはトリグリセリド、またはリポソームを含む。注射に使用する懸濁液
は、懸濁液の粘度を増加する物質、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソ
ルビトールまたはデキストランもまた含有できる。場合によって懸濁液は、適切な安定剤
または化合物の溶解度を増加する薬剤をさらに含有し、高度に濃縮された溶液の調製を可
能にすることができる。
滅菌注射溶液は、適切な溶媒中の必要量の上清または可溶性因子と、上記の成分の１種
または組み合わせとを、必要に応じて一緒に組み込み、その後ろ過滅菌することによって
調製できる。
一般的に、分散液は、上清または可溶性因子を、基礎分散媒および上に列挙したものか
らの必要な他の成分を含有する滅菌ビヒクルに組み込むことによって調製される。滅菌注
射溶液の調製用の滅菌粉末の場合、好ましい調製方法は、あらかじめろ過滅菌された活性
成分＋任意のさらなる所望の成分の溶液から、それらの粉末を得る真空乾燥および凍結乾
燥である。本発明の代替の態様によれば、上清または可溶性因子は、その溶解度を強化す
る１種または複数種の追加の化合物と一緒に製剤化できる。
他の例示的担体または賦形剤は、例えば、Hardmanら(2001年) GoodmanおよびGilman’s
The Pharmacological Basis of Therapeutics、McGraw-Hill、New York、N.Y.;Gennaro(
2000年)Remington:The Science and Practice of Pharmacy、Lippincott、Williamsおよ
びWilkins、New York、N.Y.;Avisら(編)(1993年)Pharmaceutical Dosage Forms:Parenter
al Medications、Marcel Dekker、NY;Liebermanら(編)(1990年)Pharmaceutical Dosage F
orms:Tablets、Marcel Dekker、NY;Liebermanら(編)(1990年)Pharmaceutical Dosage For
ms:Disperse Systems、Marcel Dekker、NY;WeinerおよびKotkoskie(2000年)Excipient To
xicity and Safety、Marcel Dekker、Inc.、New York、N.Y.に記載されている。
治療用組成物は、通常製造および貯蔵条件下で無菌かつ安定でなければならない。組成
物は、溶液、マイクロエマルジョン、リポソームまたは他の秩序構造（ordered structur
e）として製剤化できる。担体は例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセ
ロール、プロピレングリコールおよび液体ポリエチレングリコールなど）およびそれらの
適切な混合物を含有する溶媒または分散媒であり得る。適切な流動性は、例えば、レシチ
ンなどのコーティングの使用によって、分散液の場合、所望の粒径の維持によって、およ
び界面活性剤の使用によって維持され得る。多くの場合、組成物中に等張剤、例えば、糖
、ポリアルコール、例えばマンニトール、ソルビトールまたは塩化ナトリウムを含むこと
が好ましいと思われる。注射組成物の持続的吸収は、吸収を遅延する薬剤、例えばモノス
テアリン酸塩およびゼラチンを組成物中に含むことによってもたらされ得る。さらに、可
溶性因子は、徐放性製剤中で、例えば遅効性放出ポリマーを含む組成物中で投与され得る
。活性化合物は、即時放出に対して化合物を保護するであろう担体と共に、例えば、イン
プラントおよびマイクロカプセル化送達系を含む放出制御製剤に調製され得る。生分解性
、生体適合性ポリマー、例えばエチレン酢酸ビニル、ポリ酸無水物、ポログリコール酸、
コラーゲン、ポリオルトエステル、ポリ乳酸およびポリ乳酸ポリグリコール酸コポリマー
（ＰＬＧ）が使用できる。このような製剤の多くの調製方法が、特許権を取り、または一
般的に当業者に公知である。
上清または可溶性因子は、例えば可溶性因子の遅効性放出をもたらす適切なマトリック
スを組み合わせて投与され得る。
組成物のさらなる成分
ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそれ
らの子孫は、他の有益な薬剤または生体分子（成長因子、栄養素）と共に投与され得る。
他の薬剤と共に投与される場合、それらは、単一の医薬組成物で、または別々の医薬組成
物で、同時に、または他の薬剤と連続して（他の薬剤の投与前または投与後のどちらか）
投与され得る。同時投与できる生物活性因子は、抗アポトーシス剤（例えば、ＥＰＯ、Ｅ
ＰＯミメティボディ（ｍｉｍｅｔｉｂｏｄｙ）、ＴＰＯ、ＩＧＦ−ＩおよびＩＧＦ−ＩＩ
、ＨＧＦ、カスパーゼ阻害剤）；抗炎症剤（例えば、ｐ３８ＭＡＰＫ阻害剤、ＴＧＦ−ベ
ータ阻害剤、スタチン、ＩＬ−６およびＩＬ−１阻害剤、ＰＥＭＩＲＯＬＡＳＴ、ＴＲＡ
ＮＩＬＡＳＴ、ＲＥＭＩＣＡＤＥ、ＳＩＲＯＬＩＭＵＳおよびＮＳＡＩＤ（非ステロイド
系抗炎症剤；例えば、ＴＥＰＯＸＡＬＩＮ、ＴＯＬＭＥＴＩＮ、ＳＵＰＲＯＦＥＮ）；免
疫抑制剤／免疫調節剤（例えば、カルシニューリン阻害剤、例えばシクロスポリン、タク
ロリムス；ｍＴＯＲ阻害剤（例えば、ＳＩＲＯＬＩＭＵＳ、ＥＶＥＲＯＬＩＭＵＳ）；抗
増殖剤（例えば、アザチオプリン、ミコフェノール酸モフェチル）；コルチコステロイド
（例えば、プレドニゾロン、ヒドロコルチゾン）；抗体、例えばモノクローナル抗ＩＬ−
２Ｒアルファ受容体抗体（例えば、バシリキシマブ、ダクリズマブ）、ポリクローナル抗
Ｔ細胞抗体（例えば、抗胸腺細胞グロブリン（ＡＴＧ）；抗リンパ球グロブリン（ＡＬＧ
）；モノクローナル抗Ｔ細胞抗体ＯＫＴ３））；抗血栓剤（例えば、ヘパリン、ヘパリン
誘導体、ウロキナーゼ、ＰＰａｃｋ（デキストロフェニルアラニン・プロリン・アルギニ
ン・クロロメチルケトン）、抗トロンビン化合物、血小板受容体アンタゴニスト、抗トロ
ンビン抗体、抗血小板受容体抗体、アスピリン、ジピリダモール、プロタミン、ヒルジン
、プロスタグランジン阻害剤および血小板阻害剤）；および抗酸化剤（例えば、プロブコ
ール、ビタミンＡ、アスコルビン酸、トコフェロール、コエンザイムＱ−１０、グルタチ
オン、Ｌ−システイン、Ｎ−アセチルシステイン）ならびに局所麻酔剤を含む。
一例において、任意の例に従った本明細書に記載の組成物は、膵機能障害の治療または
予防のためのさらなる因子を含む。例えば、この組成物は、ビグアニド、チアゾリジンジ
オン、スルホニル尿素、安息香酸誘導体、アルファグルコシダーゼ阻害剤、ＳＧＬＴ２阻
害剤およびＩＮＧＡＰペプチド、ジペプチジルペプチダーゼ−ＩＶ阻害剤、インスリン感
作物質（例えば、ＰＰＡＲアゴニストまたはビグアニド）、インスリン，インスリン模倣
体，グルカゴン受容体アンタゴニスト、ＧＬＰ−Ｉ、ＧＬＰ−Ｉ模倣体、ＧＬＰ−Ｉ受容
体アゴニスト、；ＧＩＰ、ＧＩＰ模倣体、ＧＩＰ受容体アゴニスト、ＰＡＣＡＰ、ＰＡＣ
ＡＰ模倣体、ＰＡＣＡＰ受容体３アゴニスト；コレステロール降下剤（例えば、ＨＭＧ−
ＣｏＡレダクターゼ阻害剤、金属イオン封鎖剤、ニコチニルアルコール、ニコチン酸）、
ＰＰＡＲα／γデュアルアゴニストまたは抗肥満化合物を含む。
別の例において、任意の例に従った本明細書に記載の組成物は、祖先細胞の膵臓細胞へ
の分化を誘導または強化する因子をさらに含む。例示的因子は、Ｗｎｔ、上皮細胞成長因
子、線維芽細胞成長因子またはＴＧＦβを含む。
別の例において、任意の例に従った本明細書に記載の組成物は、祖先細胞の血管細胞へ
の分化を誘導または強化する因子をさらに含む。例示的因子は、血管内皮成長因子（ＶＥ
ＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ；例えばＰＤＧＦ−ＢＢ）およびＦＧＦを含む。
別の例において、任意の例に従った本明細書に記載の組成物は、組織特異的単分化能細
胞（tissue specific committed cell）（ＴＳＣＣ）をさらに含む。この点において、国
際特許出願番号ＰＣＴ／ＡＵ２００５／００１４４５は、ＴＳＣＣおよびＳＴＲＯ−１＋
細胞の投与が、ＴＳＣＣの増殖の強化をもたらし得ることを実証している。一例において
、ＴＳＣＣは膵臓細胞、例えば、β細胞または膵臓細胞、例えばランゲルハンス島の混合
物である。このような組成物の被験体への投与は、例えば、ランゲルハンス島のβ細胞の
産生増加をもたらし得る。別の例において、ＴＳＣＣは、血管細胞である。このような組
成物の被験体への投与は、例えば、膵臓に送達される栄養の増加をもたらす、例えば膵臓
における血管構造の産生増加をもたらし得る。
医療デバイス
本発明は、任意の例に従った本明細書に記載の方法に使用するためまたは方法に使用す
る際の医療デバイスをさらに提供する。例えば、本発明は、注射器またはカテーテルある
いはＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可
溶性因子および／または本発明の組成物を含む他の適切な送達デバイスを提供する。場合
によって、注射器またはカテーテルは、任意の例に従った本明細書に記載の方法に使用す
るための指示書と一緒に包装されている。
別の例において、本発明は、ＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／
またはそれらに由来する可溶性因子および／または本発明の組成物を含むインプラントを
提供する。場合によって、インプラントは、任意の例に従った本明細書に記載の方法で使
用するための指示書と一緒に包装されている。適切なインプラントは、例えば、本明細書
に上記の足場およびＳＴＲＯ−１＋細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれ
らに由来する可溶性因子を用いて形成できる。
投与の様式
ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清もしくは可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそ
れらの子孫は、外科的埋め込み、注入、送達（カテーテルまたは注射器を用いて）でき、
あるいは修復または増強の必要のある部位、例えば被験体の膵臓または血液系内に直接ま
たは間接的に投与することができる。
好ましくは、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋細
胞またはそれらの子孫は、被験体の血流に送達される。例えば、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由
来する上清または可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそれらの子孫は、非経口的に送
達される。非経口投与の例示的経路は、限定するものではないが、腹腔内、心室内、脳室
内、髄腔内を含む。好ましくは、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、
ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそれらの子孫は、大動脈内、心臓の心室または心房内、膵臓に
連結する血管内、例えば、腹大動脈、上腸管膜動脈、膵十二指腸動脈または脾動脈に動脈
内送達される。別の例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、
ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそれらの子孫は、大腿動脈または腹腔動脈に投与される。
心室または心房に細胞送達する場合、細胞を左心室または左心房に投与し、細胞が肺に
急速に送達されることにより起こりうる合併症を避けることが好ましい。
好ましくは、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋細
胞またはそれらの子孫は、送達部位に、例えば注射器を使用して、またはカテーテルもし
くは中心線を介して注入される。
治療用製剤の投与計画の選択は、実体（entity）の血清または組織の回転率、症状のレ
ベルおよび実体の免疫原性を含むいくつかの因子に依存する。好ましくは、投与計画は、
副作用の許容可能なレベルと一致する患者に送達される治療化合物の量を最大にする。し
たがって、送達される製剤の量は、特定の実体および治療される病態の重症度に一部依存
する。
一例において、ＳＴＲＯ−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋
細胞またはそれらの子孫は、単回ボーラス投与として送達される。代替的には、ＳＴＲＯ
−１＋細胞に由来する上清または可溶性因子、ＳＴＲＯ−１＋細胞またはそれらの子孫は
、連続注入によって、または、例えば１日、１週間の間隔で、もしくは１〜７回／週での
投与によって投与される。好ましい用量プロトコルは、最大用量または重要な望ましくな
い副作用を避ける用量頻度に関与するものである。１週間の合計用量は、使用する化合物
の型および活性に依存する。適切な用量の決定は、例えば、当分野において治療に影響を
与えることが公知もしくは疑わしい、または治療に影響を与えることが予測されるパラメ
ーターまたは因子を使用して、臨床医によってなされる。一般的に、用量は最適用量より
いくらか少ない量で開始し、そこから少量の増分で、任意の陰性の副作用に関して所望の
または最適な効果が得られるまで増加する。重要な診断基準は、糖尿病の症状の基準を含
む。
膵機能障害の治療または進行の遅延を対象とする本発明の例に従って、ＳＴＲＯ−１＋
細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子は、当分野
において公知の標準的方法および／または本明細書に記載の方法、例えば耐糖能を使用し
た、障害の診断後に投与されることが好ましい。
膵機能障害の予防または発症の遅延を対象とするそれらの例では、ＳＴＲＯ−１＋細胞
および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子は、例えば、耐
糖能障害および／または空腹時高血糖障害を患う被験体の場合、障害の臨床診断前に投与
されることが好ましく、ならびに／あるいはＩ型糖尿病の場合、例えば、Ｔ細胞および／
またはＢ細胞の集団の拡大によって、および／または自己抗体（例えば、膵臓β島細胞に
対する細胞障害性Ｔ細胞および／またはＩ型糖尿病の発症または進行における、１種また
は複数種の膵臓β島細胞マーカーに対する自己抗体の増加）の産生によって示される自己
免疫反応の前、またはこれと同時に投与されることが好ましい。自己免疫反応の発症を決
定または予測する方法は、当業者には明らかである、および／または本明細書に記載して
ある。例えば、膵臓β細胞に由来するまたは膵臓β細胞の表面に存在する抗原に対する自
己抗体の検出は、被験体による前記細胞に対する免疫反応を示す。このような１つのアッ
セイは、被験体の血清中の島細胞の抗体を検出する。このアッセイは、島細胞を含む膵臓
の切片を、被験対象由来の血清と接触させるステップを含む。膵臓β島細胞と結合できる
、被験体由来の血清中の免疫グロブリンは、その後、ヒト免疫グロブリンと結合する二次
標識抗体を使用して検出される。蛍光マーカーを使用する、島細胞抗体を検出するための
適切な方法は、例えば、Ｂｏｔｔａｚｚｏら、Ｌａｎｃｅｔ２：１２７９〜８３頁、１９
７４年に記載されている。代替的には、またはさらに、アッセイは、被験体中の特定の抗
原に結合する自己抗体の検出のために使用される。例として、Ｂｒｏｏｋｉｎｇら（Ｃｌ
ｉｎ Ｃｈｉｍ Ａｃｔａ ３３１：５５〜５９頁、２００３年）は、ＧＡＤ６５に対す
る自己抗体の検出のための、ＥＬＩＳＡに基づくアッセイを記載している。記載されたア
ッセイは、マイクロタイタープレート上の低濃度のＧＡＤ抗原を使用して、試料中の自己
抗体を捕捉する。液相中のビオチン化ＧＡＤを加え、自己抗体の二次結合部位により捕捉
し、ビオチン化ＧＡＤ６５による非同位の検出可能なシグナルの発生を検出する。Nagata
ら、Ann.New York Acad.Sci 1037:10〜15頁、２００４年は、インスリン、ＩＡ−２およ
びＧＡＤ６５に対する自己抗体の存在を検出するために有用なＥＬＩＳＰＯＴアッセイを
記載している。
治療／予防をモニタリングするための方法
治療／予防をモニタリングするための方法は、本明細書の記載に基づき、当業者には明
らかと思われる。例えば、血糖値および／またはインスリンレベルおよび／またはアミラ
ーゼレベルは、当分野において公知の方法および／または本明細書に記載の方法を使用し
て評価される。
別の例において、膵臓の試料（例えば生検）は処置後に得られ、ベータ細胞（例えば、
インスリンを発現する細胞）および／またはアルファ細胞（例えば、グルカゴンを発現す
る細胞）および／または島および／またはＰＤＸ−１発現細胞の数が、例えば、免疫組織
化学、免疫蛍光または核酸増幅のアッセイ、例えばポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を使
用して得られる（a sample of pancreas (e.g., a biopsy) is obtained following trea
tment and the number of beta cells (e.g., cells expressing insulin) and/or alpha
cells (e.g., cells expressing glucagon) and/or islets and/or PDX-1 expressing c
ells, e.g., using immunohistochemistry, immunofluorescence or a nucleic acid amp
lification assay, e.g., polymerase chain reaction (PCR).）。このようなアッセイを
本明細書に記載する。
本発明を、以下の限定されない実施例においてさらに説明する。
実施例１ ＳＴＲＯ−１＋細胞を用いた糖尿病マウスの処置
１．１ 材料および方法
マウスにおけるストレプトゾトシン（ＳＴＺ）誘導性糖尿病
７〜８週齢の雄免疫不全ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウス（ＮＯＤ．ＣＢ１７−Ｐｒｋｄｃｓｃ
ｉｄ／Ｊ；Ａｎｉｍａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｒｅ、Ｐｅｒｔｈ、Ａｕｓｔｒａ
ｌｉａ）に、３５ｍｇ／ｋｇのβ細胞毒素であるストレプトゾトシン（ＳＴＺ；Ｓｉｇｍ
ａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を、４時間の朝の絶食後に１〜４日目の
毎日、腹腔内（ｉ．ｐ．）注射した。ＳＴＺを、クエン酸ナトリウム緩衝液、ｐＨ４．５
に溶解し、調製１５分以内に注射した。マウスは滅菌条件下に維持した。
細胞の注入および処置群
バンクに保存されていた骨髄細胞由来の、免疫磁気的（immunomagnetically）に選択さ
れたヒトＳＴＲＯ−１＋間質細胞を、基本的にＧｒｏｎｔｈｏｓ および Ｚａｎｎｅｔ
ｉｎｏ（Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．４４９：４５〜５７頁、２００８年）に記
載のように培養増殖させ、Ａｎｇｉｏｂｌａｓｔ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ＵＳＡより入手した
。ＰｒｏＦｒｅｅｚｅ（商標）−ＣＤＭ（Ｌｏｎｚａ、ＵＳＡ）において凍結保存された
継代４の、ＳＴＲＯ−１＋間質細胞を解凍し、２．５×１０６細胞を、急速注入用に２０
０μｌのビヒクル／マウスにおいて構築した。ＳＴＺ処置後１０日目、ＮＯＤ／ｓｃｉｄ
マウスに、麻酔をかけたマウスの胸壁を介して左心室に（動脈経路）単回投与で注射した
。対照マウスには、動脈経路または静脈経路を介して２００μｌのビヒクル（７．５％Ｄ
ＭＳＯおよびアルファＭＥＭを含有するＰｒｏＦｒｅｅｚｅ（商標）−ＣＤＭ）を注射し
た。
血糖およびインスリンに関するアッセイ
４時間の朝の絶食後にグルコメーター（ｇｌｕｃｏｍｅｔｅｒ）（Ｏｐｔｉｍｕｍ Ｘ
ｃｅｅｄ（商標） Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ； Ａｂｂ
ｏｔｔ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｖｉｃｔｏｒｉａ、Ａｕｓｔｒａｌｉａ）を用いて尾
静脈血において血糖をアッセイした。血中インスリンは、３２日目にマウスを死亡させる
前に、麻酔をかけたマウスの心臓内穿刺によって得た血液に関して、マウス特異的ＥＬＩ
ＳＡキット（Ｕｌｔｒａｓｅｎｓｉｔｉｖｅ Ｍｏｕｓｅ Ｉｎｓｕｌｉｎ ＥＬＩＳＡ
Ｍｅｒｃｏｄｉａ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）を使用してアッセイした。
組織試料の調製
動物を、頸椎脱臼により安楽死させ、膵臓を取り出し、対称的に切り出し、半分を１０
％中性ホルマリン中で固定し、他をＴｉｓｓｕｅ−Ｔｅｋ ＯＣＴ Ｃｏｍｐｏｕｎｄ（
Ｓａｋｕｒａ Ｆｉｎｅｔｅｋ、Ｔｏｒｒａｎｃｅ、ＣＡ）に包埋し、ドライアイス上で
凍結し、−７０℃において貯蔵した。膵臓は本試験において分析の大部分に特に使用した
が他の組織、例えば肺、肝臓、心臓、脾臓、胃、腸／盲腸、膀胱、精巣および脳は、組織
病理学のために回収した。
膵臓組織の組織構造および免疫蛍光染色
膵臓の組織構造のために、ホルマリン固定し、パラフィン包埋した（ＦＦＰＥ）切片を
、ヘマトキシリンおよびエオシン（Ｈ＆Ｅ）を用いて染色した。顕微鏡用スライドグラス
にのせたＦＦＰＥ組織切片（５μｍ）を、脱パラフィンし、圧力なべでクエン酸緩衝液中
で加熱することによって抗原検索に供した。抗原検索後、切片を１０％正常ヤギ血清を用
いて２時間ブロックし、あらかじめ試験し、抗原検索した組織においてマウス特異的分子
を検出することが実証されている以下の抗体：モルモット抗インスリン（１：１００；Ｍ
ｉｌｌｉｐｏｒｅ、ＵＳＡ）、マウス抗グルカゴン（１０μｇ／ｍｌ；クローンＫ７９ｂ
Ｂ１０；ＡｂＣＡＭ）、マウス抗ＰＤＸ−１（１０μｇ／ｍｌ；クローン２６７７１２；
Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して、免疫蛍光検出のために使用した。２時間の一次抗
体インキュベーション後、スライドを、０．１％正常ヤギ血清／ＰＢＳを用いて５分間、
３回洗浄し、種特異的二次抗体（１：４００；ヤギ抗マウスＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ５５
５；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅまたはヤギ抗モルモットローダミン；Ｊａｃｋｓｏ
ｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓまたはヤギ抗マウスＩｇＧ１−ＦＩＴＣ；ＡｂＣＡＭ）と
一緒に、室温においてさらに９０分間インキュベートした。対照は、一次抗体を省いて含
んだ。膵臓組織中の平滑筋アクチン（ＳＭＡ）の染色を、マウス抗ＳＭＡ−ＦＩＴＣｍＡ
ｂ（２ｍｇ／ｍｌ；クローン１Ａ４；ＡｂＣＡＭ）を使用して、直接免疫蛍光により実施
した。
免疫染色の評価
スライドを、Ｚｅｉｓｓ Ｏｂｓｅｒｖｅｒ Ｚ１顕微鏡（Ｇｅｒｍａｎｙ）により視
察し、画像を、ＡｘｉｏＣａｍ ＭＲｍを使用して撮影した。Ｈ＆Ｅまたはインスリン、
グルカゴン、ＰＤＸ−１およびＳＭＡに対する抗体を用いて染色し、蛍光プローブを用い
て検出した膵臓切片の撮影した画像を、Ａｘｉｏ Ｖｉｓｉｏｎ Ｒｅｌ ４．７ソフト
ウェアを用いて分析した。個々の実験動物由来の、それぞれ５ｍｍのＨ＆Ｅ切片を使用し
て、島の合計数を数え、島のサイズを分析し（面積および直径の測定）、画像分析により
測定した、それぞれの合計断面積に対して正規化した。加えて、抗インスリン、グルカゴ
ンまたはＰＤＸ−１抗体を用いて染色した、それぞれ抗原検索した５μｍのＦＦＰＥ切片
の、陽性に染色された細胞の合計数を数え、それぞれ測定した合計断面積または合計島面
積に対して正規化した。様々な直径の膵臓微小血管の分布を数え、画像分析により測定し
、試験したそれらのそれぞれの断面積に対して正規化した。すべての画像を、対象倍率２
０〜４０×で分析した。
半定量的ＲＴ−ＰＣＲによるＲＮＡ分析
実験群の膵臓由来のＲＮＡ試料を、個々の凍結組織由来の合計１００ｍｍの切片からＴ
ｒｉｚｏｌ試薬中で抽出した。Ｔｒｉｚｏｌ組織抽出物を、ｉｌｌｕｓｔｒａ ＲＮＡｓ
ｐｉｎ Ｍｉｎｉ ＲＮＡ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ
、ＵＫ）を使用してＲＮＡに関して精製した。全ＲＮＡを、分光光度的に定量化し、１μ
ｇを、ｏｌｉｇｏ−ｄＴ（ｐｄＴ１２−１８）およびＭＭＬＶ逆転写酵素を用いて逆転写
した。ＭａｆＡ、Ｎｇｎ３およびＰｄｘ−１に関するネズミ遺伝子に対するプライマーを
使用して、表１に明記した増幅条件下でＴｔｈ Ｐｌｕｓ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｒｏｃ
ｈｅ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ）を使用してｃＤＮＡ試料をＰＣＲ増幅した。ベ
ータアクチン遺伝子を使用して、標的遺伝子発現を正規化した。ＰＣＲ産物を、ＵＶ照明
下で可視化したバンドの濃度分析により、Ｋｏｄａｋ ＩＤ３．５ソフトウェアを使用し
て定量化した。
統計分析
Ｐ値のためにスチューデントＴ検定を使用した。
１．２ 結果
ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおけるストレプトゾトシン誘導性高血糖
ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、４日間の１日１回のＳＴＺ３５ｍｇ／ｋｇ／日の腹
腔内注射により、高血糖を誘導した。試験１日目に、すなわち１回目のＳＴＺ注射の前に
、全群の動物（Ｎ＝８０）に関する平均空腹時血糖値（ＢＧＬ）は、７ｍＭ＋／−１．５
標準偏差（ＳＤ）であった。試験１０日目（すなわち、ＳＴＺクールの完了後５日目）に
、動物が、未処理マウスにおける平均グルコースレベルより３ＳＤを超えて大きいＢＧＬ
を有した場合、動物は高血糖を発症したと思われる。この基準に従って、高血糖を得なか
ったマウスを、その後すべての分析から除外した。１０日目に、高血糖の上記の基準を満
たしたマウスは２９匹であった。これらのマウスにおいて、１０日目の平均ＢＧＬは、１
５．２ｍＭ＋／−０．６であり、ベースラインより２１７％増加していた。
糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおける、ＳＴＲＯ−１＋間質細胞の動脈内注射の血糖
値に対する効果
図１に示すように、動脈内経路により高血糖マウスに注射された、単回用量の２．５×
１０６のＳＴＲＯ−１＋細胞は、細胞療法後３週間のクールの間ずっとＢＧＬの減少をも
たらした。
図１は、ビヒクル単独の動脈内注射と比較して、ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射
が糖尿病マウスにおいてＢＧＬの早期減少を誘導したことを示す。ＢＧＬの減少は、１７
日目ほどの早期で明らかであり、２４日目において最大であり（平均３５％の減少、平均
ＢＧＬは１２．７ｍＭ＋／−１．２対１９．６ｍＭ＋／−２．１；ｐ＝０．０１２）、３
週間の追跡期間の間ずっと持続した。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射は、ベースラインに対して早期かつ持続性の血糖
値の減少をもたらす
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射を受けたＳＴＺ処置マウスは、全３週間の追跡期
間の間ずっと、１０日目のベースラインのレベルに対して、平均ＢＧＬの持続性減少を実
証した。図２に示すように、動物のこの群は全試験期間を通してずっと、療法前のレベル
を下回る平均ＢＧＬを有したが、培地処置対照は、進行性のＢＧＬレベルの増加を実証し
た。ＳＴＺ処置後１０日目にＳＴＲＯ−１＋細胞の動脈内注射を受けた群は、それぞれ７
、１４および２１日目のベースラインＢＧＬに対して、−１１％、−１４％および−４％
の平均ＢＧＬ減少を実証した。対照的に、動脈内に培地単独を受けた対照群は、それぞれ
７、１４および２１日目のベースラインＢＧＬに対して＋８％、＋２０％および＋１７％
の平均ＢＧＬの増加を実証した。
糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、ヒトＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射は
、３週間後に、マウスインスリンの循環レベルの有意な増加をもたらす
図３に示すように、マウス特異的インスリンＥＬＩＳＡにより、処置後２１日目に測定
した循環血清中インスリンレベルは、ＳＴＲＯ−１＋細胞を、３週間前に動脈内注射され
た糖尿病マウスが、ビヒクル処置糖尿病マウスと比較して有意に高い循環内因性インスリ
ンレベルを有したことを実証した（０．７９ｍｇ／Ｌ＋／−０．１１対０．５７ｍｇ／Ｌ
＋／−０．０２；ｐ＝０．００９）。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射は、糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、膵
臓の微小血管密度の増加をもたらす
膵臓組織を、平滑筋アクチンタンパク質に対する直接コンジュゲートモノクローナル抗
体（ｍＡｂ）を用いて染色し、ＳＴＲＯ−１＋細胞療法が損傷した膵臓において動脈形成
（arteriogenesis）を誘導するかどうかを決定した。免疫染色後、全切片をスキャンし、
微小血管の合計数を数え、合計断面積に対して正規化した。血管数を数え、＜２０μｍ、
２０〜１００μｍおよび＞１００μｍの３種の異なる血管径に、サイズに基づき分類した
。図４は、ＳＴＲＯ−１＋細胞療法群において、直径＜２０μｍの平滑筋アクチン陽性微
小血管の数が、ビヒクル群と比較して１７６％増加した（２９９．８＋／−５２対１６９
．１＋／−１８．５；ｐ＝０．０１）ことを示す。したがって、ＳＴＲＯ−１＋細胞を用
いた療法は、損傷した膵臓内で内径の小さい細動脈の反応を誘導する。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射は、糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、Ｐ
ＤＸ−１転写因子の膵臓における発現の増大をもたらす
ヒトＳＴＲＯ−１＋細胞療法が、糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスの内因性ベータ細胞に
おいて再生反応を誘導できるかどうかを評価するために、膵臓の発生およびベータ細胞の
産生に関連する、ＰＤＸ−１、ＭａｆＡおよびＮｇｎ３転写因子のｍＲＮＡの発現レベル
を試験した（Ｚｈｏｕら、Ｎａｔｕｒｅ ４５５：６２７〜６３２頁、２００８年）。図
５Ａに示すように、ＳＴＲＯ−１＋細胞療法群において、転写因子ＰＤＸ−１に関する平
均膵臓ｍＲＮＡレベルが、ビヒクル群と比較して２．５倍増加した（ｐ＝０．０１）。転
写因子ＭａｆＡおよびＮｇｎ３に関する膵臓ｍＲＮＡレベルも増加が認められたが、有意
には達しなかった。
ＰＤＸ転写因子のタンパク質レベルの増加が、ＳＴＲＯ−１＋細胞療法に曝露された膵
島により発現されたことを確認するために、健康な非糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウス、対
照培地を用いて処置された糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスおよび動脈内ＳＴＲＯ−１＋細
胞を用いて処置された糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスに由来する島切片を、抗ＰＤＸ−１
ｍＡｂを用いて、免疫組織化学的に試験した。図５Ｂに示すように、ストレプトゾトシ
ン処置は、ＰＤＸ−１タンパク質陽性であった島細胞の平均数に、健康な非糖尿病マウス
と比較して５９％の減少をもたらした（３７．１＋／−１２平均陽性細胞／島対１５．１
＋／−４．８平均陽性細胞／島、ｐ＝０．０３）。対照培地を与えられたストレプトゾト
シン処置動物と比較して、ＳＴＲＯ−１＋細胞の動脈内注射は、ＰＤＸ−１タンパク質陽
性である島細胞の数を平均で７１％増加させ（２５．７＋／−２．２平均陽性細胞／島、
ｐ＝０．０４９）、非糖尿病動物と比較してＰＤＸ−１タンパク質陽性細胞の平均減少は
わずか３１％となった（ｐ＝ＮＳ）。図５Ｃの蛍光顕微鏡写真は、非糖尿病であった代表
的ＮＯＤ／ｓｃｉｄ動物由来の膵島か、または糖尿病であり、ＳＴＲＯ−１＋細胞を用い
て処置された代表的ＮＯＤ／ｓｃｉｄ動物由来の膵島のいずれもが、同様の数のＰＤＸ−
１陽性細胞を実証したことを示す。対照的に、糖尿病であり、対照培地を与えられた代表
的ＮＯＤ／ｓｃｉｄ動物由来の膵島は、ＰＤＸ−１タンパク質陽性である細胞の数の有意
な減少を実証している。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射は、膵島数の増加をもたらす
ＳＴＲＯ−１＋細胞を用いた処置の全膵島数に対する効果をさらに評価した。図６Ａに
示すように、３週間前にＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射を受けた動物は、犠牲にし
た時点で培地単独を注射された対照と比較して膵島数が２倍を超えて多かった（０．７８
＋／−０．０７対０．３８＋／−０．０７島／ｍｍ２、ｐ＝０．００１２）ことを実証し
た。合計島数の増加の他に、処置群、図６Ｂおよび６Ｃの間に、平均島直径または島面積
において有意な変化は認められなかった。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回動脈内注射は、糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、内
因性ベータ細胞数の増加、アルファ細胞の減少および島内の正常なベータ／アルファ細胞
比の再確立をもたらす
抗マウスインスリンｍＡｂ染色を使用して、健康な非糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウス、
対照培地を用いて処置した糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスおよびＳＴＲＯ−１＋細胞を用
いて動脈内処置した糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスの膵臓切片中の島内のベータ細胞数を
定量化した。図７Ａに示すように、ストレプトゾトシン処置により、健康な非糖尿病マウ
スと比較して島内のベータ細胞数が２１％減少した（６７２６＋／−４５０／ｍｍ２島面
積対５２８９＋／−３８７／ｍｍ２、ｐ＝０．０４）。対照を与えられたストレプトゾト
シン処置動物と比較して、ＳＴＲＯ−１＋細胞の動脈内注射はベータ細胞数を平均８％増
加させ（５７０９＋／−６９０／ｍｍ２）、非糖尿病動物と比較してベータ細胞の平均減
少はわずか１５％となった（ｐ＝ＮＳ）。図Ｂの蛍光顕微鏡写真において、代表的非糖尿
病対照動物の島内ベータ細胞は、島の中心領域に典型的に密集して固まったインスリン陽
性蛍光細胞の局在化を実証している。しかし、代表的ＳＴＺ処置マウスにおいて、ベータ
細胞は豊富とは言えず、島内で分離したパターンを表す。ＳＴＲＯ−１＋細胞を用いて処
置した代表的マウスのベータ細胞は、より豊富で分離の少ない、中間パターンの蛍光を実
証している。
抗グルカゴンｍＡｂ染色を使用して、健康な非糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウス、対照培
地を用いて処置した糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスおよびＳＴＲＯ−１＋細胞を用いて動
脈内処置した糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスの膵臓切片中の島内のアルファ細胞数を定量
化した。図７Ｃに示すように、ストレプトゾトシン処置により、健康な非糖尿病マウスと
比較して島内のアルファ細胞数が４７０％増加した（１０４６＋／−４６／ｍｍ２島面積
対４９５４＋／−６３２／ｍｍ２、ｐ＝０．００３）。対照培地を与えられたストレプト
ゾトシン処置動物と比較して、ＳＴＲＯ−１＋細胞の動脈内注射はアルファ細胞数を平均
４４％減少させ（２７６４＋／−２７４／ｍｍ２、ｐ＝０．００８）、非糖尿病動物と比
較してアルファ細胞の平均増加はわずか１６４％となった（ｐ＝０．００２）。図７Ｄの
蛍光顕微鏡写真において、代表的非糖尿病対照動物の正常な島内アルファ細胞は、整然と
円周方向に配置されたグルカゴン染色細胞として特定できる。しかし、代表的ＳＴＺ処置
マウスにおいて、アルファ細胞はより豊富であり、島内の至るところで拡散パターンを表
している。ＳＴＲＯ−１＋細胞を用いて処置した代表的マウスの島内のアルファ細胞は、
より蛍光が周辺にあるパターンを実証し、島の中心にはあまり豊富ではない。
図７Ｅは、健康な非糖尿病ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウス、対照培地を用いて処置した糖尿病
ＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスおよびＳＴＲＯ−１＋細胞で動脈内処置した糖尿病ＮＯＤ／ｓｃ
ｉｄマウス由来の膵臓切片の島内のアルファ細胞に対するベータ細胞の割合を表す。スト
レプトゾトシン処置は、健康な非糖尿病マウスと比較した島内のアルファおよびベータ細
胞の合計に対するベータ細胞数のパーセントにおいて、４０％の減少をもたらした、（８
６＋／−０．９％対５２＋／−２．６％、ｐ＝０．００００２）。対照培地を与えられた
ストレプトゾトシン処置動物と比較して、ＳＴＲＯ−１＋細胞の動脈内注射は、アルファ
細胞に対するベータ細胞の割合を平均２９％増加させた（５２＋／−２．６％対６７＋／
−３．９％、ｐ＝０．００５）。したがって、ストレプトゾトシンによって糖尿病がもた
らされたＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスのＳＴＲＯ−１＋細胞処置は、膵島内のアルファ細胞に
対するベータ細胞のより正常な比率の再確立をもたらした。
考察
本試験は、ストレプトゾトシンにより糖尿病としたＮＯＤ／ｓｃｉｄマウスにおいて、
ヒトＳＴＲＯ−１＋細胞の単回投与が、ベータ細胞の持続性再生および高血糖の逆行を誘
導するために有効であったことの初めての証拠を提供する。糖尿病のストレプトゾトシン
（ＳＴＺ）誘導性実験モデルは、ＰＤＸ−１遺伝子のノックダウン後に見られる糖尿病表
現型と同様の糖尿病表現型をもたらし、インスリン産生ベータ細胞数が減少し、グルカゴ
ン産生アルファ細胞が増加し、ＧＬＵＴ２ ｍＲＮＡおよびタンパク質の発現が減少した
（Ｌｉｕら、Ｍｏｌ Ｔｈｅｒ １５：８６〜９３頁、２００７年；およびＷａｎｇら、
Ｄｉａｂｅｔｅｓ ４７：５０〜６頁、１９９８年）。ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回投与は
、持続性ＰＤＸ−１の活性化、内因性ベータ細胞数の増加、グルカゴン発現アルファ細胞
の減少およびインスリン産生の強化をもたらした。
ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回投与後のＳＴＺ処置ＮＯＤ／ｓｃｉｄ糖尿病マウスにおける
、ＰＤＸ−１発現の持続性誘導および膵臓のベータ細胞およびアルファ細胞の間の恒常性
の再確立は、同じネズミモデルにおける、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）の長
期過剰発現を誘導するための遺伝子療法の投与後に報告された特徴と著しく類似する（Ｌ
ｉｕら、Ｍｏｌ Ｔｈｅｒ １５：８６〜９３頁、２００７年）。ＧＬＰ−１は、膵臓に
遊走する腸由来のペプチドであり、ＰＤＸ−１およびＧＬＵＴ２を活性化し、インスリン
分泌の増加をもたらす。その発見は、ベータ細胞におけるＧＬＰ−１活性の増加をもたら
す２種の新しいクラスの薬剤：（ａ）長期作用性受容体アゴニストであるか、またはＧＬ
Ｐ−１の天然のアンタゴニストであるジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰＩＶ）によ
る分解に対して抵抗性であるかのどちらかであるＧＬＰ−１類似体、および（２）内因性
ＧＬＰ−１活性の増加をもたらす経口活性ＤＰＰＩＶアンタゴニストの開発をもたらした
。
しかし、これらの薬剤の臨床使用は、軽症のＩＩ型糖尿病の治療に限られている。それ
らの比較的短い半減期、頻繁な投与の必要性および重症のベータ細胞の損失の場合に効力
が比較的弱いことにより、Ｉ型糖尿病または他のインスリン依存患者に対するインスリン
保持薬としての、それらの使用は除外される。実際、ＤＰＰＩＶアンタゴニストは、内因
性ＧＬＰ−１レベルの増加にもかかわらず、ＳＴＺ処置マウスにおいて確立された糖尿病
を逆行できず（Ｋｉｍら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ ５０：１５６２〜１５７０頁、２００１年
）、低用量ＳＴＺと同時の持続投与および部分的ベータ細胞の損失の状況で、高血糖の改
善だけが可能である（Ｍｕら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ ５５：１６９５〜１７０４頁、２００
６年）。同様に、ＧＬＰ−１アゴニストは、ＳＴＺの前、またはＳＴＺと同時に与えられ
た場合だけ有効であり、持続投与が求められる（Tourrellら、Diabetes 50:1562〜1570頁
、2001年;Liら、J Biol Chem 278:471〜478頁、2003年;Gezginci-OktayogluおよびBolken
t、Biochem Cell Biol 87:641〜651頁、2009年）。総合して、これらのデータは、ＤＰＰ
ＩＶ阻害剤およびＧＬＰ−１類似体が、有意なベータ細胞集団がまた存在する場合、ベー
タ細胞の再生を容易にするためにだけ有効であることを示唆している。
対照的に、本試験は、ＳＴＲＯ−１＋細胞の単回注射でさえ、ベータ細胞集団がほとんど存在していない場合でも、持続性のベータ細胞の再生を誘導できることを示唆している。このことは、高用量のＳＴＺのクールの完了５日後、完全にベータ細胞を損失したモデルに投与した場合、確立された高血糖を逆行させる細胞の能力により証拠づけられる。同様の結果は、遺伝子療法を使用する、ＧＬＰ−１の持続性の過剰発現によってのみ達成できる（Liuら、Mol Ther 15:86〜93頁、2007年）。ＳＴＲＯ−１＋療法の長続きする有力な効果は、この型の細胞療法が、インスリン依存性糖尿病において、ＤＰＰＩＶ阻害剤またはＧＬＰ−１類似体にはできない、持続性のグルコース調節およびインスリン保持効果を提供できることを示している。

本発明によって、以下が提供される。
［１］
それを必要とする被験体において膵機能を改善する方法であって、被験体に、ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子を投与するステップを含む方法。
［２］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子の投与が膵臓ベータ細胞および／または膵島の再生を促進する、［１］に記載の方法。
［３］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子の投与が、被験体において、血糖値を減少させる、および／または血中／血清中インスリンレベルを増加させる、［１］または［２］に記載の方法。
［４］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子の投与が、被験体において、膵臓ベータ細胞の数を増加させる、および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ細胞の数を増加させる、および／または膵臓アルファ細胞の数を減少させる、および／または膵島の数を増加させる、［１］〜［３］のいずれか一項に記載の方法。
［５］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子の投与が、膵十二指腸ホメオボックス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現を増加させる、および／または被験体の膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数を増加させる、［１］〜［４］のいずれか一項に記載の方法。
［６］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子の投与が、被験体の膵臓において、動脈形成または血管形成を誘導または促進する、［１］〜［５］のいずれか一項に記載の方法。
［７］
被験体が、膵臓の内分泌機能および／または外分泌機能に関連する膵機能障害を患う、［１］または［６］に記載の方法。
［８］
膵機能障害が、インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、膵臓ポリペプチド、トリプシノーゲン、キモトリプシノーゲン、エラスターゼ、カルボキシペプチダーゼ、膵リパーゼまたはアミラーゼのレベルの異常に関連する、またはそれらを引き起こす、［７］に記載の方法。
［９］
グルカゴンレベルの異常が、グルカゴン分泌腫瘍によって引き起こされる、［８］に記載の方法。
［１０］
膵機能障害が、栄養の吸収不良に関連する、またはそれを引き起こす、［７］に記載の方法。
［１１］
膵機能障害が、膵炎、膵機能不全、後天性自己免疫不全症候群、がん、嚢胞性線維症またはゾリンジャー・エリソン症候群に関連する、［７］に記載の方法。
［１２］
膵機能障害が、低血糖もしくは高血糖、血清中アミノ酸レベルの減少、タンパク質尿、または壊死融解性移動性紅斑をもたらす、［７］に記載の方法。
［１３］
膵機能障害が、炭水化物代謝障害に関連する、またはそれを引き起こす、［７］に記載の方法。
［１４］
炭水化物代謝障害が、膵臓によるインスリン産生の減少、または膵臓によるアミラーゼ産生の減少によって引き起こされる、［７］に記載の方法。
［１５］
炭水化物代謝障害が糖尿病である、［１３］または［１４］に記載の方法。
［１６］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子が、被験体の血流に直接投与される、［１］〜［１５］のいずれか一項に記載の方法。
［１７］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子が、動脈内投与される、［１６］に記載の方法。
［１８］
被験体に投与されるＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞が、ＳＴＲＯ−１ ｂｒｉ である、および／または組織非特異的アルカリホスファターゼ（ＴＮＡＰ）を発現する、および／または子孫細胞および／もしくは可溶性因子が、ＳＴＲＯ−１ ｂｒｉ であるＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／もしくはＴＮＡＰを発現するＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞に由来する、［１］〜［１７］のいずれか一項に記載の方法。
［１９］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子が障害の診断後に投与される、膵機能障害の治療または進行の遅延のための、［１］〜［１８］のいずれか一項に記載の方法。
［２０］
膵機能障害の発症および／もしくは進行および／または血糖値および／または血中／血清中インスリンレベルおよび／またはベータ細胞の数および／またはアルファ細胞の数および／または膵島の数および／またはＰＤＸ−１発現細胞の数および／またはＰＤＸ−１発現の量および／または血管の数をモニタリングまたは検出するステップをさらに含む、［１］〜［１９］のいずれか一項に記載の方法。
［２１］
ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子が、前記ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子ならびに担体および／または賦形剤を含む組成物の形態で投与される、［１］〜［２０］のいずれか一項に記載の方法。
［２２］
組成物が、祖先細胞の血管細胞への分化を誘導もしくは強化する因子をさらに含む、または組成物が組織特異的単分化能細胞を含む、［２１］に記載の方法。
［２３］
（ｉ）膵機能障害の治療；および／または
（ｉｉ）膵機能の改善；および／または
（ｉｉｉ）膵臓ベータ細胞および／または膵島の再生の誘導または促進；および／または
（ｉｖ）血糖値の減少および／または血中／血清中インスリンレベルの増加；および／または
（ｖ）膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞の数の減少および／または膵島の数の増加；および／または
（ｖｉ）膵十二指腸ホメオボックス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現の増加および／または膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数の増加；および／または
（ｖｉｉ）膵臓における動脈形成または血管形成の誘導または促進
のための、ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子あるいはそれらを含む組成物。
［２４］
（ｉ）膵機能障害の治療；および／または
（ｉｉ）膵機能の改善；および／または
（ｉｉｉ）膵臓ベータ細胞および／または膵島の再生の誘導または促進；および／または
（ｉｖ）血糖値の減少および／または血中／血清中インスリンレベルの増加；および／または
（ｖ）膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞の数の減少および／または膵島の数の増加；および／または
（ｖｉ）膵十二指腸ホメオボックス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現の増加および／または膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数の増加；および／または
（ｖｉｉ）膵臓における動脈形成または血管形成の誘導または促進
のための、ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子あるいはそれらを含む組成物の使用。
［２５］
（ｉ）膵機能障害の治療；および／または
（ｉｉ）膵機能の改善；および／または
（ｉｉｉ）膵臓ベータ細胞および／または膵島の再生の誘導または促進；および／または
（ｉｖ）血糖値の減少および／または血中／血清中インスリンレベルの増加；および／または
（ｖ）膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞に対する膵臓ベータ細胞の数の増加および／または膵臓アルファ細胞の数の減少および／または膵島の数の増加；および／または
（ｖｉ）膵十二指腸ホメオボックス因子−１（ＰＤＸ−１）の発現の増加および／または膵臓におけるＰＤＸ−１発現細胞の数の増加；および／または
（ｖｉｉ）膵臓における動脈形成または血管形成の誘導または促進
のための、ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞および／またはその子孫細胞および／またはそれらに由来する可溶性因子の、医薬品の製造における使用。

Claims (9)

  1. それを必要とする被験体において糖尿病性腎不全またはＸ症候群を治療または予防するための医薬組成物であって、ＳＴＲＯ−１＋細胞を含む、医薬組成物。
  2. ＳＴＲＯ−１ ＋ 細胞が、ＣＤ３４ − である、請求項１に記載の医薬組成物。
  3. ＳＴＲＯ−１＋細胞が、被験体の血流に直接投与される、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  4. ＳＴＲＯ−１＋細胞が、動脈内投与される、請求項３に記載の医薬組成物。
  5. 被験体に投与されるＳＴＲＯ−１＋細胞が、ＳＴＲＯ−１ｂｒｉである、および／または組織非特異的アルカリホスファターゼ（ＴＮＡＰ）を発現する、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  6. ＳＴＲＯ−１＋細胞が障害の診断後に投与される、糖尿病性腎不全またはＸ症候群の治療または進行の遅延のための、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  7. ＳＴＲＯ−１＋細胞が、前記ＳＴＲＯ−１＋細胞ならびに担体および／または賦形剤を含む組成物の形態で投与される、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  8. 組成物が、前駆細胞の血管細胞への分化を誘導もしくは強化する因子をさらに含む、または組成物が組織特異的単分化能細胞を含む、請求項７に記載の医薬組成物。
  9. ＳＴＲＯ−１＋細胞が、組成物への製剤化の前に培養増殖されたものである、請求項１または２に記載の医薬組成物。
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