JP6475162B2 - プレバイオティックチラコイド組成物 - Google Patents
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Description
いくつかの本発明の実施形態は、本発明を実施することができる当業者のために、添付の図面を参照して、以下に、より詳細に記載されるだろう。本発明は、多くの異なる形態で具体的に示され得るが、本願明細書において説明する実施形態に限定されるものと解されるべきではない。むしろ、この開示が完全で且つ徹底的であり、当業者に本発明の範囲を、完全に伝えるように、これらの実施形態は提供される。実施形態は本発明を限定せず、本発明は特許請求の範囲の記載のみにより限定される。さらに、添付の図面に示される特定の実施形態の詳細な説明で使用される用語は、本発明を限定することを意図しない。
以下に説明する実験作業の狙いは、健康なラットの腸内微生物相におけるチラコイドの効果と、また、血中インスリンにおけるそれらの効果を研究することであった。微生物相の組成を、培養上及び培養に依存しない手法の双方で分析した。特定の細菌の生菌数は、培養上の手法としてそれらの代謝要求量と、培養に依存しない手法として定量的PCR(q−PCR)、末端標識制限酵素断片多型(T−RFLP)、及び16S rDNA配列決定とに基づいた。
研究を、スプラーグドーリー系のラット(ドブネズミ(Rattus norvegicus))(Mol:SPRD Han;Taconic M&B A/S,Ry,デンマーク)において実施し、ラットを、オープンケージシステム(open cage system)を用い、調整された環境(20℃±1℃、相対湿度50%±10%、12:12時間の明暗周期)を備える特定病原体を含まない状況下で飼育した。順化7日後、合計で16匹のラットを個々に管理し、10日間、対照の食餌(8匹のラット)又は濃縮したチラコイドの食餌(8匹のラット)の何れかを与えた。
回腸、盲腸、及び結腸からの腸内粘膜の試料と、糞便からの試料とにおける、乳酸桿菌、ビフィズス菌、及び腸内細菌科(Enterobacteriaceae)の生菌数計測に対して、従来の希釈手順を用いた。適切な希釈物からの試料を、ロゴサ(Rogosa)寒天、変性Wilkins−Chalgren(MW)寒天、及び赤紫色の胆汁グルコース(bile glucose)寒天(全てOxoid(マルメ、スウェーデン)製)に蒔き、1gの組織又は糞便当たりのコロニー形成単位(CFU)を算出する前に、嫌気的に72時間及び好気的に24時間、37℃でインキュベートした。
結腸及び回腸試料からの、合計で169の分離株(全てのラットから4〜6)を、16S rDNA配列決定のために無作為に取り出した(MW寒天プレート:52の結腸の分離株、ロゴサ(Rogosa)プレート:53の結腸の分離株、ロゴサプレート:64の回腸の分離株)。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)のための鋳型として、粗細胞抽出物を使用した。16S rRNA遺伝子を、順方向プライマーENV1及び逆方向プライマーENV2(表1)、(Applied Biosystems、ストックホルム、スウェーデン)を用いることで増幅した。合計で25μLのPCR反応混合物は、0.4μΜのプライマーENV1、0.2μΜのプライマーENV2、2.5μLの10×PCR反応緩衝液(500mMのTris−HCl、100mMのKCl、50mMの(NH4)2SO4、20mMのMgCl2、pH8.3)、0.2μΜのデオキシリボヌクレオチド三リン酸、2.5Uのファストスタート(FastStart)Taq DNAポリメラーゼ(Roche Diagnostics、マンハイム、ドイツ)、及び2μLの鋳型DNA含んでいた。PCRを、以下のプログラムでEppendorf Master Cycler (Eppendorf、ハンブルク、ドイツ)において実施した:95℃3分間、94℃3分間、94℃1分間、50℃45秒、及び72℃2分間を30サイクルの後、72℃7分間の付加的な延長動作。試料のDNAが存在しない試薬のみを含有するPCRを、陰性PCR対照として、並行して実施した。PCR産物(2μL)を1.5%のアガロースゲルで検証した。増幅した産物を、MWG−Biotech(Ebersbery、ドイツ)による配列決定のために96−ウェルプレートに移した。決定した配列を、GenBankデータベース(National Center for Biotechnology Information,Rockville Pike,ベセスダ、メリーランド州、USA)で比較した。
糞便、並びに回腸及び結腸の腸内切片を解凍し、12851gで10分間、遠心分離(Eppendorf 5804R、ハンブルク、ドイツ)する前に、5分間超音波浴(Millipore、スンドビュベリ、スウェーデン)に入れ、2分間ボルテックスにかけた。上清を捨て、190μLの緩衝液G2、及び15μLのプロテイナーゼK(DNA組織キット(DNA Tissue Kit);Qiagen、ヒルデン、ドイツ)を腸内試料に加えた。全ての試料を、振とう式恒温水槽(shaking water bath)において56℃で一晩中インキュベートする前に、PBS緩衝液(500μL/50mg)を、糞便の試料に加えた。12851gで8分間遠心分離(Eppendorf 5804R)した後、溶液をQiagenの試料管に移した。全てのDNAを抽出し、製造業者の説明書に従いBiorobot EZ1(Qiagen)を用いて、200μLの緩衝液に溶離した。
分離定量(separate quantitative)PCR分析を用いて、細菌の分類を推定した。それぞれの分析反応では、10μLのQuantiTect(登録商標)SYBR Green PCR Master Mix(Qiagen)、0.5μΜのそれぞれのプライマー(表1)、2μLの鋳型DNA、及び20μLの最終体積に達するようにRNaseフリーの水を含んでいた。試料、基準、及び非鋳型の対照を、重複して実行した。95℃15分間の後、95℃15秒間の変性、56℃〜60℃30秒間のアニーリング、及び72℃30秒間の伸長反応による40サイクルのプログラムを有するRotor−Gene Q(Qiagen)において、熱サイクルを実施した。蛍光性の産物をそれぞれのサイクルの最終段階で検出した。特異的な増幅を確認するために、融解曲線分析を行った。16S rRNA遺伝子の絶対存在量(Absolute abundance)を、Rotor−Gene Qシリーズ(ソフトウェア1.7、Qiagen)を用いる標準曲線を基に算出した。検出限界は、全ての分析について、102コピー/反応であった。標準曲線を作成するために、ラクトバチルス・プランタルムDSM9843、ビフィドバクテリウム・インファンテスDSM15159、大腸菌(Escherichia coli)CCUG29300、及びバクテロイデス・プレボテラ(Bacteroides prevotella)からのクローニング産物を使用した。細胞懸濁液(クローニング産物)の1つのループを、アンピシリンを有する10mLの溶原培地(LB培地)に移し、37℃で一晩インキュベートした。QIAprep(登録商標)(Miniprep kit, Qiagen)を用いることにより、DNA抽出を実施した。Nanodrop ND−1000(Saveen Werner AB、マルメ、スウェーデン)により、DNAの濃度(ng/μL)を、最終的に測定し、コピー数を算出するために用いた。DNA産物の10倍の希釈系列をTE緩衝液(10mMのTris、1mMのEDTA、pH8)において作成した。細菌数を、糞便又は組織の湿重量1g当たりの増幅産物コピー数として表した。
順方向プライマーENV1を、5’末端で蛍光染料(FAM)により蛍光で標識化したこと以外、上記の通り、16S rRNA遺伝子を増幅した。3系列反応(Triplicate reactions)をそれぞれの試料に対して実施し、陰性対照も全てのPCRで実施した。PCR産物を1.5%のアガロースゲルで検証した。それぞれの試料のPCR産物を貯蔵し、MinElute PCR精製キット(Qiagen)を用いることにより、さらに精製した。DNAを、最終的に、15μLのPE緩衝液に溶離し、DNA濃度をNanodrop ND−1000(Saveen Werner AB)により測定した。
精製したPCR産物のアリコート(200ng)を、制限エンドヌクレアーゼ酵素MspIで5時間、又は制限エンドヌクレアーゼ酵素AluIで2時間(Fermentas、ザンクト・レオン=ロート、ドイツ)の何れかにより、37℃で消化した(Mastercycler(登録商標)5333、Eppendorf)。不活化の例を65℃で20分間加熱することにより形成した。消化後、産物のアリコートを、96−ウェルプレートにおいて滅菌水で4倍に希釈した。次いで、キャピラリー電気泳動システムにおけるT−RFLP分析のために、試料をDNA−lab(Skane University Hospital、マルメ、スウェーデン)に移した。GeneMapper(登録商標)(version 4.0、Applied Biosystems、フォスターシティ、カリフォルニア州、USA)により、電気泳動からのデータを分析し、断片サイズ及びピーク領域を、サザン法(GeneMapper)を用いて概算した。サイズ範囲を30塩基対(bp)〜600bpに設定した。ピーク振幅の閾値を、試料に対して50相対蛍光単位(rfu)、及び内部標準に対して10rfuに設定した。それぞれの試料について全てのピーク領域を、試料における全てのピークについての領域を集計することにより算出した。個々の相対的なピーク領域を、全ての領域のパーセンテージとして表した。
試料について全ての領域のパーセンテージとして表した相対的なピーク領域を用いて、シャノン=ウィーバー指標(Η’)を、以下の数式により算出した:
H’=−Σpi lnpi
piがパーセンテージとして表した相対的な領域であり、lnは自然対数である。実験群の間の微生物個体群における相違の可能性を明らかにするため、主成分分析(PCA)による多変量データ解析を、SIMCA−P+(12.0.1、Umetrics、ウメオ、スウェーデン)において実施した。
数値を、中央値±平均値の標準誤差、又は10%値、25%値、75%値、及び90%値として示す。マン・ホイットニー順位和検定及び/又はSigma−Stat 3.0(SPSS Inc.、シカゴ、イリノイ州、USA)及びGraphPad 4.0,(Graphpad Inc.、ラホヤ、カリフォルニア州、USA)を用いるt検定により、2つの実験群の間の相違を評価した。フィッシャー直接確率法(Quick−Stat version 2.6、Sapio HB、スウェーデン)により、細菌の発生率を評価した。P<0.05は有意差があるとみなされる。
(体重、血漿グルコース、及びインスリン)
全てのラットは、研究中の毎晩の実験的な食餌を終えた。10日間の実験中に示す体重又は標準のラットの摂取量に関して、チラコイドと対照群との間に有意差を発見しなかった(データは示さない)。しかしながら、ボーラス投与後、120分間での血漿インスリン濃度は、図1に示すように、対照と比較して、チラコイド群では有意に低下した。ここで、グルコースのボーラス投与をラットに与えた後120分の、血漿インスリン濃度(pM)を示す。インスリンレベルは、対照群と比較してチラコイド群では有意に下がった(p=0.0082)。しかしながら、それらの群の間で、血漿グルコース濃度について差異はなかった。
乳酸桿菌についての図2に示すような生菌数計測と、図3に示すようなqPCR分析との双方に関し、対照と比較してチラコイド群では、回腸の粘膜において有意に増加した。図2は、回腸、盲腸、及び結腸の粘膜、並びに糞便における乳酸桿菌の生菌数(CFU/g組織)を示す。チラコイド群における乳酸桿菌の量は、対照群と比較して、回腸では有意に増加したが(p=0.007)、盲腸、結腸、及び糞便に関して差異は見られなかった;図3は回腸及び結腸の粘膜、並びに糞便における、乳酸桿菌の含有量のqPCR分析を示す。乳酸桿菌は、対照群と比較してチラコイド群では、回腸の粘膜において有意に増殖し(p=0.032)、糞便において有意に減少した(p=0.007)。結腸の粘膜において、差異を観察しなかった。双方の方法に関し、結腸又は盲腸の粘膜試料において、差異を観察しなかった。しかしながら、生菌数計測ではなく、qPCRは、図3に示すように、チラコイド群では、糞便試料において乳酸桿菌の有意な減少を示した。qPCRの融解曲線分析は糞便及び粘膜の乳酸桿菌が異なっていることを証明した(データは示さない)。ロゴサプレートから無作為に取り出した分離株に対する16S rDNA配列決定は、対照と比較して、チラコイド群では、回腸におけるラクトバチルス・ロイテリのかなり高い発生率を示した。また、結腸におけるチラコイドによるラクトバチルス・ロイテリの発生率の増加傾向も、回腸及び結腸におけるラクトバチルス・ジョンソニー(Lactobacillus johnsonii)の発生率の有意な低下と同様に観察した(表2)。
この研究では、2つの主な知見に至った。第一に、10日間の食餌に対するチラコイドの補給は、ラットにおけるインスリン感度に影響を及ぼす。食餌の間、血漿グルコースの濃度に差異を観察しないにも関わらず、グルコースのボーラス投与を与えてから120分後、チラコイドの食餌を与えたラットの血液中において、インスリンがより低濃度であった。腸壁の摂取及び透過性に関するインビトロモデルである拡散チャンバーを用いると、チラコイドは、投与量に依存して、メチルグルコースの摂取を長引かせ、腸管の粘膜側を被覆するチラコイドの立体障害が起こることを示している。仮説では、インビボでグルコース摂取が長引くと、分泌されるインスリンの濃度が低くなる。しかしながら、本研究において、血液中のグルコースで差異が観察されなかったものの、120分後のインスリン濃度が、チラコイド群では有意に下がった。近年は、「リーキーガット」、すなわち腸管の透過性の増加が、インスリン耐性、及び結果的に糖尿病の改善に導き得ることが提案されている。インスリンの濃度低下に対する1つの説明は、それゆえ、チラコイドにより引き起こされた立体障害が、腸壁を強化したことであるだろう。
Claims (8)
- 単離され、濃縮されたチラコイド、又はその部分を含むプレバイオティック用組成物。
- 哺乳動物の腸管における乳酸菌の増殖を促進するためである、請求項1に記載のプレバイオティック用組成物。
- 増殖が促進される前記細菌が、乳酸桿菌(Lactobacilli)及び/又はビフィドバクテリウム(Bifidobacterium)である、請求項1又は2に記載のプレバイオティック用組成物。
- 前記チラコイド又はその部分が、緑葉又は緑藻類から濃縮される、請求項1〜3の何れか1項に記載のプレバイオティック用組成物。
- 前記チラコイド又はその部分が、ホウレンソウから濃縮されたチラコイド又はその部分である、請求項4に記載のプレバイオティック用組成物。
- 前記組成物におけるクロロフィルの含有量が、前記組成物1g当たり1mg〜75mgである、請求項1〜5の何れか1項に記載のプレバイオティック用組成物。
- 前記組成物が食品の部分である、請求項1〜6の何れか1項に記載のプレバイオティック用組成物。
- 前記組成物が、前記チラコイド又はその部分を含む、生理的に許容できる水中油型エマルションを含む、経口用栄養補助食品組成物である、請求項1〜7の何れか1項に記載のプレバイオティック用組成物。
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