JP5771626B2 - 鼻内送達のための方法および組成物 - Google Patents
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Description
相互参照
本出願は、その全内容が参照により本明細書に組み入れられる、2010年4月15日に提出された米国特許仮出願第61/324,542号の恩典を主張する。
[本発明1001]
以下を含む乾燥ワクチン粉末製剤:
a.1つまたは複数の抗原;
b.1つまたは複数の糖類;および
c.微結晶性セルロース。
[本発明1002]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがウイルス抗原である、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1003]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがインフルエンザウイルス抗原である、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1004]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、弱毒化生ウイルス、不活化全ウイルス(whole inactivated virus)、スプリットウイルス、サブユニット抗原、ウィロゾーム、または低温馴化生インフルエンザウイルスである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1005]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが不活性全ウイルスである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1006]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが不活性スプリットウイルスである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1007]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがH1N1インフルエンザウイルスである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1008]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、H5N1インフルエンザウイルスである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1009]
1つまたは複数の抗原が、H1N1インフルエンザウイルス、H3N2インフルエンザウイルス、およびB型インフルエンザウイルスを含む、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1010]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが細菌抗原である、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1011]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、全菌体死菌、弱毒化細菌、トキソイド、精製表面タンパク質、または精製組み換え型表面タンパク質である、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1012]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、破傷風トキソイドである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1013]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、ジフテリアトキソイドである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1014]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、原生生物抗原である、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1015]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、タンパク質である、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1016]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つが、トレハロース、マンニトール、またはラクトースである、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1017]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つが、トレハロースである、本発明1016の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1018]
微結晶性セルロースが、10μmから100μmの平均粒子直径を有する、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1019]
微結晶性セルロースが、1.3 m 2 /gから20 m 2 /gの比表面積を有する、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1020]
微結晶性セルロースが、0.1 g/cm 3 から1.0 g/cm 3 のかさ密度を有する、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1021]
1つまたは複数の緩衝剤をさらに含む、本発明1001の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1022]
1つまたは複数の緩衝剤の少なくとも1つが、リン酸緩衝剤である、本発明1021の乾燥ワクチン粉末製剤。
[本発明1023]
室温および相対湿度60%で少なくとも12ヶ月間安定である、本発明1001のワクチン粉末製剤。
[本発明1024]
以下の段階を含む、乾燥ワクチン粉末製剤を生成する方法:
a.1つまたは複数の抗原を含む液体製剤を調製する段階;
b.液体製剤を急速凍結する段階であって、噴霧凍結することを含まない、段階;
c.フリーズドライした試料を1つまたは複数の賦形剤と混和して、乾燥ワクチン粉末製剤を生成する段階。
[本発明1025]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがウイルス抗原である、本発明1024の方法。
[本発明1026]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがインフルエンザウイルスである、本発明1024の方法。
[本発明1027]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、H1N1インフルエンザウイルスである、本発明1024の方法。
[本発明1028]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、H5N1インフルエンザウイルスである、本発明1024の方法。
[本発明1029]
1つまたは複数の抗原が、H1N1インフルエンザウイルス、H3N2インフルエンザウイルス、およびB型インフルエンザウイルスを含む、本発明1024の方法。
[本発明1030]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、弱毒化生ウイルス、不活化全ウイルス、スプリットウイルス、サブユニット抗原、ウィロゾーム、または低温馴化生インフルエンザウイルスである、本発明1024の方法。
[本発明1031]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが細菌抗原である、本発明1024の方法。
[本発明1032]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、全菌体死菌、弱毒化細菌、トキソイド、精製表面タンパク質、または精製組み換え型表面タンパク質である、本発明1024の方法。
[本発明1033]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、破傷風トキソイドである、本発明1024の方法。
[本発明1034]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、ジフテリアトキソイドである、本発明1024の方法。
[本発明1035]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、原生生物抗原である、本発明1024の方法。
[本発明1036]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、タンパク質である、本発明1024の方法。
[本発明1037]
液体製剤を調製する段階が、1つまたは複数の糖類の添加をさらに含む、本発明1024の方法。
[本発明1038]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがラクトースである、本発明1037の方法。
[本発明1039]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがトレハロースである、本発明1037の方法。
[本発明1040]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがマンニトールである、本発明1037の方法。
[本発明1041]
液体製剤を調製する段階が、1つまたは複数の緩衝剤の添加をさらに含む、本発明1024の方法。
[本発明1042]
1つまたは複数の緩衝剤の少なくとも1つが、リン酸緩衝剤である、本発明1041の方法。
[本発明1043]
粉末が10μmから100μmの平均粒子直径を有する、本発明1024の方法。
[本発明1044]
粉末が室温および相対湿度60%で少なくとも12ヶ月間安定である、本発明1024の方法。
[本発明1045]
1つまたは複数の賦形剤が1つまたは複数の経鼻担体を含む、本発明1024の方法。
[本発明1046]
1つまたは複数の経鼻担体が、微結晶性セルロースまたは第三リン酸カルシウム(TCP)を含む、本発明1045の方法。
[本発明1047]
経鼻担体が10μmから100μmの平均粒子直径を有する、本発明1046の方法。
[本発明1048]
経鼻担体が、1.3 m 2 /gから20 m 2 /gの比表面積を有する、本発明1046の方法。
[本発明1049]
経鼻担体が、0.1 g/cm 3 から1.0 g/cm 3 のかさ密度を有する、本発明1046の方法。
[本発明1050]
1つまたは複数の賦形剤が流動性を改善する、本発明1024の方法。
[本発明1051]
1つまたは複数の賦形剤が吸湿性を低減させる、本発明1024の方法。
[本発明1052]
ワクチン粉末製剤がアジュバントを含まない、本発明1024の方法。
[本発明1053]
急速凍結する段階が液体窒素を用いることを含む、本発明1024の方法。
[本発明1054]
乾燥ワクチン粉末製剤を対象に投与する段階を含む、対象において抗原に対するsIgA応答を刺激する方法であって、乾燥粉末製剤が1つまたは複数の抗原を含み、かつ乾燥粉末製剤が液体ワクチン製剤を急速凍結する段階によって生成され、急速凍結する段階が噴霧凍結することを含まない方法。
[本発明1055]
IgG応答も同様に刺激される、本発明1054の方法。
[本発明1056]
ワクチン乾燥粉末製剤が、投与部位以外の粘膜部位でsIgA産生を誘導することができる、本発明1054の方法。
[本発明1057]
投与が鼻内投与である、本発明1054の方法。
[本発明1058]
ワクチン粉末製剤がアジュバントを含まない、本発明1054の方法。
[本発明1059]
急速凍結する段階が、液体窒素を用いることを含む、本発明1054の方法。
[本発明1060]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがウイルス抗原である、本発明1054の方法。
[本発明1061]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、弱毒化生ウイルス、不活化全ウイルス、スプリットウイルス、サブユニット抗原、ウィロゾーム、または低温馴化生インフルエンザウイルスである、本発明1054の方法。
[本発明1062]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがインフルエンザウイルスである、本発明1054の方法。
[本発明1063]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがH1N1インフルエンザウイルスである、本発明1054の方法。
[本発明1064]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがH5N1インフルエンザウイルスである、本発明1054の方法。
[本発明1065]
1つまたは複数の抗原が、H1N1インフルエンザウイルス、H3N2インフルエンザウイルス、およびB型インフルエンザウイルスを含む、本発明1054の方法。
[本発明1066]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが細菌抗原である、本発明1054の方法。
[本発明1067]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、全菌体死菌、弱毒化細菌、トキソイド、精製表面タンパク質、または精製組み換え型表面タンパク質である、本発明1054の方法。
[本発明1068]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、破傷風トキソイドである、本発明1054の方法。
[本発明1069]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、ジフテリアトキソイドである、本発明1054の方法。
[本発明1070]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、原生生物抗原である、本発明1054の方法。
[本発明1071]
1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、タンパク質である、本発明1054の方法。
[本発明1072]
液体製剤が、1つまたは複数の糖類を含む、本発明1054の方法。
[本発明1073]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがラクトースである、本発明1072の方法。
[本発明1074]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがトレハロースである、本発明1072の方法。
[本発明1075]
1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがマンニトールである、本発明1072の方法。
[本発明1076]
液体製剤が1つまたは複数の緩衝剤を含む、本発明1054の方法。
[本発明1077]
1つまたは複数の緩衝剤の少なくとも1つがリン酸緩衝剤である、本発明1076の方法。
[本発明1078]
粉末が10μmから100μmの平均粒子直径を有する、本発明1054の方法。
[本発明1079]
粉末が室温および相対湿度60%で少なくとも12ヶ月間安定である、本発明1054の方法。
[本発明1080]
乾燥ワクチン粉末製剤が1つまたは複数の賦形剤を含む、本発明1054の方法。
[本発明1081]
1つまたは複数の賦形剤が1つまたは複数の経鼻担体を含む、本発明1080の方法。
[本発明1082]
1つまたは複数の経鼻担体が、微結晶性セルロース、または第三リン酸カルシウム(TCP)を含む、本発明1080の方法。
[本発明1083]
経鼻担体が、10μmから100μmの平均粒子直径を有する、本発明1082の方法。
[本発明1084]
経鼻担体が、1.3 m 2 /gから20 m 2 /gの比表面積を有する、本発明1082の方法。
[本発明1085]
経鼻担体が、0.1 g/cm 3 から1.0 g/cm 3 のかさ密度を有する、本発明1082の方法;1つまたは複数の賦形剤が流動性を改善する、本発明1078の方法。
[本発明1086]
1つまたは複数の賦形剤が吸湿性を低減させる、本発明1080の方法。
[本発明1087]
本発明1024の方法によって生成されるワクチン粉末製剤を含む、ワクチン粉末製剤を投与するための装置。
[本発明1088]
1回使用のために構成される、本発明1087の装置。
本明細書において言及した全ての刊行物、特許、および特許出願は、本明細書において、各々の個々の刊行物、特許、または特許出願が参照により組み入れられることが具体的および個々に示されるのと同程度に、参照により本明細書に組み入れられる。
発明の詳細な説明
I.概要
室温から-40℃まで24時間かけて冷却するような、液体インフルエンザワクチン製剤の従来のフリーズドライプロセスでは、粒子特性が最適下となるか、または抗原性(たとえば、インフルエンザ赤血球凝集(HA))効力の喪失が起こりうる(図1)。たとえば、トレハロースを有する液体インフルエンザワクチン製剤を従来のフリーズドライプロセスに供すると、部分的にケーキ状の粉末を形成しうる(図1)。マンニトールを有する液体インフルエンザワクチン製剤を従来のフリーズドライプロセスに供すると、HA効力が低減されうる(図1)。ラクトースを有する液体インフルエンザワクチン製剤を従来のフリーズドライプロセスに供すると、部分的にケーキ状の粉末を形成して、HA効力が低減されうる(図1)。
乾燥ワクチン粉末製剤を生成するために、液体製剤を最初に生成することができる。液体製剤は、1つまたは複数の抗原(たとえば、1つまたは複数の病原体または病原体の成分)、1つまたは複数の糖類、1つまたは複数の緩衝剤、および1つまたは複数の他の成分を含みうる。典型的に、液体製剤を、急速凍結(たとえば、液体窒素中に浸すことによって)およびフリーズドライに供した後、乾燥ワクチン粉末製剤を産生する。
本明細書において記述される乾燥ワクチン粉末製剤を生成する方法を用いて、弱毒化生ウイルス、不活化全ウイルス、スプリットウイルス、サブユニット抗原、ウィロゾーム、または低温馴化生インフルエンザウイルスを有するワクチンを産生することができる。
ルス、ポリオーマウイルス、ポリオーマウイルス、ウシポリオーマウイルス、オナガザルポリオーマウイルス、ヒトポリオーマウイルス2型、マカカエ(maccacae)ポリオーマウイルス1型、ネズミポリオーマウイルス1型、ネズミポリオーマウイルス2型、ヒヒポリオーマウイルス1型、ヒヒポリオーマウイルス2型、ポリオーマウイルス・シルビラギ、ポンギンヘルペスウイルス1型、ブタ流行性下痢ウイルス、ブタ赤血球凝集性脳脊髄炎ウイルス、ブタパルボウイルス、ブタ伝染性胃腸炎ウイルス、ブタC型ウイルス、ポックスウイルス、ポックスウイルス、天然痘ポックスウイルス、プロスペクトヒルウイルス、プロウイルス、偽牛痘ウイルス、仮性狂犬病ウイルス、オウム痘ウイルス、ウズラ痘ウイルス、ウサギ線維腫ウイルス、ウサギ腎臓空胞化ウイルス、ウサギパピローマウイルス、狂犬病ウイルス、アライグマパルボウイルス、アライグマ痘ウイルス、ラニケートウイルス、ラットサイトメガロウイルス、ラットパルボウイルス、ラットウイルス、ラウシャーウイルス、組換え型ワクシニアウイルス、組換え型ウイルス、レオウイルス、レオウイルス1型、レオウイルス2型、レオウイルス3型、爬虫類C型ウイルス、呼吸器感染ウイルス、呼吸器合胞体ウイルス、呼吸器ウイルス、細網内皮症ウイルス、ラブドウイルス、ラブドウイルス・カルピア、ラジノウイルス、ライノウイルス、リジディオウイルス、リフトバレー熱ウイルス、ライリーウイルス、牛疫ウイルス、RNA腫瘍ウイルス、ロス川ウイルス、ロタウイルス、ルージョールウイルス、ラウス肉腫ウイルス、風疹ウイルス、麻疹ウイルス、ルビウイルス、ロシア秋脳炎ウイルス、SA11シミアンウイルス、SA2ウイルス、サビアウイルス、サギヤマウイルス、サイミリンヘルペスウイルス1型、唾液腺ウイルス、サシチョウバエ熱ウイルス群、サンジンバウイルス、SARSウイルス、SDAV(唾液腺涙腺炎ウイルス)、アザラシ痘ウイルス、セムリキ森林熱ウイルス、ソウルウイルス、ヒツジ痘ウイルス、ショープ線維腫ウイルス、ショープパピローマウイルス、サル泡沫状ウイルス、サルA型肝炎ウイルス、サルヒト免疫不全ウイルス、サル免疫不全ウイルス、サルパラインフルエンザウイルス、サルT細胞リンパ球向性ウイルス、シミアンウイルス、シミアンウイルス40、単純ウイルス、シンノンブレウイルス、シンドビスウイルス、天然痘ウイルス、南アメリカ出血熱ウイルス、スズメ痘ウイルス、スプマウイルス、リス線維腫ウイルス、リスザルレトロウイルス、SSV1ウイルス群、STLV(サルTリンパ球向性ウイルス)I型、STLV(サルTリンパ球向性ウイルス)II型、STLV(サルTリンパ球向性ウイルス)III型、口内炎丘疹ウイルス、下顎ウイルス、ブタアルファヘルペスウイルス1型、ブタヘルペスウイルス2型、スイポックスウイルス、沼地熱ウイルス、ブタ痘ウイルス、スイスマウス白血病ウイルス、TACウイルス、タカリベウイルス群、タカリベウイルス、タナポックスウイルス、タテラポックスウイルス、テンチレオウイルス、タイラー脳脊髄炎ウイルス、タイラーウイルス、トゴトウイルス、トッタパラヤム(Thottapalayam)ウイルス、ダニ媒介性脳炎ウイルス、チオマンウイルス、トガウイルス、トロウイルス、腫瘍ウイルス、ツパイアウイルス、シチメンチョウ鼻気管炎ウイルス、シチメンチョウ痘ウイルス、C型レトロウイルス、D型オンコウイルス、D型レトロウイルス群、潰瘍性疾患ラブドウイルス、ウナウイルス、ウクニエミウイルス群、ワクシニアウイルス、空胞化ウイルス、水痘帯状疱疹ウイルス、水痘ウイルス、バリコラ(Varicola)ウイルス、大痘瘡ウイルス、天然痘ウイルス、ウアシン・ギシュー病ウイルス、VEEウイルス、ベネズエラウマ脳炎ウイルス、ベネズエラウマ脳脊髄炎ウイルス、ベネズエラ出血熱ウイルス、水疱性口内炎ウイルス、ベシクロウイルス、ビリュイスクウイルス、毒ヘビレトロウイルス、ウイルス出血性敗血症ウイルス、ビスナマエディウイルス、ビスナウイルス、ハタネズミ痘ウイルス、VSV(水疱性口内炎ウイルス)、ウォーラルウイルス、ウォリゴウイルス、いぼウイルス、WEEウイルス、西ナイルウイルス、西部ウマ脳炎ウイルス、西部ウマ脳脊髄炎ウイルス、ワタロアウイルス、冬季嘔吐症ウイルス、ウッドチャックB型肝炎ウイルス、ウーリーモンキー肉腫ウイルス、創傷腫瘍ウイルス、WRSVウイルス、ヤバサル腫瘍ウイルス、ヤバウイルス、ヤタポックスウイルス、黄熱ウイルス、およびヤグボダノバックウイルスを含む任意のウイルスによる感染症を予防および/または処置するために有用でありうる。
本明細書において記述されるワクチンは、細菌、真菌、または原生生物細胞またはその成分を含みうる。たとえば、細菌病原体に対するワクチンは、死菌またはその精製抗原決定基を含みうる。弱毒化細菌もまた、抗原として用いることができる。いくつかの例において、不活化毒素(トキソイド)を、本明細書において記述されるワクチン成分の1つまたは複数と混合することによって、細胞病原体によって産生された毒素(たとえば、コレラ毒素)に対するワクチンを産生することができる。標的病原体からの抗原性ペプチドを、起源病原体から精製するか、および/または組み換えによって産生した後に、ワクチンの成分の1つまたは複数と混合することができる。コンジュゲート抗原も同様に用いることができる。コンジュゲート抗原の場合、細菌病原体の抗原性の低い多糖類外皮を、免疫応答を刺激することができる毒性タンパク質に付着させる。典型的に、非ウイルス病原体に対するワクチンは、粘膜表面に影響を及ぼすまたは粘膜表面を介して体へのアクセスを獲得する病原体に対して免疫応答(たとえば、sIgA産生)を産生するように計画されるであろう。そのような病原体の非制限的な例には、クリプトコッカス・ネオフォルマンス(Cryptococcus neoformans)、赤痢菌種(Shigella)、腸チフス菌(Salmonella typhi)、パラチフス菌(Sa. paratyphi)、腸毒素性大腸菌(Escherischia coli)、ペスト菌(Yersinia pestis)、ヒト型結核菌(Mycobacterium tuberculosis)、ウレアプラズマ・ウレアリチクム(Ureaplasma urealyticum)、クリプトスポリジウム(Cryptosporidium)種、破傷風菌(Clostridium tetani)、ジフテリア菌(Corynebacterium diphtheriae)、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)、百日咳菌(Bordetella pertussis)、肺炎連鎖球菌(Streptococcus pneumoniae)、炭疽菌(Bacillus anthracis)、レプトスピラ・インテロガンス(Leptospira interrogans)、レプトスピラ・キルシュネリ(Leptospira kirschneri)、レプトスピラ・ノグチ(Leptospira noguchii)、レプトスピラ・アレクサンデリ(Leptospira alexanderi)、レプトスピラ・ウェイリイ(Leptospira weilii)、レプトスピラ・ボルグペテルセニイ(Leptospira borgpetersenii)、レプトスピラ・サンタロサイ(Leptospira santarosai)、レプトスピラ・メチイ(Leptospira kmetyi)、ボレリア・ブルグドルフェリ(Borrelia burgdorferi)、ウシ流産菌(Brucella abortus)、イヌ流産菌(Brucella canis)、ブルセラ・メリテンシス(Brucella melitensis)、ブタ流産菌(Brucella suis)、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)、クラミジア肺炎病原体(Chlamydia pneumoniae)、トラコーマクラミジア(Chlamydia trachomatis)、クラミドフィラ・シタッシ(Chlamydophila psittaci)、ボツリヌス菌(Clostridium botulinum)、クロストリジウム・ディフィシレ(Clostridium difficile)、ウェルシュ菌(Clostridium perfringens)、エンテロコッカス・フェカーリス(Enterococcus faecalis)、エンテロコッカス・ファシウム(Enterococcus faecium)、野兎病菌(Francisella tularensis)、インフルエンザ菌(Haemophilus influenzae)、ヘリコバクター・ピロリ菌(Helicobacter pylori)、レジオネラ・ニューモフィラ(Legionella pneumophila)、レプトスピラ・インテロガンス、リステリア菌(Listeria monocytogenes)、らい菌(Mycobacterium leprae)、マイコバクテリウム・アルセランス(Mycobacterium ulcerans)、肺炎マイコプラズマ(Mycoplasma pneumoniae)、淋菌(Neisseria gonorrhoeae)、髄膜炎菌、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)、リケッチア(Rickettsia rickettsii)、腸チフス菌、ネズミチフス菌(Salmonella typhimurium)、ゾンネ赤痢菌(Shigella sonnei)、黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)、表皮ブドウ球菌(Staphylococcus epidermis)、ストレプトコッカス・サプロフィチクス(Streptococcus saprophyticus)、ストレプトコッカス・アガラクチエ(Streptococcus agalactiae)、肺炎連鎖球菌(Streptococcus pneumoniae)、化膿性連鎖球菌(Streptococcus pyogenes)、梅毒トレポネーマ(Treponema pallidum)、コレラ菌(Vibrio cholerae)、カンジダ・アルビカンス(Candida albicans)、アスペルギルス・フミガーツス(Aspergillus fumigatus)、アスペルギルス・フラブス(Aspergillus flavus)、クリプトコッカス・ガチイ(Cryptococcus gattii)、ヒストプラスマ・カプスラーツム(Histoplasma capsulatum)、ニューモシスチス・ジロベシイ(Pneumocystis jirovecii)、スタキボトリス・チャータルム(Stachybotrys chartarum)、熱帯熱マラリア原虫(Plasmodium falciparum)等が挙げられる。
病原体のタンパク質または他の細胞成分の抗原性機能を保存するために、本開示は、抗原性成分(たとえば、ウイルス、タンパク質)の三次元立体配置のいくつかまたは全てを保存することができるワクチンを調製する方法を提供する。このように、本明細書において提供される方法は、病原体またはその成分上の抗原性決定基が無傷の状態で保存されるワクチンの産生を可能にすることができる。たとえば、ワクチンにおけるタンパク質の三次元構造を保持すれば、それに対する免疫応答を誘発することができる「コンフォメーショナル」エピトープの保持を可能にすることができる。「コンフォメーショナル」エピトープは、タンパク質のフォールディングに依存して、一般的に直鎖状のアミノ酸(たとえば、消化されたまたは直鎖状のタンパク質)を全く含まないエピトープである。さらに、本明細書において提供されるワクチン産生法によって、所定の量のワクチンに対する反応における免疫応答のレベルが、病原体または他の天然に存在する抗原起源に対する曝露と比較して、少なくとも約100%、99%、98%、97%、96%、95%、94%、93%、92%、91%、90%、89%、88%、87%、86%、85%、84%、83%、82%、81%、80%、79%、78%、77%、76%、75%、74%、73%、72%、71%、70%、69%、68%、67%、66%、65%、64%、63%、62%、61%、60%、59%、58%、57%、56%、55%、54%、53%、52%、51%、または50%であるように、抗原性効力(すなわち、免疫応答の誘導能)の保持が起こりうる。加えて、本明細書において提供される方法によって、本明細書において記述される急速凍結法に供される総抗原性タンパク質の抗原能の高レベル(たとえば、少なくとも約100%、99%、98%、97%、96%、95%、94%、93%、92%、91%、90%、89%、88%、87%、86%、85%、84%、83%、82%、81%、80%、79%、78%、77%、76%、75%、74%、73%、72%、71%、70%、69%、68%、67%、66%、65%、64%、63%、62%、61%、60%、59%、58%、57%、56%、55%、54%、53%、52%、51%、または50%)を特定の抗原が保持するワクチンの産生を可能にすることができる。
液体製剤をフリーズドライによって粉末に変換することができる。フリーズドライは、材料を凍結した後昇華による水の除去によって乾燥させるプロセスである。急速凍結は、たとえば噴霧液滴(噴霧フリーズドライ)を液体窒素中または低温気体の流れの中に直ちに浸すことによって達成されうる。急速凍結はまた、噴霧凍結段階を含まないプロセスによっても達成されうる。急速凍結は、液体ワクチン製剤を液体窒素(-196℃)に接触させることによって達成されうる。急速凍結は、液体ワクチン製剤を、もう1つの化学物質と混合した液体窒素、たとえばヘキサン/液体窒素(-94℃)、メタノール/液体窒素(-98℃)、およびペンタン/液体窒素(-131℃)に接触させることによって達成されうる(Gordon AJ and Ford RA " The Chemist's Companion. Wiley, New York 1972)。急速凍結は、液体ワクチン製剤を、ドライアイス/有機溶媒(たとえば、エタノール、メタノール、エチレングリコール、四塩化炭素、アセトニトリル、イソプロピルアルコール、またはアセトン)浴、たとえば四塩化炭素/ドライアイス(-23℃)、アセトニトリル/ドライアイス(-42℃)、またはアセトンもしくはイソプロピルアルコール/ドライアイス浴(-78℃)に接触させることによって達成されうる(Gordon、前記)。急速凍結は、-40℃に到達しうる氷と無機塩(たとえば、NaClまたはCaCl2)とのスラリー中に液体ワクチン製剤を浸すことによって達成されうる。液体ワクチン製剤を凍結することができる温度は、約0℃、-5℃、-10℃、-15℃、-20℃、-25℃、-30℃、-35℃、-40℃、-45℃、-50℃、-55℃、-60℃、-65℃、-70℃、-75℃、-80℃、-85℃、-90℃、-95℃、-100℃、-105℃、-110℃、-115℃、-120℃、-125℃、-130℃、-135℃、-140℃、-145℃、-150℃、-155℃、-160℃、-165℃、-170℃、-175℃、-180℃、-185℃、-90℃、-195℃、-200℃、-205℃、または-210℃未満でありうる。液体ワクチン製剤を凍結することができる温度は、約0℃から-210℃、-50℃から約-210℃、-100℃から約-210℃、または-150℃から約-200℃でありうる。液体ワクチン製剤を凍結することができる温度は、約0℃、-5℃、-10℃、-15℃、-20℃、-25℃、-30℃、-35℃、-40℃、-45℃、-50℃、-55℃、-60℃、-65℃、-70℃、-75℃、-80℃、-85℃、-90℃、-95℃、-100℃、-105℃、-110℃、-115℃、-120℃、-125℃、-130℃、-135℃、-140℃、-145℃、-150℃、-155℃、-160℃、-165℃、-170℃、-175℃、-180℃、-185℃、-190℃、-195℃、-200℃、-205℃、または-210℃でありうる。凍結方法により、液体ワクチン製剤中での抗原の三次元形状の喪失を防止することができる。
たとえば液体窒素中での急速凍結後、凍結した製剤をフリーズドライヤーにおいてフリーズドライすることができる。フリーズドライは、1つまたは複数の段階(たとえば、同じ圧力で異なる温度)で起こりうる。フリーズドライは、たとえば約-210℃、-205℃、-200℃、-195℃、-190℃、-185℃、-180℃、-175℃、-170℃、-165℃、-160℃、-155℃、-150℃、-145℃、-140℃、-135℃、-130℃、-125℃、-120℃、-115℃、-110℃、-105℃、-100℃、-95℃、-90℃、-85℃、-80℃、-75℃、-70℃、-65℃、-60℃、-55℃、-50℃、-45℃、-40℃、-35℃、-30℃、-25℃、-20℃、-15℃、-10℃、-5℃、0℃、5℃、10℃、15℃、20℃、25℃、または30℃で起こりうる。フリーズドライは、たとえば約-210℃、-205℃、-200℃、-195℃、-190℃、-185℃、-180℃、-175℃、-170℃、-165℃、-160℃、-155℃、-150℃、-145℃、-140℃、-135℃、-130℃、-125℃、-120℃、-115℃、-110℃、-105℃、-100℃、-95℃、-90℃、-85℃、-80℃、-75℃、-70℃、-65℃、-60℃、-55℃、-50℃、-45℃、-40℃、-35℃、-30℃、-25℃、-20℃、-15℃、-10℃、-5℃、0℃、5℃、10℃、15℃、20℃、25℃、または30℃より上で起こりうる。フリーズドライは、たとえば約-80℃から30℃、約-50℃から25℃、または約-40℃から20℃で起こりうる。フリーズドライは、1つの温度、異なる2つの温度、異なる3つの温度、異なる4つの温度、異なる5つの温度、異なる6つの温度、異なる7つの温度、異なる8つの温度、異なる9つの温度、または異なる10の温度で起こりうる。
本明細書に記述されるフリーズドライ法によって産生された粉末を、1つまたは複数の追加の成分と混和して、乾燥ワクチン粉末製剤を生成することができる。そのような成分は、薬学的に許容される担体、たとえば粘膜投与にとって適切な担体を含む。粘膜投与にとって適した担体は、微結晶性セルロースなどの生理学的に許容される物質でありうる。微結晶性セルロースは、より大きい比表面積を有する特定の微結晶性セルロースでありうる。任意の微結晶性セルロースを利用することができるが、いくつかの態様において、本出願のワクチンを産生するために用いられる微結晶性セルロースは、Ceolus(登録商標)PH-F20JPまたはAvicel(登録商標)PH-105でありうる。
本明細書において記述されるように調製した乾燥ワクチン粉末製剤は、室温(25℃で相対湿度60%)で少なくとも約1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、または36ヶ月間安定でありうる。乾燥ワクチン粉末製剤の安定性はまた、加速条件(45℃で相対湿度75%)でも長期間安定でありうる。加速条件では、乾燥ワクチン粉末製剤は、少なくとも約1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、または36ヶ月間安定でありうる。本明細書において記述されるように調製した乾燥ワクチン粉末製剤は、他の温度(たとえば、-20℃から55℃)および相対湿度(0%から100%)で安定でありうる。
いくつかの態様において、装置は、対象の鼻孔に乾燥ワクチン粉末治療製剤の1回量の実質的な分画を送達するように構成されうる。いくつかの例において、装置を、装置内に存在する乾燥ワクチン粉末治療製剤のある量の実質的な分画を対象の鼻孔に送達するように構成してもよい。いくつかの例において、乾燥ワクチン粉末治療製剤またはその実質的な分画を、装置の1回作動後に送達してもよい。いくつかの例において、粉末治療製剤またはその実質的な分画は、たとえば1、2、3、4、5、6、7、8、9、または10回作動などの装置の複数回の作動後に送達されうる。いくつかの例において、装置の複数回の作動が、装置の1回使用を構成してもよい。本明細書において記述される方法、装置、および組成物に従って、装置によって送達される乾燥ワクチン粉末治療製剤の実質的な分画は、1回量または装置に存在する量などの、乾燥粉末治療薬の量の少なくとも50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、97.5%、98%、98.5%、99%、99.5%、99.9%、99.95%または100%を包含する。
提供される本発明の方法および組成物は、局所免疫応答を刺激するために用いられうる。局所免疫応答は、末梢リンパ組織での応答でありうる。たとえば、ワクチン乾燥粉末製剤を、粘膜免疫において役割を果たしうる粘膜隣接リンパ組織(MALT)を刺激するために鼻内に投与することができる。粘膜の例には、頬粘膜、食道粘膜、胃粘膜、腸粘膜、鼻粘膜、嗅粘膜、口腔粘膜、気管支粘膜、子宮粘膜、内膜(子宮の粘膜)、および陰茎粘膜が挙げられる。特に、鼻咽頭隣接リンパ組織(NALT)を標的とすることができる。NALTはTヘルパー1およびTヘルパー2細胞、ならびにIgA前駆B細胞の生成において役割を果たすことができる。鼻内免疫によって、粘膜および全身の免疫区画の双方において抗原特異的防御免疫を誘導することができる。
本実施例において、季節性インフルエンザワクチン(H1N1)の様々な乾燥粉末製剤を生成して試験する。本発明の好ましい態様をまた、季節性インフルエンザワクチンの従来の液体経鼻製剤および注射製剤と比較して試験する。
本実験において、様々な抗原安定化剤を、従来のフリーズドライプロセスにおいて用いてワクチン粉末を生成し、これをコンシステンシーおよび安定性に関して調べる。10 mLボトルにおいて、不活性全インフルエンザ(H1N1、A/Brisbane/59/2007株、The Chemo-Sero-Therapeutic Research Institute)の1.6 mg/mL溶液0.4 mLを、pH 7.4のリン酸緩衝生理食塩液(PBS、またはリン酸緩衝液)0.4 mL中で安定化剤(13.6 mg)と混合して、最終的な抗原対安定化剤比1:21を得る。混合物を-40℃で5時間かけて徐々に凍結する。凍結した組成物を4段階でフリーズドライする:-40℃、140 mtorr未満で24時間;-30℃、130 mtorr未満で24時間;-10℃、100 mtorr未満で4時間;および20C、50 mtorr未満で4時間。得られた凍結乾燥粉末は、インフルエンザワクチン粉末1 mgあたりインフルエンザワクチンタンパク質29μgを含有する。インフルエンザワクチン粉末を、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混合(混和)する。インフルエンザワクチン粉末(49.3 mg、インフルエンザワクチンタンパク質1.44 mgを含む)を、Ceolus(登録商標)PH-F20JP微結晶性セルロース(平均粒子径:57μm;かさ密度:0.23 g/cm3;比表面積2.3 m2/g)309.1 mg、Ceolus(登録商標)PH-301微結晶性セルロース(平均粒子径:39μm;かさ密度:0.41 g/cm3)40.0 mg、およびTCP 1.6 mgと10 mLガラスボトル中で混和して、ボルテックスミキサーを用いて成分を1分間混和する。得られた乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤は、乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤25 mgあたりインフルエンザワクチンタンパク質90μgを含有する。1つの例において、トレハロースを安定化剤として用いると、部分的にケーキを形成するが安定なHA効力を有するインフルエンザワクチン粉末が生成される。もう1つの例において、マンニトールを安定化剤として用いると、微粒子を含むが不安定なHA効力を有するインフルエンザワクチン粉末が生成される。なおもう1つの例において、ラクトースを安定化剤として用いると、部分的にケーキを形成するが安定なHA効力を有するインフルエンザワクチン粉末が生成される(図1)。本実施例において、安定性は、フリーズドライ後に50%より大きいHA効力を保持するとして定義される;不安定とは、フリーズドライ後での50%に等しいまたはそれ未満のHA効力であり;結果を表1に要約する。製剤は、完全なHA効力および良好な流動性の双方を欠如することから、そのようなアプローチは、有効で完全に送達可能な経鼻ワクチンを産生するためには改善を必要とする。
本実験において、様々な安定化剤を急速凍結および乾燥プロセスにおいて用いてワクチン粉末を生成し、これをコンシステンシーおよび安定性に関して調べる。全般的製造プロセスを図2および3に概要する;H1N1経鼻ワクチン製剤の生成に関する具体的詳細を以下に提供する。10 mLボトルにおいて、不活性全インフルエンザ(H1N1、A/Brisbane/59/2007株)の1.6 mg/mL溶液0.4 mLを、pH 7.4のリン酸緩衝生理食塩液(PBS、またはリン酸緩衝液)0.4 mL中で安定化剤(13.6 mg)と混合して、最終的な抗原対安定化剤比1:21を得る。混合物を液体窒素中で10分間急速凍結して、インフルエンザ粉末を、4段階のフリーズドライプロセスによって生成する:-40℃、140 mtorr未満で24時間;-30℃、130 mtorr未満で24時間;-10℃、100 mtorr未満で4時間;および20C、50 mtorr未満で4時間。インフルエンザワクチン粉末1 mgあたりインフルエンザワクチンタンパク質29μgを含有する粉末は、微粒子を含み、室温で安定であるが、この場合、安定性は50%より大きいHA効力を保持するとして定義される(表2)。インフルエンザワクチン粉末を、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混合(混和)する。インフルエンザワクチン粉末(49.3 mg、インフルエンザワクチンタンパク質1.44 mgおよびトレハロース30.60 mgを含む)を、Ceolus(登録商標)PH-F20JP微結晶性セルロース(平均粒子径:57μm;かさ密度:0.23 g/cm3;比表面積2.3 m2/g)309.1 mg、Ceolus(登録商標)PH-301微結晶性セルロース(平均粒子径:39μm;かさ密度:0.41 g/cm3)40.0 mg、およびTCP 1.6 mgと10 mLガラスボトル中で混合して、ボルテックスミキサーを用いて成分を1分間混和する。得られた乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤は、乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤25 mgあたりインフルエンザワクチンタンパク質90μgを含有する。1つの例において、トレハロースを抗原安定化剤として用いると、安定なHA効力および微粒子サイズを有する製剤が得られた。もう1つの例において、ラクトースを抗原安定化剤として用いると、同様に微粒子サイズからなる安定な製剤を生じた。マンニトールは、H1N1ワクチン粉末に関する抗原安定化剤として試験しなかった。
本実験において、乾燥粉末H1N1ワクチンが免疫応答を誘発できるか否かを試験して、従来の経鼻および注射液体製剤と比較する。急速凍結プロセスを用いてワクチンを調製して、前記で説明したように、微結晶性セルロース担体と混和する。各々の条件において、インフルエンザワクチンタンパク質(H1N1、A/Brisbane/59/2007株、不活性全インフルエンザワクチン)0.09 mgを、カニクイザルの4つの群に投与した。カニクイザルは、ヒトと類似の鼻腔の解剖学的構造および類似の免疫応答を有する。1群に、前記で概要した急速凍結プロセスによって調製し、インフルエンザワクチンタンパク質0.09 mg、トレハロース1.91 mg、Ceolus(登録商標)PH-F20JP 19.28 mg、Ceolus(登録商標)PH-301 2.50 mg、およびTCP 0.10 mgを含有する経鼻インフルエンザ(H1N1)ワクチン粉末製剤25 mgを投与した;2群には、インフルエンザワクチンタンパク質0.09 mgを含有する経鼻インフルエンザワクチン溶液0.1 mlを投与した;3群には、インフルエンザワクチンタンパク質0.09 mg、Tween 80 0.5μLと共にアジュバントα-ガラクトシルセラミド0.02 mgを含有する経鼻インフルエンザワクチン溶液0.1 mlを投与した;ならびに4群には、インフルエンザワクチンタンパク質0.09 mgを含有するSCインフルエンザワクチン溶液0.5 mLを投与した。図4に記述されるように、ワクチンを投与して、試料を採取した。抗体レベルを赤血球凝集阻害(HI)および酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)によって決定した。
実施例1Cから動物のサブセットを実験の終了後にモニターして、上昇した抗体力価が保持されるか否かを決定した。血清および鼻洗浄液試料を80日目(最後のワクチン接種後31日目)、101日目(ワクチン接種52日目)、および115日目(ワクチン接種後66日目)に得た。結果を図8および9に示す。図8は、HI力価の表を含む;図9は、IgGおよびsIgA力価の表を含む。抗体力価レベルは経鼻粉末製剤によって処置した動物において高レベルで保持された(図8および9、1群)。抗体力価レベルは、経鼻液体製剤によって処置した動物において、アジュバントを添加しなくとも(2群)またはアジュバントを添加しても(3群)、より低いレベルで保持された。液体製剤を注射した動物(4群)におけるIgGおよびHI力価レベルは、回復期間を通して顕著に減少した;sIgA抗体レベルは、ワクチン製剤の注射によって処置した動物では有意に上昇しなかった。
本実施例において、インフルエンザワクチンがその後のチャレンジから動物を防御できるか否かを決定する。先の実験においてワクチン接種したサルの鼻へのチャレンジを、最後の免疫後3週間目に行う。動物に、胚含有鶏卵生育イヌインフルエンザ(A/Brisbane/59/2007 IVR-148)ウイルスをチャレンジする。各動物に、全体でウイルスおよそ107 TCID50を容積2 ml中で与える。偽チャレンジに関して、サルに、ウイルスを含まない尿膜液2 mlをチャレンジする。さらなる対照として、非ワクチン接種サル3匹に、ウイルス107 TCID50を曝露するか、またはウイルスを含まない尿膜液2 mlをチャレンジする。
本実施例において、乾燥ワクチン粉末製剤の安定性および吸湿性を調べる。乾燥不活性全H1N1インフルエンザワクチン粉末製剤を、提供される本発明の方法によって生成する。ワクチン粉末製剤の安定性を45℃および20℃から25℃で試験する。試験される乾燥ワクチン粉末製剤を、密封ボトルおよび非密封容器の双方に貯蔵する。HA抗原性を決定することによって、安定性を測定する。
本実施例において、トリインフルエンザワクチン(H5N1)の様々な乾燥粉末製剤を生成して試験する。本発明の好ましい態様をまた、トリインフルエンザワクチンの従来の液体経鼻製剤および注射製剤と比較して試験する。
本実施例は、H5N1経鼻ワクチン粉末を生成するために急速凍結および乾燥プロセスにおいて用いるための最適な抗原安定化剤、および抗原対安定化剤の比率を決定するために行った。全般的製造プロセスを図2および3に概要する:H5N1経鼻ワクチン製剤の生成に関連する具体的詳細を以下に提供する。4つの抗原対安定化剤比を試験した(1:11、1:21、1:49、および1:101);以下に引用した数値は、1:49比の製剤に対応する。10 mLボトルにおいて、不活性全H5N1ウイルス(A/Vietnam/1194/2004株、Sinovac Biotsch Ltd)を含有する0.526 mg/mL抗原溶液0.4 mLを、pH 7.2のリン酸緩衝液0.4 mL中で安定化剤(トレハロース、マンニトール、またはラクトース)10.4 mgと混合して、最終的な抗原対安定化剤比1:49を得た。混合物を液体窒素中で10分間急速に凍結して、インフルエンザ粉末を4段階のフリーズドライプロセスによって生成する:-40℃、140 mtorr未満で24時間;-30℃、130 mtorr未満で36時間;-10℃、100 mtorr未満で4時間;および20℃、50 mtorr未満で4時間。得られた粉末は、粉末1 mgあたり抗原11.2μgを含有する。インフルエンザワクチン粉末を、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混合(混和)する。インフルエンザワクチン粉末(104 mg、インフルエンザワクチンタンパク質1.2 mgを含む)を、Ceolus(登録商標)PH-F20JP微結晶性セルロース(平均粒子径:57μm;かさ密度:0.23 g/cm3;比表面積2.3 m2/g)254.4 mg、Ceolus(登録商標)PH-301微結晶性セルロース(平均粒子径:39μm;かさ密度:0.41 g/cm3)40.0 mg、およびTCP 1.6 mgと10 mLガラスボトル中で混和して、ボルテックスミキサーを用いて成分を1分間混和する。得られた乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤は、乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤20 mgあたりインフルエンザワクチンタンパク質58.9μgを含有する。トレハロース、マンニトール、およびラクトースを安定化剤として用いると、1:21および1:49の抗原対安定化剤比で微粒子からなる安定な粉末を生じる。抗原対安定化剤比が1:101である場合、トレハロースおよびラクトース含有製剤はいずれもケーキを生じたが、安定な粉末を産生した;マンニトールは、抗原対安定化剤比1:101で微粒子からなる安定な粉末を生じた。トレハロース、マンニトール、およびラクトースを用いると、抗原対安定化剤比1:11では不安定な製剤を生じた。結果を表3に要約する。
本実験において、乾燥粉末ワクチンがカニクイザルにおいて免疫応答を誘発できるか否かを調べて、従来の経鼻および注射液体製剤と比較した。カニクイザルは、ヒトと類似の鼻腔の解剖学的構造および類似の免疫応答を有する。乾燥粉末ワクチンを、急速凍結後のフリーズドライプロセスを用いて、不活化全H5N1(A/Vietnam/1194/2004株)抗原から調製し、前記の微結晶性セルロース担体と混和した。経鼻インフルエンザ(H5N1)ワクチン粉末製剤20 mg毎に、不活性全H5N1ウイルス58.9μgを、トレハロース2.9 mg、Ceolus(登録商標)PH-F20JP 12.7 mg、Ceolus(登録商標)PH-301 2.0 mg、および第三リン酸カルシウム0.08 mgと共に送達する。各条件において、H5N1抗原30μgを投与した。1群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末20 mgを投与した(総抗原30μg);2群には、各鼻孔に経鼻インフルエンザスプレー0.15 mLを投与した(総抗原30μg);および3群には、液体ワクチン0.3 mLを筋肉内注射(IM)によって投与した。ワクチンを投与して、図10のスケジュールに従って試料を採取した。試料を、実施例1に概要した方法に従って、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)によって試験した。
本実験において、実施例2Aに記述されるように調製した乾燥粉末H5N1ワクチン製剤の安定性を、ストレス条件に供して、H5N1経鼻インフルエンザスプレー製剤と比較する。カプセル化H5N1インフルエンザワクチン粉末を、60℃および相対湿度0%で貯蔵して、2および3週間の時点で調べた。2週間目では、粉末は微粒子からなった;しかし、3週間目では、粉末の部分的凝集が観察された。別の試験において、H5N1インフルエンザワクチン粉末を1回使用送達装置(Shin Nippon Biomedical Laboratory, LTD)に充填して、酸素および水分吸収乾燥剤(PharmaKeep KC-20, Mitsubishi Gas Chemical Company, Inc.)と共にアルミニウムキャニスター中で60℃および相対湿度75%で2週間貯蔵したところ、その後でも粉末はなおも微粒子からなった。なおもう1つの試験において、H5N1インフルエンザワクチン粉末をボトルに入れて、60℃および相対湿度0%で貯蔵して、HA効力を2および3週目の時点で調べた。いずれの時点においても、H5N1経鼻ワクチン粉末のHA効力は安定であった。HA効力のもう1つの試験において、H5N1インフルエンザワクチン粉末をボトルに入れて、酸素および水分吸収乾燥剤(PharmaKeep KC-20, Mitsubishi Gas Chemical Company, Inc.)と共に60℃および相対湿度75%で2週間貯蔵したところ、その後のHA効力は安定であると決定された。これらの結果を表4に要約する。H5N1経鼻粉末ワクチンとは対照的に、ポリプロピレンマイクロチューブに貯蔵したH5N1経鼻スプレーワクチンは、60℃で2週間後全てのHA効力を失った。このことは、経鼻粉末製剤では、上昇した温度での安定性の増加が達成されることを証明している。
本実施例において、3つのスプリット不活化株の混合物(H1N1 A/California/7/2009、H3N2 A/Victoria/210/2009、およびB/Brisbane/60/2008−集合的に「三価HAインフルエンザ」)を含む経鼻粉末ワクチンの様々な乾燥粉末製剤を生成して試験する。
本実験は、三価のHAインフルエンザ経鼻ワクチン粉末を生成するために、急速凍結および乾燥プロセスにおいて用いるための最適な抗原安定化剤および抗原対安定化剤比を決定するために行った。全般的製造プロセスを図2および3に概要する;三価HAインフルエンザ経鼻ワクチン製剤の生成に関する具体的詳細を以下に提供する。4つの抗原対安定化剤比を試験した(1:26、1:56、1:111、および1:222);以下に引用した数値は、1:111比の製剤に対応する。10 mLボトルにおいて、三価HAインフルエンザ(H1N1 A/California/7/2009、H3N2 A/Victoria/210/2009、およびB/Brisbane/60/2008、Denka Seiken Co Ltd)を含有する>0.09 mg/mLの抗原溶液0.6 mLを、超純水0.2 mL中で安定化剤(トレハロース、マンニトール、またはラクトース)6 mgと混合して、最終的な抗原対安定化剤比1:111を生じる。混合物を液体窒素中で10分間急速凍結して、インフルエンザ粉末を4段階フリーズドライプロセスによって生成する:-40℃、140 mtorr未満で24時間;-30℃、130 mtorr未満で36時間;-10℃、100 mtorr未満で4時間;および20℃、50 mtorr未満で4時間。得られた粉末は、粉末1 mgあたり4.6μgより多くの抗原を含有する。インフルエンザワクチン粉末を、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混合(混和)する。インフルエンザワクチン粉末(97.75 mg、インフルエンザワクチンタンパク質0.45 mgを含む)を、Ceolus(登録商標)PH-F20JP微結晶性セルロース(平均粒子径:57μm;かさ密度:0.23 g/cm3;比表面積2.3 m2/g)350.2 mg、Ceolus(登録商標)PH-301微結晶性セルロース(平均粒子径:39μm;かさ密度:0.41 g/cm3)50.0 mg、およびTCP 2.0 mgと10 mLガラスボトル中で混和して、ボルテックスミキサーを用いて成分を1分間混和する。得られた乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤は、乾燥インフルエンザワクチン粉末製剤25 mgあたり45μgより多くのインフルエンザワクチンタンパク質を含有する。トレハロース、マンニトール、およびラクトースを抗原対安定化剤比1:26で用いる調製物は、微粒子からなる不安定な粉末を生じた。トレハロースおよびラクトース含有製剤はいずれも、抗原対安定化剤比1:56および1:111で微粒子サイズの安定な粉末を生じた;これらの比率では、安定化剤としてマンニトールを用いると、微粒子サイズの不安定なHA効力を生じた。抗原対安定化剤比1:222では、トレハロースおよびラクトース含有製剤はいずれも、安定なHA効力を有するケーキ状粉末を生じた;同じ比率で、マンニトール含有製剤は、微粒子からなる安定な粉末を産生した。結果を表5に要約する。
本実験において、急速凍結プロセスを用いて調製して、微結晶性セルロース担体と混和した乾燥粉末三価HAインフルエンザワクチン製剤の安定性を、ストレス条件下で試験して、経鼻スプレー三価HAインフルエンザワクチン製剤と比較する。カプセル化三価HAインフルエンザワクチン粉末を60℃および相対湿度0%で貯蔵して、2および3週間の時点で調べた。2週間目では、粉末は微粒子からなった;しかし、3週間目では、粉末の部分的凝集が観察された。なおもう1つの試験において、三価HAインフルエンザワクチン粉末をボトルに入れて60℃および相対湿度0%で貯蔵して、2および3週間の時点でHA効力に関して調べた。いずれの時点においても、三価HA経鼻ワクチン粉末のHA効力は安定であった。これらの結果を表6に要約する。三価HA経鼻粉末ワクチンとは対照的に、ポリプロピレンマイクロチューブにおいて貯蔵した経鼻スプレー三価HA経鼻スプレーワクチンは、60℃で2週間後に全てのHA効力を失った。このことは、経鼻粉末製剤では、上昇した温度での安定性の増加が達成されることを証明している。
本実施例において、破傷風トキソイド(TTx)ワクチンの様々な乾燥粉末製剤を生成して試験する。本発明の好ましい態様をまた、TTxワクチンの従来の液体注射製剤と比較して試験する。
本実験は、破傷風トキソイド経鼻ワクチン粉末を生成するため、急速凍結および乾燥プロセスにおいて用いるための最適な抗原安定化剤および抗原対安定化剤比を決定するために行った。全般的製造プロセスを図2および3に概要する;破傷風トキソイド経鼻ワクチン製剤の作製に関する具体的詳細を以下に提供する。5つの抗原対安定化剤比(1:26、1:53、1:111、1:231、および1:420より上)を試験した;以下に引用する数値は1:53比の製剤に対応する。10 mLボトルにおいて、0.08 mg/mL未満の吸着破傷風トキソイド抗原溶液(Denka Seken Co LTD)0.5 mLを、超純水0.3 mL中で安定化剤(トレハロース、マンニトール、またはラクトース)2.1 mgと混合して、最終的な抗原対安定化剤比1:53を生じた。混合物を液体窒素中で10分間急速に凍結して、抗原粉末を4段階フリーズドライプロセスによって生成する:-40℃、140 mtorr未満で24時間;-30℃、130 mtorr未満で36時間;-10℃、100 mtorr未満で4時間;および20℃、50 mtorr未満で4時間。得られた粉末は、粉末1 mgあたり抗原4.7μg未満を含有する。破傷風トキソイドワクチン粉末を、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混合(混和)する。破傷風トキソイドワクチン粉末(8.54 mg未満、抗原タンパク質0.04 mg未満を含む)を、Ceolus(登録商標)PH-F20JP微結晶性セルロース(平均粒子径:57μm;かさ密度:0.23 g/cm3;比表面積2.3 m2/g)35.46 mg、Ceolus(登録商標)PH-301微結晶性セルロース(平均粒子径:39μm;かさ密度:0.41 g/cm3)5 mg、およびTCP 0.2 mgと10 mLガラスボトル中で混和して、ボルテックスミキサーを用いて成分を1分間混和する。得られた乾燥破傷風トキソイドワクチン粉末製剤は、総粉末25 mgあたり抗原タンパク質20μg未満を含有する。トレハロース、マンニトール、およびラクトースを用いると、抗原対安定化剤比1:26、1:53、1:105、および1:210で微粒子からなる抗原粉末を産生した。抗原対安定化剤比1:420では、3つ全ての安定化剤(トレハロース、マンニトール、およびラクトース)は、ケーキ状粉末を生じた。結果を表7に要約する。
本実験において、破傷風トキソイド経鼻粉末ワクチンがカニクイザルにおいて免疫応答を誘発できるか否かを試験して、従来の注射液体製剤と比較する。カニクイザルは、ヒトと類似の鼻腔の解剖学的構造および類似の免疫応答を有する。急速凍結後のフリーズドライプロセスを用いて、吸着破傷風トキソイド抗原から乾燥粉末ワクチンを調製して、これを実施例4Aに記述される微結晶性セルロース担体と混和する。経鼻破傷風トキソイドワクチン粉末製剤25 mgあたり、吸着破傷風トキソイド抗原2.5 Lfをトレハロース1.1 mg、Ceolus(登録商標)PH-F20JP 17.9 mg、Ceolus(登録商標)PH-301 2.6 mg、および第三リン酸カルシウム0.1 mgと共に送達する。複数の投与レベルを比較する。1群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末25 mgを投与する(5 Lf用量);2群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末25 mgを2回投与する(10 Lf用量);3群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末25 mgを4回投与する(20 Lf用量);および4群には、液体ワクチン2.0 mLを皮下注射によって投与する(10 Lf用量)。ワクチンを投与して、試料を図13のスケジュールに従って採取する。試料を、実施例1に概要される方法に従って、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)および酵素結合免疫吸着スポット(ELISpot)によって試験する。
本実施例において、ジフテリアトキソイドワクチンの様々な乾燥粉末製剤を生成して、試験する。本発明の好ましい態様をまた、ジフテリアトキソイドワクチンの従来の液体注射製剤と比較して試験する。処理の際のジフテリアトキソイド抗原の安定性を試験するために、前記で詳述した急速凍結およびフリーズドライプロセスによって産生された抗原粉末を、液体製剤中で再水和した。この製剤を、以下で再構成粉末と呼ぶ。
本実験は、ジフテリアトキソイド経鼻ワクチン粉末を作製するために、急速凍結および乾燥プロセスにおいて用いるための最適な抗原安定化剤、および抗原対安定化剤比を決定するために行った。全般的製造プロセスを図2および3に概要し;ジフテリアトキソイド経鼻ワクチン製剤の生成に関する具体的詳細を以下に提供する。5つの抗原対安定化剤比(2.5 Lf:1.1 mg、2.5 Lf:2.1 mg、2.5 Lf:4.2 mg、2.5 Lf:8.4 mg;および2.5 Lf:16.8 mg)を試験した;以下に引用される数値は2.5 Lf:2.1 mg比の製剤に対応する。10 mLボトルにおいて、5 Lf/mL吸着ジフテリアトキソイド抗原溶液(DTx,Research Institute for Microbial Disease, Osaka University)を、超純水0.3 mL中で安定化剤(トレハロース、マンニトール、またはラクトース)2.1 mgと混合して、最終的な抗原対安定化剤比2.5 Lf:2.1 mgを生じる。混合物を液体窒素中で10分間急速凍結して、抗原粉末を4段階のフリーズドライプロセスによって生成する:-40℃、140 mtorr未満で24時間;-30℃、130 mtorr未満で36時間;-10℃、100 mtorr未満で4時間;および20℃、50 mtorr未満で4時間。得られた粉末は、粉末1 mgあたり抗原0.28 Lf未満を含有する。ジフテリアトキソイドワクチン粉末を、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混合(混和)する。ジフテリアトキソイドワクチン粉末(1 mg、抗原タンパク質0.28 Lf未満を含む)を、Ceolus(登録商標)PH-F20JP微結晶性セルロース(平均粒子径:57μm;かさ密度:0.23 g/cm3;比表面積2.3 m2/g)35.96 mg、Ceolus(登録商標)PH-301微結晶性セルロース(平均粒子径:39μm;かさ密度:0.41 g/cm3)5 mg、およびTCP 0.2 mgと10 mLガラスボトル中で混和して、ボルテックスミキサーを用いて成分を1分間混和する。得られた乾燥ジフテリアワクチン粉末製剤は、総粉末25 mgあたり抗原タンパク質1.25 Lf未満を含有する。結果を表8に要約する。トレハロース、マンニトール、またはラクトースを用いると、抗原対安定化剤比2.5 Lf:1.1 mg、2.5 Lf:2.1 mg、2.5 Lf:4.2 mg、および2.5 Lf:8.4 mgで微粒子からなる粉末を生成した。抗原対安定化剤比2.5 Lf:16.8 mgでは、用いた3つ全ての安定化剤が、このプロセスを用いてケーキ状粉末を生成した。
本実験において、ジフテリアトキソイド経鼻粉末ワクチンがカニクイザルにおいて免疫応答を誘発できるか否かを調べて、従来の注射液体製剤および再構成粉末製剤と比較する。カニクイザルは、ヒトと類似の鼻腔の解剖学的構造および類似の免疫応答を有する。急速凍結後のフリーズドライプロセスを用いて、吸着ジフテリアトキソイド抗原から乾燥粉末ワクチンを調製して、これを前記の微結晶性セルロース担体と混和した。経鼻ジフテリアトキソイドワクチン粉末製剤25 mgあたり、ジフテリアトキソイド抗原1.25 Lfを、トレハロース1.1 mg、Ceolus(登録商標)PH-F20JP 21.3 mg、Ceolus(登録商標)PH-301 3.0 mg、および第三リン酸カルシウム0.12 mgと共に送達する。1群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末25 mg(2.5 Lf用量)を投与した;2群には、液体ワクチン1.0 mL(5 Lf用量)を皮下注射によって投与した;および3群には、再構成した粉末ワクチン1.0 mL(5 Lf用量)を皮下注射によって投与した。ワクチンを投与して、試料を図16のスケジュールに従って採取する。試料を、実施例1に概要される方法に従って、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)によって試験した。
本実施例において、卵白アルブミン(OVA、SIGMA A5503-IG)の乾燥粉末製剤を生成して、カニクイザルにおいて免疫応答を誘発できるか否かを試験する。経鼻投与乾燥ワクチン粉末製剤を従来の経鼻製剤および注射液体製剤と比較する。結果は、本明細書において記述される製剤を用いる例示的なタンパク質抗原の経鼻投与が動物において免疫応答を誘発できることを証明している。
ホモジナイズした卵白アルブミン(hOVA)経鼻粉末の3つの製剤を、異なる量のhOVAを、比表面積が1.3 m2/gより大きい経鼻担体(たとえば、微結晶性セルロース)および第三リン酸カルシウム(TCP)(Ca3(PO4)2)と混和することによって生成する。hOVAは粉末型で提供されることから、急速凍結後のフリーズドライ段階は必要でなかった。製剤1において、hOVA粉末13.3 mgを、Ceolus PH-F20JP 354.1 mg、Ceolus PH-301 40 mg、および第三リン酸カルシウム(TCP)1.6 mgと10 mLボトル中で混合して、ボルテックスミキサーを用いて1分間混和する。得られた混合物は、粉末製剤30 mgあたり抗原1 mgを含有する。製剤2において、hOVA粉末66.7 mgを、Ceolus PH-F20JP 291.7 mg、Ceolus PH-301 40 mg、および第三リン酸カルシウム(TCP)1.6 mgと10 mLボトル中で混合して、ボルテックスミキサーを用いて1分間混和する。得られた混合物は、粉末製剤30 mgあたり抗原5 mgを含有する。製剤3において、hOVA粉末200 mgを、Ceolus PH-F20JP 158.4 mg、Ceolus PH-301 40 mg、および第三リン酸カルシウム(TCP)1.6 mgと10 mLボトル中で混合して、ボルテックスミキサーを用いて1分間混和する。得られた混合物は、粉末製剤30 mgあたり抗原15 mgを含有する。
本実験において、卵白アルブミン経鼻粉末ワクチンがカニクイザルにおいて免疫応答を誘発できるか否かを試験して、hOVAをリン酸緩衝液に溶解する従来の注射および経鼻液体製剤と比較する。カニクイザルは、ヒトと類似の鼻腔の解剖学的構造および類似の免疫応答を有する。乾燥粉末ワクチンを、ホモジナイズした卵白アルブミン粉末から調製して、これを前記の賦形剤と混和した。1群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末製剤1の30 mg(2 mg用量)を投与した;2群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末製剤2の30 mg(10 mg用量)を投与した;3群には、各鼻孔に経鼻ワクチン粉末製剤3の30 mg(30 mg用量)を投与した;4群には、各鼻孔に液体ワクチン0.1 mL(20 mg用量)を投与した;5群には、各鼻孔に液体ワクチン0.1 mL(30 mg用量)を投与した;6群には、液体ワクチン1.0 mL(20 mg用量)を皮下注射によって投与した;および7群には、液体ワクチン1.0 mL(30 mg用量)を皮下注射によって投与した。ワクチンを投与して、試料を図18のスケジュールに従って採取した。試料を、実施例1に概要した方法に従って、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)によって試験した。
Claims (18)
- 以下の段階を含む、鼻内乾燥ワクチン粉末製剤を生成する方法:
a.1つまたは複数の抗原および1つまたは複数の糖類を含む液体製剤を調製する段階;
b.液体製剤を急速凍結して、粉砕工程なしで5〜100μmの平均粒子直径を有するフリーズドライした粉末を形成する段階であって、急速凍結が噴霧凍結することを含まない、段階;
c.フリーズドライした粉末を1つまたは複数の賦形剤と混和して、鼻内乾燥ワクチン粉末製剤を生成する段階。 - 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがウイルス抗原である、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つがインフルエンザウイルスである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、H1N1インフルエンザウイルスである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、H5N1インフルエンザウイルスである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも一つが、H1N1インフルエンザウイルス、H3N2インフルエンザウイルス、またはB型インフルエンザウイルスを含む、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、弱毒化生ウイルス、不活化全ウイルス、スプリットウイルス、サブユニット抗原、ウィロゾーム、または低温馴化生インフルエンザウイルスである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが細菌抗原である、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、全菌体死菌、弱毒化細菌、トキソイド、精製表面タンパク質、または精製組み換え型表面タンパク質である、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、破傷風トキソイドである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、ジフテリアトキソイドである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、原生生物抗原である、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の抗原の少なくとも1つが、タンパク質である、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがラクトースである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがトレハロースである、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の糖類の少なくとも1つがマンニトールである、請求項1記載の方法。
- 液体製剤を調製する段階が、1つまたは複数の緩衝剤を添加する工程をさらに含む、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の緩衝剤の少なくとも1つが、リン酸緩衝剤である、請求項17記載の方法。
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ITMI20061117A1 (it) * | 2006-06-09 | 2007-12-10 | Michele Bonanomi | Una composizione farmaceutica per la somministrazione sublinguale di vaccini metodo per la sua preparazione e sui usi |
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