JP5676643B2

JP5676643B2 - インターロイキン−４受容体を特異的に標的とするペプチドで標識されたリポソームを含有する癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システム、及びその製造方法

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Publication number: JP5676643B2
Application number: JP2012547023A
Authority: JP
Inventors: サンキム、イン; ホンリ、ビョン; ジェーエムルー、マギー; リャン、シャン‐ファ; コ、イー‐チュイ; ロ、ヤー‐チン; チャン、リー‐ウェン; ウェイ、ミン‐チェン
Original assignee: Industrial Technology Research Institute ITRI
Current assignee: Industrial Technology Research Institute ITRI
Priority date: 2009-12-29
Filing date: 2010-12-29
Publication date: 2015-02-25
Anticipated expiration: 2030-12-29
Also published as: KR20110076836A; TWI397428B; EP2520281A2; US9833464B2; EP2520281B1; WO2011081443A2; JP2013515767A; CN102724966A; US20120294931A1; KR101270878B1; TW201121583A; WO2011081443A3; CN102724966B; EP2520281A4

Description

本発明は、インターロイキン−４受容体を特異的に標的とするペプチドで標識されたリポソームを含有する癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システム、及びその製造方法に関する。

インターロイキン−４(Interleukin-4、ＩＬ−４)は、Ｔ−ヘルパー２（T-helper2、Ｔｈ２）リンパ球、好酸球、肥満細胞などから分泌される様々な免疫調節機能を有するサイトカインである。ＩＬ−４受容体は正常細胞のうちＴリンパ球、Ｂリンパ球、ＣＤ３４骨髄細胞などの細胞の表面に存在する（非特許文献１）。ＩＬ−４受容体は、ＩＬ−４受容体α鎖とＩＬ−２受容体γｃ鎖が複合体を成した第１型と、ＩＬ−４受容体α鎖とＩＬ−１３受容体α１鎖が複合体を成した第２型の２種類がある。ＩＬ−４と受容体とが結合すると、細胞内ヤーヌスキナーゼ(janus kinase)を用いてＳＴＡＴ６シグナルタンパク質をリン酸化及び活性化させ、活性化したＳＴＡＴ６を二量体の形で核へ移動し、ＩＬ−４に関連する様々な遺伝子の発現を調節して炎症を増加させる。また、ヤーヌスキナーゼを用いてＡＫＴ／ＰＫＢを活性化させて細胞の生存反応を増加させる（非特許文献１）。ＩＬ−４はナイーブＴ−ヘルパー（naive T-helper、ｎａｉｖｅＴｈ）の分化をＴｈ２リンパ球によって誘導し、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−９、ＩＬ−１３などのサイトカインの生産を誘導する。また、Ｂリンパ球によるＩｇＥ(immunoglobin E)の分泌を誘導する。特に、喘息ではＩＬ−４が粘液タンパク質としてのムチン(mucin)遺伝子の発現誘導と粘液分泌を促進させて気道閉塞と炎症に重要な役目をすると知られている（非特許文献２）。このように、ＩＬ−４はアレルギー性炎症反応の核心物質である。よって、ＩＬ−４によって調節される効果を適切に阻害することができれば、アレルギー性疾病の治療に有用に適用できるだろうと思われる。

また、ＩＬ−４は様々な癌組織から正常組織より高い濃度で発見され、腫瘍浸潤リンパ球（tumor-infiltrating lymphocytes、ＴＩＬｓ）で多量のＩＬ−４が生成されることが報告された（非特許文献３）。ＩＬ−４は慢性リンパ性白血病Ｂ細胞に作用してこれら細胞のアポトーシスに対する抵抗性を誘発する（非特許文献４）。また、ＩＬ−４は腫瘍細胞及び癌幹細胞でも合成され、癌細胞表面のＩＬ−４受容体を通じてアポトーシスに対する癌細胞の抵抗性を付与することが最近報告された（非特許文献５及び非特許文献６）。ＩＬ−４受容体は非小細胞肺癌、脳腫瘍、乳癌、膀胱癌、膵臓癌、腎臓癌、前立腺癌、腎癌及びカポジ肉腫(kaposi's sarcoma)などの様々な癌細胞で正常細胞に比して一層さらに多く発現する。ＩＬ−４受容体による癌細胞の抗癌剤耐性獲得及び癌細胞における高い発現度合いを考慮するとき、ＩＬ−４受容体は癌標的のための有望な標的であると見られる。現在ＩＬ−４自体を一部変形させた後、これをシュードモナス毒素(psuedomanas toxin)と結合した融合タンパク質を用いて癌細胞を標的として細胞内に毒素を取り込んで癌細胞を死滅させる研究などが報告された（非特許文献７、非特許文献８、非特許文献９及び非特許文献１０）。

一方、ＩＬ−４自体に対する様々な形態の拮抗剤が喘息などの治療剤として開発されたことがある。その一例として、イムネックス社は、分泌型(soluble form)ＩＬ−４受容体Ｎｕｖａｎｃｅ^ＴＭを開発して喘息治療剤として臨床試験を行ったが、治療効果が足りなくて臨床試験を中断した。また、グラクソ・スミスクライン社は、ＩＬ−４に対するモノクローナル抗体ｐａｓｃｏｌｉｚｕｍａｂを開発して臨床試験を行ったが、この臨床実験も中断した。バイエル社は、２つの突然変異を有する変形形態のＩＬ−４タンパク質ｐｉｔｒａｋｉｎｒａを開発し、臨床試験を行っている。ＳｕｎｅｓｉｓＰｈａｒｍ．Ｉｎｃ社は、ＩＬ−４の拮抗作用を有する化合物であるトリフェニル化合物（特許文献１）を開発し、臨床試験を行っている。

既存の抗癌治療は、経口及び注射などの方法によって注入された薬物が体内で一定の濃度に維持されることにより、薬物を必要とする疾病発生部位だけでなく、薬物を必要としない正常部位にも同時に薬物が影響を及ぼして副作用が多いという欠点がある。このような副作用を克服するために、薬物を疾病発生部位にのみ選択的に伝達する薬物伝達システム又は標的治療について関心が急増しているが、これは同量の薬剤を用いても薬の効力を増加させることができるとともに、正常組織への副作用を大きく減らすことができるためである。

標的指向型薬物伝達システムは３つの部分から構成されている。一つ目は薬物を伝達することが可能な水溶性高分子伝達体、二つ目は薬物伝達体がわれわれの所望する部位と選択的な反応を行うことが可能な物質(target moiety)、三つ目は薬物と高分子伝達体が標的部位まで安全に運搬できるように高分子伝達体と薬物とを結合させる(bioconjugated)スペーサである。これにより得られる利点としては、脂溶性薬物の場合は薬物が水との溶解度を増加させることができ、タンパク質又はペプチド薬物の場合はタンパク質の形態を安定化させることができ、抗癌剤の場合は副作用又は複数の薬品抵抗性を減らすことができる。特に、標的物質を導入して薬物伝達体が治療しようとする細胞又は組織と直接選択的な反応を行うため、腫瘍の大きさが小さい初期段階でも使用が可能であり、一層効果的に疾病を治療することができる。

一方、リポソームはリン脂質二重膜が水相を取り囲んでいる球状のベシクル(vesicle)である。脂質膜の構成成分は２つの疎水性脂肪酸グループと親水性のリン酸基グループからなる両親媒性リン脂質であり、水溶液で二重膜を形成し、これは人工的な細胞のように閉じた構造のベシクルを形成したりする。二重膜構造において、非極性の脂肪酸尻尾部分は膜の内方を向かい、極性の頭部分は外方を向かう。リポソームはラメラ(lamella)の個数によって単層ラメラリポソームと多層ラメラリポソームに大別されるが、単層ラメラリポソームは一つの脂質二重層であり、多層ラメラリポソームは２つ以上の脂質二重層を有する。リポソームは多様な方法によって製造できる（非特許文献１１）。

薬物をリポソームに取り込むことは、薬物の毒性を減少させ、その効果を増加させることにより、治療療法を強化させることができる。また、リポソームは、他の特定の物質と共に楕円型毛細血管を有する組織において網状内皮細胞システムの食細胞によって一般的に捕獲された後、細胞内感染部位に直接導入されたりもする。

したがって、IL−４受容体を特異的に標的とするペプチドを抗癌剤と結合させてリポソームに含有させた後、薬物伝達体として使用すると、癌組織に選択的に薬物を伝達することができるので、ＩＬ−４受容体は癌の治療において知能型薬物伝達体として活用できるものと思料される。

ＷＯ０１９８２４５パンフレット

Nelms et al., Annu Rev Immunol, 1999;17:701-738 Paul, Blood, 1991; 77:1859-1870 Shurin, Springer Semin Immunopathol, 1999;21:339 Dancescu, J Exp Med, 1992;176:1319 Todaro, Cell Death Differ, 2008;15:762-772 Todaro, Cell Stem Cell, 2007,1:389-402 Joshi, Cancer Res, 2001;61:8058-8061 Garland, J Immunother, 2005;28:376-381 Kioi, Cancer Res, 2005;65:8388-8396 Kawakami, Clin Cancer Res, 2002;8:3503-3511 Cullis et al., in: Liposomes, From Biophvsics to Therapeutics(M. J. Ostro, ed.), Marcel Dekker, pp. 39-72(1987)

本発明者は、癌の治療における標的指向型薬物伝達システムについて研究した結果、ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームを製造し、前記リポソームがＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチドによってＩＬ−４受容体が多く発現する癌細胞に薬物を選択的に伝達することができることを見出し、本発明を完成するに至った。

本発明は、インターロイキン−４受容体を特異的に標的とするペプチドで標識されたリポソームを含有する癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システム、及びその製造方法を提供する。

脳腫瘍細胞（Ｃ６及びＧＢＭ８４０１）におけるＩＬ−４受容体の発現水準を蛍光顕微鏡で観察した図である。本発明に係るＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（０モル％、０．７５モル％、１．５モル％又は３モル％）及びローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームの脳腫瘍細胞（Ｃ６及びＧＢＭ８４０１）に対するＩＬ４ＲＰｅｐペプチド結合を蛍光顕微鏡で観察した図である。本発明に係るＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（３モル％）及びローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームの脳腫瘍細胞（ＧＢＭ８４０１）内への流入を共焦点顕微鏡で断層撮影した結果を示す図である。脳腫瘍細胞株（ＧＢＭ８４０１）を免疫欠乏マウスの脳組織に移植した後、本発明に係るＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（０モル％、０．２５モル％、０．７５モル％、１．５モル％又は３モル％）及び１モル％のローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームをマウスの尾静脈を介して体内注射し、脳腫瘍の標的を時間別（２４時間、４８時間、７２時間及び１４４時間）に観察した生体蛍光画像（Ａ）とこれを定量化した結果（Ｂ）を示す図である。ルシフェラーゼ遺伝子が挿入された脳腫瘍細胞が異種移植されたヌードマウスに本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した後、腫瘍の大きさを観察した図である。肺癌細胞（Ｈ２２６及びＨ４６０）おけるＩＬ−４受容体の発現水準を蛍光顕微鏡で観察した図である。本発明に係るＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（１．５モル％）及びＣｙ５．５（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームの肺癌細胞（Ｈ２２６及びＨ４６０）に対するＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの結合と細胞内流入を蛍光顕微鏡で観察した図である。本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）の肺癌細胞（Ｈ２２６及びＨ４６０）内への薬物伝達水準をドキソルビシンの自体蛍光（赤色）を観察して示す図である。肺癌細胞が異種移植されたヌードマウスに、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５）を静脈注射した後、腫瘍組織内リポソームを蛍光顕微鏡で観察した結果（Ａ）と、血管バイオマーカーＣＤ３１に対する抗体を用いて腫瘍組織を染色（緑色蛍光）した後、高倍率蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｂ）を示す図である。肺癌細胞が異種移植されたヌードマウスに、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した後、腫瘍の大きさ（Ａ）と、腫瘍組織内ドキソルビシンの量をドキソルビシンの自体蛍光（赤色）（Ｂ）を観察して示す図である。

本発明は、配列番号１のアミノ酸配列を有する、インターロイキン−４（ＩＬ−４）受容体を特異的に標的とするペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームを有効成分として含み、前記ペプチドはリポソーム内の総脂質に対して０．１~５モル％であることを特徴とする、癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システムを提供する。

また、本発明は、
１）第１脂質、第２脂質及びコレステロールをエタノールで混合し、水で水和させた後、フィルターを通過させて均質化したリポソームを製造する段階と、
２）抗癌剤を前記１）段階で製造したリポソームに含有させる段階と、
３）標識物質を前記２）段階で製造した抗癌剤含有リポソームに含有させて標識する段階と、
４）配列番号１のアミノ酸配列を有する、ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチド［ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド］を、マレイミド(maleimide)が修飾されたＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−マレイミド）に結合させた後、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−ＩＬ４ＲＰｅｐを前記３）段階で製造した標識物質で標識された抗癌剤含有リポソームと反応させてリポソームに二次的に挿入する段階とを含む、癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システムの製造方法を提供する。

以下、本発明を詳細に説明する。
本発明に係る癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システムは、配列番号１のアミノ酸配列（ＣＲＫＲＬＤＲＮＣ）を有する、ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチド［ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド］で標識された抗癌剤含有リポソームを有効成分として含み、前記ペプチドはリポソーム内の総脂質に対して０．１〜５モル％であることを特徴とする。

前記リポソームは第１脂質、第２脂質及びコレステロールからなる多層ラメラリポソームである。

前記第１脂質はホスファチジルコリン（phosphatidyl choline、ＰＣ）、ホスファチジルグリセロール（phosphatidyl glycerol、ＰＧ）、ホスファチジルセリン（phosphatidyl serine、ＰＳ）、又はホスファチジルエタノールアミン（phosphatidyl ethanolamine、ＰＥ）などのリン脂質を含むが、これに限定されない。前記第１脂質はリポソーム内の総脂質に対して６０〜７０モル％であることが好ましい。

前記第２脂質は、ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン−ポリエチレングリコール（distearoylphophatidylethanolamine-polyethyleneglycol、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）などのリン脂質を含むが、これに限定されない。前記第２脂質はリポソーム内の総脂質に対して１〜１０モル％であることが好ましい。

前記コレステロールはリポソーム内の総脂質に対して１〜４０モル％であることが好ましい。

前記抗癌剤は、ドキソルビシン、パクリタキセル、ビンクリスチン、ダウノルビシン(daunorubicin)、ビンブラスチン(vinblastine)、アクチノマイシン−Ｄ(actinomycin-D)、ドセタキセル、エトポシド(etoposide)、テニポシド(teniposide)、ビサントレン(bisantrene)、ホモハリングトニン(homoharringtonine)、グリーベック（Gleevec、ＳＴＩ−５７１）、シスプラチン、５−フルオロウラシル、アドリアマイシン、メトトレキセート、ブサルファン(busulfan)、クロラムブシル(chlorambucil)、シクロホスファミド(cyclophosphamide)、メルファラン(melphalan)、ナイトロジェンマスタード(nitrogen mustard)、ニトロソウレア(nitrosourea)などを含むが、これに限定されない。

前記癌はＩＬ−４受容体が過発現する癌であり、ＩＬ−４受容体が過発現する癌は、肺癌、脳腫瘍、乳癌、肝癌、皮膚癌、食道癌、睾丸癌、腎臓癌、大腸癌、直腸癌、胃癌、腎癌、膀胱癌、卵巣癌、胆管癌、胆嚢癌、子宮癌、子宮頚部癌、前立腺癌、頭頚部癌、膵臓癌、扁平上皮細胞癌などを含むが、これに限定されない。

以下、本発明に係る癌診断又は治療用標的指向型薬物伝達システムの製造方法を段階別に詳細に説明する。

前記１）段階は、リポソームを製造する段階であって、第１脂質、第２脂質及びコレステロールを６０〜７０：１〜１０：１〜４０のモル比で５０〜７０℃のエタノールに溶かした後、前記脂質混合物を５０〜７０℃の水に１：５〜１５の体積比で混合して水和させる。前記水和した脂質混合物を孔径０．０１〜０．５μｍのポリカーボネート製メンブランフィルターを通過させてリポソームの大きさを均質化する。リポソームの大きさは公知の多数の方法によって調節することができる。

前記製造されたリポソームは２つ以上の脂質二重層を有する多層ラメラリポソームであることが好ましく、多層ラメラリポソームの直径は５μｍ以下、好ましくは１μｍ以下、最も好ましくは５０〜５００ｎｍ、特に好ましくは８０〜１５０ｎｍである。

前記２）段階は、抗癌剤をリポソームに含有させる段階であって、リポソーム溶液内の水相(water phase)であるアンモニウム硫酸塩（（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４）を噴出させた後、ＮａＣｌを含んでいる充分な量の１０％スクロース溶液中の透析膜内にリポソームを入れてリポソーム表面のアンモニウム硫酸塩を除去する。その後、抗癌剤をリポソーム溶液に添加して５０〜７０℃で１〜３時間反応させた後、迅速に冷却させて抗癌剤をリポソーム内に含有させる。この際、リポソーム内に含有された抗癌剤の濃度は１〜５ｍｇ／ｍＬ、好ましくは１．５〜２ｍｇ／ｍＬとする。前記抗癌剤をリポソームに含有させる方法は、当業界における公知の方法によって行われ得る。単純な捕集又は封入だけでなく共有結合、架橋などの結合によっても行われ得る。

前記３）段階は、標識物質を抗癌剤含有リポソームに含有させて標識する段階である。

前記標識物質は、本発明のリポソームの癌細胞標的有無の確認及び定量を容易にするためのもので、当業界における公知の方法によってリポソームに標識できる。前記標識物質は放射性同位元素（例えば、^１２５Ｉ、^３２-Ｐ、^３５Ｓ）、発色団(chromophore)、発光物質又は蛍光物質［例えば、ＦＩＴＣ、ＲＩＴＣ、蛍光タンパク質（ＧＦＰ；green fluorescent protein）、ＥＧＦＰ(enhanced green fluorescent protein)、ＲＦＰ(red fluorescent protein)、ＤｓＲｅｄ(discosoma sp. red fluorescent protein)、ＣＦＰ(cyan fluorescent protein)、ＣＧＦＰ(cyan green fluorescent protein)、ＹＦＰ(yellow fluorescent protein)、Ｃｙ３、Ｃｙ５、Ｃｙ５．５及びＣｙ７．５］、常磁性粒子(super paramagnetic particles)、超常磁性粒子(ultrasuper paramagnetic particles)、発色酵素（例えば、ペルオキシダーゼ、アルカラインホスファターゼ）などを含むが、これに限定されない。

標識物質による検出方法は、当業界における公知の方法で行われ得る。例えば、次の方法によって行われ得る。検出可能な標識物質として蛍光物質を用いる場合には免疫蛍光染色法を用いることができる。例えば、蛍光物質で標識された本発明のリポソームを試料と反応させ、未結合又は非特異的な結合産物を除去した後、蛍光顕微鏡の下でリポソームによる蛍光を観察することができる。また、検出可能な標識物質として酵素を用いる場合には、酵素反応を用いた基質の発色反応によって吸光度を測定し、検出可能な標識物質が放射線物質の場合には放射線放出量を測定することにより行うことができる。しかも、検出された結果は検出標識による公知の画像化方法によって画像化できる。

前記４）段階は、ペプチドをリポソームの表面に標識する段階であって、配列番号１のアミノ酸配列（ＣＲＫＲＬＤＲＮＣ）を有する、ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチド［ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド］を、マレイミドが修飾されたＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−マレイミド）に１：１〜３のモル比で結合させた後、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−ＩＬ４ＲＰｅｐを、標識物質で標識された抗癌剤含有リポソームと５０〜７０℃で１〜３時間反応させてリポソームに二次的に挿入させる。この際、標識されたＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの量はリポソーム内の総脂質に対して０．１〜５モル％、好ましくは０．１〜３モル％とする。

前記方法で製造されたリポソームにおいて、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド及び標識物質はそれぞれリポソームの表面に標識され、抗癌剤はリポソームの内部に封入される或いは表面の脂質に結合する形態が好ましい。

本発明に係るＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチドは、脳腫瘍細胞（Ｃ６、ＧＢＭ８４０１）のうちＣ６細胞では蛍光が弱く観察され、ＩＬ−４受容体が殆ど発現されない反面、ＧＢＭ８４０１細胞では強い蛍光が観察され、ＩＬ−４受容体が多く発現される。したがって、癌細胞の種類によってその発現様相が異なることが分かる。

また、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームは、ＧＢＭ８４０１細胞で強い赤色蛍光が観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが多く発現され、特に３モル％のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームが最も強い脳腫瘍細胞に対する結合を示す反面、Ｃ６細胞では蛍光が弱く観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが殆ど結合されないことが分かる。

また、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームは、ＧＢＭ８４０１細胞の内部で強い赤色蛍光が観察され、特に細胞中心においても蛍光が多く存在して多量のリポソームが細胞内に流入することが分かる。特に、１．５モル％のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームで最も優れた生体内標的が現れ、体内注入後４８時間目に最大蛍光シグナルを示す。

また、脳腫瘍細胞（ＧＢＭ８４０１）が異種移植されたヌードマウスに本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合より腫瘍成長を顕著に抑制する。

また、本発明に係るＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチドは、肺癌細胞（Ｈ２２６、Ｈ４６０）のうち、Ｈ２２６細胞では強い蛍光が観察され、ＩＬ−４受容体が多く発現する反面、Ｈ４６０細胞では蛍光が弱く観察され、ＩＬ−４受容体が殆ど発現されない。したがって、癌細胞の種類によってその発現様相が異なることが分かる。

また、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームは、Ｈ２２６細胞で強い赤色蛍光が観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが多く結合され、細胞内に流入する反面、Ｈ４６０細胞では蛍光が弱く観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが殆ど結合されず、細胞内に入らないことが分かる。

また、Ｈ２２６細胞では、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を反応させたときに、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）に比べて抗癌剤による赤色蛍光が一層さらに多く観察される反面、Ｈ４６０細胞では、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）だけでなく、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を反応させたときにも蛍光が弱く観察される。

また、肺癌細胞（Ｈ２２６）組織において、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチド及びＣｙ５．５（赤色蛍光）で共に標識されたリポソーム［ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５］は赤色蛍光が多く観察される反面、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されず、Ｃｙ５．５（赤色蛍光）のみで標識されたリポソーム［Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５］は赤色蛍光が殆ど観察されない。また、腫瘍の血管及びその周囲組織に、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム［ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５］が多く標的とされている。

また、肺癌細胞（Ｈ２２６）が異種移植されたヌードマウスに、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）又は抗癌剤（Ｄｏｘ）自体を投与した場合より腫瘍成長の抑制効果が顕著に優れ、腫瘍組織内でドキソルビシンによる赤色蛍光が一層さらに多く観察される。よって、腫瘍組織内に伝達されたドキソルビシン（赤色蛍光）の量は前記リポソームによる腫瘍成長抑制効果と密接な関連があることが分かる。

前述したように、本発明に係るＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームは、ＩＬ−４受容体を特異的に結合するＩＬ４ＲＰｅｐペプチドによってＩＬ−４受容体が過発現する癌細胞に薬物を選択的に伝達することができ、このような薬物伝達は標識物質によって癌細胞を特異的に認識することができる。よって、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドは癌組織に対してのみ薬物の効力を増加させることができると共に正常組織への副作用を顕著に減らすことができ、腫瘍に対する生体内画像及び早期診断が可能である。したがって、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームは、標的指向型薬物伝達システムとして癌の診断又は治療に有用に使用できる。

本発明に係るリポソームは、投与のために、薬学的に許容される担体をさらに１種以上含んで製造することができる。薬学的に許容される担体は、食塩水、滅菌水、リンガー液、緩衝食塩水、デキストロース溶液、マルトデキストリン溶液、グリセロール、エタノール及びこれらの成分のうち１成分以上を混合して使用することができ、必要に応じて抗酸化剤、緩衝液、静菌剤などの他の通常の添加剤を加えることができる。また、希釈剤、分散剤、界面活性剤、結合剤及び潤滑剤を付加的に添加して水溶液、懸濁液、乳濁液などの注射用剤形、丸薬、カプセル、顆粒又は錠剤に製剤化することができる。ひいては、当分野の適正方法或いは文献『Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅ（最近版）、ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏｍｐａｎｙ、ＥａｓｔｏｎＰＡ』に開示されている方法を用いて、各疾患又は成分に応じて好ましく製剤化することができる。

本発明に係るリポソームは、目的する方法に応じて経口投与、或いは非経口投与（例えば、静脈内、皮下、腹腔内又は局所に適用）することができる。その投与量は患者の体重、年齢、性別、健康状態、食餌、投与時間、投与方法、排泄率及び疾患の重症度などによってその範囲が多様である。前記リポソームに含有された抗癌剤の投与量は約０．１〜５ｍｇ／ｋｇ体重（又は１０〜１００ｍｇ／ｍ^２体表面積）であり、１週間隔で３〜４週間投与することが好ましい。

以下、本発明の理解を助けるために好適な実施例を提示する。ところが、下記の実施例は本発明をより容易に理解するために提供されるものに過ぎず、本発明の内容を限定するものではない。

実施例１：ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチド及び近赤外線蛍光物質で標識されたドキソルビシン含有リポソームの製造
本実施例で使用したコレステロール(cholesterol)、Ｌ−アルファ−ホスファチジルコリン(L-α-phosphatidylcholine、ＰＣ)、１，２−ジアシル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスフォエタノールアミン−Ｎ−［メトキシ（ポリエチレングリコール）−２０００］（1,2-diacyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[methoxy(polyethyleneglycol)-2000]、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００）、１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−エタノールアミン−Ｎ−［マレイミド（ポリエチレングリコール）−２０００］（1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[maleimide(polyethyleneglycol)-2000]、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−マレイミド）などの試薬はＡｖａｎｔｉＰｏｌａｒＬｉｐｉｄｓ社から購入した。

１．リポソームの製造
リポソームは、溶媒注入及び噴出(solvent-injection and extrusion)法を用いて製造した。まず、全ての脂質（ＰＣ、コレステロール、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００）を６：４：０．５のモル比で６０℃のエタノールに溶かした後、前記脂質混合物を６０℃の水に１：１０の体積比で混合して１時間水和(hydration)させた。前記水和した脂質混合物を、孔径０．２μｍのポリカーボネート製メンブランフィルター(polycarbonate membrane filters)を６回通過させた後、孔径０．０５μｍのフィルターをさらに６回通過させてリポソームの大きさを均質化した。リポソームの大きさは動的光散乱（dynamic light scattering、ＤＬＳ）法で測定し、リポソームの直径は８０〜１２０ｎｍであった。

２．リポソーム内への薬物の含有
抗癌剤であるドキソルビシンは、アンモニウム硫酸塩（ammonium sulfate、（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４）を用いる伝統的なｒｅｍｏｔｅ−ｌｏａｄｉｎｇ法でリポソーム内に含有させた。具体的には、リポソーム溶液内の水相の２５０ｍＭ（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４を噴出させた。その後、水相が噴出されたリポソームを５ｍＭＮａＣｌを含んでいる十分な量の１０％スクロース溶液中の透析膜（dialysis membrane、分子量３ｋ）内に入れてリポソーム表面のアンモニウム硫酸塩を除去した。その後、ドキソルビシンＨＣｌ溶液をリポソーム溶液に添加して５０〜７０℃で１〜３時間反応させた後、迅速に冷却させてドキソルビシンをリポソーム内に含有させた。この際、リポソーム内に含有されたドキソルビシンの濃度は１．５〜２ｍｇ／ｍＬとした。

３．リポソーム内への蛍光物質の標識
Ｃｙ^ＴＭ５．５アミダイト(Cy^TM5.5 amidite)又はローダミン−ＰＥ（rhodamine-phosphatidylethanolamine、ｒｈｏｄａｍｉｎｅ−ＰＥ、赤色蛍光）でリポソームを標識するために、これらの蛍光物質をエタノール内で全ての脂質成分と混合した後、リン酸塩緩衝液（ＰＢＳ）内に注入した。蛍光物質の疎水性性質のため、各蛍光物質はリポソームの脂質二重層部位に内包された。

４．ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチド及び蛍光物質で標識されたドキソルビシン含有リポソームの製造
ペプチドで標識されたリポソームは後挿入(post-insertion)法で製造した。まず、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（ＣＲＫＲＬＤＲＮＣのアミノ酸配列、配列番号１）を、マレイミドが修飾されたＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−マレイミド）に１：２の比率で結合させた。その後、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−ＩＬ４ＲＰｅｐを蛍光物質で標識されたドキソルビシン含有リポソームと６０℃で１時間反応させてリポソームに二次的に挿入させた。この際、標識ペプチドの量はリポソーム内の総脂質に対して０〜３モル％とした。

実験例１：脳腫瘍細胞のＩＬ−４受容体の発現に対する免疫蛍光染色及び分析
脳腫瘍細胞（Ｃ６及びＧＢＭ８４０１）を各培養容器に５×１０^４個ずつ植えて一晩培養した。メタノールを用いて−２０℃で５分間細胞を固定した後、ＦＩＴＣ（緑色蛍光）で標識されたＩＬ−４受容体に対する抗体を脳腫瘍細胞と室温で１時間反応させた。反応が終わった後、蛍光顕微鏡で蛍光シグナルを観察してＩＬ−４受容体の発現水準を観察した。

結果は図１に示す。
図１に示すように、Ｃ６細胞では蛍光が弱く観察され、ＩＬ−４受容体が殆ど発現されない反面、ＧＢＭ８４０１細胞では強い蛍光が観察され、ＩＬ−４受容体が多く発現されることを確認した。

実験例２：脳腫瘍細胞に対するＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームの結合
前記実施例１に記載の方法でポリエチレングリコール、蛍光物質（１モル％のローダミン−ＰＥ、赤色蛍光）及びＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（０〜３モル％）で表面に標識したリポソームを製造した。脳腫瘍細胞（Ｃ６及びＧＢＭ８４０１）をそれぞれ培養し、前記で製造したＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（０モル％、０．７５モル％、１．５モル％又は３モル％）及び１モル％のローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームを４℃で１時間反応させた。反応が終わった後、細胞を洗浄し、蛍光顕微鏡で蛍光シグナルを観察してＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの結合を観察した。

その結果は図２に示す。
図２に示すように、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームはＧＢＭ８４０１細胞で強い赤色蛍光が観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが多く結合することが分かる。特に、３モル％のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームが最も強い脳腫瘍細胞に対する結合を示した。これに対し、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームはＣ６細胞で蛍光が弱く観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが殆ど結合されていないことが分かる。

実験例３：ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームの脳腫瘍細胞（ＧＢＭ８４０１）内への流入
脳腫瘍細胞（ＧＢＭ８４０１）を培養容器に５×１０^４個植え、前記実験例２で製造した３モル％のＩＬ４ＲＰｅｐペプチド及び１モル％のローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームを３７℃で１時間反応させた。反応の後、共焦点顕微鏡を用いて細胞を約１μｍの間隔で断層撮影し、細胞内部の蛍光を観察した。

結果は図３に示す。
図３に示すように、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームは、ＧＢＭ８４０１細胞の内部で強い赤色蛍光が観察された。特に、細胞の表面から５μｍ程度の細胞中心でも赤色蛍光が多く存在して細胞内への流入が活発に起こることが分かる。

実験例４：ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームの生体内脳腫瘍標的に対する蛍光画像
全ての動物実験は所属機関の動物実験倫理委員会のガイドラインにしたがって行われた。実験動物に腫瘍異種移植(tumor xenografts)を行うために、培地に浮遊させたルシフェラーゼを発現する脳腫瘍細胞株（ＧＢＭ８４０１、１×１０^７個）を６週齢ＢＡＬＢ／ｃ雄免疫欠乏（severe combined immune deficiency、ＳＣＩＤ）マウスの脳組織に頭蓋骨を貫通して移植した。３週間腫瘍細胞が０．５〜１ｃｍの大きさに成長することができるようにした。その後、前記実験例２で製造したＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（０モル％、０．２５モル％、０．７５モル％、１．５モル％又は３モル％）及び１モル％のローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームをマウスの尾静脈を介して体内注射し、脳腫瘍の標的を２４時間、４８時間、７２時間及び１４４時間の後に生体蛍光画像を観察した。

結果は図４に示す。
図４に示すように、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（０モル％、０．２５モル％、０．７５モル％、１．５モル％又は３モル％）及び１モル％のローダミン−ＰＥ（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームをマウスの尾静脈に注入して２４時間目から蛍光画像が観察され、１４４時間まで持続された（Ａ）。一方、脳腫瘍培養細胞（ＧＢＭ８４０１）で最も強い結合を示した３モル％のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームとは異なり、生体内では１．５モル％のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームで最も優れた生体内標的が現れ、体内注入後４８時間目に最大蛍光シグナルを示した。

実験例５：ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの媒介によるドキソルビシン含有リポソームの脳腫瘍に対する選択的薬物伝達及び標的治療
本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの媒介によるドキソルビシン含有リポソームの脳腫瘍に対する薬物伝達促進効果を評価するために、下記の実験を行った。

ルシフェラーゼ遺伝子が挿入された脳腫瘍細胞株（ＧＢＭ８４０１、１×１０^７個）をヌードマウスの脳組織に移植した。腫瘍移植後６日、９日及び１３日目にドキソルビシンの量がマウス体重（ｋｇ）あたり４ｍｇ（４ｍｇ／ｋｇ）となるように、前記実施例１で製造したリポソーム溶液をマウスの尾静脈に注射した（総３回投与）。総１６日間ルシフェラーゼによるルミネセンスの強さ（total flux）、すなわち秒あたり光粒子発散数（ｐｈｏｔｏｎ／ｓ）を測定して腫瘍の大きさを観察した。

結果は図５に示す。
図５に示すように、脳腫瘍細胞が異種移植されたヌードマウスに本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合の腫瘍成長は、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合の腫瘍成長より約６５％程度抑制され、生理食塩水を投与した場合の腫瘍成長より約７０％以上抑制され、これらの数値は統計学的に有意な結果を示した。

実験例６：肺癌細胞のＩＬ−４受容体の発現に対する免疫蛍光染色及び分析
肺癌細胞（Ｈ２２６及びＨ４６０）を培養し、ＩＬ−４受容体に対する抗体を肺癌細胞と室温で１時間反応させた。反応が終わった後、ローダミン（赤色蛍光）が結合された二次抗体と反応させ、ＤＡＰＩ(4’,6-diamidino-2-phenylindole)試薬で核染色を行った後、蛍光顕微鏡で蛍光シグナルを観察してＩＬ−４受容体の発現水準を観察した。

結果は図６に示す。
図６に示すように、Ｈ２２６細胞では強い蛍光が観察され、ＩＬ−４受容体が多く発現されたが、Ｈ４６０細胞では蛍光が弱く観察され、ＩＬ−４受容体が殆ど発現されなかった。

実験例７：肺癌細胞に対するＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームの結合及び細胞内流入
肺癌細胞（Ｈ２２６及びＨ４６０）をそれぞれ培養し、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（１．５モル％）及びＣｙ５．５(赤色蛍光)で共に標識されたリポソームをそれぞれ４℃及び３７℃で１時間反応させた。反応が終わった後、細胞を洗浄し、ＤＡＰＩ試薬で核染色を行った後、蛍光顕微鏡で蛍光シグナルを観察して細胞に対するペプチドの結合と細胞内流入をそれぞれ観察した。

結果は図７に示す。
図７に示すように、Ｈ２２６細胞では強い赤色蛍光が観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが多く結合され、細胞内に流入したことを確認した。これに対し、Ｈ４６０細胞では蛍光が弱く観察されてＩＬ４ＲＰｅｐペプチドが殆ど結合されておらず、細胞内に流入しないことが分かる。

実験例８：ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの媒介によるドキソルビシン含有リポソームの肺癌細胞内への選択的薬物伝達
肺癌細胞（Ｈ２２６及びＨ４６０）をそれぞれ培養し、前記実施例１で製造したリポソーム［ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド（１．５モル％）及びＣｙ５．５（赤色蛍光）で共に標識され、ドキソルビシンを含有したリポソーム］を３７℃で１時間反応させた。反応が終わった後、細胞を洗浄し、ＤＡＰＩ試薬で核染色を行った後、蛍光顕微鏡でドキソルビシンの自体蛍光（赤色)を観察して細胞内への薬物伝達水準を観察した。

結果は図８に示す。
図８に示すように、Ｈ２２６細胞では、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を反応させたときに、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）に比べてドキソルビシンによる赤色蛍光が一層さらに多く観察された。ところが、Ｈ４６０細胞では、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）だけでなく、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を反応させたときにも蛍光が弱く観察された。

実験例９：ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームの生体内肺癌細胞標的
実験動物に腫瘍異種移植を行うために、ＲＭＰＩ−１６４０培地で培養したヒト肺癌細胞株（Ｈ２２６、１×１０^７個）を６週齢のＢＡＬＢ／ｃ雄ヌードマウス（ヒョウチャンサイエンス社）の右上肢又は下肢部位に皮下注射した。腫瘍細胞が０．５〜１ｃｍの大きさに成長し得るようにした。その後、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド及びＣｙ５．５（赤色蛍光）で共に標識されたリポソームを、腫瘍が成長したマウスの尾静脈を介して体重（ｋｇ）あたり５ｍｇ（５ｍｇ／ｋｇ）を注入し、２時間循環させた後、腫瘍を摘出した。摘出された腫瘍組織の凍結切片を作った後、蛍光顕微鏡で観察した。また、血管バイオマーカーとしてのＣＤ３１に対する抗体を用いて腫瘍組織を染色（緑色蛍光）した後、高倍率蛍光顕微鏡で観察した。本実験に使用した肺癌細胞株（Ｈ２６６）は、抗生剤（フェニシリン及びストレプトマイシン）が添加された１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ、fetal bovine serum）を含むＲＭＰＩ−１６４０倍地で培養し、３〜４日毎に継代培養した。

結果は図９に示す。
図９に示すように、肺癌細胞（Ｈ２２６）組織において、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチド及びＣｙ５．５（赤色蛍光）で共に標識されたリポソーム［ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５］は赤色蛍光が多く観察されたが、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されずＣｙ５．５（赤色蛍光）のみで標識されたリポソーム［Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５］は赤色蛍光が殆ど観察されなかった（Ａ）。また、腫瘍の血管及びその周囲組織において、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム［ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｃｙ５．５］が多く標的とされたことを確認した（Ｂ）。

実験例１０：ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの媒介によるドキソルビシン含有リポソームの肺癌に対する選択的薬物伝達及び標的治療
本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドの媒介によるドキソルビシン含有リポソームの肺癌に対する薬物伝達促進効果を評価するために、下記の実験を行った。

肺癌細胞株（Ｈ２２６、１×１０^７個）をヌードマウスの右上肢又は下肢部位に異種移植した。腫瘍の直径が３ｍｍ程度になったとき、ドキソルビシンの量がマウス体重（ｋｇ）あたり１ｍｇ（１ｍｇ／ｋｇ）となるように、前記実施例１で製造したリポソーム溶液をマウスの尾静脈を介して注射した（１週に２回ずつ総７回投与）。総２４日間腫瘍の大きさを測定した。腫瘍の大きさ（ｍｍ^２）は＋長軸×短軸×短軸×０．５２で計算した。一方、２４日目となる時点で腫瘍を摘出して凍結切片を製作し、腫瘍組織内ドキソルビシンの量をドキソルビシンの自体蛍光（赤色）を用いて観察した。

結果は図１０に示す。
図１０に示すように、肺癌細胞が異種移植されたヌードマウスに、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されていないリポソーム（Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）又はドキソルビシン（Ｄｏｘ）自体を投与した場合より腫瘍成長抑制効果が顕著に優れることを確認した（Ａ）。また、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソーム（ＩＬ４ＲＰｅｐ−Ｌｉｐｏ−Ｄｏｘ）を投与した場合、腫瘍組織内でドキソルビシンによる赤色蛍光が一層さらに多く観察されることにより、腫瘍組織内に伝達されたドキソルビシン（赤色蛍光）の量はＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識されたリポソームによる腫瘍成長抑制効果と密接に関連していることが分かる。

本発明に係るＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームは、ＩＬ−４受容体を特異的に結合するＩＬ４ＲＰｅｐペプチドによってＩＬ−４受容体が過発現する癌細胞に薬物を選択的に伝達することができ、このような薬物伝達は、標識物質によって癌細胞を特異的に認識することができる。よって、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチドは、癌組織に対してのみ薬物の効力を増加させることができるとともに正常組織への副作用を顕著に減らすことができ、腫瘍に対する生体内画像及び早期診断が可能である。したがって、本発明のＩＬ４ＲＰｅｐペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームは標的指向型薬物伝達システムとして癌の診断又は治療に有用に使用できる。

Claims

配列番号１のアミノ酸配列を有する、インターロイキン−４（ＩＬ−４）受容体を特異的に標的とするペプチドで標識された抗癌剤含有リポソームを有効成分として含み、前記ペプチドはリポソーム内の総脂質に対して０．１〜５モル％であることを特徴とする、ＩＬ−４受容体が過発現する肺癌又は脳腫瘍の診断又は治療用標的指向型薬物伝達システムであって、
該リポソームは、第１脂質、第２脂質及びコレステロールからなる多層ラメラリポソームであり、それぞれ６０〜７０：１〜１０：１〜４０のモル比であり、
該第１脂質はホスファチジルコリン（phosphatidyl choline、ＰＣ）、ホスファチジルグリセロール（phosphatidyl glycerol、ＰＧ）、ホスファチジルセリン（phosphatidyl serine、ＰＳ）、及びホスファチジルエタノールアミン（phosphatidyl ethanolamine、ＰＥ）よりなる群から選ばれた１種以上を含み、
該第２脂質はジステアロイルホスファチジルエタノールアミン−ポリエチレングリコール（distearoylphophatidylethanolamine-polyethyleneglycol、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）である、
標的指向型薬物伝達システム。
前記抗癌剤は、ドキソルビシン、パクリタキセル、ビンクリスチン、ダウノルビシン(daunorubicin)、ビンブラスチン(vinblastine)、アクチノマイシン−Ｄ(actinomycin-D)、ドセタキセル、エトポシド(etoposide)、テニポシド(teniposide)、ビサントレン(bisantrene)、ホモハリングトニン(homoharringtonine)、グリーベック（Gleevec、ＳＴＩ−５７１）、シスプラチン、５−フルオロウラシル、アドリアマイシン、メトトレキセート、ブサルファン(busulfan)、クロラムブシル(chlorambucil)、シクロホスファミド(cyclophosphamide)、メルファラン(melphalan)、ナイトロジェンマスタード(nitrogen mustard)、及びニトロソウレア(nitrosourea)よりなる群から選ばれた１種以上を含むことを特徴とする、請求項１に記載の標的指向型薬物伝達システム。
１）第１脂質、第２脂質及びコレステロールを６０〜７０：１〜１０：１〜４０のモル比でエタノールで混合し、水で水和させた後、フィルターを通過させて均質化したリポソームを製造する段階と、
２）抗癌剤を前記１）段階で製造したリポソームに含有させる段階と、
３）標識物質を前記２）段階で製造した抗癌剤含有リポソームに含有させて標識する段階と、
４）配列番号１のアミノ酸配列を有する、ＩＬ−４受容体を特異的に標的とするペプチド［ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド］を、マレイミドが修飾されたＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００（ＤＳＰＥ−ＰＥＴ_２０００−マレイミド）に結合させた後、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−ＩＬ４ＲＰｅｐを前記３）段階で製造した標識物質で標識された抗癌剤含有リポソームと反応させてリポソームに二次的に挿入する段階とを含み、
該第１脂質はホスファチジルコリン（phosphatidyl choline、ＰＣ）、ホスファチジルグリセロール（phosphatidyl glycerol、ＰＧ）、ホスファチジルセリン（phosphatidyl serine、ＰＳ）、及びホスファチジルエタノールアミン（phosphatidyl ethanolamine、ＰＥ）よりなる群から選ばれた１種以上を含み、
該第２脂質はジステアロイルホスファチジルエタノールアミン−ポリエチレングリコール（distearoylphophatidylethanolamine-polyethyleneglycol、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）である、
ＩＬ−４受容体が過発現する肺癌又は脳腫瘍の診断又は治療用標的指向型薬物伝達システムの製造方法。
前記２）段階で、リポソーム内に含有された抗癌剤の濃度は１〜５ｍｇ／ｍＬであることを特徴とする、請求項３に記載の標的指向型薬物伝達システムの製造方法。
前記３）段階で、標識物質は放射性同位元素、発色団(chromophore)、発光物質又は蛍光物質、常磁性粒子(super paramagnetic particles)、超常磁性粒子(ultrasuper paramagnetic particles)、及び発色酵素よりなる群から選ばれた１種以上であることを特徴とする、請求項３に記載の標的指向型薬物伝達システムの製造方法。
前記３）段階で、ＩＬ４ＲＰｅｐペプチド：マレイミドが修飾されたＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ_２０００−マレイミド）は１：１〜３のモル比で結合されることを特徴とする、請求項３に記載の標的指向型薬物伝達システムの製造方法。