JP6442615B2 - インドール酢酸コア構造を含む化合物とその応用 - Google Patents
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Description
基に、炭素に結合する水素原子を省略しているが、この省略することは、当技術分野で公知の一般的な知識に属する。式(1)中の原子種の変化によると、当業者は、式(1)中の省略された原子と接続方式を明確に確認できる。
図1aは、胃粘膜COX1活性に対する本発明の化合物の阻害効果を示す図である。
図1bは、心筋COX1活性に対する本発明の化合物の阻害効果を示す図である。
図1cは、COX2の活性に対する本発明の化合物の阻害効果を示す図である。
図2は、本発明の化合物が細胞へ入る効率を示す図である。
図3は、血漿環境および細胞内における本発明の化合物の安定性を示す図である。
図4aは、本発明の化合物が動物体中における代謝動態を示す図である。
図4bは、動物に本発明の化合物を経口投与した後の血漿における完全な中間体IIの含有量を示す図である。
図5は、正常細胞に対して本発明の化合物の毒性を示す図である。
図6aは、本発明の化合物が、選択的に、シスプラチンの腫瘍細胞を殺す効果を増加することを示す図である。
図6bは、本発明の化合物が正常細胞と腫瘍細胞のABCG2とP21の発現に対する影響を示す図である。
図7は、本発明の化合物が、γ線によるマウスの生存率に対する影響を示す図である。
図8は、本発明の化合物が、タキソールによる動物の末梢白血球の損傷に対する保護作用を示す図である。
図9aは、本発明の化合物が加水分解された活性成分(中間体I、中間体II)は、腫瘍組織および正常な周辺組織における含有量を示す図である。
図9bは、本発明の化合物は、化学療法薬が腫瘍を殺す効果を増加しつつ、化学療法薬が正常組織を殺すことを保護することを示す図である。
図9cは、本発明の化合物と化学療法薬の相乗抗腫瘍効果を示す図である。
図10は、本発明の化合物が、単独で使用される場合、ヌードマウス腫瘍に対する抑制効果を示す図である。
図11は、本発明の化合物が、ドキソルビシンを組み合わせて使用される場合、ヌードマウス腫瘍に対するドキソルビシンの抑制効果を増強することを示す図である。
中間体Iの合成:
以下に示される工程により式bの化合物を合成した。
中間体IIIの合成:
化合物aにおいて中間体Iを合成するステップで中間体IIIを合成した。唯一の違いは、中間体Iを合成する時使用されたN−p−クロロベンゾイル−p−メトキシフェニルヒドラジンおよびレブリン酸が、それぞれ、フルオロ−2−メチル−3−インデン酢酸エチル及びp−メチルチオベンズアルデヒドに置き換えられることである。再結晶し、淡黄色固体を得、その総収率が59%であった。1HNMR(400MHz,CDCl3)δ1.31(d,J=6.9Hz,6H),2.20(s,3H),2.97(s,J=6.9Hz,1H),3.59(s,2H),6.55−6.61(m,1H),6.85−6.90(m,1H),7.19(s,1H),7.25−7.45(m,5Η)。
この実施例では、以下に示される工程で式dで表される化合物を合成した。
本発明の化合物a〜fが生体内のCOX1とCOX2活性に対する影響
(1)COX−1活性の測定:カルシウムイオンベクターA23187(50mg/kg)で腹腔内注射によりラットに2時間投与した後に、化合物a、b、c、d、e、fを、それぞれ、1、3、9mg/kg/日の用量で3匹のラットに経口投与(強制経口投与)し、中間体Iを対照薬物として、0.5mg/kgの用量で3匹のラットに経口投与し、別の3匹のラットに、本発明の化合物ではなく、COX−1活性化剤としてのカルシウムイオンベクターA23187のみを投与した。本発明の化合物を6時間投与した後、動物を殺し、胃粘膜組織と心筋組織をとり、均質化した液に調製され、高速遠心分離(12,000回転/分)し、上清を取っておいた。酵素免疫測定法(EIA)キット(メーカー供給された明細書に従って操作した)を使用して、トロンボキサンB2の量を検出し、COX1の活性に換算した。
細胞が化合物を取り込む状況の測定:SW480細胞を24ウェル培養皿に播種し、単層培養し、培養皿の80%が細胞に覆われている場合には、化合物a、b(両方とも10μM)、中間体I(10μM)を培養皿に添加し、37℃で1、3、6、12時間培養した。各々の時間点で、細胞をPBS(リン酸塩緩衝液)で十分に洗浄し、その後、細胞を採取し、アセトニトリルで抽出を行い、5分間高速遠心分離(12,000 rpm)し、HPLCによってアセトニトリルに溶解された中間体Iの量を測定し、細胞が中間体Iを取り込むレベルに換算し、HPLC測定のとき、Thermo Hypersil BDS C18コラム(150×4.6mm、フィラー粒径3um)を用いた。移動相はギ酸:CH3 CN:H2O=0.3:4.7:95(v/v/v)の溶液であり、レートは1ml/分であり、結果は、図2に示され、化合物a、bが細胞に進入する能力は、少なくとも中間体Iの6倍であることがわかった。これは、中間体Iが効率的に細胞に取り込まれることが困難であるが、化合物a、bが優れた細胞に取り込まれる性能を有することを示した。
化合物の安定性の測定:(1)血漿中の化合物の分解:DMSOに溶解した化合物(10μM)と10%ウシ血清含有培地(5mL)を37℃で培養し、それぞれ1、3、6、12、24時間後に200μLの培地を採取し、等容量のアセトニトリルを加え反応させ、5分間高速(13,000rpm)遠心分離した。HPLCで化合物の分解のレベルを測定し、結果が図3に示す。(2)化合物が細胞内における分解:DMSOに溶解した化合物aを、SW480細胞を含む6ウェル培養皿に添加し、最終濃度が10μMであり、炭酸ガスインキュベーター中で培養し、それぞれ1、3、6、12、24時間後に細胞を採取し、細胞を十分に洗浄した後、アセトニトリル0.5mLを加え、抽出を行い、5分間高速(12,000rpm)遠心分離した。HPLCにより有機相における化合物の分解のレベルを測定し、結果を図3に示す。これにより、化合物aがウシ血清でかなり安定しており、24時間以内に、わずか11%が加水分解されたが、細胞内で加水分解の速度が大幅に増加し、3時間後にほぼ80%、24時間後に全部加水分解された。
化合物Aがマウス生体内の代謝動態:25MG/KG/回、12MG/KG/回の用量(等モル濃度)で化合物A及び中間体iiをマウスに強制経口投与し、それぞれ1、3、5、9、18、24時間後に相等量体積の血液サンプルを採取し、すぐに遠心分離し、上清(血漿)100Μlを採取し、すぐに、2倍体積のアセトニトリルを加え、血液サンプルを二回抽出を行い、5分間高速(12,000RPM)遠心分離した。hplcにより有機相における中間体iiのレベルを測定し、そしてlc−msで化合物のフラグメントの含有量を検出し、pHARMACOKINETICS sOLUTIONS 2.0ソフトウェア(sUMMIT rESEARCH sERVICES,mONTROSE,co,usa)で薬物動態を解析し、結果を図4Aおよび表1に示す。その結果から、化合物Aを経口投与したマウスの血漿において、中間体iiの含有量が、直接中間体iiを経口投与する場合よりも有意に高かったであり、化合物Aを経口投与したマウスの血漿における代謝産物が顕著に低下した(図4B参照)ことがわかった。これにより、化合物Aがかなり初回通過効果を避けるために、効果的に薬物のバイオアベイラビリティを向上させることがわかった。
化合物a、b、c、dの毒性作用の分析:(1)異なる濃度(10、30、90μM)の化合物a、b、c、dおよび対応する濃度の中間体Iと比較化合物Aで、96ウェルプレートに初代培養した腸粘膜細胞(実験室用伝統的なトリプシン消化法で自家製腸粘膜細胞)を処理し、24時間後、乳酸脱水素酵素放出アッセイ(LDH)(メーカー供給された操作手順に従って操作した)によって細胞の損傷の程度を測定し、結果を図5に示す。これにより、中間体Iの濃度が30μMに達成する時、顕著に細胞死をもたらすが、化合物a、b、c、dの濃度が90μMに達成する時、まだ顕著に細胞死がないことがわかった。化合物a、b、c、dが正常細胞に対する毒性は、中間体Iより著しく低く、本発明の化合物の低毒性は、化合物における中間体IIの構造による酸化的損傷防止機能から生じるかもしれない。
化学療法薬が腫瘍を殺す効果を増加しつつ、正常組織を保護するメカニズム:マウス結腸癌細胞(MCA−38)および初代培養したマウス正常腸粘膜細胞を、96ウェル培養プレートで培養し、24時間後、異なる濃度(10、30、90μM)の化合物bを加え、続いて8時間培養し、細胞培養培地へシスプラチン(10μM)を加え、24時間培養し、LDHで細胞の損傷を検出しつつ、細胞を取り、タンパク質を抽出し、イムノブロット法(メーカー供給された操作手順に従って操作した)でATP結合カセット輸送体蛋白質(ABCG2)を検出し、サイクリン依存性キナーゼ(p21)のタンパク質発現レベルの結果を、図6a、6bに示す。化合物bが測定された濃度でシスプラチンによる大腸癌細胞の死滅を大幅に増加した。驚くべきことに、高濃度の化合物bに加えて、測定された濃度では、シスプラチンによる正常粘膜細胞の損傷を顕著に阻害した(図6a)。化合物bが腫瘍細胞のATP結合カセット輸送体蛋白質(ABCG2)の発現を顕著に阻害できるが、正常細胞のABCG2の発現には影響を及ぼしなかった。ABCG2は、輸送体蛋白質であり、抗がん薬を細胞の外に輸送できる。したがって、化合物bは、抗がん薬を腫瘍細胞内に高濃度に蓄積することができ、これにより化学療法薬が腫瘍を殺す効果を強化した。また、化合物bが正常腸粘膜細胞p21の発現を顕著に増強させるが、腫瘍細胞p21の発現に影響を及ぼしなかった。p21の高い発現が細胞を非分裂の静止期に入らせて、よって、細胞が化学療法薬または他の形態の傷害に感受性がなくなった。本発明の化合物は、これらのタンパク質を正常組織および腫瘍組織において相違性発現させることは、正常組織を選択的に保護することや、治療に対する腫瘍の感受性を増強することをもたらす原因の一つである。
化合物bが保護剤としてγ線照射したマウスの生存率に対する影響
この実験は、体重が約20gである10週齢の雄マウス(C57BL/6J)を実験対象として、16匹のマウスをグループとした。次のグループがあった。1.γ線なし+薬物なし;2.γ線+薬物なし;3.γ線+アミホスチン;4.γ線+中間体I+中間体II;5.γ線+化合物a;6.γ線+化合物b;7.γ線+化合物d。まず、各グループのマウスに保護剤を投与し、具体的な投与量は次のとおりであった。化合物a、b、d:6mg/kg/日(8.1μM)、アミホスチン:400mg/kg/日(1.5mM)、中間体I+中間体II:それぞれ、3mg/kg/日(8.1μM)。アミホスチンが腹腔内注射であることに加えて(アミホスチンを照射前30分に投与し)、そのほかの保護剤がすべて強制経口投与された。投与後の12時間後に、コバルト60γ線で8.75Gy線量で全身照射し、マウスから放射線源が80cmであり、線量率が0.35Gy/分であり、照射時間が25分であった。一回照射し、照射後、一日一回で10日間連続投与した。生存マウスの数を記録し、生存マウスの数が実験マウスの総数(16匹)に対するパーセンテージがマウスの生存率であり、結果を図7にまとめる。保護剤を受けなかった対照群マウスが8.75Gyで照射された後に、第30日まで生存マウスの数が4匹であり、生存率が25%であった。化合物a群については、第30日まで生存マウスの数が10匹であり、生存率が62.5%であった。化合物b群については、第30日まで生存マウスの数が12匹であり、生存率が75%であった。アミホスチン群については、第30日まで生存率が62.5%であった。化合物d群については、第30日まで生存マウスの数が11匹であり、生存率は68.75であった。特に、中間体I+中間体IIを使用した実験群については、生存マウスの数がただ1匹であった。以上の実験データから分かるように、化合物bは有意に放射線による動物の死亡を減少させることができ、特に化合物bの保護効果がアミホスチンにより優れた。
化合物a、bがタキソールによる血液細胞の傷害に対する保護効果
この実験では、約20gの10週齢の雄マウス(C57BL/6J)を実験対象として、6匹のマウスをグループとした。下記のような5つのグループがあった。1.パクリタキセル;2.パクリタキセル+アミホスチン;3.パクリタキセル+中間体I+中間体II;4.パクリタキセル+化合物a;5.パクリタキセル+化合物b。まず、各グループのマウスに保護剤を投与し、具体的な投与量は次のとおりであった。化合物a、b:それぞれ、6mg/kg/日(8.1μM)、アミホスチン:400mg/kg/日(1.5mM)、中間体I、中間体II:それぞれ、3mg/kg/日(8.1μM)。アミホスチンが腹腔内注射であることに加えて(パクリタキセルを投与する前の30分にアミホスチンを投与し)、そのほかの保護剤がすべて強制経口投与された(1回/日、25回連続投与)。化合物aと対応する保護剤の投与後の12時間後に、パクリタキセルを腹腔内注射し(10mg/kg/日、1回/3日、9回連続投与)、パクリタキセルの注射後の7日目、14日目、21日目、28日目に、マウスから血液を抽出し、白血球数を分析し、結果を図8にまとめる。実験結果からわかるように、シミュレート化学療法の条件では、従来知られるアミホスチンと中間体Iに比べて、化合物a、bを使用することで、大幅に放射線による末梢白血球の傷害を減らし、末梢血液細胞の数を増やすことができる。注目すべくことは、シミュレート化学治療の初期では、アミホスチンが白血球に対する保護効果は、化合物a、bより若干良いが、化学治療の後半では、化合物a、bが白血球に対する保護効果は、アミホスチンより顕著に良かった。化合物bは、最強の保護効果を提供した。
本発明の化合物が化学療法薬によるヌードマウスの移植腫瘍の生体内抗腫瘍効果及び正常組織の選択性効果に対する影響(体内実験)
本実施例で化合物aを使用して、実験を行った。無菌条件下で、対数増殖期の結腸癌細胞(SW480)の懸濁液(細胞濃度を1×107/mLに生理食塩水で調整した)を5〜6週齢のbalb/c雌ヌードマウスの右後方バック皮下に播種し、各ヌードマウスに0.3mLの量で播種し、すなわち、含まれる細胞の数は、3×106/匹であった。10日後に100〜250mm3の大きさの皮下移植腫瘍が現れた。腫瘍を有するヌードマウスをランダムに下記のグループに分け、6匹/グループとした。(1)対照群;(2)ドキソルビシン群;(3)ドキソルビシン+アミホスチン;(4))ドキソルビシン+セレコキシブ(Celecoxib)+中間体II;(5)ドキソルビシン+中間体I+中間体II;(6)ドキソルビシン+低用量の化合物a(6mg/kg/日);(7)ドキソルビシン+高用量の化合物a(15mg/kg/日)。まず、以下の投与量で腫瘍を有するヌードにそれぞれ以下の化合物、即ち、中間体Iおよび中間体II(それぞれ、3mg/kg/日)、アミホスチン(400mg/kg/日)、セレコキシブ(6mg/kg/日)を投与し、アミホスチン(照射前30分)が皮下注射であることに加えて、そのほかの保護剤がすべて強制経口投与された。これらの薬物は、5週連続で、毎日投与した。投与された12時間後、アドリアマイシン(2.5mg/kg)を腹腔内注射し、1回/2日で5週連続で投与した。投与期間、2日毎に精密電子天秤でヌードマウスの体重を測定し、播種後、腫瘍の増殖、腫脹・潰瘍の存在があるかどうかを毎日観察した。腫瘍を形成した後、移植腫瘍の表面形態及び活動度合を検査し、ノギスで腫瘍結節の最長径(a)と最短径(b)を3日毎測定し、式V=0.5ab2で腫瘍の体積を算出し、平均値を求め、腫瘍の成長曲線を描き、腫瘍抑制率を算出し、その中、腫瘍増殖抑制率=(対照群の平均体積 − 照射群の平均体積)/対照群の平均体積×100%であった。そして、ドキソルビシンの投与後21日で、マウスの尾静脈血を取り、白血球数をカウントし、血液生化学的指標を解析し、結果を表3に示す。治療の最後の日で、腫瘍組織と正常周辺組織を取り、HPLCによって中間体Iの含有量を測定し(図9a)、一方、パラフィン切片を作製し、末端標識法により、アポトーシス細胞の発生(図9b)を検出し、正常組織および腫瘍組織の相対的生存率を算出した(図9bにまとめる)。各群のヌードマウスの腫瘍組織の体積を図9cにまとめる。図9cから見られるように、ドキソルビシンを単独投与する場合、腫瘍に軽度の抑制効果を有し、3匹のマウスが、治療の後半で死亡し、ドキソルビシンによる副効果により死亡したことが考えられる。これはドキソルビシンを投与しなかったマウスが逆に死亡しなかったためである。既知の保護剤としてのアミホスチンに比べて、化合物aは、顕著に化学療法に対する腫瘍細胞の感受性を高めることができ(P<0.001)、これにより、腫瘍組織の体積が大幅に減少し、且つ、用量依存的関係になるが、治療群のマウスはいずれも死亡しなく、より顕著な治療効果を得た。アミホスチンが正常組織を効果的に保護したが、ドキソルビシンによる腫瘍の阻害作用を顕著に妨げた。さらに重要なことは、表3および図9bから分かるように、化合物aは、アドリアマイシンによる正常な白血球、心筋細胞及び腫瘍周辺正常組織の殺傷効果を効果的に阻害することができる。これは、本発明の化合物aが、腫瘍細胞に対する選択性阻害効果、即ち、腫瘍細胞のみのドキソルビシンに対する感受性が高かったが、中間体Iと中間体IIとの組成物の白血球に対する保護は明らかなかったことを示した。本発明は、腫瘍組織中の活性成分の含有量が周辺正常組織の活性成分よりも顕著に高いことを初めて達成し、化学療法薬に対する腫瘍細胞の感受性を選択的に強化することに実験的根拠を提供した。本研究は、また、COX2選択的阻害剤セレコキシブ(CEL)をコントロールとした結果、COX2選択的阻害剤による化学療法薬の増感効果が本発明の化合物による効果より著しく弱かったことを示した。これは、同時にCOX1、COX2を抑制する限り、非常に顕著な効果を達成することができると証明した。中間体Iを単独に使用することで、ドキソルビシンに対する腫瘍の感度を高めることができるが、胃腸に対して副作用が極大であるため、該群の動物の半分が治療中に胃腸出血で死亡した。
本発明の化合物が単独で使用される時、ヌードマウスの移植腫瘍に対する抑制効果
実施例9に記載された方式および条件で動物腫瘍モデルを構築し、その違いことは、以下の通りである。実施例9に使用されたSW480細胞をA549細胞に置換し、A549細胞をヌードマウスのバック右後肢の外側の皮下に注射し、腫瘍の体積が100〜250mm3に達したとき、腫瘍を有するマウスをランダムに下記の5つの群(6匹/群)に分けた。(1)溶媒(DMSO)対照群;(2)中間体I+II(それぞれ12.5mg/kg/日);(3)シスプラチン(5mg/kg/週);(4)低用量の化合物a(5mg/kg/日);(5)高用量の化合物a(25mg/kg/日)。シスプラチン(腹腔内注射、週に一度)に加えて、すべての化合物は、一日一回、5週連続で強制経口投与された。実施例9に記載されるように、動物の体重及び腫瘍の体積を測定し計算した。各群の腫瘍の体積を図10にまとめる。結果から見られるように、治療用量のシスプラチンが腫瘍に対して軽度の阻害作用だけを有し、この阻害作用が低用量の化合物aより劣った。化合物aは、用量依存性の腫瘍阻害効果を示した。高用量の化合物aが腫瘍に対する阻害効果は60%以上であり、かつ、投与期間で、動物の体重が有意に低減されなかった(結果は図示せず)。これに対して、高用量の中間体が腫瘍に対する阻害は、顕著に減少し、かつ、2匹の動物は死亡した(結果は図示せず)。これにより、本発明は、単剤として腫瘍を効果的に治療することができることがわかった。
本発明の化合物が他の抗がん薬の組み合わせで腫瘍に対する相乗的阻害効果
実施例9に記載された方式および条件で動物腫瘍モデルを構築し、その違いことは、以下の通りである。実施例9に使用されたSW480細胞をHT−29細胞に置換し、腫瘍の体積が100〜250mm3に達したとき、ランダムに下記の4つの群(6匹/群)に分けた。(1)溶媒(DMSO)対照群;(2)ドキソルビシン(2mg/kg/週);(3)化合物a(3mg/kg/日);(4)化合物a+ドキソルビシン(それぞれ、3mg/kg/日および2mg/kg/週)。化合物aが一日一回、4週連続で強制経口投与され、アドリアマイシンが週一回、4週間で腹腔内注射された。実施例9に記載されるように、動物の体重及び腫瘍の体積を測定し計算した。各群のヌードマウスの腫瘍の体積を図11にまとめる。図11から見られるように、単独で低用量のアドリアマイシンと化合物aを投与するとき、腫瘍に対して軽度の阻害作用だけを有するが、この二つの化合物を組み合わせると、腫瘍に対する阻害効果は60%と高い、かつ、治療期間で、動物の体重が約10%増加した(結果は図示せず)。これは、本発明の製剤は、一般に使用されるそのほかの抗がん剤を併用することで、大幅に癌の治療効果を改善できることを示した。
Claims (13)
- 下記の式(1)で表される化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物。
- R1〜R4は、それぞれ独立して水素原子、フッ素原子、塩素原子、炭素数1〜4のアルキル基、炭素数1〜4のアルコキシ基、オキソ基(=O)、及びヒドロキシル基から選択されるものであり、
R11は、水素原子、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子、アジド基、及び炭素数1〜3のアルキルスルフィニル基から選択されるものであり、
R6〜R9は、それぞれ独立して水素原子、炭素数1〜4のアルキル基、及び炭素数1〜4のアルコキシ基から選択されるものであり、
R5、R10、R12〜R17は、それぞれ独立して水素原子、炭素数1〜4のアルキル基、炭素数1〜4のアルコキシ基、及びアミノ基から選択されるものであり、
Xは炭素原子または窒素原子であり、
Yは、単結合、炭素数1〜6のアルキレン基、炭素数6〜15のアリーレン基、及び炭素数4〜15のヘテロアリーレン基から選択されるものであることを特徴とする請求項1に記載の化合物。 - 前記化合物は、下記の式a、c、e、及びfのいずれか一つで表される化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物から選択されるものであることを特徴とする請求項1に記載の化合物。
- 下記の式bで表される化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物。
- 下記の式dで表される化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物。
- (i)上記の請求項1〜5のいずれか一項に記載の化合物、その薬学的に許容される塩、水和物、または有機溶媒和物と、
(ii)薬学的に許容される任意のフィラー、担体、および希釈剤の中の1つ以上と、
(iii)成分(i)と異なる任意の薬学的に活性な成分と、
を含む医薬組成物。 - 前記(iii)成分(i)と異なる任意の薬学的に活性な成分は、ウラシルマスタード、アミホスチン、クロラムブシル、ナイトロジェンマスタード、シクロホスファミド、パクリタキセル、チオテパ、シスプラチン、ブスルファン、ドキソルビシン、カルムスチン、5−フルオロウラシル、セレコキシブ、メルカプトプリン、メトトレキサート、テガフール、ゲフィチニブ、ヒドロキシ尿素、シタラビン、カルボプラチン、イソプロピルプラチナ、プレドニゾン、プレドニゾロン、デキサメタゾン、ジエチルスチルベストロール、エストラジオール、ラロキシフェン、プロピオン酸テストステロン、セムスチン、ロムスチン、チオグアニン、エトポシド、ビンクリスチン、イホスファミド、ビノレルビン、ゲムシタビン、マイトマイシン、ビンデシンの中から選択される一つ以上であることを特徴とする請求項6に記載の医薬組成物。
- 請求項1〜5のいずれか一項に記載の化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物の、抗腫瘍の薬物を製造するための使用。
- 請求項1〜5のいずれか一項に記載の化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物、または請求項6又は7に記載の組成物の、治療に対する腫瘍の感受性を増強する薬物を製造するための使用。
- 請求項1〜5のいずれか一項に記載の化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物、または請求項6又は7に記載の組成物の、悪性腫瘍に対する放射線治療や化学治療の毒性を低下させる薬物を製造するための使用。
- 請求項1〜5のいずれか一項に記載の化合物、及びその薬学的に許容される塩、水和物、有機溶媒和物、または請求項6又は7に記載の組成物の、炎症性疾患および退行性疾患を治療する薬物を製造するための使用。
- 前記薬物は経口薬であることを特徴とする請求項8〜11のいずれか一項に記載の使用。
- 前記薬物は、経口、静脈内、経皮吸収、経粘膜吸収、体内移植の中の1つ以上の方式により投与されることを特徴とする請求項8〜11のいずれか一項に記載の使用。
Applications Claiming Priority (3)
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