JP6389125B2 - 赤血球の処理法 - Google Patents
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Description
本出願は、2011年11月7日に提出された仮出願第61/556,661号の優先権を主張する。この先行出願の内容はすべて、その全体が参照により本明細書に組み入れられる。
本発明は、哺乳動物への投与の前の赤血球の処理のための組成物および方法に関する。
2週間よりも長く保存した赤血球の輸血には、感染率の増大、入院期間の延長、ならびに集中治療室患者および心臓血管手術を受けた患者における死亡率の増加が伴ってみられる(Triulzi et al., Transfus Apher Sci 2010; 43:95-106(非特許文献1))。赤血球の長期保存は、赤血球の生化学的、機械的および機能的変質の原因となり、これらは「保存損傷」と総称される(Kim-Shapiro et al., Transfusion 2011; 51:844-51(非特許文献2))。保存赤血球の輸血に伴う有害作用を減少または消失させるための組成物および方法が必要とされている。
本発明は、少なくとも一部には、一酸化窒素による保存赤血球のエクスビボ処理が、細胞外二価鉄ヘモグロビンを酸化させて三価鉄ヘモグロビンにすること、およびこの処理により、保存赤血球が哺乳動物への投与後に血管収縮を誘発することが予防されるという発見に基づく。一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物による保存赤血球の前処理は、保存血液の輸血に伴う有害作用の発生を減少または消失させるための手段として用いることができる。哺乳動物への投与の前に血液を処理することによって、保存血液の輸血に起因する有害作用に対処するために哺乳動物を輸血後に治療する必要性をなくすことができる。
赤血球試料を処理する方法であって、赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも一部分を三価鉄ヘモグロビンに変換させるのに十分な量の一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と、赤血球試料をエクスビボで接触させる段階を含む、方法。
[本発明1002]
赤血球試料が、一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、血液透析、術中血液回収、または開心術吸引回路(cardiotomy suction)にエクスビボでさらされている、本発明1001の方法。
[本発明1003]
赤血球試料が、一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、ポンプ、膜、および/または気泡のうちの1つまたは複数にエクスビボでさらされている、本発明1001の方法。
[本発明1004]
赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつ一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも24時間エクスビボで保存されている、本発明1001の方法。
[本発明1005]
赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつ一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも7日間エクスビボで保存されている、本発明1001の方法。
[本発明1006]
赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつ一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも14日間エクスビボで保存されている、本発明1001の方法。
[本発明1007]
赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつ一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも28日間エクスビボで保存されている、本発明1001の方法。
[本発明1008]
赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつ一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも42日間エクスビボで保存されている、本発明1001の方法。
[本発明1009]
赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも20%が三価鉄ヘモグロビンに変換される、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1010]
赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも50%が三価鉄ヘモグロビンに変換される、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1011]
赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも80%が三価鉄ヘモグロビンに変換される、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1012]
ガス状一酸化窒素を含む治療用ガスに赤血球試料を接触させる、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1013]
治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が少なくとも20ppmである、本発明1012の方法。
[本発明1014]
治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が少なくとも40ppmである、本発明1012の方法。
[本発明1015]
治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が少なくとも80ppmである、本発明1012の方法。
[本発明1016]
治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が100ppm〜800ppmの範囲にある、本発明1012の方法。
[本発明1017]
治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が40ppm〜200ppmの範囲にある、本発明1012の方法。
[本発明1018]
治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が40ppm〜3,000ppmの範囲にある、本発明1012の方法。
[本発明1019]
赤血球試料を治療用ガスと5秒間未満接触させる、本発明1012〜1018のいずれかの方法。
[本発明1020]
赤血球試料を治療用ガスと少なくとも15分間接触させる、本発明1012〜1018のいずれかの方法。
[本発明1021]
赤血球試料を治療用ガスと少なくとも1時間接触させる、本発明1012〜1018のいずれかの方法。
[本発明1022]
赤血球試料を治療用ガスと少なくとも2時間接触させる、本発明1012〜1018のいずれかの方法。
[本発明1023]
赤血球試料を一酸化窒素放出性化合物と接触させる、本発明1001〜1011のいずれかの方法。
[本発明1024]
一酸化窒素放出性化合物が亜硝酸塩を含む、本発明1023の方法。
[本発明1025]
一酸化窒素放出性化合物が超短時間作用性の一酸化窒素放出性化合物である、本発明1023の方法。
[本発明1026]
超短時間作用性の一酸化窒素放出性化合物が、1-[2-(カルボキシラト)ピロリジン-1-イル]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレートまたは(Z)-1-[N-メチル-N-[6-(N-メチルアンモニオヘキシル)アミノ]]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレートである、本発明1025の方法。
[本発明1027]
無菌条件下で行われる、前記本発明のいずれかの方法。
[本発明1028]
赤血球の投与後の哺乳動物における血管収縮を予防または軽減する方法であって、赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも一部分を三価鉄ヘモグロビンに変換させるのに十分な量の一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物とエクスビボで接触させた赤血球試料を哺乳動物に投与する段階を含む、方法。
[本発明1029]
赤血球試料が自己赤血球を含む、本発明1028の方法。
[本発明1030]
赤血球試料が同種赤血球を含む、本発明1028の方法。
[本発明1031]
赤血球試料を、一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物による処理の前に凍結および解凍させる、本発明1028〜1030のいずれかの方法。
[本発明1032]
赤血球試料が、赤血球試料を含む容器から流れ出て、一酸化窒素の供給源と接続されていて赤血球試料を一酸化窒素に曝露させるガス透過性材料と接触し、かつ一酸化窒素への曝露後に哺乳動物へと送達される、インライン注入システムの一部として一酸化窒素と赤血球試料を接触させる、本発明1028〜1031のいずれかの方法。
[本発明1033]
一酸化窒素の供給源が、圧縮された一酸化窒素ガスを含むタンクである、本発明1032の方法。
[本発明1034]
一酸化窒素の供給源が電気的一酸化窒素発生装置である、本発明1032の方法。
[本発明1035]
哺乳動物がヒトである、前記本発明のいずれかの方法。
本発明の他の特徴および利点は、以下の詳細な説明および特許請求の範囲から明らかになるであろう。
哺乳動物への保存赤血球の投与が原因となって、血管収縮および他の有害作用が起こる。本発明は、保存赤血球の投与後の有害作用の発生を軽減するかまたは消失させるための組成物および方法を提供する。添付した実施例に詳述しているように、一酸化窒素への曝露によって保存赤血球の上清を酸化することにより、細胞外の活性二価鉄ヘモグロビンが不活性三価鉄ヘモグロビンに変換されて、保存赤血球の投与に起因する血管収縮の発生が消失する。
赤血球を自己または同種ドナーから得て、その後にレシピエントに投与することができる。赤血球の保存は、結果として、レシピエントへの保存血液の投与後に血管収縮の誘発をもたらす(Reynolds et al. (2007) Proc. Natl. Acad. Set 104:17058-62;Bennett-Guerrero et al. (2007) Proc. Natl. Acad. Set 104:17063-68)。ヒト赤血球は、本明細書に記載の方法によるドナーへの注入の前に、さまざまな期間にわたって保存することができる(例えば、少なくとも1、2、3、4、5、6もしくは12時間、または少なくとも1、2、3、4、5、6、7、14、21、28、42日、またはそれ以上)。赤血球は、例えば全血または濃縮赤血球として投与することができる。
赤血球試料の処理に用いるのに適した一酸化窒素の濃度は、赤血球試料のサイズ、流速、一酸化窒素曝露期間の長さ、微孔性ガス透析器における層流と混合との対比の度合いといった要因、および/または治療に当たる医師が該当すると判断する可能性のある他の要因に応じて、例えば、20ppm〜80ppm、200ppm〜500ppm、500ppm〜800ppm、2,800ppm、3,000ppmまたはそれ以上というようにさまざまでありうる。医薬品級の一酸化窒素が市販されている(INOmax(商標), Ikaria, Inc., Clinton, NJ)。
一酸化窒素の使用に代わる(またはそれに加わる)ものとして、一酸化窒素放出性化合物を、本明細書に記載の方法に従って赤血球試料に曝露させることもできる。本明細書に記載の方法において有用な一酸化窒素放出性化合物には、以下のものが含まれる:化合物から生理的条件下で自然発生的に放出されるかまたは他の様式で移行する一酸化窒素モイエティーを特徴とするニトロソ化合物またはニトロシル化合物(例えば、S-ニトロソ-N-アセチルペニシラミン、S-ニトロソ-L-システイン、およびニトロソグアニジン);一酸化窒素が遷移金属複合体上のリガンドであり、そのため生理的条件下で化合物から容易に放出されるかまたは移行する化合物(例えば、ニトロプルシド、一酸化窒素-フェレドキシン、または一酸化窒素-ヘム複合体);および、酵素によって代謝されて一酸化窒素ラジカルを生成する窒素含有化合物(例えば、アルギニン、三硝酸グリセリン、亜硝酸イソアミル、亜硝酸ナトリウム、無機亜硝酸塩、アジドおよびヒドロキシルアミン)。そのほかの一酸化窒素放出性化合物には、ニトログリセリンおよびSIN-1が含まれる。
動物
試験した動物はすべて、Massachusetts General Hospital, Boston, MAの研究動物管理小委員会(Subcommittee on Research Animal Care)による承認を得た。試験は8〜10週齡の雄性C57BL/6J野生型(WT)マウスおよびB6.Cg-m+/+Leprdb/J(C57BL/6Jバックグラウンド)糖尿病(db/db)マウスで行った。さらにWTマウスに高脂肪食(脂肪60kcal%;Research Diets, Inc., New Brunswick、NJ)を4〜6週間与えた(HFD摂取WT)。RBC存続率の測定には、赤血球上でGFPを発現する、8〜10週齡の雄性の緑色蛍光性タンパク質(GFP)トランスジェニックC57BL/6-Tg(UBC-GFP)30Scha/J(C57BL/6Jバックグラウンド)マウスを用いた。マウスはすべて、Jackson Laboratory(Bar Harbor, ME)から入手した。
C57BL/6J WTマウスから開胸心臓穿刺によって血液(ほぼ1ml/マウス1匹)を無菌的に採取し、CPDA-1(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)を含むシリンジに入れた。CPDA-1の最終濃度は14%であった。収集の後に、新生仔用の白血球除去処理フィルター(Pall Biomedical Products Co., East Hills, NY)に通過させることによって血液の白血球除去を行った。白血球除去処理の効果は全血球計算によって測定した(HemaVet Veterinary Analyzer. Heska, Loveland, CO)。白血球の除去処理を行った血液を600gで15分間遠心し、血漿を除去することによってヘマトクリット値(Hct)を70〜75%に調整した上で、Eppendorfチューブ内にて4℃で保存した。新鮮な白血球除去処理マウスRBC(FRBC)または保存した白血球除去処理マウスRBC(SRBC)における試料中のリポ多糖(LPS)レベルを、リムラスアメーバ様細胞溶解物アッセイ(LAL)を用いて測定した(Novitsky et al. J Clin Microbiol 1985;21: 211-6を参照)。
FRBCまたはSRBCを4℃、400gで10分間遠心した後に上清を得た。洗浄によって誘発される溶血を最小限に抑えるために、FRBCおよびSRBCを10倍容量の1.5%塩化ナトリウムで穏やかに洗浄して、4℃、400gで10分間遠心した。洗浄したFRBCまたはSRBCを輸血の前に新鮮マウス血漿中に再懸濁させて、70〜75%という最終Hctを得た。
FRBCおよびSRBCにおける血液ガス圧(PCO2およびPO2)、pHおよび標準塩基過剰(SBE)を測定した(ABL800FLEX, Radiometer, Westlake, OH)。FRBCおよびSRBCにおける電解質濃度(ナトリウム、カリウム、カルシウム、塩素、HCO3 -)および乳酸塩も決定した(Critical CareXpress, Nova Biomedical, Waltham, MA)。
Gilsonら(Gilson et al., Transfusion 2009:49: 1546-53)によって報告されているGFP標識RBCの方法を用いて、輸血したマウスRBCの存続率を測定した。手短に述べると、UBC-GFPマウスおよびWTマウスの両方から、CPDA-1を含む1mlシリンジ内に心臓穿刺によって血液を採取し、UBC-GFPマウスからは40% RBCを、WTマウスからは60% RBCを含む血液混合物を調製した上で、白血球を減少させ、遠心処理を行って、4℃で24時間未満(FRBC)および2週間(SRBC)にわたって保存した。WTマウスに対して、GFP標識RBCを含む100μLのFRBCまたはSRBCを、尾静脈を介して輸血した。輸血から10分後、30分後、1時間後、24時間後および8日後の時点で、血液試料を後眼窩腔から、ヘパリン添加したガラス製マイクロキャピラリー管の中に入手した。GFP陽性RBCのパーセンテージは、5 Laser LSR Fortessa(BD Biosciences, San Jose, CA)での前方散乱/側方散乱(FSC/SSC)によって決定した。フローサイトメーターは、Sphero rainbow蛍光性粒子(Spherotech Inc., Lake Forest, IL)によって、異なる取得日でも同じ設定になるように較正した。輸血24時間後に測定したGFP陽性RBCのパーセントを時間0でのGFP陽性RBCのパーセントで除算することによって、輸血24時間後のRBC存続率(%)を計算した。時間0での蛍光は、10分、30分および1時間でのデータから線形回帰によって外挿した。
FRBCまたはSRBCの輸血後に、ペントバルビタール(200mg/kg)の腹腔内注射から2時間の時点でマウスを屠殺した。およそ1mlの血液を各マウスから心臓穿刺によってヘパリン加シリンジ内に採取して、4℃、4000rpmでの遠心処理を8分間行った。ヘパリン加血漿を入手して、血液化学検査値、ならびにインターロイキン-6(IL-6)、ハプトグロビン(Hp)およびヘモペキシン(Hx)のレベルを測定した。血清試料は、鉄レベルの測定のために入手した。肝臓標本は、以後にヘムオキシゲナーゼ-1(HO-1)の決定を行うために液体窒素中で急速凍結させた。
血清鉄レベルは、鉄/不飽和鉄結合能アッセイ(Thermo Fisher Scientific, Middletown, VA)を用いて決定した。
血漿IL-6レベルは、DuosetマウスIL-6 Elisa Kit(R&D Systems, Minneapolis, MN)を用いて決定した。血漿HpレベルおよびHxレベルは、それぞれマウス用のHpおよびHx Elisaキットを用いて測定した(Life Diagnostics, Inc,、West Chester, PA)。
マウス肝臓からTrizol試薬(Invitrogen Life Technologies, Carlsbad, CA)を用いて全mRNAを抽出した。逆転写酵素反応(MMLV-RT, Invitrogen Life Technologies, Carlsbad, CA)によってcDNAを合成した。転写物のリアルタイム増幅を、Eppendorf Mastercycler Realplex(Eppendorf, Hamburg, Germany)を用いるSYBR法によって行った。標的転写物の相対的発現を18S rRNAのレベルに対して標準化し、相対的CT法を用いて分析した。
FRBC、SRBC、洗浄したFRBCおよびSRBC、FRBCおよびSRBC由来の上清、ならびに酸化SRBC由来の上清を、WTマウス、HFD摂取WTマウスまたはdb/dbマウスに、尾静脈を介して輸血した(注入物の総容量は推定血液量の10%とした)。収縮期血圧は、非侵襲性血圧システム(XBP 1000, Kent Scientific, Torrington, CT)を用いて測定した(Yu et al., Circulation 2008:117: 1982-90;Yu et al., Anesthesiology 2010;112: 586-94)。尾静脈注射はすべて、1分間かけて行った。db/dbマウスの一群には、輸血10分前から輸血2時間後まで、Yu et al., Circulation 2008;117: 1982-90に記載される方法を用いて、80ppm一酸化窒素を含む空気(Medical-Technical Gases, Inc., Medford, MA)中で呼吸させながらSRBCを投与した。
侵襲的血行動態測定は、Yu et al., Anesthesiology 2010;112: 586-94に記載された通りに行った。左室圧-容積ループおよび心拍出量(CO)、ならびに平均動脈血圧(MAP)を、ベースライン時、およびFRBC、SRBC、FRBC由来の上清、またはSRBC由来の上清の輸血(推定血液量の10%を、右頸動脈内に留置した別個のカテーテルを通して、75μL/分の速度で3分間かけて注入)から5分間後に測定した。
値はすべて平均±SEMとして表した。データは、Tukey調整を伴う一元配置ANOVAによって解析した(SigmaStat 3.0.1; Systat Software, Inc., San Jose, CA)。覚醒マウスにおける収縮期血圧の測定値は、相互作用を伴う反復測定二元配置ANOVAによって解析した。0.05未満の確率値を有意とみなした。
24時間以下の保存を行ったFRBCを、2週間保存したSRBCと比較した。SRBCではpH、PO2、HCO3 -およびSBEが顕著に低下していたが、PCO2および乳酸塩はFRBCよりも高かった(表1)。加えて、SRBCの方がFRBCよりもナトリウムレベルは低く、カリウムレベルは高かった。SRBCにおける溶血のレベルはFRBCよりも顕著に高かった。同様に、上清HbレベルはSRBCの方がFRBCよりも高かった。FRBCおよびSRBCの上清で測定されたメトHbレベルはいずれも、上清Hbの1%未満であった。
値は平均±SEMである。FRBC、新鮮赤血球;SRBC、保存赤血球;SBE、標準塩基過剰;Hb、ヘモグロビン。
*P<0.01、FRBCと比較して差がある。
注入したFRBCおよびSRBCの存続率を追跡するために、GFP標識RBCに対する保存の影響について調べた。GFP標識FRBCの輸血から24時間後に、GFP標識赤血球の割合は、注入後の時間0の時点に計算したものの99±3%であった(図1D)。GFP標識SRBCの輸血から24時間後には、GFP標識赤血球の割合は、注入後の時間0の時点に計算したものの68±1%であった(図1D)。輸血24時間後以降には、FRBCおよびSRBCにおけるGFP標識赤血球の減少速度は同程度であった。これらの結果は、Gilsonら(Gilson et al., Transfusion 2009:49: 1546-53)によって報告されたものと一致しており、保存血液で見られる保存損傷が赤血球に対して異種混交的な影響を及ぼすことを示唆する。
FRBCまたはSRBCの輸血から10分後(WTマウスおよびdb/dbマウス)および2時間後(WTマウス、HFD摂取WTマウスおよびdb/dbマウス)に、マウスから動脈血試料を採取した。FRBCまたはSRBCのいずれの輸血も、すべての被験マウスにおける輸血10分後および2時間後のHctレベルおよび総Hbレベルを上昇させた。SRBCの輸血は、被験マウスのすべての群で輸血10分後および2時間後の血漿Hbレベルを上昇させたが、FRBCはそうではなかった。これらの結果は、SRBC輸血後の血漿Hbレベルの上昇は、保存中および輸血後のHbの放出に起因する可能性が最も高いことを指し示している。
SRBCは寿命が短く、循環中から急速に除去されることから考えると、それらは、そのヘムからの鉄が反応性酸素種の生成を強化するのに寄与しうると考えられる。FRBCまたはSRBCの輸血2時間後に、マウスにおける血清鉄レベルを測定した(図2)。血清鉄レベルは、WTマウス、HFD摂取WTマウスおよびdb/dbマウスへのSRBCの輸血2時間後には高かったが、FRBCの輸血後はそうでなかった。これらの結果は、SRBCの輸血は、FRBCの輸血よりも血清中の鉄を増加させることを実証している。
FRBCまたはSRBCのいずれかの輸血がマウスにおける全身性炎症反応を誘発するか否かを知るために、WTマウス、HFD摂取WTマウスおよびdb/dbマウスから輸血2時間後に収集した血漿試料におけるIL-6レベルを測定した(図3A)。SRBCの輸血は、WTマウス、HFD摂取WTマウスおよびdb/dbマウスにおける血漿IL-6のレベルを上昇させたが、FRBCの輸血はそうでなかった(P<0.05)。保存細胞における白血球(WBC)のおよそ97%は白血球除去処理によって除去され、輸血した試料中にエンドトキシン(例えば、LPS)は検出されなかったことから、IL-6レベルの上昇はSRBC輸血の結果である可能性が最も高い。
細胞外Hbに対する主な防御機構は、しばしば「抗酸化タンパク質」と呼ばれ、これには例えばHp、HxおよびHO-1などがある。細胞外Hbは循環血中のHpと結合する。Hb-Hp複合体の排除は循環中および肝臓内(マクロファージ)で起こり、最終的にはHO-1を介したヘムの分解につながる(Buehler et al., Antioxid Redox Signal 2010;14: 1713-28)。Hxは血漿ヘムの主な担体としての役を果たし、それを肝臓に輸送することによってその排除に関与する(Gutteridge et al., Biochem J 1988;256: 861-5)。HO-1はヘム分解の誘導性アイソフォームであり、炎症性傷害に対して防御的である(Immenschuh et al., Curr Drug Targets 2010;11: 1541-50)。
四量体Hbを1%未満しか含まない代用血液の輸血は、全身性血管収縮作用を生じさせる恐れがある(Yu et al., Anesthesiology 2010;112: 586-94)。収縮期血圧に対するFRBCおよびSRBCの輸血の影響を検討するために、覚醒マウスにFRBCまたはSRBC(注射血液量の10%として)を尾静脈を介して投与した。FRBCまたはSRBCのいずれの輸血も、覚醒WTマウスにおける収縮期血圧を変化させなかった(図5A)。内皮機能不全のあるマウス(例えば、HFD摂取WTマウスまたはdb/dbマウス)は、四量体Hbの血管収縮作用に対してより感受性が高い(Yu et al., Anesthesiology 2010;112: 586-94を参照)。覚醒HFD摂取WTマウスにおいて、FRBCまたはSRBCの輸血はいずれも収縮期血圧を変化させなかった(図5B)。対照的に、覚醒db/dbマウスではSRBCの輸血により、収縮期血圧が上昇した(ベースラインの111±2mmHgから10分時点では127±3mmHgに、P<0.05、図5C)が、FRBCではそうではなかった。一酸化窒素呼吸により、マウスにおいて四量体Hbを注入することによって誘発される全身性血管収縮が予防されたことから(Yu et al., Circulation 2008;117: 1982-90)、吸入した一酸化窒素が、db/dbマウスへのSRBCの輸血による血管収縮作用を予防する能力について試験した。80ppm一酸化窒素の呼吸を輸血10分前に開始してそれから2時間続けることにより、db/dbマウスへのSRBCの輸血によって誘発される全身性高血圧が完全に予防された(図5C)。
血液製剤の加工処理
実験はすべて、Massachusetts General Hospital, Boston, MAの研究動物管理小委員会による承認を得た。3カ月齢または4カ月齢で体重32±2kgのPolypay仔ヒツジ(New England Ovis, Dover、NH)36匹で試験を行った(Hulet et al., J Anim Sci 1984; 58:15-24)。ケタミンHCl(15mg/kg;Hospira, Inc., Lake Forest, IL)の筋肉内注射後に、クエン酸塩-リン酸塩-デキストロース溶液を含むDouble Blood-Pack Unit(Fenwal, Inc., Lake Zurich, IL)内に、外頸動脈から血液(450ml)を採取した。続いて、血液の白血球除去処理を、一体型RS2000白血球除去処理フィルターを用いて室温で行った。遠心分離(600gを10分間、24℃)によって赤血球を血漿から分離し、食塩水、アデニン、グルコースおよびマンニトールを含む追加溶液(110ml)(AS-1, Adsol Solution, Fenwal, Inc.)中で4℃にて2日間または40日間保存した。
輸血した濃縮赤血球(PRBC)のインビボ存続率を、Mock et al. Transfusion 1999;39:156-6の方法の変法を用いて、8匹の仔ヒツジにおいて測定した。AS-1中での2日間(n=4)または40日間(n=4)の保存後に、PRBC(60ml)を血液保存バッグから採取して、4℃、600gでの15分間の遠心分離によって上清から分離した。上清を4℃で保存した。ペレット化したPRBCを、洗浄溶液(60ml:塩化ナトリウム0.87%、炭酸水素ナトリウム0.2%、デキストロース0.2%およびリン酸ナトリウム0.1%;Hospira, Inc.)中に再懸濁させた。遠心分離を再度行い、上清を廃棄した。洗浄したPRBCを、スルホ-N-ヒドロキシスクシンイミド-ビオチンを含む洗浄溶液(60ml)(10μg/ml;Thermo Fisher Scientific, Rockford, IL)中に再懸濁させて、室温で40分間インキュベートした。結合しなかったスルホ-N-ヒドロキシスクシンイミド-ビオチンを除去するために、PRBCを上記の通りに洗浄溶液で2回洗浄した。最終的な洗浄段階の後に、PRBCをそれまで保存していた上清中に再懸濁させた。
侵襲的血行動態測定を28匹の仔ヒツジで行った。5%イソフルラン(Baxter, Deerfield, IL)を含む酸素をマスクを介して呼吸させることによって麻酔を導入した。以前の記載の通りに(Yu et al., Anesthesiology 2010; 112:586-94)、気管内挿管後に動物に気管切開術を行い、頸動脈および肺動脈に留置カテーテルを装着した。大型動物用拘束装置(Lomir, Malone, NY)において全身麻酔からの2時間の回復期間を置いた後に、Gould 6600 amplifierシステム(Gould Electronics, Inc., Eastlake, OH)を用いて、平均動脈圧(MAP)、平均肺動脈圧(PAP)および中心静脈圧を連続的にモニターした。肺毛細血管楔入圧(PCWP)および心拍数は10〜30分毎に間欠的に測定した。心拍出量は、熱希釈により、10mlの氷冷食塩液の静脈内ボーラス注射後の3回の測定値の平均として評価した。体血管抵抗係数および肺血管抵抗係数(PVRI)ならびに心係数は、標準的な式を用いて計算した。血行動態データは、輸血終了から4時間後まで収集した。
6群の覚醒仔ヒツジで試験を行った。動物にはすべて、体重の6.5%が血液量であると推定した上で、それらの各々の総血液量の14%に相当するPRBCの自己輸血を行った(Hansard et al., Proc Soc Exp Biol Med 1956; 91:31-4)。PRBCを37℃まで温めた上で30分間かけて輸血し、その間、仔ヒツジには気管切開術の上で吸入酸素濃度(FiO2)0.25として自発呼吸させた。仔ヒツジの1群(n=5)には、加工処理した上で輸血前に2日間保存したPRBC(新鮮PRBC)を投与した。仔ヒツジの第2の群(n=6)には、輸血前に40日間保存したPRBC(保存PRBC)を輸血した。仔ヒツジの第3の群(n=4)には、保存PRBCの輸血中に、80ppm一酸化窒素(Medical-Technical Gases, Medford, MA)を0.25 FiO2で呼吸させた。一酸化窒素呼吸は、輸血が終了して30分後まで継続した。
仔ヒツジのさらに3つの群では、NOS阻害薬であるNG-ニトロ-L-アルギニンメチル-エステル(L-NAME、Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)の静脈内注入後に試験を行った。輸血の1時間前に25mg/kg L-NAMEのボーラスを静脈内注射した(Weimann et al., Anesthesiology 2000; 92:1702-12)。それと同時に、5mg/kg/h L-NAMEの注入を開始し、試験期間を通じて継続した。アセチルコリン(Sigma-Aldrich)の静脈内ボーラス注射によって誘発される全身性血管拡張を評価することにより、L-NAME投与を開始する前、ならびに開始から45分後および5時間後の、一酸化窒素生成の部分的阻害が確認された。NOS非依存的な全身性血管拡張についても、各実験の終了時にナトリウムニトロプルシド(Sigma-Aldrich)の静脈内注射によって評価した。
動脈血および静脈血試料(10ml)を、輸血の直前、ならびに輸血の終了から30分後、2時間後および4時間後に採取した。輸血保存バッグからの試料(10ml)は、細菌混入を避けるために輸血直後に入手して加工処理した。血液ガス圧およびpHは、ABL800 Flex血液ガス分析装置(Radiometer Medical, Copenhagen, Denmark)を用いて分析した。
輸血から4時間後の時点で、イソフルラン麻酔下での50mlの20%塩化カリウム溶液の静脈内注射によって動物を屠殺した。組織試料を肺および肝臓から入手して、液体窒素中で急速凍結させ、さらなる分析まで-80℃で保存した。
;腫瘍壊死因子-α、
;およびミエロペルオキシダーゼ、
をコードする転写物を検出した。
データはすべて平均±SDとして表している。統計分析は、GraphPad Prism 5ソフトウエア(GraphPad Software, Inc., La Jolla, CA)を用いて行った。AS-1保存後の新鮮PRBCと保存PRBCの比較、PRBC存続率実験、およびmRNAレベルの比較のためには、2標本の両側独立t検定を適用して2群間の差を比較し、Bonferroni調整を用いて多重比較に関して補正した。血行動態実験については、反復測定を伴う二元配置ANOVAを用いて、さまざまな時点での群間の差を比較した。しかし、時点間および条件間の相互作用P値が有意であった場合には、事後Bonferroni-adjusted比較検定を伴う一元配置ANOVAを用いて個々の各時点での比較を行った。群内比較は両側対応t検定を用いて行った。0.05未満のP値は有意とみなした。
白血球除去処理を行ったPRBCおよびそれらの上清の化学的特徴を、AS-1中での2日間または40日間の保存後に分析した。新鮮PRBCの上清における無細胞ヘモグロビン濃度は41±13mg/dlであり、その結果算出された溶血レベルは0.10±0.04%であった。保存PRBC上清において、無細胞ヘモグロビン濃度および溶血レベルは新鮮PRBC上清よりも高かった(それぞれ148±20mg/dlおよび0.50±0.05%;いずれのパラメーターについても新鮮PRBCとの比較でP<0.001)が、保存ヒト血液について米国食品医薬品局(Food and Drug Administration)が要求しているレベルよりも低いままであった。
PRBCをビオチン化し、2日間または40日間の保存後に輸血した。循環血中ビオチン化PRBCに関する存続曲線は図7に示されている。新鮮PRBCをビオチン化して輸血した場合には、96±4%が少なくとも24時間にわたって存続したが、一方、輸血24時間後に循環血中に残っていたのは保存PRBCの76±7%であった(P=0.002、値には差がある)。ビオチン化した保存PRBCの損失はほとんどすべてが輸血後の最初の1時間に起こり、輸血1時間後には77±2%しか残っていなかった。輸血から1時間後〜24時間後の間は、標識した新鮮PRBCおよび保存PRBCの循環血中レベルは安定に保たれた(保存PRBC:1時間後に77±2%で24時間後に76±7%、P=0.72;新鮮PRBC:1時間後に99±2%で24時間後に96±4%、P=0.26)。輸血から一週間後には、ビオチン化新鮮PRBCおよび保存PRBCのそれぞれ80±8%および54±4%が循環血中に残っていた。このように、保存および輸血後のヒツジPRBCのインビボ存続特性は、ヒトPRBCで測定されたものと類似している。
PAPおよびPVRIに対する保存PRBC輸血の影響は、新鮮PRBC輸血の影響とは差があった(一元配置ANOVA、PAPについてはP<0.001、PVRIについてはP=0.02、図8)。新鮮PRBCの輸血では、測定した血行動態パラメーターのいずれもベースラインから変化しなかった。保存PRBCの輸血は、PAP(ベースラインの13±1mmHgに対して18±1mmHg、P<0.001)およびPVRI(ベースラインの108±19dyn・sec・cm-5/・m-2に対して156±35dyn・sec・cm-5/・m-2、P=0.02)を増大させ、どちらのパラメーターも輸血終了時にピークとなった(図8)。PAPおよびPVRIはいずれも、輸血の終了から60分後にはベースライン値に回復した(図8)。測定した他の血行動態パラメーターはすべて、保存PRBCの輸血後に変化しなかった。したがって、保存PRBCの輸血は仔ヒツジにおける肺血管圧および肺血管抵抗を上昇させるが、体血管圧および体血管抵抗についてはそうではなかった。
内皮機能不全によって保存PRBCの輸血に対する肺血管収縮反応が変化するか否かを調べるために、仔ヒツジに対してL-NAMEを前投与した。アセチルコリン注入が全身性血管拡張を誘発する能力の50%低下によって反映される、NOS活性を部分的に阻害する用量のL-NAMEを注入した。予想された通り、L-NAME投与は、ナトリウムニトロプルシドの静脈内ボーラス注入に対する血管拡張反応を変化させなかった。L-NAMEの注入は、MAP、PAP、中心静脈圧およびPCWP、ならびに体血管抵抗係数および肺血管抵抗係数を増大させたが、一方、心係数および心拍数は低下した(図9)。
一酸化窒素吸入により、HBOC-201の注入中の肺血管収縮が予防される(Yu et al., Anesthesiology 2009; 110:113-2)。一酸化窒素の呼吸によって保存PRBCの輸血に対する肺血管収縮反応が予防されるか否かを検討するために、80ppmの一酸化窒素を輸血中およびその後30分間にわたって同時に投与した。L-NAMEを前投与していない仔ヒツジにおいて、一酸化窒素の呼吸により、保存PRBCの輸血に伴うPAP(ベースラインの12±1mmHgに対して13±1mmHg、P=0.13)およびPVRI(ベースラインの107±14dyn・sec・cm-5/・m-2に対して105±22dyn・sec・cm-5/・m-2、P=0.87)の増大が予防された(図8)。
保存PRBCの輸血後に観察される肺血管収縮の原因である可能性のある機序を解明するために、ヒツジ血漿における無細胞ヘモグロビン濃度を、新鮮PRBCおよび保存PRBCの輸血の前および後に測定した。新鮮PRBCの輸血は、無細胞ヘモグロビンレベルを変化させなかった(図10)。対照的に、保存PRBCの輸血は、無細胞ヘモグロビンレベルを60分間時点で上昇させ、レベルは4.5時間まで上昇したままであった。一酸化窒素の呼吸は、保存PRBCが無細胞ヘモグロビンを増加させる能力を変化させなかった。
自己PRBCの輸血が炎症反応をもたらすか否かを明らかにするために、血漿中IL-6濃度、ならびにIL-6、腫瘍壊死因子-αおよびミエロペルオキシダーゼをコードするmRNAの肺および肝臓でのレベルを、新鮮PRBCまたは保存PRBCの輸血の前および後に測定した。血漿IL-6レベルも、炎症メディエーターをコードするmRNAのレベルも、新鮮PRBCまたは保存PRBCの輸血によって変化しなかった。新鮮PRBCまたは保存PRBCの輸血の前および後に測定された白血球濃度にも差がなかった。このように、白血球除去処理を行った自己性の新鮮PRBCまたは保存PRBCの輸血は、この仔ヒツジモデルにおいて、輸血後4時間以内に炎症反応を誘発しなかった。
添加したヒトヘモグロビンを含む血漿を、アドソール(adsol)保存を行ったヒト赤血球に添加した。赤血球をポンプで送り出して(5、7.5および10ml/分の流速で)、細胞を(ガス交換器を通る単一路上で)2600ppm一酸化窒素ガスを含む窒素に曝露させる、膜ガス交換器(Living Systems Instrumentation Inc., St. Albans, Vermont)に通過させた。この一酸化窒素処理により、上清オキシヘモグロビンのおよそ50%がメトヘモグロビンに変換された(図12)。しかし、ヒト赤血球はメトヘモグロンレダクターゼという酵素を多量に含むため、一酸化窒素処理によってメトヘモグロビンに変換されたのはヒト赤血球ヘモグロビンの数パーセントに過ぎなかった(図13)。
ヒト保存赤血球(46日保存)を、MAHMA/NO((Z)-1-[N-メチル-N-[6-(N-メチルアンモニオヘキシル)アミノ]]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレート)で処理した。0.5mM MAHMA/NO処理により、上清ヘモグロビンの99%がメトヘモグロビンへと酸化された(図14A)。対照的に、この処理によって酸化されたのは赤血球ヘモグロビンの15%に過ぎなかった(図14A)。加えて、MAHMA/NOの添加後にヒト保存赤血球のさらなる溶血は起こらなかった(図14B)。
市販の膜を通過するガス状一酸化窒素の輸送速度を、微孔性(MP)膜(Micro-1 Rat Oxygenator, Kewei Rising, Shenzhen, Guangdong Province, China)およびポリメチルペンテン(PMP)膜酸素供給器(Quadrox-iD Pediatric Oxygenators, MAQUET Cardiovascular, Wayne, NJ)を用いるガス-ガス試験において評価した。膜の評価は、(i)気相中にある300百万分率(ppm)一酸化窒素を含む窒素(NO2への酸化を防ぐため)、および(ii)通常は血液とした、他の相の中にある純窒素ガス、の対向流を用いて行った(図16)。MP膜は、デバイスの両端間で一酸化窒素レベルのほぼ完全な平衡を可能にした(図17)。PMP膜でも良好な成績が得られ、一酸化窒素レベルは300ppmという気相の一酸化窒素レベルに近くなった(図17)。このように、PMP膜およびMP膜は、細胞外メトヘモグロビンを酸化するための手段として、血液を一酸化窒素に曝露させるために用いることができる。
本発明をその詳細な説明とともに説明してきたが、前記の説明は本発明を例示することを意図しており、その範囲を限定する意図はなく、その範囲は添付の特許請求の範囲によって定められる。他の局面、利点および改変は、以下の特許請求の範囲内に含まれる。
Claims (23)
- 赤血球試料を処理する方法であって、赤血球試料を
(i) ガス状一酸化窒素を含む治療用ガス、または、
(ii) 1-[2-(カルボキシラト)ピロリジン-1-イル]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレート、
1-ヒドロキシ-2-オキソ-3-(N-メチル-3-アミノプロピル)-3-メチル-1-トリアゼン、
N,N'-ジメチルヘキサンジアミンの一酸化窒素付加物、もしくは
(Z)-1-[N-メチル-N-[6-(N-メチルアンモニオヘキシル)アミノ]]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレートである、一酸化窒素放出性化合物
と、エクスビボで接触させる段階を含み、
ガス状一酸化窒素または一酸化窒素放出性化合物の量が、赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも20%を三価鉄ヘモグロビンに変換させるのに十分であり、かつ、赤血球試料中の赤血球中に存在するヘモグロビンの20%未満がメトヘモグロビンに変換される、
方法。 - 赤血球試料が、ガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、血液透析、術中血液回収、または開心術吸引回路(cardiotomy suction)にエクスビボでさらされている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料が、ガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、ポンプ、膜、または気泡のうちの1つまたは複数にエクスビボでさらされている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも24時間エクスビボで保存されている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも7日間エクスビボで保存されている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも14日間エクスビボで保存されている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも28日間エクスビボで保存されている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料が、ドナーから取り出された後で、かつガス状一酸化窒素を含む治療用ガスまたは一酸化窒素放出性化合物と接触させられる前に、少なくとも42日間エクスビボで保存されている、請求項1記載の方法。
- 赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも20%が三価鉄ヘモグロビンに変換される、請求項1〜8のいずれか一項記載の方法。
- 赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも50%が三価鉄ヘモグロビンに変換される、請求項1〜8のいずれか一項記載の方法。
- 赤血球試料中に存在する細胞外二価鉄ヘモグロビンの少なくとも80%が三価鉄ヘモグロビンに変換される、請求項1〜8のいずれか一項記載の方法。
- 治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が少なくとも20ppmである、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が少なくとも40ppmである、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が少なくとも80ppmである、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が100ppm〜800ppmの範囲にある、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が40ppm〜200ppmの範囲にある、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 治療用ガス中のガス状一酸化窒素の濃度が40ppm〜3,000ppmの範囲にある、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 赤血球試料を治療用ガスと5秒間未満接触させる、請求項1〜17のいずれか一項記載の方法。
- 赤血球試料を治療用ガスと少なくとも15分間接触させる、請求項1〜17のいずれか一項記載の方法。
- 赤血球試料を治療用ガスと少なくとも1時間接触させる、請求項1〜17のいずれか一項記載の方法。
- 赤血球試料を治療用ガスと少なくとも2時間接触させる、請求項1〜17のいずれか一項記載の方法。
- 一酸化窒素放出性化合物が、1-[2-(カルボキシラト)ピロリジン-1-イル]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレートまたは(Z)-1-[N-メチル-N-[6-(N-メチルアンモニオヘキシル)アミノ]]ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレートである、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
- 無菌条件下で行われる、請求項1〜22のいずれか一項記載の方法。
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