JP6150349B2 - タンパク質の合成方法、およびタンパク質の合成キット - Google Patents
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Description
本明細書において「無細胞タンパク質合成系」とは、細胞抽出液を用いて、試験管等の人工容器内で転写および翻訳の反応系を再構成してタンパク質を合成させる系である。細胞抽出液は、細胞内に含まれる、DNAを鋳型としたRNAの転写に必要な因子、およびタンパク質の翻訳に必要な因子を、細胞を破砕して抽出液として取り出したものである。すなわち、本明細書において「タンパク質合成用」とは、RNAにコードされた情報に基づくタンパク質の合成のみならず、DNAを鋳型とした、タンパク質の合成に用いられるRNAの合成をも含むことを意図している。
本発明に係るタンパク質の合成方法では、アデノシン、グアノシン、ウリジンおよびシチジンのうちの少なくとも何れか1種のリボヌクレオシドが、タンパク質合成用の細胞抽出液を含む反応液に添加される。
(反応式1)
鋳型DNAとしては、発現させたい所望のタンパク質をコードする遺伝子配列と、適当な発現制御領域とが含まれている二本鎖DNAであればよく、直鎖状および環状の何れの形態であってもよい。
本発明の方法において、細胞抽出液を含む反応液には、さらにエネルギー再生系の成分を添加することが好ましい。エネルギー再生系の成分に制限はなく、例えば、クレアチンキナーゼとクレアチンリン酸との組合せ、およびホスホエノールピルビン酸とピルビン酸キナーゼとの組合せ等によるATP再生系が使用可能である。クレアチンキナーゼおよびピルビン酸キナーゼは何れもADPをATPに再生する酵素であり、それぞれクレアチンリン酸およびホスホエノールピルビン酸を基質として必要とする。ホスホエノールピルビン酸とピルビン酸キナーゼとの組合せ等の系を効率的に動かすにはNADおよびCoAの2つの補酵素を加える必要がある。一方、クレアチンキナーゼとクレアチンリン酸との組合せの系では、これらの補酵素は不要である。そのため、クレアチンキナーゼとクレアチンリン酸との組合せを用いることが特に好ましい。
反応液には、細胞抽出液、鋳型DNAおよびリボヌクレオシド、ならびにクレアチンキナーゼおよびホスホエノールピルビン酸等のエネルギー再生系のほかに、緩衝液、塩類、基質となるアミノ酸、核酸分解酵素阻害剤、抗菌剤、還元剤、ポリエチレングリコール、cAMP、葉酸類、RNAポリメラーゼおよびtRNA等を含むことができる。
細胞抽出液およびリボヌクレオシド、ならびに必要に応じて、緩衝液および塩類等のその他の成分は、使用しやすいように一定量ごと分注して製品として配送することができる。これらの製品は凍結または乾燥状態で保存することができ、保存および輸送に適した容器に収容してキットとして販売することができる。キットには取扱説明書および陽性コントロールDNA等を添付することができる。すなわち、本発明に係るタンパク質の合成キットは、上述のタンパク質の合成方法に使用されるキットであって、アデノシン、グアノシン、ウリジンおよびシチジンのうちの少なくとも何れか1種のリボヌクレオシドと、細胞抽出液とを含むものである。
本発明に係るタンパク質の合成方法としては、透析法およびバッチ法を適用することができる。
以上のように、本発明に係るタンパク質の合成方法は、無細胞タンパク質合成系によるタンパク質の合成方法であって、タンパク質をコードする鋳型DNAと、アデノシン、グアノシン、ウリジンおよびシチジンのうちの少なくとも何れか1種のリボヌクレオシドとを、タンパク質合成用の細胞抽出液を含む反応液に添加することを特徴とする。
(合成反応条件)
バッチ法による無細胞合成系の反応液組成は、次の通りである:60mM HEPES−KOH(pH7.5)、230mM D−グルタミン酸カリウム、2% PEG8000、3mM DTT、0.4mM アデノシン、0.4mM グアノシン、0.4mM シチジン、0.4mM ウリジン、36μg/mL フォリン酸、80mM クレアチンリン酸、150μg/mL E.coli tRNA、13mM 酢酸マグネシウム、各1.5mM タンパク質構成アミノ酸(ただしCys、Ser、Arg、Trp、Asn、およびGlnについては4.5mM)、50μg/mL クレアチンキナーゼ、100μg/mL T7RNAポリメラーゼ、4μg/mL 鋳型DNA、および24% 大腸菌S30抽出液。
CATタンパク質の合成量は、Kigawaらの方法(非特許文献:Kigawa T, YabukiT, Matsuda N, Matsuda T, Nakajima R, Tanaka A, Yokoyama S. (2004) J Struct Funct Genomics 5, 63-68)に従って、比活性の値から求めた。結果を図1に示す。
実施例1と同様にして、N末端にHisタグを融合させたEGFPタンパク質(分子量34kDa)、UBAタンパク質(分子量10kDa)、Rasタンパク質(分子量24kDa)およびβガラクトシダーゼタンパク質(分子量119kDa)の合成について比較を行った。
EGFPタンパク質、UBAタンパク質、Rasタンパク質およびβガラクトシダーゼタンパク質の鋳型DNAとして、それぞれpCR2.1 NHis−EGFP、pCR2.1 N11−UBA、pK7b2 NHis−RasおよびpUC19 N11−β−galactosidaseを用いた以外は、実施例1と同じである。これらのプラスミドは、構造遺伝子の上流に、T7プロモーターおよびリボソーム結合配列を有しており、下流に、T7ターミネーターを有している(非特許文献:Matsuda T, Kigawa T, KoshibaS, Inoue M, Aoki M, Yamasaki K, Seki M, Shinozaki K, Yokoyama S. (2006) J Struct Funct Genomics. 7(2), 93-100.参照)。
合成反応後の反応液を、12,000rpmで5分間、室温で遠心した。その上清80μLを、96穴フィルタープレート(ミリポア社)に加え、そこに60μLのAバッファー(20mM Tris−HCl pH7.5、300mM NaCl)、および予めAバッファーで平衡化した60μLの50% TALON(登録商標)樹脂(TAKARABIO社)を加えて、10分間振とうした。フィルタープレートを1500rpmで1分間遠心し、抽出液由来の夾雑タンパク質を除いた。ここで、目的のタンパク質はTALON樹脂に結合している。次に、150μLのAバッファーを加えて1500rpmで1分間遠心する洗浄工程を、3回行った。最後に、50μLのBバッファー(20mM Tris−HCl pH7.5、300mM NaCl、300mM イミダゾール)を加えて3分間振とう撹拌した後に1500rpmで1分間遠心して粗精製タンパク質を得る溶出工程を2回行った。
EGFPタンパク質、UBAタンパク質、Rasタンパク質およびβガラクトシダーゼタンパク質の各粗精製タンパク質の定量は、ウシ血清アルブミン(BSA)を標準物質として、Protein assay試薬(Bio−Rad社)を用いて、ブラッドフォード法で行った。また、粗精製タンパク質についてSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動を行い、分子量の確認を行った。結果を図2および3に示す。
添加するリボヌクレオシドの種類および量を変化させた場合のタンパク質の合成量について比較を行った。
鋳型DNAとしてpCR2.1 NHis GFP−S1を用い、4種類のリボヌクレオシドのうち、いずれか1種類、2種類または3種類を、各0.1〜1.6mM添加した以外は、実施例1と同じである。プラスミドpCR2.1 NHis GFP−S1は、GFP−S1タンパク質をコードする配列を有しており、この配列の上流にT7プロモーターおよびリボソーム結合配列を有しており、下流に、T7ターミネーターを有している(非特許文献:Seki E, Matsuda N, Yokoyama S, Kigawa T.(2008)Anal Biochem. 377(2):156-161.参照)。
反応終了後、10μLの反応液に90μLのPBSを加えて、485nm(励起光)/535nm(発光)の蛍光強度を測定することにより、GFP−S1タンパク質の合成量を評価した。結果を図4に示す。
上述の実施例1では、バッチ法によりCATタンパク質の合成を行ったが、透析法によってもCATタンパク質の合成を試みた。
透析法による無細胞合成系の内液組成は、次の通りである:60mM HEPES−KOH(pH7.5)、230mM D−グルタミン酸カリウム、4% PEG8000、3mM DTT、0.05% NaN3、アデノシン、グアノシン、シチジン、ウリジン、36μg/mL フォリン酸、80mM クレアチンリン酸、175μg/mL E.coli tRNA、10mM 酢酸マグネシウム、各1.5mM タンパク質構成アミノ酸、100μg/mL クレアチンキナーゼ、60μg/mL T7RNAポリメラーゼ、1μg/mL 鋳型DNA、および30% 大腸菌S30抽出液。また、外液組成は、次の通りである:60mM HEPES−KOH(pH7.5)、230mM D−グルタミン酸カリウム、4% PEG8000、3mM DTT、0.05% NaN3、アデノシン、グアノシン、シチジン、ウリジン、36μg/mL フォリン酸、80mM クレアチンリン酸、10mM 酢酸マグネシウム、各1.5mM タンパク質構成アミノ酸、30% 大腸菌S30バッファー。
CATタンパク質の定量方法は、実施例1と同様である。結果を図5に示す。
上記実施例1の反応において、鋳型DNAおよびT7 RNA polymeraseの何れをも添加していない反応液を調製し、反応開始前のサンプル、および反応開始から30分後のサンプルを各30μl回収し、5%TCAを等量加えて氷冷した。これを12,000rpmで5分間遠心を行い、得られた上清39μLに内部標準として2mM NADを1μL加えた。この溶液20μLに含まれる各ヌクレオシドおよび各NTPの検出を、C18カラムをつないだ高速液体クロマトグラフィー(HPLC)により行った。結果を図7に示す。
エネルギー再生系の成分として、(i)クレアチンリン酸(CP)およびクレアチンキナーゼ(CK)、(ii)30mM PEP、0.33mM NAD、0.26mM CoAおよび2.7mM シュウ酸ナトリウム、または(iii)30mM グルコース、0.33mM NAD、0.26mM CoAおよび10mM K2HPO4を用い、かつ、pK7−CATの代わりに、pCR2.1 NHis−EGFPを用いたこと以外は、実施例1と同様にしてタンパク質の合成を行った。なお、ピルビン酸キナーゼは大腸菌S30抽出液中に含まれているため、ピルビン酸キナーゼのさらなる添加は行っていない。反応は、30℃で3時間行った。何れの場合にもさらなる対照として、リボヌクレオシドの代わりに、1.3mM AMP、0.9mM GMP、0.9mM CMP、および0.9mM UMPを添加して、あるいはリボヌクレオシドおよびその代替物を添加せずに、タンパク質の合成を行った。反応終了後、実施例3と同様にして、485nm(励起光)/535nm(発光)の蛍光強度を測定することにより、EGFPタンパク質の合成量を評価した。結果を図8に示す。
Claims (11)
- 無細胞タンパク質合成系によるタンパク質の合成方法であって、
タンパク質をコードする鋳型DNAと、アデノシン、グアノシン、ウリジンおよびシチジンのうちの少なくとも何れか1種のリボヌクレオシドとを、タンパク質合成用の細胞抽出液を含む反応液に添加することを特徴とするタンパク質の合成方法。 - 少なくともグアノシンを添加することを特徴とする請求項1に記載のタンパク質の合成方法。
- アデノシン、グアノシン、ウリジンおよびシチジンのうちの少なくとも何れか2種のリボヌクレオシドを添加することを特徴とする請求項1に記載のタンパク質の合成方法。
- 少なくともグアノシンおよびシチジンを添加することを特徴とする請求項1〜3のいずれか1項に記載のタンパク質の合成方法。
- 上記細胞抽出液は細菌細胞から調製した抽出液であることを特徴とする請求項1〜4の何れか1項に記載のタンパク質の合成方法。
- 上記細胞抽出液は大腸菌から調製した抽出液であることを特徴とする請求項5に記載のタンパク質の合成方法。
- ATP再生系の成分を上記反応液に添加することを特徴とする請求項1〜6の何れか1項に記載のタンパク質の合成方法。
- 上記ATP再生系の成分として、クレアチンキナーゼおよびクレアチンリン酸を上記反応液に添加することを特徴とする請求項7に記載のタンパク質の合成方法。
- 透析法による合成方法であることを特徴とする請求項1〜8の何れか1項に記載のタンパク質の合成方法。
- バッチ法による合成方法であることを特徴とする請求項1〜8の何れか1項に記載のタンパク質の合成方法。
- 請求項1〜10の何れか1項に記載のタンパク質の合成方法に使用されるタンパク質の合成キットであって、アデノシン、グアノシン、ウリジンおよびシチジンのうちの少なくとも何れか1種のリボヌクレオシドと、細胞抽出液とを含むことを特徴とするタンパク質の合成キット。
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