JP5633075B2 - 多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 - Google Patents
多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP5633075B2 JP5633075B2 JP2011514425A JP2011514425A JP5633075B2 JP 5633075 B2 JP5633075 B2 JP 5633075B2 JP 2011514425 A JP2011514425 A JP 2011514425A JP 2011514425 A JP2011514425 A JP 2011514425A JP 5633075 B2 JP5633075 B2 JP 5633075B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- gene
- sendai virus
- vector
- cells
- cell
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/86—Viral vectors
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/111—General methods applicable to biologically active non-coding nucleic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
- C12N15/1131—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing against viruses
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
- C12N15/873—Techniques for producing new embryos, e.g. nuclear transfer, manipulation of totipotent cells or production of chimeric embryos
- C12N15/877—Techniques for producing new mammalian cloned embryos
- C12N15/8775—Murine embryos
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
- C12N15/873—Techniques for producing new embryos, e.g. nuclear transfer, manipulation of totipotent cells or production of chimeric embryos
- C12N15/877—Techniques for producing new mammalian cloned embryos
- C12N15/8776—Primate embryos
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0696—Artificially induced pluripotent stem cells, e.g. iPS
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/14—Type of nucleic acid interfering N.A.
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2330/00—Production
- C12N2330/50—Biochemical production, i.e. in a transformed host cell
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/60—Transcription factors
- C12N2501/602—Sox-2
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/60—Transcription factors
- C12N2501/603—Oct-3/4
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/60—Transcription factors
- C12N2501/604—Klf-4
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/60—Transcription factors
- C12N2501/606—Transcription factors c-Myc
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
- C12N2506/13—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from connective tissue cells, from mesenchymal cells
- C12N2506/1307—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from connective tissue cells, from mesenchymal cells from adult fibroblasts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2510/00—Genetically modified cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18811—Sendai virus
- C12N2760/18841—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18811—Sendai virus
- C12N2760/18841—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
- C12N2760/18843—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18811—Sendai virus
- C12N2760/18861—Methods of inactivation or attenuation
- C12N2760/18862—Methods of inactivation or attenuation by genetic engineering
Description
再生医療は、患者の組織に存在する組織幹細胞をさまざまな方法で賦活化する再生誘導の方法と、幹細胞や幹細胞から誘導した体細胞や組織を移植する細胞補充療法に大別される。しかし、多くの場合、組織幹細胞の再生能力には限界があり、再生医療の実用化には細胞補充療法の開発が不可欠である。また遺伝子病の場合は体外で遺伝子の修復や補充を行った細胞を使って細胞補充療法を実施することが考えられる。
マウス等の実験動物では、安全性が高く悪性腫瘍になりにくい多能性幹細胞と、分化能を持つが悪性腫瘍であるテラトカルシノーマを区別する方法として、該多能性幹細胞由来の組織を持つキメラ動物がその子孫に該多能性幹細胞由来の遺伝情報を伝える生殖細胞伝播(germ-line transmission)を検討する方法が知られている。この方法を使うと、安全性が高く悪性腫瘍になりにくい多能性幹細胞では生殖細胞伝播が観察できるが、悪性腫瘍となるテラトカルシノーマでは観察されない。しかしヒトでこの証明を実施することは不可能であり、ヒトで安全性の高い多能性幹細胞を樹立する方法としては、該方法を使って実験動物から多能性幹細胞を樹立し、この細胞を使って生殖細胞伝播を証明することが求められる。
そのため、多能性幹細胞を樹立する方法は、ヒトだけでは無く、ヒト以外の動物(望ましくは生殖工学の手法が確立しているマウス)の組織細胞からも多能性幹細胞を樹立できる方法であって、その動物を使って生殖細胞伝播の証明ができることが求められる。
しかし、これらの方法ではいずれの場合も、組織細胞に導入された遺伝子は誘導されたiPS細胞の染色体の不特定位置に挿入されて残っており、該iPS細胞のゲノム情報は元の組織細胞のゲノム情報と完全に同一では無い。つまり、これらの手法で作成されたiPS細胞は細胞補充療法で必要とされる「患者と同一のゲノム情報を持つ多能性幹細胞」の条件を満たしていない。
また最近、房木らは、外来遺伝子を染色体に挿入することなく発現できるセンダイウイルスをベクターとして使ってOct3/4, Sox2, Klf4, c-Myc遺伝子をヒト皮膚由来線維芽細胞で発現し、多能性幹細胞を作製する方法を報告している(非特許文献16,特許文献1参照)。この方法では、4つの初期化遺伝子を別々のベクターに搭載して混合感染し、最高1%の効率で多能性幹細胞が樹立できたとされている。しかしながら、樹立された細胞の均質性についての言及は無く、半定性的なRT-PCR(逆転写-polymerase chain reaction)法で示されている遺伝子発現の解析結果から樹立された細胞の性質が不揃いであることは明らかである。さらに実施例はヒト細胞のみであり、この手法が他の動物種でも有効であること、及びヒト以外の動物に適用して樹立した多能性幹細胞に由来するキメラ動物で生殖細胞伝播が確認できることは証明されていない。
(1)NP、P/C、M、F、HNおよびLの各遺伝子からなるセンダイウイルス遺伝子のうち、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子がセンダイウイルスCl.151株由来の遺伝子であって、該M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の少なくとも一つが欠損し、かつ、L遺伝子が Lタンパク質における1618番目のアミノ酸残基がバリンであるアミノ酸配列をコードする遺伝子であるセンダイウイルス遺伝子と、初期化遺伝子とをゲノムとして有することを特徴とする初期化遺伝子搭載センダイウイルス。
(2)M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の全てが欠損していることを特徴とする、上記(1)に記載のセンダイウイルス。
(3)ウイルス粒子であることを特徴とする、上記(1)または(2)に記載のセンダイウイルス。
(4)M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子の各機能の欠損が、M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子に対する初期化遺伝子および/またはマーカー遺伝子の挿入あるいは置換によるものであることを特徴とする、上記(1)〜(3)のいずれかに記載のセンダイウイルス。
(5)初期化遺伝子がOct3/4、Sox2及びKlf4あるいはOct3/4、Sox2、Klf4、c-Mycの各組み合わせからなることを特徴とする、上記(1)〜(4)のいずれかに記載のセンダイウイルス。
(6)上記(1)〜(5)のいずれかに記載のセンダイウイルスからなる、誘導多能性細胞作成用初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター。
(7)上記(1)〜(5)のいずれかに記載のセンダイウイルスからなり、誘導多能性幹細胞の作製において使用する分化細胞の発現マイクロRNAに対する標的配列をゲノム上に持つ、誘導多能性細胞作成用初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター。
(8)NP、P/C、M、F、HNおよびLの各遺伝子のからなるセンダイウイルス遺伝子のうち、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子がセンダイウイルスCl.151株由来の遺伝子であって、該M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の少なくとも一つが欠損し、かつ、L遺伝子が、Lタンパク質における1618番目のアミノ酸残基がバリンであるアミノ酸配列をコードする遺伝子であるセンダイウイルス遺伝子と、初期化遺伝子とがクローニングベクターに挿入されていることを特徴とする、初期化遺伝子搭載センダイウイルス作成用鋳型ベクター。
(9)M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の全てが欠損していることを特徴とする、上記(8)に記載の鋳型ベクター。
(10)M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子の各機能の欠損が、M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子に対する初期化遺伝子および/またはマーカー遺伝子の挿入あるいは置換によるものであることを特徴とする、上記(8)または(9)に記載の鋳型ベクター。
(11)クローニングベクターがファージベクターであることを特徴とする、上記(8)〜(10)のいずれかに記載の鋳型ベクター。
(12)ファージベクターがλファージベクターであることを特徴とする、上記(11)に記載の鋳型ベクター。
(13)初期化遺伝子がOct3/4、Sox2及びKlf4あるいはOct3/4、Sox2、Klf4、c-Mycの各組み合わせからなることを特徴とする、上記(8)〜(12)のいずれかに記載の鋳型ベクター。
(14)DNAからなることを特徴とする、上記(8)〜(13)のいずれかに記載の鋳型ベクター。
(15)上記(14)に記載の鋳型ベクターであって、誘導多能性幹細胞の作製において使用する分化細胞の発現マイクロRNAに対する標的配列に相補的な配列を有する鋳型ベクター。
(16)上記(8)〜(15)に記載の鋳型ベクターが導入されていることを特徴とする細胞。
(17)さらに、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子のうち機能を欠損させた遺伝子が少なくとも導入されているか、あるいはさらにNP遺伝子、P遺伝子、L遺伝子が導入されていることを特徴とする、上記(16)に記載の細胞。
(18)T7 RNA polymeraseが発現していることを特徴とする、上記(17)に記載の細胞。
(19)上記(16)〜(18)のいずれかに記載の細胞を培地に培養することにより、NP、P/C、M、F、HNおよびLの各遺伝子からなるセンダイウイルス遺伝子のうち、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子がセンダイウイルスCl.151株由来の遺伝子であって、該M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の少なくとも一つが欠損し、かつ、L遺伝子が Lタンパク質における1618番目のアミノ酸残基がバリンであるアミノ酸配列をコードする遺伝子であるセンダイウイルス遺伝子と、初期化遺伝子とをゲノムとして有するセンダイウイルス粒子を採取することを特徴とする、初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターの製造方法。
(20)上記(6)に記載の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを分化細胞に感染させ、分化細胞の初期化を行い、次いで該ベクターに対するsiRNAを作用させて、該細胞から初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを除去することを特徴とする、誘導多能性幹細胞の製造方法。
(21)上記siRNAが、センダイウイルスのLタンパク質を標的とすることを特徴とする、上記(20)に記載の製造方法。
(22)センダイウイルスのLタンパク質を標的とするsiRNA。
(23)上記(22)に記載のsiRNAからなる、分化細胞初期化後の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターの除去用試薬
(24)上記(7)に記載の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターをを分化細胞に感染させ、分化細胞の初期化を行い、誘導多能性幹細胞を形成後、がい初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを自動的に除去する誘導多能性幹細胞の製造方法であって、上記分化細胞がマイクロRNA発現細胞であることを特徴とする、誘導多能性幹細胞の製造方法。
(25)上記(6)または(7)に記載の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを分化細胞に感染させ、分化細胞の初期化を行い、次いで高温条件で培養して、該細胞からの初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター除去を促進することを特徴とする、誘導多能性幹細胞の製造方法。
したがって、本願発明によれば、従来、iPS細胞作成に用いられているアデノウイルスベクター・EBVベクターその他のDNAベクターや従来型センダイウイルスベクターを使用する場合に比べ、iPS細胞の作成を極めて効率的かつ簡便に再現性良く行うことができると共に、作成したiPS細胞の安全性が格段に向上する。これにより、再生医療(特に細胞補充療法や遺伝子治療)、さまざまな遺伝的背景を持った患者由来のiPS細胞を使った創薬研究、ヒト細胞を使ったバイオ医薬品製造、ガンや難治疾患の原因の解明や治療法の開発など、幅広い技術分野の発展に大いに貢献するものである。
なお、本願明細書において、遺伝子あるいは遺伝子材料というとき、マイナス鎖RNAまたはcDNA、及びこれと相補のプラス鎖RNAまたはcDNAを含む。すなわち転写あるいは逆転写により、上記いずれかの遺伝子あるいは遺伝子材料を合成しうるものは本発明に含まれる。
センダイウイルスベクターは、センダイウイルスのゲノムに任意の遺伝子を挿入するか、センダイウイルスの遺伝子を任意の遺伝子と置き換えることによって、該遺伝子を発現させることができる遺伝子導入・発現ベクターである。センダイウイルスはNP、P/C、F、M、HN及びLの各遺伝子を有し、同ウイルスのNP、P/CおよびL遺伝子はセンダイウイルスの転写、複製に関与する遺伝子であり、一方、F、M、NH遺伝子は、ウイルス粒子形成に関与する遺伝子である。したがって、F、M、NH遺伝子の機能を欠損させたセンダイウイルスベクターは、細胞に感染した後に単独では新規のウイルス粒子を形成できず、非伝播性となる。
したがって、本発明のセンダイウイルスベクターの構成遺伝子であるNP、C/PおよびL遺伝子は、L遺伝子が上記変異を有する限り、センダイウイルスCl.151株の塩基配列に限らず、例えば、センダイウイルス名古屋株あるいはZ株等の細胞傷害性を有し持続感染能を有しない株の塩基配列を有していてもよい。
さらに、センダイウイルスが動物細胞で持続感染するためには、上記変異L遺伝子を持つことに加えて、F、M、HN遺伝子がすべてCl.151株由来でなければならない。そのため、上記変異L遺伝子とCl.151株由来のF、M、HN遺伝子を同時に持つセンダイウイルスベクターは細胞傷害性がなく、持続感染能を有し、外来遺伝子を担持させれば、細胞内で長期間該遺伝子の発現が維持される。またこのCl.151株を基に作成したセンダイウイルスベクターでは、ベクターに搭載した遺伝子を長期持続発現する能力を損なうこと無く、Cl.151株由来のF、M、HN遺伝子の機能のうち一つまたは複数(全てを含む)を欠損させることが可能である。また、これら遺伝子の機能はその一つの欠損でもベクターの伝播性を顕著に抑制することが可能ではあるが、完全に抑制するためにはF、M、HN遺伝子の各機能の全てを欠損させることが好ましい。F、M、HN遺伝子機能のうち1つまたは複数を欠損させる方法としては、単純にこれら各遺伝子の全部またはその一部を欠失させても良いし、任意の外来遺伝子の挿入あるいは置換によってもよい。
上記センダイウイルスCl.151株の全長遺伝子cDNAは、GenBankに登録済みである(Accession Number AB275416)。
一方、初期化遺伝子は、本願発明のセンダイウイルスベクターに挿入するが、初期化遺伝子としては、ヒト・マウスあるいは任意の哺乳動物のOct3/4、Sox2、Klf4の各遺伝子の組み合わせ、及びさらにc-Myc遺伝子を加えた組み合わせ、あるいはNanog、Lin28、Esrrb、UTF1、TERT(テロメラーゼ触媒サブユニット)、SV40のT抗原の各遺伝子を加えた組み合わせが挙げられる。
本発明においては、センダイウイルスベクターの構成材料である上記NP、P/C、変異Lの各遺伝子を、上記初期化遺伝子とともにファージ等のクローニングベクターに挿入する。このとき初期化遺伝子は、必要とする複数の遺伝子の全てを挿入することが可能である。これにより、後述する初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターは、初期化に必要な遺伝子を全て含み、従来のように各初期化遺伝子をそれぞれ別のベクターに導入する必要がなく、極めて効率的に初期化が行える。
このようにして得られた組み換えベクターは、本発明の初期化遺伝子を搭載したセンダイウイルスベクター、すなわち初期化遺伝子を担持したセンダイウイルス粒子を作成するための鋳型となる。以下この組み換えベクターを鋳型ベクターという。
この初期化遺伝子あるいはマーカー遺伝子は、センダイウイルスベクターにおけるF、M、NHの各遺伝子に挿入あるいは該遺伝子の配列と置換させて、これらF、M、NHの各遺伝子の機能を欠損させることに用いることもできる。
また、この鋳型ベクターにおいては、薬剤耐性遺伝子等のマーカー遺伝子も挿入することができ、これにより鋳型ベクターあるいはセンダイウイルスベクターが挿入された標的細胞のスクリーニングが容易に行える。
なお、T7プロモーター配列はT7 RNA polymeraseによってゲノムRNAにおける3’末端側から(+)鎖ゲノムRNAが生合成されるように、3個のグアニジン残基はT7 RNA polymeraseによるRNA転写効率を上昇させるように(S. Leyrer et al. (1998) J. Virol. Methods 75; 47-58)、タバコリングスポットウイルスのヘアピンリボザイム配列は転写された(+)鎖ゲノムRNAが末端で正確に切断されるように、T7 RNA polymerase終止配列はT7 RNA polymeraseによるRNA転写を正確に終結させるために付加するものである。
このように作成された初期化遺伝子を有する鋳型ベクターは、ウイルスベクター産生用細胞に導入して、初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを作成することができる。
ウイルスベクター産生用細胞には、鋳型ベクターから(+)鎖のアンチゲノムRNAを転写するためにT7 RNA polymeraseを供給する必要があり、ウイルスベクター産生用細胞として、例えば、T7 RNA polymerase発現ワクシニアウイルスを感染させた細胞を用いることもできるし、T7 RNA polymeraseを恒常的に発現するようにクローニングした細胞株を用いることもできる。
上記鋳型ベクターが導入されたウイルスベクター産生細胞においては、鋳型ベクターDNAはT7 RNA polymeraseによってT7プロモーター以降がRNAに転写されるが、その際、産生するRNA分子はヘアピンリボザイム配列によって、それ以降の配列が切断されて削除され、鋳型ベクター中のNP遺伝子−P/C遺伝子−初期化遺伝子―変異L遺伝子をこの順で含むDNA部分、あるいはさらにマーカー遺伝子を含むDNA部分に対応する(+)鎖のアンチゲノムRNA分子ができる。
上記使用した鋳型ベクターにおいては、非伝播性にするために、Cl.151株由来のM、F及びHN遺伝子機能の1種以上を欠損させているため、これに基づき形成された上記RNP複合体は、組織細胞に感染させるために必要なウイルス粒子の形成が抑制されている。そこで、このようにして形成された(−)鎖ゲノムRNAを含むRNP複合体(ヌクレオカプシド)を持つウイルスベクター産生用細胞に、F、M、及びHN遺伝子産物のうち、不足する遺伝子産物を発現することができる発現ベクターを導入し、ウイルス粒子産生温度である32℃で培養する。
また、このウイルス粒子の産生プロセスにおいては、ウイルスタンパク質の形成を補い、ウイルス粒子を効率的に産生させるために、上記欠損遺伝子に加え、さらに、NP遺伝子、P/C遺伝子、L遺伝子を有する発現ベクターを上記細胞に導入するのが好ましい。
以上のようにして得られた初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターはウイルス粒子の形態であり、分化細胞に持続感染可能である。しかし、該ベクターはF、M、HNの各遺伝子機能の1以上を欠損しており、感染後において、感染のために必要なウイルス粒子の形成が抑制されているため、非伝播性である。また、該ベクターのL遺伝子はLタンパク質の1618番目のロイシンがバリンになるよう変異させた遺伝子であり、インターフェロン誘導能を有しておらず、持続感染可能であり、長期間該、細胞に保持され、初期化遺伝子の持続発現が可能となる。
上記で得られたウイルス粒子形態の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを、初期化の対象となる分化細胞に感染させる。この初期化の対象となる分化細胞としては、例えば、正常ヒト由来あるいは疾患を持つ患者由来の繊維芽細胞・口腔粘膜細胞・血球細胞・毛根上皮細胞、手術や組織検査により得られた肝細胞・大腸粘膜細胞・小腸粘膜細胞・肺上皮細胞等が挙げられるが、特にヒト細胞に限定されるものではなく、センダイウイルスが感染できることが知られているマウス・ラット・ハムスター・モルモット・ウサギ・イヌ・ネコ・サル・ウシ・ブタ・ヒツジ・ヤギ・ニワトリ等の動物の分化細胞であっても良い。これは、センダイウイルスが非常に幅広い動物種に由来するさまざまな細胞に感染できる能力を持っているためで、センダイウイルスが感染できない細胞としては、ウマ由来の細胞及びさまざまな動物種のBリンパ球が知られているにすぎない。
さらに、複数の初期化遺伝子を同一のベクターに搭載し常に一定の発現比で発現させることで、樹立した多能性幹細胞は非常に均一な性質を示す。例えば、本発明において樹立したヒト多能性幹細胞の遺伝子発現をDNAチップ法で解析すると、4つの異なった細胞株間の相関係数がすべて0.98以上となった(実施例19)。これは、レトロウイルスベクターで樹立された多能性幹細胞の遺伝子発現が一般に非常に不均一で細胞株間の相関係数が0.95以下になる場合が多いことと対照的である(参考文献:Chin, et al.,
Cell Stem Cells, 5, 111-123, 2009)。
本発明の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターは、分化細胞に感染導入され、該細胞の細胞質内において初期化遺伝子は持続発現して該細胞を初期化する。初期化された後の細胞の遺伝情報を初期化前の細胞の遺伝情報と同一にするためには、不要となった初期化遺伝子を除去する必要があるが、本発明においてはsiRNAを使用して初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター全体を除去する。使用するsiRNAとしては、センダイウイルスベクターのL遺伝子を標的にして行う。本発明者の実験によれば、NP遺伝子やP遺伝子を標的にしてもある程度の除去は可能であるが、L遺伝子を標的にすれば完全に初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを除去できる。L遺伝子中のターゲット部位としては、例えば、Lタンパク質の527番目あるいは1913番目のヌクレオチド残基をコードする部分を含む領域が挙げられるが、特にこれらに限定されるわけではなく他の領域であっても良い。siRNAは、初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを分化細胞に感染させた後、5日間から20日間後に該細胞に導入する。
このようにL遺伝子をターゲットにしたsiRNAや高温での培養、miRNA標的配列をL遺伝子、NP遺伝子あるいはP遺伝子の非コード領域に付加したセンダイウイルスベクターを使用して、初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを除去することにより、得られるiPS細胞は染色体に挿入された外来遺伝子を有せず、分化細胞の提供個体と全く同一のゲノム情報を有し。試験管内で長期の自己複製能を有する。
以下に、本発明の実施例を示す。但し本発明はこれら実施例により限定されるものではない。
持続発現型センダイウイルスベクター再構成用細胞の作製
動物細胞での発現効率を向上させるためにコドンを最適化したT7 RNA polymeraseをコードするcDNA(配列表・配列番号1)をレトロウイルスベクター作成用プラスミドpCX4SRalpha-neoベクターにクローニングした。またセンダイウイルスCl151株Mタンパク質をコードするcDNAをレトロウイルスベクター作成用プラスミドpCX4SRalpha-puroベクターにクローニングした。PLAT-Eパッケージング細胞にLipofectamine 2000を用いてそれぞれ上記プラスミドDNAを導入し、培養上清にレトロウイルス(T7 RNA polymerase組み換えレトロウイルス、151M組み換えレトロウイルス)を得た。BHK-21細胞にT7 RNA polymerase組み換えレトロウイルスを感染させ、G418 800μg/mlと10% ウシ胎児血清(FCS)を含むDulbecco’s Modified Minimal Essential Medium (DMEM)に移しT7 RNA polymeraseを安定に発現するG418耐性細胞 (BHK/T7(SE)) を単離した。続いてBHK/T7(SE)細胞に151M組み換えレトロウイルスを感染させ、G418 800μg/ml、puromycin 15μg/ml、10%FCSを含むDMEM培地に移し、T7 RNA polymeraseとMタンパク質を安定に発現するG418+puromycin耐性細胞 (BHK/T7/151M(SE))を単離した。
hOct4,
hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクターの作製
(1)ベクター作製用鋳型cDNAの構築
Avr II認識配列−ヒトOct4 ORF−センダイウイルス(SeV)ゲノムcDNA(6617-6666塩基)−ヒトSox2 ORF−Age I認識配列をこの順序で含む二本鎖DNA(配列表・配列番号2)を合成し 、プラスミドベクターpUC57にクローニングした(GenScript社に委託)(pUC57-OctSox)。pUC57-OctSoxからAvr II、Age Iで切断したDNA配列をプラスミドpMO078(pBluescript II SK(+)(Agilent Technologies, Inc.)にCla I認識配列−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(2871-3650塩基)−NotI認識配列−ブラストサイジンS耐性遺伝子−Mlu I認識配列−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(4728-4828塩基)−AvrII認識配列−ヒト化クサビラオレンジ遺伝子−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(6617-6666塩基)−gp91phox遺伝子−Age I認識配列−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(8442-10479塩基)をこの順序で挿入したプラスミドベクター:配列表・配列番号3)のAvr II−Age I間に挿入することによってプラスミドpMO084を得た(図1)。
以上によって得られた各プラスミドのうち、pMO085を制限酵素XhoI、NotIで切断したDNA断片(T7プロモーター配列とSeVゲノムcDNA(1-3655塩基)とヒトKlf4 cDNAを含む)、pMO084を制限酵素NotI-EcoRIで切断したDNA断片(ヒトOct4、ヒトSox2 cDNAを含む)、l/151(SeV Cl.151株ゲノム全長cDNAをクローニングしたラムダファージベクター。Nishimura, et al., J. Biol. Chem., 282, 27383-27391, 2007)のファージゲノムDNAをEcoR Iで切断したDNA断片(SeVゲノム10480-15384塩基に相補的なcDNA及びlDASHII right armを含む)を合わせてラムダファージベクターlDASHIIにクローニングし、l/SeVp (Mp+Klf4,+M::Bsr,+F::Oct4,+HN::Sox2)を作製した(図1)(hOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクターゲノム全長に相補的なcDNAは配列表・配列番号6に記載)。
BHK/T7/151M(SE)細胞を5 × 105 cells / wellで6-wellプレートに播種し、24時間培養した後に洗浄した。l/SeVp (Mp+Klf4,+M::Bsr,+F::Oct4,+HN::Sox2)ファージDNA、NPタンパク質発現プラスミドpGEM/NP、Pタンパク質発現プラスミドpGEM/P、Lタンパク質発現プラスミドpGEM/L、Fタンパク質発現プラスミドpSRD-FZmut、HNタンパク質発現プラスミドpMKIT-NaHNをそれぞれ2μg、1μg、1μg、1μg、1μg、1μgの量比でOptiMEM 300μLに懸濁し、10μLのLipofectamine 2000を含む300μLのOptiMEMと混合して20分間室温放置した培地を、細胞に添加して4時間培養した。細胞を再度洗浄後、10%FCS含有DMEM培地を加えてさらに32℃で3日間培養した。その後、Blastcidin S 10μg/mLを含む10%FCS含有DMEM培地に細胞を移して培養を続け、ブラストサイジン耐性細胞をhOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクター産生細胞(BHK/T7/151M/KBOS)として分離した。ベクターゲノムの再構成が起こったことは、センダイウイルスNPタンパク質に対する抗体、及び、hOct4, hSox2, hKlf4遺伝子産物に対する抗体を用いた蛍光抗体法により確認した。
2000を用いて導入し、4時間後に細胞を洗浄した後、10%FCS含有DMEM培地を加えてさらに32℃で4日間培養した。その後、hOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクターを含む培養上清を回収し、0.45μmのフィルターで濾過後、必要ならば超遠心法によりベクターを濃縮した。ベクター懸濁液は液体窒素にて急速冷凍し、-80℃にて保存した。
hOct4,
hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターの作製
(1)ベクターcDNAの作製
hKlf4遺伝子増幅用プライマーとして、
5’-ACTAGCTAGCAGTCTGACATGGCTGTCAGCGACGCGCT-3’( 配列表・配列番号7(N末端側))、5’-GGTCCACGCGTTTAAAAATGCCTCTTCATGTG-3’( 配列表・配列番号8(C末端側))の2本のプライマーを用いてpUC57-KLF4上からヒトKlf4遺伝子をPCR法によって増幅し、得られた二本鎖DNAの末端をNhe I、Mlu Iで切断し、pMO026(pBluescript II SK(+)にCla I認識配列−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(2871-3650塩基)−NotI認識配列−Nhe I認識配列−ブラストサイジンS耐性遺伝子−Mlu I認識配列−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(4728-5335塩基)をこの順番で挿入したプラスミドベクター)(配列表・配列番号9)のNhe I-Mlu I間に挿入することによって、pMO097を得た。さらにpMO097のCla I-Mlu I断片とpMO084のCla I-Mlu Iを結合することによりpMO099を得た(図2)。
5’-ACTAGCTAGCTTAGACGCTGGATTTTTTTCGGGTAGTGG-3’( 配列表・配列番号10(N末端側))、5’-GTCCGACGTCCTTACGCACAAGAGTTCCGT-3’( 配列表・配列番号11(C末端側))の2本のプライマーを用いてヒトc-Myc cDNA全長を含むプラスミドpJL1上からヒトc-Myc遺伝子をPCR法で増幅し、得られた二本鎖DNAの末端をNhe I、Aat IIで切断し、pMO094(pBluescript II SK(+)(Agilent Technologies, Inc.)にSeV Nagoya株ゲノムcDNA(1-43塩基)−センダイウイルス転写終結配列−SeV Nagoya株ゲノムcDNA(56-2870塩基)−SeV Cl.151株ゲノムcDNA(2871-3656塩基)−NheI認識配列−ヒトKlf4 ORF−AatII認識配列−センダイウイルス転写終結配列−センダイウイルス転写開始配列−Not I認識配列をこの順序で挿入したプラスミドベクター:配列表・配列番号12)のNhe I−Aat II間に挿入することによって、pMO103を得た(図2)。
以上によって得られた各プラスミドのうち、pMO103からT7プロモーター配列〜SeV:1−3655を、pMO099からSeV:3655−10480を切り出し、l/151をEcoR I切断することによって得た、SeV:10480−1538+lDASHII right armのDNA断片と合わせてクローニングし、l/SeVp (Mp+myc,+M::Klf4,+F::Oct4,+HN::Sox2)を作製した(図2)(h−cMyc, hOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクターゲノム全長に相補的なcDNAは配列表・配列番号13)。
BHK/T7/151M(SE)細胞を5 × 105 cells / wellで6−wellプレートに播種し、24時間培養した後に洗浄した。l/SeVp (Mp+myc,+M::Klf4,+F::Oct4,+HN::Sox2)ファージDNA、NPタンパク質発現プラスミドpGEM/NP、Pタンパク質発現プラスミドpGEM/P、Lタンパク質発現プラスミドpGEM/L、Fタンパク質発現プラスミドpSRD−FZmut、HNタンパク質発現プラスミドpMKIT−NaHNをそれぞれ2μg、1μg、1μg、1μg、1μg、1μgの量比でOptiMEM 300μLに懸濁し、10μLのLipofectamine 2000を含む300μLのOptiMEMと混合して20分間室温放置した培地を、細胞に添加して4時間培養した。細胞を再度洗浄後、10%FCS含有DMEM培地を加えてさらに32℃で3日間培養した。さらに37℃で3日間培養後、センダイウイルスNPタンパク質に対する抗体、及び、hOct4, hSox2, hKlf4遺伝子産物に対する抗体を用いて蛍光抗体法で染色することにより、トランスフェクションした細胞中でベクターゲノムの再構成が起こったことを確認し、この細胞集団をこれ以上のクローニングせずにhOct4, hSox2, hKlf4, hc−Myc持続発現用センダイウイルスベクター産生細胞として用いた。
持続発現型センダイウイルスベクターのRNAゲノムの、siRNAを用いた細胞からの除去
持続発現型センダイウイルスベクターのRNAゲノムを安定に保持している細胞からベクターゲノムを除去する目的で、ベクターが持続感染するために必要なRNA依存性RNAポリメラーゼのサブユニットをコードするL遺伝子の発現を抑制する2種類のshort interfering RNA(siRNA)を作製した(#1:センス鎖 5’-GGUUCAGCAUCAAAUAUGAAG-3’(配列表・配列番号14)、アンチセンス鎖 5’-UCAUAUUUGAUGCUGAACCAU-3’ (配列表・配列番号15)、#2:センス鎖 5’-GGUCCAGACAUGAAUUCAAAG-3’ (配列表・配列番号16)、アンチセンス鎖 5’-UUGAAUUCAUGUCUGGACCAU-3’ (配列表・配列番号17))。該siRNAによるベクターゲノム除去効果を調べるため、オワンクラゲ由来改良緑色蛍光タンパク質(Enhanced green fluorescent protein, EGFP. Clontech社)遺伝子を搭載した持続発現型センダイウイルスベクターのゲノムを安定に保持しているBHK/T7細胞を1.0 x 104 /wellになるように48 well プレートに播種し、翌日、最終濃度100 nMになるようにL遺伝子を標的としたsiRNAを導入した。導入から4日後にEGFPの蛍光を顕微鏡により観察した結果、L遺伝子を標的としたsiRNAを導入した細胞では、陰性対照として用いたホタル luciferase遺伝子を標的としたsiRNAを導入した細胞に比べ、EGFPの蛍光強度が大きく減少していることが分かった(図3A)。
マウス胎児由来線維芽細胞からのマウスiPSマーカー発現細胞の誘導
(1)マウス胎児由来線維芽細胞の調製
妊娠14日目のマウス(C57BL/6JもしくはNanog-EGFP(Enhanced Green Fluorescent
Protein)ノックインマウス(STOCK Tg(Nanog-GFP,Puro)1Yam))から胎児を摘出し、頭部、四肢、内蔵を除いた後細かく切り刻んでtrypLE Express(Invitrogen)で37℃30分間処理した。細胞成分以外を沈殿させた後、上清中の細胞を10% ウシ胎児血清(FCS)含有Dulbecco’s Modified Minimal Essential
Medium (DMEM) で培養し、マウス胎児由来線維芽細胞(MEF)を得た。
MEFを12 well plateに1.0 x 105 cells/wellで培養し、翌日に実施例2で作製したhOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクター、実施例3で作製したhOct4, hSox2, hKlf4, h-c-Myc持続発現用センダイウイルスベクター、及び実施例12で作製したhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2をそれぞれ培地中に加え、室温で2時間感染後に37℃で一晩培養した。マイトマイシンC処理をしたMEFをフィーダー細胞として、ゼラチンコートしたディッシュに準備し、上記ベクター感染細胞を重層して、mouse ES medium(DMEM, 15% FCS, 0.1 mM nonessential amino acids, 0.55 mM 2-ME, 1000 U/ml Leukemia Inhibitory Factor (LIF))もしくはKSR medium(Knockout DMEM, 15% KnockOut Serum Replacement (KSR), 2 mM Glutamine, 0.1 mM nonessential amino acids, 0.55 mM 2-ME, 1000
U/ml Leukemia Inhibitory Factor (LIF))中で培養した。
持続発現型センダイウイルスベクターで遺伝子導入した細胞のベクターゲノムRNA保持率をNPタンパク質に対する蛍光抗体法(後記(a))によって定量し、アルカリフォスファターゼ活性陽性コロニー数(後記(b))をベクター保持率で補正することによって、マウスiPSマーカー発現細胞の誘導効率を算出した結果を表1に示す。
持続発現型センダイウイルスベクターのRNAゲノムの除去によるマウスiPS細胞の作製
実施例5で得たマウスiPSマーカー発現細胞からベクターのゲノムRNAを除去するために、実施例4に従ってL遺伝子に対するsiRNAをマウスiPSマーカー発現細胞に導入した。ベクター感染1週間後の植え継ぎ以降、植え継ぎするごとにlipofectamin2000とsiRNAの混合液を培養液中に加えることによってsiRNAを導入した。導入約1週間後には、実施例5に示したセンダイウイルスNPタンパク質に対する蛍光抗体染色(後記(a))でベクターのRNAゲノムが細胞中に残存していないコロニーの存在が確認された。さらにそのコロニーをクローニングし、NP遺伝子由来メッセンジャーRNA(mRNA)を検出するRT−PCR法(後記(c))によって確認し、ベクターゲノムが残存していないマウスiPS細胞クローンを得た(図9A)。また、RT−PCR法により(後記(c))、マウスNanog遺伝子とマウスOct4遺伝子の発現を検討し、ベクターRNAを除去した後もこれらのiPS細胞マーカーの発現が持続的に維持されていることを確認した(図9B)。
マウスiPS細胞からのテラトーマ形成
実施例6で得られたマウスiPS細胞を1.0 x 106 cells/100μL PBS/匹になるように調製し、イソフルラン麻酔下でマウス(C.B17/Icr−scidJcl)の足の付け根の皮下に移植した。接種後2週間ほどたつと、肉眼で確認可能な奇形腫が形成され、移植30日後に奇形腫を摘出した。ブアン固定液(75%飽和ピクリン酸、12%ホルマリン、3%酢酸)によって固定した後、70%エタノール(1時間)、90%エタノール(1時間)、100%エタノール(1時間、2回)、50%エタノール:50%2−ブタノール(1時間)、100%2−ブタノール(30分を2回)の処理で脱水した。サンプルをパラフィン固定後、ミクロトームで厚さ6μmの切片を作製した。切片を脱パラフィン後、HE染色により観察した結果、三胚葉すべてへの分化が確認された(図9)。
ヒト胎児由来線維芽細胞からのヒトiPSマーカー発現細胞の誘導
(1)ヒトiPSマーカー発現細胞の誘導
ヒト胎児由来線維芽細胞であるTIG3細胞を12 well plateに1.0 x 105 cells/wellで播種し、翌日に実施例4で作製したhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクター、及び実施例12で作製したhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2をそれぞれ培地中に加え、室温で2時間放置した後に37℃で一晩培養することによって感染させた。マイトマイシンC処理をしたMEFをフィーダー細胞として、ゼラチンコートしたディッシュ上に準備し、上記ベクター感染細胞をその上に蒔いて、hES medium(DMEM/F12, 20% KnockOut Serum Replacement(KSR), 0.1 mM nonessential amino acids, 0.55 mM 2-ME, 10 ng/ml bFGF)もしくは霊長類ES細胞用培地(ReproCELL)中で培養する。
持続発現型センダイウイルスベクターで遺伝子導入した細胞のベクターゲノムRNA保持率をNPタンパク質に対する蛍光抗体法によって定量し、アルカリフォスファターゼ活性陽性コロニー数をベクター保持率で補正することによって、ヒトiPSマーカー発現細胞の誘導効率を算出した。結果を表2に示す。
ヒト胎児由来線維芽細胞からiPS細胞を樹立する場合、37℃, 5%CO2という通常の培養条件では無く、40℃, 2%CO2で培養することにより、樹立効率が約10倍上昇することを見いだした。この現象はhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターと、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2に共通して観察される現象であるが、レトロウイルスベクターでは認められなかった(図16)。
持続発現型センダイウイルスベクターのRNAゲノムの除去によるヒトiPS細胞の作製
実施例8で得たヒトiPSマーカー発現細胞を継続して培養することによって、ベクター感染約1ヶ月後には、実施例5に示したセンダイウイルスNPタンパク質に対する蛍光抗体染色でベクターのRNAゲノムが細胞中に残存していないコロニーの存在が確認された。さらにそのコロニーをクローニングし、実施例7に示したNP遺伝子由来メッセンジャーRNA(mRNA)を検出するRT−PCR法によって確認し、ベクターゲノムが残存していないヒトiPS細胞クローンを得た(図14A)。また、RT−PCR法(後記(c))によりベクターRNAを除去した後もiPS細胞マーカーであるヒトNanogの発現が持続的に維持されていることを確認した(図14B)。また、蛍光抗体法(後記(a))により、ベクターRNAを除去した後もiPS細胞マーカーであるヒトSSEA-4とOct4の発現が持続的に維持されていることを確認した(図15)。
マウスiPS細胞からのキメラマウス作製
マウスiPS細胞は、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2(実施例12)を用いて、Nanog-EGFP(Enhanced Green Fluorescent Protein)ノックインマウス(STOCK Tg(Nanog-GFP,Puro)1Yam))のMEFから、実施例5及び実施例6の方法によって樹立したiPS細胞株KOSM#24を使用した。キメラマウスの作製は参考文献の方法に準じて行った(参考文献:Manipulating
the Mouse Embryo, A Laboratory Manual, Third Edition (Nagy, A., 他著、Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2003))。
妊娠2.5日目のICRマウス(メス、6〜8週齢)の子宮からM2 Mediumにより8細胞期胚を回収した。この胚をKSOM培地(Potasium Simplex Optimized Medium)中で、炭酸ガス培養器において1から2時間培養後、マイクロインジェクションに使用した。マウスiPS細胞はトリプシンにより分散させ、マイクロマニピュレーターを使って10から15個のiPS細胞を胚の透明帯に開けた小孔から導入した。その後、この胚をKSOM培地中で24時間培養し、精管結索したオスマウスと交配したメスICRマウス(仮親マウス)の子宮に移植した。
出産後のマウスのキメリズムとその子供への生殖細胞伝播は、毛の色とiPS細胞だけが持つ遺伝子(EGFP)をPCRで検出することで判定し、高いキメリズムと生殖細胞伝播を確認した(図18)
ヒトiPS細胞からのテラトーマ形成
実施例14で得られたヒトiPS細胞を1.0 x 106 cells/40 μLHepes Buffered生理食塩水(HBSS)/匹になるように調整する。ネンブタール、イソフルラン麻酔下でマウス(C.B17/Icr-scidJcl)の精巣を露出させ、調整したiPS細胞を注入した後に縫合した。接種後約8週間で、肉眼で確認可能な奇形腫が形成され、移植60日後に奇形腫を摘出した。ブアン固定液(75%飽和ピクリン酸、12%ホルマリン、3%酢酸)によって固定した後、70%エタノール(1時間)、90%エタノール(1時間)、100%エタノール(1時間、2回)、50%エタノール:50%2−ブタノール(1時間)、100%2−ブタノール(30分を2回)の処理で脱水した。サンプルをパラフィン固定後、ミクロトームで厚さ6μmの切片を作製した。切片を脱パラフィン後、HE染色により観察した結果、三胚葉すべてへの分化が確認された(図19)。
(a)間接蛍光抗体法による遺伝子発現の確認
各細胞におけるヒトOct4, ヒトSox2, ヒトKlf4, ヒト c-Myc, マウスSSEA-1, ヒトSSEA-4, センダイウイルス NP遺伝子の発現を、それぞれの遺伝子産物に対する抗体を用いて蛍光抗体法で確認した。用いた一次抗体と希釈率は以下の通りである。ヒトOct4: rabbit anti-Oct4 polyclonal antibody (Abcam) [x100];ヒトSox2: rabbit anti-Sox2 polyclonal antibody (Abcam) [x100];ヒトKlf4: rabbit anti-Klf4 polyclonal antibody (CeMines) [x100];ヒトc-Myc: rabbit anti-c-myc polyclonal antibody (Santa Cruz) [x100];SSEA-1: マウスanti-SSEA-1 monoclonal antibody (Santa Cruz) [x200];SSEA-4: マウスanti-SSEA-4 monoclonal antibody (Santa Cruz) [x200];センダイウイルスNP:mouse anti-NP monoclonal antibody [x200]もしくはrabbit anti-NP polyclonal antibody [x1000]
培地を除去し、PBSで一回洗浄後、Vector Red Alkaline Phosphatase Substrate Kit I (Vector社)を加えて室温で20〜30分反応させた。アルカリフォスファターゼ活性を有する細胞は赤色に染色された。
センダイウイルスNP遺伝子発現の確認
細胞からISOGEN(Nippon Gene)を用いてtotal RNAを抽出した。抽出したRNAを鋳型に用い、ランダムプライマーとSuperScript III First strand synthesis system(Invitrogen)を用いてcDNAを合成した後、以下に示したプライマーを用いて標的となるcDNAをPCR法で増幅し、発現の確認を行った。マウスNanog: 5’-GGAAGCATCGAATTCTGGGA-3’(配列表・配列番号18(センス鎖))、5’-CGGAGCAGCATTCCAAGGCT-3’(配列表・配列番号19(アンチセンス鎖));マウスOct4: 5’-TGAGCCGTCTTTCCACCAGG-3’(配列表・配列番号20(センス鎖))、5’-ACATGGTCTCCAGACTCCAC-3’(配列表・配列番号21(アンチセンス鎖));ヒトNanog: 5’-AGCATCCGACTGTAAAGAAT-3’(配列表・配列番号22(センス鎖))、5’-CCTCTCCACAGTTATAGAAG-3’( 配列表・配列番号23(アンチセンス鎖));SeV NP: 5’-AGACCCTAAGAGGACGAAGA-3’(配列表・配列番号24(センス鎖))、5’-ACTCCCATGGCGTAACTCCATAGTG-3’(配列表・配列番号25(アンチセンス鎖))。
細胞を採取後、DNeasy Tissue Kit(QIAGEN)を用いてゲノムDNAを抽出した。抽出したDNAに対して、以下に示したプライマーを用いてPCRを行い、サイズの違いによって遺伝子型を判定した。D18Mit4: 5’-ACTGTTGCTGGGGAATGG-3’( 配列表・配列番号26(センス鎖))、5’-CCAAGTTCAAAGCTGCTGG-3’(配列表・配列番号27(アンチセンス鎖)) 、D7Mit44: 5’-TTCTGGCCTCTGTGAAGTAGTG-3’(配列表・配列番号28(センス鎖))、5’-GTGAAACCATGGTGCAGATG-3’(配列表・配列番号29(アンチセンス鎖))、D4Mit15: 5’-AGGAATACTGAATGTGGACTTTCC-3’(配列表・配列番号30(センス鎖))、5’-TCCCTTGATTAACAGAAGACCTG-3’(配列表・配列番号31(アンチセンス鎖))
hOct4,
hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2の作製
(1)ベクターcDNAの作製
hc-Myc遺伝子増幅用プライマーとして、
5’-ACTAGCTAGCTTAGACGCTGGATTTTTTTCGGGTAGTGG-3’(配列表・配列番号32(N末端側))、5’-GTCCACCGGTCTTACGCACAAGAGTTCCGT-3’(配列表・配列番号33(C末端側))の2本のプライマーを用いてヒトc-Myc cDNA全長を含むプラスミドpJL1上からヒトc-Myc遺伝子をPCR法で増幅し、得られた二本鎖DNAの末端をNhe I、AgeIで切断し、実施例2で作製したpMO084のNheI-Age I間に挿入することによってプラスミドpMO118を得た(図20)。
hSox2遺伝子増幅用プライマーとして、
5’-AGTACCTAGGCGCATGTACAACATGATGGAGACGG-3’(配列表・配列番号34(N末端側))、5’-GTCCGACGTCCTCACATGTGTGAGAGGGGCAGT-3’(配列表・配列番号35(C末端側))の2本のプライマーを用いてpUC57-Sox2上からヒトSox2遺伝子をPCR法によって増幅し、得られた二本鎖DNAの末端をAvr II、Aat IIで切断し、pMO118のAvr II-Aat II間に挿入することによって、pMO119を得た(図20)。
5’-ACTAGCTAGCGGTTCCCCATGGCGGGACACCTGGCTTCGG-3’(配列表・配列番36(N末端側))、5’-GGTCCACGCGTTCAGTTTGAATGCATGGGAGAGCC-3’(配列表・配列番号37(C末端側))の2本のプライマーを用いてpUC57-Oct4上からヒトOct4遺伝子をPCR法によって増幅し、得られた二本鎖DNAの末端をNhe I、Mlu Iで切断し、pMO097のNhe I-Mlu I間に挿入することによって、pMO116を得た。次に、pMO116のCla I-Cla Iフラグメントの向きを入れ替えてpMO120を得た。さらにpMO119のSal I-Mlu I断片とpMO120のSal I-Mlu Iを結合することによりpMO122を得た(図20)。
1-3655を、pMO122からSeV: 3655-10480を切り出し、l/151をEcoR I切断することによって得たSeV:10480-1538+lDASHII right armのDNA断片と合わせてクローニングし、l/SeVp (Mp+Klf4,+M::Oct4,+F::Sox2,+HN::c-Myc)を作製した(図20)(hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2ゲノム全長に相補的なcDNAは配列表・配列番号38)。
hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2の調製
上記hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2ゲノム全長に相補的なcDNAから、実施例3に記載の方法に従って、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 2を調製した。
iPS細胞から自動除去されるhOct4, hSox2, hKlf4,
hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 3の作製
(1)ベクターcDNAの作製
ES細胞特異的miRNAであるmir-302aの標的配列を4つつなげた配列をクローニングするために、
5’-CCGGTTATCACCAAAACATGGAAGCACTTACGATTCACCAAAACATGGAAGCA
CTTAGGTACC-3’(配列表・配列番号39)と
5’-TAAGTGCTTCCATGTTTTGGTGAATCGTAAGTGCTTCCATGTTTTGGTGATAA-3’
(配列表・配列番号40)、
5’-TCACCAAAACATGGAAGCACTTACGATTCACCAAAACATGGAAGCACTTAA-3’(配列表・配列番号41)と
5’-CCGGTTAAGTGCTTCCATGTTTTGGTGAATCGTAAGTGCTTCCATGTTTTGGTGAGGTACC-3’(配列表・配列番号42)、の2組のオリゴDNAをアニーリングさせた後にライゲーションし、Age Iで切断したpGL4.12(Promega Corp.)にクローニングしてpNK300を得た。
実施例3. (2)に記載の方法と同様の方法で、上記hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 3ゲノム全長に相補的なcDNAから、実施例3に記載の方法でhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion
3を調製した。
持続発現型センダイウイルスベクターのRNAゲノムの、siRNAを用いた細胞からの除去についての経時的検討
実施例4で示した持続発現型センダイウイルスベクターのRNAゲノムを安定に保持している細胞からsiRNAを用いてベクターゲノムを除去する方法について、さらに除去の経時変化を定量的に解析すると共に、siRNA処理を行った細胞にベクターゲノムが存在しないことを確認した。
持続発現型センダイウイルスベクターによる遺伝子発現のマーカーとして、不安定型ホタル・ルシフェラーゼ遺伝子(Luc2CP, Promega Corp.)と大腸菌ハイグロマイシンB耐性遺伝子(HygBpapertrou)を使用した。ルシフェラーゼ活性はゲノムRNAのコピー数を反映し、ハイグロマイシンB耐性細胞の数は持続発現型センダイウイルスベクターを保持している細胞の数を反映する。
該siRNAによるベクターゲノム除去効果を調べるため、Luc2CP遺伝子とHygB遺伝子を搭載した持続発現型センダイウイルスベクターのゲノムを安定に保持しているHeLa細胞を、3x104個/0.4 mL培地(MEM, 10%ウシ胎児血清)/wellの濃度で24-wellプレートに播種した。siRNAは最終濃度40 nMになるようにOpti-MEMで希釈してLipofectamine RNAiMAX(Lifetechnologies, Inc.)1μLを加えて室温20分反応後、上記細胞に加えた。以後、細胞を経時的に回収し、3日目と6日目に細胞を上記の条件で継代すると同時に、siRNAを上記の条件で細胞に導入した。その結果、細胞内のベクターの量の指標となるルシフェラーゼの活性は経時的に低下し、8日目以降はルシフェラーゼ活性が検出限界となった(図22A)。
持続発現型センダイウイルスベクターに搭載した2つの外来遺伝子の遺伝子発現様式の検討
iPS細胞の作製には4つの初期化遺伝子が同時に一つの細胞で発現する必要がある。また、4つの初期化遺伝子の発現の強さのバランスを変えることにより初期化効率が変化する(参考文献:Papapetrou, et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 106, 12759-12764, 2009)だけでなく、iPS細胞に形態が似ていても多分化能を持たない質の低い細胞株が出現する可能性が指摘されている(参考文献:Chan, et al., Nat. Biotech., 27, 1034-1037, 2009)。そのため、iPS細胞を高効率でかつ再現性良く作製する方法は、1)4つの初期化遺伝子が同時に1個の細胞に導入されること、2)これら4つの遺伝子がすべての細胞で同じバランスで発現すること、の2点を満たす必要がある。持続発現型センダイウイルスベクターを使って4個の初期化遺伝子を細胞に導入する場合、本発明で例示しているようにすべての初期化遺伝子を1つのベクターに搭載して遺伝子導入する方法と、特許文献1、非特許文献17で示されているように1〜3種類の初期化遺伝子を搭載したベクターを別々に作製してから混合して遺伝子導入する方法が考えられる。そこで、Kusabira Orange(KO)遺伝子とEnhanced Green Fluorescent Protein(EGFP)遺伝子の2つの遺伝子の発現を指標にして、上記の2つの方法における外来遺伝子の発現様式に違いがあるかどうかを検討した。
この2つの細胞株を蛍光顕微鏡(Zeiss)で観察し、KOが発する蛍光に赤色の疑似カラーを、EGFPが発する蛍光に緑色の疑似カラーを割り当てて画像を重ねたところ、LLCMK2(SeVdp/KO/HygB/EGFP/Luc2)はすべてKOとEGFPが同時に発現していることを示す黄色の画像となったのに対し、LLCMK2(SeVdp/Zeo/KO/CLuc+SeVdp/Bsr/EGFP/gp91phox)は赤色・黄色・緑色の細胞が混在しており、KOとEGFPの発現のバランスが細胞によって非常に異なっていることが示された(図23A)
初期化遺伝子を別々に搭載した持続発現型センダイウイルスベクターを用いたiPS細胞誘導
本発明で実施している4つの初期化遺伝子を同一のベクター上に搭載してiPS細胞を作製する方法と、特許文献1・非特許文献17で示されているような4つの初期化遺伝子を2つ以上のベクター上に分けて搭載してiPS細胞を作製する方法について、iPS細胞の作製効率の比較を行った。4つの初期化遺伝子を同一のベクター上に搭載したベクターとして、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターを用いた。また、4つの初期化遺伝子を2つ以上のベクター上に分けて搭載したベクターとして、実施例2で示したhOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクターと、初期化遺伝子としてc-Mycだけを搭載したZeo/KO/hc-Myc持続発現型センダイウイルスベクターを用いた。Zeo/KO/hc-Myc持続発現型センダイウイルスベクターは、hOct4, hSox2, hKlf4持続発現用センダイウイルスベクターのOct4遺伝子をZeo遺伝子で、Sox2遺伝子をKO遺伝子で、Klf4遺伝子をc-Myc遺伝子でそれぞれ置換して作製した。
hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 3を用いたiPS細胞誘導
TIG3細胞を12 well plateに1.0 x 105 cells/wellで播種し、翌日に実施例3で作製したhOct4, hSox2, hKlf4, h-c-Myc持続発現用センダイウイルスベクターもしくは実施例13で作製したhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 3を培地中に加え、実施例8に従ってヒトiPS細胞を誘導した。
出現したコロニーを2回植え継いだ後の感染24日後に、コロニーに対してNPタンパクに対する抗体を用いて蛍光染色したところ、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 3を用いた場合、多くのコロニーでベクターの除去が確認された(図25)。それに対し、hOct4, hSox2, hKlf4, h-c-Myc持続発現用センダイウイルスベクターを用いた場合はベクターがまだ残存していた。
以上の結果から、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターVersion 3を用いてヒトiPS細胞を誘導した場合、誘導されたiPS細胞で発現するmir-302aの働きによって自動的にベクターが除去されることが明らかになった。
ヒト末梢血単核細胞からのiPS細胞の樹立
成人の末梢血20mLをPBS(-) 20mLで希釈し、Lymphoprep 6mLに重層して1,800回転30分の遠心で、血小板を含む上層、単核細胞を含む中間層、赤血球を含む下層に分離した。中間層をPBS(-)で洗浄してヒト末梢血単核細胞とした。この細胞を使い、実施例8の方法に従ってhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターを感染させ培養したところ、アルカリフォスファターゼ陽性でヒトES細胞と同様の形態を持ったiPS細胞が出現した(図26)。ベクターを感染させなかった陰性対照からは、このような細胞コロニーは出現しなかった。
持続発現型センダイウイルスベクターを用いて作製したヒトiPS細胞の遺伝子発現の比較
(1)解析用RNAサンプルの用意
実施例8の方法に従ってhOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターを用いて作製したヒトiPS細胞を、フィーダー細胞を使わずに、MEF conditioned medium中でマトリゲル(Becton, Dickinson and Company)上に培養し、1.0 x 106細胞ずつ回収する。回収した細胞から、ISOGEN(Nippon Gene Co. Ltd.)を用いて全細胞RNAを抽出した。比較対照のために、京都大学再生医科学研究所で樹立されたヒトES細胞5株を同様に培養して全細胞RNAを抽出した。
0.5μgの全細胞RNAをQuick Amp Labelng Kit(Agilent Technologies, Inc.)を用いてCy3で標識する。標識したRNAはGene Expression Hybridization Kit(Agilent Technologies, Inc.)を用いて、Whole Human Genome (4x44k) DNA array(Agilent Technologies,Inc.)にハイブリダイゼーションさせ、Agilent DNAマイクロアレイスキャナを用いてシグナルを取得する。取得したシグナルはGeneSpringGX10ソフトウェア(Agilent Technologies, Inc.)を用いて解析し、各細胞クローン間の遺伝子発現の相関係数を得た(図27A)。その結果、hOct4, hSox2, hKlf4, hc-Myc持続発現用センダイウイルスベクターを用いて作製したヒトiPS細胞の遺伝子発現は、その相関係数が0.98以上と極めて近似しており、本発明による方法によって極めて均質なiPS細胞が樹立できることがわかった。さらに、今回解析したヒトiPS細胞はすべて、ヒトES細胞で強く発現しているマーカー遺伝子を、ES細胞と同様に強く発現しており(図27B)、ヒトES細胞の遺伝子発現との相関も非常に高かった(図27C)。
Claims (21)
- NP、P/C、M、F、HNおよびLの各遺伝子からなるセンダイウイルス遺伝子のうち、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子がセンダイウイルスCl.151株由来の遺伝子であって、該M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の全てが欠損し、かつ、L遺伝子が Lタンパク質における1618番目のアミノ酸残基がバリンであるアミノ酸配列をコードする遺伝子であるセンダイウイルス遺伝子と、初期化遺伝子Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Mycとをゲノムとして有することを特徴とする初期化遺伝子搭載センダイウイルス。
- ウイルス粒子であることを特徴とする、請求項1に記載のセンダイウイルス。
- M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子の各機能の欠損が、M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子に対する初期化遺伝子および/またはマーカー遺伝子の挿入あるいは置換によるものであることを特徴とする、請求項1または2に記載のセンダイウイルス。
- 請求項1〜3のいずれかに記載のセンダイウイルスからなる、誘導多能性細胞作成用初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター。
- 請求項1〜3のいずれかに記載のセンダイウイルスからなり、誘導多能性幹細胞の作製において使用する分化細胞の発現マイクロRNAmir-302aの標的配列をゲノム上に持つ、誘導多能性細胞作成用初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター。
- NP、P/C、M、F、HNおよびLの各遺伝子のからなるセンダイウイルス遺伝子のうち、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子がセンダイウイルスCl.151株由来の遺伝子であって、該M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の全てが欠損し、かつ、L遺伝子が、Lタンパク質における1618番目のアミノ酸残基がバリンであるアミノ酸配列をコードする遺伝子であるセンダイウイルス遺伝子と、初期化遺伝子Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Mycとがクローニングベクターに挿入されていることを特徴とする、初期化遺伝子搭載センダイウイルス作成用鋳型ベクター。
- M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子の各機能の欠損が、M遺伝子、F遺伝子あるいはHN遺伝子に対する初期化遺伝子および/またはマーカー遺伝子の挿入あるいは置換によるものであることを特徴とする、請求項6に記載の鋳型ベクター。
- クローニングベクターがファージベクターであることを特徴とする、請求項6または7に記載の鋳型ベクター。
- ファージベクターがλファージベクターであることを特徴とする、請求項8に記載の鋳型ベクター。
- DNAからなることを特徴とする、請求項6〜9のいずれかに記載の鋳型ベクター。
- 請求項10に記載の鋳型ベクターであって、誘導多能性幹細胞の作製において使用する分化細胞の発現マイクロRNAmir-302aの標的配列に相補的な配列を有する鋳型ベクター。
- 請求項6〜11のいずれかに記載の鋳型ベクターが導入されていることを特徴とする細胞。
- さらに、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子が少なくとも導入されているか、あるいはさらにNP遺伝子、P遺伝子、L遺伝子が導入されていることを特徴とする、請求項12に記載の細胞。
- T7 RNA polymeraseが発現していることを特徴とする、請求項13に記載の細胞。
- 請求項12〜14のいずれかに記載の細胞を培地に培養することにより、NP、P/C、M、F、HNおよびLの各遺伝子からなるセンダイウイルス遺伝子のうち、M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子がセンダイウイルスCl.151株由来の遺伝子であって、該M遺伝子、F遺伝子及びHN遺伝子の各機能の全てが欠損し、かつ、L遺伝子が Lタンパク質における1618番目のアミノ酸残基がバリンであるアミノ酸配列をコードする遺伝子であるセンダイウイルス遺伝子と、初期化遺伝子Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Mycとをゲノムとして有するセンダイウイルス粒子を採取することを特徴とする、初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターの製造方法。
- 請求項4に記載の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを分化細胞に感染させ、分化細胞の初期化を行い、次いで該ベクターに対する、配列番号14のセンス鎖及び配列番号15のアンチセンス鎖、又は、配列番号16のセンス鎖及び配列番号17のアンチセンス鎖から構成されるsiRNAを作用させて、該細胞から初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを除去することを特徴とする、誘導多能性幹細胞の製造方法。
- 上記siRNAが、センダイウイルスのLタンパク質を標的とすることを特徴とする、請求項16に記載の製造方法。
- 配列番号14のセンス鎖及び配列番号15のアンチセンス鎖、又は、配列番号16のセンス鎖及び配列番号17のアンチセンス鎖から構成される、センダイウイルスのLタンパク質を標的とするsiRNA。
- 請求項18に記載のsiRNAからなる、分化細胞初期化後の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターの除去用試薬。
- 請求項5に記載の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを分化細胞に感染させ、分化細胞の初期化を行い、誘導多能性幹細胞を形成後、該初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを自動的に除去する誘導多能性幹細胞の製造方法であって、上記分化細胞がマイクロRNAmir-302aを発現する細胞であることを特徴とする、誘導多能性幹細胞の製造方法。
- 請求項4または5に記載の初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクターを分化細胞に感染させ、分化細胞の初期化を行い、次いで40℃、2%CO2の条件で培養して、該細胞からの初期化遺伝子搭載センダイウイルスベクター除去を促進することを特徴とする、誘導多能性幹細胞の製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2011514425A JP5633075B2 (ja) | 2009-05-18 | 2010-05-18 | 多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 |
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2009119745 | 2009-05-18 | ||
JP2009119745 | 2009-05-18 | ||
PCT/JP2010/058368 WO2010134526A1 (ja) | 2009-05-18 | 2010-05-18 | 多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 |
JP2011514425A JP5633075B2 (ja) | 2009-05-18 | 2010-05-18 | 多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPWO2010134526A1 JPWO2010134526A1 (ja) | 2012-11-12 |
JP5633075B2 true JP5633075B2 (ja) | 2014-12-03 |
Family
ID=43126203
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2011514425A Active JP5633075B2 (ja) | 2009-05-18 | 2010-05-18 | 多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP2434012B1 (ja) |
JP (1) | JP5633075B2 (ja) |
WO (1) | WO2010134526A1 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPWO2012063817A1 (ja) * | 2010-11-09 | 2014-05-12 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | 末梢血単球由来多能性幹細胞作製方法 |
JP7406257B2 (ja) | 2019-01-25 | 2023-12-27 | 国立研究開発法人産業技術総合研究所 | 人工マイクロrna前駆体およびそれを含む改良されたマイクロrna発現ベクター |
Families Citing this family (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9365866B2 (en) | 2009-06-03 | 2016-06-14 | National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology | Vectors for generating pluripotent stem cells and methods of producing pluripotent stem cells using the same |
CN103097521A (zh) | 2010-04-16 | 2013-05-08 | 学校法人庆应义塾 | 人工多能性干细胞的制造方法 |
EP2582794B2 (en) | 2010-06-15 | 2024-04-24 | FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. | Generation of induced pluripotent stem cells from small volumes of peripheral blood |
AU2011297075B2 (en) * | 2010-08-30 | 2014-07-17 | Dnavec Corporation | Composition for inducing pluripotent stem cell, and use thereof |
JP5924741B2 (ja) | 2011-05-27 | 2016-05-25 | 公立大学法人横浜市立大学 | 人工癌幹細胞の作製方法及びその分化誘導方法 |
WO2013049389A1 (en) * | 2011-09-27 | 2013-04-04 | Yale University | Compositions and methods for transient expression of recombinant rna |
EP2669381A1 (en) * | 2012-05-30 | 2013-12-04 | AmVac AG | Method for expression of heterologous proteins using a recombinant negative-strand RNA virus vector comprising a mutated P protein |
JP6275646B2 (ja) * | 2012-10-30 | 2018-02-07 | 第一三共株式会社 | Mait様細胞およびその作製方法 |
RU2552487C2 (ru) * | 2013-10-31 | 2015-06-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) | Аттенуированный штамм вируса сендай |
TWI696700B (zh) * | 2015-01-16 | 2020-06-21 | 國立研究開發法人產業技術總合研究所 | 使用具有匿跡性之rna的基因表現系統及含有該rna的基因導入、表現載體 |
JP6927883B2 (ja) * | 2015-11-13 | 2021-09-01 | 株式会社Idファーマ | 改良されたパラミクソウイルスベクター |
WO2017131230A1 (ja) | 2016-01-29 | 2017-08-03 | 国立大学法人京都大学 | 血小板産生促進剤及びそれを用いた血小板の製造方法 |
WO2017131228A1 (ja) | 2016-01-29 | 2017-08-03 | 国立大学法人京都大学 | 血小板産生促進剤のスクリーニング方法 |
WO2019059234A1 (ja) | 2017-09-19 | 2019-03-28 | 株式会社メガカリオン | 血小板の製造方法、血小板製剤の製造方法、および血液製剤の製造方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP4936482B2 (ja) * | 2007-04-13 | 2012-05-23 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | 改良された持続感染型センダイウイルスベクター |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE102005006388A1 (de) * | 2005-02-11 | 2006-08-24 | MAX-PLANCK-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. | Replikationsdefiziente RNA-Viren als Impfstoffe |
WO2010008054A1 (ja) * | 2008-07-16 | 2010-01-21 | ディナベック株式会社 | 染色体非組み込み型ウイルスベクターを用いてリプログラムされた細胞を製造する方法 |
-
2010
- 2010-05-18 WO PCT/JP2010/058368 patent/WO2010134526A1/ja active Application Filing
- 2010-05-18 JP JP2011514425A patent/JP5633075B2/ja active Active
- 2010-05-18 EP EP10777759.1A patent/EP2434012B1/en active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP4936482B2 (ja) * | 2007-04-13 | 2012-05-23 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | 改良された持続感染型センダイウイルスベクター |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
JPN6013063350; 生化学, 2008, 2P-1429 * |
JPN6013063352; Science, 2007, Vol.318, p.1917-1920 * |
JPN6013063355; Virology, 2004, Vol.329, No.2, p.289-301 * |
JPN6013063357; 生化学, 2008, 4T26-7 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPWO2012063817A1 (ja) * | 2010-11-09 | 2014-05-12 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | 末梢血単球由来多能性幹細胞作製方法 |
JP5963309B2 (ja) * | 2010-11-09 | 2016-08-03 | 国立研究開発法人産業技術総合研究所 | 末梢血単球由来多能性幹細胞作製方法 |
JP7406257B2 (ja) | 2019-01-25 | 2023-12-27 | 国立研究開発法人産業技術総合研究所 | 人工マイクロrna前駆体およびそれを含む改良されたマイクロrna発現ベクター |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP2434012B1 (en) | 2017-12-13 |
JPWO2010134526A1 (ja) | 2012-11-12 |
EP2434012A1 (en) | 2012-03-28 |
EP2434012A4 (en) | 2013-11-06 |
WO2010134526A1 (ja) | 2010-11-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP5633075B2 (ja) | 多能性幹細胞作成用ベクター材料及びこれを用いた多能性幹細胞作成方法 | |
US8496941B2 (en) | Vectors for generating pluripotent stem cells and methods of producing pluripotent stem cells using the same | |
Velychko et al. | Excluding Oct4 from Yamanaka cocktail unleashes the developmental potential of iPSCs | |
US9404124B2 (en) | Method of producing induced pluripotent stem cells using inhibitors of P53 | |
US9365866B2 (en) | Vectors for generating pluripotent stem cells and methods of producing pluripotent stem cells using the same | |
KR101685209B1 (ko) | 유도된 다능성 줄기 세포의 효율적인 확립 방법 | |
KR101564044B1 (ko) | 핵초기화 방법 | |
JP5603282B2 (ja) | 誘導多能性幹細胞 | |
JP5963309B2 (ja) | 末梢血単球由来多能性幹細胞作製方法 | |
WO2015070756A1 (zh) | 一种制备诱导多能性干细胞的方法以及该方法中所使用的组合物及其应用 | |
JP2012507258A (ja) | 人工多能性幹細胞の作製方法 | |
US20130065814A1 (en) | Inductive production of pluripotent stem cells using synthetic transcription factors | |
JP2013545480A (ja) | 人工多能性幹細胞の調製方法及び人工多能性幹細胞の調製用培地 | |
Arnold et al. | Reprogramming of human huntington fibroblasts using mRNA | |
JP6927578B2 (ja) | 高品質なiPS細胞の製造方法 | |
JP5939985B2 (ja) | 多能性の増強方法 | |
Stolzing | Research Article Reprogramming of human Huntington fibroblasts using mRNA | |
Pham et al. | Monitoring Multiple Pluripotency Biomarkers After Delivery of Reprogramming Factors to Human Somatic Cells |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20131224 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140224 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20140805 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140828 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20140924 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20140925 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 5633075 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
S533 | Written request for registration of change of name |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533 |
|
R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |