JP5785657B2 - 脂肪滴・セルライト抑制装置 - Google Patents
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Description
前記第1次脂肪滴・セルライト抑制装置の適用後に被施術部に適用するAPSと、
電流値が1.2mAから2.4mAの範囲の断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形で、周波数が5000Hzから15000Hzの範囲の投入手段を備え、前記断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形が一方の極性において複数回の繰り返し後、該断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形と同等の逆極性の波形を1回印加する関係を交互に繰返す印加手段を備えるとともに、導入側電極端子と対側電極端子を備え、該2つの電極端子を標的体部と対側体部にそれぞれ装着可能に形成したイオン導入器である第2次脂肪滴・セルライト抑制装置とを、
組み合わせてなることを特徴とする脂肪滴・セルライト抑制装置である。
上記イオン導入器によるAPSの3次元皮膚組織モデルへの浸透試験を行った。ローラー導子を使用して、イオン導入の最適出力値を決める試験である。その試験内容は次の通りである。
上記イオン導入器により、従来行なわれていない範囲の電流値で4通りの出力レベルにて試験をした。Lowの最大出力である1.2mAと、Highのランプます目3個に相当する1.5mAと、Highのランプます目8個に相当する2.0mAと、Highの最大出力である2.4mAの出力の下で行った。また、3次元皮膚組織モデルの塗布の場合と塗布しない場合について行った。通電時間は8分導入した後、1分休憩し、その後、8分再導入を行った。使用する皮膚組織は18枚重ねで、ヒト皮膚3次元組織モデル(以下、皮膚という)で行った。ガーゼに試薬を湿らせ、試薬の量は統一し、ガーゼを垂直にぶら下げて、液が滴下しない程度にたっぷり含ませるような量とした状態で皮膚にのせ、イオン導入を行った。塗布試薬は30%水溶性スキンパウダー(超純水で溶解したもの。)を使用した。イオン導入後の皮膚培養時間は1.5時間で、試薬を塗布したガーゼを外した。皮膚組織を表皮と真皮に分け、それぞれの酸化型と還元型VC量をHPLCで測定した。
1日目(2012年7月3日)
(1)ヒト皮膚3次元組織モデル製品を受け入れ、6well/plateに30℃で保管した。
2日目(2012年7月4日)
(2)ヒト皮膚3次元組織モデルのWell底面より、メスでポリカーボネート膜ごとWell周縁に沿って組織を切り抜いた。
(3)切り抜いた皮膚組織を縁取り、実験皮膚装置を作成し、培地を浸したガーゼの入った60mmディッシュに置き、37℃に設定したインキュベーターで保管した。
3日目(2012年7月5日)
(4)皮膚の表皮側に試薬(30%水溶性スキンパウダー/超純水)を浸したガーゼ(量は統一し、ガーゼを垂直にぶら下げて、液が滴下しない程度にたっぷり含ませるような量=0.1mL)をのせ、イオン導入処理(8分導入後、1分休憩した後、8分再導入)した。電流計で電流の流れを確認した。
(5)60mmディッシュに培地(4mL)を入れ、ガーゼ4枚重ねを置き、その上に処理した組織をのせた。
(6)CO2インキュベーターで1.5時間培養し、試薬を塗布したガーゼは外した。
(7)1.5時間培養後、組織表面を50μM DTT/PBSで2回リンスを行い、組織のメサ部をバイオプシーパンチで切除した。表皮と真皮を分離した。24well plateを用意した。トリプシン処理を行った(5%トリプシン/0.4%EDTA/30μM DTT in PBS(−))。インキュベートした。処理時間は短いほうがいいので、剥がれ次第終了した。10分おき位に様子を見たが、10分で統一した。真皮側をピンセットでつまんではさみ、揺らして表皮と真皮の間にトリプシンを浸透させた。リンスは50μM DTT/PBS(−)で、DTT(試薬の酸化を防ぐ)を使用した。
(8)薬紙の上に取り出し、水気を取り除いた。
(9)真皮と表皮をそれぞれ秤量した。
(10)50μM DTT/エイコムBufferが1mL入ったエッペンチューブ(18×2=36個)に組織を投入し、手術用ハサミで細断した(ハサミは毎回、超純水でよく洗って拭いた)。
(11)組織サンプルを−30℃で凍結、保存した。
4日目(2012年7月6日)以降は以下の通り。
(12)凍結サンプルを流水で解凍した。
(13)超音波ホモジナイザー(強度:50%、棒の太さ:小)を30秒×2回で皮膚組織を徹底的に破砕した。氷水の入った50mL遠沈管内にサンプル入りのエッペンチューブを入れ作業を行った。
(14)遠心処理で破砕細胞片を沈殿させた(4℃、1万回転、5分)。
(15)上清を摂取した。
(16)ウルトラフィルターでタンパクを除去し(氷中、遮光で作業)、ユニットの下にサンプル名を記入した。サンプル注入後10mLシリンジで加圧した。
(17)エッペンチューブへ回収した。
(18)HPLC(ECD−1V、UV−1V)で検量した。30分×サンプル数を作成し、代表例をクロマトグラムで表示した。ろ過後のサンプル液(サンプル液はHPLC(ECD−1V、UV−1V)の設定範囲を超える場合は希釈する)で還元型VC量を測定した。ろ過後のサンプル液と50μM DTT/エイコムBufferの比は3:1であった。これにより、トータルVC量の測定を行った。
(19)検量線を計った。Asc、APS、サーモスターチ試薬をエイコムBufferで溶解し、YMCフィルターでろ過したのち各濃度に希釈した。
(1)ODS逆相HPLC法で得られたクロマトグラムによると、表皮中のAPS含量が最大なのは、1.2mAで3070nmol/g組織だった。イオン導入器なしの場合の3.62倍だった。次いで、最大出力レベルの2.4mAで2080nmol/g組織で、イオン導入なしの場合の2.19倍だった(図6参照)。
(2)表皮中の総ビタミンC含量が最大なのは、優劣順序が入れ替わり、2.4mAで、1270nmol/g組織だった。次いで、1.2mAでは、930nmol/g組織だった(図7参照)。
(3)総ビタミンC量に占める還元型ビタミンC量の比率は皮膚内導入されたビタミンCの安定性に関わる指標であるが、表皮において、イオン導入なしでAPS塗布では92.0%であるのに対して、イオン導入1.2mAと2.4mAで各々87.1%と86.2%であり、APSから変換されたアスコルビン酸の還元力保持に良好な環境をイオン導入器がもたらしていると推定される(図8、9、10、11参照)。
(4)上記(1)、(2)の結果は、イオン導入後1.5時間でのデータであることに鑑みて、強い出力レベルの2.4mAでは、APSが速やかに皮膚深部へ浸透して、アスコルビン酸変換を受けるため、その分、APS減少とアスコルビン酸増加が起こっていると考えられる。
2 キーパッド
3 キャパシティブ用出力
4 戻し電極用出力
5 レジスティブ用出力
6 スタンバイインジケータランプ
7 ON/OFFキー
8 メニューキー
9 キャパシティブモードキー
10 レジスティブモードキー
11 リセットキー
12 スタート/ストップキー
13 時間増キー
14 時間減キー
15 出力増/減ダイヤルノブ
16 イオン導入器本体
17 POLARITY(極性)
18 パワー
19 タイマー
20 画面
Claims (4)
- 被施術部位に当接するためのエレクトロードと、該エレクトロードに当接する被施術対象体の背後に設置する戻し電極であるレジスティブを備え、かつ0.45MHzの高周波の下で、温度37〜41℃の範囲の温度調節部を備えるとともに1回当たりの温熱処理時間を1分〜60分に設定する温熱処理時間調節部を備えた温熱投与手段を備えた第1次脂肪滴・セルライト抑制装置と、
前記第1次脂肪滴・セルライト抑制装置の適用後に被施術部に適用するプロビタミンC剤と、
電流値が1.2mAから2.4mAの範囲の断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形で、周波数が5000Hzから15000Hzの範囲の投入手段を備え、前記断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形が一方の極性において複数回の繰り返し後、該断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形と同等の逆極性の波形を1回印加する関係を交互に繰返す印加手段を備えるとともに、導入側電極端子と対側電極端子を備え、該2つの電極端子を標的体部と対側体部にそれぞれ装着可能に形成したイオン導入器である第2次脂肪滴・セルライト抑制装置とを、
組み合わせてなることを特徴とする脂肪滴・セルライト抑制装置。 - 脂肪滴・セルライト抑制装置におけるイオン導入器は、電流値が1.2mAから2.4mAの範囲の断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形で、周波数を10000Hzに固定した投入手段を備えていることを特徴とする請求項1記載の脂肪滴・セルライト抑制装置。
- 脂肪滴・セルライト抑制装置におけるイオン導入器は、電流値が2.4mAの断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形で、周波数を5000Hzから15000Hzの範囲の投入手段を備えていることを特徴とする請求項1記載の脂肪滴・セルライト抑制装置。
- 脂肪滴・セルライト抑制装置におけるイオン導入器は、電流値が2.4mAの断続平流の矩形波・積分波を主にしたElliptic R波形で、周波数を10000Hzに固定した投入手段を備えていることを特徴とする請求項1記載の脂肪滴・セルライト抑制装置。
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