JP6109829B2 - 植物及び昆虫病原性線虫を防除する低分子化合物 - Google Patents
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Description
(i)式Iの化合物
R1は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R1'は、存在しないか、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R2は、式
各R1は、独立して、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R5は、H、-OH、-OR6、-OCR6R7R8、-CR6R7R8、-NH2、-NHR6、-NR6R7、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、アリールアルキル、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR3若しくはR4に連結している結合であり、
ここで、
R6及びR7は、各々独立して、H、-CR3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルであり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルは、-OR8、-C(O)R8、-NHC(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
n1、n2、及びn3は、各々独立して、0〜30の整数であり、
n4は、1〜30の整数であり、
n1、各n2、及び各n3の合計は、1〜30である)
の部分であり、
R3及びR4は、各々独立して、H、-CR6R7R8、-C(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR5に連結している結合であり、
ここで、
R6及びR7は、各々独立して、H、-CR3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルであり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルは、-OR8、-C(O)R8、-NHC(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
各R5は、独立して、H、-OH、-OR6、-OCR6R7R8、-CR6R7R8、-NH2、-NHR6、-NR6R7、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、アリールアルキル、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR3若しくはR4に連結している結合であり、
ここで、
R6及びR7は、各々独立して、H、-CR3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルであり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルは、-OR8、-C(O)R8、-NHC(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数である)、及び
(ii)少なくとも1つの核酸塩基(nucleobase)、
少なくとも1つの脂肪酸、
少なくとも1つのアミノ酸、及び
少なくとも1つの糖を含み、
上記少なくとも1つの核酸塩基、少なくとも1つの脂肪酸、少なくとも1つのアミノ酸、及び少なくとも1つの糖が、共有結合により連結されており、
約2,000g/mol未満の分子量を有している、
化合物
からなる群から選択されるが、
但し、上記線虫がカエノラブディティス属種ではない、
投与を含む。
(i)第1の場所における線虫の集団形成を促進するか又は阻害するのに有効な条件下、該第1の場所に、1つ以上の単離モジュレーター化合物を接触させるステップ、
(ii)第1の場所における線虫の集団形成を促進するか又は阻害するのに有効な条件下、第2の場所に、1つ以上の単離モジュレーター化合物を接触させるステップであって、第2の場所において接触させる前記ステップが第1の場所における線虫の集団形成に影響を及ぼすことができるよう、第1の場所と第2の場所に間隔を設けるステップを含み、
1つ以上の単離モジュレーター化合物が、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#16、ascr#18、ascr#20、ascr#22、icas#9、oscr#10、ascr#9とascr#10との組合せ、ascr#9とascr#16との組合せ、ascr#9とascr#18との組合せ、ascr#9とascr#20との組合せ、ascr#9とascr#22との組合せ、ascr#2、ascr#3、ascr#8及びicas#9の組合せ、ascr#9、ascr#3、ascr#8及びicas#9の組合せ、ascr#9とoscr#10との組合せ、並びにascr#9、oscr#10及びascr#11の組合せからなる群から選択される。
(i)植物の寄生生物感染を処置するか又は予防するのに有効な条件下、該植物に、1つ以上の単離モジュレーター化合物を接触させるステップ、
(ii)植物の寄生生物感染を処置するか又は予防するのに有効な条件下、第2の場所に、1つ以上の単離モジュレーター化合物を接触させるステップであって、第2の場所を接触させる前記ステップが、植物の寄生生物感染に影響を及ぼすことができるよう、植物と第2の場所に間隔を設けるステップを含み、
寄生生物が、線虫又は昆虫であり、1つ以上の単離モジュレーター化合物が、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#16、ascr#18、ascr#20、ascr#22、icas#9、oscr#10、ascr#9とascr#10との組合せ、ascr#9とascr#16との組合せ、ascr#9とascr#18との組合せ、ascr#9とascr#20との組合せ、ascr#9とascr#22との組合せ、ascr#2、ascr#3、ascr#8、及びicas#9の組合せ、ascr#9、ascr#3、ascr#8及びicas#9の組合せ、ascr#9及びoscr#10の組合せ、並びにascr#9、oscr#10とascr#11との組合せからなる群から選択される。
本明細書で使用する場合、特に示されない限り、以下の用語は、次の意味を有するものと理解されたい。本明細書において他に定義されない限り、本明細書で使用される技術用語及び科学用語はすべて、この発明が帰属する分野の当業者により一般に理解されているものと同じ意味を有する。本明細書における用語に関して複数の定義が存在する場合、他に明記しない限り、この項のものが優先する。
R1は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R1'は、存在しないか、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R2は、式
各R1は、独立して、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R5は、H、-OH、-OR6、-OCR6R7R8、-CR6R7R8、-NH2、-NHR6、-NR6R7、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、アリールアルキル、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR3若しくはR4に連結している結合であり、
ここで、
R6及びR7は、各々独立して、H、-CR3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルであり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルは、-OR8、-C(O)R8、-NHC(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
n1、n2、及びn3は、各々独立して、0〜30の整数であり、
n4は、1〜30の整数であり、
n1、各n2、及び各n3の合計は、1〜30である)、
R3及びR4は、各々独立して、H、-CR6R7R8、-C(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR5に連結している結合であり、
ここで、
R6及びR7は、各々独立して、H、-CR3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルであり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルは、-OR8、-C(O)R8、-NHC(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
各R5は、独立して、H、-OH、-OR6、-OCR6R7R8、-CR6R7R8、-NH2、-NHR6、-NR6R7、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、アリールアルキル、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR3若しくはR4に連結している結合であり、
ここで、
R6及びR7は、各々独立して、H、-CR3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルであり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、又はシクロアルケニルは、-OR8、-C(O)R8、-NHC(O)R8、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個又は6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数であり、
R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
ここで、
各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
R9は、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、アルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR、-C(O)R、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、及びシクロアルキルからなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、
n4は、1〜30の整数である)、又は
ii)少なくとも1つの核酸塩基、
少なくとも1つの脂肪酸、
少なくとも1つのアミノ酸、及び
少なくとも1つの糖、
を含み、
上記少なくとも1つの核酸塩基、少なくとも1つの脂肪酸、少なくとも1つのアミノ酸、及び少なくとも1つの糖が、共有結合により連結されており、
約2,000g/mol未満の分子量を有する
化合物であるが、
但し、上記線虫がカエノラブディティス属種ではない。
(i)R1は、独立して、-C(R')3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルであり、各R'は、独立して、ハロゲン又はアルケニルであり、
R1'は、独立して、存在しないか、H、-C(R)3、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、
(ii)R2は、
各
q1、q2及びq3は、各々独立して、1〜26の整数であり、
q4及びq5は、各々独立して、0〜26の整数であり、
q1、q2、q3、q4及びq5の合計は、28以下であり、
q4及びq5の合計は、2以上であり、
(iii)R5は、H、-OR6、-OCR6R7R8、-CR6R7R8、-NH2、-NR6R7、ハロゲン、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、アリールアルキル、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、又はヌクレオシドであり、
(iv)R5は、式Iの別のユニットのR3又はR4に連結している結合であり、式Iの少なくとも2つのユニットを含む化合物を形成し、
(v)R3及びR4は、各々独立して、-CR6R7R8、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、又は-(CO)R8であり、R8は、H、-C(R)3、-[C(R)2]n4NHC(O)R9、-[C(R)2]n4C(O)(NH)R9、-OR、-N(R)2、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖であり、上記アルキル、シクロアルキル、シクロアルケニル、プリン、ピリミジン、又は単糖は、-C(R)3、-OR9、-C(O)R9、-NHC(O)R9、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、及び5個又は6個の炭素原子を有する単糖からなる群から独立して選択される1つ以上の置換基により場合により置換されており、
(vi)本化合物は式I"の化合物
であるが、
但し、該化合物は
を満足する。
核磁気共鳴(NMR)スペクトルは、Varian INOVA 600 NMR(1Hは、600MHz、13Cは151MHz)で測定した。NMRスペクトルは、Varian VNMR及びMestreLabs MestReCソフトウェアパッケージを使用して処理した。NMRスペクトルに由来するビットマップの追加処理は、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年)において記載されているAdobe Photoshop CS3を使用して行った。高速液体クロマトグラフィー-質量分析(HPLC-MS)は、ダイオードアレイ検出器を装備し、Quattro II分光計(Micromass/Waters社)に接続した、Agilent 1100 Series HPLCシステムを使用して行った。データ取得及び処理は、MassLynxソフトウェアにより管理した。フラッシュクロマトグラフィーは、Teledyne ISCO CombiFlashシステムを使用して行った。
特に言及しない限り、すべての株は、Bacto寒天(BD Biosciences社)により作製し、一晩成長させたOP50細菌を播種した、NGM寒天プレート上で20℃に維持した。C.エレガンス品種のN2 Bristol及びhim-5(e1490)株CB1490由来の雄を、誘引バイオアッセイ及び自動追跡実験に使用した。このhim-5(e1490)突然変異体は、減数分裂の間に、X染色体不分離によりXO型雄後代が分離する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Hodgkinら、Genetics 9巻、67〜94頁(1979年))。sra-9プロモーター(Tokumitsu Wakabayashiの寄贈、岩手大学)の影響下で、ASKニューロン中において哺乳動物のカスパーゼを発現する、遺伝子導入株PS6025 qrIs2[sra-9:: mCasp1]を、ASKニューロンの遺伝的除去に使用した。使用した他の株は、以下の通りである。CB4856、C.エレガンスHawaii単離物(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Hodgkin & Doniach、Genetics 146巻、149〜64頁(1997年))、RC301、C.エレガンスFreiburg単離物(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)、Hodgkin & Doniach、Genetics 146巻、149〜64頁(1997年))、DA609 npr-1(ad609)、CX4148 npr-1(ky13)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年))、CX9740 C.エレガンス(N2)、kyEx2144 [ncs 1:: GFP](全体が参照により本明細書に組み込まれている、Macoskoら、Nature 458巻、1171〜75頁(2009年))、N2、Ex(gcy-28:: dp:: mec-4D)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Shinkaiら、J. Neurosci. 31巻、3007〜15頁(2011年))、CX10981 kyEx2866 [“ASK:: GCaMP2.2b"sra-9:: GCaMP2.2b SL2 GFP、ofm 1:: GFP](ASK画像株(ASK imaging line))、CX11073 kyEx2916 [“AIA:: GCaMP2.2b" T01A4.1:: GCaMP2.2b SL2 GFP、ofm-1:: GFP](AIA画像株(AIA imaging line))(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Macoskoら、Nature 458巻、1171〜75頁(2009年))、DR476 daf-22(m130)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Golden & Riddle、Mol. Gen. Genet. 198巻、534〜36頁(1985年))、及びdaf-22(ok693)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Butcherら、PNAS 106巻、1875〜79頁(2009年))。
新規に同定したアスカロシドはすべて、4つの文字「SMID」(SMID(Small Molecule IDentifier):低分子識別名)により名前を付け、例えば、「icas#3」又は「ascr#10」である。全体が参照により本明細書に組み込まれているSMIDデータベースは、Paul SternbergとWormBaseとが共同し、Frank Schroeder及びLukas Mueller(Boyce Thompson Institute)により維持されている電子資料である。このデータベースは、C.エレガンス及び他の線虫から新規に同定されたC.エレガンス低分子をカタログに掲載し、同定された低分子に対して固有の4つの文字SMIDを割り当て(検索可能な遺伝子型式の低分子識別名)、さらに各化合物に関して文献で使用された他の名称及び略語のリストを含むものである。
代謝抽出物は、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年)において以前に記載されている方法に従い、以下の通り修正を加えて調製した。
2つの培養物からの培地代謝抽出物をオクタデシル官能基化シリカゲル6g上に吸着させ、空の25gのRediSep Rfサンプル装填用カートリッジに乾式充填した。次に、水-メタノール溶媒系を使用して、上記の吸着させた物質を逆相RediSep Rf GOLD30g HPLC 18カラムにより分画した。溶媒は、水100%を4分間から始め、次に、メタノール含量を42分で最大100%メタノールになるまで直線的に増加させて、これを55分まで継続した。この分画から生じた8つのフラクションを真空で蒸発させた。残留物を、HPLC-MS及び二次元核磁気共鳴(2D-NMR)分光法によって分析した。
クロマトグラフィー分画に由来する蠕虫の培地抽出物フラクション又は代謝物フラクションをメタノール1.5ml中で再懸濁させ、5分間2,000gで遠心分離した。上澄み液をHPLC-MS分析に供した。HPLCは、Agilent Eclipse XDB-C18カラム(9.4×250mm、粒子径5μm)で行った。0.1%酢酸-アセトニトリル溶媒のグラジエントを使用し、5%アセトニトリル含量を5分間から始めて、40分間かけて100%に増加した。質量分析法は、ネガティブイオン又はポジティブイオンモードのいずれか一方で、エレクトロスプレーイオン化を使用して行った。
C.エレガンス(N2、Bristol)のインビトロ無菌培養は、シトステロール及びヌクレオシド-5-リン酸の代わりにコレステロール(5mg/l)を含むC.エレガンス維持培地(CeMM、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Lu & Goetsch、Nematologica 39巻、303〜11頁(1993年))を使用する、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Nass & HamzaのCurr. Protoc. Toxicol. 31巻、1.9.1〜1.9.18(2007年)により記載されている通り確立された。21日後に、培養物を遠心分離した。得られた上澄み培地及び蠕虫ペレットを個別に凍結乾燥した。凍結乾燥した蠕虫ペレット(1.2〜2.0mg)をメタノール2mlで抽出し、ろ過し、次いで真空で濃縮した。凍結乾燥した蠕虫の培地を、酢酸エチル-メタノール(95:5、100mL、2回)で抽出してろ過し、次に真空で濃縮した。残留物をメタノール150μlに溶解し、高速液体クロマトグラフィーエレクトロスプレーイオン化タンデム型質量分析(HPLC-ESI-MS)により検討した。施用実験に関しては、CeMM培地50mlに、Cambridge Isotope LaboratoriesからのL-[2,4,5,6,7-D5]-トリプトファン9.2mgを添加した。
スポット誘引アッセイは、以前に報告された方法(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年)、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年))によって行った。C.エレガンスの雌雄同体と雄の両方について、次の日に幼成体として使用するために、第4齢期(L4)の蠕虫を毎日50〜60匹採り、性別によって分けて、20℃で一晩、保管した。競争実験については、2つの条件、すなわちエタノールを10%含む水中の、120nMのascr#3及び10nMのicas#3(条件1)、又は12μMのascr#3及び1μMのicas#3(条件2)を使用した。一定分量を20μLチューブ中、-20℃で保管した。水中の10%エタノールを対照として使用した。
非インドールアスカロシドとインドールアスカロシドの両方への化学走性を、10cmの四分円ペトリ板(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Wicksら、Dev. Biol. 221巻、295〜307頁(2000年))上で評価した。各四分円は、プラスチック製のスペーサー(図1B)によって隣接した四分円と隔離した(図1B)。反対側の四分円の対に、異なる濃度でインドールアスカロシド又は非インドールアスカロシドのどちらか一方を含んでいる線虫成長培地(NGM)寒天を満たした。動物をS基本緩衝液中で優しく洗い、四分円に交互にアスカロシドを含む四分円プレートの中心に置き、15分後及び30分後に点数化した。化学走性指数は、次のように計算した。(アスカロシドのある四分円上の動物数-緩衝液のある四分円上の動物数)/(動物の総数)
[実施例10]-移動性パラメーターの測定
反転頻度及び速度は、自動蠕虫追跡システム(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年)、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年))を用いて測定した。
蠕虫の集団形成行動は、全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)において報告されているアッセイを使用して測定した。集団形成アッセイは、標準NGMプレート上で実施した。インドールアスカロシドを含有しているプレートは、NGM培地にインドールアスカロシドのストック溶液を添加した後に、プレートに注ぐことにより作製した。これらのプレートを、室温で2〜3日間、乾燥した。対照プレートは、icas溶液の代わりにエタノール溶液(icas溶液により導入されるエタノールの量に相当する)をプレートに添加したことを除いて、同様に処理した。このプレートの最終エタノール濃度は、すべての条件について0.1%未満であった。乾燥後、対照プレートと、インドールアスカロシドを含むプレートの両方に、マイクロピペットを使用して、大腸菌OP50の一晩培養物150μlを播種し、室温で2日間乾燥させた。
ASK(kyEx2866)及びAIA(kyEx2916)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Macoskoら、Nature 458巻、1171〜75頁(2009年))中で遺伝的にコードされるCa2+センサーを発現する遺伝子導入系をカルシウムのイメージングに使用した。幼成体又は成体の蠕虫を、「嗅覚チップ(Olfactory chip)」というマイクロ流体デバイスに装着した(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Chronisら、Nat. Methods 4巻、727〜31頁(2007年))。icas#3の希釈は、S基本緩衝液(コレステロールなし)を用いて行った。少量のエタノールを含むicas#3のストック溶液として、等量のエタノールをS基本対照液流に加えた。
(i)インドールアスカロシドに関する雌雄同体及び雄の誘引を比較するため(*: p<0.01、**: p<0.001、***: p<0.0001)(図1C〜1D、3A、3D、4A、5A、及び6C)、(ii)未除去系及びASK除去系の間の反転を比較するため(*: p<0.01、**: p<0.001)(図7A〜B)、(iii)ASKとAIAに関して、及びASIニューロン除去及びRMGニューロン除去について、遺伝的除去系に対する野生型蠕虫の誘引を比較するため(***: p<0.0001)(図2B)、(iv)緩衝液及びicas#3に対するG-CaMP蛍光を比較するため(**: p<0.001)(図2E)、ウェルチ補正を伴うスチューデント独立t検定を使用した。(i)様々な株の四分円化学走性指数の比較のため(*: p<0.05、**: p<0.01)(図1E及び3B〜C)、(ii)インドールアスカロシドを含むプレート上の単独型、社会型の蠕虫、及びCel-daf-22の集団形成の比較のため(*: p<0.05、**: p<0.01)(図5C、6A〜B、及び8A〜C)、(iii)インドールアスカロシドを含むプレート上の蠕虫の停止期間を比較するため(*: p<0.05、**: p<0.01)(図8D)、及び(iv)インドールアスカロシドを含むプレート上の速度及び反転頻度を比較するため(*: p<0.05、**: p<0.01)(図6D〜E)、一元配置ANOVA、その後にダンネットの事後検定を使用した。エラーバーはすべて、平均値の標準誤差(S.E.M)を示している。
100fM(フェムトモル濃度)における、1匹のL4蠕虫の体積中のicas#3の分子数(n)は、式(1)を使用して計算した:
n=VYA*c*NA(1)
(式中、
VYA=C.エレガンスの幼成体の体積(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Knightら、Evol. Dev. 4巻、16〜27頁(2002年))
c=濃度(100fM)
NA=アボガドロ数
この場合、VYA=3*106μm3=3*10-9L、及びc=10fM=10-14Mである。nの解は、n=VYA*c*NA=3*10-9L*10-14mol*L-1*6.022*1023mol-1=18分子数である。したがって、icas#3濃度10fMにおいて、寒天の1匹の蠕虫の体積中に、18個のicas#3分子が含まれて存在している。
バイオアッセイにおいて及びHPLC-MS用標品として使用するためのインドールアスカロシドicas#1、icas#7、icas#3及びicas#9の試料を化学合成によって調製した。詳細な合成手順、及びNMR分光分析データを、実施例16〜21で説明する。
[実施例17]-アスカロシドascr#10の合成
[実施例18]-インドールカルボキシアスカロシドicas#1の合成
現在のところ公知となっている、C.エレガンス中の低分子フェロモンはすべて、ヒトステロールキャリアータンパク質SCPxと強い相同性を有するタンパク質であるDAF-22を介した長鎖脂肪酸のペルオキシソームβ-酸化に由来している(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年)、Butcherら、PNAS 106巻、1875〜79頁(2009年))。推定上の集合形成フェロモンが同じ経路に由来し得ることが疑われ、daf-22突然変異体は、それらを産生しないことを示唆した。その場合、野生型のメタボロームと、daf-22突然変異蠕虫から得られたものとの分光学的比較により、誘引シグナル又は集団形成シグナルの候補化合物を明らかにすべきである。
アスカロシドにインドール-3-カルボキシ部分を付加すると、重要な構造変化を示す。この化学的差異は、これらの化合物に関するシグナル機能が、それらの非インドール同族体のものとは異なることを示し得る。
スポット誘引アッセイ及び四分円化学走性アッセイからの結果は、雌雄同体がインドールアスカロシドに強く誘引されることを示しており、これらの化合物が、C.エレガンスの集団形成行動を調節することを示唆している。C.エレガンスは、その食料調達行動に天然の多様性を示し、一部の株(例えば、一般的な実験室株N2)は細菌叢上では個々に分散する一方、ほとんどの野生型株(例えば、RC301及びCB4856(Hawaii))は、細菌が最も多量な所に集合して集団形成をする(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)、Hodgkin & Doniach、Genetics 146巻、149〜64頁(1997年))。これらの変種は、それぞれ「単独型」及び「社会型」と呼ばれる(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)、Rogersら、Nat. Neurosci. 6巻、1178〜85頁(2003年))。食料調達行動及び集団形成行動におけるこれらの差異は、一つのアミノ酸の位置に違いのある、ニューロペプチドY様受容体NPR-1の2つの異なる対立遺伝子に関係している(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)、Rogersら、Nat. Neurosci. 6巻、1178〜85頁(2003年))。すなわち、N2などの単独型の株は、NPR-1の高活性変種(215-バリン)を発現する一方、CB4856などの集団形成型の株は、NPR-1の低活性変種(215-フェニルアラニン)を発現する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)、Rogersら、Nat. Neurosci. 6巻、1178〜85頁(2003年))。N2のバックグラウンドで生じた、高度機能喪失変異体npr-1(ad609)及びnpr-1(ky13)もまた、集団形成する傾向が高いことを示している(全体が参照により本明細書に組み込まれている、de Bono & Bargmann、Cell 94巻、679〜89頁(1998年)、Hodgkin & Doniach、Genetics 146巻、149〜64頁(1997年))。
インドールアスカロシドの一定のバックグラウンド濃度がどのように雌雄同体の行動に影響するかを試験した。単独型のN2蠕虫及びいくつかの社会型株(社会型の野生型株CB4856及び2種のnpr-1機能喪失型突然変異体を含む)の集団形成を、2種の異なる条件、すなわち5cmプレート当たり120匹の蠕虫を有する「高蠕虫密度」、及び5cmプレート当たり20匹の蠕虫を有する「低蠕虫密度」を使用して、icas#3に対する応答を測定した。
双器の単一細毛感覚ニューロンであるタイプK(ASK)は、C.エレガンスの行動を媒介する際に重要な役割を果たす。以前の研究により、雄及び雌雄同体の、非インドールアスカロシドに対する行動応答に、ASKニューロンが必要なことが示された(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年)、Macoskoら、Nature 458巻、1171〜75頁(2009年))。ASK感覚ニューロンは、RMG介在ニューロンへの解剖学的なギャップ結合を介して連結しており、集団形成、並びにASK及び他の感覚ニューロンから、入力に基づく関連行動を調節する中心として作用することが示されている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Macoskoら、Nature 458巻、1171〜75頁(2009年)、Whiteら、Philos. Trans. R. Soc. London[Biol]314巻、1〜340頁(1986年))(図2A)。
以前の研究により、耐久型幼虫を誘発する高い濃度のascr#3は、社会型及び単独型の雌雄同体の両方を強力に抑止することが示された(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年)、Macoskoら、Nature 458巻、1171〜75頁(2009年))。ascr#3の添加が、雌雄同体のicas#3媒介性誘引に影響するかどうかを検討するために、12:1(ascr#3: icas#3)という生理的に近い比でこれら2種の化合物を含有している混合物を、修正を加えたスポット誘引アッセイにおいて試験し、N2雌雄同体の誘引を3種の同心ゾーンA〜Cで点数化した(図1A)。この結果は、より低い2種の試験濃度(120fmolのascr#3及び10fmolのicas#3)において、ascr#3が存在してもicas#3媒介性の誘引は妨害されないが、ascr#3の濃度がより高いと、比例的に増加したicas#3濃度の存在下でさえ強く忌避したことを示している(12pmolのascr#3及び1pmolのicas#3、図4A)。多くの蠕虫は、ゾーンAの外部の縁から後退した後、ゾーンA内側の高濃度icas#3/ascr#3ブレンドによって忌避された中心ゾーンAを取り囲む円形ゾーンBに「捕捉」されて居残るが、ゾーンBに散布したより低濃度のicas#3/ascr#3ブレンドによって誘引された。これらの結果は、高濃度の生理的混合物であるicas#3/ascr#3において、ascr#3の忌避効果が支配的である一方、icas#3による誘引は、より低い濃度で支配的となることを示している。
インドールアスカロシドは、野生型雌雄同体を強力に誘引して集団形成を促進することが示された最初のC.エレガンスのフェロモンである。インドールアスカロシドは、それらが、性には関わりなく、放出領域に同種を引きつける及び/又は阻止するという点で、集合形成フェロモンの広い定義に適合する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、EDWARD O. WILSON、SOCIOBIOLOGY: THE NEW SYNTHESIS(The Belknap Press of Harvard University、Cambridge、Mass.、第25記念版、2000年)、Shorey、Annu. Rev. Entomol. 18巻、349〜80頁(1973年)、Wertheimら、Annu. Rev. Entomol. 50巻、321〜46頁(2005年))。これらの行動を促進する際は、インドールアスカロシドは、蠕虫の行動応答がわずか数個の分子の感知によって生じなければならない程の低(フェムトモル濃度)濃度において活発となる。例えば、10fMの濃度のicas#3では、成体の雌雄同体の長さ及び径に相当する円筒には、約20個のicas#3分子だけしか含有されていない。それらが高い比活性であることを考慮すると、インドールアスカロシドは、非インドールアスカロシドよりもはるかに少ない存在量であると考えるのが妥当である。
NMRスペクトルは、Varian INOVA 600(1Hは600MHz、13Cは151MHz)、INOVA 500(1Hは500MHz、13Cは125MHz)、又はINOVA 400(1Hは400MHz、13Cは100MHz)分光計で記録した。NMRスペクトルは、Varian VNMR、MestreLabs MestReC、及びMnovaソフトウェアパッケージを使用して処理した。
C.エレガンス品種Bristol、株N2(野生型)、acox-1(ok2257)、dhs-28(hj8)、maoc-1(hj13)、maoc-1(ok2645)、daf-22(m130)、daf-22(ok693)、F58F9.7(tm4033)、C48B4.1(ok2619)、F59F4.1(ok2119)、及びF08A8.3(tm5192)は、Bacto寒天(BD Biosciences社)により作製し、且つ一晩成長させた大腸菌OP50を播種した、NGM寒天プレート上で20℃に維持した。
10cmNGMプレートからの、野生型(N2、Bristol)又はacox-1(ok2257)、maoc-1(hj13)、dhs-28(hj8)、及びdaf-22(ok693)突然変異蠕虫を、M9培地を使用して100mLのS培地の前培養物に洗い入れ、ここで、1分あたり(rpm)220回数の回転式振とう器で、22℃で4日間成長させた。1Lの細菌培養物由来の濃縮大腸菌OP50を、1日目及び3日目に食餌として加えた。続いて、4日目に100mLのS培地を含む500mLエルレンマイヤーフラスコに、各前培養物を均等に4分割した。これらの培養物の2つ(非飢餓(NS)と名付けた)は、回転式振とう器で、22℃で5日間成長させて、500mLの細菌培養物由来の濃縮OP50を、1〜4日目まで毎日、与えた。各セットの残り2つ(飢餓(S)と名付けた)の培養物には、500mLの細菌培養物由来の濃縮OP50を1日目に1回与え、さらに9日間は食餌なしに、回転式振とう器で、22℃で9日間成長させた。続いて、この培養物を、NSについては5日目に、Sについては10日目に採取し、遠心分離にかけた。得られた上澄み媒体及び蠕虫ペレットをドライアイス-アセトンスラッシュで凍結させ、個別に凍結乾燥した。上澄み液由来の凍結乾燥物質は、95%エタノール150mLにより、室温で16時間抽出した。蠕虫ペレットは、乳鉢及び乳棒を使用して、顆粒NaCl約2gと一緒に粉砕し、100%エタノール100mLにより、室温で16時間抽出した。得られた懸濁液をろ過した。ろ液を室温で真空で蒸発させると、培地の代謝(蠕虫「エクスクレトーム」)抽出物、蠕虫のペレットの代謝抽出物が生成する。
アスカロシドの食餌実験は、添加されたアスカロシドにより、daf-22(ok693)突然変異体よりも成長障害にそれほど敏感ではないdaf 22(m130)突然変異体により行った。daf-22(m130)のHPLC-MSの解析により、daf22(ok693)と類似のアスカロシドプロファイルにより、12個未満の炭素鎖長を有する短鎖アスカロシドがとりわけ完全に無いことが示された。daf 22(m130)の非飢餓培養物は、実施例31に記載した通りだが、前培養物の分割後1日目に、ascr#3、又はascr#10とoscr#10の1:1混合物のどちらか一方の培養物につき5μMを添加して成長させた。
培地又は蠕虫ペレット代謝抽出物は、メタノール約15mL中で再懸濁して、遠心分離にかけた。次に、上澄み液を集めて、室温で真空で濃縮し、メタノール1mLに再懸濁して、遠心分離にかけた。得られた抽出物30μLを、LC-MS/MS分析用に直接注入した。
低分解能HPLC-MS/MSプロファイリングは、Agilent Eclipse XDB-C18カラム(9.4×250mm、粒子径5μm)を装備し、スプリット10:1を使用するQuattro II質量分析計に接続したAgilent 1100 Series HPLCシステムを使用して行った。0.1%酢酸-アセトニトリル溶媒のグラジエントを使用し、3.6ml/分の流速で、5%アセトニトリル含量を5分間から始めて、40分間かけて100%に増加した。代謝抽出物は、3.5kVのキャピラリー電圧、並びに-40V及び+20Vのコーン電圧をそれぞれ使用し、ネガティブイオンモード及びポジティブイオンモードでHPLC-ESI-MSにより分析した。m/z=73.0(ネガティブモード)の前駆体イオン及び130.0(ポジティブモード)の中性体の喪失についてのHPLC-MS/MSのスクリーニングは、2.1mtorr及び30eVの衝突ガスとしてアルゴンを使用して行った。アスカロシドのフラグメンテーションは、LTQ Orbitrapを使用する高分解能MS/MSによりさらに分析した。新規化合物の元素組成を確認するために、Xevo G2 QTofを使用する高分解能HPLC-MSにより突然変異体のメタボローム試料及びフラクションをさらに分析した。
アスカロシドoscr#9は、以下のスキーム2で示される通り調製した。
アスカロシドoscr#10は、以下のスキーム3で示される通り調製した。
アスカロシドbhas#10は、以下のスキーム4で示される通り調製した。
アスカロシドbhas#22は、以下のスキーム5で示される通り調製した。
アスカロシドbhos#26は、以下のスキーム6で示される通り調製した。
アスカロシドicos#10は、以下のスキーム7で示される通り調製した。
アスカロシドhbas#3は、以下のスキーム8で示される通り調製した。
アスカロシドmbas#3は、以下のスキーム9で示される通り調製した。
アスカロシドglas#10は、以下のスキーム10で示される通り調製した。
野生型及び突然変異体において検出したアスカロシド(ascr、oscr、bhas、bhos、icas、icos、ibha、ibho及びglas)の同定に関しては、HPLCの保持時間をm/z(又は鎖長)に対してプロットした(HPLC-EMI-MSに関しては、図37A((ω-1)-酸化アスカロシド(ascr))、図37B((ω)-酸化アスカロシド(oscr))、図37C((ω-1)-酸化β-ヒドロキシアスカロシド(bhas)、図37D((ω)-酸化β-ヒドロキシアスカロシド(bhos))、図37E((ω-1)-酸化インドールアスカロシド(icas))、図37F((ω)-酸化インドールアスカロシド(icos))、図37G((ω-1)-酸化インドールβ-ヒドロキシアスカロシド(ibha))、図37H((ω)-酸化インドールβ-ヒドロキシアスカロシド(ibho))、図37I(グルコシルアスカロシドエステル(glas))、図37J(ascr#8及び4-(4-ヒドロキシベンゾイル)-及び4-(2-(E)-メチル-2-ブテノイル)-アスカロシド(hbas及びmbas))、及び図37K(ascr#2及びascr#6.1)を参照されたい)。一連のホモログに属する成分は、ほとんど直線の溶出プロファイルを示しており(図38)、一連内の成分は、同じ相対的な立体化学を共有していることが示された。次に、一連の様々なものの構造及び立体化学は、(1)代表的な実施例の単離、及びNMR分析(例えば、図39A〜B、図40A〜B、図41A〜B、図42及び図43A〜Bを参照されたい)、(2)代表的な実施例と合成標品との比較、(3)高分解能MSから確定した分子式、(4)特有のMS/MSフラグメンテーション(図44A〜Pを参照されたい)、及び(5)合成試料のものから推定したHPLCの保持時間の値と一致する保持時間、に基づいて同定した。α,β-不飽和アスカロシドの(E)-配置は、ascr#3、(Z)-配置のascr#3及びascr#7と比較することにより確定し、アシル-CoA-オキシダーゼ(ACOX)活性の立体選択性によっても示唆された。β-ヒドロキシアスカロシド(bhas及びbhos系)の(3R)-立体化学は、代表的な実施例としてのbhas#10、bhas#22及びbhos#26の合成標品との比較から推定し、(R)-選択的MFE-2を有するMAOC-1及びDHS-28の配列相同性からも示唆された(図45)。
以前に報告された通り、hbas#3による誘引アッセイを行った(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年)、Pungaliyaら、Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 106巻、7708〜13頁(2009年))。誘引アッセイ用に、50〜60匹の雌雄同体の蠕虫を、次の日に幼成体として使用するために、第4早幼齢期(L4)で毎日採り、20℃で一晩保管した。hbas#3は10%エタノール含有水に溶解した。一定分量を20μLチューブ中、-20℃で保管した。水中の10%エタノールを対照として使用した。
hbas#3への化学走性を、4つの10cmの四分円ペトリ板上で評価した(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Wicksら、Dev. Biol. 221巻、295〜307頁(2000年))。各四分円は、プラスチック製のスペーサーによって隣接した四分円と隔離した。反対側の四分円の対に、異なる濃度のhbas#3を含有している線虫成長培地(NGM)寒天を満たした。S-基本緩衝液中で動物を優しく洗い、四分円に交互にアスカロシドを含む4つの四分円プレートの中心に置き、15分後及び30分後に点数化した。化学走性指数は、次のように計算した。(アスカロシドのある四分円上の動物数-緩衝液上の四分円の動物数)/(動物の総数)
[実施例47]-統計的解析
野生型及び突然変異体のメタボロームの間のアスカロシドプロファイルを比較するため、及びhbas#3上の雌雄同体の誘引を比較するため、ウェルチ補正による独立スチューデントt検定を使用した(*: P<0.05、**: P<0.001、***: P<0.0001)。異なる濃度のhbas#3の化学走性指数の比較のために、一元配置ANOVA、その後にダンネットの事後検定を使用した(*: P<0.05、**: P<0.01)。
(1)様々なC.エレガンス株及び突然変異体のメタボローム中の公知のアスカロシドの感度のよい検出及び定量を促進する、及び(2)新規アスカロシド誘導体を発見する手助けとなる分析法の開発が望まれた。
比較LC-MS/MSを使用し、アスカロシド生合成(biogenesis)の検討を行った。研究により、アスカロシドの側鎖が長鎖前駆体のペルオキシソームβ-酸化に由来すること、及びアシル-CoA-オキシダーゼACOX-1が、アスカロシド側鎖のβ-酸化の最初のステップに関与し、α,β-不飽和を導入することが示された(図49A〜B)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Jooら、J. Biol. Chem. 285巻、29319〜25頁(2010年))。脊椎動物及びキイロショウジョウバエ属において、二重結合のペルオキシソームβ酸化-水和における次の2つのステップ、及びその後のβ-ケトアシル-CoAエステルへの脱水素は、1種のタンパク質、例えば、多機能性酵素タイプ2(MFE-2)によって触媒される。これらの酵素の2つの機能は、C.エレガンスではデヒドラターゼ及びデヒドロゲナーゼが個別のタンパク質であるように、分かれているように思われる(図45)(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Haatajaら、Biochem. J. 435巻、771〜81頁(2011年))。研究により、ヒトMFE-2の(R)-選択的β-ヒドロキシアシル-CoAデヒドロゲナーゼドメインと相同のタンパク質である、C.エレガンスのDHS-28は、β-ヒドロキシアシル-CoA-誘導体の対応するβ-ケトアシル-CoA中間体への変換に関与している可能性があり、この中間体は、その後、β-ケトアシル-CoAチオラーゼDAF-22により開裂されることが示されている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Butcherら、PNAS 106巻、1875〜79頁(2009年)、Jooら、Biochem. J. 422巻、61〜71頁(2009年))。しかし、どの酵素がβ-酸化カスケードの第2の必須ステップを触媒するエノイル-CoAヒドラターゼとして働いているのかは、依然として不明であった。
acox-1(ok2257)突然変異蠕虫のエクスクレトームのLC-MS/MSの分析により、野生型媒体の主要成分であるα,β-不飽和ascr#3の存在量が大幅に減少していることが明らかになった(図50A〜E)。この、ascr#3及び他のα,β-不飽和アスカロシドの減少は、アスカロシド産生における総合的な下方調節の結果のようには思われないが、その代わりに、一連の飽和アスカロシドの蓄積を伴っていた。例えば、acox-1(ok2257)では、ascr#10、ascr#3のジヒドロ誘導体及び直接前駆体は、野生型のエクスクレトーム中よりも13.6倍多量に存在していた。acox-1中では、11個及び13個の炭素側鎖を有する対応するホモログであるascr#18及びascr#22は、野生型のエクスクレトーム中よりも、それぞれ29倍及び66倍、多量に存在していた。acox-1(ok2257)エクスクレトームにおける長鎖の飽和アスカロシドの増加は、アスカロシド側鎖のα,β-脱水素におけるACOX-1の重要性を裏付けた(図49A)。アスカロシド生合成は、acox-1(ok2257)蠕虫においてなくならないので、他の、依然として未同定のACOX酵素が、長鎖アスカロシド前駆体のペルオキシソームβ-酸化の一因である可能性が高い。しかし、他のいくつかのペルオキシソームacox突然変異体のエクスクレトームのLC-MS/MS分析(実施例29〜34、及び44〜47、並びに図51]を参照されたい)により、野生型にかなり似たアスカロシドプロファイルが明らかになった。
野生型及びacox-1(ok2257)蠕虫とは対照的に、短鎖(<C9)アスカロシドは、maoc-1(hj13)及びdhs-28(hj8)蠕虫では検出されず、その代わりに、一連の(ω-1)-及び(ω)-酸化中鎖及び長鎖アスカロシド(≧C9)のいくつかが蓄積した。maoc-1(hj13)エクスクレトームのアスカロシドのプロファイルは、ascr#21(C13)及びascr#25(C15)などのα,β-不飽和アスカロシドにより主に占められており(図50A〜E)、このことは、MAOC-1が、アスカロシド生合成経路において、エノイル-CoAヒドラターゼとして機能するという仮説を支持している(図49A)。さらに、maoc-1(hj13)エクスクレトームは、第3の一連のホモログ化合物と共に、少量の対応する飽和アスカロシドを含有しており、その高分解能質量分析法(HRMS)及びMS/MSフラグメンテーションにより、それらが一連の長鎖β-ヒドロキシ化アスカロシドを示すことが示唆された(図37C〜D、図44A〜P、及び図50A〜E)。これらの構造の帰属は、この一連の代表的なメンバー(実施例37〜39を参照されたい)、すなわち、C9及びC13βヒドロキシ化(ω-1)-アスカロシドbhas#10及びbhas#22、並びにC15βヒドロキシ化(ω)-アスカロシドbhos#26((ω-1)-及び(ω)-酸化β-ヒドロキシ化アスカロシドに関するSMIDである「bhas」及び「bhos」)の合成によって確認した。β-ヒドロキシ化アスカロシドは、MAOC-1などのエノイル-CoAヒドラターゼの推定上の産生物であるので、検討がなされたmaoc-1突然変異体株であるmaoc-1(hj13)(活性部位(D186N)において点突然変異体を有する)と2110塩基対欠失突然変異体maoc-1(ok2645)(図49B)の両方のエクスクレトーム中の、アスカロシドの存在は、さらなるエノイル-CoAヒドラターゼがアスカロシド生合成に関与していることを示唆している。
インドール-3-カルボニル化アスカロシドは、対応する非官能基化アスカロシドよりも存在量がかなり少なく、高度に有効な集団形成シグナルとして機能することが知られている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))。LC-MS/MSのスクリーニングにより、いくつかの新しいタイプのインドールアスカロシドが明らかになった(図37E〜H、及び図47C)。icas#3、icas#9及びicas#1の合成試料の結果は(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))、インドールアスカロシドが、インドール-3-カルボニル単位の開裂による143amuの[C9H5NO]の中性体の喪失、及びm/z73におけるアスカロシドに特徴的な生成物イオンを含む、特徴的なフラグメンテーションパターンを示すことを示している(図44A〜P)。このフラグメンテーションパターンを有する成分に関するLC-MS/MSのスクリーニングにより、acox-1(ok2257)において、公知の(ω-1)-酸化異性体であるicas#1、icas#9及びicas#10が、代表的な実施例(実施例40を参照されたい)としてicos#10の化学合成によって確認された、一連の(ω)-酸化インドールアスカロシド(SMID: icos#1、icos#9及びicos#10)を伴うことが明らかになった。短鎖アスカロシド(<9個の炭素側鎖)を産生しないペルオキシソームβ-酸化突然変異体、例えばmaoc-1及びdhs-28蠕虫も、対応するインドールアスカロシドのいずれも産生しなかった。代わりに、maoc-1及びdhs-28のエクスクレトームは、9〜17個の炭素側鎖を有する(ω-1)-及び(ω)-酸化長鎖インドールアスカロシド(SMIDはicas及びicosである)、及びインドールβ-ヒドロキシアスカロシド(SMIDはibha及びibhoである)をかなりの量含有していた(図37E〜Hを参照されたい)。
重水素標識トリプトファン及び無菌のインビトロ培養物による実験は、インドールアスカロシドのインドール-3-カルボニル部分がL-トリプトファンを由来とすることを示した(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))。同様のL-チロシン又はL-フェニルアラニンの起源は、hbas#3の4-ヒドロキシベンゾイル部分である可能性が高いが、mbas#3のチグロイル基は、L-イソロイシンに由来し得る(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Attygalleら、J. Chem. Ecol. 33巻、963〜70頁(2007年))。しかし、アスカロシド生合成においてどの段階でインドール-3-カルボニル部分が結合するのか、依然として不明であった。
アスカロシド機能の詳述な研究があるにもかかわらず、アスカロシドが生合成のアスカロシドの部位からどのように放出されて輸送されるのかについては、ほとんど分かっていない。野生型のエクスクレトーム(液体培養物の上澄み抽出物)及び蠕虫の体のメタボローム(蠕虫ペレット抽出物)のアスカロシドプロファイルを比較して、考えられる非排泄アスカロシド誘導体の同定、及び量の差異を決定した。蠕虫ペレット抽出物のアスカロシドのプロファイルは、培地に排泄されたものとはかなり異なっており、異なるアスカロシドがC.エレガンスにより放出されることを示していた(図56A)。蠕虫ペレットでは、野生型蠕虫中のascr#3及びacox-1蠕虫中のascr#10などの最も多量に存在するアスカロシドは、培地抽出物には存在していなかった、著しく極性の高い誘導体を伴った(図57)。MS/MS分析により、これらの成分が、アスカロシドO-グリコシドエステルを表すことが示唆された。acox-1(ok2257)蠕虫ペレット抽出物からの推定上のascr#10グリコシドの単離、及びその後のNMR分光分析(図43A〜B)は、βグルコースのアノマー性ヒドロキシ基を有するascr#10がエステル化されていることを示しており、このことは、合成(1-β-D-グルコシルascr#10のSMIDはglas#10である、図56A)によって後に確認された。非常に極性の高いglas#10及び他のアスカロシドグルコシド(図37Iを参照)が、蠕虫の体内に多量に維持されているが、排泄されていないということは、それらが、最終的に排泄されるシグナル伝達分子の輸送型又は保存型にあたることを示唆している。
アスカロシド生合成は、食物利用度(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Butcherら、PNAS 106巻、1875〜79頁(2009年))、発達段階(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Kaplanら、Publ. Lib. Sci. ONE6巻、e17804(2011年))及び温度(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Jooら、J. Biol. Chem. 285巻、29319〜25頁(2010年))を含む、様々な環境因子に依存することが報告されている。
アスカロシドは、C.エレガンス生物学のいくつかの様々な見地にとって重要な役割を果たしている。この機能的な多様性は、対応する構造上の多様性及び複雑な生合成経路と類似している。実施例34〜43及び図37A〜37Kにおいて記載したMS/MSに基づく検討により、脂肪酸由来の側鎖の(ω)-酸化、すなわちアスカリロース単位の4-ヒドロキシベンゾイル化又は(E)-2-メチル-2-ブテノイル化、及びグルコシルエステルを含めて、いくつかの予期されない特徴を示す、以前には未報告の124種の類似体を含む146種のアスカロシドが明らかになった。大部分のアスカロシドは、(ω-1)若しくは(ω)-連結飽和、α,β-不飽和、又は3〜21個(場合によりそれ以上)の炭素に及ぶβ-ヒドロキシ化側鎖を有する、一連のホモログ化合物メンバーとして生じる。重要なことに、一連のものの各々のなかのわずか数種のメンバーが、野生型線虫において多量に産生され、また、アスカリロース(例えば、インドールアスカロシド中と同様に)の4位における修飾などの特定の構造的特徴の取り込み、又はα,β-不飽和物の取り込みは、厳密に制御されているように見える。
実施例52〜53において記載されている結果は、インドールアスカロシドにおけるトリプトファン由来のインドール-3-カルボニル単位の結合は、それらの生合成における最終ステップにあたること、及びこのステップが、高度に特異的であることを示している。インドール-3-カルボニル基のアスカロシドへの結合は、それらの生物機能を劇的に変えることができるので、こうした厳密な調節は理にかなっている。例えば、耐久型幼虫誘発性且つ強い忌避性のシグナルascr#3にインドール-3-カルボニルを付加すると、有効な雌雄同体誘引物質icas#3になる(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))。
20,000匹の蠕虫/ml及び0.5%(湿重量)大腸菌(HB101)を含むS-完全培地(S-complete)中、耐久型幼虫誘発性液体培養条件下で、C.エレガンスを培養した(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Kaplanら、Publ. Lib. Sci. ONE6巻、e17804(2011年))。線虫のL1幼虫に食餌させた112時間後、線虫を振とう器中、22℃でインキュベートした(250rpm)。その後、線虫を1%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)で15分間処理した。残存している線虫を集める前に、寒天プレート上の死亡した線虫から分離した。死亡線虫を真空により除去した後、耐久型幼虫の動物を、M9緩衝液を使用して集め、4℃に置いた。
S.フェルティアエは、ARBICO Organics社(Tucson、AZ)から注文した。ハチノスツヅリガ幼虫(スイムシ、Grubco社、Hamilton、OH)を幼虫1匹あたり50匹のS.フェルティア耐久型幼体に感染させた。2日後、感染した幼虫を新しい直径6cmのペトリ皿に入れ、ホワイトトラップ法を使用して、感染態幼体(IJ)を集めた(全体が参照により本明細書に組み込まれている、LAWRENCE LACEY: MANUAL OF TECHNIQUES IN INSECT PATHOLOGY(1997年))。
感染したトマト植物は、フロリダの圃場地から集めた。根は、根瘤病感染の有無を検査し、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Hussey及びBarkerのPlant Dis. Rep. 57巻、1025〜28頁(1973年)により記載されているものに修正を加えて、ネコブセンチュウの卵を集めた。被感染根は、2分間1%漂白剤により処理した。卵の塊のマトリックスから放出された卵は、植物のくずを採集するための階層化フィルターシステム(nested filter system)(85μm)により、及び卵を採集するために25μmナイロンフィルター(Nytex)により採集した。卵をMILLI-Q水により徹底的により洗浄し、孵化するための少量の水を有する直径8cmのペトリ皿上の20μmフィルターの上に3日間室温で置いた。
L1に食餌させた67時間後に、60%耐久型幼虫(2回の実験)、及び40%の耐久型幼虫を誘発した液体培養物をLC-MSを使用して分析した。4種のアスカロシドは、3つの液体培地すべてに共通であった。60%耐久型幼虫を生じた液体培養物から、各々の濃度を測定した。
S.フェルティアエIJは、MILLI-Q水で3回洗浄し、少量のMILLI-Q水(4〜5ml)により36時間、6cmペトリ皿中でインキュベートした。次の日、1010g/cm2のゲル強度を有する10.7g/Lの寒天上に線虫を置いた(PhytoTechnology Lab. Shawnee Mission、KS)。線虫行動がプレート組成物により影響を受ける可能性を排除するために、内部プレート複製物を有する複数のプレート上で行動アッセイを行った。10μlの水中、およそ300匹のIJを寒天培地上に置き、試験化合物又は抽出物(1〜2μl)を線虫の懸濁液に入れた。液体の吸収(約15分)に際して、自由運動線虫を5〜10分間ビデオ録画した。分散行動は、温度及び季節依存的である。冬の間は、アッセイは室温(22±1℃)で行う。夏の間は、23℃より高いと線虫の行動に影響するので、このアッセイは温度管理環境が必要である。
線虫は、Image Jソフトウェアを使用して定量した(Image Processing and Analysis in Java(登録商標)、National Institutes of Health)。Image Jを使用して視覚化して計数した線虫の数を図63Bに例示している。円内部の線虫は線虫の配置場所であるので、計数した蠕虫の総数から手計算で差し引いた。各処理をそれぞれ9〜11回繰り返した。グラフは、ポジティブ対照、すなわち耐久型幼虫の状態に整えた培地に正規化した。
活性指向分画は、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年)において報告されているものに修正を加えて行った。合計33個の昆虫宿主死骸(ハチノスツヅリガの幼虫)を70%EtOHに入れ、抽出まで-20℃で保存した。昆虫死骸は、Precellys24ホモジナイザーを使用して、2mlチューブ中、1gのセラミック製ジルコニウムビーズ(1.25mm)(ZIRMIL)を使用して、37秒間ホモジナイズした。試料は18400相対遠心力(rcf)で15分間、遠心分離にかけ、上澄み液を凍結乾燥し、MILLI-Q水中で再懸濁した。線虫の分散活性は、実施例60において記載した、分散アッセイ及び昆虫宿主死骸抽出物の生理的に適切な濃度又は分画抽出物を使用して試験した。アスカロシドの生理的に適切な濃度の計算を容易にするために、スイムシの体積を約200μlで見積もった。スイムシの平均重量は232+57mg(n=19)であった。
一対一のアッセイ方法(全体が参照により本明細書に組み込まれている、LAWRENCE LACEY: MANUAL OF TECHNIQUES IN INSECT PATHOLOGY(1997年))を使用した。1匹のスイムシを、24ウェルプレートの1つのウェル上に置いた。感染については、50匹のS.フェルティアエIJを、各ウェル中の水25μl中に置いた。24時間後、このプレートを被感染昆虫幼虫についての試験を行った。感染したものをホワイトトラップ中に置き(全体が参照により本明細書に組み込まれている、LAWRENCE LACEY: MANUAL OF TECHNIQUES IN INSECT PATHOLOGY(1997年))、48時間後に感染したものを、個別のホワイトトラップに置いた。最初のサンプリングは、48時間後に行った。その後、試料は9日間毎日、及び14日目に1回採取した。各実験については、試料は6個の昆虫宿主死骸を含んだ。この昆虫死骸は、1mlの水を含む2mlエッペンドルフチューブに入れた。この死骸を針で刺して、内部の含有物を出し、次にボルテックスした。試料は3380rcfで10分間、遠心分離にかけ、0.5〜1mlの上澄み液を回収した。上澄み液を-20℃で凍結し、次に、凍結乾燥した。その後、該液を50%MeOH200μl中で再懸濁し、0.1%ギ酸により1:1に希釈した。試料pHは、4.3であった。この時点で、各試料の20μlをascr#9の分析用にLC-MSに付した。
昆虫宿主(ハチノスツヅリガ)は、H.バクテリオフォラ、H.ゼアランディカ、H.フロリデンシス、S.カルポカプサエ、S.リオブラベ、又はS.ディアプレペシに感染させた。線虫が昆虫死骸から出現し始めると、70%EtOH1.5mlに入れ、それらを使用するまで-20℃で保管した。その後、昆虫死骸は、Precellys24ホモジナイザーを使用して、2mlチューブ中、1gのセラミック製ジルコニウムビーズ(1.25mm)(ZIRMIL)を使用して、39秒間使用ホモジナイズした。ホモジナイズした死骸は、10分間、3380rcfで遠心分離にかけた。上澄み液は、HPLC用水1mlにより希釈し、-20℃に置き、次いで、SpeedVac(登録商標)(Speed Vac Plus SC210A、Savant)に一晩入れた。死骸抽出物はそれぞれ、50%MeOH1ml中に再懸濁し、18400rcfで15〜20分間、遠心分離にかけた。その後、試料を0.1%ギ酸により1:1の比に希釈すると、pH4.2の試料が得られた。arc#9の存在又は非存在をLC-MSにより決定した。
アスカロシド分析は、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Kaplanら、Publ. Lib. Sci. ONE 6: e17804(2011年)において報告されている方法を使用して行った。
昆虫病原性線虫(EPN)については、昆虫死骸は、IJ段階の分散行動を促進することが知られている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Shapiro-Ilanら、J. Invertebr. Pathol. 83巻、270〜72頁(2003年))。したがって、アッセイは、分散を促進する被消費昆虫死骸中の化合物を同定するために開発されたものである。水10μl中の約300匹のS.フェルティアエのIJを寒天プレートに置いた(図64B)。次に、2μl水(図64C)、又はS.フェルティアエに感染したハチノスツヅリガの幼虫の死骸の水性抽出物(図64D)の一方を、線虫の懸濁液に入れた。水が培地に吸収された後、線虫は自由運動することができた。水処理された線虫は、分散行動をすることなく、配置場所近くに留まった。対照的に、死骸抽出物により処理した線虫は、非常に活発で、解放点から動いて遠ざかった。これは、死骸から去った線虫に対して観察された、同一の明確な分散行動であった。死骸抽出物のLC-MS分析により、アスカロシド(ascr#9)の存在が明らかになり(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))、S.フェルティアエがアスカロシドを分散シグナルとして利用し得るという仮説を支持している。
次に、実施例66の分散バイオアッセイをC.エレガンス耐久型幼虫の分散を試験するために使用することもできるかどうかを見極めるため、このアッセイを検討した。このアッセイについては、60%耐久型幼虫を生じたC.エレガンス液体培養物由来の成長培地を使用した。すべての線虫の除去に続いて、この耐久型幼虫にコンディショニングした培地が、C.エレガンスの耐久型幼虫における分散行動を強力に引き起こした。LC-MSを使用して、耐久型幼虫を形成する培地は、4種の公知のアスカロシド(ascr#2、ascr#3、ascr#8及びicas#9)を含有することが見いだされており(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Butcherら、Nat. Chem. Biol. 3巻、420〜22頁、(2007年)、Pungaliyaら、PNAS 106巻: 7708〜13頁(2009年)、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))(図63A及び図65)、これらのアスカロシドは、C.エレガンスにおける耐久型幼虫への移行をそれぞれ促進することが以前に示されている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Butcherら、Nat. Chem. Biol. 3巻、420〜22頁(2007年)、Butcherら、Org. Lett. 11巻、3100〜03頁(2009年)、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年))。耐久型幼虫形成培養培地中のアスカロシドの濃度は、ascr#2(3.68pmol/μl)、ascr#3(0.165pmol/μl)、ascr#8(0.25pmol/μl)、及びicas#9(0.005pmol/μl)であると見積もられた。
多くの線虫種は、他の線虫種によって放出されるシグナルを感知して応答することができると仮説が立てられた。したがって、C.エレガンスにより放出されたアスカロシドは、有効な忌避シグナルとして機能することができた。分散アッセイでは、S.フェルティアエのIJは、水にさらされても顕著な運動を示さないが、C.エレガンス分散ブレンドにさらされると、非常に活発になり、開放場所から遠ざかった(図63D及び66C)。トマトの根から単離された野生のネコブセンチュウ(メロイドギネ属種であるジャワネコブセンチュウ、M.フロリデンシス及びサツマイモネコブセンチュウの混じりもの)のJ2の運動形態も、C.エレガンス分散ブレンドに対する応答について試験を行った(図66D)。対照と比較して、やはりより多くの線虫(10〜12%)が、C.エレガンスブレンドが導入された場所を去った。これは、少なくともある線虫種が、遠くの関連線虫種の分散ブレンドに応答することができることを示唆している。
S.フェルティアエ分散フェロモンの特徴付けに関すると、昆虫宿主死骸を70%EtOHにより抽出し、逆相(C18)クロマトグラフィーによって分画してアッセイした(図67A〜D)。バイオアッセイにより、3つのフラクションすべて(A、B、及びC)の組合せが活性に必要であることが明らかになった(図67A)。LC-MSによるフラクションの分析(図68A〜C)により、フラクションA中の2種のアスカロシドが明らかになり、これらは合成標品(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年)、von Reussら、J. Am. Chem. Soc. 134巻(3号)、1817〜24頁(2012年))の助けを受けてascr#9及びascr#11と同定した。バイオアッセイは、ascr#9及びascr#11が、生理的に適切な濃度において、独力で活性を有していないことを示した(図67B)。これは、単独で試験した場合、天然のフラクションAが不活性であったからである(図67A)。しかし、生物上適切な濃度(40pmol/μl)で合成ascr#9を天然フラクションB及びCと一緒にすると、元々あった分散活性が戻り(図67C)、これにより、S.フェルティアエの分散ブレンドの活性成分としてascr#9が確認された。フラクションAで発見された第2のアスカロシドであるascr#11もまた、フラクションB及びCと一緒にすると、完全活性が戻り(図67D)、ascr#9又はascr#11いずれか一方は、それ自体、フラクションB及びCと組み合わされて完全な分散活性を再構成するのに十分であった。
甲虫類及びハエ類では、系統発生的な関連種は、それらの集合形成フェロモンブレンド中の成分を共有している(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Symonds & Elgar、Proc. Biol. Sci. 271巻、839〜46頁(2004年)、Symonds & Wertheim、J. Evol. Biol. 18巻、1253〜63頁(2005年))。分散ブレンド成分が系統発生的に関連する線虫種によって、どの程度共有されるのかをさらに試験するために、ステイネルネマ属種及びヘテロラブディティス属種に感染している昆虫宿主死骸を、ascr#9、ascr#2及びascr#11の存在について分析した(図71A〜B)。
C.エレガンスについては、アスカロシドの共有された特有の組成物が、様々な行動を調節する。例えば、交尾及び分散ブレンドは、ascr#2、ascr#3及びascr#8を共有する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁、(2008年)、Pungaliyaら、PNAS 106巻、7708〜13頁(2009年)、Kaplanら、Publ. Lib. Sci. ONE 6: e17804(2011年))。C.エレガンスの交配ブレンドは、特有成分ascr#4を特徴とし(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁、(2008年))、また分散ブレンドは、特有成分icas#9を有する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Publ. Lib. Sci. Biol. 10巻(1号)、e1001237(2012年))。したがって、これは、多くの線虫種にとって一般的なものとなり得ると考えられる。
OP50大腸菌を、5cmの標準寒天プレート(標準線虫成長培地で作製した)上で成長させた。細菌叢は直径16mmであり、20℃で一晩成長させた後、試験に使用した。2つの4mmのスポット(0.6μL)を、細菌叢の反対側に置き(スポット配置を案内するための透明テンプレートを使用する)、液体を沈着させるために数分間経過した後、線虫をアッセイに置いた。記録は、蠕虫を配置した直後に開始した。対照0.6μLを細菌叢の一方に置き、実験的キューとなるもの0.6μLを細菌叢のもう一方に置き、偏りを回避するために、左/右及び上部/底部の間で、試験全体にわたりキューの位置を変えた。
10cmの標準化学走性用プレートを調製し(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Bargmannら、Cell、74巻、515〜27頁(1993年))、使用前日まで4℃で保管した。標準の1cm径銅管を1cm区間に区分分けし、チャンバを保持するのに使用した。雌/雌雄同体を一晩分離しておき、M9緩衝液中で3回洗浄し、次に、1000×ストレプトマイシン50μLにより事前にコンディショニングしたプレート上を2時間這わせ、偽陽性誘引物質を産生し得るいかなる細菌をも死滅させた。次に、線虫を3回洗浄し、最後の洗浄からの上澄み液を対照として、10cmのプレートの境界から1cmのところの銅製チャンバ内に置いた。線虫は、対照チャンバと反対の境界から1cmの銅製チャンバ内のM9中で懸濁した。6時間後、続いて、線虫を取り出し、1Mアジ化ナトリウム3μLにより置きかえた。100匹のC.エレガンスの雄の成体を一晩分けておき、ddH2O中で数回洗浄し、寒天プレートの中心に置いた。数時間後、各領域の2cm以内で麻痺していた雄を点数化した。次に、化学走性指数(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Bargmannら、Cell、74巻、515〜27頁(1993年))を使用し、いずれかの点源への雄の化学走を点数化した。
全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pedenら、Curr. Biol.、15巻、394〜404頁(2005年)において記載されている交尾アッセイを適用した。手短に言えば、40匹の幼成体の雌雄同体/雌を8mmの細菌叢に置いた。C.エレガンスL4の雄を一晩隔離した。雌雄同体/雌の豊富なプレート上に5匹の雄を置いた。3分の期間内に雌雄同体に応答した雄の数を数えた(1匹の雄は、1回しか数えない)。雄が雌雄同体で止まり、且つ連続する10秒を超えて、腹尾部を潜在的な交尾相手にくっつけた場合に、応答していると定義した。それらを、全体が参照により本明細書に組み込まれている、Pedenら、Curr. Biol. 15巻、394〜404頁(2005年)からも適用される応答率について点数化し、それには以下の式を使用して計算した。応答率=[#応答する雄/5匹の雄]×100%。
顕微鏡に取り付けたビデオカメラがデジタルビデオストリームを作製し、これを次に解析した。平均的な蠕虫が対象の各領域で過ごした時間の比を各試験について計算した。実施を容易にするため、1回の試験中の蠕虫はすべて、ほぼ同じサイズであると見なした。したがって、全体の蠕虫の代わりに蠕虫のピクセル数を数え、これにより、対象領域の蠕虫の比率を考慮することができる。形に基づいた蠕虫識別アルゴリズムの必要性もやはり排除して、各フレームを独立して解析することが可能になった。バンドパスフィルターを各フレームに適用して不均一な光の影響をなくし、さらにバックグラウンドに対する蠕虫を目立たせることもした。次に、フィルターをかけた画像に閾値を設けた後、蠕虫を識別した。各実験の全体にわたり、対象領域の場所及びサイズは既知であった。上で記載したフィルタリングを通じて、どのピクセルが蠕虫により占有され、どのピクセルが占有されていないかが分かる。こうして、蠕虫ピクセル数と対象領域内部のすべてのピクセル数との比を計算して、蠕虫占有率を出すことができる。この計算を各フレームについて行い、各領域について、蠕虫占有率対時間の出力プロットを行った。
50〜1000AMU範囲において、ポジティブイオンモードで、エレクトロスプレーイオン化によりThermo Finnigan LCQ Deca XP Maxを使用した。Thermo SeparationスペクトルHPLCシステムは、P4000クォータナリーポンプ、AS 3000自動サンプラー、及びUV 6000ダイオードアレイ検出器から構成した。溶媒は、(a)0.1%ギ酸を含む水、及び(b)90%アセトニトリル-10%水(10mMギ酸アンモニウム含有)とした。カラム温度は60℃に維持し、1.0ml/分の溶媒流量とした。逆相カラム(PLRP-Sポリマー逆相カラム、250x4.6mm id、Varian Inc.社)は、90:10(a、b)を2分間から始めて、その後、20分で5:95にグラジエントし、追加の5分を5:95とする溶媒組成により溶出させた。紫外線吸収は、190nm及び400nmでモニターした。紫外線検出器と質量分析エレクトロスプレーの間の溶媒流量は、低容量用マイクロニードルP450スプリッターバルブ(Upchurch Scientific社、Oak Harbor、WA)により9:1のスプリットにインターフェース連結し、これにより、溶出化合物のスペクトルの取得及びバイオアッセイ用の注入物質の90%を同時に採集することが可能となる。9.7分の保持時間を有する精製ピークは、バイオアッセイにおいて、雄に活性であった。化学イオン化(ポジティブモード)によるLC-MSは、m/z294(M+NH4)の主要ピークを示す。これにより、NMR分析を使用して、ascr#1であると確認した。
この解析のためのリボソーム小サブユニットDNA(SSU rDNA)配列を、GenBankから得た。この配列は、MUSCLEを使用してまず整列させて、続いて、トリミングして、配列と変動する長さを比較し易くした。トリミングした整列は、すべての分類群について表される690文字になった。隣接結合(N-J)解析は、多数決合意樹を作製するための「Consense」を使用して、PHYLIP 3.68パッケージからの「Dnadist」及び「Neighbor」プログラムを使用して行った。
C.エレガンス、ラブディティス属種(Rhabditis sp.)、O.ティプラエ(O. tipulae)、C.属種7、P.パキフィクス、P.レディビブス、コエルニア属種(Koernia sp.)、及びP.ストロンギロイデスは、大腸菌OP50を含む6cm標準寒天プレート上に維持した。大量に育成するために、それらを液体培養物中、すなわち大腸菌HB101を含むS-完全培地中で、インキュベーターシェーカー中、250rpm、20℃で育成した。蠕虫を、S基本培地を使用して数回の洗浄及びろ過のステップにさらし、細菌を除去した。蠕虫を、3000rpmで5分間、遠心分離により洗浄の間に採集した。この蠕虫を6時間、S基本培地中、蠕虫1匹/μLでインキュベートした。その後、蠕虫をろ別し、残りの上澄み液を0.22μmフィルターに通した後、-20℃で保存した。
蠕虫の水試料を凍結乾燥し、メタノール1〜10mlで2回抽出し、綿花でろ過した。抽出物は、真空で濃縮した。得られた残留物をメタノール150μL中で再懸濁し、次いでろ過した。
HPLC-MSは、Agilent Eclipse XDB-C18カラム(9.4×250mm、粒子径5μm)を装備し、10:1のスプリットを使用するQuattro II分析計(マイクロ質量計/Waters社)に接続したAgilent 1100 Series HPLCシステムを使用して行った。0.1%酢酸-アセトニトリル溶媒のグラジエントを使用し、3.6ml/分の流速で、5%アセトニトリル含量を5分間から始めて、次に、40分間かけて、100%に増加した。代謝抽出物は、3.5kVのキャピラリー電圧、及び-40V及び+20Vのコーン電圧をそれぞれ使用し、ネガティブイオン及びポジティブイオンモードでHPLC-ESI-MSにより分析した。アスカロシドは、準分子イオンシグナル(図72A〜D)及びHPLC保持時間(図73)と、C.エレガンスの野生型及びペルオキシソームベータ-酸化変異体から同定した150種の成分ライブラリーのものとを比較することにより同定した。以前の研究により、アスカロシドはすべてMS/MS(2.1mtorr及び30eVの衝突ガスとしてアルゴン)時に、強度の強いC3H5O2生成物イオンを与えることを示しているので、アスカロシドの構造帰属を確認するため、m/z=73.0(図74A〜B)の前駆体イオンにMS/MSスクリーニングを使用した。アスカロシドの定量は、対応するイオン-トレースからのLC-MSシグナルを積分することによって行った。相対アスカロシド濃度は、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#5、ascr#7、ascr#9、ascr#10、oscr#9、oscr#10及びicas#9の合成標品用に決定した応答ファクターを使用して最終的に算出した。依然として合成されていないアスカロシド用応答ファクターは、利用可能な標品について観察されたデータに基づいて推定した。
アスカロシドoscr#9は、以下のスキーム11で示される通り調製した。
アスカロシドoscr#10は、以下のスキーム12で示される通り調製した。
自由生活性及び寄生性(植物、昆虫及び哺乳動物)線虫の両方を含む、様々な線虫種の選択において、アスカロシド(図76A〜D)に関する質量分析法に基づいたスクリーニングを開始した。以前の研究により、C.エレガンスのアスカロシドの産生は、発達段階に特有であることが示されている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Kaplanら、Pub. Lib. Sci. ONE 6巻(3号): e17804(2011年))。広範囲にわたる試料を得るため、発達上の培養混合物からの滲出液を試験し、こうして、すべての幼虫段階及び成体段階によって放出されるアスカロシドの蓄積を含めた。宿主探し又は交尾相手探しにそれぞれ特有して関連するアスカロシドを同定するため、実現可能な場合、寄生性の感染態幼体及び成体を個別に試験した。線虫の分泌物は、複雑なメタボローム試料(実施例79)中のアスカロシドを検出するために最適化したプロトコルを使用し、HPLC-MSにより分析した。これらの分析により、ほとんどの線虫試料中にアスカロシドが存在することが明らかになった。試料は、野生型とC.エレガンスの突然変異株の両方から既に同定されている150種のアスカロシドのライブラリーからの質量分析データと比較した。これらの分析により、分析したほとんどの線虫試料中にアスカロシドが存在することが明らかになった。
一連の合成アスカロシドに対する線虫の行動応答を、いくつかの異なる行動アッセイを使用して試験した。個々のアスカロシド(図79)によりコンディショニングした領域を好むか又は忌避するかを検知するため、自動ソフトウェアを使用する保持アッセイ(図78)を使用した。HPLC/MS検討では、細菌叢を横切って適切な移動を必要とするこのバイオアッセイとの適合性を見るために、線虫種をスクリーニングした。寄生性線虫は、それらの宿主環境に類似の基質を必要とするので、ほとんど除外した。ほとんどの種では、雄は、雌又は雌雄同体よりもかなりよく動くので、P.レディビブスの雌(これは、よく動くので含めた)を除き、本検討はさらに雄に限定した。オスケイウス・ティプラエ(Oscheius tipulae)は、雄が、この雌雄同体種中でわずかの機会しか存在しないことから除外した。代わりに、非常に関連した雄-雌種である、オスケイウス・ドリクロイデス(Oscheius dolichuroides)を含めた。以前の研究において、ascr#2及びascr#3の(1μM濃度から)約1pmolの試料が、C.エレガンスの誘引にとって最も活性な濃度であることが分かっていた(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Srinivasanら、Nature 454巻、1115〜18頁(2008年))。したがって、利用可能な合成アスカロシドは、1nM、1μM、及び1mMの濃度で試験した。
454巻、1115〜18頁、(2008年)、Butcherら、Nat. Chem. Biol. 7巻、420〜22頁(2007年))について、ある距離から雄の誘引を誘発する試験も行った。結果は、ascr#2及びascr#3が、それぞれ500アトモル及び5フェムトモルという少量で、C.エレガンスの雄の誘引を誘発した一方、ascr#8はこのアッセイにおいて活性を示さないことを示している。これらの結果により、ascr#2及びascr#3は、ある距離のC.エレガンスの雄を誘引するよう働く一方、ascr#8は、点源に到着時に、近辺内の雄を留まらせる働きをすることが示唆される。
異なる線虫種により広範囲のアスカロシドが産生されること及び認識されるということを考慮すると、実施例71〜83の知見は、アスカロシドは、幅広い線虫語彙を含むことを示している。これらの知見は、細菌のクオラムセンシングを示唆するものであり、グラム陰性菌の多くの種により、アシルホモセリンラクトン(AHL)の産生と感知の両方がなされている(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Millerら、Annu. Rev. Microbiol. 55巻、165〜99頁(2001年))(図82)。様々なAHLは、構造上非常に類似しているが、N-アシル鎖では、種特異的な変化形を有する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Millerら、Annu. Rev. Microbiol. 55巻、165〜99頁(2001年))。アスカロシドは、非常に似た方法で組織化される。すなわち、それらは同一のアスカリロース糖環から構成されるが、結合している脂肪酸側鎖には変化形を有する(全体が参照により本明細書に組み込まれている、Dickschat、Nat. Prod. Rep. 27巻、343〜69頁(2010年))(図82)。本明細書における結果は、線虫がアスカロシドの同じレパートリーからの組合せを分泌し、それらの周辺環境に特定の化学的シグネチャーをもたらすことを示している。
アスカロシドascr#10、ascr#16、ascr#18、ascr#20及びascr#22が、高分解能質量分析法を使用して、ある種のメロイドギネ属の植物寄生性線虫(図83)中で検出され、同定された(図84〜88)。これらのアスカロシド及び/又はその構造上の誘導体(単独、共同、及び/又はascr#9若しくは他のアスカロシドとの共同)は、メロイドギネ属種において分散剤及び忌避剤として作用することが予期される(ascr#18及びascr#22、並びに/又はそれらの構造上の誘導体(単独、共同、及び/又はascr#9若しくは他のアスカロシドとの共同)は、ヘテロラブディティス属種において、分散剤及び忌避剤として作用することがやはり予期される)。
様々なアスカロシド及びアスカロシドブレンドは、以下に記載する様々な線虫に投与された(表12)。以下に概要を述べるように、アスカロシド及びアスカロシドブレンドは、雄の線虫を誘引する、又は耐久型幼虫形成を促進するなどの様々な線虫行動をもたらした。線虫行動に影響を及ぼす非常に強力な結果は、表中で「強力」と呼ぶ。
以下に概要が述べられる通り、線虫の種によって産生される様々なアスカロシドの例(表13)。アスカロシド源の例は、線虫種及び線虫のタイプにより提示されている。
本発明は、以下の実施形態を包含する。
(1) 線虫の行動を改変する方法であって、
以下の式の化合物
線虫に、有効用量の組成物を投与するステップ
を含み、
線虫が植物に接触している、
方法。
(2) R 1 が、H、-C(R) 3 、-OR、-N(R) 2 、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルである、前記実施形態(1)に記載の方法。
(3) R 1 'が存在しないか、H、-C(R) 3 、-OR、-N(R) 2 、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、又はハロアルケニルであり、各Rは、独立して、H、ハロゲン、アルキル、又はアルケニルである、前記実施形態(1)に記載の方法。
(4) R 2 が、以下の式の部分
(5) R 3 が、H、-CR 6 R 7 R 8 、-C(O)R 8 、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR 5 に連結している結合である、前記実施形態(1)に記載の方法。
(6) R 4 が、H、-CR 6 R 7 R 8 、-C(O)R 8 、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR 5 に連結している結合である、前記実施形態(1)に記載の方法。
(7) R 5 が、H、-OH、-OR 6 、-OCR 6 R 7 R 8 、-CR 6 R 7 R 8 、-NH 2 、-NHR 6 、-NR 6 R 7 、ハロゲン、アルキル、ハロアルキル、アルケニル、ハロアルケニル、アリール、ヘテロアリール、アリールアルキル、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アシル、アミノ酸、ヌクレオシド、5個若しくは6個の炭素原子を有する単糖、又は式Iの別のユニットのR 3 若しくはR 4 に連結している結合である、前記実施形態(1)に記載の方法。
(8) 線虫が、カエノラブディティス属種ではない、前記実施形態(1)に記載の方法。
(9) 線虫が、頭飾輯虫上科(Acuarioidea)、アエルロストロンギルス属(Aelurostrongylus)、ネコ肺虫(Aelurostrongylus abstrusus)、アミドストマティダエ科(Amidostomatidae)、アミドストムム属種(Amidostomum)、ブラジル鉤虫(Ancylostoma braziliense)、イヌ鉤虫(Ancylostoma caninum(イヌ鉤虫)、セイロン鉤虫(Ancylostoma ceylanicum)、ズビニ鉤虫(Ancylostoma duodenale)、アンキロストマ・ツバエフォルメ(Ancylostoma tubaeforme)、鉤虫上科(Ancylostomatidae)、鉤虫科(Ancylostomatinae)、擬円形線虫上科(Angiostrongylidae)、住血線虫属(Angiostrongylus)、アプロクタ上科(Aproctoidea)、トリ回虫(Ascaridia galli)、ヒト回虫(Ascaris lumbricoidies)、ブタ回虫、ブレウイスストリアティナエ亜科(Brevistriatinae)、マレー糸状虫(Brugia malayi)、チモール糸状虫(Brugia timori)、鉤虫科(Bunostominae)、カマルラノイデア上科(Camallanoidea)、カロリネンシス・ミヌトゥス(Carolinensis minutus)、カベルティア属(Chabertia)、大口腸線虫(Chabertia ovina)、シャベルティア科(Chabertiidae)、クロアキナ属(Cloacina)、クロアキニダエ科(Cloacinidae)、クーペリア属(Cooperia)、クーペリア・ペクチナタ(Cooperia pectinata)、クーペリア・パンクタタ(Cooperia punctata)、クーペリイダエ科(Cooperiidae)、コスモケルコイデア上科(Cosmocercoidea)、クレノソマ属(Crenosoma)、クレノソマティダエ科(Crenosomatidae)、シアトストマ属(Cyathostoma)、シアソストミナエ亜科(Cyathostominae)、シクロドントストムム属(Cyclodontostomum)、シリコシクルス・ナサットゥス(Cylicocyclus nassatus)、シストカウルス属(Cystocaulus)、シストカウルス・オクレアトゥス(Cystocaulus ocreatus)、デレトロケファリダエ科(Deletrocephalidae)、デレトロケファルス属(Deletrocephalus)、ディアファノケファリダエ科(Diaphanocephalidae)、ディアファノケファルス科(Diaphanocephaloidea)、ディクチオカウリダエ科(Dictyocaulidae)、ディクチオカウリナエ亜科(Dictyocaulinae)、ディクチオカウルス・アルンフェルディ(Dictyocaulus arnfeldi)、ディクチオカウルス・フィラリア(Dictyocaulus filaria)、ディクチオカウルス・オスレリ(Dictyocaulus osleri)、ウシ肺虫(Dictyocaulus viviparus)、ウシ肺虫(Dictyocausus viviparous)、ディデルフォソトロンギルス属(Didelphostrongylus)、腎虫(Dioctophyma renale)、腎虫上科(Dioctophymatoidea)、ディプロトリエナ上科(Diplotriaenoidea)、イヌ糸状虫(Dirofilaria immitis)、蛇状線虫上科(Dracunculoidea)、ドロマエオストロンギリダエ科(Dromaeostrongylidae)、エラエオフォラ・スケイデリ(Elaeophora scheideri)、エラフォストロンギリナエ亜科(Elaphostrongylinae)、フィラリネマ属(Filarinema)、フィラリア上科(Filarioidea)、フィラロイデス属(Filaroides)、フィラロイディダエ科(Filaroididae)、開嘴虫(Gapeworm)、ガトストマトイデア上科(Ghathostomatoidea)、グロボケファロイディナエ亜科(Globocephaloidinae)、美麗食道虫(Gongylonema pulchrum)、ギアロケファリナエ亜科(Gyalocephalinae)、ハブロネマ属(Habronema)、ハブロネマ上科(Habronematoidea)、捻転胃虫科(Haemonchidae)、捻転胃虫亜科(Haemonchinae)、捻転胃虫(Haemonchus contortus)、ハエモンクス・プラケイ(Haemonchus placei)、ハロケルクス属(Halocercus)、毛様線虫上科(Heligmonellidae)、毛様線虫科(Heligmonellinae)、ヘリグモノイデス・スペキオスス(Heligmonoides speciosus)、ヘリグモソマティダエ科(Heligmosomatidae)、ヘリグモソミダエ科(Heligmosomidae)、ヘリグモソモイデア上科(Heligmosomoidea)、ヘリグモソモイデス属(Heligmosomoides)、ヘルペトストロンギリダエ科(Herpetostrongylidae)、ヘルペトストロンギリナエ亜科(Herpetostrongylinae)、盲腸虫上科(Heterakoidea)、ホウウォルコネマ属(Hovorkonema)、ヒポドントゥス属(Hypodontus)、カリケファルス属(Kalicephalus)、ラビオムルティプィレックス属(Labiomultiplex)、ラビオシムプレックス属(Labiosimplex)、ラビオストロンギルス属(Labiostrongylus)、リビオストロンギリナエ亜科(Libyostrongylinae)、ロア糸状虫(Loa loa)、ロンギストリアタ属(Longistriata)、マクケラッストロンギリダエ科(Mackerrastrongylidae)、マクロポネマ属(Macroponema)、マクロポストロンギルス属(Macropostrongylus)、マンソネラ糸状虫(Mansonella ozzardi)、常在糸状虫(Mansonella perstans)、常在糸状虫(Mansonella streptocerca)、マルシャラジア属(Marshallagia)、肺虫科(Metastrongylidae)、擬円形線虫上科(Metastrongyloidea(肺虫))、擬円形線虫属種(Metastrongyloidea sp.)、RJ-2010、ブタ肺虫属(Metastrongylus)、ブタ肺虫(Metastrongylus apri)、ブタ肺虫(Metastrongylus asymmetricus)、メタストロンギルス・コンフスス(Metastrongylus confusus)、ブタ肺虫(Metastrongylus elongates)、メタストロンギルス・プデンドテクトゥス(Metastrongylus pudendotectus)、メタストロンギルス・サルミ(Metastrongylus salmi)、モリネウス科(Molineidae)、モリネオイデア上科(Molineoidea)、モリロネマ属(Monilonema)、ムエルレリナエ亜科(Muellerinae)、毛細肺虫(Muellerius capillaris)、ムスピセア科(Muspiceoidea)、ネマトディルス亜科(Nematodirinae)、ネマトディルス・バットゥス(Nematodirus battus)、ネオエリグモネルラ・グランヨニ(Neoheligmonella granjoni)、ニコルリナ属(Nicollina)、ニコルリニダエ科(Nicollinidae)、ニッポストロンギルス亜科(Nippostrongylinae)、ニッポストロンギルス・ブラシリエンシス(Nippostrongylus brasiliensis)、腸結節虫属(Oesophagostomum)、オエソファゴストムム・コルムビアヌム(Oesophagostomum columbianum)、牛腸結節虫(Oesophagostomum radiatum)、オバヤシネマ属(Ohbayashinema)、回旋糸状虫(Oncocerca volvulus)、ラット小腸寄生線虫(Orientostrongylus ezoensis)、オスレルス属(Oslerus)、オスレルス・オスレリ(Oslerus osleri)、回旋糸状虫(Ostertagia ostertagi)、オステルタギア・ウェヌロスム(Ostertagia venulosum)、オトロンギルス属(Otostrongylus)、オキシウロディエア属(Oxyurodiea)、パピルロストロンギルス属(Papillostrongylus)、パラエラフォストロニグルス・テヌイス(Paraelaphostronyglus tenuis)、パラフィラロイデス亜属(Parafilaroides)、パラゾニオライムス属(Parazoniolaimus)、フィサロプテラ上科(Physalopteroidea)、ポトロストロンギルス属(Potorostrongylus)、プロトストロンギリダエ科(Protostrongylidae)、プロトストロンギリナエ亜科(Protostrongylinae)、プセウダリイダエ科(Pseudaliidae)、プセウダリウス属(Pseudalius)、リクチュラリア上科(Rictularioidea)、ルゴファリンクス属(Rugopharynx)、セタリア・ケルビ(Setaria cervi)、セウラトイデア科(Seuratoidea)、スキルヤビンギルス属(Skrjabingylus)、旋尾線虫上科(Spiruroidea)、ステヌルス属(Stenurus)、ステファノフィラリア・スティレシ(Stephanofilaria stilesi)、ステファヌリダエ科(Stephanuridae)、ステファヌルス属(Stephanurus)、ストロンギリダ属(Strongylida)、ストロンギリダ属種(Strongylida sp.)、AM-2008、円虫科(Strongylidae)、ストロンギリナエ亜科(Strongylinae)、円虫上科(Strongyloidea)、ストロンギロイデス・パピルロスス(Strongyloides papillosus)、スブルロイデア上科(Subuluroidea)、開嘴虫科(Syngamidae)、シンガムス属(Syngamus)、テラドルサギア・キルクムキンクタ(Teladorsagia circumcincta)、テルニデンス属(Ternidens)、テトラボトリオストロンギルス属(Tetrabothriostrongylus)、テラジア上科(Thelazioidea)、トリヌルス属(Torynurus)、イヌ回虫(Toxocana canis)、ネコ回虫(Toxocara cati)、ウシ回虫(Toxocara vitulorum)、旋毛虫(Trichinella spiralis)、旋毛虫上科(Trichinelloidea)、トリコストロンギルス・アクセイ(Trichostronglyus axei)、トリコストロンギルス・コルブリフォルミス(Trichostronglyus colubriformis)、ヴィトリヌス毛様線虫(Trichostronglyus vitrinus)、毛様線虫科(Trichostrongylidae)、毛様線虫亜科(Trichostrongylinae)、毛様線虫上科(Trichostrongyloidea)、ブタ鞭虫(Trichuris suis)、トログロストロンギルス属(Troglostrongylus)、ウミングマクストロンギルス・パルリクウケンシス(Umingmakstrongylus pallikuukensis)、未分類の擬円形線虫(Unclassified Metastrongyloidea)、未分類のプロトストロンギリダエ科(unclassified Protostrongylidae)、未分類のストロンギリダ属(unclassified Strongylida)、未分類の毛様線虫科(unclassified Trichostrongylidae)、ワレストロンギリナエ亜科(Varestrongylinae)、バンクロフト糸状虫(Wucheria bancrofti)、及びゾニオライムス属(Zoniolaimus)からなる群から選択される、前記実施形態(1)に記載の方法。
(10) 化合物が、少なくとも1つの核酸塩基を含む、前記実施形態(1)に記載の方法。
(11) 化合物が、少なくとも1つの脂肪酸を含む、前記実施形態(1)に記載の方法。
(12) 化合物が、少なくとも1つのアミノ酸を含む、前記実施形態(1)に記載の方法。
(13) 化合物が、少なくとも1つの糖を含む、前記実施形態(1)に記載の方法。
(14) 線虫行動が、生殖、発達、耐久型幼虫形成、集団形成、誘引、忌避、分散、制止、摂食、宿主発見、及び宿主侵入からなる群から選択される、前記実施形態(1)に記載の方法。
(15) 植物が、双子葉植物、単子葉植物、作物植物、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ、ライムギ、綿花、ヒマワリ、ピーナッツ、トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、ビーン、緑インゲン、黄インゲン、ライマメ、エンドウ、チコリー、レタス、エンダイブ、キャベツ、芽キャベツ、ビート、テンサイ、パースニップ、カブ、カリフラワー、ブロッコリ、カブ、ラディッシュ、ホウレンソウ、タマネギ、ニンニク、ナス、コショウ、セロリ、ニンジン、スクアッシュ、パンプキン、ズッキーニ、キュウリ、リンゴ、西洋ナシ、メロン、柑橘、イチゴ、ブドウ、ラズベリー、パイナップル、ダイズ、タバコ、トマト、モロコシ、サトウキビ、観葉植物、シロイヌナズナ、セントポーリア属、ツクバネアサガオ、テンジクアオイ、ポインセチア、キク、カーネーション及びヒャクニチソウからなる群から選択される、前記実施形態(1)に記載の方法。
(16) 植物に接触している線虫の生殖を促進するか、又は阻害する方法であって、
以下の式の化合物
植物に接触している線虫に、有効用量の組成物を投与するステップ
を含む、方法。
(17) 組成物が、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#12、ascr#14、ascr#16、ascr#18、ascr#20、ascr#22、ascr#24、ascr#26、icas#9、hbas#3、及びoscr#9からなる群から選択される1つ以上の化合物を含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(18) 組成物が、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#4、ascr#5、ascr#7、ascr#8、ascr#10、icas#9、hbas#3、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(19) 線虫が、カエノラブディティス・エレガンスである、前記実施形態(18)に記載の方法。
(20) 組成物が、ascr#2、ascr#3、ascr#4、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(21) 線虫が、カエノラブディティス・ブレンネリ(Caenorhabditis brenneri)、カエノラブディティス・レマネイ(Caenorhabditis remanei)、ブリグサセンチュウ(Caenorhabditis briggsae)、又はカエノラブディティス・ヤポニカ(Caenorhabditis japonica)である、前記実施形態(20)に記載の方法。
(22) 組成物が、ascr#1、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、oscr#9、oscr#10、icas#9、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(23) 線虫が、パナグレルルス・レディビブスである、前記実施形態(22)に記載の方法。
(24) 組成物が、ascr#2、ascr#3、ascr#8、icas#9、ascr#9、ascr#10、ascr#16、ascr#18、ascr#20、ascr#22、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(25) 線虫が、ジャワネコブセンチュウ、メロイドギネ・フロリデンシス、サツマイモネコブセンチュウ、又はキタネコブセンチュウである、前記実施形態(24)に記載の方法。
(26) 組成物が、ascr#9、ascr#11及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(27) 線虫が、ステイネルネマ・リオブラベ、ステイネルネマ・ディアプレペシ、又はステイネルネマ・カルポカプセである、前記実施形態(26)に記載の方法。
(28) 組成物が、ascr#2、ascr#3、ascr#8、ascr#9、icas#9、oscr#10、ascr#11、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(29) 線虫が、ステイネルネマ・フェルティアエである、前記実施形態(28)に記載の方法。
(30) 組成物が、ascr#1、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#10、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(31) 線虫が、ステイネルネマ・グラセリである、前記実施形態(30)に記載の方法。
(32) 組成物が、ascr#9、ascr#18、ascr#22、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(33) 線虫が、ヘテロラブディティス・バクテリオフォラ、ヘテロラブディティス・ゼアランディカ、又はヘテロラブディティス・フロリデンシスである、前記実施形態(32)に記載の方法。
(34) 組成物が、ascr#1、ascr#3、ascr#7、ascr#10、ascr#18、ascr#20、ascr#22、ascr#24、ascr#26、及びそれらの組合せを含む、前記実施形態(16)に記載の方法。
(35) 線虫が、ニッポストロンギルス・ブラシリエンシス又はペロデラ・ストロンギロイデスである、前記実施形態(34)に記載の方法。
(36) 植物における第1の場所に線虫の集団形成を促進するか又は阻害する方法であって、前記方法が、
(i)第1の場所における線虫の集団形成を促進するか又は阻害するのに有効な条件下、第1の場所に、1つ以上の単離モジュレーター化合物を接触させるステップ、
(ii)第1の場所における線虫の集団形成を促進するか又は阻害するのに有効な条件下、第2の場所に、1つ以上の単離モジュレーター化合物を接触させるステップであって、第2の場所における接触させる前記ステップが、第1の場所における線虫の集団形成に影響を及ぼすことができるよう、第1の場所と第2の場所に間隔を設けるステップ、
を含み、
前記化合物が、式
方法。
(37) 1つ以上の単離モジュレーター化合物が、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#12、ascr#14、ascr#16、ascr#18、ascr#20、ascr#22、ascr#24、ascr#26、icas#9、hbas#3、及びoscr#9からなる群から選択される、前記実施形態(36)に記載の方法。
(38) 第2の場所が前記植物中にある、前記実施形態(36)に記載の方法。
(39) 植物が、双子葉植物、単子葉植物、作物植物、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ、ライムギ、綿花、ヒマワリ、ピーナッツ、トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、ビーン、緑インゲン、黄インゲン、ライマメ、エンドウ、チコリー、レタス、エンダイブ、キャベツ、芽キャベツ、ビート、テンサイ、パースニップ、カブ、カリフラワー、ブロッコリ、カブ、ラディッシュ、ホウレンソウ、タマネギ、ニンニク、ナス、コショウ、セロリ、ニンジン、スクアッシュ、パンプキン、ズッキーニ、キュウリ、リンゴ、西洋ナシ、メロン、柑橘、イチゴ、ブドウ、ラズベリー、パイナップル、ダイズ、タバコ、トマト、モロコシ、サトウキビ、観葉植物、シロイヌナズナ、セントポーリア属、ツクバネアサガオ、テンジクアオイ、ポインセチア、キク、カーネーション及びヒャクニチソウからなる群から選択される、前記実施形態(36)に記載の方法。
(40) 接触させる前記ステップが、高圧散布法、低圧散布法、浸漬法、噴霧法、発泡法、煙霧法、被覆法、又は外皮形成法を含む、前記実施形態(36)に記載の方法。
(41) 第2の場所に線虫に有害な毒素を接触させるステップをさらに含む、前記実施形態(36)に記載の方法。
(42) 第1の場所が昆虫集団にある、前記実施形態(36)に記載の方法。
(43) 昆虫が、ヨーロピアンコーンボーラー、シロイチモンジヨトウガの幼虫、イラクサキンウワバ、オオタバコガの幼虫、ツマジロクサヨトウ、コナガ、キャベツルートマゴット、タマネギバエ、タネバエ、メイガの幼虫、ペパーマゴット、及びトマトピンワームからなる群から選択される、前記実施形態(42)に記載の方法。
(44) 植物の寄生生物感染の可能性を低減するか、又は予防する方法であって、
以下の式の化合物
植物の寄生生物感染の可能性を低減するか、又は予防するのに十分な量の組成物を植物に投与するステップ、
を含む、方法。
(45) 寄生生物が、線虫又は昆虫である、前記実施形態(44)に記載の方法。
(46) 組成物が、ascr#1、ascr#2、ascr#3、ascr#7、ascr#8、ascr#9、ascr#10、ascr#11、ascr#12、ascr#14、ascr#16、ascr#18、ascr#20、ascr#22、ascr#24、ascr#26、icas#9、hbas#3、及びoscr#9からなる群から選択される1つ以上の化合物を含む、前記実施形態(44)に記載の方法。
(47) 植物が、双子葉植物、単子葉植物、作物植物、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ、ライムギ、綿花、ヒマワリ、ピーナッツ、トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、ビーン、緑インゲン、黄インゲン、ライマメ、エンドウ、チコリー、レタス、エンダイブ、キャベツ、芽キャベツ、ビート、テンサイ、パースニップ、カブ、カリフラワー、ブロッコリ、カブ、ラディッシュ、ホウレンソウ、タマネギ、ニンニク、ナス、コショウ、セロリ、ニンジン、スクアッシュ、パンプキン、ズッキーニ、キュウリ、リンゴ、西洋ナシ、メロン、柑橘、イチゴ、ブドウ、ラズベリー、パイナップル、ダイズ、タバコ、トマト、モロコシ、サトウキビ、観葉植物、シロイヌナズナ、セントポーリア属、ツクバネアサガオ、テンジクアオイ、ポインセチア、キク、カーネーション及びヒャクニチソウからなる群から選択される、前記実施形態(44)に記載の方法。
(48) 寄生生物が昆虫である、前記実施形態(44)に記載の方法。
(49) 昆虫が、ヨーロピアンコーンボーラー、シロイチモンジヨトウガの幼虫、イラクサキンウワバ、オオタバコガの幼虫、ツマジロクサヨトウ、コナガ、キャベツルートマゴット、タマネギバエ、タネバエ、メイガの幼虫、ペパーマゴット、及びトマトピンワームからなる群から選択される、前記実施形態(44)に記載の方法。
(50) 寄生生物が、頭飾輯虫上科、アエルロストロンギルス属、ネコ肺虫、アミドストマティダエ科、アミドストムム属種、ブラジル鉤虫、イヌ鉤虫(イヌ鉤虫)、セイロン鉤虫、ズビニ鉤虫、アンキロストマ・ツバエフォルメ、鉤虫上科、鉤虫科、擬円形線虫上科、住血線虫属、アプロクタ上科、トリ回虫、ヒト回虫、ブタ回虫、ブレウイスストリアティナエ亜科、マレー糸状虫、チモール糸状虫、鉤虫科、カマルラノイデア上科、カロリネンシス・ミヌトゥス、カベルティア属、大口腸線虫、シャベルティア科、クロアキナ属、クロアキニダエ科、クーペリア属、クーペリア・ペクチナタ、クーペリア・パンクタタ、クーペリイダエ科、コスモケルコイデア上科、クレノソマ属、クレノソマティダエ科、シアトストマ属、シアソストミナエ亜科、シクロドントストムム属、シリコシクルス・ナサットゥス、シストカウルス属、シストカウルス・オクレアトゥス、デレトロケファリダエ科、デレトロケファルス属、ディアファノケファリダエ科、ディアファノケファルス科、ディクチオカウリダエ科、ディクチオカウリナエ亜科、ディクチオカウルス・アルンフェルディ、ディクチオカウルス・フィラリア、ディクチオカウルス・オスレリ、ウシ肺虫、ウシ肺虫、ディデルフォソトロンギルス属、腎虫、腎虫上科、ディプロトリエナ上科、イヌ糸状虫、蛇状線虫上科、ドロマエオストロンギリダエ科、エラエオフォラ・スケイデリ、エラフォストロンギィナエ亜科、フィラリネマ属、フィラリア上科、フィラロイデス属、フィラロイディダエ科、開嘴虫、ガトストマトイデア上科、グロボケファロイディナエ亜科、美麗食道虫、ギアロケファリナエ亜科、ハブロネマ属、ハブロネマ上科、捻転胃虫科、捻転胃虫亜科、捻転胃虫、ハエモンクス・プラケイ、ハロケルクス属、毛様線虫上科、毛様線虫科、ヘリグモノイデス・スペキオスス、ヘリグモソマティダエ科、ヘリグモソミダエ科、ヘリグモソモイデア上科、ヘリグモソモイデス属、ヘルペトストロンギリダエ科、ヘルペトストロンギリナエ亜科、盲腸虫上科、ホウウォルコネマ属、ヒポドントゥス属、カリケファルス属、ラビオムルティプィレックス属、ラビオシムプレックス属、ラビオストロンギルス属、リビオストロンギリナエ亜科、ロア糸状虫、ロンギストリアタ属、マクケラッストロンギリダエ科、マクロポネマ属、マクロポストロンギルス属、マンソネラ糸状虫、常在糸状虫、常在糸状虫、マルシャラジア属、肺虫科、擬円形線虫上科(肺虫)、擬円形線虫属種、RJ-2010、ブタ肺虫属、ブタ肺虫、ブタ肺虫、メタストロンギルス・コンフスス、ブタ肺虫、メタストロンギルス・プデンドテクトゥス、メタストロンギルス・サルミ、モリネウス科、モリネオイデア上科、モリロネマ属、ムエルレリナエ亜科、毛細肺虫、ムスピセア科、ネマトディルス亜科、ネマトディルス・バットゥス、ネオエリグモネルラ・グランヨニ、ニコルリナ属、ニコルリニダエ科、ニッポストロンギルス亜科、ニッポストロンギルス・ブラシリエンシス、腸結節虫属、オエソファゴストムム・コルムビアヌム、牛腸結節虫、オバヤシネマ属、回旋糸状虫、ラット小腸寄生線虫、オスレルス属、オスレルス・オスレリ、回旋糸状虫、オステルタギア・ウェヌロスム、オトロンギルス属、オキシウロディエア属、パピルロストロンギルス属、パラエラフォストロニグルス・テヌイス、パラフィラロイデス亜属、パラゾニオライムス属、フィサロプテラ上科、ポトロストロンギルス属、プロトストロンギリダエ科、プロトストロンギリナエ亜科、プセウダリイダエ科、プセウダリウス属、リクチュラリア上科、ルゴファリンクス属、セタリア・ケルビ、セウラトイデア科、スキルヤビンギルス属、旋尾線虫上科、ステヌルス属、ステファノフィラリア・スティレシ、ステファヌリダエ科、ステファヌルス属、ストロンギリダ属、ストロンギリダ属種、AM-2008、円虫科、ストロンギリナエ亜科、円虫上科、ストロンギロイデス・パピルロスス、スブルロイデア上科、開嘴虫科、シンガムス属、テラドルサギア・キルクムキンクタ、テルニデンス属、テトラボトリオストロンギルス属、テラジア上科、トリヌルス属、イヌ回虫、ネコ回虫、ウシ回虫、旋毛虫、旋毛虫上科、トリコストロンギルス・アクセイ、トリコストロンギルス・コルブリフォルミス、ヴィトリヌス毛様線虫、毛様線虫科、毛様線虫亜科、毛様線虫上科、豚鞭虫、トログロストロンギルス属、ウミングマクストロンギルス・パルリクウケンシス、未分類の擬円形線虫、未分類のプロトストロンギリダエ科、未分類のストロンギリダ属、未分類の毛様線虫科、ワレストロンギリナエ亜科、バンクロフト糸状虫、及びゾニオライムス属からなる群から選択される、前記実施形態(44)に記載の方法。
Claims (35)
- 生殖、発達、耐久型幼虫形成、集団形成、誘引、忌避、分散、摂食、宿主発見、及び宿主侵入からなる群から選択される線虫の行動を改変する方法であって、
以下
線虫に、有効用量の組成物を投与するステップ
を含み、
線虫が植物に接触している、
方法。 - 線虫が、カエノラブディティス属種ではない、請求項1に記載の方法。
- 線虫が、頭飾輯虫上科(Acuarioidea)、アエルロストロンギルス属(Aelurostrongylus)、ネコ肺虫(Aelurostrongylus abstrusus)、アミドストマティダエ科(Amidostomatidae)、アミドストムム属種(Amidostomum)、ブラジル鉤虫(Ancylostoma braziliense)、イヌ鉤虫(Ancylostoma caninum(イヌ鉤虫)、セイロン鉤虫(Ancylostoma ceylanicum)、ズビニ鉤虫(Ancylostoma duodenale)、アンキロストマ・ツバエフォルメ(Ancylostoma tubaeforme)、鉤虫上科(Ancylostomatidae)、鉤虫科(Ancylostomatinae)、擬円形線虫上科(Angiostrongylidae)、住血線虫属(Angiostrongylus)、アプロクタ上科(Aproctoidea)、トリ回虫(Ascaridia galli)、ヒト回虫(Ascaris lumbricoidies)、ブタ回虫、ブレウイスストリアティナエ亜科(Brevistriatinae)、マレー糸状虫(Brugia malayi)、チモール糸状虫(Brugia timori)、鉤虫科(Bunostominae)、カマルラノイデア上科(Camallanoidea)、カロリネンシス・ミヌトゥス(Carolinensis minutus)、カベルティア属(Chabertia)、大口腸線虫(Chabertia ovina)、シャベルティア科(Chabertiidae)、クロアキナ属(Cloacina)、クロアキニダエ科(Cloacinidae)、クーペリア属(Cooperia)、クーペリア・ペクチナタ(Cooperia pectinata)、クーペリア・パンクタタ(Cooperia punctata)、クーペリイダエ科(Cooperiidae)、コスモケルコイデア上科(Cosmocercoidea)、クレノソマ属(Crenosoma)、クレノソマティダエ科(Crenosomatidae)、シアトストマ属(Cyathostoma)、シアソストミナエ亜科(Cyathostominae)、シクロドントストムム属(Cyclodontostomum)、シリコシクルス・ナサットゥス(Cylicocyclus nassatus)、シストカウルス属(Cystocaulus)、シストカウルス・オクレアトゥス(Cystocaulus ocreatus)、デレトロケファリダエ科(Deletrocephalidae)、デレトロケファルス属(Deletrocephalus)、ディアファノケファリダエ科(Diaphanocephalidae)、ディアファノケファルス科(Diaphanocephaloidea)、ディクチオカウリダエ科(Dictyocaulidae)、ディクチオカウリナエ亜科(Dictyocaulinae)、ディクチオカウルス・アルンフェルディ(Dictyocaulus arnfeldi)、ディクチオカウルス・フィラリア(Dictyocaulus filaria)、ディクチオカウルス・オスレリ(Dictyocaulus osleri)、ウシ肺虫(Dictyocaulus viviparus)、ウシ肺虫(Dictyocausus viviparous)、ディデルフォソトロンギルス属(Didelphostrongylus)、腎虫(Dioctophyma renale)、腎虫上科(Dioctophymatoidea)、ディプロトリエナ上科(Diplotriaenoidea)、イヌ糸状虫(Dirofilaria immitis)、蛇状線虫上科(Dracunculoidea)、ドロマエオストロンギリダエ科(Dromaeostrongylidae)、エラエオフォラ・スケイデリ(Elaeophora scheideri)、エラフォストロンギリナエ亜科(Elaphostrongylinae)、フィラリネマ属(Filarinema)、フィラリア上科(Filarioidea)、フィラロイデス属(Filaroides)、フィラロイディダエ科(Filaroididae)、開嘴虫(Gapeworm)、ガトストマトイデア上科(Ghathostomatoidea)、グロボケファロイディナエ亜科(Globocephaloidinae)、美麗食道虫(Gongylonema pulchrum)、ギアロケファリナエ亜科(Gyalocephalinae)、ハブロネマ属(Habronema)、ハブロネマ上科(Habronematoidea)、捻転胃虫科(Haemonchidae)、捻転胃虫亜科(Haemonchinae)、捻転胃虫(Haemonchus contortus)、ハエモンクス・プラケイ(Haemonchus placei)、ハロケルクス属(Halocercus)、毛様線虫上科(Heligmonellidae)、毛様線虫科(Heligmonellinae)、ヘリグモノイデス・スペキオスス(Heligmonoides speciosus)、ヘリグモソマティダエ科(Heligmosomatidae)、ヘリグモソミダエ科(Heligmosomidae)、ヘリグモソモイデア上科(Heligmosomoidea)、ヘリグモソモイデス属(Heligmosomoides)、ヘルペトストロンギリダエ科(Herpetostrongylidae)、ヘルペトストロンギリナエ亜科(Herpetostrongylinae)、盲腸虫上科(Heterakoidea)、ホウウォルコネマ属(Hovorkonema)、ヒポドントゥス属(Hypodontus)、カリケファルス属(Kalicephalus)、ラビオムルティプィレックス属(Labiomultiplex)、ラビオシムプレックス属(Labiosimplex)、ラビオストロンギルス属(Labiostrongylus)、リビオストロンギリナエ亜科(Libyostrongylinae)、ロア糸状虫(Loa loa)、ロンギストリアタ属(Longistriata)、マクケラッストロンギリダエ科(Mackerrastrongylidae)、マクロポネマ属(Macroponema)、マクロポストロンギルス属(Macropostrongylus)、マンソネラ糸状虫(Mansonella ozzardi)、常在糸状虫(Mansonella perstans)、常在糸状虫(Mansonella streptocerca)、マルシャラジア属(Marshallagia)、肺虫科(Metastrongylidae)、擬円形線虫上科(Metastrongyloidea(肺虫))、擬円形線虫属種(Metastrongyloidea sp.)、RJ-2010、ブタ肺虫属(Metastrongylus)、ブタ肺虫(Metastrongylus apri)、ブタ肺虫(Metastrongylus asymmetricus)、メタストロンギルス・コンフスス(Metastrongylus confusus)、ブタ肺虫(Metastrongylus elongates)、メタストロンギルス・プデンドテクトゥス(Metastrongylus pudendotectus)、メタストロンギルス・サルミ(Metastrongylus salmi)、モリネウス科(Molineidae)、モリネオイデア上科(Molineoidea)、モリロネマ属(Monilonema)、ムエルレリナエ亜科(Muellerinae)、毛細肺虫(Muellerius capillaris)、ムスピセア科(Muspiceoidea)、ネマトディルス亜科(Nematodirinae)、ネマトディルス・バットゥス(Nematodirus battus)、ネオエリグモネルラ・グランヨニ(Neoheligmonella granjoni)、ニコルリナ属(Nicollina)、ニコルリニダエ科(Nicollinidae)、ニッポストロンギルス亜科(Nippostrongylinae)、ニッポストロンギルス・ブラシリエンシス(Nippostrongylus brasiliensis)、腸結節虫属(Oesophagostomum)、オエソファゴストムム・コルムビアヌム(Oesophagostomum columbianum)、牛腸結節虫(Oesophagostomum radiatum)、オバヤシネマ属(Ohbayashinema)、回旋糸状虫(Oncocerca volvulus)、ラット小腸寄生線虫(Orientostrongylus ezoensis)、オスレルス属(Oslerus)、オスレルス・オスレリ(Oslerus osleri)、回旋糸状虫(Ostertagia ostertagi)、オステルタギア・ウェヌロスム(Ostertagia venulosum)、オトロンギルス属(Otostrongylus)、オキシウロディエア属(Oxyurodiea)、パピルロストロンギルス属(Papillostrongylus)、パラエラフォストロニグルス・テヌイス(Paraelaphostronyglus tenuis)、パラフィラロイデス亜属(Parafilaroides)、パラゾニオライムス属(Parazoniolaimus)、フィサロプテラ上科(Physalopteroidea)、ポトロストロンギルス属(Potorostrongylus)、プロトストロンギリダエ科(Protostrongylidae)、プロトストロンギリナエ亜科(Protostrongylinae)、プセウダリイダエ科(Pseudaliidae)、プセウダリウス属(Pseudalius)、リクチュラリア上科(Rictularioidea)、ルゴファリンクス属(Rugopharynx)、セタリア・ケルビ(Setaria cervi)、セウラトイデア科(Seuratoidea)、スキルヤビンギルス属(Skrjabingylus)、旋尾線虫上科(Spiruroidea)、ステヌルス属(Stenurus)、ステファノフィラリア・スティレシ(Stephanofilaria stilesi)、ステファヌリダエ科(Stephanuridae)、ステファヌルス属(Stephanurus)、ストロンギリダ属(Strongylida)、ストロンギリダ属種(Strongylida sp.)、AM-2008、円虫科(Strongylidae)、ストロンギリナエ亜科(Strongylinae)、円虫上科(Strongyloidea)、ストロンギロイデス・パピルロスス(Strongyloides papillosus)、スブルロイデア上科(Subuluroidea)、開嘴虫科(Syngamidae)、シンガムス属(Syngamus)、テラドルサギア・キルクムキンクタ(Teladorsagia circumcincta)、テルニデンス属(Ternidens)、テトラボトリオストロンギルス属(Tetrabothriostrongylus)、テラジア上科(Thelazioidea)、トリヌルス属(Torynurus)、イヌ回虫(Toxocana canis)、ネコ回虫(Toxocara cati)、ウシ回虫(Toxocara vitulorum)、旋毛虫(Trichinella spiralis)、旋毛虫上科(Trichinelloidea)、トリコストロンギルス・アクセイ(Trichostronglyus axei)、トリコストロンギルス・コルブリフォルミス(Trichostronglyus colubriformis)、ヴィトリヌス毛様線虫(Trichostronglyus vitrinus)、毛様線虫科(Trichostrongylidae)、毛様線虫亜科(Trichostrongylinae)、毛様線虫上科(Trichostrongyloidea)、ブタ鞭虫(Trichuris suis)、トログロストロンギルス属(Troglostrongylus)、ウミングマクストロンギルス・パルリクウケンシス(Umingmakstrongylus pallikuukensis)、未分類の擬円形線虫(Unclassified Metastrongyloidea)、未分類のプロトストロンギリダエ科(unclassified Protostrongylidae)、未分類のストロンギリダ属(unclassified Strongylida)、未分類の毛様線虫科(unclassified Trichostrongylidae)、ワレストロンギリナエ亜科(Varestrongylinae)、バンクロフト糸状虫(Wucheria bancrofti)、及びゾニオライムス属(Zoniolaimus)からなる群から選択される、請求項1又は2に記載の方法。
- 植物が、双子葉植物、単子葉植物、作物植物、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ、ライムギ、綿花、ヒマワリ、ピーナッツ、トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、ビーン、緑インゲン、黄インゲン、ライマメ、エンドウ、チコリー、レタス、エンダイブ、キャベツ、芽キャベツ、ビート、テンサイ、パースニップ、カブ、カリフラワー、ブロッコリ、カブ、ラディッシュ、ホウレンソウ、タマネギ、ニンニク、ナス、コショウ、セロリ、ニンジン、スクアッシュ、パンプキン、ズッキーニ、キュウリ、リンゴ、西洋ナシ、メロン、柑橘、イチゴ、ブドウ、ラズベリー、パイナップル、ダイズ、タバコ、トマト、モロコシ、サトウキビ、観葉植物、シロイヌナズナ、セントポーリア属、ツクバネアサガオ、テンジクアオイ、ポインセチア、キク、カーネーション及びヒャクニチソウからなる群から選択される、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- 植物に接触している線虫の生殖を促進するか、又は阻害する方法であって、
以下
植物に接触している線虫に、有効用量の組成物を投与するステップ
を含む、方法。 - 組成物が、以下
- 組成物が、
- 線虫が、カエノラブディティス・エレガンスである、請求項7に記載の方法。
- 組成物が、
- 線虫が、パナグレルルス・レディビブスである、請求項9に記載の方法。
- 組成物が、
- 線虫が、ジャワネコブセンチュウ、メロイドギネ・フロリデンシス、サツマイモネコブセンチュウ、又はキタネコブセンチュウである、請求項11に記載の方法。
- 組成物が、
- 線虫が、ステイネルネマ・リオブラベ、ステイネルネマ・ディアプレペシ、又はステイネルネマ・カルポカプセである、請求項13に記載の方法。
- 組成物が、
- 線虫が、ステイネルネマ・フェルティアエである、請求項15に記載の方法。
- 組成物が、
- 線虫が、ヘテロラブディティス・バクテリオフォラ、ヘテロラブディティス・ゼアランディカ、又はヘテロラブディティス・フロリデンシスである、請求項17に記載の方法。
- 組成物が、
- 線虫が、ニッポストロンギルス・ブラシリエンシス又はペロデラ・ストロンギロイデスである、請求項19に記載の方法。
- 植物における第1の場所に線虫の集団形成を促進するか又は阻害する方法であって、前記方法が、
(i)第1の場所における線虫の集団形成を促進するか又は阻害するのに有効な条件下、第1の場所に、第1の単離モジュレーター化合物を接触させるステップ、
(ii)第1の場所における線虫の集団形成を促進するか又は阻害するのに有効な条件下、第2の場所に、第2の単離モジュレーター化合物を接触させるステップであって、第2の場所における接触させる前記ステップが、第1の場所における線虫の集団形成に影響を及ぼすことができるよう、第1の場所と第2の場所に間隔を設けるステップ、
を含み、
前記第1及び第2の単離モジュレーター化合物が、互いに独立して
第1及び第2の単離モジュレーター化合物が異なる、方法。 - 第1及び第2の単離モジュレーター化合物が、
- 第2の場所が前記植物中にある、請求項21又は22に記載の方法。
- 植物が、双子葉植物、単子葉植物、作物植物、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ、ライムギ、綿花、ヒマワリ、ピーナッツ、トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、ビーン、緑インゲン、黄インゲン、ライマメ、エンドウ、チコリー、レタス、エンダイブ、キャベツ、芽キャベツ、ビート、テンサイ、パースニップ、カブ、カリフラワー、ブロッコリ、カブ、ラディッシュ、ホウレンソウ、タマネギ、ニンニク、ナス、コショウ、セロリ、ニンジン、スクアッシュ、パンプキン、ズッキーニ、キュウリ、リンゴ、西洋ナシ、メロン、柑橘、イチゴ、ブドウ、ラズベリー、パイナップル、ダイズ、タバコ、トマト、モロコシ、サトウキビ、観葉植物、シロイヌナズナ、セントポーリア属、ツクバネアサガオ、テンジクアオイ、ポインセチア、キク、カーネーション及びヒャクニチソウからなる群から選択される、請求項21〜23のいずれか1項に記載の方法。
- 接触させる前記ステップが、高圧散布法、低圧散布法、浸漬法、噴霧法、発泡法、煙霧法、被覆法、又は外皮形成法を含む、請求項21〜24のいずれか1項に記載の方法。
- 第2の場所に線虫に有害な毒素を接触させるステップをさらに含む、請求項21〜25のいずれか1項に記載の方法。
- 第1の場所が昆虫集団にある、請求項21〜26のいずれか1項に記載の方法。
- 昆虫が、ヨーロピアンコーンボーラー、シロイチモンジヨトウガの幼虫、イラクサキンウワバ、オオタバコガの幼虫、ツマジロクサヨトウ、コナガ、キャベツルートマゴット、タマネギバエ、タネバエ、メイガの幼虫、ペパーマゴット、及びトマトピンワームからなる群から選択される、請求項27に記載の方法。
- 植物の寄生生物感染の可能性を低減するか、又は予防する方法であって、
以下
植物の寄生生物感染の可能性を低減するか、又は予防するのに十分な量の組成物を植物に投与するステップ、
を含む、方法。 - 寄生生物が、線虫又は昆虫である、請求項29に記載の方法。
- 組成物が、
- 植物が、双子葉植物、単子葉植物、作物植物、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ、ライムギ、綿花、ヒマワリ、ピーナッツ、トウモロコシ、ジャガイモ、サツマイモ、ビーン、緑インゲン、黄インゲン、ライマメ、エンドウ、チコリー、レタス、エンダイブ、キャベツ、芽キャベツ、ビート、テンサイ、パースニップ、カブ、カリフラワー、ブロッコリ、カブ、ラディッシュ、ホウレンソウ、タマネギ、ニンニク、ナス、コショウ、セロリ、ニンジン、スクアッシュ、パンプキン、ズッキーニ、キュウリ、リンゴ、西洋ナシ、メロン、柑橘、イチゴ、ブドウ、ラズベリー、パイナップル、ダイズ、タバコ、トマト、モロコシ、サトウキビ、観葉植物、シロイヌナズナ、セントポーリア属、ツクバネアサガオ、テンジクアオイ、ポインセチア、キク、カーネーション及びヒャクニチソウからなる群から選択される、請求項29〜31のいずれか1項に記載の方法。
- 寄生生物が昆虫である、請求項29〜32のいずれか1項に記載の方法。
- 昆虫が、ヨーロピアンコーンボーラー、シロイチモンジヨトウガの幼虫、イラクサキンウワバ、オオタバコガの幼虫、ツマジロクサヨトウ、コナガ、キャベツルートマゴット、タマネギバエ、タネバエ、メイガの幼虫、ペパーマゴット、及びトマトピンワームからなる群から選択される、請求項30〜33のいずれか1項に記載の方法。
- 寄生生物が、頭飾輯虫上科、アエルロストロンギルス属、ネコ肺虫、アミドストマティダエ科、アミドストムム属種、ブラジル鉤虫、イヌ鉤虫(イヌ鉤虫)、セイロン鉤虫、ズビニ鉤虫、アンキロストマ・ツバエフォルメ、鉤虫上科、鉤虫科、擬円形線虫上科、住血線虫属、アプロクタ上科、トリ回虫、ヒト回虫、ブタ回虫、ブレウイスストリアティナエ亜科、マレー糸状虫、チモール糸状虫、鉤虫科、カマルラノイデア上科、カロリネンシス・ミヌトゥス、カベルティア属、大口腸線虫、シャベルティア科、クロアキナ属、クロアキニダエ科、クーペリア属、クーペリア・ペクチナタ、クーペリア・パンクタタ、クーペリイダエ科、コスモケルコイデア上科、クレノソマ属、クレノソマティダエ科、シアトストマ属、シアソストミナエ亜科、シクロドントストムム属、シリコシクルス・ナサットゥス、シストカウルス属、シストカウルス・オクレアトゥス、デレトロケファリダエ科、デレトロケファルス属、ディアファノケファリダエ科、ディアファノケファルス科、ディクチオカウリダエ科、ディクチオカウリナエ亜科、ディクチオカウルス・アルンフェルディ、ディクチオカウルス・フィラリア、ディクチオカウルス・オスレリ、ウシ肺虫、ウシ肺虫、ディデルフォソトロンギルス属、腎虫、腎虫上科、ディプロトリエナ上科、イヌ糸状虫、蛇状線虫上科、ドロマエオストロンギリダエ科、エラエオフォラ・スケイデリ、エラフォストロンギィナエ亜科、フィラリネマ属、フィラリア上科、フィラロイデス属、フィラロイディダエ科、開嘴虫、ガトストマトイデア上科、グロボケファロイディナエ亜科、美麗食道虫、ギアロケファリナエ亜科、ハブロネマ属、ハブロネマ上科、捻転胃虫科、捻転胃虫亜科、捻転胃虫、ハエモンクス・プラケイ、ハロケルクス属、毛様線虫上科、毛様線虫科、ヘリグモノイデス・スペキオスス、ヘリグモソマティダエ科、ヘリグモソミダエ科、ヘリグモソモイデア上科、ヘリグモソモイデス属、ヘルペトストロンギリダエ科、ヘルペトストロンギリナエ亜科、盲腸虫上科、ホウウォルコネマ属、ヒポドントゥス属、カリケファルス属、ラビオムルティプィレックス属、ラビオシムプレックス属、ラビオストロンギルス属、リビオストロンギリナエ亜科、ロア糸状虫、ロンギストリアタ属、マクケラッストロンギリダエ科、マクロポネマ属、マクロポストロンギルス属、マンソネラ糸状虫、常在糸状虫、常在糸状虫、マルシャラジア属、肺虫科、擬円形線虫上科(肺虫)、擬円形線虫属種、RJ-2010、ブタ肺虫属、ブタ肺虫、ブタ肺虫、メタストロンギルス・コンフスス、ブタ肺虫、メタストロンギルス・プデンドテクトゥス、メタストロンギルス・サルミ、モリネウス科、モリネオイデア上科、モリロネマ属、ムエルレリナエ亜科、毛細肺虫、ムスピセア科、ネマトディルス亜科、ネマトディルス・バットゥス、ネオエリグモネルラ・グランヨニ、ニコルリナ属、ニコルリニダエ科、ニッポストロンギルス亜科、ニッポストロンギルス・ブラシリエンシス、腸結節虫属、オエソファゴストムム・コルムビアヌム、牛腸結節虫、オバヤシネマ属、回旋糸状虫、ラット小腸寄生線虫、オスレルス属、オスレルス・オスレリ、回旋糸状虫、オステルタギア・ウェヌロスム、オトロンギルス属、オキシウロディエア属、パピルロストロンギルス属、パラエラフォストロニグルス・テヌイス、パラフィラロイデス亜属、パラゾニオライムス属、フィサロプテラ上科、ポトロストロンギルス属、プロトストロンギリダエ科、プロトストロンギリナエ亜科、プセウダリイダエ科、プセウダリウス属、リクチュラリア上科、ルゴファリンクス属、セタリア・ケルビ、セウラトイデア科、スキルヤビンギルス属、旋尾線虫上科、ステヌルス属、ステファノフィラリア・スティレシ、ステファヌリダエ科、ステファヌルス属、ストロンギリダ属、ストロンギリダ属種、AM-2008、円虫科、ストロンギリナエ亜科、円虫上科、ストロンギロイデス・パピルロスス、スブルロイデア上科、開嘴虫科、シンガムス属、テラドルサギア・キルクムキンクタ、テルニデンス属、テトラボトリオストロンギルス属、テラジア上科、トリヌルス属、イヌ回虫、ネコ回虫、ウシ回虫、旋毛虫、旋毛虫上科、トリコストロンギルス・アクセイ、トリコストロンギルス・コルブリフォルミス、ヴィトリヌス毛様線虫、毛様線虫科、毛様線虫亜科、毛様線虫上科、豚鞭虫、トログロストロンギルス属、ウミングマクストロンギルス・パルリクウケンシス、未分類の擬円形線虫、未分類のプロトストロンギリダエ科、未分類のストロンギリダ属、未分類の毛様線虫科、ワレストロンギリナエ亜科、バンクロフト糸状虫、及びゾニオライムス属からなる群から選択される、請求項29〜34のいずれか1項に記載の方法。
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