JP6286050B2 - トリインフルエンザウイルスのmiRNAとその同定、検出および使用 - Google Patents
トリインフルエンザウイルスのmiRNAとその同定、検出および使用 Download PDFInfo
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Description
人類のインフルエンザウイルスはいずれもトリのインフルエンザを引き起こせるが、すべてのトリインフルエンザウイルスが人類のインフルエンザを引き起こせるわけではなく、トリインフルエンザウイルスの中では、H5、H7、H9はヒトに伝染することができ、中でも、H5は高高病原性で、H5N1はトリインフルエンザウイルスの一つの亜型である。H5N1は衛生部の新伝染病防治法に規定される報告すべき法定伝染病で、ヒト感染高病原性トリインフルエンザとも呼ばれる。トリインフルエンザは、その病原性によって高病原性と低病原性に分かれる。H5N1は高病原性トリインフルエンザウイルスである。
現在、当該疾患にはまだ効率的で特異的な治療方法がなく、ワクチンの接種はいま比較的に有効な予防措置と重要なポイントである。そのため、安全で、効率的で、低価格の新型ワクチンの開発はいまトリインフルエンザの予防対策の注目点の一つで、ワクチンの開発は既に大量の研究成果があげられた。しかし、ウイルスの変異速度が早く、変異種の種類が多く、現在のワクチンの開発速度は有効にウイルスの変異種に対抗することが保証できないため、H5N1の侵入過程のさらなる研究および新たな治療方法の開発がもっと切望されている。
関連研究では、既に、ウイルスまたは微生物は、宿主細胞に感染した後、特異的なmiRNAをコードし、特異的なmiRNAが宿主の免疫関連mRNAに作用し、宿主のサイトカイン系を調節し、そして宿主の免疫調節に影響することがわかった。
このように、より有効にトリインフルエンザを予防・治療するために、本分野ではトリインフルエンザの検出および治療に用いられる関連の試薬および方法の開発が切望されている。
(i) 配列が配列番号1、2または3で示されるmiRNA、或いは
(ii)長さが20〜26 ntで、かつ配列番号4で示されるコア配列を有するmiRNA、あるいは
(iii)(i)または(ii)における前記miRNAのヌクレオチド配列に相補的なmiRNA、
から選ばれるmilRNAを提供する。
もう一つの好適な例において、前記の相補的なものは、基本的に相補的なもの(相補的ではない塩基が≦3個、好ましくは≦3個、より好ましくは1個のもの)と完全に相補的なものを含む。
もう一つの好適な例において、前記のmiRNAは、トリインフルエンザウイルスH5N1由来のものである。
もう一つの好適な例において、前記のmiRNAは、ヒトまたはヒト以外の哺乳動物の血液、体液、または組織のサンプルから単離されたものである。
もう一つの好適な例において、前記の血液は、血漿および/または血清である。
もう一つの好適な例において、前記のヒト以外の哺乳動物は、マウス、ラット、ウサギ、ブタ、ウシ、ヒツジなどである。
もう一つの好適な例において、前記のmiRNAは、ヒトから単離されたものである。
もう一つの好適な例において、前記の動物細胞は、ヒトの細胞を含む。
もう一つの好適な例において、前記のヌクレオチドは、式Iで表される構造を有し、
Seqフォワード-X-Seqリバース 式I
(式Iにおいて、
Seqフォワードは、動物細胞において前記のmiRNAとして発現されるヌクレオチド配列である。
Seqリバースは、Seqフォワードに基本的にまたは完全に相補的なヌクレオチド配列である。
Xは、SeqフォワードとSeqリバースの間にあるスペーサー配列で、かつ前記ペーサー配列はSeqフォワードおよびSeqリバースに相補的なものではない。)
|| は、SeqフォワードとSeqリバースの間に形成された相補的塩基の対合関係を表す。)
本発明の第四では、本発明の第一に記載のmiRNA、または本発明の第二に記載のポリヌクレオチドを含むベクターを提供する。
もう一つの好適な例において、前記のPCBP2の発現または活性を調節する調節剤は、PCBP2の発現または活性を下方調節する阻害剤である。
もう一つの好適な例において、前記サイトカインは、TNFα、IFN-β、IL-6、IL-1β、またはこれらの組み合わせを含む。
固相担体と、
前記固相担体に規則正しく固定化された、特異的に本発明の第一に記載のmiRNAを捕獲するオリゴヌクレオチドプローブと、
を含む核酸チップ(たとえばmiRNAチップ)を提供する。
本発明の第七では、トリインフルエンザを検出するキットの製造に用いられる、本発明の第六に記載の核酸チップの使用を提供する。
本発明の第八では、本発明の第七に記載の核酸チップまたは本発明の第一に記載のmiRNAを含むキットを提供する。
もう一つの好適な例において、前記の阻害剤は、miRNAスポンジ(sponge)、miRNAの配列に相補的なアンチセンス核酸、小分子化合物である。
もう一つの好適な例において、前記の阻害剤は、(i)または(ii)に記載のmiRNAのヌクレオチド配列に相補的な核酸(たとえばRNA、DNAまたは類似体)である。
本発明の第十一では、薬学的に許容される担体と、本発明の第一に記載のmiRNAを特異的に抑制または遮断する阻害剤とを含む薬物組成物を提供する。
もう一つの好適な例において、前記のmiRNAの阻害剤は、miRNAスポンジ(sponge)、miRNAの配列に相補的なアンチセンス核酸を含む。
(a)テスト群とコントロール群を提供し、前記テスト群では、候補物質をテスト群の細胞または動物に施用し、かつ使用後の前記テスト群におけるmiR-HA-3pの発現レベルを測定し、一方、前記のコントロール群では、テスト群と同様の条件を使用するが、候補物質をコントロール群の細胞または動物に施用しない工程と、
(b)テスト群のmiR-HA-3pとコントロール群のmiR-HA-3pの発現レベルを比較する工程と、
を含み
ここで、テスト群のmiR-HA-3pの発現レベルがコントロール群のmiR-HA-3pの発現レベルよりも顕著に低い場合、当該候補物質はトリインフルエンザの治療に用いられる候補薬物であることを示す、
方法を提供する。
もう一つの好適な例において、前記の動物はマウスを含み、前記の細胞は体外で培養された細胞を含む。
本発明の第十三では、PCBP2の発現または活性を下方調節する調節剤あるいは薬物組成物の製造に用いられる、miR-HA-3pの使用を提供する。
もう一つの好適な例において、前記のmiR-HA-3pの配列は、配列番号1〜3で示されるようなものである。
本発明者は、長期間にわたって幅広く研究したところ、体内の病原体(感染微生物、寄生微生物、共生微生物などを含み、たとえばウイルス、細菌、古細菌、クラミジア、原生生物)がmiRNAを含む非コードRNA(non-coding RNA、ncRNA)を放出し、これらの特定のncRNAは体内の病原体のバイオマーカーとし、有効に体内の病原体の検出と治療に使用することで、微生物感染症の診断と治療を顕著に改善できることを初めて意外に見出した。これに基づき、本発明を完成させた。
ここで用いられるように、用語「本発明のmiRNA」、「トリインフルエンザH5N1の特異的miRNA」は、入れ替えて使用することができ、miR-HA-3pを指し、miR-HA-3p-1、miR-HA-3p-2、miR-HA-3p-3およびそのコア配列(配列番号4)を有する類似のmiRNAを含む。
ここで用いられるように、用語「阻害剤」、「拮抗剤」および「遮断剤」は、意味が同様で、入れ替えて使用することができる。
ここで用いられるように、用語「miR-HA-3p遮断剤」、「本発明の遮断剤」、「本発明の阻害剤」とは、miR-HA-3pの機能を抑制または遮断する物質を指し、たとえばアンチセンス配列や核酸スポンジなどが挙げられる。これらの阻害剤は、miR-HA-3pとPCBP2のmRNAの結合を抑制し、そしてmiR-HA-3pの標的遺伝子PCBP2の発現に対する下方調節を抑制することができる。
Agomirおよびantagomirは、提供された短鎖RNAの配列に基づき、通常の方法で設計・合成することができる。
ここで用いられるように、用語「Ago2」とは、argonaute RISC catalytic component 2を指す。Ago2は、RISC複合体を構成する主要成分で、干渉性短鎖RNAが仲介する遺伝子サイレンシング(short-interfering-RNA-mediated gene silencing)に関与する。
本発明は、トリインフルエンザウイルス由来の新しい種類のmiRNAを提供する。ここで用いられるように、前記の「miRNA」とは、RNA分子で、miRNA前駆体を形成できる転写物から加工して得られる。成熟のmiRNAは、通常、18〜26個のヌクレオチド(nt)を有する(特に約19〜22 nt)が、ほかの数のヌクレオチドを有するmiRNA分子もある。miRNAは、通常、ノーザンブロッティングによって検出することができる。
ここで用いられるように、「単離された」とは、物質がその本来の環境から単離されたこと(天然の物質の場合、本来の環境は天然の環境である)を指す。たとえば、活細胞内の天然の状態におけるポリヌクレオチドとポリペプチドは単離・精製されていないが、同様のポリヌクレオチドまたはポリペプチドが天然の状態から存在するほかの物質とわかれると、単離・精製されたものになる。
本発明によって提供されるmiRNA配列に基づき、そのアンチセンスオリゴヌクレオチドを設計し、前記のアンチセンスオリゴヌクレオチドは体内で相応のmiRNAの発現を下方調節する。ここで用いられるように、「アンチセンスオリゴヌクレオチド(antisense-oligonucleotides、AS-OnまたはASO)」は、「アンチセンスヌクレオチド」とも呼ばれ、長さが約18〜26 nt(特に約19〜22 nt)のDNA分子またはRNA分子またはその類似体を指す。
本発明の好適な様態として、アンチセンスオリゴヌクレオチドに対してロックド核酸修飾を行い、好ましくはさらに硫黄化修飾を行う。
本発明に係るアンチセンスオリゴヌクレオチドを動物(たとえばトリインフルエンザ患者)の体内に導入すると、関連miRNAの発現を顕著に下方調節する。
本発明によって提供されるmiRNA配列に基づき、導入された後加工されて相応のmRNAの発現に影響するmiRNAになるようなポリヌクレオチド構築物を設計することができ、すなわち、前記ポリヌクレオチド構築物は体内で相応のmiRNAの量を上方調節することができる。そのため、本発明は、単離されたポリヌクレオチド(構築物)であって、ヒト細胞によって前駆体miRNAに転写され、前記の前駆体miRNAがヒト細胞内によって切断され、かつ前記のmiRNAとして発現される、ポリヌクレオチドを提供する。
Seqフォワード-X-Seqリバース 式I
(式Iにおいて、
Seqフォワードは、細胞において前記のmiRNAとして発現されるヌクレオチド配列で、Seqリバースは、Seqフォワードに基本的に相補的なヌクレオチド配列である。あるいは、Seqリバースは、細胞において前記のmiRNAとして発現されるヌクレオチド配列で、Seqフォワードは、Seqフォワードに基本的に相補的なヌクレオチド配列である。
Xは、SeqフォワードとSeqリバースの間にあるスペーサー配列で、かつ前記ペーサー配列はSeqフォワードおよびSeqリバースに相補的なものではない。)
|| は、SeqフォワードとSeqリバースの間に形成された相補的塩基の対合関係を表す。)
通常、前記のポリヌクレオチド構築物は、発現ベクターにある。そのため、本発明は、さらに、前記のmiRNA、または前記ポリヌクレオチド構築物を含むベクターを含む。前記の発現ベクターは、通常、さらにプロモーター、複製起点および/またはマーカー遺伝子などを含む。当業者に熟知の方法は、本発明に必要な発現ベクターの構築に使用することができる。これらの方法は、体外組換えDNA技術、DNA合成技術、体内組換え技術などを含む。
前記の発現ベクターは、好ましくは1つまたは2つ以上の選択性マーカー遺伝子を含み、形質転換された宿主細胞を選択するための形質、たとえばカナマイシン、ゲンタマイシン、ハイグロマイシン、アンピシリン耐性を提供する。
また、本発明は、トリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザを検出するキットであって、本発明の検出試薬、または検出チップを含むキットを提供する。前記のキットは、本発明のトリインフルエンザの特異的なmiRNAの発現プロファイルの検出、あるいはトリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザの検出に使用することができ、好ましくは、前記のキットは、さらに、RNAサンプルを標識するための標識物、および前記標識物に相応する基質を含む。
また、前記のキットは、さらに、RNAの抽出、PCR、ハイブリダイゼーション、呈色などに必要な様々な試薬を含んでもよく、抽出液、増幅液、ハイブリダイゼーション液、酵素、コントロール液、呈色液、洗浄液、抗体などを含むが、これらに限定されない。
また、前記のキットは、さらに、使用説明書および/またはチップ画像分析ソフトを含んでもよい。
microRNAの発現プロファイルチップは、通常、百、千またはそれ以上のプローブを含み、複数種類のmicroRNAに関し、二本鎖の相同対合の原理で標本に含まれる各種のmicroRNAの含有量を検出する。そのため、一回で標本におけるmicroRNAの転写レベルを測定することができる。
本発明に係るmiRNA配列では、相応のmiRNAチップを製造し、さらにその発現プロファイルおよびmiRNAの調節方式を研究することができる。
一方、本発明は、さらに、miRNAの発現プロファイルを分析するためのチップであって、トリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザの検出に使用できるチップを提供する。
具体的に、本発明に係るmiRNAに基づき、適切なプローブを設計し、固相担体に固定化し、「オリゴヌクレオチドアレイ」を形成することができる。前記の「オリゴヌクレオチドアレイ」とは、アドレス指定可能な位置(すなわち区別可能なアクセスできるアドレスを特徴とする位置)を有するアレイで、各アドレス指定可能な位置はいずれもそれに連結する特徴的なオリゴヌクレオチドを1つ含む。必要により、オリゴヌクレオチドアレイをいくつかのサブアレイに分けてもよい。
前記のmiRNAチップの製造は、本分野で既知のバイオチップの通常の製造方法を使用してもよい。たとえば、固相担体を修飾されたガラスシートまたはシリコンシートとする場合、プローブの5’末端にアミノ基で修飾されたポリdT鎖が含まれ、オリゴヌクレオチドプローブを溶液とした後、スポッターでそれを修飾されたガラスシートまたはシリコンシートにスポットし、所定の配列またはアレイに並べた後、一晩置いて固定化させることで、本発明のmiRNAチップが得られる。
その後、標識シグナルのmiRNAチップにおける位置、強度などの情報から測定したい情報を獲得する。増幅産物を蛍光基で標識する場合、直接蛍光検出装置(たとえば共焦点レーザー走査装置Scanarray 3000など)で測定したい情報を獲得してもよい。
また、本発明は、薬学的に許容される担体あるいは有効量の本発明のmiRNA(たとえばmiR-HA-3p)の阻害剤、遮断剤または拮抗剤を含む薬物組成物を提供する。
ここで用いられるように、用語「有効量」または「有効投与量」とは、ヒト及び/又は動物に機能や活性があり、且つヒト及び/又は動物にとって受けられる量である。
ここで用いられるように、「薬学的に許容される」成分は、ヒト及び/又は動物(たとえば哺乳動物や鳥類)に適用する場合、過度の不良な副反応(例えば毒性、刺激とアレルギー反応)がない、すなわち、合理的なベネフィット/リスク比を持つ物質である。用語「薬学的に許容される担体」とは、治療剤の給与のための担体で、各種の賦形剤と希釈剤を含む。
また、本発明は、トリインフルエンザを治療し、トリインフルエンザの症状を緩和し、宿主動物におけるトリインフルエンザウイルスの数を減少し、トリインフルエンザの死亡率を低下させる薬物の製造、過剰な免疫の減少などに用いられる、前記薬物組成物の使用を提供する。
(a)本発明は、一種類のトリインフルエンザH5N1ウイルスの特異的なmicroRNA、すなわちmiR-HA-3pを提供する。
(b)本発明のmiRNAは、トリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザを検出するマーカーとして、非常に有効にトリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザを検出することができる。
(c)本発明のmiRNAは、トリインフルエンザを治療する標的として、本発明のmiRNAに対する阻害剤(または遮断剤)を使用することによって、H5N1ウイルスによる疾患の標的治療を行うこともできる。
まず、コンピューターモデル構築によって、H5N1によってコードされるmiRを選別した。リアルタイム定量PCRによって選別されたmiRのH5N1に感染された数種類の細胞における発現レベルを検出した。RNAブロット法によってmiR-HA-3pの発現レベルを検証した。
1).コンピューターモデル構築ソフトによって、構造と類似度に基づき、未知のmiRNA前駆体と既知のmiRNA前駆体を比較する方法で、H5N1インフルエンザウイルスの4種類の亜型(H1N1、H3N2、H5N1およびH9N2)に対して上記比較を行い、18個の候補のH5N1によってコードされる特殊なmiRNA前駆体を得て相応のmiRNAを予測した。18個の候補のmiRNAに対してリアルタイム定量PCRを行うことによってH5N1感染細胞に予測したmiRNAが含まれるか検出し、使用されたRNAサンプルはH5N1に感染されたHEK293A、HEK293T、A549およびMDCK細胞から抽出されたものである。miRNAの発現量の検出は、U6を内部参照遺伝子とした。
3).RNAブロット法によって再び標的miRNAのH5N1感染細胞における発現量を検出した。
4).RNAブロット法によってmiR-HA-3pが特定のH5N1インフルエンザウイルスだけに存在するものではないことが証明され、本発明者はH5N1に感染されたA549細胞の小さいRNA断片(<200 nt)を抽出し、これらの断片でmiR-HA-3pに相応するプローブとハイブリダイゼーションした。
具体的な結果は図1に示す。
1).図1Aは、予測されたH5N1のmiRNA前駆体のステム・ループ構造の二次構造を示す。予測はMfoldで行われ、予測された成熟miRNAの5’末端と3’末端はそれぞれ赤と青で示した。図1Aの結果から、3つの予測された前駆体のうち、一つはHA断片によってコードされ、ほかの二つはPA断片によってコードされることがわかる。各候補miRNAはいずれも特異的な安定したヘアピン構造にフォルディングすることができる。
ここで、miR-HA-3pは、以下の3種類の具体的な配列がある。
miR-HA-3p-1: AGGACUAUUUGGAGCUAUAGCA (配列番号1)
miR-HA-3p-2: GGACUAUUUGGAGCUAUAGCAG (配列番号2)
miR-HA-3p-3:GAGGACUAUUUGGAGCUAUAGC (配列番号3)
上記3種類のmiRNAのコア配列は、GGACUAUUUGGAGCUAUAGC(配列番号4)である。
3).図1Eは、RNAブロット法によって分析されたA549細胞を複合感染して24時間後のmiR-HA-3pとmiR-PA1-3pの発現レベルを示し、一番左はマーカーである。図1Eから〜80-nt miR-HA-3p前駆体miRNAと22-nt成熟miR-HA-3pはH5N1に感染されたA549細胞に迅速に検出することができたことがわかる。〜100-nt前駆体miR-PA1-3p RNAも検出できたが、成熟のmiR-PA1-3pが検出されなかった。RNAブロット法の結果はリアルタイム定量PCRの結果と一致する。
上記多群実験の結果によって、H5N1が宿主細胞に感染した後、特殊な小分子のmiR-HA-3pを放出し、それが宿主の体内循環に入り、かつmiR-HA-3pの発現量とウイルスの感染程度が正相関することが証明された。
本実施例において、miR-HA-3pの標的サイトを予測・検証した。マウスとヒトのPCBP2突然変異株を構築し、ルシフェラーゼ活性を検出することによってPCBP2とmiR-HA-3p量の関係を検出した。ウェスタンブロッティングによって標的遺伝子に相応するタンパク質の発現量とmiR-HA-3p量の関係を検出した。
1).コンピューターモデル構築方法によってmiR-HA-3pの標的サイトを予測した。
2).miR-HA-3pがPCBP2の発現を調節するか検出するため、それぞれマウスとヒトのPCBP2突然変異株を構築した後、agomir-HA-3p(miR-HA-3p作動剤)とagomir-HA-3p(M)(突然変異のmiR-HA-3p作動剤)でそれぞれPCBP2野生型と突然変異株を処理した。ルシフェラーゼ活性を検出することによってPCBP2とmiR-HA-3p量の関係を検出した。ウェスタンブロッティングによって標的遺伝子に相応するタンパク質の発現量とmiR-HA-3p量の関係を検出した。
4).miR-HA-3pがPCBP2を標的とする直接の証拠を得るため、本発明者はさらにRNAがタンパク質と結合する免疫沈殿実験を行うことによってPCBP2のmRNAとAgo2の複合体を検出し、当該複合体はRNAが誘導する沈黙複合体で、miR-16をコントロールとした。
具体的な結果は図2に示す。
1).図2Aは、miR-HA-3pとヒトおよびマウスのPCBP2のmRNAの3'末端の結合サイトを示し、図2Aから、予測によってPCBP2のmRNAがmiR-HA-3pの一つの潜在的な標的サイトであることが見出されたことがわかる。
2).図2BはヒトPCBP2遺伝子の野生型と突然変異型でトランスフェクトされたHEK293T細胞がそれぞれagomir、agomir-HA-3p、agomir-HA-3p(M)で処理された後のルシフェラーゼ活性を示す。図2Bから、ヒトモデルにおいてagomir-HA-3pが野生型PCBP2の発現量を顕著に下方調節することができたが、agomir-HA-3p(M)は上記作用がなかったことがわかる。
3).図2Dはagomir、agomir-HA-3p、agomir-HA-3p(M)で処理されたA549細胞のPCBP2タンパク質レベルのウェスタンブロッティング分析の結果を示す。図2Dの結果から、A549細胞がagomir-HA-3pにトランスフェクトされた後、PCBP2の発現が顕著に抑制されたが、agomir-HA-3p(M)でトランスフェクトされた細胞のPCBP2の発現に顕著な変化がなかったことがわかる。
図2Eはagomir、agomir-HA-3p、agomir-HA-3p(M)でA549細胞を処理した後のPCBP2のmRNAの発現レベルを示す。
miR-HA-3pのサイトカインに対する影響を検証するため、本実施例において、ヒトマクロファージを体外モデルとして以下のような実験を行った。
1).agomir、agomir-HA-3pおよびagomir-HA-3p(M)でそれぞれ分化したマクロファージを処理し、トランスフェクションの24時間後リアルタイム定量PCR法によって細胞内のmiR-HA-3pのレベルを検出した。
2).ウイルス感染過程におけるmiR-HA-3pの標的タンパク質の発現量に対する影響を検出するため、本発明者は逆遺伝学を利用して一つのH5N1ウイルス突然変異株を構築した。突然変異株の体外での複製効果を検出するため、本発明者は野生型と突然変異株の2種類のウイルスでマクロファージに対して複合感染を行った。48時間後、ウイルス力価測定実験によってウイルスの力価を検出した。
4).ウイルス感染前に、本発明者はそれぞれantagomir-HA-3p(mir-HA-3p遮断剤)とantagomir(mir遮断剤)でマクロファージを処理した。その後、ウイルス感染から24、48時間後の各処理群のPCBP2の発現レベルを検出した。
5).感染後いくつかの時点で各処理群におけるTNF-α、IL-6およびほかのサイトカイン、たとえばIFN-β、IL-1βの転写レベルを検出した。
6).感染後いくつかの時点で各処理群のマクロファージの培養物の上清液におけるTNF-α、IFN-βおよびIL-6の含有量を検出した。
具体的な結果は図3、図4、図5に示す。
1).図4Aはagomir-HA-3p突然変異配列とH5N1突然変異株の突然変異点の原理の概略図を示す。
図4Bは、エレクトロポレーションから24時間後のagomir、agomir-HA-3pまたはagomir-HA-3p(M)で処理されたマクロファージにおけるmiR-HA-3pの発現レベルを示す。図4Bの結果から、トランスフェクションから24時間後、agomir-HA-3p処理群のmiR-HA-3p含有量が顕著に上がり、agomirまたはagomir-HA-3p(M)処理群の細胞内のmiR-HA-3pのレベルが安定したことがわかる。
図4Dは、エレクトロポレーションから48時間後のagomir、agomir-HA-3pまたはagomir-HA-3p(M)で処理されたマクロファージにおけるPCBP2のmRNAの発現レベルを示す。図4Dの結果から、3つの処理群のPCBP2のmRNAレベルはいずれも顕著な変化がなかったことがわかる。
3).図3AはH5N1と突然変異株に感染されたマクロファージの感染後異なる時点におけるmiR-HA-3pの発現レベルを示す。図3Aの結果から、野生型H5N1ウイルスに感染されたマクロファージの24時間後のmiR-HA-3pの発現レベルが比較的に高く、突然変異株に感染されたマクロファージにおけるmiR-HA-3pは基本的にかわらないことがわかる。
図3CはTCID50法によって測定されたH5N1に感染された細胞の感染後異なる時点における力価を示す。
5).図3D〜Fは異なる処理群でそれぞれH5N1またはH5N1突然変異株を処理した後、細胞上清液におけるTNF-α、IFN-βおよびIL6のレベルを示す。図3D〜Fから、antagomir-HA-3p処理群では、サイトカインの濃度がantagomir処理群よりも低かったことがわかる。実際に、antagomir-HA-3p処理群のマクロファージ培養物の上清液おけるTNF-α、IFN-βおよびIL-6の含有量は突然変異株に感染されたマクロファージの相応のサイトカインの含有量に相当する。
本実施例において、構築したマウスモデルでmiR-HA-3pの体内H5N1感染によるサイトカインの調節異常における作用を検出した。主にリアルタイム定量PCR法、組織学的検出法、ELISAおよびウイルス力価測定法を使用し、方法は以下の通りである。
1).雌BALB/cマウスの鼻内にそれぞれ致死投与量のH5N1(野生型)とH5N1突然変異株を接種した後、その体重、致死率、ウイルスの複製状況およびサイトカイン重合体を検出した。ウイルス侵入から8時間後、H5N1とH5N1突然変異株を接種した2群のマウスは、各群はまた2つのグループに分け、5日連続でそれぞれmiR-HA-3p遮断剤とmiR遮断剤を注射した。
3).7つの実験群のマウスに対して組織学的検査を行った。
4).ウイルスの感染過程で生成するサイトカインがmiR-HA-3pと関係するか確認するため、感染後いくつかの時点で7つの実験群に対してTNF-α, IFN-β, IL-1βおよびIL-6の4種類のサイトカインの濃度を測定した。
実験方法1における具体的な結果は図6に示す。
図6(A、B)はH5N1または突然変異株を接種したマウスの異なる処理条件における死亡率を示す。図6(C、D)はH5N1または突然変異株を接種したマウスの異なる処理条件における体重減少程度を示す。
図6(E〜H)はELISAによって測定されたH5N1または突然変異株を接種したマウスの異なる処理条件おける肺部の4種類のサイトカイン(TNF-α (E)、IFN-β (F)、IL-1β (G)およびIL-6 (H))のレベルを示す。
1).図6Aは、接種から7日後、H5N1処理群ではマウスの死亡率が100%であったことを示し、図6Cは、H5N1処理群ではマウスは20%以上の体重減少があったことを示す。(H5N1+control antagomir)処理群では、マウスの死亡率と体重減少がH5N1処理群に相当したが、(H5N1+ antagomir-HA-3p)処理群では、マウスは7日後ある程度の体重減少があったが、死亡率が10%程度だけであった。図6Aと図6Cは、H5N1(MUT)処理群では、マウスの生存時間がH5N1処理群よりも長く、体重減少速度が遅かったことを示す。図6Bは、H5N1(MUT)処理群では、マウスはmir-HA-3p作動剤の注射を継続した後、生存率が顕著に低下したことを示し、図6Dは、H5N1(MUT)処理群では、マウスはmir-HA-3p作動剤の注射を継続した後、体重減少速度が早くなったことを示し、予想と一致したのは、図6Bでは、H5N1(MUT)処理群のマウスはmiR作動剤の注射を継続した後、生存率と体重はいずれも顕著な変化がなかったことである。
3).図7は、異なる処理条件における4日後のマウス肺部のPCBP2タンパク質のレベルを示す。図7の結果から、4日後、H5N1処理群では、マウスの肺部のPCBP2タンパク質の含有量が(H5N1+miR-HA-3p遮断剤)処理群およびH5N1(MUT)よりも低かったことがわかる。
4).図8は、組織病理学的方法による多群実験のマウス肺部組織の研究結果を示す。図8の検出結果から、miR-HA-3pを遮断すると、マウスの肺部の炎症損傷を緩和することができたことがわかる。H5N1処理群では、マウスは重度の気管支上皮細胞の壊死があり、かつ炎症反応が伴った。一方、(mir-HA-3p遮断剤+H5N1)処理群およびH5N1(MUT)処理群では、マウスは感染から4日後炎症反応が適度であった。
以上の実験結果から、mir-HA-3p遮断剤でmir-HA-3pと標的mRNAの結合を遮断することによって、H5N1感染マウスの死亡率を低下させ、かつ感染マウスの体重減少速度を緩和することができることが示された。この結論は、H5N1(MUT)処理群でも実証された。
本発明の実験結果によって、H5N1が宿主細胞に感染した後、特殊な小分子物質のmiR-HA-3pを放出し、それが宿主の体内循環に入り、かつmiR-HA-3pの発現量とウイルスの感染程度が正相関することが実証された。
また、miR-HA-3pの標的遺伝子がPCBP2で、miR-HA-3pがPCBP2のmRNAに作用することによってPCBP2タンパク質の発現を下方調節し、MAVが仲介する抗ウイルス過程の強化につながり、よってH5N1の侵入過程において過剰な免疫応答またはサイトカインストームを引き起こすことが見出された。
miR-HA-3pを遮断すると、miR-HA-3pの発現レベルを調節する目的を実現することで、H5N1ウイルスによる多くの免疫反応および組織学的病変を緩和・治療することができ、現在のH5N1の研究に基づいて新しい科学と技術の突破を完成し、H5N1の理論研究を新たな高さに上げた。
上記に基づき、本発明はさらにこのような特異的なmiRNA前駆体が数株のH5N1ウイルス単離株に存在することを実証し、これはH5N1ウイルスの変異種にもこのようなmiRNAが安定して存在することを示し、既有のワクチンはH5N1を予防する目的だけが果たせるが、H5N1ウイルスの変異が早く、ワクチンの開発速度は間に合わない。本発明では、miR-HA-3p遮断剤を利用してH5N1ウイルスによる疾患の標的治療を行う方法は、創造的な方法で、人類のH5N1ウイルスおよびその突然変異株への対抗に新しい考え方、新しい方法を提供した。
本発明に係るmiRNAの使用は、(a)トリインフルエンザを検出する試薬、検出チップまたはキットの製造、(b)PCBP2の発現または活性を調節する調節剤の製造、(c)サイトカインの発現を調節する試薬の製造に用いられる。
ここで、トリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザを検出する核酸チップは、固相担体と、前記固相担体に規則正しく固定化された、特異的に本発明に係るmiRNAを捕獲するオリゴヌクレオチドプローブとを含む。
さらに、本発明に係る核酸チップの使用は、トリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザを検出するキットの製造に用いられる。トリインフルエンザウイルスまたはトリインフルエンザを検出するキットは、本発明に係る核酸チップまたは本発明に係るmiRNAを含む。
トリインフルエンザウイルス感染の診断、治療効果の評価、および薬物の活性成分の選別、薬物の効果の評価に用いられるmiRNAキットの製作プロセスと操作手順は、定量および半定量のPCR技術とバイオチップ技術に基づくものである。
各文献がそれぞれ単独に引用されるように、本発明に係るすべての文献は本出願で参考として引用する。また、本発明の上記の内容を読み終わった後、この分野の技術者が本発明を各種の変動や修正をすることができるが、それらの等価の様態のものは本発明の請求の範囲に含まれることが理解されるはずである。
Claims (13)
- 単離されたmiRNAであって、
(i) 配列が配列番号1、2または3で示されるmiRNA、あるいは
(ii) 長さが20〜22 ntで、かつ配列番号4で示されるコア配列を有するmiRNA、あるいは
(iii) (i)または(ii)における前記miRNAのヌクレオチド配列に相補的なmiRNA、 から選ばれるmiRNA。 - miRNAは、トリインフルエンザウイルス由来のものである請求項1に記載のmiRNA。
- miRNAは、トリインフルエンザウイルスH5N1由来のものである請求項2に記載のmiRNA。
- 単離された前駆体miRNAまたは人工的に構築された前駆体miRNAであって、動物細胞内において切断され、請求項1〜3のいずれか一項に記載のmiRNAとして発現される、前駆体miRNA。
- 単離されたポリヌクレオチドであって、動物細胞によって前駆体miRNAに転写され、前記の前駆体miRNAがヒト細胞内において切断され、請求項1〜3のいずれか一項に記載のmiRNAとして発現される、ポリヌクレオチド。
- ポリヌクレオチドは、式Iで表される構造を有し、
Seqフォワード-X-Seqリバース 式I
(式Iにおいて、
Seqフォワードは、動物細胞において前記のmiRNAとして発現されるヌクレオチド配列である。
Seqリバースは、Seqフォワードに基本的にまたは完全に相補的なヌクレオチド配列である。
Xは、SeqフォワードとSeqリバースの間にあるスペーサー配列で、かつ前記ペーサー配列はSeqフォワードおよびSeqリバースに相補的なものではない。)
かつ式Iで表される構造は、ヒト細胞に導入された後、式IIで表される二次構造になる、
|| は、SeqフォワードとSeqリバースの間に形成された相補的塩基の対合関係を表す。)
請求項5に記載のポリヌクレオチド。 - 請求項1または2に記載のmiRNA、あるいは請求項5または6に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
- (a)トリインフルエンザを検出する試薬、検出チップまたはキットの製造、(b)PCBP2の発現または活性を調節する調節剤の製造、(c)サイトカインの発現を調節する試薬の製造における請求項1〜3のいずれか一項に記載のmiRNAの使用。
- 固相担体と、
前記固相担体に規則正しく固定化された、特異的に請求項1〜3のいずれか一項に記載のmiRNAを捕獲するオリゴヌクレオチドプローブと、
を含む核酸チップ。 - 請求項9に記載の核酸チップまたは請求項1〜3のいずれか一項に記載のmiRNAを含むキット。
- 阻害剤の、(a)トリインフルエンザを治療する薬物、(b)トリインフルエンザの症状を緩和する薬物、(c)宿主動物におけるトリインフルエンザウイルスの数を減少する薬物、(d)トリインフルエンザの死亡率を低下させる薬物、(e)過剰な免疫を減少する薬物の製造における使用であって、前記阻害剤は、配列番号1-3に示される配列を有するmiRNAのアンチセンスオリゴヌクレオチドである、
前記使用。 - 薬学的に許容される担体と、miRNAを特異的に抑制または遮断する阻害剤とを含む薬物組成物であって、前記阻害剤は、配列番号1-3に示される配列を有するmiRNAのアンチセンスオリゴヌクレオチドである、
前記薬物組成物。 - トリインフルエンザの治療に用いられる候補薬物を選別する方法であって、
(a)テスト群とコントロール群を提供し、前記テスト群では、候補物質をテスト群の細胞または動物に施用し、かつ使用後の前記テスト群におけるmiR-HA-3pの発現レベルを測定し、一方、前記のコントロール群では、テスト群と同様の条件を使用するが、候補物質をコントロール群の細胞または動物に施用しない工程と、
(b)テスト群のmiR-HA-3pとコントロール群のmiR-HA-3pの発現レベルを比較する工程と、
ここで、テスト群のmiR-HA-3pの発現レベルがコントロール群のmiR-HA-3pの発現レベルよりも顕著に低い場合、当該候補物質はトリインフルエンザの治療に用いられる候補薬物であることを示し、miR-HA-3pは、配列番号1-3に示される配列を有する、
を含む方法。
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