JP5864312B2 - Ｓ−ニトロソ物質の質量分析法 - Google Patents
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Description
本発明は、Ｓ−ニトロソ物質の質量分析法に関する。より具体的には、マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化質量分析を用いたＳ−ニトロソ物質の直接的検出法に関する。本発明は、特に、Ｓ−ニトロシル化ペプチドの翻訳後修飾解析に適用される。
タンパク質のＳ−ニトロシル化は、システイン残基のチオール基に特異的に一酸化窒素（ＮＯ）が結合し、Ｓ−ニトロソチオール（Ｒ−Ｓ−ＮＯ）を形成する翻訳後修飾の態様である。
最近では、Ｓ−ニトロシル化は、代謝、細胞骨格の形成、シグナリング等に関わるタンパク質（酵素）の活性を調節する翻訳後修飾の１つの態様であることがわかってきた。例えば、家族性のパーキンソン病の原因遺伝子として同定されたParkinは、Ｓ−ニトロシル化により活性が低下するということが報告されている（非特許文献１）。このように、Ｓ−ニトロシル化の詳細解析は、リン酸化や糖鎖付加等の翻訳後修飾と同様に、生命現象や疾患のメカニズムの解析に非常に重要な意味を持つと考えられる。
最近では、Ｓ−ニトロシル化は、代謝、細胞骨格の形成、シグナリング等に関わるタンパク質（酵素）の活性を調節する翻訳後修飾の１つの態様であることがわかってきた。例えば、家族性のパーキンソン病の原因遺伝子として同定されたParkinは、Ｓ−ニトロシル化により活性が低下するということが報告されている（非特許文献１）。このように、Ｓ−ニトロシル化の詳細解析は、リン酸化や糖鎖付加等の翻訳後修飾と同様に、生命現象や疾患のメカニズムの解析に非常に重要な意味を持つと考えられる。
これまで、Ｓ−ニトロシル化タンパク質の検出には、ビオチン置換法が主に用いられてきた（非特許文献２、非特許文献３）。この手法は、システイン残基における側鎖−Ｓ−ＮＯ基を還元によりを除去した後、生じた側鎖チオール基をマレイミドビオチンなどのビオチンタグで置換し、アビジン結合試薬を用いてウェスタンブロットや細胞／組織染色により検出するものである。
一方、質量分析装置を用いたＳ−ニトロシル化タンパク質の解析も試みられてきた。しかしながら、Ｓ−ＮＯ基におけるＳ−Ｎ結合が非常に弱い結合であり、分子のイオン化の段階でＮＯ基が脱離するため、ＭＳにおいてＳ−ニトロシル化タンパク質をＳ−ニトロシル化の態様で直接検出することは不可能であった（非特許文献４）。
最近のＳ−ニトロシル化タンパク質のＭＳ解析においては、脱離しやすいＮＯ基を前述のビオチンに置換し、ＭＳで測定する手法が用いられてきている（非特許文献５）。
他方、ＭＡＬＤＩのイオン源に赤外レーザーを使用するＩＲ−ＭＡＬＤＩによって、Ｓ−ニトロシル化部位の脱離を抑えたイオン化に成功した報告がされている（非特許文献６）。
Proc Natl Acad Sci USA 2004; 101(29):10810-4
Nitric Oxide, 11, 216 (2004)
Nat Cell Biol., 3, 46 (2001)
J. Mass Spectrom. 2003; 38: 526-530
Sci STKE. 2001;86:l1
Anal Chem 2009; 81:6750-5
非特許文献４においては、特に、ＭＡＬＤＩのイオン源に紫外レーザーを使用するＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＭＳの場合において検出できるピークがＮＯ基の脱離したピークのみであることがわかっている。
非特許文献５においては、ビオチン置換法におけるＳ−ＮＯ基に対する還元反応の特異性に疑いがあることが報告されている。つまり、タンパク質の還元反応において、Ｓ−ＮＯ基だけでなくジスルフィド結合（−Ｓ−Ｓ−）も還元されることがわかっている。このため、Ｓ−ＮＯ基由来のチオール基だけでなくジスルフィド基由来のチオール基もビオチン置換されてしまう。結果として、Ｓ−ＮＯ基を有していないシステインをＳ−ニトロシル化システインとして誤同定してしまう可能性がある。
非特許文献６の方法においては、ＩＲ−ＭＡＬＤＩがＵＶ−ＭＡＬＤＩに比べて感度が低く、装置自体も大型であるという問題がある。
非特許文献５においては、ビオチン置換法におけるＳ−ＮＯ基に対する還元反応の特異性に疑いがあることが報告されている。つまり、タンパク質の還元反応において、Ｓ−ＮＯ基だけでなくジスルフィド結合（−Ｓ−Ｓ−）も還元されることがわかっている。このため、Ｓ−ＮＯ基由来のチオール基だけでなくジスルフィド基由来のチオール基もビオチン置換されてしまう。結果として、Ｓ−ＮＯ基を有していないシステインをＳ−ニトロシル化システインとして誤同定してしまう可能性がある。
非特許文献６の方法においては、ＩＲ−ＭＡＬＤＩがＵＶ−ＭＡＬＤＩに比べて感度が低く、装置自体も大型であるという問題がある。
そこで本発明の目的は、Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質等のＳ−ニトロソ物質の質量分析法において、ビオチン置換法やＩＲ−ＭＡＬＤＩを用いることなく、Ｓ−ニトロシル化基を有するイオンをＵＶ−ＭＡＬＤＩで直接的に検出することができる方法を提供することにある。
本発明者らは、鋭意検討の結果、ポルフィリン化合物やレチノイン酸をマトリックス添加剤として用い、又は、レチノイン酸をマトリックスとして用い、且つ、マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化（ＵＶ−ＭＡＬＤＩ）質量分析装置を用いることによって、上記本発明の目的が達成されることを見出し、本発明を完成するに至った。
本発明は、以下の発明を含む。
（１）
Ｓ−ニトロソ物質の質量分析法であって、
マトリックス添加剤としてポルフィリン化合物又はレチノイン酸を用い、且つ、マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化質量分析により、前記Ｓ−ニトロソ物質に由来するＳ−ニトロシル基含有イオンを検出する方法。
（２）
前記Ｓ−ニトロソ物質がＳ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質である、（１）の方法。
（３）
前記ポルフィリン化合物がテトラフェニルポルフィリンである、（１）又は（２）の方法。
（４）
前記ポルフィリン化合物が、２，５−ジヒドロキシ安息香酸及び３−ヒドロキシ−４−ニトロ安息香酸からなる群から選ばれるマトリックスとともに用いられる、（１）〜（３）のいずれかの方法。
（５）
前記レチノイン酸が、２，５−ジヒドロキシ安息香酸及び３−ヒドロキシ４−ニトロ安息香酸からなる群から選ばれるマトリックスとともに用いられる、（１）又は（２）の方法。
（１）
Ｓ−ニトロソ物質の質量分析法であって、
マトリックス添加剤としてポルフィリン化合物又はレチノイン酸を用い、且つ、マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化質量分析により、前記Ｓ−ニトロソ物質に由来するＳ−ニトロシル基含有イオンを検出する方法。
（２）
前記Ｓ−ニトロソ物質がＳ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質である、（１）の方法。
（３）
前記ポルフィリン化合物がテトラフェニルポルフィリンである、（１）又は（２）の方法。
（４）
前記ポルフィリン化合物が、２，５−ジヒドロキシ安息香酸及び３−ヒドロキシ−４−ニトロ安息香酸からなる群から選ばれるマトリックスとともに用いられる、（１）〜（３）のいずれかの方法。
（５）
前記レチノイン酸が、２，５−ジヒドロキシ安息香酸及び３−ヒドロキシ４−ニトロ安息香酸からなる群から選ばれるマトリックスとともに用いられる、（１）又は（２）の方法。
本発明により、Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質等のＳ−ニトロソ物質の質量分析法において、ビオチン置換法やＩＲ−ＭＡＬＤＩを用いることなく、Ｓ−ニトロシル化基を有するイオンをＵＶ−ＭＡＬＤＩで直接的に検出することが可能になる。
［１．ポルフィリン化合物］
ポルフィリン化合物は、ポルフィリン環を基本骨格とする化合物であればよく、無置換体及び置換体を問わない。ポルフィリン化合物が置換体である場合、置換基としては、置換又は非置換のアリール基（例えばフェニル基、ジカルボキシフェニル基等）が挙げられる。一例として、ポルフィリン化合物は、テトラフェニルポルフィリンでありうる。また、ポルフィリン化合物は金属錯体であってもよい。この場合、金属としては、鉄、マグネシウム及びマンガン等が挙げられる。
ポルフィリン化合物は、ポルフィリン環を基本骨格とする化合物であればよく、無置換体及び置換体を問わない。ポルフィリン化合物が置換体である場合、置換基としては、置換又は非置換のアリール基（例えばフェニル基、ジカルボキシフェニル基等）が挙げられる。一例として、ポルフィリン化合物は、テトラフェニルポルフィリンでありうる。また、ポルフィリン化合物は金属錯体であってもよい。この場合、金属としては、鉄、マグネシウム及びマンガン等が挙げられる。
ポルフィリン化合物は、単独では測定対象のイオン化能力はないため、マトリックスとしては機能しない。しかしながら、マトリックスと混合して使用されることによって、測定対象であるＳ−ニトロソ物質のイオン化において、Ｓ−ニトロシル基の脱離を抑制することができる。
ポルフィリン化合物と共に使用されるマトリックスとしては特に限定されず、Ｓ−ニトロソ物質の種類に応じて当業者によって適宜選択されてよいが、紫外レーザー光のエネルギーを吸収することによりＳ−ＮＯ基におけるＳ−Ｎ結合の解離エネルギーよりも低い内部エネルギー、例えば１ｅＶ程度を生じさせるマトリックスが好ましい。例えば、２，５−ジヒドロキシ安息香酸や３−ヒドロキシ−４−ニトロ安息香酸等の、所謂、クールマトリックスから選ばれることができる。
ポルフィリン化合物とマトリックスとの組み合わせの比率は特に制限はないが、例えば、ポルフィリン化合物が質量分析用マトリックスの０．１〜１倍、好ましくは０．１〜０．５倍のモル比の量的関係となるように組み合わせることができる。
より具体的には、ポルフィリン化合物は、通常、マトリックスとの混合溶液として調製されて使用される。マトリックスとポルフィリン化合物との混合溶液は、通常、マトリックス溶液とポルフィリン化合物溶液とをそれぞれ調製しておき、両溶液を混合することによって調製することができる。この場合、ポルフィリン化合物溶液の溶媒としては、ヘキサンやトルエン等、当業者によって適宜選択されてよい溶媒が用いられる。ポルフィリン化合物溶液におけるポルフィリン濃度は例えば０．３２〜３．２ｍＭ、好ましくは０．８〜１．６ｍＭでありうる。また、マトリックス溶液の溶媒としては、当業者によって適宜選択されてよい。例えば、アセトニトリル、水、トリフルオロ酢酸、メタノール及びエタノールからなる群から選ばれる。好ましくは、アセトニトリル水溶液が用いられる。この場合におけるアセトニトリルの濃度は例えば１０〜９０体積％、好ましくは４０〜６０体積％である。マトリックス溶液におけるマトリックス濃度は例えば０．４〜３．２ｍＭ、好ましくは０．８〜１．６ｍＭでありうる。ポルフィリン化合物溶液とマトリックス溶液とは、例えば１：１〜５：１の体積比で混合することができる。
［２．レチノイン酸］
レチノイン酸は、シス型及びトランス型を問わない。
レチノイン酸は、単独でもマトリックスとして機能することもあるが、レチノイン酸以外のマトリックスと混合して添加剤として使用されることによって、測定対象であるＳ−ニトロソ物質のイオン化において、Ｓ−ニトロシル基の脱離を抑制することができる。
レチノイン酸は、シス型及びトランス型を問わない。
レチノイン酸は、単独でもマトリックスとして機能することもあるが、レチノイン酸以外のマトリックスと混合して添加剤として使用されることによって、測定対象であるＳ−ニトロソ物質のイオン化において、Ｓ−ニトロシル基の脱離を抑制することができる。
レチノイン酸と共に使用されるマトリックスとしては特に限定されず、Ｓ−ニトロソ物質の種類に応じて当業者によって適宜選択されてよいが、紫外レーザー光のエネルギーを吸収することによりＳ−ＮＯ基におけるＳ−Ｎ結合の解離エネルギーよりも低い内部エネルギー、例えば１ｅＶ程度を生じさせるマトリックスが好ましい。例えば、２，５−ジヒドロキシ安息香酸や３−ヒドロキシ４−ニトロ安息香酸等の、所謂、クールマトリックスから選ばれることができる。
より具体的には、レチノイン酸は、通常、マトリックスとの混合溶液として調製されて使用される。マトリックスとレチノイン酸との混合溶液は、通常、マトリックス溶液とレチノイン酸溶液とをそれぞれ調製しておき、両溶液を混合することによって調製することができる。この場合、レチノイン酸溶液の溶媒は、水、アセトニトリル、エタノール及びメタノールからなる群から選ばれることができる。レチノイン酸溶液におけるレチノイン酸濃度は例えば飽和濃度の１／１０希釈濃度〜飽和濃度（室温、例えば２０℃±１５℃）でありうる。また、マトリックス溶液の溶媒としては、当業者によって適宜選択されてよい。例えば、アセトニトリル、水、トリフルオロ酢酸、メタノール、及びエタノールからなる群から選ばれることができる。好ましくは、アセトニトリル水溶液が用いられる。この場合におけるアセトニトリルの濃度は例えば１０〜９０体積％、好ましくは４０〜６０体積％である。マトリックス溶液におけるマトリックス濃度は例えば０．４〜３．２ｍＭ、好ましくは０．８〜１．６ｍＭでありうる。レチノイン酸溶液とマトリックス溶液とは、例えば１：１〜１：１０の体積比で混合することができる。
［３．Ｓ−ニトロソ物質］
本発明の測定対象となるＳ−ニトロソ物質に特に制限はない。例えば、Ｓ−ニトロソ物質は分子量１００〜１，０００，０００の分子であり、生体分子及び非生体分子を問わない。より好ましくは、Ｓ−ニトロソ物質は、Ｓ−ニトロシル化システイン残基を含むペプチド又はＳ−ニトロシル化システイン残基を含むタンパク質（以下、Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質と表記する）でありうる。Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質におけるＳ−ニトロシル基は、翻訳後修飾によって生じたものであってよい。Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質は、例えば分子量が５００〜３，０００、好ましくは５００〜１０，０００でありうる。また、Ｓ−ニトロソ物質は、例えば分子量が１００〜１，０００、さらには１００〜７００の低分子物質であってもよい。
本発明の測定対象となるＳ−ニトロソ物質に特に制限はない。例えば、Ｓ−ニトロソ物質は分子量１００〜１，０００，０００の分子であり、生体分子及び非生体分子を問わない。より好ましくは、Ｓ−ニトロソ物質は、Ｓ−ニトロシル化システイン残基を含むペプチド又はＳ−ニトロシル化システイン残基を含むタンパク質（以下、Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質と表記する）でありうる。Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質におけるＳ−ニトロシル基は、翻訳後修飾によって生じたものであってよい。Ｓ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質は、例えば分子量が５００〜３，０００、好ましくは５００〜１０，０００でありうる。また、Ｓ−ニトロソ物質は、例えば分子量が１００〜１，０００、さらには１００〜７００の低分子物質であってもよい。
［４．質量分析装置］
本発明において使用される質量分析装置としては、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化）法に基づくイオン源と組み合わされたものであれば特に限定されない。例えば、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化−飛行時間）型質量分析装置、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＩＴ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化−イオントラップ）型質量分析装置、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＩＴ−ＴＯＦ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化−イオントラップ−飛行時間）型質量分析装置、等が挙げられる。
本発明において使用される質量分析装置としては、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化）法に基づくイオン源と組み合わされたものであれば特に限定されない。例えば、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化−飛行時間）型質量分析装置、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＩＴ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化−イオントラップ）型質量分析装置、ＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＩＴ−ＴＯＦ（マトリックス支援紫外レーザー脱離イオン化−イオントラップ−飛行時間）型質量分析装置、等が挙げられる。
以下に実施例を示し、本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の実施例に制限されるものではない。
［実施例１］
配列VFDARDC(NO)RSAQ（Ｎ末端から７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号１）を有するＳ−ニトロシル化ペプチドをイオン交換水に溶解し、5 pmol/μLのサンプル溶液を調製した。
別途、DHBA (2,5-dihydroxybenzoic acid) 溶液(0.5 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)に対してテトラフェニルポルフィリン溶液(1 mg/mL、ヘキサン中)を等量添加し、マトリックス溶液（ポルフィリン添加マトリックス溶液）を調製した。
MALDIプレート上に上記サンプル溶液0.5 μLと上記マトリックス溶液0.5 μLとを塗布して乾燥した後、UV-MALDI-TOF MS(AXIMA Performance, Shimadzu/Kratos, UK)によるMS測定を行った。測定モードはReflectron mode (positive ion mode)であった。
配列VFDARDC(NO)RSAQ（Ｎ末端から７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号１）を有するＳ−ニトロシル化ペプチドをイオン交換水に溶解し、5 pmol/μLのサンプル溶液を調製した。
別途、DHBA (2,5-dihydroxybenzoic acid) 溶液(0.5 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)に対してテトラフェニルポルフィリン溶液(1 mg/mL、ヘキサン中)を等量添加し、マトリックス溶液（ポルフィリン添加マトリックス溶液）を調製した。
MALDIプレート上に上記サンプル溶液0.5 μLと上記マトリックス溶液0.5 μLとを塗布して乾燥した後、UV-MALDI-TOF MS(AXIMA Performance, Shimadzu/Kratos, UK)によるMS測定を行った。測定モードはReflectron mode (positive ion mode)であった。
得られたＭＳスペクトルを図１（ａ）に示す。図１においては、比較用として、ポルフィリン無添加のDHBAマトリックス溶液(0.5mg/mL)を用いた場合（図１（ｂ））、ポルフィリン無添加の4-CHCA (α-cyano-4-hydroxy cinnamic acid)マトリックス溶液(1 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)を用いた場合（図１（c））及びニトロシル化されていないペプチド（VFDARDCRSAQ（配列番号２））を4-CHCAマトリックス溶液を用いて測定した場合（図１（ｄ））も示している。
図に示されるように、ポルフィリン添加マトリックス溶液を用いた場合（図１（ａ））、ＮＯ基の脱離ピーク(m/z 1267.7)も観測されたものの、目的のＮＯ基非脱離ピーク(m/z 1296.7)についての検出を確認した。一方、ポルフィリン無添加の場合(図１（ｂ）、（ｃ）)においては、ＮＯ基非脱離ピークが全く検出されないことを確認した。この場合、ＭＳ／ＭＳ解析においてもＮＯ基非脱離ピークが全く検出されないことを確認した。）
図に示されるように、ポルフィリン添加マトリックス溶液を用いた場合（図１（ａ））、ＮＯ基の脱離ピーク(m/z 1267.7)も観測されたものの、目的のＮＯ基非脱離ピーク(m/z 1296.7)についての検出を確認した。一方、ポルフィリン無添加の場合(図１（ｂ）、（ｃ）)においては、ＮＯ基非脱離ピークが全く検出されないことを確認した。この場合、ＭＳ／ＭＳ解析においてもＮＯ基非脱離ピークが全く検出されないことを確認した。）
更に、ＮＯ基非脱離ピークをプリカーサーとしてMALDI-QIT-TOF MS(AXIMA Resonance, Shimadzu/Kratos, UK)を用いたCID(collision induced decay)によるMS/MS解析を行った。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図２（ａ）に示す。図２においては、比較用として、ニトロシル化されていないペプチド（VFDARDCRSAQ（配列番号２））のＭＳ／ＭＳスペクトルも図２（ｂ）に示している。Ｓ-ニトロシル化ペプチドのＭＳ／ＭＳスペクトルにおいて、y5、y6、y8及びy10フラグメントイオンが29 Daのマスシフトを示していたのに対して、y4フラグメントイオンはそのようなマスシフトを示していなかった。このことは、このマスシフトがシステイン残基に由来し、システイン残基がS-ニトロシル化されていることを示している。つまり、MS/MS解析することによって、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図２（ａ）に示す。図２においては、比較用として、ニトロシル化されていないペプチド（VFDARDCRSAQ（配列番号２））のＭＳ／ＭＳスペクトルも図２（ｂ）に示している。Ｓ-ニトロシル化ペプチドのＭＳ／ＭＳスペクトルにおいて、y5、y6、y8及びy10フラグメントイオンが29 Daのマスシフトを示していたのに対して、y4フラグメントイオンはそのようなマスシフトを示していなかった。このことは、このマスシフトがシステイン残基に由来し、システイン残基がS-ニトロシル化されていることを示している。つまり、MS/MS解析することによって、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
［実施例２］
Ｓ−ニトロシル化ペプチドとして、配列EMFTYIC(NO)NHIK（Ｎ末端から７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号３）を用いたことを除いて、実施例１と同じ操作を行った。
Ｓ−ニトロシル化ペプチドとして、配列EMFTYIC(NO)NHIK（Ｎ末端から７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号３）を用いたことを除いて、実施例１と同じ操作を行った。
得られたＭＳスペクトルを図３（ａ）に示す。図３においては、図１と同様に、比較用として、ポルフィリン無添加のDHBAマトリックス溶液(0.5mg/mL)を用いた場合（図３（ｂ））、ポルフィリン無添加の4-CHCA (α-cyano-4-hydroxy cinnamic acid) マトリックス溶液を用いた場合（図３（c））及びニトロシル化されていないペプチド（EMFTYICNHIK（配列番号４））を4-CHCAマトリックス溶液を用いて測定した場合（図３（ｄ））のＭＳスペクトルも示している。図に示されるように、ポルフィリン添加マトリックス溶液を用いた場合（図３（ａ））、ＮＯ基の脱離ピーク(m/z1398.7)も観測されたものの、目的のＮＯ基非脱離ピーク(m/z 1427.7)についての検出を確認した。
更に、ＮＯ基非脱離ピークをプリカーサーとしてMALDI-QIT-TOF MS(AXIMA Resonance, Shimadzu/UK, Kratos)を用いたCID(collision induced decay)によるMS/MS解析を行った。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図４（ａ）に示す。図４においては、図２と同様に、比較用として、ニトロシル化されていないペプチド（EMFTYICNHIK（配列番号４））のＭＳ／ＭＳスペクトル図４（ｂ）も示している。Ｓ-ニトロシル化ペプチドのＭＳ／ＭＳスペクトルにおいて、y5、y6、y7、y8及びy9フラグメントイオンが29 Daのマスシフトを示していたのに対して、y4フラグメントイオンはそのようなマスシフトを示していなかった。このことは、このマスシフトがシステイン残基に由来し、システイン残基がS-ニトロシル化されていることを示している。つまり、MS/MS解析することによって、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図４（ａ）に示す。図４においては、図２と同様に、比較用として、ニトロシル化されていないペプチド（EMFTYICNHIK（配列番号４））のＭＳ／ＭＳスペクトル図４（ｂ）も示している。Ｓ-ニトロシル化ペプチドのＭＳ／ＭＳスペクトルにおいて、y5、y6、y7、y8及びy9フラグメントイオンが29 Daのマスシフトを示していたのに対して、y4フラグメントイオンはそのようなマスシフトを示していなかった。このことは、このマスシフトがシステイン残基に由来し、システイン残基がS-ニトロシル化されていることを示している。つまり、MS/MS解析することによって、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
［実施例３］
マトリックス溶液として、DHBA (2,5-dihydroxybenzoic acid) 溶液(0.5 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)に対してレチノイン酸飽和溶液(50v/v% アセトニトリル水溶液中)を等量添加して調製したマトリックス溶液（レチノイン酸添加マトリックス溶液）を用いたことを除いて、配列VFDARDC(NO)RSAQ（７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号１）を有するＳ−ニトロシル化ペプチドについて実施例１と同じ操作を行った。
マトリックス溶液として、DHBA (2,5-dihydroxybenzoic acid) 溶液(0.5 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)に対してレチノイン酸飽和溶液(50v/v% アセトニトリル水溶液中)を等量添加して調製したマトリックス溶液（レチノイン酸添加マトリックス溶液）を用いたことを除いて、配列VFDARDC(NO)RSAQ（７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号１）を有するＳ−ニトロシル化ペプチドについて実施例１と同じ操作を行った。
得られたＭＳスペクトルを図５（ａ）に示す。図５においては、図１と同様に比較用のＭＳスペクトル図５（ｂ）〜図５（ｄ）も示している。図に示されるように、レチノイン酸添加マトリックス溶液を用いた場合（図５（ａ））、ＮＯ基の脱離ピーク(m/z1267.9)も観測されたものの、目的のＮＯ基非脱離ピーク(m/z 1296.5)についての検出を確認した。
更に、ＮＯ基非脱離ピークをプリカーサーとしてMALDI-QIT-TOF MS(AXIMA Resonance, Shimadzu/Kratos, UK)を用いたCID(collision induced decay)によるMS/MS解析を行った。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図６（ａ）に示す。図６においては、図２と同様に比較用のＭＳ／ＭＳスペクトル図６（ｂ）も示している。図に示されるように、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図６（ａ）に示す。図６においては、図２と同様に比較用のＭＳ／ＭＳスペクトル図６（ｂ）も示している。図に示されるように、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
［実施例４］
Ｓ−ニトロシル化ペプチドとして、配列EMFTYIC(NO)NHIK（７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号３）を用い、マトリックス溶液として、DHBA (2,5-dihydroxybenzoic acid) 溶液(0.5 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)に対してレチノイン酸飽和溶液(50v/v% アセトニトリル水溶液中)を等量添加して調製したマトリックス溶液（レチノイン酸添加マトリックス溶液）を用いたことを除いて、実施例１と同じ操作を行った。
Ｓ−ニトロシル化ペプチドとして、配列EMFTYIC(NO)NHIK（７番目のシステイン残基がニトロシル化されている）（配列番号３）を用い、マトリックス溶液として、DHBA (2,5-dihydroxybenzoic acid) 溶液(0.5 mg/mL、50v/v% アセトニトリル水溶液中)に対してレチノイン酸飽和溶液(50v/v% アセトニトリル水溶液中)を等量添加して調製したマトリックス溶液（レチノイン酸添加マトリックス溶液）を用いたことを除いて、実施例１と同じ操作を行った。
得られたＭＳスペクトルを図７（ａ）に示す。図７においては、図３と同様に比較用のＭＳスペクトル図７（ｂ）〜図７（ｄ）も示している。図に示されるように、レチノイン酸添加マトリックス溶液を用いた場合（図７（ａ））、ＮＯ基の脱離ピーク(m/z1398.9)も観測されたものの、目的のＮＯ基非脱離ピーク(m/z1427.0)についての検出を確認した。
更に、ＮＯ基非脱離ピークをプリカーサーとしてMALDI-QIT-TOF MS(AXIMA Resonance, Shimadzu/Kratos, UK)を用いたCID(collision induced decay)によるMS/MS解析を行った。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図８（ａ）に示す。図８においては、図４と同様に比較用のＭＳ／ＭＳスペクトル図８（ｂ）も示している。図に示されるように、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
得られたＭＳ／ＭＳスペクトルを図８（ａ）に示す。図８においては、図４と同様に比較用のＭＳ／ＭＳスペクトル図８（ｂ）も示している。図に示されるように、S-ニトロシル化修飾部位を同定できることを確認した。
Claims (5)
- Ｓ−ニトロソ物質の質量分析法であって、
マトリックス添加剤としてポルフィリン化合物又はレチノイン酸を用い、且つ、マトリックス支援紫外線紫外レーザー脱離イオン化質量分析により、前記Ｓ−ニトロソ物質に由来するＳ−ニトロシル基含有イオンを検出する方法。 - 前記Ｓ−ニトロソ物質がＳ−ニトロシル化ペプチド又はＳ−ニトロシル化タンパク質である、請求項１の方法。
- 前記ポルフィリン化合物がテトラフェニルポルフィリンである、請求項１又は２の方法。
- 前記ポルフィリン化合物が、２，５−ジヒドロキシ安息香酸及び３−ヒドロキシ４−ニトロ安息香酸からなる群から選ばれるマトリックスとともに用いられる、請求項１〜３のいずれか１項の方法。
- 前記レチノイン酸が、２，５−ジヒドロキシ安息香酸及び３−ヒドロキシ４−ニトロ安息香酸からなる群から選ばれるマトリックスとともに用いられる、請求項１又は２の方法。
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