JP5697598B2 - 結腸ターゲッティング用の水不溶性ポリマー：不消化性水溶性ポリサッカリド型フィルムコーティング - Google Patents

Description

本発明は、活性成分（複数可）を制御送達するための制御放出性送達製剤に関する。本発明はまた、その使用および製造方法に関する。

結腸ターゲッティングは、クローン病（ＣＤ）や潰瘍性結腸炎（ＵＣ）のような炎症性腸疾患の治療をはじめとする多くの薬剤療法に非常に有用である可能性がある。

局所作用性薬剤を従来の医薬製剤により経口投与した場合、後者は、胃の内容物中に急速に溶解され、薬剤は、放出されておそらく血流中に吸収される。これにより全身の薬剤濃度が上昇するので、望ましくない副作用の危険性が高くなると同時に結腸内の作用部位での薬剤濃度が低下し、結果的に治療効率が悪くなる。これらの制約は、薬剤放出が胃内および小腸内では抑制され、かつ結腸内では時間制御されるのであれば、克服可能である。結腸へのこのタイプの部位特異的薬剤送達はまた、タンパク質およびペプチドの薬剤が経口投与により体循環血流中に吸収される興味深い機会を与える可能性もある。

結腸ターゲッティングを可能にするために、たとえば、薬剤を高分子マトリックス形成材中に包埋することが可能であるか、または薬剤担持型の錠剤もしくはペレット剤、たとえば直径約０．５〜１ｍｍの球状ビーズ剤を、高分子フィルムでコーティングすることが可能である。上部胃腸管（ＧＩＴ）内では、薬剤に対する高分子網状構造の透過性は、低くなければならないが、巨大分子障壁は、結腸に達した時点で透過性にならなければならない。作用部位での高分子網状構造の薬剤透過性のこの増大は、（ｉ）ＧＩＴの内容物のｐＨ変化、（ｉｉ）ＧＩＴに沿った酵素の質および／もしくは量の変化、または（ｉｉｉ）所定の遅延時間後に生じる製剤内の有意な構造変化（たとえば、脈動的薬剤放出パターンを提供する低透過性フィルムコーティングの亀裂形成）により誘導可能である。他の選択肢として、薬剤放出は、薬剤が結腸に達した時点で依然として製剤内にあることを保証するのに十分な程度に低速度で、すでに胃内で開始されてＧＩＴ全体にわたり持続されるようにしてもよい。

結腸ターゲッティングの問題を解決する試みは、プレドニゾロンナトリウムメタスルホベンゾエートを送達するための制御放出性製剤に関する米国特許出願公開第２００５／０２２０８６１号明細書に開示されている。この製剤は、ガラス状アミロースとエチルセルロースとジブチルセバケートとを含むコーティングに取り囲まれたプレドニゾロンナトリウムメタスルホベンゾエートを含む。ただし、アミロースとエチルセルロースとの比は、（１：３．５）〜（１：４．５）であり、かつアミロースは、トウモロコシまたはメイズのアミロースである。米国特許出願公開第２００５／０２２０８６１号明細書とは対照的に、本発明に記載の系は、患者の疾患状態に適合化される。これは、きわめて重要な側面である。なぜなら、結腸ターゲッティングを可能にするために、製剤は、結腸に達した時点で薬剤に対してより透過性にならなければならないからである。これは、たとえば、上部胃腸管内での急速な薬剤放出を妨害する化合物を優先的に分解することにより保証可能である。この部位特異的分解は、上部胃腸管内に存在する酵素と結腸内の酵素との質および量の有意差に依拠することが可能である。この化合物は、上部胃腸管内では分解されてはならないが（かつ薬剤放出を妨害しなければないが）、結腸内では分解されなければならない（ひいては薬剤放出を可能にしなければならない）。このタイプの先進的薬剤送達系の性能は、基本的には、患者の結腸内の環境条件に、特定的には、結腸内に存在する酵素のタイプおよび濃度に依存している。疾患状態が胃腸管内の酵素分泌性微生物叢の質および量に有意な影響を及ぼす可能性があることは、周知でありかつ文献で十分に立証されている。これは、とくに、炎症性腸疾患に罹患している患者の結腸内の微生物叢の場合にあてはまる。すなわち、たとえば、患者の結腸内に存在する酵素の質および量は、健常被験者のものと有意に異なる可能性がある。したがって、このタイプの薬剤送達系の性能は、疾患状態により、有意な影響を受ける可能性がある。患者の結腸内での疾患状態において十分な濃度で存在しない酵素による優先的分解に依拠する系は、うまく機能しない。本発明は、病態生理学的条件下で、すなわち、炎症性腸疾患に罹患している患者の糞便中で、活性成分の制御送達を可能にする製剤について初めて報告する。したがって、この製剤の性能は、所与の病態生理学的条件下のｉｎ ｖｉｖｏで保証される。これは、治療の奏効性および安全性のために決定的に重要である。

米国特許第６５３４５４９号明細書は、（１）水と（２）フィルム形成性ポリマーを単独で溶解可能な水混和性有機溶媒とを含む、溶媒系中の実質的に水不溶性のフィルム形成性ポリマーとアミロースとの混合物を活性材料に接触させて、得られた組成物を乾燥させることを含む、制御放出性製剤の製造方法に関する。この製剤は、治療剤を結腸に送達するのにとくに好適である。本発明とは対照的に、その開示は、有機溶媒を用いて調製される薬剤送達系を扱っている。これは、本発明の場合にはあてはまらない。有機溶媒の使用は、毒性および環境の問題さらには爆発の危険性をはじめとするいくつかの問題を抱えている。さらに、アミロースの使用は、このポリマーの抽出およびその安定化を伴う。アミロースは、加水分解工程および精製工程の後でデンプンから抽出される。このプロセスは、工業レベルでは複雑かつ使用困難である。この製剤は、炎症性腸疾患に罹患している患者での薬剤放出速度が考慮に入っていない。炎症性腸疾患の患者の結腸内に存在する細菌のタイプおよび量は健常被験者のものと有意に異なる可能性があることを指摘しておかなければならない。したがって、これらの細菌により分泌されて薬剤送達系に接触する酵素のタイプおよび量は、有意に異なる可能性がある。その結果、薬剤送達系の性能は、有意に異なる可能性がある。

米国特許出願公開第２００５／０２２０８６１号明細書 米国特許第６５３４５４９号明細書

「マメ科植物デンプンの組成、構造、機能、および化学修飾：総説」 Ｒ．Ｈｏｏｖｅｒら 「新規エンドウデンプンの開発」 Ｃ−Ｌ Ｈｅｙｄｌｅｙら（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ ｏｆ ｔｈｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ，１９９６，ｐｐ．７７−８７）

本発明の目的は、活性成分、たとえば、限定されるものではないが、活性医薬成分、生物学的活性成分、化学的活性成分、栄養医薬活性成分、農学的活性成分、または栄養学的活性成分の送達の速度および程度を制御する送達製剤を提供することである。

本発明の他の目的は、結腸への部位特異的薬剤ターゲティングを可能しかつ健常結腸を有する患者だけでなく炎症性腸疾患に罹患している患者にも使用可能である新しい高分子フィルムコーティングを提供することである。

本発明のさらなる目的は、上部ＧＩＴ内で受ける剪断応力（胃腸の運動に起因する）に耐えるのに十分な、かつ水性培地との接触時に系内への水透過に起因して製剤内で発生する可能性のある有意な静水圧に耐えるのに十分な、機械的安定性を有する新しい高分子フィルムコーティングを提供することである。実際に、公知のポリマーコーティングでは、偶発的な亀裂形成の問題は、水で満たされたチャネルを介する早期の薬剤放出を招く可能性がある。

本発明のさらなる目的は、特定のタイプの薬剤治療の特定のニーズ、たとえば、薬剤の浸透活性および投与量に合わせて調整可能な新しい高分子フィルムコーティングを提供することである。

本発明は、
ｏ 少なくとも水不溶性ポリマーと
ｏ 少なくとも不消化性水溶性ポリサッカリドと
の高分子混合物によりコーティングされた活性成分を含む、活性成分を制御放出するための制御放出性医薬製剤を提供する。

好ましくは、高分子混合物は、結腸ターゲッティング放出、すなわち、結腸内微生物叢の不均衡を有する患者の結腸内および健常被験者の結腸内における前記活性成分の放出を提供する。

好ましくは、制御放出性製剤は、経口製剤でありかつ胃耐性を有する。好ましい実施形態では、制御放出性医薬製剤は、固体、液体、または半液体の形態である。有利には、制御放出性医薬製剤は、固体分散体である。本発明によれば、高分子混合物は、水不溶性ポリマーと不消化性水溶性ポリサッカリドとの均質混合物であり、前記不消化性水溶性ポリサッカリド（ｉｎｄｉｇｅｓｔｉｂｌｅ ｗａｔｅｒ−ｓｏｌｕｂｌｅ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ ｄｏｅｓｎ’ｔｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）は、水不溶性ポリマー中で微粒子を形成しない。

本発明の一実施形態では、制御放出性送達製剤は、コアを含み、活性成分は、コア中に分散または溶解される。

本発明のさらなる実施形態では、不消化性水溶性ポリサッカリドは、キシロオリゴサッカリド、イヌリン、オリゴフルクトース、フルクトオリゴサッカリド（ＦＯＳ）、ラクツロース、ガラクトマンナンおよびその好適な加水分解物、不消化性ポリデキストロース、不消化性デキストリンおよびその部分加水分解物、ｔｒａｎｓ−ガラクトオリゴサッカリド（ＧＯＳ）、キシロオリゴサッカリド（ＸＯＳ）、アセマンナン、レンチナンもしくはβ−グルカンおよびそれらの部分加水分解物、ポリサッカリド−Ｋ（ＰＳＫ）、不消化性マルトデキストリン、およびそれらの部分加水分解物、またはそれらの混合物からなる群から選択される。

好ましくは、高分子混合物は、エンドウ、インゲン、ソラマメ（ｂｒｏａｄ ｂｅａｎ ａｎｄ ｈｏｒｓｅ ｂｅａｎ）、または穀物のデンプンからなる群から選択されるマメ科植物のデンプンのようなポリサッカリドを追加的に含有する。

他の有利な選択肢の製剤によれば、マメ科植物は、少なくとも２５重量％、好ましくは少なくとも４０重量％のデンプン（乾量／乾量）を含む種子を与える植物、たとえば、さまざまなエンドウまたはソラマメである。有利には、マメ科植物はエンドウである。

本発明によれば、不消化性水溶性ポリサッカリドは、１５〜３５％の１−＞６グルコシド結合、２０％未満の還元糖含有率、５未満の多分子指数、および多くとも４５００ｇ／ｍｏｌに等しい数平均分子質量Ｍｎを有する、不消化性マルトデキストリンまたは不消化性デキストリンである。

一変形形態によれば、前記不消化性マルトデキストリンの全部または一部は、水素化されている。

本発明によれば、不消化性水溶性ポリサッカリドは、分岐状マルトデキストリンである。

さらなる実施形態では、制御放出性送達製剤の不消化性水溶性ポリサッカリド：水不溶性ポリマー比は、１：２〜１：８、好ましくは１：３〜１：６、より好ましくは１：４〜１：５である。

一変形形態によれば、コア粒子は、５％〜３０％、好ましくは１０％〜２０％のコーティングレベルを有する。

さらなる実施形態では、高分子混合物は、可塑剤を含み、好ましくは、可塑剤含有率は、水不溶性ポリマー含有率を基準にして２５％〜３０％ｗ／ｗである。

好ましくは、水不溶性ポリマーは、エチルセルロース、セルロース誘導体、アクリル酸および／またはメタクリル酸エステルポリマー、アクリレートまたはメタクリレートのポリマーまたはコポリマー、ポリビニルエステル、デンプン誘導体、ポリビニルアセテート、ポリアクリル酸エステル、ブタジエンスチレンコポリマー、メタクリル酸エステルコポリマー、セルロースアセテートフタレート、ポリビニルアセテートフタレート、シェラック、メタクリル酸コポリマー、セルロースアセテートトリメリテート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ゼイン、デンプンアセテートからなる群から選択される。

さらなる実施形態によれば、可塑剤は水溶性可塑剤である。好ましくは、水溶性可塑剤は、単独でまたは相互の混合物として、ポリオール（グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、有機エステル（フタル酸エステル、ジブチルセバケート、クエン酸エステル、トリアセチン）、油／グリセリド（ヒマシ油、アセチル化モノグリセリド、分別ヤシ油）、ダイズレシチンからなる群から選択される。

好ましい実施形態では、制御放出性製剤は多微粒子状製剤である。

本発明はまた、結腸内微生物叢の不均衡を有する患者の結腸内または健常被験者の結腸内で活性成分を制御放出するための制御放出性医薬製剤の製造方法を提供する。ただし、前記方法は、
ｏ 以下の物質、すなわち、
・ 少なくとも１種の水不溶性ポリマーと
・ 少なくとも不消化性水溶性ポリサッカリドと
の高分子混合物を形成するステップと、
ｏ 前記活性成分を高分子混合物によりコーティングするステップと、
を含む。

さらなる実施形態では、活性成分をコーティングする工程は、活性成分をコア中に分散もしくは溶解させた状態でコアをコーティングする工程であり、かつ／または活性成分をコーティングする工程は、高分子混合物中に活性成分を分散もしくは溶解させる工程である。

本発明はまた、結腸内微生物叢の不均衡を有する患者の結腸内または健常被験者の結腸内で活性成分を制御放出するための制御放出性医薬製剤の製造方法を提供する。ただし、前記制御放出製剤は、消化器系内で細菌の増殖および／または活性を刺激し、前記方法は、
ｏ 以下の物質、すなわち、
・ 少なくとも水不溶性ポリマーと
・ 少なくとも不消化性水溶性ポリサッカリドと
の高分子混合物を形成するステップと、
ｏ 前記活性成分を高分子混合物によりコーティングするステップと、
を含む。

消化器系内で細菌の増殖および／または活性を刺激することは、身体の健康に有益であり、この効果は、プレバイオティクス効果と呼ばれる。プレバイオティクスは、健康に有益な効果を及ぼす非消化性炭水化物のような非消化性成分である。とくに、キシロポリサッカリド、イヌリン、オリゴフルクトース、フルクトオリゴサッカリド（ＦＯＳ）、または分岐状マルトデキストリンのような非消化性炭水化物は、プレバイオティクス効果を有するものとして報告されている。

さらなる実施形態では、活性成分をコーティングする工程は、活性成分をコア中に分散もしくは溶解させた状態でコアをコーティングする工程であり、かつ／または活性成分をコーティングする工程は、高分子混合物中に活性成分を分散もしくは溶解させる工程である。

炎症性腸疾患（たとえばクローン病および潰瘍性結腸炎）に罹患している患者の胃腸管内の状態は、健常被験者のものと有意に異なる可能性がある。個体内および個体間の変動は、ＧＩＴ内容物のｐＨ、酵素分泌性細菌のタイプおよび濃度、さらには種々のＧＩＴセグメント内の通過時間に関してかなり大きい可能性がある。たとえば、一般的には、健常被験者の結腸内にはかなりの量のビフィズス菌が存在し、複数の細胞外グリコシダーゼにより複合ポリサッカリドを分解することが可能である。しかしながら、疾患状態では、それらの濃度は、有意に低減される可能性がある。たとえば、糞便のグリコシダーゼ活性（特定的にはβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ活性）は、クローン病に罹患している患者では低減され、結腸内微生物叢の代謝活性は、活動性疾患状態で強く撹乱されることが示された。したがって、病態生理の影響は、重大である可能性があり、薬剤治療の失敗をまねく可能性がある。

炎症性腸疾患に罹患している患者への治療失敗を回避するために、部位特異的薬剤送達系は、患者の結腸の所与の状態に適合化されなければならない。たとえば、クローン病患者および潰瘍性大腸炎患者の糞便中に十分量で存在する酵素により分解される高分子フィルムコーティングを使用してもよい。しかしながら、依然として、どのタイプのポリマーがこれらの前提条件を満たすかは不明である。

したがって、本発明はまた、消化器系内で細菌の増殖および／または活性を刺激するための医薬の製造における、水不溶性ポリマーと不消化性水溶性ポリサッカリドとを含む結腸ターゲッティング用コーティング調製物の使用を提供する。好ましくは、本発明は、結腸内細菌の不均衡に罹患している患者の治療処置および／または予防処置で活性成分の結腸ターゲッティング放出を行うための、ならびに消化器系内で細菌の増殖および／または活性を刺激するための医薬の製造における、水不溶性ポリマーと不消化性水溶性ポリサッカリドとを含むポリマーコーティング調製物の使用を提供する。好ましい実施形態では、炎症性腸疾患に罹患している患者は、結腸内細菌の不均衡に罹患している患者である。実際に、本発明に係るコーティング調製物は、結腸内微生物叢の不均衡に罹患しているかまたは罹患していない患者の結腸内での活性成分の特異的放出と、プレバイオティクス効果すなわち結腸内微生物叢の刺激と、を同時に提供する。

（ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時のさまざまなタイプのポリマーブレンド（図中に示される）で構成される薄いフィルムの水含有率。可塑化エチルセルロースのみで構成されるフィルムは、比較のために示されている。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時のさまざまなタイプのポリマーブレンド（図中に示される）で構成される薄いフィルムの乾燥質量。可塑化エチルセルロースのみで構成されるフィルムは、比較のために示されている。 パンクレアチンまたはラット腸からの抽出物を含有するかまたは含有しないリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時のエチルセルロースとブレンドされた分岐状マルトデキストリンまたはエンドウデンプンで構成される薄いフィルムの水含有率および乾燥質量。 培養培地、健常被験者の糞便が接種された培養培地、ならびにクローン病（ＣＤ）患者および潰瘍性結腸炎（ＵＣ）患者の糞便が接種された培養培地への暴露時のエチルセルロースとブレンドされたさまざまなタイプのポリサッカリドで構成される薄いフィルムの水含有率および乾燥質量（図中に示されるとおり）。可塑化エチルセルロースのみで構成されるフィルムは、比較のために示されている。 さまざまな組成物（図中に示される）の薄い高分子フィルムを炎症性腸疾患患者の糞便サンプルと共にインキュベートした時に発生した微生物叢の写真。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（比は図中に示される）で構成される薄いフィルムの水取込み（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロース（比は図中に示される）で構成される薄いフィルムの乾燥質量損失（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 室温で乾燥状態の薄い高分子フィルムの破断に必要なエネルギーに及ぼす分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド比および初期可塑剤含有率の影響。 ３７℃で（ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の薄い分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースフィルム（ブレンド比は図中に示される）の破断に必要なエネルギーの変化（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 ３７℃で０．１Ｍ ＨＣｌへの２時間暴露時（実線の曲線）およびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への８時間暴露時（点線の曲線）のさまざまな量のＴＥＣ（パーセントはエチルセルロース質量を基準にする）で可塑化された分岐状マルトデキストリン：エチルセルロース（ブレンド比は図の上部に示される）で構成される薄いフィルムの破断に必要なエネルギーの変化。 それぞれ０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースフィルムの水取込みおよび乾燥質量損失に及ぼす可塑剤含有率（エチルセルロース質量を基準にして図中に示される）の影響。実線および点線の曲線は、１：２および１：３のブレンド比で得られた結果を表している。 それぞれ０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時のマルトデキストリン：エチルセルロースブレンドで構成される薄いフィルムの水取込みおよび乾燥質量損失。ポリマーブレンド比は、図中に示されている。比較のために、純粋（可塑化）エチルセルロースフィルムの挙動も示されている。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の薄いマルトデキストリン：エチルセルロースフィルムの破断点エネルギーの変化。ポリマーブレンド比は、図中に示されている。比較のために、純粋（可塑化）エチルセルロースフィルムを用いて得られた結果も示されている。 上部ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下での、分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（１：２）でコーティングされたペレット剤からの５−ＡＳＡのｉｎ ｖｉｔｒｏ放出。コーティングレベルは、酵素の存在（点線）および不在（実線）と共に図中に示されている。 上部ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下での、研究対象のペレット剤からの５−ＡＳＡのｉｎ ｖｉｔｒｏ放出に及ぼす分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド比およびコーティングレベル（図中に示される）の影響。実線／点線は、酵素の不在／存在を表している。 全ＧＩＴ（糞便サンプルなし）を介する通過をシミュレートした条件下での、２０％コーティングレベルで分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（比は図中に示される）でコーティングされたペレット剤からの薬剤放出。高浸漬速度：１１．５時間にわたり３０ｄｐｍ、次に２０ｄｐｍ。中浸漬速度：１１．５時間にわたり２０ｄｐｍ、次に１０ｄｐｍ。低浸漬速度：１１．５時間にわたり１０ｄｐｍ、次に５ｄｐｍ（ＵＳＰ装置３）。 炎症性腸疾患患者からの糞便サンプルを用いて全ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下での、１５％または２０％コーティングレベルで分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（比は図中に示される）でコーティングされたペレット剤からの５−ＡＳＡ放出。浸漬速度は１０ｄｐｍであった。比較のために、糞便サンプルを用いない培養培地中での薬剤放出も示されている（点線）。略画図は、研究対象の結腸ターゲッティング手法の原理を例示している。 （ａ）ビフィズス菌とバクテロイデス菌と大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）との混合物または（ｂ）ビフィズス菌を用いて全ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下での、１５％または２０％コーティングレベルで分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（比は図中に示される）でコーティングされたペレット剤からの５−ＡＳＡ放出。浸漬速度は１０ｄｐｍであった。 炎症性腸疾患患者からの糞便サンプルを用いて全ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下での、さまざまな市販品として入手可能な製剤からの５−ＡＳＡ放出。浸漬速度は１０ｄｐｍであった。比較のために、糞便サンプルを用いない培養培地中での薬剤放出も示されている（点線）。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、薄いＮＵＴＲＩＯＳＥ：エチルセルロースフィルムの水取込み速度。ポリマー：ポリマーブレンド比（ｗ：ｗ）は、図に示されている。エチルセルロースは、２５％のジブチルセバケートで可塑化された。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、薄いＮＵＴＲＩＯＳＥ：エチルセルロースフィルムの乾燥質量損失速度。ポリマー：ポリマーブレンド比（ｗ：ｗ）は、図に示されている。エチルセルロースは、２５％のジブチルセバケートで可塑化された。 炎症性腸疾患患者からの糞便の存在下（実線の曲線）および不在下（点線の曲線）で全ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下での、ＮＵＴＲＩＯＳＥ：エチルセルロース１：４（エチルセルロースは２５％のジブチルセバケートで可塑化されている）でコーティングされたペレット剤からの５−ＡＳＡ放出。コーティングレベルは１５％であった。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、次の比、すなわち、０：１、１：２、１：３、１／４、および１：５の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（実線）およびイヌリン：エチルセルロースで構成される薄いフィルムの水取込み（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、次の比、すなわち、０：１、１：２、１：３、１／４、および１：５の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロースブレンド（実線）およびＦＯＳ：エチルセルロースで構成される薄いフィルムの水取込み（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、次の比、すなわち、０：１、１：２、１：３、１／４、および１：５の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロース（実線）およびイヌリン：エチルセルロースで構成される薄いフィルムの乾燥質量損失（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 （ａ）０．１Ｍ ＨＣｌおよび（ｂ）リン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、次の比、すなわち、０：１、１：２、１：３、１／４、および１：５の分岐状マルトデキストリン：エチルセルロース（実線）およびＦＯＳ：エチルセルロースで構成される薄いフィルムの乾燥質量損失（エチルセルロース質量を基準にしたＴＥＣ含有率：２５％ｗ／ｗ）。 （Ａ）直腸内に培地のみ（陰性対照群）、（Ｂ）直腸内にＴＮＢＳ（陽性対照群）、（Ｃ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＢＭＤ：ＥＣコーティング付きペレット剤、または（Ｄ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＰｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤が投与されたラットの結腸の巨視的外観。ＴＮＢＳ／培地のみは、３日目に直腸内に投与された。５−ＡＳＡの経口投与用量は、１５０ｍｇ／ｋｇ／日であった。 （ｉ）直腸内にＴＮＢＳ、（ｉｉ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＡｓａｃｏｌ（登録商標）ペレット剤、（ｉｉｉ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＰｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤、（ｉｖ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤、（ｖ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤が投与されたラットのＡｍｅｈｏスコア。ＴＮＢＳは、３日目に直腸内に投与された。５−ＡＳＡの経口投与用量は、１５０ｍｇ／ｋｇ／日であった。 ラットの結腸組織の代表的な組織切片（正常な経壁切片、×２００）。次のようなさまざまな層が示されている。Ｍ−粘膜、ＳＭ−粘膜下層、Ｍｕ−筋層。

表１： 健常被験者および炎症性腸疾患患者の研究対象糞便サンプル中の細菌の濃度［ｌｏｇ ＣＦＵ／ｇ］。

表２： 室温での乾燥状態の薄いフィルムの機械的性質に及ぼす、エチルセルロースとブレンドされたポリサッカリドのタイプ、およびポリサッカリド：エチルセルロースのブレンド比の影響。

表３： ＧＩＴに沿ったｐＨの漸増をシミュレートするために使用した溶解培地。

発明の詳細な説明
本発明の説明および特許請求では、本明細書中に明記された定義に従って以下の用語を使用する。

本明細書中で用いられる場合、「活性成分」、「薬剤」、もしくは「薬理活性成分」という用語または任意の他の類似の用語は、（１）生物に対する予防効果を有しかつ望ましくない生物学的作用を予防すること、たとえば、感染を予防すること、（２）疾患により引き起こされる病態を緩和すること、たとえば、疾患の結果として引き起こされる疼痛もしくは炎症を緩和すること、および／または（３）生物に由来する疾患の緩和、低減、もしくは完全排除のいずれかを行うこと（ただし、これらに限定されるものではない）を包含しうる所望の生物学的または薬理学的な効果を誘導する、当技術分野ですでに公知の方法によるおよび／または本発明で教示された方法による投与に好適な任意の化学的または生物学的な材料または化合物を意味する。効果は、局部麻酔効果を提供するような局所的なものであってもよいし、全身的なものであってもよい。

本明細書中で用いられる場合、腸内細菌異常増殖症とも呼ばれる「腸内毒素症」という用語は、本発明では、胃腸管内の質的または量的な微生物の不均衡を意味するものとする。同様に、「結腸内微生物叢の不均衡」という表現は、本発明では、胃腸管内とくに結腸内の質的または量的な微生物の不均衡を意味する。この現象は、結腸内に存在する酵素の質および量に反映される。特定的には、この変化した微生物叢は、クローン病（ＣＤ）や潰瘍性結腸炎（ＵＣ）のような炎症性腸疾患に罹患している患者の結腸で観測される。

本明細書中で用いられる場合、「制御放出性送達」または「制御放出」という用語は、組成物からの活性成分の放出が時間に関して、または送達部位に関して、制御されることを意味する。

「デンプン誘導体」という表現は、酵素処理または化学処理されたデンプンを意味する。

「変性デンプン」という表現は、広義に解釈されるべきものであり、この表現は、たとえば、網状デンプンまたはアセチル化デンプンまたはヒドロキシプロピル化デンプンまたはエステル化デンプンを意味する。

「コーティングする」という用語は、本明細書中では、固体担体に対するコーティングのほかに流体および／または固体を取り囲むカプセルをも包含するように用いられ、また、「コーティング付き」という用語も同様に用いられる。

「コーティングレベル」とは、パーセント単位の重量増加であるコーティング無しコアとコーティング付きコアとの間の重量差を意味する。

「水不溶性ポリマー」という表現は、広義に解釈されるべきものであり、この表現は、水に完全には溶解しないポリマー、たとえば、エチルセルロース、特定のデンプン誘導体、またはアクリル酸／メタクリル酸誘導体などを意味する。

本発明で用いられる「不消化性水溶性ポリサッカリド」という用語は、ヒト上部消化管（小腸および胃）内に存在する酸または消化酵素の作用により腸内で消化されないかまたは部分的に消化されるにすぎないが、ヒト腸内微生物叢により少なくとも部分的に発酵されるサッカリドを意味する。本発明の好ましい実施形態で利用可能な不消化性水溶性ポリサッカリドは、キシロオリゴサッカリド、イヌリン、オリゴフルクトース、フルクトオリゴサッカリド（ＦＯＳ）、ラクツロース、ガラクトマンナンおよびその好適な加水分解物、不消化性ポリデキストロース、不消化性デキストリンおよびその部分加水分解物、ｔｒａｎｓ−ガラクトオリゴサッカリド（ＧＯＳ）、キシロオリゴサッカリド（ＸＯＳ）、アセマンナン、レンチナンまたはβ−グルカンおよびそれらの部分加水分解物、ポリサッカリド−Ｋ（ＰＳＫ）、ならびに不消化性マルトデキストリンおよびその部分加水分解物である。

ポリサッカリド−Ｋはまた、日本ではポリサッカリド−クレスチン（ＰＳＫ）としておよび中国ではポリサッカリド−ペプチド（ＰＳ−Ｐ）として知られる。両方とも、同一の化学特性および構造特性を有する。ＰＳＫは、多孔菌類のカワラタケ（Ｔｒａｍｅｔｅｓ ｖｅｒｓｉｃｏｌｏｒ）中に見いだされるプロテオグリカンであり、約３５％の炭水化物（９１％のβ−グルカン）、３５％のタンパク質を含有し、残りの部分は、糖、アミノ酸、および湿分のような遊離残分である。ＰＳＫは、種々のペプチドに共有結合されたポリサッカリドの混合物であり、１００キロダルトンの平均分子量を有する。ポリサッカリド成分は、グルコピラノースユニットで構成されたβ−グルカン類に属する。構造解析の結果、ＰＳＫは、１〜４個の結合の数個の残基あたり１個の分岐の頻度で３位および６位に分岐を有する１，４−グルカン配置を主なグルコシド部分として有することが示された。

本明細書中で用いられる場合、「穀物」という用語は、本発明では、イネ科（Ｇｒａｍｉｎｅａｅ）に属する任意の植物、好ましくは、コムギ、イネ、ライムギ、オートムギ、オオムギ、トウモロコシ、モロコシ、および雑穀物を意味するものとする。

「マメ科植物」という用語は、本発明では、ジャケツイバラ科（Ｃａｅｓａｌｐｉｎａｃｅａｅ）、ネムノキ科（Ｍｉｍｏｓａｃｅａｅ）、またはチョウケイカ科（Ｐａｐｉｌｉｏｎａｃｅａｅ）に属する任意の植物、特定的には、チョウケイカ科（Ｐａｐｉｌｉｏｎａｃｅａｅ）に属する任意の植物、たとえば、エンドウ、インゲン、ソラマメ（ｂｒｏａｄ ｂｅａｎ， ｈｏｒｓｅ ｂｅａｎ）、ヒラマメ、アルファルファ、クローバー、またはルピナスなどを意味するものとする。

この定義は、特定的には、「マメ科植物デンプンの組成、構造、機能、および化学修飾：総説」というタイトルのＲ．Ｈｏｏｖｅｒらの論文中に存在する表のいずれか１つに記載の植物をすべて包含する。

「エンドウ」という用語は、その最広義の意味であるとみなされ、特定的には、
・ スムースエンドウのすべての野生種、ならびに
・ スムースエンドウおよびシワエンドウのすべての突然変異種（ただし、これは、一般に意図される前記品種の用途（ヒト用食物、動物栄養用食物、および／または他の用途）のいかんを問わない）
を包含する。

前記突然変異種は、特定的には、「新規エンドウデンプンの開発」というタイトルのＣ−Ｌ Ｈｅｙｄｌｅｙらの論文（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ ｏｆ ｔｈｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ，１９９６，ｐｐ．７７−８７）に記載されるような「突然変異体ｒ」、「突然変異体ｒｂ」、「突然変異体ｒｕｇ３」、「突然変異体ｒｕｇ４」、「突然変異体ｒｕｇ５」、および「突然変異体ｌａｍ」として参照されるものである。

「マメ科植物デンプン」という用語は、以上に定義されたマメ科植物から抽出され（ただし、これは方法のいかんを問わない）かつ４０％超、好ましくは５０％超、さらにより好ましくは７５％超のデンプン含有率（ただし、これらのパーセントは、前記組成物の乾燥重量を基準にした乾燥重量で表される）を有する任意の組成物を意味するものとみなされる。

さらに、本発明に従って選択された範囲内のアミロース含有率を天然で呈するデンプンを使用することが可能である。特定的には、マメ科植物に由来するデンプンは、好適である可能性がある。本発明によれば、このマメ科植物デンプンは、４５％未満、より特定的には２５〜４５％、好ましくは３０〜４４％、さらにより好ましくは３５〜４０％のアミロース含有率を呈する。

本発明の目的では、「不消化性マルトデキストリン（ｉｎｇｅｓｔｉｂｌｅ ｍａｌｔｏｄｅｘｔｒｉｎ）」という用語は、マルトデキストリンに「分岐状マルトデキストリン」のような食物繊維と同等な追加の性質を付与する不消化性グルコシド結合を含有するマルトデキストリンを意味する。本明細書中で用いられる場合、「分岐状マルトデキストリン」という用語は、欧州特許第１００６１２８号明細書（その出願会社は所有権者である）に記載の不消化性マルトデキストリン（ｉｎｇｅｓｔｉｂｌｅ ｍａｌｔｏｄｅｘｔｒｉｎｓ）を意味するものとする。

好ましい変形形態によれば、前記分岐状マルトデキストリンは、２％〜５％の還元糖含有率および２０００〜３０００ｇ／ｍｏｌの数平均分子質量Ｍｎを有する。

分岐状マルトデキストリンは、ＡＯＡＣ法Ｎｏ．２００１−０３（２００１）に従って決定した場合、乾量基準で５０％以上の全繊維含有率を有する。

本発明は、炎症性腸疾患に罹患している患者の疾患状態に適合化された結腸ターゲッティング用の新規な高分子フィルムコーティングを提供する。

本発明に係る新規な高分子フィルムは、健常患者でも炎症性腸疾患に罹患している患者でも結腸内細菌に対する基質として機能し、おそらく患者のＧＩＴの生態系に有益な効果を呈するであろう。高分子フィルムは、疾患状態においても標的部位の状態に特異的に適合化され、薬理活性成分を特定的に結腸に送達可能である。

以下では、以下の実施例さらには図面を利用して本発明を例示する。

実施例１
Ａ． 材料および方法
Ａ．１． 材料
分岐状マルトデキストリン（ＢＭＤ）［非消化性グリコシド結合：α−１，２およびα−１，３を有する分岐状マルトデキストリン、ＮＵＴＲＩＯＳＥ（登録商標）ＦＢ０６ Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ］、エンドウデンプン（エンドウデンプンＮ−７３５）、アルファ化ヒドロキシプロピルエンドウデンプン（ＰＳ ＨＰ−ＰＧ）（ＬＹＣＯＡＴ（登録商標）ＲＳ７８０）、マルトデキストリン（ＭＤ）（ＧＬＵＣＩＤＥＸ（登録商標）１，Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ）、ＥＵＲＹＬＯＮ（登録商標）７Ａ−ＰＧ（アセチル化およびアルファ化高アミロースメイズデンプン（７０％アミロース）（Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、ＥＵＲＹＬＯＮ（登録商標）６Ａ−ＰＧ（アセチル化およびアルファ化高アミロースメイズデンプン）（６０％アミロース）（Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）およびＥＵＲＹＬＯＮ（登録商標）６ＨＰ−ＰＧ（ヒドロキシプロピル化およびアルファ化高アミロースメイズデンプン（６０％アミロース）（Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、水性エチルセルロース分散体（Ａｑｕａｃｏａｔ（登録商標）ＥＣＤ３０、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＵＳＡ）、トリエチルシトレート（ＴＥＣ；Ｍｏｒｆｌｅｘ（登録商標）、Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＵＳＡ）、パンクレアチン（哺乳動物膵臓由来＝アミラーゼとプロテアーゼとリパーゼとを含有する混合物、Ｆｉｓｈｅｒ Ｂｉｏｂｌｏｃｋ，Ｉｌｌｋｉｒｃｈ，Ｆｒａｎｃｅ）、ラット腸からの抽出物（アミラーゼとスクラーゼとイソマルターゼとグルコシダーゼとを含有するラット腸粉末、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｉｓｌｅ ｄ’Ａｂｅａｕ Ｃｈｅｓｎｅｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、Ｃｏｌｕｍｂｉａ血液寒天、肉牛および酵母からの抽出物、さらにはトリプトン（＝カゼインの膵液消化物）（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，Ｓｐａｒｋｓ，ＵＳＡ）、Ｌ−システイン塩酸塩水和物（Ａｃｒｏｓ Ｏｒｇａｎｉｃｓ，Ｇｅｅｌ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）、ＭｃＣｏｎｋｅｙ寒天（ＢｉｏＭｅｒｉｅｕｘ，Ｂａｌｍｅ−ｌｅｓ−Ｇｒｏｔｔｅｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、システイン加リンゲル液（Ｍｅｒｃｋ，Ｄａｒｍｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）。

Ａ．２． フィルムの作製
さまざまなタイプの水性ポリサッカリドと水性エチルセルロース分散体とのブレンドをテフロン（登録商標）成形型中にキャストし、続いて６０℃で１日間乾燥させることにより、薄い高分子フィルムを作製した。水溶性ポリサッカリドを精製水に溶解させ（５％ｗ／ｗ）、１：３（ポリマー：ポリマー ｗ：ｗ）の比で可塑化エチルセルロース分散体とブレンドした（２５％のＴＥＣ、一晩撹拌、１５％ｗ／ｗのポリマー含有率）。混合物を６時間攪拌してからキャストした。

Ａ．３． フィルムの特性解析
厚さゲージ（Ｍｉｎｉｔｅｓｔ６００、Ｅｒｉｃｈｓｅｎ，Ｈｅｍｅｒ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いてフィルムの厚さを測定した。フィルムの平均厚さはすべて、３００〜３４０μｍの範囲内であった。水取込み速度および乾燥質量損失速度を、
（ｉ）模擬胃液（０．１Ｍ ＨＣｌ）
（ｉｉ）模擬腸液［１％のパンクレアチンまたは０．７５％のラット腸からの抽出物を含むかまたは含まないリン酸緩衝液ｐＨ６．８（ＵＳＰ３０）］
（ｉｉｉ）健常被験者からの糞便が接種された培養培地
（ｉｖ）炎症性腸疾患患者からの糞便が接種された培養培地
（ｖ）比較のための糞便無し培養培地
への暴露時、重量測定法により測定した。

１．５ｇの肉牛抽出物、３ｇの酵母抽出物、５ｇのトリプトン、２．５ｇのＮａＣｌ、および０．３ｇのＬ−システイン塩酸塩水和物を１Ｌの蒸留水（ｐＨ７．０±０．２）に溶解させ、続いてオートクレーブ中で滅菌することにより、培養培地を調製した。クローン病または潰瘍性結腸炎の患者の糞便さらには健常被験者の糞便をシステイン加リンゲル液で１：２００に希釈し、この懸濁液２．５ｍＬを培養培地で１００ｍＬに希釈した。１００ｍＬの予備加熱された培地が充填された１２０ｍＬガラス容器に１．５×５ｃｍのフィルム片を入れ、続いて３７℃で水平振盪させた（ＧＦＬ３０３３、Ｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ｆｕｒ Ｌａｂｏｒｔｅｃｈｎｉｋ，Ｂｕｒｇｗｅｄｅｌ，Ｇｅｒｍａｎｙ）。嫌気的条件下（５％ＣＯ２、１０％Ｈ２、８５％Ｎ２）で糞便サンプルと共にインキュベーションを行った。所定の時間点でサンプルを抜き取り、過剰の水を除去し、フィルムを正確に秤量し（湿潤質量）、そして一定重量になるまで６０℃で乾燥させた（乾燥質量）。時間ｔにおける水含有率（％）および乾燥フィルム質量（％）を以下のように計算した。

Ａ．４． 細菌学的分析
糞便サンプルの細菌学的分析のために、これをシステイン加リンゲル液で１：１０に希釈した。システイン加リンゲル液で８つのさらなる１０倍希釈液を調製し、０．１ｍＬの各希釈液を非選択性改変Ｃｏｌｕｍｂｉａ血液寒天（全培養可能菌数を求めるため）およびＭｃＣｏｎｋｅｙ寒天（腸内細菌に対して選択性がある）にプレーティングした。Ｃｏｌｕｍｂｉａ血液寒天プレートを嫌気的条件下（５％ＣＯ２、１０％Ｈ２、８５％Ｎ２）３７℃で１週間インキュベートした。コロニーの数は少なかったが、主なコロニーを継代培養して、表現型同定基準に基づいて同定した。２５枚のＭｃＣｏｎｋｅｙ寒天プレートを空気中３７℃で４８時間インキュベートした。コロニーの数は少なかったが、ＡＰＩ ２０Ｅシステム（ＢｉｏＭｅｒｉｅｕｘ，Ｂａｌｍｅ−ｌｅｓ−Ｇｒｏｔｔｅｓ，Ｆｒａｎｃｅ）を用いて同定した。新しい糞便でｌｏｇ ＣＦＵ／ｇ（コロニー形成単位毎グラム）としてカウント数を表した。

糞便サンプルと共にフィルムのインキュベーションを行った時に発生した微生物叢の細菌学的分析のために、グラム染色後、カメラ（Ｕｎｉｔ ＤＳ−Ｌ２，ＤＳ ｃａｍｅｒａ Ｈｅａｄ ＤＳ−Ｆｉ １、Ｎｉｋｏｎ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を備えたＡｘｉｏｓｔａｒ ｐｌｕｓ顕微鏡（Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて顕微鏡写真を撮影した。嫌気的条件下、ごく少量のポリペプチドを含有する糖質フリーの培養培地（したがって、研究対象のポリサッカリドを基質として使用するのに有利である）中で、インキュベーションを行った。

Ｂ． 結果および考察
Ｂ．１． 上部ＧＩＴ内でのフィルムの性質
薬剤に対する高分子系の透過性は、巨大分子の密度および移動性を決定するその水含有率および乾燥質量に強く依存する。たとえば、乾燥ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）系マトリックス錠剤では、薬剤の見掛けの拡散係数はゼロに近づき、一方、完全水和ＨＰＭＣゲルでは、水性溶液の場合と同程度の大きさの拡散率を達成可能である。水含有率の増加に伴って、巨大分子の移動性ひいては拡散に利用可能な自由体積は、有意に増大する。いくつかの系では、ポリマーは、臨界水含有率に到達し次第、ガラス相からゴム相への転移を起こす。これは、ポリマーおよび薬剤の移動性の有意な段階的増大を引き起こす。したがって、高分子フィルムコーティングの水含有率から巨大分子の移動性ひいては薬剤の透過性についての重要な見識を得ることが可能である。図１ａおよび１ｂは、それぞれ、０．１Ｎ ＨＣｌ中およびリン酸緩衝液ｐＨ６．８中での種々のタイプのポリサッカリド：エチルセルロースブレンドで構成される薄いフィルムの水取込み速度を示している。すべてのフィルムでエチルセルロースの存在により上部ＧＩＴ内での早期溶解を回避することが可能である。研究対象のポリサッカリドはすべて水溶性であり、コーティングの周囲環境への薬剤透過性の感受性を提供することを目的とする。すなわち、結腸に達した時点で、ポリサッカリドは酵素分解され、薬剤放出が開始される。図１のポリサッカリド：エチルセルロースブレンド比は、一定すなわち１：３である。明らかなように、水取込み速度および水取込み率は、ポリサッカリドのタイプに有意に依存する。結腸ターゲッティングを可能にする理想的なフィルムコーティングは、上部ＧＩＴ内での早期薬剤放出を防止するために、両方の培地でごく少量の水を低速度で取り込むものでなければならない。見てのとおり、エチルセルロースとＢＭＤまたはエンドウデンプンとのブレンドは、この目的に最も有望である。水溶性ポリサッカリドを含まない可塑化エチルセルロースフィルム（白丸）は、わずかな量の水を取り込むにすぎない。

水取込み速度のほかに、薄い高分子フィルムの乾燥質量損失挙動もまた、コーティングの薬剤に対する透過性ひいては上部ＧＩＴ内で早期放出を抑制する可能性に対する指標として機能する。フィルムが放出培地への暴露時に有意量の乾燥質量を失う場合、コーティングは、多くの薬剤とくに５−アミノサリチル酸（５−ＡＳＡ、１５３．１Ｄａ）のような低分子量のものに対して透過性になることが予想されうる。図２ａおよび２ｂは、それぞれ、０．１Ｎ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、種々のポリサッカリド：エチルセルロースブレンド（一定比＝１：３）で構成される薄いフィルムの実験的に決定された乾燥質量の損失を示している。理想的なフィルムは、わずかな量の乾燥質量を低速度で失うにすぎず（またはまったく質量を失わず）、これらの条件下で組込み薬剤に対して透過性の低い緻密高分子網状構造を確保する。見てのとおり、エンドウデンプン含有フィルムおよびＢＭＤ含有フィルムの乾燥質量損失は、これらの放出培地への８時間までの暴露の後でさえも非常に低い。観測された乾燥質量の減少は、少なくとも部分的には、バルク流体中への水溶性可塑剤トリエチルシトレート（ＴＥＣ、水性エチルセルロース分散体を可塑化するために使用される）の浸出のためとすることが可能である。それに加えて、水溶性ポリサッカリドの一部は、フィルムから浸出する可能性がある。水溶性ポリサッカリドを含まない可塑化エチルセルロースフィルム（白丸）は、放出培地のタイプに関係なく、ごく少量の水を失うにすぎない。しかしながら、インタクトなエチルセルロースフィルムの透過性は、多くの薬剤に対して非常に低いことが知られており、これは、少なくとも部分的には、これらの系の低い水取込み速度および水取込み率のためとすることが可能である。このため、インタクトなエチルセルロースフィルムはまた、湿分保護コーティングとして使用される。ブレンド系の水取込み速度および水取込み率の増加（図１）は、ポリマー鎖の移動性のかなりの上昇ひいてはＴＥＣの移動性の増大を引き起こすので、バルク流体中への水溶性可塑剤ＴＥＣの損失は、純粋（可塑化）エチルセルロースフィルムと比較して、２５％（ｗ／ｗ）の水溶性ポリサッカリドを含有するフィルムではかなり顕在化すると予想されうることに留意されたい。

図２に示された結果は一切の酵素の不在下で得られたことを指摘しておかなければならない。膵酵素が特定のポリサッカリドを分解可能であり、したがって、ｉｎ ｖｉｖｏ条件下で有意な質量損失および水取込みを誘導することにより、結果としてフィルムの薬剤に対する透過性が増大される可能性があることは周知である。この現象の重要性を明確化するために、リン酸緩衝液ｐＨ６．８中、パンクレアチン（＝アミラーゼとプロテアーゼとリパーゼとを含有する混合物）の存在下、およびラット腸からの抽出物（アミラーゼとスクラーゼとイソマルターゼとグルコシダーゼとを含有する）の存在下で、薄いフィルムの水取込み速度および乾燥質量損失挙動をも測定した（図３）。明らかなように、これらの酵素の添加は、研究対象のフィルムの得られた水取込み速度および乾燥質量損失速度に有意な影響を及ぼさなかった。したがって、フィルムは、これらの酵素に対する基質として機能しない。

Ｂ．２． 結腸内でのフィルムの性質
結腸に達した時点で、高分子フィルムコーティングは、薬剤に対して透過性にならなければならない。これは、たとえば、（部分的）酵素分解により誘導可能である。重要なこととして、特定の酵素の濃度は、上部ＧＩＴ内よりも結腸内のほうがかなり多い。これは、結腸（ＧＩＴのこの部分は胃および小腸よりもかなり多くの細菌を含有する）の天然微生物叢により生成される酵素を含む。しかしながら、炎症性腸疾患に罹患している患者の微生物叢は健常被験者の微生物叢と有意に異なる可能性があるので、このタイプの結腸ターゲッティング手法を使用する場合、多くの注意を払わなければならない。したがって、薬剤送達系は、患者の疾患状態に適合化されなければならない。表１は、たとえば、この試験に組み込まれた健常被験者、さらにはクローン病患者および潰瘍性大腸炎患者の糞便サンプルで決定された細菌の濃度を示している。重要なこととして、とくにビフィズス菌（複数の細胞外グリコシダーゼにより複合ポリサッカリドを分解可能である）および大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）の濃度に関して有意差が存在し、これらの細菌は、炎症性腸疾患患者の糞便と比較して健常被験者の糞便ではかなり高濃度で存在していた。これとは対照的に、クローン病患者および潰瘍性大腸炎患者の糞便サンプルは、健常被験者では検出されなかったラクトース陰性の大腸菌（Ｅ． ｃｏｌｉ）、シトロバクター・フロインディー（Ｃｉｔｒｏｂａｃｔｅｒ ｆｒｅｕｎｄｉｉ）、肺炎桿菌（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、クレブシエラ・オキシトカ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｏｘｙｔｏｃａ）、およびエンテロバクター・クロアカエ（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ｃｌｏａｃａｅ）を含有していた。したがって、微生物叢の質および量に関して基本的な差が存在し、これらを考慮に入れなければならない。すなわち、健常ボランティアにおいて生理学的条件下で結腸ターゲッティングを可能にする高分子フィルムコーティングは、患者の疾患状態では病態生理学的条件下でうまく機能しない可能性がある。ほとんどの場合無視されるこの非常に重大な問題点に対処するために、クローン病患者および潰瘍性大腸炎患者からの糞便サンプルさらには健常被験者の糞便への暴露時、ならびに比較のために純粋培養培地への暴露時の、種々のタイプのポリサッカリド：エチルセルロースブレンドで構成される薄いフィルムの水取込みおよび乾燥質量損失を調べた（図４）。適切なフィルムは、結腸内の炎症部位で薬剤放出を誘導するために、患者の糞便への暴露時にかなりの量の水を取り込みかつ有意な乾燥質量損失を示すものでなければならない。図４ａおよび４ｂに見られるように、エチルセルロース：ＢＭＤおよびエチルセルロース：エンドウデンプン（これらは、上部ＧＩＴの内容物をシミュレートした培地で得られた以上に記載の結果によれば、２つの最も有望なタイプのポリマーブレンドである）に基づくフィルムは、クローン病患者、潰瘍性結腸炎患者、さらには健常被験者の糞便への暴露時に有意な水取込みおよび乾燥質量損失を示す。他のタイプのポリマーブレンドもまた、糞便サンプルへの暴露時に呈したフィルムの水取込みおよび乾燥質量損失の挙動に関して有望である（さらにはエチルセルロース：ＢＭＤブレンドおよびエチルセルロース：エンドウデンプンブレンドよりも適切である）ように見える点に留意されたい。しかしながら、これらの系は、上部ＧＩＴの内容物をシミュレートした培地との接触時に、すでにかなりの量の水を取り込みかつ乾燥質量を顕著に損失する（図１および２）。

研究対象の高分子フィルムが炎症性腸疾患患者からの糞便中の細菌に対する基質として機能するという事実は、嫌気的条件下３７℃で糞便サンプルへのフィルム暴露時に発生した微生物叢の分析によりさらに確認することが可能であった（図５）。明らかなように、特定のタイプの細菌は、ブレンドフィルムと共にインキュベートした時に増殖した。重要なこととして、この現象は、疾患状態の患者のＧＩＴの生態系にかなり有益で、結腸内の微生物叢を正常化することが期待できる。この非常に有望なプレバイオティクス効果は、薬剤ターゲティング効果に追加されて現れる。一切の高分子フィルムを用いずにまたは純粋（可塑化）エチルセルロースフィルムと共にインキュベートした生物学的サンプルは、かなり少ない細菌増殖を示した（図５）。

結腸ターゲッティングが確認された新規な高分子フィルムコーティングは、患者の疾患状態に適合化された水不溶性ポリマー：ポリサッカリドブレンド、特定的には、エチルセルロース：ＢＭＤブレンド、エチルセルロース：エンドウデンプンブレンド、エチルセルロース：ＭＤブレンド、エチルセルロース：ＥＵＲＹＬＯＮ（登録商標）６Ａ−ＰＧブレンド、エチルセルロース：ＥＵＲＹＬＯＮ（登録商標）６ＨＰ−ＰＧブレンド、およびエチルセルロース：ＥＵＲＹＬＯＮ（登録商標）７Ａ−ＰＧブレンドで構成される。重要なこととして、上部ＧＩＴの内容物をシミュレートした培地中での水取込みおよび乾燥質量損失の速度および度合いが低いことと、炎症性腸疾患患者からの糞便との接触時に水取込みおよび乾燥重量損失が増大することと、を組み合わることが可能である。患者の結腸内の微生物叢の組成の変化から、これらのポリサッカリドは、疾患状態の結腸内細菌に対する基質として機能し、おそらく患者のＧＩＴの生態系に有益な効果を呈するであろうことが示唆される。したがって、得られた新しい知見は、薬剤を結腸に特異的に送達可能な新規高分子フィルムコーティングの開発の基礎を提供する。重要なこととして、これらの高分子障壁は、疾患状態の標的部位の病態に適合化される。

実施例２
Ａ． 材料および方法
Ａ．１． 材料
分岐状マルトデキストリン（ＢＭＤ）（コムギデンプンから得られた高繊維含有率の水溶性分岐状マルトデキストリン、ＮＵＴＲＩＯＳＥ（登録商標）ＦＢ０６、Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、マルトデキストリン（ＧＬＵＣＩＤＥＸ（登録商標）１、Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ）、水性エチルセルロース分散体（Ａｑｕａｃｏａｔ ＥＣＤ３０、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＵＳＡ）、トリエチルシトレート（ＴＥＣ、Ｍｏｒｆｌｅｘ，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＵＳＡ）。

Ａ．２． 薄い高分子フィルムの作製
さまざまなタイプのポリサッカリドと水性エチルセルロース分散体とのブレンドをテフロン（登録商標）成形型中にキャストし、続いて６０℃で１日間乾燥させることにより、薄い高分子フィルムを作製した。水溶性ポリサッカリドを精製水に溶解させ、指定どおり１：２、１：３、１：４、１：５（ポリマー：ポリマー ｗ：ｗ）の比で可塑化水性エチルセルロース分散体とブレンドした（エチルセルロース含有率を基準にして２５．０、２７．５、または３０．０％ｗ／ｗのＴＥＣ、一晩撹拌、１５％ｗ／ｗのポリマー含有率）。混合物を６時間攪拌してからキャストした。

Ａ．３． フィルムの特性解析
厚さゲージ（Ｍｉｎｉｔｅｓｔ６００、Ｅｒｉｃｈｓｅｎ，Ｈｅｍｅｒ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いてフィルムの厚さを測定した。フィルムの平均厚さはすべて、３００〜３４０μｍの範囲内であった。フィルムの水取込み速度および乾燥質量損失速度を、０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８（ＵＳＰ３０）への暴露時、次のように重量測定法により測定した。すなわち、１００ｍＬの予備加熱された培地が充填された１２０ｍＬプラスチック容器に１．５×５ｃｍの部片を入れ、続いて３７℃で水平振盪させた（８０ｒｐｍ、ＧＦＬ３０３３、Ｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ｆｕｅｒ Ｌａｂｏｒｔｅｃｈｎｉｋ，Ｂｕｒｇｗｅｄｅｌ，Ｇｅｒｍａｎｙ）。所定の時間点でサンプルを抜き取り、過剰の水を除去し、フィルムを正確に秤量し（湿潤質量）、そして一定重量になるまで６０℃で乾燥させた（乾燥質量）。時間ｔにおける水含有率（％）および乾燥フィルム質量（％）を以下のように計算した。

Ａ．４． 薄いフィルムの機械的性質
テクスチャーアナライザー（ＴＡＸＴ．Ｐｌｕｓ、Ｗｉｎｏｐａｌ Ｆｏｒｓｃｈｕｎｇｓｂｅｄａｒｆ，Ａｈｎｓｂｅｃｋ，Ｇｅｒｍａｎｙ）および突刺試験を用いて乾燥状態および湿潤状態のフィルムの機械的性質を調べた。フィルム試料をフィルムホルダーに取り付けた（ｎ＝６）。突刺プローブ（球状端：直径５ｍｍ）をロードセル（５ｋｇ）に固定し、０．１ｍｍ／ｓのクロスヘッド速度でフィルムホルダーの孔の中心に向けて下方駆動させた。荷重対変位曲線をフィルムの破壊まで記録し、これを用いて次のような機械的性質を調べた。

式中、Ｆは、フィルムを突刺するのに必要な荷重であり、かつＡは、経路内に位置するフィルムの縁部の断面積である。

式中、Ｒは、ホルダーの円筒孔内に露出したフィルムの半径を表し、かつＤは、変位を表す。

式中、ＡＵＣは、荷重対変位曲線下の面積であり、かつＶは、フィルムホルダーのダイキャビティー内に位置するフィルムの体積である。

Ｂ． 結果および考察
Ｂ．１． ＢＭＤ：エチルセルロースブレンド
ａ） 薄いフィルムの水取込みおよび乾燥質量損失
高分子フィルムコーティングの透過性は、その水含有率に強く依存する。乾燥系では、拡散係数は、ゼロに近づく。水含有率の増加に伴って、巨大分子の移動性ひいては組込み薬剤分子の移動性が増大する。図６ａおよび６ｂは、３７℃での０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の、さまざまなＢＭＤ：エチルセルロースブレンドに基づく薄い高分子フィルムの重量測定法で測定された水取込みを示している。明らかなように、ポリマーブレンド比は、得られた水透過速度および水透過率に有意な影響を及ぼした。ＢＭＤ含有率の増加に伴って、取り込まれた水の量さらにはこの質量輸送過程の速度が増加した。この現象は、水溶性ポリサッカリドＢＭＤと比較してより疎水性のエチルセルロースの性質のためとすることが可能である。したがって、このタイプの高分子フィルム中での薬剤の移動性は、ＢＭＤ含有率の増加に伴って有意に増加することが予想されうる。興味深いことに、研究対象のフィルムの水取込み速度および水取込み率は、０．１Ｎ ＨＣｌ中よりもリン酸緩衝液ｐＨ６．８中にほうがより高かった（図６ｂ対図６ａ）。これは、水性エチルセルロース分散体Ａｑｕａｃｏａｔ ＥＣＤ中の乳化剤ナトリウムドデシルスルフェート（ＳＤＳ）の存在のためとすることが可能である。低ｐＨでは、ＳＤＳは、プロトン化されて中性であるが、ｐＨ６．８では、脱プロトン化されて負に荷電される。したがって、界面張力を低下させる能力は、ｐＨ６．８ではより顕在化し、結果として系中への水透過が促進される。重要なこととして、研究対象の系（１：２のＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比まで）の最大の水取込み速度および水取込み率でさえも、比較的低い（図６）。したがって、上部ＧＩＴ内での早期薬剤放出は、研究対象の範囲内のポリマー：ポリマーブレンド比に関係なく、このタイプの高分子フィルムでは制限されることが予想されうる。

水取込み速度のほかに、薄い高分子フィルムの乾燥質量損失挙動もまた、薬剤放出を抑制したり可能にしたりするフィルムの能力についての重要な見識を与える。０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の薄いフィルムの得られた乾燥質量損失に及ぼすＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比の影響は、図７ａおよび７ｂに例示されている。明らかなように、乾燥質量損失の速度および度合いは両方とも、ＢＭＤ含有率の増加に伴って増加した。これは、少なくとも部分的には、バルク流体中へのこの水溶性化合物の浸出のためとすることが可能である。しかしながら、放出培地中への水溶性可塑剤ＴＥＣ（フィルム形成時にエチルセルロースナノ粒子の融合を促進するために使用される）の拡散もまた、有意に促進されることが予想されうる。すなわち、系の水含有率の増加に起因して（図６）、ポリマー鎖の移動性ひいては低分子量可塑剤の移動性もまた、増大する。純粋（可塑化）エチルセルロースフィルムの乾燥質量損失は、主に、そのようなＴＥＣ浸出のためとすることが可能であり、この現象の（わずか）ｐＨ依存性が観察される（以上で述べたＳＤＳ効果に起因して）ことに留意されたい。重要なこととして、乾燥質量損失は、いずれの場合も制限され、フィルム中の水不溶性エチルセルロースの存在は、バルク流体中への水溶性ポリサッカリドの浸出を効果的に妨害する。この場合も、ＧＩＴの上部内の早期薬剤放出は、研究対象の範囲内（１：２のＢＭＤ：エチルセルロースまで）のポリマー：ポリマーブレンド比に関係なく、おそらく制限されるであろう。

ｂ） 薄いフィルムの機械的性質
上部ＧＩＴ内での制限された水取込みおよび乾燥質量損失のほかに、結腸への部位特異的薬剤送達を提供する高分子フィルムコーティングは、ｉｎ ｖｉｖｏで胃および小腸で遭遇する剪断応力に起因する偶発的な亀裂形成を回避するために、十分に安定（機械的に）でなければならない。それに加えて、水性体液との接触時、系中への水の浸透に起因して、コーティング付き製剤内に有意な静水圧が蓄積する可能性がある。コア配合物中の浸透活性な薬剤および／または賦形剤の存在／不在は、この現象の重要性に強く影響を及ぼす可能性がある。脆弱なフィルムコーティングは、外部からのそのような剪断力（ＧＩＴの運動により引き起こされる）および内部からの静水圧（水浸透により引き起こされる）を受けることが原因でおそらく破裂するであろう。そのような偶発的な亀裂形成の危険性を推定できるようにするために、それぞれ０．１Ｎ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露前および暴露時、テクスチャーアナライザーおよび突刺試験を用いて、研究対象のＢＭＤ：エチルセルロースフィルムの破断に必要なエネルギーを測定した。図８の白色バーは、ポリマーブレンド比の関数として室温で乾燥状態の薄いＢＭＤ：エチルセルロースフィルム（エチルセルロース含有率を基準にして２５％ｗ／ｗのＴＥＣで可塑化されている）の機械的安定性を表している。明らかなように、フィルムの破断点エネルギーがエチルセルロース含有率の増加に伴って有意に増大されたことから、この化合物は、主に、これらの条件下で系の機械的安定性に寄与することが示唆される。重要なこととして、研究対象のフィルムはすべて、適切なコーティングレベルで、上部ＧＩＴ内で受ける剪断応力および静水圧に耐えるのにおそらく十分である機械的安定性を示した。これは、フィルムの実験的に決定された突刺強度および破断点伸び％（データは示さず）により確認された。しかしながら、高分子系中への水の浸透は、フィルムの組成ひいてはその機械的性質を有意に変化させることを指摘しておかなければならない（図６および７）。特定的には、水が多くのポリマーに対する可塑剤として作用しかつ水溶性ＴＥＣおよびポリサッカリドが（少なくとも部分的に）高分子網状構造から浸出するという事実から、フィルムの機械的安定性の時間依存的変化が引き起こされることが予想されうる。それに加えて、図８に示された結果は、３７℃の体温ではなく室温で得られたものであった。高分子網状構造の温度が、たとえばガラス相からゴム相への転移に起因して、その機械的性質に強く影響を及ぼす可能性があることは、周知である。

これらの理由により、０．１Ｎ ＨＣｌへの２時間暴露時、および３７℃のリン酸緩衝液ｐＨ６．８への８時間までの暴露時の、研究対象のＢＭＤ：エチルセルロースフィルムの破断に必要なエネルギーをも測定した（図９）。見てのとおり、高分子網状構造の機械的安定性は、ポリマーのブレンド比および放出培地のタイプに関係なく、時間と共に低下した。これは、少なくとも部分的には、バルク流体中へ水溶性可塑剤ＴＥＣおよびポリサッカリドの浸出のためとすることが可能である。重要なこととして、最低観測値からでさえも、ｉｎ ｖｉｖｏで受ける外部剪断応力および／または内部静水圧に起因する偶発的な亀裂形成は起こりそうにないことが示唆される（適切なコーティングレベルで）。この場合も、これは、ポリマーブレンド比、暴露時間、および放出培地のタイプに関係なく、フィルムの実験的に決定された突刺強度および伸び％と一致した（データは示さず）。

ｃ） 可塑剤含有率の影響
可塑剤含有率が高分子フィルムの機械的性質に有意な影響を及ぼす可能性があることは、周知である。研究対象のＢＭＤ：エチルセルロースブレンドでこの現象の重要性を評価するために、組み込まれるＴＥＣのパーセントを（エチルセルロース含有率を基準にして）２５％ｗ／ｗから３０％ｗ／ｗに増加させた。２５％ｗ／ｗ未満のＴＥＣ含有率は、フィルム形成時のエチルセルロースナノ粒子の融合を困難にするであろうから、ポリマー鎖の移動性は、この過程にきわめて重要である。３０％ｗ／ｗ超のＴＥＣ含有率は、コーティング時および硬化時に固着傾向を有意に増加させるので、回避されなければならない。図８に見られるように、ＢＭＤ：エチルセルロースフィルムの機械的安定性は、ポリマーブレンド比に関係なく、ＴＥＣ含有率の増加に伴って有意に増大した。これは、フィルムの実験的に決定された突刺強度および伸び％と一致した（データは示さず）。したがって、高浸透活性のコア配合物の場合（水浸透時に製剤内に有意な静水圧の蓄積を生じる）、ＴＥＣ含有率を増加させることにより、所要のコーティングレベル（偶発的な亀裂形成を回避する）を低下させることが可能である。この場合も、０．１Ｎ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時の高分子網状構造の組成の時間依存的変化の影響さらには３７℃への温度上昇の影響をモニターすることが重要であった。図１０に見られるように、フィルムの破断に必要なエネルギーは、ポリマーブレンド比、初期可塑剤含有率、および放出培地のタイプに関係なく、以上で考察された理由により放出培地への暴露時に低下した。重要なこととして、いずれの場合も、（エチルセルロース含有率を基準にして）２５ｗ／ｗから３０％ｗ／ｗへの初期ＴＥＣ含有率の増加は、すべての時間点で機械的安定性の増大を引き起こした。

しかしながら、高分子フィルム中の水溶性可塑剤ＴＥＣのパーセントを増加させた場合、水性培地への暴露時、系の水取込みおよび乾燥質量損失の速度および度合いもまた、増加することが予想されうる。これは、潜在的に、高分子フィルムの薬剤透過性の有意な増大を引き起こす可能性があり、結果として、上部ＧＩＴ内で早期薬剤放出を生じる可能性がある。これらの現象の重要性を推定するために、０．１Ｎ ＨＣｌへの２時間暴露時およびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への８時間暴露時、研究対象のフィルムの水取込み速度および乾燥質量損失速度をモニターした。最大ＴＥＣ含有率（３０％）さらには２つの最も決定的なＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比すなわち１．２および１：３を選択した（図１１）。最大ＴＥＣ含有率（３０％）さらには２つの最も決定的なＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比すなわち１．２および１：３を選択した（図１１）。重要なこととして、初期ＴＥＣ含有率を２５％から３０％に増加させた場合、ポリマーのブレンド比および放出培地のタイプに関係なく、水取込み速度および乾燥質量損失速度の得られた変化は、副次的なものにすぎなかった。したがって、上部ＧＩＴ内で薬剤放出を抑制する系の能力を損なうことなく、可塑剤レベルを増加させることにより、ＢＭＤ：エチルセルロースフィルムの機械的安定性を効率的に改良することが可能である。

ＢＭＤ：エチルセルロースブレンドは、結腸ターゲッティングを可能にする先進的な薬剤送達系用のフィルムコーティング材料である。重要なこととして、特定の治療の特定のニーズ（たとえば、薬剤の浸透活性および用量）に適合化される所望の系の性質は、ポリマー：ポリマーブレンド比を１：２まで、好ましくは１：２〜１：８、さらに好ましくは１：３〜１：６、たとえば、１：４〜１：５で変化させることにより、さらには、水不溶性ポリマー含有率を基準にして、可塑剤含有率を２５％〜３０％ｗ／ｗで変化させることにより、容易に調整可能である。

Ｂ．２． ＭＤ：エチルセルロースブレンド
我々は、以上の実施例で、エチルセルロースとさまざまなタイプのポリサッカリドとくにＭＤ（非分岐状マルトデキストリン）とのブレンドが炎症性腸疾患の局所治療を改善すべく結腸への部位特異的薬剤送達を可能にすることを示した。重要なこととして、そのようなフィルムは、クローン病および潰瘍性結腸炎に罹患している患者の疾患状態で微生物叢に対する基質として機能する。しかしながら、ポリマー：ポリマーブレンド比が、得られる系の性質、特定的には、その水取込み速度および乾燥質量損失速度さらにはｉｎ ｖｉｖｏで呈示される内部応力および外部応力に対するその機械的耐性にどの程度影響を及ぼすかは、依然として不明である。

図１２は、それぞれ０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時に得られた水取込み速度および乾燥質量損失挙動に及ぼすＭＤ：エチルセルロースフィルムの組成の影響を示している。比較のために、純粋（可塑化）エチルセルロースフィルムを用いて得られた結果も示されている。明らかなように、ＭＤ：エチルセルロースブレンド比を１：５から１：２に増加させた場合、水取込み速度および水取込み率は有意に増加した。これは、ＭＤがマルトデキストリンでありエチルセルロースよりもかなり親水性であるであるという事実のためとすることが可能である。高い初期ＭＤ含有率では、水含有率は、有意になった。たとえば、１：２ブレンドの場合、リン酸緩衝液ｐＨ６．８への１時間暴露後、フィルムの約半分は水で構成された。これは、上部ＧＩＴ内での易水溶性低分子量薬剤の放出の効率的抑制を困難にすることが予想されうる。なぜなら、巨大分子の移動性は、水含有率の増加に伴って有意に増加し、結果として薬剤移動性を増大させるからである。おそらく高コーティングレベルが必要になるであろう。しかしながら、高い水含有率の時でさえも、より大きい薬剤分子（たとえばタンパク質）の透過性は、高分子網状構造中では低い可能性がある。この場合、薬剤の移動性は、「薬剤分子サイズ：巨大分子網状構造の平均メッシュサイズ」の比に本質的に依存する。結腸への部位特異的送達を有する先進的薬剤送達系は、たとえば、経口投与後にタンパク質の全身送達を可能にするうえで魅力的である可能性がある。タンパク質が上部ＧＩＴ内で低ｐＨおよび酵素分解から有効に保護される場合、それは、結腸内放出時に吸収される可能性がある。さらに、水溶性の乏しい薬剤の相対放出速度は、製剤がインタクトな状態で残存するかぎり、フィルムコーティングが有意量の水を含有する場合でさえも、きわめて低い可能性がある。

興味深いことに、水取込み速度および水取込み率は両方とも、ポリマーブレンド比に関係なく０．１Ｍ ＨＣｌ中よりもリン酸緩衝液ｐＨ６．８中のほうが高かった（図１２、上側の図）。これは、フィルムの作製に使用された水性エチルセルロース分散体中のナトリウムドデシルスルフェート（ＳＤＳ）（安定化剤として作用する）の存在のためとすることが可能である。低ｐＨでは、この乳化剤は、プロトン化されて中性であるが、ｐＨ６．８では、脱プロトン化されて負に荷電される。したがって、界面張力を低下させるその能力が増大されるので、高分子網状構造中への水浸透が促進される。

さらに、乾燥フィルムの質量損失の速度および度合いは、ＭＤ含有率の増加に伴って有意に増大した（図１２、下側の図）。これは、少なくとも部分的には、バルク流体中へのこの水溶性マルトデキストリンの浸出により説明可能である。しかしながら、放出培地中への水溶性可塑剤ＴＥＣの（部分的）浸出もまた、この現象に関与する。ＴＥＣは、水性分散体からのフィルム形成を可能にするためにエチルセルロースナノ粒子の可塑化に必要とされる。ＭＤフリーのフィルムでさえも、とくにｐＨ６．８でいくらかの乾燥質量を損失する。高い初期ＭＤ含有率を含む高分子系のかなりの水含有率は、低分子量水溶性可塑剤ＴＥＣの浸出を促進することが予想されうる。この場合も、観測された効果は、ＳＤＳの存在に起因して、０．１Ｍ ＨＣｌへの暴露時よりもリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時のほうが顕在化した（図１２）。

ＭＤ：エチルセルロースフィルム（図１２）とＢＭＤ：エチルセルロースフィルム（図６および７）とを、それらの水取込みおよび乾燥質量損失に関して比較した場合、フィルムに耐水性を付与するうえでＢＭＤはＭＤよりも効率的であることは明らかであると思われる。

適切な水取込み速度および乾燥質量損失速度のほかに、結腸への部位特異的薬剤送達を可能にするように意図された高分子フィルムコーティングはまた、生体内で受ける種々の機械的応力に耐えるのに十分な機械的安定性を提供しなければならない。これは、とくに、（ｉ）上部ＧＩＴの運動から生じる剪断力、および（ｉｉ）水性体液との接触時に系中への浸透圧駆動水流入により引き起こされる、製剤のコアからフィルムコーティングに作用する静水圧に関係する。そのような外部応力および内部応力に耐える研究対象のＭＤ：エチルセルロースブレンドの能力を推定するために、テクスチャーアナライザーおよび突刺試験を用いて薄いフィルムの機械的性質を測定した。突刺強度、破断点伸び％、さらには室温で乾燥状態のフィルムの破断に必要なエネルギーを表２に示す。明らかなように、系の機械的安定性は、エチルセルロース含有率の増加に伴って増大した。したがって、この化合物は、これらの高分子網状構造中では安定化剤である。

表２に示された機械的性質は、室温で乾燥フィルムを用いて得られたものであることを指摘しておかなければならない。水が多くのポリマーに対して可塑剤として作用することは周知であり、図１２に見られるように、０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時、有意量の水がフィルム中に浸透する。さらに、高分子系の組成は、ＭＤおよびＴＥＣの（部分的）浸出に起因して、放出培地との接触時に有意に変化する。それに加えて、高分子フィルムの機械的耐性は、温度に有意に依存する可能性がある。ポリマーは、たとえば、温度を３７℃に上昇させた場合、ガラス相からゴム相への転移を起こす可能性がある。これらの理由により、０．１Ｍ ＨＣｌへの２時間までの暴露時およびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への８時間までの暴露時、研究対象のＭＤ：エチルセルロースブレンドの機械的性質をも調べた。図１３に見られるように、高分子フィルムの機械的安定性は、ポリマーのブレンド比および放出培地のタイプに関係なく、ＭＤおよびＴＥＣの部分的浸出に起因して時間と共に低下した。重要なこととして、適切な機械的安定性は、ポリマー：ポリマーブレンド比を変化させることにより（最終的にはコーティング厚さを変化させることにより）効果的に調整可能である。

重要なこととして、所望の系安定性は、この場合も、ポリマーブレンド比を変化させることにより効果的に調整可能である。

結腸への部位特異的薬剤送達を提供する興味深い可能性を示す（かつ炎症性腸疾患患者の病態生理に適合化される）ポリサッカリド：水不溶性ポリマーブレンドで構成される薄い高分子フィルムの主要な性質は、ポリマーのブレンド比およびポリサッカリドのタイプを変化させることにより効果的に調整可能である。これは、上部ＧＩＴの内容物をシミュレートした水性培地への暴露前および暴露時の水取込み速度、および乾燥質量損失速度、さらにはフィルムの機械的性質を含む。したがって、広範囲のフィルムコーティングの性質を容易に提供することが可能であるので、それぞれの薬剤治療のニーズ（たとえば、コア配合物の浸透活性および投与量）に適合化させることが可能である。

実施例３
Ａ． 材料および方法
Ａ．１． 材料
分岐状マルトデキストリン（ＮＵＴＲＩＯＳＥＲ ＦＢ０６、Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、水性エチルセルロース分散体（Ａｑｕａｃｏａｔ ＥＣＤ３０、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＵＳＡ）、トリエチルシトレート（ＴＥＣ、Ｍｏｒｆｌｅｘ，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＵＳＡ）、５−アミノサリチル酸（５−ＡＳＡ、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｉｓｌｅ ｄ’Ａｂｅａｕ Ｃｈｅｓｎｅｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ１０１、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｂｒｕｓｓｅｌｓ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）、ベントナイトおよびポリビニルピロリドン（ＰＶＰ、Ｐｏｖｉｄｏｎｅ Ｋ３０）（Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｏｎ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｑｕｅ Ｆｒａｎｃａｉｓｅ，Ｍｅｌｕｎ，Ｆｒａｎｃｅ）、パンクレアチン（哺乳動物膵臓由来＝アミラーゼとプロテアーゼとリパーゼとの混合物）およびペプシン（Ｆｉｓｈｅｒ Ｂｉｏｂｌｏｃｋ，Ｉｌｌｋｉｒｃｈ，Ｆｒａｎｃｅ）、肉牛および酵母からの抽出物さらにはトリプトン（＝カゼインの膵液消化物）（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，Ｓｐａｒｋｓ，ＵＳＡ）、Ｌ−システイン塩酸塩水和物（Ａｃｒｏｓ Ｏｒｇａｎｉｃｓ，Ｇｅｅｌ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）、システイン加リンゲル液（Ｍｅｒｃｋ，Ｄａｒｍｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）。Ｐｅｎｔａｓａ（登録商標）、Ａｓａｃｏｌ（登録商標）、およびＬｉａｌｄａは、それぞれ、Ｆｅｒｒｉｎｇ社製、Ｍｅｄｕｎａ社製、およびＳｈｉｒｅ社製の市販品である。

Ａ．２． 薬剤担持ペレット剤コアの作製
押出しおよび球状化により薬剤担持ペレット剤コア（直径：７１０〜１０００μｍ、６０％５−ＡＳＡ、３２％微結晶性セルロース、４％ベントナイト、４％ＰＶＰ）を作製した。粉末を高速グラニュレーター（Ｇｒａｌ１０、Ｃｏｌｌｅｔｔｅ，Ａｎｔｗｅｒｐ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）でブレンドし、均一塊が得られるまで精製水を添加した。湿潤粉末混合物をシリンダー押出し機（ＳＫ Ｍ／Ｒ、Ａｌｅｘａｎｄｅｒｗｅｒｋ，Ｒｅｍｓｃｈｅｉｄ，Ｇｅｒｍａｎｙ）に通した。続いて、押出し物を５２０ｒｐｍで球状化し（Ｓｐｈｅｒｏｎｉｚｅｒ Ｍｏｄｅｌ１５、Ｃａｌｖｅｖａ，Ｄｏｒｓｅｔ，ＵＫ）、流動床（ＳＴ１５、Ａｅｒｏｍａｔｉｃ，Ｍｕｔｔｅｎｚ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて４０℃で３０分間乾燥させた。

Ａ．３． コーティング付きペレット剤の作製
ＢＭＤを精製水に溶解させ（５％ｗ／ｗ）、１：２、１：３、１：４、１：５（ｗ／ｗ）の比で可塑化水性エチルセルロース分散体とブレンドし（２５％ＴＥＣ、一晩撹拌、１５％ｗ／ｗポリマー含有率）、コーティング前に６時間攪拌した。Ｗｕｒｓｔｅｒインサートを備えた流動床コーター（Ｓｔｒｅａ１、Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ，Ｂｕｂｅｎｄｏｒｆ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて、５、１０、１５、および２０％（ｗ／ｗ）の重量増加が達成されるまで薬剤担持ペレット剤コアにコーティングを施した。プロセスパラメーターは次のとおりであった。入口温度＝３９±２℃、生成物温度＝４０±２℃、スプレー速度＝１．５〜３ｇ／分、アトマイゼーション圧力＝１．２ｂａｒ、ノズル直径＝１．２ｍｍ。コーティング後、ビーズをさらに１０分間流動化させ、続いて、６０℃のオーブン中で２４時間硬化させた。

Ａ．４． ｉｎ ｖｉｔｒｏ薬剤放出
以下のＧＩＴ内の状態をシミュレートした３つの異なる実験構成を用いて、コーティング付きペレット剤からの薬剤放出を測定した。

（ｉ）上部ＧＩＴ： 最初の２時間の間、１００ｍＬ溶解培地：０．１Ｍ ＨＣｌ（場合により０．３２％ペプシンを含有していてもよい）が充填された１２０ｍＬプラスチック容器にペレット剤を入れ、次に、培地をリン酸緩衝液ｐＨ６．８（ＵＳＰ３０）（場合により１％パンクレアチンを含有していてもよい）に完全に変更した。水平振盪機（８０ｒｐｍ、ＧＦＬ３０３３、Ｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ｆｕｅｒ Ｌａｂｏｒｔｅｃｈｎｉｋ，Ｂｕｒｇｗｅｄｅｌ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いてフラスコを撹拌した。所定の時間点で３ｍＬのサンプルを抜き取ってＵＶ分光光度法により分析した（０．１Ｍ ＨＣｌ中ではλ＝３０２．６ｎｍ、リン酸緩衝液ｐＨ６．８中ではλ＝３３０．６ｎｍ）（Ｓｈｉｍａｄｚｕ ＵＶ−１６５０、Ｃｈａｍｐｓ ｓｕｒ Ｍａｒｎｅ，Ｆｒａｎｃｅ）。ＵＶ測定前、酵素の存在下で、サンプルを１１，０００ｒｐｍで１５分間遠心分離し、続いて濾過した（０．２μｍ）。各実験を三重反復方式で行った。

（ｉｉ）糞便を含まない全ＧＩＴ： ＧＩＴに沿ったｐＨの漸増をシミュレートするために、ＵＳＰ装置３（Ｂｉｏ−Ｄｉｓ、Ｖａｒｉａｎ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）を用いて薬剤放出を測定した。２００ｍＬ ０．１Ｍ ＨＣｌが充填された２５０ｍＬ容器にペレット剤を入れた。浸漬速度は、１０、２０、または３０ｄｐｍであった（指定どおり）。２時間後、ペレット剤をリン酸緩衝液ｐＨ５．５（Ｅｕｒ．Ｐｈａｒｍ）中に移した。表３は、後続の変化およびさまざまな放出培地への暴露時間を示している。以上に記載されたように、所定の時間点で３ｍＬのサンプルを抜き取ってＵＶ分光光度法により分析した（ｐＨ＝５．５／６．０／６．８／７．０／７．４でλ＝３０６．８／３２８．２／３３０．６／３３０．２／３３０．２）。

（ｉｉｉ）糞便を有する全ＧＩＴ： 上部ＧＩＴを介する通過をシミュレートするために、ＵＳＰ装置３（Ｂｉｏ−Ｄｉｓ）を用いて、ペレット剤を０．１Ｍ ＨＣｌに２時間暴露し、続いて、リン酸緩衝液ｐＨ６．８または７．４（ＵＳＰ３０）に９時間暴露した。その後、炎症性腸疾患患者からの糞便が接種された１００ｍＬ培養培地、特定のタイプのビフィズス菌が接種された培養培地、ビフィズス菌とバクテロイデス菌と大腸菌（Ｅ−ｃｏｌｉ）との混合物が接種された培養培地、または比較のために糞便および細菌を含まない培養培地が充填された１２０ｍＬフラスコ中にペレット剤を移した。３７℃、嫌気的条件下（５％ＣＯ２の１０％Ｈ２、８５％Ｎ２）、かつ温和な撹拌下で、サンプルをインキュベートした。１．５ｇの肉牛抽出物、３ｇの酵母抽出物、５ｇのトリプトン、２．５ｇのＮａＣｌ、および０．３ｇのＬ−システイン塩酸塩水和物を１Ｌの蒸留水（ｐＨ７．０±０．２）に溶解させ、続いてオートクレーブ中で滅菌することにより、培養培地を調製した。クローン病または潰瘍性結腸炎の患者の糞便さらには健常被験者の糞便をシステイン加リンゲル液で１：２００に希釈し、この懸濁液２．５ｍＬを培養培地で１００ｍＬに希釈した。所定の時間点で、２ｍＬのサンプルを抜き取り、１３，０００ｒｐｍで５分間遠心分離し、濾過し（０．２２μｍ）、そして高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ、ＰｒｏＳｔａｒ２３０、Ｖａｒｉａｎ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）を用いて薬剤含有率を分析した。移動相は、１０％のメタノールと９０％の水性酢酸溶液（１％ｗ／ｖ）とで構成されるものであった［ｉ］。サンプルをＰｕｒｓｕｉｔ Ｃ１８カラム（１５０×４．６ｍｍ、５μｍ）に注入した。流量は１．５ｍＬ／ｍｉｎであった。λ＝３００ｎｍ．３でＵＶ分光光度法により薬剤を検出した。

Ｂ 結果および考察
Ｂ．１． 上部ＧＩＴ内での薬剤放出
結腸への薬剤の部位特異的送達を可能にする理想的フィルムコーティングは、上部ＧＩＴ内で薬剤放出を完全に抑制するものでなければならない。しかしながら、結腸に達した時点で、薬剤放出は、時間制御されなければならない（これは、急速かつ完全な放出を含みうる）。ポリサッカリドＢＭＤとエチルセルロースとのブレンドは、以上の実施例で、胃および小腸を介する通過をシミュレートした放出培地への暴露時に水取込みおよび乾燥質量損失の速度および度合いが低い有望な新規高分子フィルムであることが示された。しかしながら、結腸に達した時点で、それは、炎症性腸疾患患者において微生物叢に対する基質として機能し、しかも有意な乾燥質量を損失し、かつかなりの量の水を取り込む。それにもかかわらず、この新規高分子フィルムは、コーティング付き固体製剤からの薬剤放出を適切に制御できるかどうかは、不明であった。

図１４は、撹拌フラスコ中３７℃で０．１Ｍ ＨＣｌに２時間暴露してから培地をリン酸緩衝液ｐＨ６．８（ＵＳＰ）に完全に変更した際のさまざまなコーティングレベルでＢＭＤ：エチルセルロース１：２ブレンドでコーティングされたペレット剤からの５−ＡＳＡのｉｎ ｖｉｔｒｏ薬剤放出速度を示している（実線の曲線）。明らかなように、相対薬剤放出速度は、拡散経路長の増加に起因して、コーティングレベルの増加に伴って低下した。しかしながら、２０％ｗ／ｗコーティングレベルの場合でさえも、薬剤放出は、これらの条件下で依然として有意であり、１１時間後、５−ＡＳＡの約２０％が放出された。これらの結果は、酵素を含まない放出培地で得られたものであったことを指摘しておかなければならない。これは、ｉｎ ｖｉｖｏの状態を適切に反映していない。すなわち、消化酵素の存在は、フィルムコーティングの性質を変化させる可能性があり、結果として薬剤放出がかなり速くなる可能性がある。この現象の重要性を推定するために、０．３２％のペプシンを０．１Ｍ ＨＣｌに添加し、１％のパンクレアチンをリン酸緩衝液ｐＨ６．８に添加した。図１４の点線の曲線は、これらの条件下で実験的に測定されたそれぞれの薬剤放出速度を示している。重要なこととして、いずれの場合もごくわずかな増加／無影響であったことから、酵素は、これらの条件下（たとえば、エチルセルロースの存在下）でこの高分子フィルムコーティングをかなりの程度まで分解することはできないことが示唆される。それにもかかわらず、より高いコーティングレベルでさえも観測された薬剤放出速度は、高すぎることはなかった。

研究対象のペレット剤からの５−ＡＳＡの放出速度を低下させるために、フィルムコーティング中の初期エチルセルロース含有率を増加させた。以上に示されたように、水取込みの速度および度合いさらには乾燥フィルム質量損失の速度および度合いは、フリーフィルムをそれぞれ０．１Ｎ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８に暴露し場合、初期ＢＭＤ含有率の減少に伴って低下した。図１５は、研究対象のペレット剤からの得られた５−ＡＳＡ放出速度に及ぼすＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比の影響を示している。明らかなように、相対薬剤放出速度は、ポリマー：ポリマーブレンド比を１：２から１：５に減少させた場合、有意に低下した。さらに、いずれの場合も、放出速度は、コーティングレベルの増加に伴って低下した。図１５に見られるように、１：４または１：５のＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比では、上部ＧＩＴを介する通過をシミュレートしたこれらの条件下で薬剤放出をほとんど完全に抑制するのに１５〜２０％のコーティングレベルで十分である。すべての通過時間は、ｉｎ ｖｉｖｏでの実際の通過時間よりも十分に長いことが予想されうるように選択されたことに留意されたい（最悪の場合の条件）［ｉｉ、ｉｉｉ］。したがって、ペレット剤のｉｎ ｖｉｖｏ性能は、さらに良好であることが予想されうる。重要なこととして、０．３２％のペプシンおよび１％のパンクレアチンを放出培地に添加した場合、コーティングレベルおよびポリマーブレンド比に関係なく、ほとんどまたはまったくない影響が観察されなかった（図１５の点線の曲線）。しかしながら、これらの実験では、上部ＧＩＴ全体にわたる放出媒体のｐＨの漸増は、きわめて単純化されたものであった。さらに、ペレット剤が受ける機械的応力は、それほど重要ではなかった（フラスコ中で８０ｒｐｍで水平撹拌）。ｉｎ ｖｉｖｏでは、有意な機械的剪断力（上部ＧＩＴの運動により引き起こされる）は、高分子フィルムコーティング内に亀裂形成を誘導する可能性があり、結果としてかなり高い薬剤放出速度になる可能性がある。これらの２つの重要な側面をより良好にシミュレートするために、１：４および１：５のブレンド比の２０％のＢＭＤ：エチルセルロースでコーティングされたペレット剤で、表３に列挙された放出培地および通過時間を用いて、ＵＳＰ装置３により放出させた。次の３つの異なる浸漬速度で試験した。（ｉ）高速：１１．５時間にわたり３０ｄｐｍ、次に２０ｄｐｍ、（ｉｉ）中速：１１．５時間にわたり２０ｄｐｍ、次に１０ｄｐｍ、および（ｉｉｉ）低速：１１．５時間にわたり１０ｄｐｍ、次に５ｄｐｍ。明らかなように、５−ＡＳＡ放出は、とくにＢＭＤ：エチルセルロースブレンド比１：５で、これらのより過酷な条件下でも効果的に抑制された（図１６）。この場合も、選択された放出時間は、非生理学的でおり、極限（最悪の場合）の条件に相当することに留意されたい。これらの高分子ブレンドのｉｎ ｖｉｖｏ性能は、より良好であることが予想されうる。したがって、これらのフィルムコーティングの機械的安定性は、長期間にわたりかなりの剪断力を受けた時でさえも十分である。

Ｂ．２． 結腸内での薬剤放出
結腸に達した時点で、高分子フィルムコーティング（これは上部ＧＩＴ内で薬剤放出を効果的に抑制した）は、薬剤に対して透過性にならなければならない。

図１７は、次の３つのブレンド比、すなわち、１：３、１：４、または１：５の１５％および２０％ｗ／ｗのＢＭＤ：エチルセルロースでコーティングされた研究対象のペレット剤からの５−ＡＳＡの放出を示している。放出媒体は、最初の２時間の間、０．１Ｍ ＨＣｌであり、続いて９時間の間、リン酸緩衝液ｐＨ６．８で完全に置き換えた。最後の１０時間の間、ペレット剤を炎症性腸疾患患者からの糞便に暴露し、嫌気的条件下でインキュベートした（実線の曲線）。明らかなように、上部ＧＩＴを介する通過をシミュレートした培地での５−ＡＳＡ放出は、効果的に抑制されたが、ペレット剤が患者の糞便に暴露され次第、放出速度の有意な増加が観測された。

薬剤透過性のこの急激な増加は、ＢＭＤ：エチルセルロースが、クローン病および潰瘍性大腸炎に罹患している患者の微生物叢により分泌される酵素に対する基質として機能するという事実のためとすることが可能である（図１７の略画図）。この微生物叢の生存率は、ｉｎ ｖｉｔｒｏでは制限されることに留意されたい。したがって、酵素活性は、所与の実験条件下ではおそらく過小評価されるであろう。

ｉｎ ｖｉｖｏでは、細菌は、フィルムコーティング中のポリサッカリドを分解可能なそれぞれの酵素を連続的に産生する。したがって、この試験で観測されたような１００％未満の薬剤放出効果の横這い状態は、ｉｎ ｖｉｖｏではおそらく起こらないであろう。

比較のために、嫌気的条件下で上部ＧＩＴ内の状態をシミュレートした放出培地に暴露してから患者の糞便を含まない培養培地に暴露した時についても、５−ＡＳＡ放出を測定した（図１７の点線の曲線）。重要なこととして、薬剤放出速度の急激な増加は、１２時間後には観測されなかった。これは、フィルムコーティングの透過性の有意な増大が、炎症性腸疾患患者の糞便中に存在する酵素によるこのタイプの高分子系の（部分的）酵素分解により引き起こされるという仮説を裏付けるものである。

新しい糞便のサンプルのみがｉｎ ｖｉｔｒｏ薬剤放出測定に使用可能であることを指摘しておかなければならない（複雑な微生物叢の限られた生存率に起因する）。とくに日常的な使用に適用する場合、実際上、そのようなサンプルの入手可能性には制約があるので、糞便サンプル中の最も重要な細菌を同定して被験者の結腸内の状態をシミュレートした２つの選択肢の放出培地を開発した。図１８は、それぞれ１：３、１：４、または１：５のブレンド比の１５％または２０％のＢＭＤ：エチルセルロースでコーティングされたペレット剤からの実験的に決定された５−ＡＳＡ放出速度を示している。最初の２時間の間、ペレット剤を０．１Ｍ ＨＣｌに暴露し、続いて９時間の間、リン酸緩衝液ｐＨ６．８に暴露し、最後に、ビフィズス菌とバクテロイデス菌と大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）との混合物を含有する培養培地（図１８ａ）またはビフィズス菌を含有する培養培地（図１８ｂ）のいずれかに暴露した。

明らかなように、結腸の状態をシミュレートしたこれらの「選択肢」の薬剤放出培地への暴露時の相対放出速度の急激な増加は、炎症性腸疾患患者からの糞便で観測されたものに類似していた（図１８対図１７）。したがって、これらの培地は、実際の糞便サンプルに対する良好な代替物になりうる。

図１９は、３つの市販品、すなわち、Ｐｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤、コーティング付き顆粒が充填されたＡｓａｃｏｌ（登録商標）カプセル剤、およびＬｉａｌｄａ錠剤からの実験的に決定された５−ＡＳＡ放出速度を例示している。Ｐｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤は、エチルセルロースでコーティングされた５−ＡＳＡ担持スターターコアで構成される。見てのとおり、薬剤放出は、すでに上部ＧＩＴ内で開始されており、これは文献の報告と一致している［ｉｖ］。Ａｓａｃｏｌ（登録商標）カプセル剤は、低ｐＨでは不溶性であるがｐＨ＞７では可溶性になるＥｕｄｒａｇｉｔ Ｓ：ポリ（アクリルメタクリレート）でコーティングされた５−ＡＳＡ担持顆粒が充填されたものである。Ｂｉｏ−Ｄｉｓ放出装置および培地変更用の所定のタイムスケジュールを用いてシンク条件を提供できるようにするために、ハードゼラチンカプセルを開放して０．０５ｇの顆粒を各容器に入れた。図１９に見られるように、５−ＡＳＡ放出は、研究対象の条件下で上部ＧＩＴ内ですでに有意である。このタイプの薬剤送達系の性能は、ペレット剤が暴露される環境のｐＨに本質的に依存することに留意されたい。Ｌｉａｌｄａ錠剤は、親水性化合物および親油性化合物［ナトリウムカルメロース、ナトリウムカルボキシメチルデンプン（タイプＡ）、タルク、ステアリン酸、およびカルナウバワックス］で構成されるマトリックスに薬剤が組み込まれたものである。この制御放出性マトリックス錠剤は、Ｅｕｄｒａｇｉｔ ＬおよびＥｕｄｒａｇｉｔ Ｓ：２種のポリ（アクリルメタクリレート）のブレンドでコーティングされたものである。図１９に見られるように、５−ＡＳＡ放出は、研究対象の条件下で上部ＧＩＴの内容物をシミュレートした放出培地中で効果的に抑制される。系が結腸培地に暴露された時点で、薬剤放出が開始される。

興味深いことに、これらの条件下では、糞便サンプルの存在／不在は、研究対象の製剤のいずれにおいてもそれほど顕著な影響を示さなかった。

新開発のＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤は、次のような主な利点を提供する。（ｉ）胃通過時間のより少ない変動、ＧＩＴの内容物全体にわたるより均一な分布、およびシングルユニット製剤の「オールオアナッシング」効果の回避を可能にするマルチユニット製剤であること。（ｉｉ）上部ＧＩＴ内で薬剤放出を効果的に抑制すること。（ｉｉｉ）結腸内で時間制御薬剤放出を提供すること（この開始は、炎症性腸疾患の結腸内に存在する酵素により誘導される）。（ｉｖ）ポリサッカリドＢＭＤを含有すること（そのプレバイオティクス活性は、驚くべきことに、エチルセルロースと混合した場合、阻害されないので、患者の結腸内の微生物叢を正常化する）。

新規な高分子フィルムコーティングのＢＭＤ：エチルセルロースブレンドは、本発明に従って結腸への薬剤（たとえば５−ＡＳＡ）の部位特異的送達を可能にする。重要なこととして、この新しい高分子障壁は、とくに疾患状態の微生物叢および環境のｐＨに関して、標的部位の状態に適合化される。さらに、この新規な高分子フィルムコーティングの第２の効果は、結腸内の微生物叢を正常化するＢＭＤの有意なプレバイオティクス効果であり、炎症性腸疾患に罹患している患者にとくに有益である。

実施例４
可塑剤として２５％のジブチルセバケートを用いて実施例２および３と同一のプロトコルによりＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤を得た。水取込み速度（図２０）および乾燥質量損失速度（図２１）を試験したところ、可塑剤としてＴＥＣを用いたＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤と同一の結果を示した。実際に、コーティング付きペレット剤の特性は、可塑剤依存性でない。実施例３と同一のプロトコルに従って、炎症性腸疾患患者からの糞便の存在下および不在下で、全ＧＩＴを介する通過をシミュレートした条件下で、ＢＭＤ：エチルセルロース１：４（エチルセルロースは２５％のジブチルセバケートで可塑化されている）でコーティングされたペレット剤を用いて、５−ＡＳＡ放出を試験した。コーティングレベルは、１５％であった（図２２）。前の実施例３と同様に、５−ＡＳＡ放出は、研究対象の条件下で上部ＧＩＴの内容物をシミュレートした放出培地中で観察されない。系が結腸培地に暴露された時点で、薬剤放出が開始される。

実施例５
Ａ． 材料および方法
Ａ．１． 材料
分岐状マルトデキストリン（ＢＭＤ）（コムギデンプンから得られた高繊維含有率の水溶性分岐状マルトデキストリン、ＮＵＴＲＩＯＳＥ（登録商標）ＦＢ０６、Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、イヌリン、ＦＯＳ、水性エチルセルロース分散体（Ａｑｕａｃｏａｔ ＥＣＤ３０、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＵＳＡ）、トリエチルシトレート（ＴＥＣ、Ｍｏｒｆｌｅｘ，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＵＳＡ）。

Ａ．２． 薄い高分子フィルムの作製
実施例２に見られるように薄い高分子フィルムを作製した。

Ａ．３． フィルムの特性解析
実施例２に見られるように、フィルムの厚さ、水取込み速度、および乾燥質量損失速度を測定した。

Ｂ 結果および考察
薄いフィルムの水取込みおよび乾燥質量損失
３７℃での０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時、イヌリンおよびＦＯＳの水取込み速度および乾燥質量損失速度をＢＭＤと比較した。明らかなように、ポリマーブレンド比は、ＢＭＤで観測されたように、ＦＯＳおよびイヌリンで得られた水透過速度および水透過率に有意に影響を及ぼした。以上に見られるように、この現象は、水溶性不消化性ポリサッカリドのイヌリン、ＦＯＳ、およびＢＭＤと比較してより疎水性のエチルセルロースの性質のためとすることが可能である。興味深いことに、研究対象のフィルムの水取込み速度および水取込み率は、０．１Ｎ ＨＣｌ中よりもリン酸緩衝液ｐＨ６．８中のほうが高かった（図２３ｂ対図２３ａ、図２４ｂ対図２４ａ）。これは、以上で、水性エチルセルロース分散体Ａｑｕａｃｏａｔ ＥＣＤ中に乳化剤ナトリウムドデシルスルフェート（ＳＤＳ）の存在のためとされた。

図２３〜２６で０．１Ｍ ＨＣｌおよびリン酸緩衝液ｐＨ６．８への暴露時のフィルムの水取込み速度および水取込み率を比較することにより、第２のポリサッカリドのタイプは、有意な影響を及ぼすことがわかる。たとえば、ＢＭＤ：エチルセルロースブレンド（実線）は、放出培地のタイプに関係なく、低い水取込み速度および乾燥質量損失を示す。フィルムに耐水性挙動を付与するうえでイヌリンおよびＦＯＳがＢＭＤほど効率的でないとしても、上部ＧＩＴ内の早期薬剤放出は、研究対象の範囲内のポリマー：ポリマーブレンド比に関係なく、イヌリンおよびＦＯＳを含有する高分子フィルムを用いて制限されることが予想されうる。

実施例６
Ａ． 材料および方法
Ａ．１ 材料
２，４，６−トリニトロベンゼンスルホン酸（ＴＮＢＳ）（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｉｓｌｅ ｄ’Ａｂｅａｕ Ｃｈｅｓｎｅｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、システイン加リンゲル液（Ｍｅｒｃｋ，Ｄａｒｍｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）、ＢＭＤ（ＮＵＴＲＩＯＳＥ（登録商標）ＦＢ０６、Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、エンドウデンプンＮ−７３５（エンドウデンプン、Ｒｏｑｕｅｔｔｅ Ｆｒｅｒｅｓ，Ｌｅｓｔｒｅｍ，Ｆｒａｎｃｅ）、水性エチルセルロース分散体（Ａｑｕａｃｏａｔ ＥＣＤ３０、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＵＳＡ）、トリエチルシトレート（ＴＥＣ、Ｍｏｒｆｌｅｘ，Ｇｒｅｅｎｓｂｏｒｏ，ＵＳＡ）、５−アミノサリチル酸（５−ＡＳＡ、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｉｓｌｅ ｄ’Ａｂｅａｕ Ｃｈｅｓｎｅｓ，Ｆｒａｎｃｅ）、微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ ＰＨ１０１、ＦＭＣ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ，Ｂｒｕｓｓｅｌｓ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ、Ｐｏｖｉｄｏｎｅ Ｋ３０）（Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｏｎ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｑｕｅ Ｆｒａｎｃａｉｓｅ，Ｍｅｌｕｎ，Ｆｒａｎｃｅ）、Ｐｅｎｔａｓａ（登録商標）（コーティング付きペレット剤、Ｆｅｒｒｉｎｇ、バッチ番号：ＪＸ１５５）、Ａｓａｃｏｌ（登録商標）（コーティング付き顆粒剤、Ｍｅｄｕｎａ、バッチ番号：ＴＸ１４３）。

Ａ．２ ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤およびエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤の作製
押出しおよびそれに続く球状化により５−アミノサリチル酸（５−ＡＳＡ）担持ペレット剤スターターコア（直径：０．７〜１．０ｍｍ、６０％５−ＡＳＡ、３２％微結晶性セルロース、４％ベントナイト、４％ＰＶＰ）を次のように作製した。すなわち、それぞれの粉末を高速グラニュレーター（Ｇｒａｌ１０、Ｃｏｌｌｅｔｔｅ，Ａｎｔｗｅｒｐ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）でブレンドし、均一塊が得られるまで精製水を添加した（１００ｇの粉末ブレンドに対して４１ｇの水）。湿潤混合物をシリンダー押出し機（ＳＫ Ｍ／Ｒ、孔：直径１ｍｍ、厚さ３ｍｍ、回転速度：９６ｒｐｍ、Ａｌｅｘａｎｄｅｒｗｅｒｋ，Ｒｅｍｓｃｈｅｉｄ，Ｇｅｒｍａｎｙ）に通した。続いて、押出し物を５２０ｒｐｍで２分間球状化し（Ｓｐｈｅｒｏｎｉｓｅｒ Ｍｏｄｅｌ１５、Ｃａｌｖｅｖａ，Ｄｏｒｓｅｔ，ＵＫ）、流動床（ＳＴ１５、Ａｅｒｏｍａｔｉｃ，Ｍｕｔｔｅｎｚ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて４０℃で３０分間乾燥させた。篩分けによりサイズ画分０．７〜１．０ｍｍを得た。

続いて、Ｗｕｒｓｔｅｒインサートを備えた流動床コーター（Ｓｔｒｅａ１、Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ，Ｂｕｂｅｎｄｏｒｆ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて、１５％（ｗ／ｗ）（ＢＭＤ：ＥＣコーティング付きペレット剤）または２０％（ｗ／ｗ）（エンドウデンプン：ＥＣコーティング付きペレット剤）の重量増加が達成されるまで、得られた薬剤担持スターターコアをＢＭＤ：エチルセルロース１：４ブレンド（ＢＭＤ：ＥＣコーティング付きペレット剤）またはエンドウデンプン：エチルセルロース１：２ブレンド（エンドウデンプン：ＥＣコーティング付きペレット剤）でコーティングした。

ＢＭＤを精製水に溶解させ（５％ｗ／ｗ）、１：４の比（ｗ／ｗ、非可塑化ポリマー乾燥質量を基準にして）で可塑化水性エチルセルロース分散体とブレンドし（２５％ＴＥＣ、一晩撹拌、１５％ｗ／ｗポリマー含有率）、コーティング前に６時間攪拌した。Ｗｕｒｓｔｅｒインサートを備えた流動床コーター（Ｓｔｒｅａ１、Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ，Ｂｕｂｅｎｄｏｒｆ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて、１５％（ｗ／ｗ）の重量増加が達成されるまで薬剤担持ペレット剤コアにコーティングを施した。プロセスパラメーターは次のとおりであった。入口温度＝３９±２℃、生成物温度＝４０±２℃、スプレー速度＝１．５〜３ｇ／分、アトマイゼーション圧力＝１．２ｂａｒ、ノズル直径＝１．２ｍｍ。コーティング後、ビーズをさらに１０分間流動化させ、続いて、６０℃のオーブン中で２４時間硬化させた。

エンドウデンプンを６５〜７５℃で精製水中に分散させた（５％ｗ／ｗ）。２５％のＴＥＣ（ｗ／ｗ、分散体の固形分含有率を基準にして）を用いて水性エチルセルロース分散体（１５％ｗ／ｗ固形分含有率）を２４時間可塑化した。エンドウデンプンおよびエチルセルロース分散体を次の比すなわち１：２（ポリマー：ポリマー、ｗ：ｗ）で室温でブレンドした。混合物を６時間攪拌してからコーティングした。Ｗｕｒｓｔｅｒインサートを備えた流動床コーター（Ｓｔｒｅａ１、Ａｅｒｏｍａｔｉｃ−Ｆｉｅｌｄｅｒ，Ｂｕｂｅｎｄｏｒｆ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて、２０％（ｗ／ｗ）の重量増加が達成されるまで薬剤担持ペレット剤コアにコーティングを施した。プロセスパラメーターは次のとおりであった。入口温度＝３９±２℃、生成物温度＝４０±２℃、スプレー速度＝１．５〜３ｇ／分、アトマイゼーション圧力＝１．２ｂａｒ、ノズル直径＝１．２ｍｍ。その後、ペレット剤をさらに１０分間流動化させ、続いて、６０℃のオーブン中で２４時間硬化させた。

Ａ．３ 結腸炎の誘導および試験デザイン
雄ウィスターラット（２５０ｇ）をｉｎ ｖｉｖｏ試験に使用した。この試験は、政府ガイドライン（８６／６０９／ＣＥＥ）に準拠してＩｎｓｔｉｔｕｔ Ｐａｓｔｅｕｒ ｄｅ Ｌｉｌｌｅの公認施設（Ａ３５００９）で行った。１ケージあたり４匹の動物を飼育した。ラットはすべて、水道水を自由に利用できた。

実験の開始時（０日目）、ラットを６群（５〜８匹の動物／群）に分けた。２つの群は、標準飼料を摂取した（陰性および陽性の対照群）。他の群は、Ｐｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤（ｎ＝８）、Ａｓａｃｏｌ（登録商標）ペレット剤（ｎ＝８）、ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤（ｎ＝８）、またはエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤（ｎ＝８）のいずれかを含む食物を摂取した。

「食物混合」技術を用いて、これらの４つの異なる飼料を調製した。系はすべて、１５０ｍｇ／ｋｇ／日の５−ＡＳＡの用量が得られるように添加された。

３日目、以下のように結腸炎を誘導した：ペントバルビタール（４０ｍｇ／ｋｇ）を用いてラットを９０〜１２０分間麻酔し、水性０．９％ＮａＣｌ溶液と１００％エタノールとの１：１混合物に溶解されたＴＮＢＳ（２５０μｌ、２０ｍｇ／ラット）の直腸内投与を施した。

対照ラット（陰性対照）には媒体のみ（水性０．９％ＮａＣｌ溶液と１００％エタノールとの１：１混合物）の直腸内投与を施した。直腸内ＴＮＢＳ投与または直腸内媒体投与の３日後（６日目）、動物を屠殺した。

Ａ．４ 結腸炎の巨視的および組織学的な評価
結腸炎の巨視的および組織学的な指標を２名の研究者により盲検的に評価した。Ａｍｅｈｏ基準に従って組織学的評価を行うために、肛門管から正確に４ｃｍ上に位置する結腸検体を使用した。０〜６の尺度に基づくこの等級付けは、炎症浸潤の度合い、糜爛、潰瘍、または壊死の存在、ならびに病変の深さおよび表面積を考慮に入れる。

Ａ．５ 統計
ノンパラメトリック検定（マン・ホイットニー検定）を用いてすべての比較を解析した。Ｐ値が＜０．０５であった場合、差は、統計学的に有意であると判断された。

Ｂ 結果および考察
ＴＮＢＳ起因性結腸炎は、ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤およびエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤で治療することにより改善される。

直腸内ＴＮＢＳ投与が施された動物における結腸炎の進行を特徴付けた。

媒体のみ（水性０．９％ＮａＣｌ溶液と１００％エタノールとの１：１混合物）の直腸内投与の３日後に屠殺された対照ラット（陰性対照群）は、結腸内に巨視的病変を有していなかった（図２７Ａ）。これとは対照的に、ＴＮＢＳ投与の３日後程度の早い時期に重篤な結腸炎が誘導された（図２７Ｂ）。組織学的レベルに関して、対照ラットでは異常は検出されなかった（図２９：対照＝陰性対照群）。これとは対照的に、ＴＮＢＳ投与の３日後、結腸組織構造は、好中球浸潤を伴う大きい潰瘍面積により特徴付けられ、筋層の深部にまで壊死が広がった（図２９：ＴＮＢＳ）。ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤で処理された動物の結腸は、病変の有意な減少を示した（図２７）。この結果は、エンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤で処理されたラットの場合（データは示さず）と類似していた。さらに、ＴＮＢＳ起因性結腸病変に及ぼすＰｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤、Ａｓａｃｏｌ（登録商標）ペレット剤、ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤、およびエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤による処理の影響を、Ａｍｅｈｏスコアを用いて検討した（図２８）。結腸炎を有する未処理ラットを比較のために調べた。

最適効果は、ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤を用いた場合およびエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤を用いた場合に得られた。結腸炎誘導の３日後、結腸炎を有する未処理ラットと比較して、ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤およびエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤の投与が予防的に施されたラットで、巨視的病変スコアの有意な減少が観測された。巨視的炎症に対応して、組織学的分析によっても、（ｉ）直腸内にＴＮＢＳ、（ｉｉ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＰｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤、（ｉｉｉ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＡｓａｃｏｌ（登録商標）ペレット剤、（ｖ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤、および（ｖ）直腸内にＴＮＢＳかつ経口的にエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤で処理された動物間に主要な差が確認された（図３０）。これは、ＴＮＢＳ投与の３日後のＡｍｅｈｏ炎症スコアの有意な減少に反映された（図２８）。明らかなように、ＢＭＤ：エチルセルロースコーティング付きペレット剤およびエンドウデンプン：エチルセルロースコーティング付きペレット剤の投与は、より小さい多型炎症性浸潤、限局的な浮腫、および小さい巣状壊死病変で構成される炎症性病変を低減させた（図２９）。

ＴＮＢＳ、ＴＮＢＳかつＰｅｎｔａｓａ（登録商標）ペレット剤、およびＴＮＢＳかつＡｓａｃｏｌ（登録商標）ペレット剤で処理した場合、固有層での顕著な炎症性浸潤ならびに筋層および漿膜層の深部にまで広がる壊死を伴う結腸壁の肥厚がはっきりと認められる。

これらの結果から、ｉｎ ｖｉｖｏでの結腸ターゲッティング用に提案された新規なフィルムコーティングの有効性が明確に実証される。

Claims (12)

1. 活性成分を制御放出するための制御放出性送達製剤であって、
   ｏ エチルセルロースと
   ｏ １５〜３５％の１−＞６グルコシド結合、２０％未満の還元糖含有率、５未満の多分子指数、および多くとも４５００ｇ／ｍｏｌに等しい数平均分子質量Ｍｎを有する少なくとも１種の不消化性マルトデキストリンと
   の高分子混合物によりコーティングされた活性成分を含み、
   前記制御放出性送達製剤がコアを含み、前記活性成分が前記コア中に分散または溶解されている、
   制御放出性送達製剤。
2. 不消化性マルトデキストリン：エチルセルロース比が１：２〜１：８である、請求項１に記載の制御放出性送達製剤。
3. 前記不消化性マルトデキストリン：エチルセルロース比が１：３〜１：６である、請求項２に記載の制御放出性送達製剤。
4. 前記コアが５％〜３０％のコーティングレベルを有する、請求項１〜３のいずれか1項に記載の制御放出性送達製剤。
5. 前記コアが１０％〜２０％のコーティングレベルを有する、請求項４に記載の制御放出性送達製剤。
6. 前記高分子混合物が可塑剤を含む、請求項１〜５のいずれか１項に記載の制御放出性送達製剤。
7. 前記高分子混合物が、エチルセルロース含有率を基準にして２５％〜３０％ｗ／ｗの含有率で、可塑剤を含む、請求項６に記載の制御放出性送達製剤。
8. 可塑剤が水溶性可塑剤である、請求項６または７に記載の制御放出性送達製剤。
9. 前記可塑剤が、単独でまたは相互の混合物として、ポリオール、有機エステル、油またはグリセリド、ダイズレシチンからなる群から選択される、請求項８に記載の制御放出性送達製剤。
10. 前記制御放出性の医薬組成物が多微粒子状製剤である、請求項１〜９のいずれか１項に記載の制御放出性送達製剤。
11. 結腸内微生物叢の不均衡を有する患者の結腸内または健常被験者の結腸内で活性成分を制御放出するための制御放出性送達製剤の製造方法であって、
    ｏ 以下の物質、すなわち、
    ・ エチルセルロースと
    ・ １５〜３５％の１−＞６グルコシド結合、２０％未満の還元糖含有率、５未満の多分子指数、および多くとも４５００ｇ／ｍｏｌに等しい数平均分子質量Ｍｎを有する少なくとも１種の不消化性マルトデキストリンと
    の高分子混合物を形成するステップと、
    ｏ コア中に分散または溶解されている前記活性成分を前記高分子混合物によりコーティングするステップと、
    を含む、上記方法。
12. 消化器系内で細菌の増殖および／または活性を刺激するための医薬の製造における、エチルセルロースと１５〜３５％の１−＞６グルコシド結合、２０％未満の還元糖含有率、５未満の多分子指数、および多くとも４５００ｇ／ｍｏｌに等しい数平均分子質量Ｍｎを有する少なくとも１種の不消化性マルトデキストリンとを含む結腸ターゲッティング用コーティング調製物の使用。