JP5758124B2 - サルサブファミリーCアデノウイルスSAdV−40、−31および−34ならびにそれらの用途 - Google Patents
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Description
サブファミリーC内の3種の新規サルアデノウイルスの単離された核酸配列およびアミノ酸配列、ならびにこれらの配列を含有するベクターを本明細書に提供する。本明細書に記述されるベクターおよび細胞の多数の使用方法もまた提供される。これらのアデノウイルスはSAdV−40、SAdV−31およびSAdV−34を包含する。
サルアデノウイルス40、SAdV−31およびSAdV−34からの新規核酸およびアミノ酸配列(それらの全部はチンパンジー糞便から単離された)が提供される。
ニング、制限若しくはライゲーション段階、および天然に見出されるポリヌクレオチドと異なる構築物をもたらす他の手順の多様な組合せの産物であることを意味している。組換えウイルスは組換えポリヌクレオチドを含んでなるウイルス粒子である。該用語は、それぞれ元のポリヌクレオチド構築物の複製物および元のウイルス構築物の子孫を包含する。
それらが天然に会合している他物質から単離されている、サルアデノウイルス40(SAdV−40)、SAdV−31若しくはSAdV−34の核酸配列およびアミノ酸配列を本明細書に記述する。
本明細書に提供されるSAdV−40核酸配列は配列番号1のヌクレオチド1ないし37718を包含する。本明細書に提供されるSAdV−31核酸配列は配列番号32のヌクレオチド1ないし37828を包含する。本明細書に提供されるSAdV−34核酸配列は配列番号63のヌクレオチド1ないし37799を包含する。本明細書に引用することにより組み込まれる配列表を参照されたい。
意されたい。これらのスプライス部位は上の表中に示される。
99/47691号明細書もまた参照されたい。これらの方法はヒト以外の霊長類のAAV血清型を包含するヒト以外の血清型のAAVの製造でもまた使用しうる。必要なヘルパー機能(例えばE1a、E1b、E2aおよび/若しくはE4 ORF6)を提供するSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34配列は、ヒト起源に典型的であるrAAVパッケージング細胞中に存在するいずれかの他のアデノウイルスとの組換えの可能性を最小化若しくは排除する一方での必要なアデノウイルス機能の提供においてとりわけ有用であり得る。従って、SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34配列の選択された遺伝子若しくはオープンリーディングフレームをこれらのrAAV製造
方法で利用しうる。
本明細書に記述されるアデノウイルス核酸によりコードされるタンパク質、酵素およびそれらのフラグメントのようなSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34アデノウイルスの遺伝子産物が提供される。他の方法により生成されるこれらの核酸配列によりコードされるアミノ酸配列を有する、SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34のタンパク質、酵素およびそれらのフラグメントがさらに包含される。こうしたタンパク質は、上の表で同定されるオープンリーディングフレームによりコードされるもの、下の表中のタンパク質(配列表にもまた示される)ならびに該タンパク質およびポリペプチドのそれらのフラグメントを包含する。
のSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34領域またはそれらのフラグメント(例えばヘキソン、ペントン、ファイバー若しくはそれらのフラグメント)を含有する。本明細書で使用されるところの「変えられた向性を伴うキャプシドタンパク質の改変」は、変えられたキャプシドタンパク質、すなわちペントン、ヘキソン若しくはファイバータンパク質領域、またはファイバー領域のノブドメインのようなそれらのフラグメント、あるいは特異性が変えられているようなものをコードするポリヌクレオチドを包含する。サル由来キャプシドは、本明細書に記述されるサルAdの1種若しくはそれ以上、またはヒト若しくはヒト以外の起源のものでありうる別のAd血清型を用いて構築しうる。こうしたAdは、ATCC、商業的および学術的供給源を包含する多様な供給源から得ることができるか、またはAdの配列はGenBank若しくは他の適する供給源から得ることができる。
しくはSAdV−34ヘキソンタンパク質の1個のループ領域が別のアデノウイルス血清型からの1個のループ領域により置き換えられる。別の態様において、SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ヘキソンのループ領域を使用して別のアデノウイルス血清型からのループ領域を置き換える。適するアデノウイルス血清型は、本明細書に記述されるところのヒトおよびヒト以外の血清型のなかから容易に選択しうる。適する血清型の選択は制限でない。SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ヘキソンタンパク質配列のなお他の用途は当業者に容易に明らかであろう。
されたモノクローナル若しくはポリクローナル抗体に既知の組換え技術を適用することにより生成する(例えば、PCT特許出願第PCT/GB85/00392号明細書;英国特許出願公開第GB2188638A号明細書;Amitら、1986 Science、233:747−753;Queenら、1989 Proc.Nat’l.Acad.Sci.USA、86:10029−10033;PCT特許出願第PCT/WO9007861号明細書;およびRiechmannら、Nature、332:323−327(1988);Huseら、1988a Science、246:1275−1281を参照されたい)。あるいは、抗体は抗原に対する動物若しくはヒト抗体の相補性決定領域を操作することにより製造し得る。例えば、E.MarkとPadlin、“Humanization of Monoclonal Antibodies”、第4章、The Handbook of Experimental Pharmacology、Vol.113、The Pharmacology of Monoclonal Antibodies、Springer−Verlag(June、1994);Harlowら、1999、Using Antibodies:A Laboratory Manual、Cold Spring Harbor Laboratory Press、ニューヨーク;Harlowら、1989、Antibodies:A Laboratory Manual、ニューヨーク州コールドスプリングハーバー;Houstonら、1988、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:5879−5883;およびBirdら、1988、Science 242:423−437を参照されたい。抗イディオタイプ抗体(Ab2)および抗抗イディオタイプ抗体(Ab3)がさらに提供される。例えば、M.Wettendorffら、“Modulation of anti−tumor immunity by anti−idiotypic antibodies.”Idiotypic Network and Diseases、J.CernyとJ.Hiernauxにより編中、1990 J.Am.Soc.Microbiol.、ワシントンDC:pp.203−229を参照されたい)。これらの抗イディオタイプおよび抗抗イディオタイプ抗体は当業者に公知の技術を使用して製造する。これらの抗体は、診断および臨床的な方法およびキットを包含する多様な目的上使用しうる。
例えば、色素が埋め込まれている着色ラテックス微粒子(Bangs Laboratories、インジアナ州)を、標的配列と複合体を形成して適用されるアッセイで生じる複合体の存在を示す視覚的シグナルを提供する酵素の代わりに使用する。
パク質を、当業者に容易に明らかであろう多様な目的上、単独として若しくは他のアデノウイルスタンパク質と組合せで使用しうる。加えて、該SAdVアデノウイルスタンパク質のなお他の用途が当業者に容易に明らかであろう。
本明細書に記述される組成物は、治療若しくはワクチンいずれかの目的上細胞に異種分子を送達するベクターを包含する。本明細書で使用されるところのベクターは、裸のDNA、ファージ、トランスポゾン、コスミド、エピソーム、プラスミド若しくはウイルスを制限なしに包含するいかなる遺伝因子も包含しうる。こうしたベクターはSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34のサルアデノウイルスDNAおよびミニ遺伝子を含有する。「ミニ遺伝子」若しくは「発現カセット」により、選択された異種遺伝子、ならびに宿主細胞中での該遺伝子産物の翻訳、転写および/若しくは発現を駆動するのに必要な他の調節エレメントの組合せを意味している。
導入遺伝子の選択、「ミニ遺伝子」のクローニングおよび構築ならびにウイルスベクターへのその挿入に使用される方法は、本明細書に提供される教示を考えれば当該技術分野の熟練内にある。
導入遺伝子は、目的のポリペプチド、タンパク質若しくは他の産物をコードする導入遺伝子に隣接するベクター配列に異種の核酸配列である。該核酸コーディング配列は、宿主細胞中での導入遺伝子の転写、翻訳および/若しくは発現を可能にする様式で調節成分に効果的に連結されている。
る融合タンパク質をコードするDNA配列を制限なしに包含する。これらのコーディング配列は、それらの発現を駆動する調節エレメントと会合される場合に、酵素的、X線撮影、比色、蛍光、若しくは他の分光学的アッセイ、蛍光標示式細胞分取アッセイ、ならびに酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)、ラジオイムノアッセイ(RIA)および免疫組織化学を包含する免疫学的アッセイを包含する慣習的手段により検出可能なシグナルを提供する。例えば、マーカー配列がLacZ遺伝子である場合、シグナルを保有するベクターの存在はβ−ガラクトシダーゼ活性についてのアッセイにより検出する。導入遺伝子がGFP若しくはルシフェラーゼである場合、該シグナルを保有するベクターはルミノメーターで色若しくは光産生により視覚的に測定しうる。
ミニ遺伝子について上で同定された主要エレメントに加え、該ベクターは、本明細書に記述されるとおり製造されるプラスミドベクターでトランスフェクトされた若しくはウイルスに感染した細胞中でのその転写、翻訳および/若しくは発現を可能にする様式で導入遺伝子に作動可能に連結されている必要な慣習的調節領域もまた包含する。本明細書で使用されるところの「作動可能に連結されている」配列は、目的の遺伝子に隣接する発現制
御配列、およびトランスで若しくは少し離れて作用して目的の遺伝子を制御する発現制御配列の双方を包含する。
くは発達的に、または組織特異的様式で、または特定の転写刺激に応答して調節されなければならない場合に使用しうる。さらなる一態様において、エンハンサーエレメント、ポリアデニル化部位若しくはコザックコンセンサス配列のような他の天然の発現調節領域もまた天然の発現を模倣するのに使用しうる。
一態様において、サルアデノウイルスプラスミド(若しくは他のベクター)を使用してアデノウイルスベクターを製造する。一態様においてアデノウイルスベクターは複製欠損であるアデノウイルス粒子である。一態様において、アデノウイルス粒子はE1aおよび/若しくはE1b遺伝子中の欠失により複製欠損にされている。あるいは、アデノウイル
スは、場合によってはE1aおよび/若しくはE1b遺伝子を保持しつつ別の手段により複製欠損にされている。該アデノウイルスベクターは、アデノウイルスゲノムに対する他の突然変異、例えば他の遺伝子中の温度感受性突然変異若しくは欠失もまた含有し得る。他の態様において、アデノウイルスベクター中に無傷のE1aおよび/若しくはE1b領域を保持することが望ましい。こうした無傷のE1領域は、アデノウイルスゲノム中のその天然の場所に配置しうるか、若しくは天然のアデノウイルスゲノム中の欠失の部位(例えばE3領域中)に置くことができる。
従って、ミニ遺伝子を保有するため使用されるウイルスベクターのサルアデノウイルス遺伝子内容に依存して、ヘルパーアデノウイルス若しくは非複製ウイルスフラグメントが、該ミニ遺伝子を含有する感染性組換えウイルス粒子を製造するのに必要な十分なサルアデノウイルス遺伝子配列を提供するのに必要でありうる。有用なヘルパーウイルスは、アデノウイルスベクター構築物に存在せずかつ/若しくは該ベクターがトランスフェクトされるパッケージング細胞株により発現されない、選択されたアデノウイルス遺伝子配列を含有する。一態様において、該ヘルパーウイルスは複製欠損でありかつ上述された配列に加えて多様なアデノウイルス遺伝子を含有する。こうしたヘルパーウイルスは、望ましくはE1発現細胞株とともに使用する。
987(1989);K.J.FisherとJ.M.Wilson、Biochem.J.、299:49(April 1、1994)に記述されるところのポリカチオン複合物中にもまた形成しうる。ヘルパーウイルスは場合によっては第二のレポーターミニ遺伝子を含有しうる。多数のこうしたレポーター遺伝子が当該技術分野に既知である。アデノウイルスベクター上の導入遺伝子と異なるヘルパーウイルス上のレポーター遺伝子の存在が、Adベクターおよびヘルパーウイルスの双方が独立にモニターされることを可能にする。本第二のレポーターは、精製に際して、生じる組換えウイルスとヘルパーウイルスの間の分離を可能にするのに使用する。
上述された遺伝子のいずれかで欠失された組換えサルアデノウイルス(Ad)を生成するためには、欠失された遺伝子領域の機能を、該ウイルスの複製および感染性に不可欠である場合はヘルパーウイルス若しくは細胞株、すなわち補完若しくはパッケージング細胞株により該組換えウイルスに供給しなければならない。多くの状況で、ヒトE1を発現する細胞株を使用してチンパンジーAdベクターをトランス補完し(transcomplement)得る。これは、本明細書に記述されるチンパンジーAd配列と現在入手可能なパッケージング細胞で見出されるヒトAdE1配列の間の多様性により、現在のヒトE1含有細胞の使用が複製および製造過程の間の複製能力のあるアデノウイルスの生成を予防するため、とりわけ有利である。しかしながら、ある状況では、E1遺伝子産物を発現しかつE1欠失サルアデノウイルスの製造に利用し得る細胞株を利用することが望ましいであろう。こうした細胞株は記述されている。例えば米国特許第6,083,716号明細書を参照されたい。
一般に、ミニ遺伝子を含んでなるベクターをトランスフェクションにより送達する場合、該ベクターは、約1×104細胞ないし約1×1013細胞、および好ましくは約105細胞に対し約5μgから約100μgまでのDNA、および好ましくは約10ないし約50μgのDNAの量で送達される。しかしながら、宿主細胞に対するベクターDNAの相対量は、選択されるベクター、送達方法および選択される宿主細胞のような因子を考慮に入れて調節してよい。
g)、シグナル生成の測定方法などを包含する。
組換えサルアデノウイルス−40、SAdV−31若しくはSAdV−34に基づくベクターは、in vitro、ex vivoおよびin vivoでヒト若しくはサル以外の家畜患者への遺伝子移入に有用である。
のキャプシドをもつrAdの投与を必要としうる。レジメンの各相は、単一Adキャプシドを用いる一連の注入(若しくは他の送達経路)の投与、次いで異なるAd供給源からの別のキャプシドを伴うシリーズを必要としうる。あるいは、SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ベクターを、他のウイルス系、ウイルス以外の送達系、タンパク質、ペプチドおよび他の生物学的に活性の分子を包含する他のアデノウイルスに媒介されない送達系を必要とするレジメンで利用しうる。
一態様において、上述された組換えベクターを公表された遺伝子治療方法に従ってヒトに投与する。選択された導入遺伝子を持つサルウイルスベクターは、好ましくは生物学的に適合性の溶液若しくは製薬学的に許容できる送達ベヒクルに懸濁して患者に投与しうる。適するベヒクルは滅菌生理的食塩水を包含する。製薬学的に許容できる担体であることが既知かつ当業者に公知の他の水性および非水性の等張の滅菌注入溶液ならびに水性および非水性の滅菌懸濁液を本目的上使用しうる。
CTL排除の発生を低下させうる。多様な有用な免疫調節物質およびそれらの使用のための投与量が、例えばYangら、J.Virol.、70(9)(Sept.、1996);1996年5月2日公開の国際特許公開第WO 1996/012406号明細書;および1996年8月29日公開の国際特許公開第WO 1996/026285号明細書(全部は引用することにより本明細書に組み込まれる)に開示されている。
導入遺伝子によりコードされる有用な治療的産物は、インスリン、グルカゴン、成長ホルモン(GH)、副甲状腺ホルモン(PTH)、成長ホルモン放出因子(GRF)、卵胞刺激ホルモン(FSH)、黄体化ホルモン(LH)、ヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)、血管内皮増殖因子(VEGF)、アンジオポエチン、アンジオスタチン、顆粒球コロニー刺激因子(GCSF)、エリスロポエチン(EPO)、結合組織増殖因子(CTGF)、塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF)、酸性線維芽細胞増殖因子(aFGF)、上皮成長因子(EGF)、トランスフォーミング増殖因子(TGF)、血小板由来増殖因子(PDGF)、インスリン様増殖因子IおよびII(IGF−1およびIGF−II)、TGF、アクチビン、インヒビンを包含するトランスフォーミング増殖因子スーパーファミリーのいずれか1種、若しくは骨形成タンパク質(BMP)BMP1〜15のいずれか、ヘレグルイン(heregluin)/ニューレグリン/ARIA/増殖因子のneu分化因子(NDF)ファミリーのいずれか1種、神経成長因子(NGF)、脳由来神経栄養因子(BDNF)、ニューロトロフィンNT−3およびNT−4/5、毛様体神経栄養因子(CNTF)、グリア細胞株由来神経栄養因子(GDNF)、ニューツリン、アグリン、セマフォリン/コラプシンのファミリーのいずれか1種、ネトリン−1およびネトリン−2、肝細胞増殖因子(HGF)、エフリン、ノギン、ソニックヘッジホッグならびにチロシン水酸化酵素を制限なしに包含するホルモンならびに増殖および分化因子を包含する。
(IRF−1)、ウィルムス腫瘍タンパク質、ETS結合タンパク質、STAT、GATAボックス結合タンパク質例えばGATA−3、およびウィングドヘリックスタンパク質のフォークヘッドファミリーのような転写因子を包含する。
いる再投与を必要としうる。とりわけ望ましいレジメンは、第一の投与で送達されるベクターのアデノウイルスキャプシド配列の供給源がその後の投与の1回若しくはそれ以上で利用されるウイルスベクターのアデノウイルスキャプシド配列の供給源と異なるSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34サルアデノウイルスベクターの投与を必要とする。例えば、一態様において、治療レジメンは、SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ベクターの投与、および同一若しくは異なる血清型の1種若しくはそれ以上のアデノウイルスベクターを用いる反復投与を必要とする。別の例において、治療レジメンは、アデノウイルスベクターの投与、次いで第一の送達されるアデノウイルスベクター中のキャプシドの供給源と異なるキャプシドを有するSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ベクターを用いる反復投与、および、場合によっては前の投与段階でのベクターのアデノウイルスキャプシドの供給源と同一であるか若しくは好ましくは異なる別のベクターを用いるさらなる投与を必要とする。これらのレジメンはSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34サル配列を使用して構築されるアデノウイルスベクターの送達に制限されない。むしろ、これらのレジメンは、SAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ベクターの1種若しくはそれ以上と組合せの、他のサルアデノウイルス配列(例えばPan9若しくはC68、C1など)、他のヒト以外の霊長類のアデノウイルス配列またはヒトアデノウイルス配列を制限なしに包含するベクター他のアデノウイルス配列を容易に使用し得る。こうしたサル、他のヒト以外の霊長類およびヒトのアデノウイルス血清型の例は本文書の別の場所で論考する。さらに、これらの治療レジメンは、アデノウイルス以外のベクター、ウイルス以外のベクター、および/または多様な他の治療上有用な化合物若しくは分子と組合せのSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34アデノウイルスベクターの同時若しくは連続いずれかの送達を必要としうる。他の治療レジメンを利用することができ、多様なそれらが当業者に容易に明らかであろう。
該組換えSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ベクターは免疫原性組成物としてもまた使用しうる。本明細書で使用されるところの免疫原性組成物は、それに対する体液性(例えば抗体)若しくは細胞性(例えば細胞傷害性T細胞)応答が、哺乳動物、および好ましくは霊長類への送達後に該免疫原性組成物により送達される導入遺伝子産物に対し開始される組成物である。組換えサルAdは所望の免疫原をコードする遺伝子をそのアデノウイルス配列欠失のいずれかに含有し得る。該サルアデノウイルスは、ヒト起源のアデノウイルスに比較して多様な動物種で生組換えウイルスワクチンとしての使用により良好に適することがありそうであるが、しかしこうした使用に制限されない。該組換えアデノウイルスは、免疫応答の誘導にきわめて重要でありかつ病原体の伝播を制限することが可能な抗原(1種若しくは複数)が同定されておりかつcDNAが利用可能であるいかなる病原体に対する予防的若しくは治療的ワクチンとしても使用し得る。
若しくはウイルスベクターを介してin vivoで発現させ得る。例えば、こうしたアジュバントは、抗原のみをコードするDNAワクチンでのプライミングに際して生成される免疫応答と比較して抗原特異的免疫応答を高めるように、抗原をコードするプライミングDNAワクチンとともに投与し得る。
イルスを包含する。インフルエンザウイルスはオルソミクソウイルス科内に分類され、そして抗原の適する供給源である(例えばHAタンパク質、N1タンパク質)。ブニヤウイルス科は、ブニヤウイルス属(カリフォルニア脳炎、ラクロス)、フレボウイルス(リフトバレー熱)、ハンタウイルス(プレマラ(puremala)はヘマハギン(hemahagin)熱ウイルスである)、ナイロウイルス(ナイロビ羊病)および多様な割り当てられていないブンガウイルス(bungavirus)を包含する。アレナウイルス科はLCMおよびラッサ熱ウイルスに対する抗原の供給源を提供する。レオウイルス科は、レオウイルス、ロタウイルス(小児で急性胃腸炎を引き起こす)、オルビウイルスおよびクルチウイルス(cultivirus)(コロラドダニ熱、レボンボ(ヒト)、ウマ脳症、ブルータング)属を包含する。
管炎、マレック病ウイルスおよびラジノウイルス属を包含するガンマヘルペスウイルス亜科を包含する。ポックスウイルス科は、オルトポックスウイルス(大疱瘡(天然痘)およびワクシニア(牛痘))、パラポックスウイルス、アビポックスウイルス、カプリポックスウイルス、レポリポックスウイルス、スイポックスウイルス属を包含するチョルドポックスウイルス亜科、ならびにエントモポックスウイルス亜科を包含する。ヘパドナウイルス科はB型肝炎ウイルスを包含する。抗原の適する供給源となりうる1種の分類されないウイルスはD型肝炎ウイルスである。なお他のウイルス供給源は、トリ伝染性ファブリキウス嚢病ウイルスおよびブタ繁殖・呼吸障害症候群ウイルスを包含しうる。アルファウイルス科はウマ動脈炎ウイルスおよび多様な脳炎ウイルスを包含する。
れている。例えば、これらの生物学的剤のいくつかは、炭疽菌(Bacillus anthracis)(炭疽)、ボツリヌス菌(Clostridium botulinum)およびそのトキシン(ボツリヌス中毒)、ペスト菌(Yersinia pestis)(ペスト)、大疱瘡(天然痘)、野兎病菌(Francisella tularensis)(野兎病)、ならびにウイルス性出血熱(フィロウイルス(例えばエボラ、マールブルグ)ならびにアレナウイルス(例えばラッサ、マチュポ))(それらの全部は現在カテゴリーAの剤に分類されている);コクシエラ ブルネティ(Coxiella burnetti)(Q熱);ブルセラ属(Brucella)スピーシーズ(ブルセラ症)、バークホルデリア マレイ(Burkholderia mallei)(鼻疽)、類鼻疽菌(Burkholderia pseudomallei)(メロイドーシス(meloidosis))、トウゴマ(Ricinus communis)およびそのトキシン(リシントキシン)、ウェルシュ菌(Clostridium perfringens)およびそのトキシン(εトキシン)、ブドウ球菌属(Staphylococcus)スピーシーズおよびそれらのトキシン(エンテロトキシンB)、オウム病クラミジア(Chlamydia psittaci)(オウム病)、水の安全性に対する脅威(例えばコレラ菌(Vibrio chlerae)、クリトスポリジウム パルブム(Crytosporidium parvum))、発疹チフス(発疹チフスリケッチア(Richettsia powazekki))、ならびにウイルス性脳炎(アルファウイルス、例えばベネズエラウマ脳炎;東部ウマ脳炎;西部ウマ脳炎);(それらの全部は現在カテゴリーBの剤として分類されている);ならびにニパンウイルスおよびハンタウイルス(現在カテゴリーCの剤として分類されている)を包含する。加えて、そのように分類されるか若しくは異なって分類される他の生物体が将来同定かつ/若しくはこうした目的上使用されうる。本明細書に記述されるウイルスベクターおよび他の構築物が、これらの生物学的剤への感染症若しくはそれらとの他の有害反応を予防かつ/若しくは処置することができる、これらの生物体、ウイルス、それらのトキシン若しくは他の副生成物からの抗原を送達するのに有用であることが容易に理解されるであろう。
選択された遺伝子の治療レベル若しくは免疫のレベルをモニターしてブースターの必要性(あれば)を決定し得る。CD8+ T細胞応答若しくは場合によっては血清中の抗体力価の評価後に任意のブースター免疫化が望ましいかもしれない。場合によっては、組換えSAdV−40、SAdV−31若しくはSAdV−34ベクターを、単回投与で、あるいは多様な組合せレジメンで、例えば他の有効成分を必要とする処置のレジメン若しくはクールと組合せで、またはプライム−ブースト(prime−boost)レジメンで
送達しうる。多様なこうしたレジメンが当該技術分野で記述されており、そして容易に選択されうる。
により投与のために調製される。適切な担体は当業者に明らかであることができ、そして投与経路に大きな部分依存することができる。本明細書に記述される組成物は、生物分解性の生物適合性ポリマーを使用する徐放製剤で、若しくはミセル、ゲルおよびリポソームを使用するオンサイト(on−site)送達により、上述された経路により哺乳動物に投与しうる。場合によっては、プライミング段階は、本明細書に定義されるようなアジュバントの適する量をプライミング組成物とともに投与することもまた包含する。
of Louisiana New Iberia Research Center)、4401 W.Admiral Doyle Drive,New Iberia,Louisiana,USAのチンパンジーのコロニー、およびテキサス大学M.D.アンダーソンがんセンターマイケル・E.キーリング比較医学研究センター(Michale E.Keeling Center for Comparative Medicine and Research,University of Texas M.D.Anderson Cancer Center)、Bastrop,Texas,USAのチンパンジーのコロニーから得た。ハンクス緩衝塩類溶液の懸濁液中のチンパンジー糞便サンプルからの上清を0.2ミクロンシリンジフィルターを通して除菌した。各濾過したサンプル100μlをヒト細胞株A549培養物に接種した。これらの細胞を、10%FBS、1%ペニシリン−ストレプトマイシンおよび50μg/mlゲンタマイシン
を含むハムF12中で増殖させた。培養約1ないし2週後に数回の接種を伴う細胞培養物で視覚的細胞変性効果(CPE)が明らかであった。該アデノウイルスを、アデノウイルス精製のための標準的な公表された塩化セシウム勾配技術を使用して、A549細胞中の培養物から精製した。精製したアデノウイルスからのDNAを単離し、そしてQiagen Genomic services、独国ヒルデンにより完全に配列決定された。
A.SAdV−40(サブグループC)を使用するE1欠失ベクターを記述されるとおり製造した。
1.pSR2の構築:
PmeI部位により隣接されるSnaBI、FseI、MluI、PacIおよびEcoRV部位を含有するリンカーを、後に続くとおりEcoRIおよびNdeIで切断したpBR322にクローン化した。
オリゴマーP6 Top:
AATTGTTTAAACTACGTAATTAGGCCGGCCGCGCACGCGTGTCATTAATTAAGCTAGATATCGTTTAAAC(配列番号94)および
P6 Bot:
GTTTAAACGATATCTAGCTTAATTAATGACACGCGTGCGCGGCCGGCCTAATTACGTAGTTTAAACAT(配列番号95)
を一緒にアニーリングしてリンカーを創製した。
プラスミドpSR2をMluIで消化し、そしてアニーリングしたオリゴマー
95ltop−CGCGCATATGGATCGATCGCTAGCGATCGATCGAATTC(配列番号96)および
95lbot−CGCGGAATTCGATCGATCGCTAGCGATCGATCC
ATATG(配列番号97)
を連結した。
これは、PmeI部位により隣接されるSnaBI、FseI、NdeI、NheI、EcoRI、PacIおよびEcoRV部位を持つリンカーを創製する。pSR7中で、このリンカーはEcoRIからNdeI部位までのpBR322フラグメントを置き換える。
New England Biolabs(NEB)Phusionキットを使用した−各プライマー、0.5μM、dNTP−各0.2mM、酵素−NEB Phusion、緩衝液−キット中に供給されるとおり。
PCR条件(全3反応について)−98°−30秒、(98°−10秒、アニーリング−30秒、72°−15秒)25サイクル
PCR1
オリゴマー
SOE 1−pCATCATCAATAATATACCTTATTTTGG(配列番号98)および
SOE 2−AACGGAGACTTTGACCCGG(配列番号99)
を、該アデノウイルスDNAの最初の448bpすなわち
CATCATCAATAATATACCTTATTTTGGATTGAAGCCAATATGATAATGAGATGGGTGGCGCGGGGCGGGGCGCGGGGCGGGAGGCGGGTCCGGGGGCGGGCCGGCGGGCGGGGCGGTGTGGCGGAAGTGGACTTTGTAAGTGTGGCGGATGTGACTTGCTAGTGTCGGGCGCGGTAAAAGTGACGTTTTCCGTGCGCGACAACGCCCACGGGAAGTGACATTTTTCCCGCGGTTTTTACCGGATGTTGTAGTGAATTTGGGCGTAACCAAGTAAGATTTGGCCATTTTCGCGGGAAAACTGAAACGGGGAAGTGAAATCTGATTAATTTCGCGTTAGTCATACCGCGTAATATTTGTCGAGGGCCGAGGGACTTTGGCCGATTACGTGGAGGACTCGCCCAGGTGTTTTTTGAGGTGAATTTCCGCGTTCCGGGTCAAAGTCTCCGTT(配列番号1のアミノ酸1−448)
を増幅するため設計した(鋳型−SAdV−40 DNA、61°でアニーリング)。
PCR2
オリゴマー
SOE 3−CCGGGTCAAAGTCTCCGTT−TAACTATAACGGTCCTAAGGTAG(配列番号100)およびSOE 4−GATCCATATG−TGCCATTTCATTACCTCTTTC(配列番号101)を、I−CeuIおよびPI−SceI部位を持つ318bpフラグメントすなわち
CCGGGTCAAAGTCTCCGTTTAACTATAACGGTCCTAAGGTAGCGAAAGCTCAGATCTCCCGATCCCCTATGGTGCACTCTCAGTACAATCTGCTCTGATGCCGCATAGTTAAGCCAGTATCTGCTCCCTGCTTGTGTGTTGGAGGTCGCTGAGTAGTGCGCGAGCAAAATTTAAGCTACAACAAGGCAAGGCTTGACCGACAATTGCATGAAGAATCTGCTTAGGGTTAGGCGTTTTGCGCTGCTTCGCGATGTACGGGCCAGATATACATCTATGTCGGGTGCGGAGAAAGAGGTAATGAAATGGCACATATGGATC(配列番号102)
を増幅するため設計した(鋳型−pAscRlnew、58.5°でアニーリング)。
SOE 3の5’の19塩基はSOE 2に相補的である。
SOE 4の5’の10塩基はNdeI部位を持つ(最終産物をpSR7にクローン化
するため)
PCR3
PCR1およびPCR2の産物を結合するため、各PCRの20μlを1%Seaplaqueゲルで泳動した。バンドを切り出しそしてアガロースを68°で融解した。各融解したゲル5μlを190μlの水と合わせた。該希釈混合物4μlを、61°でアニーリングするプライマーSOE 1およびSOE 4を使用する200μlのPCR反応で鋳型として使用した。期待された産物の大きさは747bpであった。
最終PCR産物をNdeIで消化し、そしてSnaBIおよびNdeIで切断したpSR7に連結した。ミニプレップをPmeIで消化することにより分析した(2073、809を期待する)。4種をプライマーpBRfwd(CACCTGACGTCTAAGAAACC(配列番号103))およびpBRrev(TGAGCGAGGAAGCGGAAG(配列番号104))で配列決定した。配列は、クローン化したウイルス左端配列の最初の79bpの後に44bpの欠失が存在したことを示した。該欠失を是正するため、SacII−NdeIが別のプラスミド(該欠失を是正するためのpSR7にクローン化されたNdeI部位までのSAdV−40ウイルスDNAの3433bpの左端を持つ)から交換する。
SAdV−40ウイルスDNAをEcoRIで消化し、そして3767bpの右端フラグメントを、EcoRIとEcoRVの間でpSR7 C14 LE delE1 IPにクローン化して、pC40IP LE REを生じた。
プラスミドpC40IP LE REをNdeIおよびEcoRIで消化し、そして33952bpのウイルスNdeI−EcoRIフラグメントを連結した。該クローンをpC40 IPと呼んだ。
SAdV−31(サブグループC)を使用するE1欠失ベクターを記述されるとおり製造した。
1.pSR2の構築:
PmeI部位により隣接されるSnaBI、FseI、MluI、PacIおよびEcoRV部位を含有するリンカーを、後に続くとおりEcoRIおよびNdeIで切断したpBR322にクローン化した。
オリゴマー
P6 Top
AATTGTTTAAACTACGTAATTAGGCCGGCCGCGCACGCGTGTCATTAATTAAGCTAGATATCGTTTAAAC(配列番号94)および
P6 Bot
GTTTAAACGATATCTAGCTTAATTAATGACACGCGTGCGCGGCCGGCCTAATTACGTAGTTTAAACAT(配列番号95)
を一緒にアニーリングしてリンカーを創製した。
プラスミドpSR2をMluIで消化し、そしてアニーリングしたオリゴマー
951top−CGCGCATATGGATCGATCGCTAGCGATCGATCGAATTC(配列番号96)および
951bot−CGCGGAATTCGATCGATCGCTAGCGATCGATCCATATG(配列番号97)
を連結した。これは、PmeI部位により隣接されるSnaBI、FseI、NdeI、NheI、EcoRI、PacIおよびEcoRV部位を持つリンカーを創製する。pSR7中で、このリンカーはEcoRIからNdeI部位までのpBR322フラグメントを置き換える。
SAdV−31ウイルスDNAをPacIで消化し、そして821bpの右端フラグメントを、PacIとEcoRVの間でpSR7にクローン化してpSR7 C31 REを生じた。
SAdV−31ウイルスDNAをNheIで消化し、そして9449bpの左端フラグメントを、SnaBIとNheIの間でpSR7 C31 REにクローン化して、pSR7 C31 LEREを生じた。
プラスミドpSR7 C31LEREをBlpIとNdeI(双方の部位のクレノウ充填)の間で欠失してE1aおよびE1bコーディング領域の大部分を欠失し;その場所にDNAフラグメント(I−CeuIおよびPI−SceIの部位を持つpBleuSK I−PIからのEcoRVフラグメント)を連結して、pC31 LERE IPを生じた。
プラスミドpC31 LERE IPをNheIおよびPacIで消化し、そして27559bpのウイルスのNdeI−EcoRIフラグメントを連結した。該クローンをpC31 IPと呼んだ。
E1欠失の代わりにI−CeuIおよびPI−SceI認識部位を持つDNAセグメントを挿入するため、プラスミドpBleuSK I−PIを使用した。プラスミドpBleuSK I−PIは、pBluescript II SK(+)(Stratagene)のEcoRV部位に挿入された654bpフラグメントを含有する。該654bpフラグメントは、レアカッター制限酵素I−CeuIおよびPI−SceIの認識部位を持つ。E1欠失の代わりにI−CeuIおよびPI−SceI認識部位を持つDNAセグメントを挿入するため、pBleuSK I−PIをEcoRVで消化し、そして該654bpフラグメントをアデノウイルスゲノムE1欠失の場所に連結した。
GATATCATTTCCCCGAAAAGTGCCACCTGACGTAACTATAACGGTCCTAAGGTAGCGAAAGCTCAGATCTCCCGATCCCCTATGGTGCACTCTCAGTACAATCTGCTCTGATGCCGCATAGTTAAGCCAGTATCTGCTCCCTGCTTGTGTGTTGGAGGTC
GCTGAGTAGTGCGCGAGCAAAATTTAAGCTACAACAAGGCAAGGCTTGACCGACAATTGCATGAAGAATCTGCTTAGGGTTAGGCGTTTTGCGCTGCTTCGCGATGTACGGGCCAGATATACGCGGTACGAAACCGCTGATCAGCCTCGACTGTGCCTTCTAGTTGCCAGCCATCTGTTGTTTGCCCCTCCCCCGTGCCTTCCTTGACCCTGGAAGGTGCCACTCCCACTGTCCTTTCCTAATAAAATGAGGAAATTGCATCGCATTGTCTGAGTAGGTGTCATTCTATTCTGGGGGGTGGGGTGGGGCAGGACAGCAAGGGGGAGGATTGGGAAGACAATAGCAGGCATGCTGGGGATGCGGTGGGCTCTATGGCTTCTGAGGCGGAAAGAACCAGCAGATCTGCAGATCTGAATTCATCTATGTCGGGTGCGGAGAAAGAGGTAATGAAATGGCATTATGGGTATTATGGGTCTGCATTAATGAATCGGCCAGATATC(配列番号105)
野生型SAdV−40、SAdV−31、SAdV−34を、直接免疫蛍光によりモニターされる感染阻害中和抗体アッセイを使用して、ヒトアデノウイルス5(亜種C)およびチンパンジーアデノウイルス7(SAdV−24)ならびにヒトプールIgGと比較して交差中和活性について評価した。ヒトプールIgG(Hu Pooled IgG)は商業的に購入され、そして一般ヒト集団が曝露される多数の抗原に対する抗体をそれが含有するために、免疫無防備状態の患者での投与に承認されている。ヒトプールIgGについてのサルアデノウイルスに対する中和抗体の存在若しくは非存在は、一般集団におけるこれらのアデノウイルスに対する抗体の頻度の反映である。
むウェル中でスライドガラスに添加した。1時間後に各ウェル中の細胞に100μlの20%ウシ胎児血清(FBS)−DMEMを補充しかつ5%CO2中37℃で22時間培養した。次に、細胞をPBSで2回すすぎ、そしてパラホルムアルデヒド中の固定(4%、30分)および0.2%Triton中の透過処理(4℃、20分)後に、DAPI、およびHAdV−5に対し生じさせたヤギのFITC標識した広範に交差反応性の抗体(Virostat)で染色した。感染のレベルはFITC陽性細胞の数を顕微鏡下に計数することにより決定した。NAB力価はアデノウイルス感染をナイーブ血清対照と比較して50%若しくはそれ以上阻害する最高血清希釈として報告する。
形質細胞様樹状細胞をヒト末梢血単核細胞(PBMC)から単離し、そして96ウェルプレート中の培地中で培養しそしてアデノウイルスに感染させた。48時間後に細胞を遠心沈殿しかつ上清を収集し、そしてインターフェロンaの存在について分析した。
ンおよびゲンタマイシン−Mediatechから)ならびにヒトインターロイキン3(20ng/mL−R&D)を補充したRPMI−1640培地(Mediatech)中で培養した。野生型アデノウイルスを10,000の感染多重度(MOI)(106細胞/mlの濃度で細胞あたり10,000ウイルス粒子)で細胞に直接添加した。48時間後に細胞を遠心沈殿しそして上清をインターフェロンの存在についてアッセイした。PBL Biomedical Laboratoriesからの酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)キットを使用して、製造元からの推奨されるプロトコルを使用してサイトカインを測定した。
Claims (7)
- SAdV−31のヘキソンタンパク質、配列番号42のアミノ酸1ないし954であるヘキソンタンパク質、SAdV−31のペントンタンパク質、配列番号37のアミノ酸1ないし589であるペントンタンパク質、およびSAdV−31のファイバータンパク質、配列番号51のアミノ酸1ないし596であるファイバータンパク質、を含んでなるアデノウイルスキャプシド、を有する組換えアデノウイルスであって、
前記キャプシドが、宿主細胞中でのその転写、翻訳および/若しくは発現を指図する発現制御配列に作動可能に連結されている遺伝子を保有する異種分子を被包化する、上記組換えアデノウイルス。 - 複製および被包化に必要な5’および3’アデノウイルスシスエレメントをさらに含んでなる、請求項1に記載の組換えアデノウイルス。
- 前記組換えアデノウイルスがE1遺伝子の全部若しくは一部を欠く、請求項1若しくは請求項2に記載の組換えアデノウイルス。
- 前記組換えアデノウイルスが複製欠損である、請求項3に記載の組換えアデノウイルス。
- 配列番号32のサルアデノウイルス31核酸1ないし37828およびその相補物よりなる、単離されたサルアデノウイルス核酸。
- E1a、配列番号60;
E1b、スモールT/19K、配列番号53;
E1b、ラージT/55K、配列番号33;
IX、配列番号34;
52/55D、配列番号35;
IIIa、配列番号36;
VII、配列番号38;
V、配列番号39;
pX、配列番号40;
VI、配列番号41;
エンドプロテアーゼ、配列番号43;
100kD 配列番号44;
33kD、配列番号62;
22kD、配列番号55;
VIII、配列番号45;
12.5K、配列番号46;
CR1−α、配列番号56;
gp19K、配列番号47;
CR1−β、配列番号48;
CR1−γ、配列番号57;
RID−α、配列番号49;
RID−β、配列番号50−;および
14.7K、配列番号58;
よりなる群から選択される1種若しくはそれ以上のサルアデノウイルスタンパク質を含んでなる、請求項1ないし4のいずれか1に記載の組換えアデノウイルス、を含んでなる組成物。 - 製薬学的に許容できる担体中に請求項1ないし4のいずれか1つに記載の組換えアデノウイルスを含んでなる組成物。
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