JP6348152B2 - 抗ａ抗体または抗ｂ抗体の除去に適した媒体の品質を評価する方法 - Google Patents

Description

本出願は、２０１５年９月８日に出願された米国仮特許出願第６２／２１５，４３１号の優先権の利益を主張するものであり、この仮出願の全内容を全体として本明細書に組み込む。

免疫グロブリンに富んだヒト血漿は、多数の疾患の治療のためならびに特定の先天性欠損症を治療するために使用される。典型的には、ヒト血漿は、異なる血液型を有する、複数のドナーからの血漿をプールすることにより得られる。血液型は、４つの主要な型に分けることができる。血液型Ａは赤血球上にＡ抗原のみを有する（および血漿中にＢ抗体が存在する）；血液型Ｂは赤血球上にＢ抗原のみを有する（および血漿中にＡ抗体が存在する）；血液型ＡＢは赤血球上にＡ抗原とＢ抗原の両方を有する（しかし、血漿中にＡ抗体もＢ抗体も存在しない。）；血液型Ｏ型は赤血球上にＡ抗原もＢ抗原も有していない（しかし、血漿中にＡ抗体とＢ抗体の両方が存在する。）。

Ａなどの特定の血液型抗原を有するヒトの赤血球は、抗Ａ抗体などのこの抗原に結合する抗体と接触することがないことは重要であり、その理由は、このような抗体との接触が死に至る可能性がある赤血球細胞の凝集および／または溶血をもたらすであろうからである。したがって、血液型Ａを有するレシピエントは、血液型Ａまたは血液型ＡＢを有するドナーから血漿を受け入れることができるだけであり；血液型Ｂを有するレシピエントは、血液型Ｂまたは血液型ＡＢを有するドナーから血漿を受け入れることができるだけであり；血液型ＡＢを有するレシピエントは、血液型ＡＢを有するドナーから血漿を受け入れることができるだけであり；血液型Ｏを有するレシピエントは、ユニバーサルレシピエントとみなされる。異なる血液型の適合性は、安全な輸血および臓器移植の普及に重要である。しかしながら、多くの人々からの血漿プールに依存する血液由来の治療薬の場合、レシピエントが不適合性の血漿を受け入れないことを確実にすることは特に困難となる。

血漿由来の血液型抗体を選択的に除くために多数のアプローチが開発されており、ホルマリン化され、熱処理された赤血球（Ｖｏｘ Ｓａｎｇ．、１９６７年、１２、７５−７７頁）、ＡおよびＢ抗原を有する熱処理されたエシェリヒア・コリ Ｏ８６：Ｂ７（Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ、１９７２年、１２巻、９８−１０２頁）、赤血球間質粉末、赤血球間質抗原由来の免疫吸着剤（Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃ．Ｒｅｖ．、１９７８年、７巻、４２３−４５２頁）、および合成の血液型ＡおよびＢの免疫吸着剤（Ｒｅｖ．Ｆｒ．Ｔｒａｎｓｆｕｓ．Ｉｍｍｕｎｏｈｅｍａｔｏｌ．、１９８１年、２４巻、３号、２８１−２８７頁）が挙げられる。

固相クロマトグラフィー免疫吸着剤は、血液由来製剤を処置するための商業的なクロマトグラフィー媒体として、さらに、ＡＢＯ不適合性レシピエントへ移植する前のドナーの準備のために開発されてきた。合成の免疫吸着剤を用いることの重要な利点の１つは、天然供給源に由来する代わりに合成的に構築されること、したがって、バッチごとにより一貫した特性を有することである。

現在、血液型Ａ抗原（Ａ−抗原）リガンドおよび／または血液型Ｂ抗原（Ｂ−抗原）リガンドを有する市販のクロマトグラフィー媒体の中には、Ｇｌｙｃｏｓｏｒｂ−ＡＢＯデバイス（Ｇｌｙｃｏｒｅｘ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ＡＢ）が含まれる。このＧｌｙｃｏｓｏｒｂデバイスは、不適合な血液型を有する患者に移植するための臓器ドナーを準備するために使用される。Ｇｌｙｃｏｓｏｒｂ−ＡＢＯデバイスにおける血液型抗原リガンドは、臓器ドナーの血液から血液型Ａ抗原抗体（抗Ａ）および血液型Ｂ抗原抗体（抗Ｂ）を結合し、除去し、したがって、臓器拒絶の危険性を低減させる。

Ｖｏｘ Ｓａｎｇ．、１９６７年、１２、７５−７７頁 Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ、１９７２年、１２、９８−１０２頁 Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃ．Ｒｅｖ．、１９７８年、７巻、４２３−４５２頁 Ｒｅｖ．Ｆｒ．Ｔｒａｎｓｆｕｓ．Ｉｍｍｕｎｏｈｅｍａｔｏｌ．、１９８１年、２４巻、３号、２８１−２８７頁

血液由来製剤を精製するためのクロマトグラフィー媒体の利用における主な課題の１つは、異なる媒体の相対的な品質、例えば、異なるバッチの同じタイプの媒体または異なる供給源からの媒体または経時的な同じ媒体試料の相対的な品質を評価するための、効率的であり、再現性のある方法が欠如していることである。

本明細書に記載される実施形態は、血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含有するクロマトグラフィー媒体の品質を査定する方法に関する。本明細書に記載される方法は、使用中および使用後にバッチごとに同じタイプの媒体の品質を査定または評価するのに有用であり、開発中の媒体を最適化するのに特に有用である。

いくつかの実施形態において、２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質を比較するための方法が提供され、これらはともに、固相支持体に付着された血液型Ａ抗原リガンドを含有し、該方法は、（ａ）各々が体積ＶＲである、２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料を用意するステップ；（ｂ）既知濃度Ｃ１と体積ＶＭの精製されたヘリックス・ポマチア（Ｈｅｌｉｘ Ｐｏｍａｔｉａ）（ＨＰ）レクチンの溶液とともに各々の試料をインキュベートするステップ；（ｃ）各々の上記試料について上清を得て、該各々の上清中の精製されたＨＰレクチンの濃度Ｃ２を測定し；以下の式

を用いて、各々のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の静的結合能力を決定するステップを含み、ここで、ＨＰレクチンに対する媒体試料の静的結合能力は、試料から抗Ａ抗体を除去するそれらの能力と相関し、それにより、２種以上の異なるアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質が比較される。

他の実施形態において、２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質を比較するための方法が提供され、各々は、固相支持体に付着された血液型Ｂ抗原リガンドを含有し、該方法は、（ａ）各々が体積ＶＲである、２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料を用意するステップ；（ｂ）既知濃度Ｃ１と体積ＶＭの精製されたグリフォニア・シンプリシフォリア（Ｇｒｉｆｆｏｎｉａ Ｓｉｍｐｌｉｃｉｆｏｌｉａ）−イソレクチンＢ４（ＧＳＩ−Ｂ４）の溶液とともに各々の試料をインキュベートするステップ；（ｃ）各々の上記試料について上清を得て、該各々の上清中の精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンの濃度Ｃ２を測定し；以下の式

を用いて、各々のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の静的結合能力を決定するステップを含み、ここで、精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体試料の静的結合能力は、試料から抗Ｂ抗体を除去するそれらの能力と相関し、それにより、２種以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質が比較される。

ＨＰレクチンまたはＧＳＩ−Ｂ４レクチンのより高い結合能力を有する媒体試料は、他の媒体試料と比較してより良好な品質のものである。

本明細書に記載される方法によるいくつかの実施形態において、固相支持体は、ポリビニルエーテル、ポリビニルアルコール、ポリメタクリレート、ポリアクリレート、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミドおよびポリカーボネートからなる群から選択されるポリマーを含む多孔質または非多孔質のポリマーの固相支持体である。特定の実施形態において、固相支持体は、ポリビニルエーテル系固相支持体である。いくつかの実施形態において、固相支持体はビーズ形態（例えば、ポリビニルエーテル系ビーズ）である。

本明細書に記載されるいくつかの実施形態において、異なるアフィニティークロマトグラフィー媒体試料は、異なるバッチの同じタイプの媒体を構成する。

他の実施形態において、異なるアフィニティークロマトグラフィー媒体試料は、異なる使用段階で同じ媒体を構成する。

いくつかの実施形態において、媒体は、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体およびＩＶＩＧ原料からなる群から選択される試料から抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去することができる。

いくつかの実施形態において、上清中のＨＰレクチンまたはＧＳＩ−Ｂ４レクチンの濃度は、２８０ｎｍの吸光度を用いて測定される。

酸性条件またはアルカリ性条件へのアフィニティークロマトグラフィー媒体の曝露後、固相支持体に付着された血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含有するアフィニティークロマトグラフィー媒体の品質を査定するための方法も本明細書において提供され、該方法は、（ａ）固相支持体に付着された血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドのいずれかを有するクロマトグラフィー媒体を用意するステップ；（ｂ）血液型Ａ抗原リガンド媒体の場合において精製されたＨＰレクチンに対して、または血液型Ｂ抗原リガンド媒体の場合において精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して媒体の結合能力を測定するステップ；（ｃ）少なくとも５時間、酸性条件またはアルカリ性条件へ媒体を曝露するステップ；および（ｄ）血液型Ａ抗原リガンド媒体の場合において精製されたＨＰレクチンに対して、または血液型Ｂ抗原リガンド媒体の場合において精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して媒体の結合能力を測定するステップを含み、ここで、ステップ（ｂ）と比べてステップ（ｄ）における媒体の結合能力の低下は、媒体の品質が酸性条件またはアルカリ性条件への曝露後に低下したことを示す。

本明細書に記載される実施形態は、媒体が血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むかどうかを決定するためにも使用することができ、この場合、該方法は、（ａ）媒体が血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むかどうかが未知である媒体を用意するステップ；（ｂ）精製されたＨＰレクチンに対して、および別に精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して未知の媒体の結合能力を測定するステップ；（ｃ）精製されたＨＰレクチンおよび精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する未知の媒体の能力を比較するステップを含み、ここで、未知の媒体が、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する結合能力と比較して、ＨＰレクチンに対してより高い結合能力を有する場合、血液型Ａ抗原リガンドを含むものと決定され、未知の媒体が、ＨＰレクチンに対する結合能力と比較して、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対してより高い結合能力を有する場合、血液型Ｂ抗原リガンドを含むものと決定される。

抗Ａ抗原抗体に結合する代表的なオリゴ糖リガンドを示す図である。 抗Ｂ抗原抗体に結合する代表的なオリゴ糖を示す図である。

最近、幾人かの血液ドナー、時として数千以上の血液ドナーから得られた、プールされた血漿から抽出された濃縮多価ＩｇＧ抗体からなる静脈内免疫グロブリン（ＩＶＩＧ）から抗Ａおよび抗Ｂ ＩｇＧを除去するための合成免疫吸着クロマトグラフィー媒体の用途における関心が高まっている。血漿からＩｇＧを精製するプロセス中に、より大きい抗Ａ ＩｇＭ抗体および抗Ｂ ＩｇＭ抗体は、典型的には、分画によってより小さいＩｇＧ抗体から分離され得る。しかしながら、いくらかの割合の抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体は、一般的に、分画によってのみでは他のＩｇＧ抗体から分別することができないＩｇＧ形態である。したがって、ＩＶＩＧ治療用濃縮物は、典型的には、高濃度の抗Ａ ＩｇＧ抗体および抗Ｂ ＩｇＧ抗体とともにＩＶＩＧ投与を防止するために、抗Ａ ＩｇＧ抗体および抗Ｂ ＩｇＧ抗体の濃度を監視する凝集アッセイを用いてスクリーニングされる。しかしながら、この予防措置にもかかわらず、死に至る可能性がある溶血反応は、血液型Ａ、Ｂ、またはＡＢを有するそれらのレシピエントに対して生じることがなおも知られている（「Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｔｏ ａｄｄｒｅｓｓ ｈｅｍｏｌｙｔｉｃ ｃｏｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｉｍｍｕｎｅ ｇｌｏｂｕｌｉｎ ｉｎｆｕｓｉｏｎｓ」、ＦＤＡ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｐｕｂｌｉｃ Ｗｏｒｋｓｈｏｐ Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．、１月、２８−２９頁，２０１４年の写し）。

通例、凝集アッセイは、限定された耐用年数を有し、細胞表面上の抗原密度が一般的にロットごとに変化する生きた赤血球の使用に依存している。凝集はまた連続希釈を必要とし、細胞凝集の定性的評価（視覚的または顕微鏡観察）に依存している。抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体の濃度を決定するためのより正確な方法はフローサイトメトリーを採用する。しかしながら、フローサイトメトリー法はまた、生きた赤血球を使用し、凝集アッセイと比較して非常に複雑であり、時間がかかる。抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体の濃度を測定するために、ＥＬＩＳＡアッセイも報告されているが、しかしながら、この技術は、相対的に複雑な多段階の手順と特殊化された抗原試薬を必要とする。

上記で検討したように、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体に結合するリガンドを含有するクロマトグラフィー免疫吸着媒体は、血液由来製剤、例えば、血漿およびＩＶＩＧからこのような抗体の除去に有効であると考えられる。しかしながら、現在、媒体の再現性および信頼性を査定するために、このような媒体資質を見極め、検証するために使用することができる利用可能な優れた方法がない。

媒体が、製造規格およびその耐用年数を通じて品質要件を満たしていることを確実にするために、血液型抗原リガンドクロマトグラフィー媒体のバッチ間の品質を評価することは本質的に重要である。さらに、使用、洗浄および消毒後、意図された不純物を除去する能力を保持していることを確認するために、使用、洗浄および消毒中ならびに使用、洗浄および消毒後にこのような媒体を評価することもまた重要である。意図された標的分子に結合する血液型抗原リガンド媒体の能力は、通常、血液型抗原リガンド媒体との接触前後で、血液由来製剤中のポリクローナル血液型抗原抗体の濃度の低下を測定することによって直接評価されている。

本明細書の実施例から明らかなように、ある種の精製されたレクチンに対する抗Ａ抗原リガンド媒体および抗Ｂ抗原リガンド媒体の能力は、場合に応じて、試料（例えば、ＩＶＩＧ原料）から抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去するこのような媒体の能力と相関する。

精製された分子（例えば、この場合には精製されたレクチン）に対する、血液型抗原リガンドを含有する媒体の能力を測定することは、時間がかかり、さらには再現するのが困難である血液製剤から血液型抗原抗体の除去を測定することに大部分依存していた、従来報告されている方法と比較していくつかの利点を有する。対照的に、本明細書に記載される実施形態は、当該技術分野において公知の従来法に比べて、より効率的に再現性よく行うことができる、精製された分子に対する結合能力の測定に依存する。

本明細書に記載される実施形態は、当該技術分野において公知の従来法に比べて、より効率的におよび再現的に行うことができる、血液型抗原リガンド媒体の品質を評価するための新規な方法に関する。本明細書に記載される方法は、当該技術分野において公知の従来法に比べていくつかの利点を有する。例えば、本明細書に記載される方法は、最も一般的に使用される凝集に基づくアッセイと比較して、より効率的であり、簡便であり、容易に再現性が得られるだけでなく、本明細書に記載される方法は、いかなる特殊な装置（例えば、フローサイトメトリー）を必要とせず、いかなる特殊な血液型抗原試薬（例えば、ＥＬＩＳＡに基づくアッセイ）も必要としない。

本明細書の実施例から明らかなように、精製されたレクチンに対する抗Ａ抗原リガンド媒体および抗Ｂ抗原リガンド媒体の能力は、場合に応じて、ＩＶＩＧ原料から血液型Ａ抗体または血液型Ｂ抗体を除去する媒体の能力と相関する。本明細書において提供される方法は、精製されたレクチンに対するこのような媒体の結合能力の測定に依存し、当該技術分野において公知の既存の方法よりも、実行するのが簡単であり、より時間がかからず、非常に信頼性が高く、再現性がある。

精製されたレクチンに対する血液型抗原媒体の結合能力の測定は、既存の方法と比べていくつかの利点を有する。例えば、ロット間に多数の変動を示す傾向がある生きた赤血球、さらに凝集のオペレーターの主観的観察による凝集と比較して、精製されたレクチンの使用は、誤差を大いに低減または排除し、さらには一貫した結果を与える。

レクチンは、細胞を凝集させることができる天然に存在する炭水化物結合タンパク質である。レクチンは、ヒトの血液型に対して特異性を示し、生理的条件下で悪性細胞の優先的な凝集を引き起こすことが知られている。現在まで、約４００個のレクチンが同定され、植物および動物供給源から抽出されている。［Ｓｈａｒｏｎ，Ｎ．，およびＬｉｓ，Ｈ．，Ｌｅｃｔｉｎｓ，第２版；Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ，２００７年］。

グリフォニア・シンプリシフォリア（ＧＳ−Ｉ）、グリフォニア・シンプリシフォリア−イソレクチンＢ４（ＧＳＩ−Ｂ４）、およびヘリックス・ポマチア（ＨＰ）由来のレクチンなどのいくつかのレクチンは、血液型抗原に対して結合特異性を示すことが以前に報告されている。［Ｍａｔｓｕｉ，Ｔ．ら、Ｂｉｏｃｈｉｍ．ｅｔ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，１５２５巻，２００１年，５０−５７頁］。

表１は、レクチン、それらの供給源、および血液型抗原に対する特異性を要約する。

いくつかのレクチンは、血液型特異的なものとして同定され、非常に少数のものが市販されている。例えば、市販のＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンは、それぞれ、血液型Ａ抗原および血液型Ｂ抗原に対する結合特異性を有することが報告されている。対照的に、ＧＳ−Ｉレクチンは、血液型抗原ＡとＢの両方に対して結合特異性を示すことが報告されている。これらのレクチンは単量体ＩｇＧ抗体と大体同じサイズ（約１５０ｋＤａ）であり、単量体ＩｇＧ抗体に類似した物質移動性を示すことが期待される；しかしながら、それらは、全体的な構造および組成において非常に異なっている。

レクチンおよびＩｇＧ分子のタイプおよび供給源における固有の相違にも関わらず、ある種の精製されたレクチンに対する血液型Ａ抗原および血液型Ｂ抗原の静的結合能力は、試料、例えば、ＩＶＩＧ原料から抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体を除去するそれらの能力と相関することが、本明細書においてみられる。ＩＶＩＧ原料からの抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体の除去率は、それぞれＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して最も高い結合能力を有するそれらの媒体に対して最大であることが見出された。特に、レクチンに対する媒体の静的結合能力を測定することは、ＩＶＩＧ原料中の抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体の濃度の低下を測定するために典型的に使用されるフローサイトメトリープロセスよりも非常に迅速であり、複雑ではない。

本明細書に開示される実施形態がより容易に理解されるように、特定の用語を最初に定義する。さらなる定義は、詳細な説明の全体にわたって記載される。

Ｉ．定義
用語「結合能力」とは、カラムに充填された、定義された体積の媒体に結合し、定義された条件下で駆動する分子の量を指す。本明細書に記載されるクロマトグラフィー媒体の結合能力は、クロマトグラフィー媒体が設定された流量で媒体の体積あたりに結合することができる抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体の量である。

本明細書に記載される実施形態において、精製されたレクチンは、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去するのに適したクロマトグラフィー媒体の結合能力を評価するために使用され；このような結合能力は、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去するこのような媒体の能力と相関する。換言すると、特定の精製されたレクチンに対するクロマトグラフィー媒体の結合能力は、本明細書に記載されるように、場合に応じて、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する媒体の有効性を決定するための指標として使用することができる。結合能力は、静的結合能力または動的結合能力として測定することができる。特定の実施形態において、ある種の精製されたレクチンに対する媒体の静的な結合能力は、本明細書において測定される。

媒体（例えば、クロマトグラフィー媒体）の「静的結合能力」なる用語は、使用される媒体の体積で割った、媒体によって結合されたタンパク質の量として定義される。クロマトグラフィー媒体の静的結合能力を測定するための例示的な方法は以下の通りである。既知濃度のタンパク質溶液にクロマトグラフィー媒体を接触させた後、クロマトグラフィー媒体へのタンパク質の結合を促進させるために、媒体とともに溶液をインキュベートさせる。インキュベーション時間を（例えば、５分から７２時間）変化させることができ、当業者によって、例えば、上清中のたんぱく質の濃度変化が測定できなくなるまで、定期的に上清中のタンパク質の濃度を測定することによって（例えば、２８０ｎｍで吸光度を測定することによって）容易に決定され得る。クロマトグラフィー媒体に結合したタンパク質と溶液中のタンパク質の間が平衡に達すると、再度、タンパク質溶液の濃度を上清において測定する。次に、静的結合能力は、使用される媒体の体積で割った、タンパク質の初期量（インキュベーション前）−上清中のタンパク質の量（インキュベーション後）によって測定される。

特定のクロマトグラフィー媒体の静的結合能力は、一般的に、１つ以上の以下の因子、例えば、タンパク質の濃度、使用されるクロマトグラフィー媒体の量、溶液中の他の成分（塩、有機分子、緩衝液）の濃度、溶液ｐＨ、および導電率を含むタンパク質溶液の組成によって影響される。タンパク質溶液の温度によっても影響され得る。これらの変数の全ては、一般的に、２つの異なるクロマトグラフィー媒体間の静的結合能力の比較を可能にするために一定に保持される。用語「静的結合能力」はまた、「飽和結合能力」または「最大結合能力」と呼ばれることがある。

本明細書に記載されるいくつかの実施形態において、精製されたレクチン分子に対する、血液型Ａ抗原リガンドを含有する媒体または血液型Ｂ抗原リガンドを含有する媒体の静的結合能力は、場合に応じて、試料（例えば、ＩＶＩＧ原料）から抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する能力を予測または査定する指標として使用される。２つの異なるバッチの媒体または経時的に同じ媒体または異なる供給源からの媒体の静的結合能力を比較することは、媒体の品質について情報を提供するため、特に有用である。換言すると、精製されたレクチン分子（血液型Ａ抗原リガンド媒体の場合においてはＨＰレクチンまたは血液型Ｂ抗原リガンド媒体の場合においてはＧＳＩ−Ｂ４レクチン）に対する結合能力は、場合に応じて、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する能力と相関するため、結合能力は、異なるバッチの媒体または経時的に同じ媒体または異なる供給源からの媒体の性能を評価し、比較するために使用することができる。したがって、本明細書に記載される方法を用いて、当業者または当該技術分野のエンドユーザーは、媒体のバッチが、同じタイプの媒体の別のバッチと比較して、または経時的に、特に反復洗浄および消毒後に、その性能（すなわち、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する能力）の喪失を示すかどうかを容易に決定することができる。さらに、精製されたレクチンに対する静的結合能力の測定はまた、開発中の媒体を最適化するために使用することができる。

一般的に、静的結合能力を以下のように計算することができうる。体積ＶＲの媒体試料は、既知濃度Ｃ１と既知体積ＶＭの精製されたレクチン（血液型Ａ抗原リガンド媒体の場合においてはＨＰレクチンおよび血液型Ｂ抗原リガンド媒体の場合においてはＧＳＩ−Ｂ４レクチン）の溶液とともにインキュベートされる；上清を得て、レクチン（ＨＰまたはＧＳＩ−Ｂ４）Ｃ２の濃度を上清中で測定する；次に、静的結合能力を以下の式を用いて計算する。

用語「動的結合能力」は、クロマトグラフィーカラムから出たタンパク質溶液の濃度が特定の濃度、典型的には、開始濃度の所定の割合に達した時点で、フロー条件下でクロマトグラフィーカラムにより結合されたタンパク質の量として定義される。実際には、これは、開始濃度の約１０％になる傾向がある。次に、タンパク質のこの集団は、クロマトグラフィーカラムにおいて媒体の体積で除される。

特定のクロマトグラフィー媒体の動的結合能力は、一般的に、１つ以上の以下の因子、例えば、タンパク質の濃度、溶液中の他の成分（塩、有機分子、緩衝液）の濃度、溶液ｐＨ、および導電率を含む、タンパク質溶液の組成によって影響される。動的結合能力は、カラムが充填される温度により、およびタンパク質溶液がカラムに充填される流量により影響され得る。クロマトグラフィーカラムへのタンパク質溶液の流量の減少は、測定される動的結合能力を増加させる。逆に、クロマトグラフィーカラムへのタンパク質溶液の流量の増加は、測定される動的結合容量を減少させる。クロマトグラフィー媒体の動的能力は、物質移動の全体的な速度によって制限されるため、動的結合能力は、静的結合能力を超えてはならない。

用語「上清」は、沈降されたクロマトグラフィー媒体上にある液体として定義される。上清溶液は、スラリー中のクロマトグラフィー媒体を容器またはカラムの底に沈降させることによって得ることができる。沈降プロセスは、クロマトグラフィー媒体のスラリーを遠心分離に供することによって、または振動によって促進することができる。次に、ピペット、シリンジ、またはポンプを介して上清液を別の容器に移すことにより、クロマトグラフィー媒体から分離することができる。さらに、上清はまた、メンブレンまたは多孔性材料を介してクロマトグラフィー媒体のスラリーを濾過させることによって得ることができる。

用語「試料」は、本明細書に記載されるように、クロマトグラフィー媒体に結合されることが意図される、少なくとも１つの標的タンパク質（例えば、この場合は抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体）を含有する溶液と定義される。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、抗体または免疫グロブリンである。いくつかの実施形態において、免疫グロブリンは、血液型Ａ抗原抗体（すなわち、抗Ａ抗体）である。他の実施形態において、免疫グロブリンは、血液型Ｂ抗原抗体（すなわち、抗Ｂ抗体）である。試料の例としては、限定されないが、血液、血漿、血漿誘導体、血液製剤、静脈内免疫グロブリン原料（ＩＶＩＧ）が挙げられる。

用語「ＩｇＧ」、「免疫グロブリン」、「Ｉｇ」または「抗体」（本明細書において互換的に使用される。）とは、２つの重鎖および２つの軽鎖からなる基本的な４つのポリペプチド鎖構造を有するタンパク質を意味し、これらの鎖は、抗原に特異的に結合する能力を有する、例えば、鎖間のジスルフィド結合によって安定化される。用語「単一鎖免疫グロブリン」または「単一鎖抗体」（本明細書において互換的に使用される。）とは、重鎖および軽鎖からなる２つのポリペプチド鎖構造を有するタンパク質を意味し、これらの鎖は、抗原に特異的に結合する能力を有する、例えば、鎖間のペプチドリンカーによって安定化される。用語「ドメイン」とは、例えば、βプリーツシートおよび／または鎖間ジスルフィド結合によって、安定化されるペプチドループを含む（例えば、３から４つのペプチドループを含む。）重鎖または軽鎖ポリペプチドの球状領域を意味する。ドメインは、本明細書において、「定常」ドメインの場合は多様なクラスのメンバーのドメイン内の配列の変動の相対的欠如に基づき、または「可変」ドメインの場合には多様なクラスのメンバーのドメイン内の有意の変動に基づき、「定常」または「可変」とさらに称される。抗体またはポリペプチド「ドメイン」は、多くの場合、抗体またはポリペプチド「領域」として当該技術分野において互換的に称される。抗体軽鎖の「定常」ドメインは、「軽鎖定常領域」、「軽鎖定常ドメイン」、「ＣＬ」領域または「ＣＬ」ドメインと互換的に称される。抗体重鎖の「定常」ドメインは「重鎖定常領域」、「重鎖定常ドメイン」、「ＣＨ」領域または「ＣＨ」ドメインと互換的に称される。抗体軽鎖の「可変」ドメインは、「軽鎖可変領域」、「軽鎖可変ドメイン」、「ＶＬ」領域または「ＶＬ」ドメインと互換的に称される。抗体重鎖の「可変」ドメインは、「重鎖可変領域」、「重鎖可変ドメイン」、「ＶＨ」領域または「ＶＨ」ドメインと互換的に称される。

免疫グロブリンまたは抗体は、モノクローナルまたはポリクローナルであってもよく、単量体または多量体形態で存在してもよい。

用語「クロマトグラフィー」とは、本明細書で使用するとき、試料中の分子（例えば、この場合は抗Ａ抗体および／または抗Ｂ抗体）を他の分子から分離しまたは除去する動的分離技術を意味する。典型的には、クロマトグラフィー法において、移動相（液体または気体）は、固定相（通常は固体）媒体（例えば、クロマトグラフィー媒体）を介して分離されまたは除去されるべき分子を含有する試料を移動させる。固定相に対してのパーティションまたはアフィニティーの違いは、試料の他の成分から分子を分離する。

用語「アフィニティークロマトグラフィー」とは、本明細書で使用するとき、分離または除去されるべき分子（例えば、抗Ａ抗体および／または抗Ｂ抗体）が、分離または除去されるべき分子と特異的に相互作用する別の分子（例えば、固相支持体に固定化された血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンド）との相互作用により単離されるというクロマトグラフィーの様式を意味する。アフィニティークロマトグラフィーにおいて使用される媒体は、アフィニティークロマトグラフィー媒体と呼ばれる。

用語「媒体」または「クロマトグラフィー媒体」は、本明細書において互換的に使用され、固相支持体に固定化された血液型Ａ抗原リガンドおよび／または血液型Ｂ抗原リガンドを有する固相支持体を意味する。

本明細書に記載される方法は、２０１５年９月８日に出願された米国仮特許出願第６２／２１５，４０１号に記載されるクロマトグラフィー媒体を含む、抗Ａ抗体および／または抗Ｂ抗体の除去に適した任意のクロマトグラフィー媒体の品質を査定するために使用することができる。

本明細書に記載される実施形態において、精製されたレクチン溶液は、固相支持体に付着された血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むクロマトグラフィー媒体の結合能力を評価するために使用される。換言すると、特定の精製されたレクチン分子は、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去するのに適したクロマトグラフィー媒体の品質を調べるためのモデル分子として用いられる。

用語「抗Ａ」または「抗Ａ抗体」とは、Ａの血液型またはＡＢの血液型を有する個体において細胞の表面に見出される血液型Ａ抗原に結合する抗体を意味する。したがって、血液由来の試料（例えば、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体またはＩＶＩＧ原料）においてこのような抗体を除去することが望ましい。

用語「抗Ｂ」または「抗Ｂ抗体」とは、Ｂの血液型またはＡＢの血液型を有する個体において細胞の表面に見出される血液型Ｂ抗原に結合する抗体を意味する。したがって、血液由来の試料（例えば、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体またはＩＶＩＧ原料）においてこのような抗体を除去することが望ましい。

用語「媒体の品質」とは、本明細書で使用するとき、試料（例えば、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体またはＩＶＩＧ原料）から望ましくない実体（例えば、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体）を選択的に除去するクロマトグラフィー媒体の能力を意味する。本明細書で提供される方法は、特定の精製されたレクチン分子に対する媒体の結合能力を測定することにより、異なる媒体（例えば、異なるバッチの同じタイプの媒体または異なる供給源由来の同じタイプの媒体または開発中もしくは製造プロセス中に得られた媒体試料またはプロトタイプ）の相対的な品質を評価および／または監視するのに特に有用である。換言すると、精製されたレクチン（すなわち、血液型Ａ抗原リガンドを含有する媒体の場合においてはＨＰレクチンおよび血液型Ｂ抗原リガンドを含有する媒体の場合においてはＧＳＩ−Ｂ４レクチン）に対する異なるバッチの同じタイプの媒体または異なる供給源から得られた媒体の相対的な結合能力は、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を選択的に除去する媒体の能力（すなわち、該媒体または媒体試料の相対的な品質）を示す。したがって、特定の精製されたレクチン分子に対する媒体の結合能力は、同じ媒体の他のバッチ、または経時的に、例えば、製造、使用、洗浄および消毒中に同じ媒体の品質と比較して、媒体の全体的な品質を見分けるために使用することができる。

したがって、以前に製造されたバッチの同じタイプの媒体よりも、精製されたＨＰレクチンに対してより低い結合能力を有する抗Ａ抗体を除去するように設計されたあるバッチの媒体は、試料からより低い割合の抗Ａ抗体を除去することが期待されるため、以前のバッチと比較してより貧弱な品質のものである。反対に、以前に製造されたバッチの同じタイプの媒体よりも、精製されたＨＰレクチンに対してより高い結合能力を有する抗Ａ抗体を除去するように設計されたあるバッチの媒体は、試料からより高い割合の抗Ａ抗体を除去することが期待されるため、以前のバッチと比較してより良好な品質のものである。同様に、以前に製造されたバッチの同じタイプの媒体よりも、精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対してより低い結合能力を有するあるバッチの媒体は、試料からより低い割合の抗Ｂ抗体を除去することが期待されるため、以前のバッチと比較してより貧弱な品質のものである。反対に、以前に製造されたバッチの同じタイプの媒体よりも、精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対してより高い結合能力を有する媒体は、試料からより高い割合の抗Ｂ抗体を除去することが期待されるため、以前のバッチよりも良好な品質のものである。

一般的に、媒体が試料から所望の割合の抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する能力を保持していることを確実にするために、クロマトグラフィー媒体の品質をその耐用年数中に監視することが必要である。例えば、クロマトグラフィー媒体の品質は、反復使用後、例えば、過酷な洗浄および／または消毒条件への曝露後に悪影響を受ける場合があり、試料から所望の割合の抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する能力が低下する。抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去するように設計されたあるバッチの媒体の品質は、媒体が反復して使用されまたは過酷な洗浄および／もしくは消毒条件に曝露される前後で、それぞれ、精製されたレクチン、ＨＰおよびＧＳＩ−Ｂ４に対する媒体の結合能力を測定することにより監視され得る。精製されたレクチンに対する媒体の結合能力が以前の測定と比較して低下している場合、その媒体が、この時点で、より低い割合の抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去することを示す。

したがって、本明細書に記載される方法は、経時的に抗Ａまたは抗Ｂ除去についてクロマトグラフィー媒体の品質を査定し、ならびに媒体の２つの別個のバッチの品質を比較するのに有用である。

さらに、本明細書に記載される方法はまた、製造または開発中の媒体を最適化するために使用することができる。換言すると、プロトタイプ媒体は、場合に応じて、単に、精製されたレクチンに対するその結合能力を決定することによって、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する能力について評価され得て、該媒体は、必要に応じて、精製されたレクチンに対するその結合能力に基づいてさらに改善または最適化され得る。例えば、プロトタイプ媒体が作製されると、その媒体の品質は、さらなる最適化または修飾を必要とするかどうかを決定するために、本明細書に記載される方法を用いて査定することができる。このように、媒体を種々に繰り返すことにより開発中に品質について容易に評価することができ、媒体の最終バージョンがもたらされる。

さらに、本明細書に記載される方法はまた、血液型Ａ抗原リガンド媒体と血液型Ｂ抗原リガンド媒体の間を区別するのに有用である。オペレーターまたはエンドユーザーは、製造中に、さらには使用する場合に２つの媒体の特定を間違え易く、これは、２つのタイプの媒体が、多くの場合、同じ場所で製造され、さらには保存され、目視検査の際に実質的に同じように見えるためである。本明細書に記載される方法は、これらの２つのタイプの媒体間を、すなわち、媒体が抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体に結合するかどうかが未知である場合に、区別するための方法を提供する。例えば、未知の媒体の結合能力（すなわち、血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むかどうか）は、精製されたＨＰレクチンに対して、および別に精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して評価され得る。血液型Ａ抗原リガンドを有する未知の媒体は、精製されたモノクローナルＨＰレクチンに対して顕著な結合能力を有し、精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して相対的に低いまたは無視できる程度の結合能力を有する。血液型Ｂ抗原を有する未知の媒体は、精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して顕著な結合能力を有し、精製されたＨＰレクチンに対して相対的に低いまたは無視できる程度の結合能力を有する。

いくつかの実施形態において、ＨＰレクチンまたはＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する未知の媒体の結合能力を、レクチン（例えば、異なるバッチから）に対する同じタイプの既知の媒体の結合能力と比較して、血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むかどうかを決定することができる。

ＩＩ．例示的な血液型抗原媒体
本明細書に記載される方法は、血液型Ａ抗原抗体または血液型Ｂ抗原抗体のいずれかと結合する媒体の品質を査定するのに有用である。

本明細書中に記載される方法は、血液型Ａ抗原抗体または血液型Ｂ抗原抗体に結合することが知られている、任意の市販の媒体または開発された媒体を評価するために使用されてもよい。さらに、本明細書に記載される方法はまた、媒体が血液型Ａ抗原抗体または血液型Ｂ抗原抗体に結合するかどうかが未知である事象において、媒体のタイプ間を区別するために使用することができる。

現在市販されている可能性があり、またはかつて市販されていた媒体の例としては、例えば、Ｇｌｙｃｏｒｅｘ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ＡＢ（Ｓｏｅｌｖｅｇａｔａｎ ４１、２２３ ７０ Ｌｕｎｄ、Ｓｗｅｄｅｎ）によって提供されるＧｌｙｃｏｓｏｒｎ ＡＢＯ ＡカラムおよびＢカラム；Ｄｅｘｔｒａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｌｔｄ（Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｅｎｔｒｅ、Ｅａｒｌｅｙ Ｇａｔｅ、Ｗｈｉｔｅｋｎｉｇｈｔｓ Ｒｏａｄ、Ｒｅａｄｉｎｇ、ＲＧ６ ６ＢＺ、Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｍ）によって提供される血液型Ａ三糖セファロース−４Ｂ−ＡＦＦ２０１、血液型Ａ三糖セファロース−ＦＦ−ＡＦＦ１０１、血液型Ｂ三糖セファロース−４Ｂ−ＡＦＦ２０２、および血液型Ｂ三糖セファロース−ＦＦ−ＡＦＦ１０２；Ｃｈｅｍｂｉｏｍｅｄ Ｌｔｄ（Ｅｄｍｏｎｔｏｎ、Ａｌｂｅｒｔａ、Ｃａｎａｄａ）によって提供されるＳｙｎｓｏｒｂ ＡおよびＢ媒体；およびＬｅｃｔｉｎｉｔｙ Ｈｏｌｄｉｎｇ、Ｉｎｃ．（Ｍｏｓｃｏｗ、Ｒｕｓｓｉａ）によって提供されるＡｌｌｏｔｒａｎ ＡおよびＢ媒体が挙げられる。

一般的に、任意の媒体は、本明細書に記載される方法を用いて評価することができ、媒体は、固相支持体に直接的にまたは間接的に（リンカーもしくはスペーサーを介して）付着された血液型Ａ抗原または血液型Ｂ抗原のエピトープに対応するリガンド（典型的には、オリゴ糖ベースのリガンド）を含む。例示的な媒体はまた、本出願と同日に出願された同時係属中の仮特許出願第Ｐ１５／１７８号（２０１５年９月８日に出願された米国仮特許出願第６２／２１５４０１号）に見出すことができる。

例示的なオリゴ糖系リガンドを以下に示す。構造において使用される略語は、以下のように定義される：Ｇａｌ＝Ｄ−ガラクトース；Ｆｕｃ＝Ｌ−フコース；ＧａｌＮＡｃ＝Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン；ＧｌｃＮＡｃ＝Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン；Ｒ＝リガンドから固相支持体までの連結であるが、リガンド構造上の他の位置での連結もまた使用されてもよい。

血液型Ａ抗原リガンドの例としては、限定されないが、以下の構造を有する分子が含まれる：三糖抗原Ａ（ＧａｌＮＡｃα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ−Ｒ）、１型三糖抗原Ａ（ＧａｌＮＡｃα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，３ＧｌｃＮＡｃβ１−Ｒ）、２型三糖抗原Ａ（ＧａｌＮＡｃα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，４ＧｌｃＮＡｃβ１−Ｒ）、３型三糖抗原Ａ（ＧａｌＮＡｃα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，３ＧａｌＮＡｃα１−Ｒ）、および４型三糖抗原Ａ（ＧａｌＮＡｃα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，３ＧａｌＮＡｃβ１−Ｒ）。

血液型Ｂ抗原リガンドの例としては、以下の構造を有する分子が含まれる：三糖抗原Ｂ（Ｇａｌα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ−Ｒ）、１型三糖抗原Ｂ（ＧａｌＮＡｃα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，３ＧｌｃＮＡｃβ１−Ｒ）、２型三糖抗原Ｂ（Ｇａｌα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，４ＧｌｃＮＡｃβ１−Ｒ）、３型三糖抗原Ｂ（Ｇａｌα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，３ＧａｌＮＡｃα１−Ｒ）、および４型三糖抗原Ｂ（Ｇａｌα１，３［Ｆｕｃα１，２］Ｇａｌβ１，３ＧａｌＮＡｃβ１−Ｒ）。

上述したリガンドの１つ以上は、適切な固相支持体に付着されてもよく、それにより、血液型Ａ抗原抗体および／または血液型Ｂ抗原抗体の除去に適したクロマトグラフィー媒体をもたらす。

固相支持体の例としては、限定されないが、アルミナ、シリカ、セライト、セラミックス、金属酸化物、多孔質ガラス、孔制御ガラス、炭水化物ポリマー、多糖、アガロース、セファロース、セファデックス、デキストラン、セルロース、デンプン、キチン、ゼオライト、合成ポリマー、ポリビニルエーテル、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ナイロン、ポリアクリレート、ポリメタクリレート、ポリアクリルアミド、ポリマレイン酸無水物、メンブレン、中空糸および繊維が挙げられる。いくつかの実施形態において、固相支持体は、ポリマーの固相支持体であり、ポリビニルエーテル、ポリビニルアルコール、ポリメタクリレート、ポリアクリレート、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミドおよびポリカーボネートからなる群から選択されるポリマーを含む。特定の実施形態において、固相支持体は、ポリビニルエーテル系固相支持体である。いくつかの実施形態において、固相支持体は、ビーズ形態（例えば、ポリビニルエーテル系ビーズ）である。

固相支持体へのリガンドの付着を容易にするために、無数の官能基を使用することが可能である。このような官能基の非限定的な例としては、アミン、チオール、フラン、マレイミド、エポキシ、アルデヒド、アルケン、アルキン、アジド、アズラクトン、カルボキシル、活性化エステル、トリアジン、および塩化スルホニルが挙げられる。特定の実施形態において、アミン基を官能基として使用する。

固相支持体はまた、リガンドへの適切なリガンドまたは複数のリガンドの固定化を促進する、上記の１つ以上の官能基を含むように修飾されおよび／または活性化され得る。特定の実施形態において、カルボキシル基およびアルデヒド基が官能基として用いられる。

ＩＩＩ．結合能力を測定するためのアッセイ
本明細書に記載される方法は、試料、例えば、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体またはＩＶＩＧ原料中の血液型Ａ抗原抗体または血液型Ｂ抗原抗体に結合するまたは結合することが期待される、（例えば、製造プロセス中もしくは製造プロセス後または使用後に）媒体の相対的な品質を査定するのに有用である。本明細書に記載される方法は、経時的にまたは２つの異なるバッチの媒体もしくは異なる供給源からの媒体を比較するときのいずれかで、媒体の相対的な品質を査定するために、精製されたレクチン分子に対する媒体の結合能力の測定に、少なくとも部分的に依存する。したがって、本明細書に記載される方法は、異なるバッチの同じタイプの媒体間または使用の耐用年数全体で同じバッチの媒体間またはさらには異なる供給源の媒体間を区別するために使用され得る。一般的に、特定の分子（例えば、レクチン）に対する媒体の結合能力を以下のように測定することができる。該分子を含有する溶液を、適切な条件下で、媒体への分子の結合を促進するのに適した期間、適した媒体と接触させる。その後、媒体に結合している分子は、残りの試料溶液から分離され、残りの試料溶液中の分子の濃度（すなわち、非結合分子の濃度）が測定される。溶液中の分子の濃度は、当該技術分野において公知のいくつかの異なる方法によって決定することができる。例えば、溶液の吸光度は、特定の波長で測定することができ、分子の濃度は、その波長で分子（例えば、タンパク質）の吸光係数と組み合わせで計算することができる。蛍光、ＵＶ、またはラマン吸収は、タンパク質濃度を決定するために測定することができる。さらに、溶液中の分子の濃度はまた、分析用クロマトグラフィーによって決定することができる。次に、検出の強度は、分子の濃度に対して相関させられる。

本明細書に記載される実施形態において、精製されたＨＰレクチンまたはＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する血液型Ａリガンド媒体または血液型Ｂリガンド媒体の結合能力をそれぞれ測定し、次に、これは、場合に応じて、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体の実際の除去に対してその媒体がどのように実行し得るのかを示す。

実施形態は、限定するものとして解釈されるべきではない以下の実施例によってさらに例証される。本出願全体で引用されている全ての参考文献、特許および公開された特許出願、ならびに図面を参照により本明細書に組み込む。

［実施例１］血液型Ａ抗原三糖リガンドを含有するクロマトグラフィー媒体の合成
これは、血液型Ａ抗原リガンド媒体を製造するために使用することができる例示的な方法である。血液型Ａ抗原三糖（ＴｒｉＡ）リガンドを含有するクロマトグラフィー媒体は、独自のポリビニルエーテル系ビーズ（すなわち、本明細書で使用される固相支持体）にＴｒｉＡリガンドを固定化することにより合成された。ＴｒｉＡリガンドの具体的な構造を図１に示す。ＴｒｉＡリガンドには、この場合、ベースビーズ上に固定化するために使用されるアミン基を有するリンカーも含まれる。ビーズは、リガンド上でアミン基と反応させることができる反応性基、例えば、エポキシ基、カルボキシル基またはアルデヒド基を含むように活性化される。次に、ＴｒｉＡリガンドは、第一級アミン（−ＮＨ２）基とのカップリング反応によりビーズ上に固定化される。

［実施例２］血液型Ｂ抗原三糖リガンドを含有するクロマトグラフィー媒体の合成
別の実験において、血液型Ｂ抗原リガンド媒体を以下のように作製した。血液型Ｂ抗原三糖（ＴｒｉＢ）リガンドを含有するクロマトグラフィー媒体は、独自のポリビニルエーテル系ビーズ（すなわち、本明細書で使用される固相支持体）にＴｒｉＢリガンドを固定化することにより合成された。ＴｒｉＢリガンドの具体的な構造を図２に示す。ＴｒｉＢリガンドには、この場合、ビーズ上に固定化するために使用されるアミン基を有するリンカーも含まれる。上記のＴｒｉＡリガンドの場合のように、ビーズは、リガンド上でアミン基と反応させることができる反応性基、例えば、エポキシ基、カルボキシル基またはアルデヒド基を含むように活性化される。次に、ＴｒｉＢリガンドは、第一級アミン（−ＮＨ２）基とのカップリング反応によりベースビーズ上に固定化される。

［実施例３］媒体の品質の指標としてヘリックス・ポマチア（ＨＰ）レクチンに対する血液型Ａ抗原三糖リガンド媒体の能力
この実施例は、精製されたＨＰレクチン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｃａｔ＃Ｌ３３８２）に対する血液型Ａ抗原三糖（ＴｒｉＡ）リガンド媒体の能力が、例えば、製造中および製造後、媒体の品質を評価するために使用することができることを実証する代表的な実施例である。ＴｒｉＡリガンドの濃度を、固体支持体とのカップリング反応中に変化させた。したがって、媒体は、媒体製造プロセス中に生じ得る変化のタイプをシミュレートする、様々な量のＴｒｉＡリガンドを有する必要がある。その後、ＨＰレクチンに対する様々なＴｒｉＡリガンド媒体の静的結合能力を測定した。この値は、ＩＶＩＧ原料からの抗Ａ ＩｇＧ抗体の除去率と比較された。

１セットの２．０ｍＬ微小遠心管には、０．３５ｍＬの１０ｍＭ ＰＢＳ緩衝液または対照については０．５０ｍＬの１０ｍＭ ＰＢＳ緩衝液が充填された。その後、１０ｍＭ ＰＢＳ緩衝液中の媒体の１０％懸濁液の０．１５ｍＬ（１５μｌ媒体体積）は、対照を除いて、微小遠心管に添加され、次に、ＰＢＳ緩衝液中の１ｍｇ／ｍＬのＨＰレクチン溶液の０．６ｍＬが添加された。さらに０．４ｍｌのＰＢＳを全ての管に添加した。管を４時間、室温で回転させた。その後、微小遠心管を遠心分離に供し、得られた上清を、０．２２ミクロンメンブレンを介して遠心濾過装置に移した。装置を遠心分離に供し、次に、濾液の吸光度を２８０ｎｍで測定した。その後、各々の試料溶液の吸光度を用いて、ＨＰレクチンに対する媒体の静的結合能力を計算した。ＨＰレクチンの静的結合能力は、静的結合条件下、ＩＶＩＧ原料からの抗Ａ ＩｇＧ抗体の除去率と比較された。

ＩｇＧ除去の測定に関して、代表的なＩＶＩＧ原料における血液型Ａ抗原ポリクローナルＩｇＧ抗体（抗Ａ）レベルは、確立されたフローサイトメトリー法（Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｓｏｎ，Ｍ．ら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ、１９９６年、３６巻、５００−５０５頁）によって決定された。Ａ型の赤血球は、代表的なＩＶＩＧ原料とともに所定時間インキュベートされ、過剰に洗浄された。次に、細胞は、蛍光標識された抗ヒトＩｇＧ（Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標）４８８ ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ Ｆ（ａｂ’）_２断片ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）、部品番号：１０９−５４６−０８８、Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ、Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ、ＵＳＡ）を用いて染色され、フローサイトメトリー（Ｇｕａｖａ ５ＨＴ、ＥＭＤ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に供された。正味の平均蛍光強度（ＭＦＩ）値を用いて、実施例１において合成された血液型Ａ三糖抗原リガンド媒体との接触前後に、原料における抗ＡポリクローナルＩｇＧ濃度を比較した。

製造中におよびさらにはバッチ間で典型的に観察される媒体の能力の変化をシミュレートするために、試料は、合成ステップにおいて三糖リガンド充填量を変化させることによって合成された。表２に列挙された試料のリガンド充填量は、以下の順番であった：媒体＃１＜媒体＃２＜媒体＃３。固相支持体だけを対照として使用し、この場合には、ポリエーテル系ビーズであった。以下の表２に要約するように、この実験は、ＨＰレクチンに対する様々なＴｒｉＡリガンド媒体の静的結合能力が、静的結合条件下でＩＶＩＧ原料からの抗Ａ抗体の除去率と相関することを実証する。ＨＰレクチンに対するより高い能力を有するＴｒｉＡリガンド媒体は、ＩＶＩＧ原料からより多くの抗Ａ ＩｇＧ抗体を除去することを見出した。ＨＰレクチンに対するより低い静的結合能力を有するＴｒｉＡリガンド媒体は、ＩＶＩＧ原料からより少ない抗Ａ ＩｇＧ抗体を除去することも見出した。

２つの分子、例えば、ＩｇＧおよびＨＰレクチンは非常に異なるタイプの分子であるため、ＨＰレクチンに対するＴｒｉＡリガンド媒体の静的結合能力は、抗Ａ ＩｇＧ抗体の除去率と相関することを見出すことは、幾分予想されなかった。

［実施例４］媒体の品質の指標としてのグリフォニア・シンプリシフォリア−イソレクチンＢ４（ＧＳＩ−Ｂ４）レクチンに対する血液型Ｂ抗原三糖リガンド媒体の結合能力
この実施例は、ＧＳＩ−Ｂ４レクチン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｃａｔ＃Ｌ３０１９）に対する血液型Ｂ抗原三糖（ＴｒｉＢ）リガンド媒体の能力が、例えば、製造中および製造後、媒体の品質を評価するために使用することができることを実証する代表的な実施例である。ＴｒｉＢリガンドの濃度は、製造中に見られる変化をシミュレートするために、固相支持体とのカップリング反応中に変化させた。ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する様々なＴｒｉＢリガンド媒体の静的結合能力を測定し、ＩＶＩＧ原料からの抗Ｂ ＩｇＧ抗体の除去率と比較した。２つの値が相関することが判明した場合、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対するＴｒｉＢリガンド媒体の能力の測定は、ＩＶＩＧ原料から抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去する媒体の能力を評価するために使用することができる。その後、ＴｒｉＢ媒体の品質に対する製造規格は、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の能力に基づいて確立され得る。

１セットの２．０ｍＬ微小遠心管には、０．３５ｍＬのＰＢＳ緩衝液または対照については０．５０ｍＬのＰＢＳ緩衝液が充填された。その後、１０ｍＭ ＰＢＳ緩衝液中の媒体の１０％懸濁液の０．１５ｍＬ（１５μＬ媒体体積）は、対照を除いて、微小遠心管に添加され、次に、ＰＢＳ緩衝液中の１ｍｇ／ｍＬのＧＳＩ−Ｂ４レクチン溶液の０．６ｍＬが添加された。さらに０．４ｍｌのＰＢＳが全ての管に添加された。管を１６時間、室温で回転させた。その後、微小遠心管を遠心分離機に配置し、次に、上清を、０．２２ミクロンメンブレンを介して遠心濾過装置に移した。装置を遠心分離に供し、次に、濾液の吸光度を２８０ｎｍで測定した。その後、各々の試料溶液の吸光度を用いて、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の静的結合能力を計算した。ＧＳＩ−Ｂ４レクチンの静的結合能力は、静的結合条件下、ＩＶＩＧ原料からの抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去するために同じ媒体を用いた場合に得られた除去率と比較された。

ＩｇＧ除去の測定に関して、代表的なＩＶＩＧ原料における血液型Ｂ抗原ポリクローナルＩｇＧ抗体（抗Ｂ）レベルは、確立されたフローサイトメトリー法（Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｓｏｎ，Ｍ．ら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ、１９９６年、３６巻、５００−５０５頁）によって決定された。Ｂ型の赤血球は、代表的なＩＶＩＧ原料とともに所定時間インキュベートされ、過剰に洗浄された。次に、上述したように、細胞は、蛍光標識された抗ヒトＩｇＧを用いて染色され、フローサイトメトリー（Ｇｕａｖａ ５ＨＴ、ＥＭＤ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に供された。正味の平均蛍光強度（ＭＦＩ）値を用いて、実施例２において合成された血液型Ｂ三糖抗原リガンド媒体との接触前後に、原料における抗ＢポリクローナルＩｇＧ濃度を比較した。

抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去する媒体の能力の変化をシミュレートするために、試料は、合成ステップにおいて三糖リガンド充填量を変化させることによって合成された。表３に列挙された試料のリガンド充填量は、以下の順番であった：媒体＃４＜媒体＃５＜媒体＃６。固相支持体だけを対照として使用し、この場合には、ポリエーテル系ビーズであった。以下の表３に要約するように、この実験は、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する様々なＴｒｉＢリガンド媒体の静的結合能力が、静的結合条件下でＩＶＩＧ原料からの抗Ｂ ＩｇＧ抗体の除去率と相関することを実証する。ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対するより高い能力を有するＴｒｉＢリガンド媒体は、ＩＶＩＧ原料からより多くの抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去することを見出した。ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対するより低い静的結合能力を有するＴｒｉＢリガンド媒体は、ＩＶＩＧ原料からより少ない抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去することも見出した。

２つの分子、例えば、ＩｇＧおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンは非常に異なるタイプの分子であるため、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対するＴｒｉＢリガンド媒体の静的結合能力は、抗Ｂ ＩｇＧ抗体の除去率と相関することを見出すことは、幾分予想されなかった。

［実施例５］ＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の相対的な能力を測定することによる血液型Ａ抗原三糖リガンド媒体と血液型Ｂ抗原三糖リガンド媒体の間を区別する方法
この実施例は、ＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する血液型Ａ抗原三糖（ＴｒｉＡ）リガンド媒体および血液型Ｂ抗原三糖（ＴｒｉＢ）リガンド媒体の相対的な能力は、これらのタイプの媒体間を区別するために使用することができることを実証する代表的な実施例である。

１セットの２．０ｍＬ微小遠心管には、０．３５ｍＬのＰＢＳ緩衝液または対照については０．５０ｍＬのＰＢＳ緩衝液が充填された。その後、ＰＢＳ緩衝液中の媒体の１０％懸濁液の０．１５ｍＬ（１５μＬ媒体体積）は、対照溶液を除いて、微小遠心管に添加された。ＰＢＳ緩衝液中の１．０ｍｇ／ｍＬのＨＰレクチン溶液の０．６ｍＬとＰＢＳ緩衝液中の１．０ｍｇ／ｍＬのＧＳＩ−Ｂ４レクチン溶液の０．６ｍＬが全ての管に添加された。さらに０．４ｍｌのＰＢＳ緩衝液を遠心管に添加した。次に、管をＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンのそれぞれについて、４時間および１６時間、室温で回転させた。微小遠心管を遠心分離機に配置し、得られた上清を、０．２２ミクロンメンブレンを用いて遠心濾過装置に移した。装置を遠心分離に供し、次に、濾液の吸光度を２８０ｎｍで測定した。その後、各々の試料溶液の吸光度を用いて、ＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の静的結合能力を計算した。

以下の表４に要約するように、この実験は、ＨＰレクチンとＧＳＩ−Ｂ４レクチンの両方に対する媒体の相対的な結合能力が、これらのタイプの媒体間を区別するために使用することができることを実証する。具体的には、ＴｒｉＡリガンド媒体は、ＨＰレクチンに対して顕著な結合能力を有し、一方、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対してはほとんど無視できる程度の結合能力を有することが見出された。反対に、ＴｒｉＢリガンド媒体は、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対して顕著な結合能力を有し、一方、ＨＰレクチンに対してはほとんど無視できる程度の結合能力を有した。したがって、媒体試料の同定が未知であり、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体の除去に適しているかどうかが未知である場合において、ＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体試料の結合能力は、本明細書に記載されるように測定され、それにより、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体の除去に適しているかどうかを決定することがきる。

［実施例６］媒体の品質の指標としてのグリフォニア・シンプリシフォリア（ＧＳ−Ｉ）レクチンに対する血液型Ａ抗原三糖リガンド媒体および血液型Ｂ抗原三糖リガンド媒体の能力
この実施例は、ＧＳ−Ｉレクチン（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｌ２３８０）に対する血液型Ａ抗原三糖および血液型Ｂ抗原三糖（ＴｒｉＡおよびＴｒｉＢ）リガンド媒体の能力が、例えば、製造中および製造後、媒体の品質を評価するために使用することができることを実証する代表的な実施例である。ＧＳ−Ｉに対する様々なＴｒｉＡリガンド媒体およびＴｒｉＢリガンド媒体の静的結合能力を測定する。次に、この値は、ＩＶＩＧ原料からの抗Ａ ＩｇＧ抗体および抗Ｂ ＩｇＧ抗体の除去率と比較される。２つの値が相関することが見出される場合、ＧＳ−Ｉレクチンに対するＴｒｉＡリガンド媒体とＴｒｉＢリガンド媒体の能力の測定は、ＩＶＩＧ原料から抗Ａ ＩｇＧ抗体および抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去する媒体の能力を評価するために使用することができる。その後、ＴｒｉＡ媒体およびＴｒｉＢ媒体の品質に対する製造規格は、ＧＳ−Ｉレクチンに対する媒体の結合能力に基づいて確立され得る。

１セットの２．０ｍＬ微小遠心管には、０．３５ｍＬのＰＢＳ緩衝液または対照については０．５０ｍＬのＰＢＳ緩衝液が充填された。その後、ＰＢＳ緩衝液中の媒体の１０％懸濁液の０．１５ｍＬ（１５μＧ媒体体積）は、対照溶液を除いて、微小遠心管に添加された。ＰＢＳ緩衝液中の１．０ｍｇ／ｍＬのＧＳ−Ｉレクチン溶液の０．６ｍＬが全ての管に添加され、さらに０．４ｍｌのＰＢＳが全ての管に添加された。管を１６時間、室温で回転させた。その後、微小遠心管を遠心分離機に配置し、次に、得られた上清を、０．２２ミクロンメンブレンを介して遠心濾過装置に移した。装置を遠心分離に供し、濾液の吸光度を２８０ｎｍで測定した。その後、各々の試料溶液の吸光度を用いて、ＧＳ−Ｉレクチンに対する媒体の静的結合能力を計算した。ＧＳ−Ｉレクチンの静的結合能力は、静的結合条件下、ＩＶＩＧ原料からの抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体の除去率と比較された。

以下の表５に要約するように、この実験は、ＧＳ−Ｉレクチンに対する様々なＴｒｉＡリガンド媒体およびＴｒｉＢリガンド媒体の静的結合能力が、静的結合条件下でＩＶＩＧ原料からの抗Ａ ＩｇＧ抗体および抗Ｂ ＩｇＧ抗体の除去率と相関することを実証する。ＧＳ−Ｉレクチンに対する有意な結合能力を有するＴｒｉＡリガンド媒体およびＴｒｉＢリガンド媒体は、それぞれ、ＩＶＩＧ原料から有意な量の抗Ａ ＩｇＧ抗体および抗Ｂ ＩｇＧ抗体を除去することも見出した。

［実施例７］ＨＰ−１レクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンの結合能力に基づく媒体の混合物の生成
本明細書で見られるように、精製されたＨＰ−１レクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する血液型Ａ抗原媒体または血液型Ｂ抗原媒体の結合能力は、それぞれ、どの程度の媒体が、試料（例えば、血液、血液製剤、血漿またはＩＶＩＧ原料）からの血液型Ａ抗原抗体または血液型Ｂ抗原抗体の除去に対して実際に実施し得るかを査定または予測するための良好な指標である。

レクチンに対する結合能力測定は、適切な比率のこのような媒体の混合物を生成させるために使用されてもよく、次に、これは、１つのクロマトグラフィーステップにおいて試料から血液型Ａ抗原抗体と血液型Ｂ抗原抗体の両方を除去するために使用することができる。

これは、一般的に、血液型Ａ抗原抗体および血液型Ｂ抗原抗体の量が試料ごとに変化する傾向があるため、特に有用である。したがって、ある試料からこのような抗体の除去について十分に機能し得る媒体の混合物は、別の試料の場合にも同様に機能しない可能性がある。

本明細書に記載される方法は、その試料中の抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体の量を単に知ることによって、試料について十分に機能する媒体の混合物を設計するために使用することができる。

例えば、ＨＰレクチンおよびＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の結合能力は、それぞれ、試料から抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体の除去と相関するため、試料中の抗Ａ抗体および抗Ｂ抗体のレベルまたは量が判ると、媒体の混合物は、試料から所望量の抗Ａ抗体および／または抗Ｂ抗体を除去するのに適した血液型Ａ抗原媒体と血液型Ｂ抗原媒体の比率を有するように設計され得る。

本明細書は、参照により本明細書に組み込む、本明細書中で引用される参考文献の教示を考慮することによって最も完全に理解される。本明細書中の実施形態は、実施形態の例証を提供するものであり、範囲を限定するものと解釈すべきでない。当業者（熟練者）は、他の多くの実施形態が本明細書に包含されることを容易に認識する。全ての刊行物および参考資料を、参照によりその全体を組み込む。参照により組み込む材料が本明細書と矛盾するまたは相反する範囲まで、本明細書は任意のこのような材料に取って代わる。本明細書の任意の文献の引用は、このような文献が先行技術であると認めるものではない。

特記しない限り、成分量、細胞培養、処理条件などを表している、特許請求の範囲を含んだ本明細書中で使用される全ての数字は、全ての場合に用語「約」により修飾されているものと解釈すべきである。したがって、反対のことを特記しない限り、数値パラメーターは、近似値であり、本明細書に開示される実施形態によって得ようとする所望の特性に応じて変動することができる。特記しない限り、一連の要素に先行する用語「少なくとも」は、一連のあらゆる要素を指すと解釈すべきである。当業者は、通常の実験を超えない実験を使用して、本明細書に記載される特定の実施形態に対する多くの均等物を認識し、または確認することができる。このような均等物は、以下の特許請求の範囲に包含されると解釈される。

本明細書に開示されている実施形態の多数の修飾および変更は、当業者に明らかであるように、その精神および範囲から逸脱することなしに行うことができる。本明細書に記載の特定の実施形態は、例としてのみ提供され、いかなる方法でも限定するものでない。明細書および実施例は、以下の特許請求の範囲によって示される開示の真の範囲および精神とともに、単なる例示としてみなされることが意図される。

Claims (23)

1. 固相支持体に付着された血液型Ａ抗原リガンドを含有する２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質を比較するための方法であって、
   （ａ）前記媒体試料の各々について、既知濃度Ｃ１と体積ＶＭの精製されたＨＰレクチン、および体積ＶＲのアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の溶液を用意するステップ；
   （ｂ）（ａ）の溶液とともに各々のクロマトグラフィー媒体試料をインキュベートするステップ；
   （ｃ）各々のクロマトグラフィー媒体試料について上清を得て、前記上清中の精製されたＨＰレクチンの濃度Ｃ２を測定するステップ；
   （ｄ）前記精製されたレクチンに対する各々のクロマトグラフィー媒体試料の静的結合能力を決定するステップ
   を含み、前記静的結合能力が、式
   

   

   を用いて測定され、前記媒体試料の静的結合能力は、試料から抗Ａ抗体を除去する媒体試料の能力と相関し、それにより、２つ以上の異なるアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質の比較を与える、方法。
2. 固相支持体に付着された血液型Ｂ抗原リガンドを含有する２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質を比較するための方法であって、
   （ａ）前記媒体試料の各々について、既知濃度Ｃ１と体積ＶＭの精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチン、および体積ＶＲのアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の溶液を用意するステップ；
   （ｂ）（ａ）の溶液とともに各々のクロマトグラフィー媒体試料をインキュベートするステップ；
   （ｃ）各々のクロマトグラフィー媒体試料について上清を得て、前記上清中のＧＳＩ−Ｂ４レクチンの濃度Ｃ２を測定するステップ；
   （ｄ）前記精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する各々のクロマトグラフィー媒体試料の静的結合能力を決定するステップ
   を含み、前記静的結合能力が、式
   

   

   を用いて測定され、前記媒体試料の静的結合能力は、試料から抗Ｂ抗体を除去する媒体試料の能力と相関し、それにより、２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料の品質の比較を与える、方法。
3. 固相支持体が、ポリビニルエーテル、ポリビニルアルコール、ポリメタクリレート、ポリアクリレート、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミドおよびポリカーボネートからなる群から選択されるポリマーを含む多孔質または非多孔質ポリマーの固相支持体である、請求項１に記載の方法。
4. 固相支持体が、ポリビニルエーテル、ポリビニルアルコール、ポリメタクリレート、ポリアクリレート、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミドおよびポリカーボネートからなる群から選択されるポリマーを含む多孔質または非多孔質のポリマーの固相支持体である、請求項２に記載の方法。
5. 固相支持体が、ポリビニルエーテル系多孔質固相支持体である、請求項１に記載の方法。
6. 固相支持体が、ポリビニルエーテル系多孔質固相支持体である、請求項２に記載の方法。
7. ポリビニルエーテル系多孔質固相支持体がビーズ形態である、請求項５に記載の方法。
8. ポリビニルエーテル系多孔質固相支持体がビーズ形態である、請求項６に記載の方法。
9. 精製されたＨＰレクチンに対する血液型Ａ抗原リガンド媒体の結合能力が、試料から抗Ａ抗体を除去する能力と相関する、請求項１に記載の方法。
10. 精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する血液型Ｂ抗原リガンド媒体の結合能力が、試料から抗Ｂ抗体を除去する能力と相関する、請求項２に記載の方法。
11. ２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料が、異なるバッチの同じ媒体を構成する、請求項１に記載の方法。
12. ２つ以上のアフィニティークロマトグラフィー媒体試料が、異なるバッチの同じ媒体を構成する、請求項２に記載の方法。
13. 異なるアフィニティークロマトグラフィー媒体試料が、異なる使用段階で同じ媒体を構成する、請求項１に記載の方法。
14. 異なるアフィニティークロマトグラフィー媒体試料が、異なる使用段階で同じ媒体を構成する、請求項２に記載の方法。
15. 試料が、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体およびＩＶＩＧ原料からなる群から選択される、請求項１１に記載の方法。
16. 試料が、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体およびＩＶＩＧ原料からなる群から選択される、請求項１２に記載の方法。
17. 試料が、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体およびＩＶＩＧ原料からなる群から選択される、請求項１３に記載の方法。
18. 試料が、血液、血液製剤、血漿、血漿誘導体およびＩＶＩＧ原料からなる群から選択される、請求項１４に記載の方法。
19. 濃度測定が、２８０ｎｍの吸光度を測定することを含む、請求項１に記載の方法。
20. 濃度測定が、２８０ｎｍの吸光度を測定することを含む、請求項２に記載の方法。
21. 酸性条件またはアルカリ性条件への曝露後に媒体の品質を査定するための方法であって、
    （ａ）固相支持体に付着された血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドのいずれかを有するクロマトグラフィー媒体を用意するステップ；
    （ｂ）血液型Ａ抗原抗体の場合において精製されたＨＰレクチンに対する媒体、または血液型Ｂ抗原抗体の場合において精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の結合能力を測定するステップ；
    （ｃ）少なくとも５時間、酸性条件またはアルカリ性条件に媒体を曝露するステップ；
    （ｄ）血液型Ａ抗原抗体の場合において精製されたＨＰレクチンに対する媒体、または血液型Ｂ抗原抗体の場合において精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の結合能力を測定するステップ
    を含み、（ｂ）と比較して（ｄ）における媒体の結合能力の低下は、媒体の品質が酸性条件またはアルカリ性条件への曝露後に減少したことを示す、方法。
22. 媒体の品質の減少は、抗Ａ抗体または抗Ｂ抗体を除去する媒体の能力の低下を含む、請求項２１に記載の方法。
23. 媒体が血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むかどうかを決定するための方法であって、
    （ａ）媒体が血液型Ａ抗原リガンドまたは血液型Ｂ抗原リガンドを含むかどうかが未知である媒体を用意するステップ；
    （ｂ）精製されたＨＰレクチンについて、および別に精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンについて未知の媒体の結合能力を測定するステップ；
    （ｃ）精製されたＨＰレクチンおよび精製されたＧＳＩ−Ｂ４レクチンについて未知の媒体の結合能力を比較するステップ
    を含み、未知の媒体は、ＨＰレクチンに対する媒体の結合能力が、ＧＳＩ−Ｂ４レクチン対する結合能力より大きい場合、血液型Ａ抗原リガンドを含むものと決定され、未知の媒体は、ＧＳＩ−Ｂ４レクチンに対する媒体の結合能力が、ＨＰレクチンに対する結合能力より大きい場合、血液型Ｂ抗原リガンドを含むものと決定される、方法。

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