JP5523004B2 - 抗アレルギー機能を有する飲食品及びその製造方法 - Google Patents
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1-1.実験動物、飼料および飼育条件
BALB/cマウス(♀ 4週齢、日本チャールスリバー社製)を1群6匹に分け、22±3℃、12時間ごとの明暗サイクル環境下、ガンマ線照射飼料(CRF-1、オリエンタル酵母社製)と滅菌水を自由摂食させながらSPF環境下にて54日間飼育した。
飼育開始時から試験群に乳酸発酵酒粕飲料を胃ゾンデにて100μl/head/dayの条件にて試験終了日まで毎日連投した。対照として乳酸発酵を施していない酒粕試料および滅菌水を同様の方法にて投与する群を設けた(図1)。
鼻炎モデルの免疫・感作プロトコールはMiyaharaらの方法(Miyahara et al. J. Allergy Clin. Immunol. 116, 1020-1027, 2005)を参考に実施した。経口投与開始から2週経過後の6週齢、ならびに8週齢において20μgの卵白アルブミン(OVA、Sigma社製)と2.25mgのAlumアジュバント(LSL社製)の懸濁液100μlをマウスの腹腔内に2回免疫投与した。追加免疫2週後の10週齢から25mg/mlのOVA-リン酸緩衝生理食塩水溶液(PBS)をマウスの両鼻腔内に10μlずつ合計20μl/head滴下し、経鼻感作を行った。なお経鼻感作は毎日1回無麻酔下にて合計9回実施した(図1)。感作対照として腹腔内免疫あるいは経鼻感作をPBSにて行う群を設けた。経口投与試料と感作抗原の組み合わせから、試験群として図1に示す通り、4つの対照群を含む計7群(各6匹)を設定した。
最後の点鼻感作(9回目)の翌日に採血を行い、血漿サンプルを得た。血漿中の総IgE抗体、IgG1抗体、IgG2a抗体量をBD Bioscience社製のモノクローナル抗体試薬および同社のプロトコールに準拠した酵素抗体法(サンドイッチELISA法)にて定量した。その際、増感酵素としてアルカリフォスファターゼ標識ストレプトアビジン(Zymed社製)、酵素反応の基質としてAttoPhos Substrate(Promega社製)を用い、生じた蛍光シグナルをArvo Multilabel Counter(PerkinElmer Japan社製)にて分析した。OVA特異的IgE抗体価、IgG1抗体価、IgG2a抗体価の分析についてはBD Bioscience社製のモノクローナル抗体試薬を用いたOnishiらのELISA法(Onishi et al. Biosci. Biotechnol. Biochem. 71, 2551-2556, 2007)に従って実施した。
本試験における全ての統計学的解析はStudentのt検定によってなされ、P<0.05の場合を有意差ありと判断した。
2-1.乳酸発酵酒粕投与によるアレルギー性鼻炎症状の抑制
各群におけるOVA点鼻に伴うくしゃみの進展を定量化したところ、本実施例に係る乳酸発酵酒粕投与の試験群(OVA免疫/OVA点鼻)におけるくしゃみ回数(投与3回目および5-7回目)が対照の水投与群(OVA免疫/OVA点鼻)と比較して有意に低下していることが判明した(図2、*印)。また乳酸発酵を施していない酒粕対照群(OVA免疫/OVA点鼻)のくしゃみ回数は水対照のそれと同等であった。また各感作対照群のくしゃみ回数は試験期間を通じていずれも低値であり、本鼻炎モデルが妥当に設定されていること、更に各投与試料そのものが本モデルに影響を及ぼしていないことが裏付けられた。
各群におけるIgE抗体を中心とした抗体産生を比較解析した。まず血中の総IgE抗体量を調べたところ、鼻炎抑制作用を示した乳酸発酵酒粕群のIgE抗体レベルは対照群のそれと同等であった(図3)。また総IgG1レベルについても同様に有意な差異は認められなかった。IgG2aレベルは感作対照群を含めた全ての群で同等であった。続いてOVA特異的抗体価への影響を調査したところ、IgE抗体価のみならずIgG1、IgG2a抗体価のいずれも本実施例に係る乳酸発酵酒粕群と対照群との間に差異は観察されなかった(図4)。
1-1.実験方法
(1) ラット肥満細胞株の感作
ラット肥満細胞株RBL-2H3(ヒューマンサイエンス研究資源バンク)を血球計算盤で計数し、10%ウシ子牛血清(FCS)含有Minimum Essential Medium Eagle培地(MEM, Sigma社製)で3.5×105 cells/mlに調整した。24 ウェル平底マイクロプレートにRBL-2H3の細胞浮遊液を500 μl (1.75×105 cells/well)ずつ播種し、37℃、5%CO2 インキュベータで、8時間(一晩)前培養した後、培養上清を6 ウェルずつ静かに素早くピペットマンで吸引し、培養上清中の細胞にあらかじめ加温しておいた10 μg/mlマウス抗DNP-IgE(生化学バイオビジネス社製)を500 μl/ell添加し、5 %CO2、37℃で、16時間(一晩)培養することにより細胞を感作させた。
上清を吸引し、加温したSiraganian buffer(119 mM NaCl, 5 mM KCl, 0.4 mM MgCl2, 25 mM piperazine-N,N’-bis(2-ethanesulfonic acid)(PIPES), 40 mM NaOH, pH 7.2) 500μlで感作した細胞を2回洗浄した後に、10倍濃度のSiraganian buffer (終濃度で5.6 mMグルコース、1 mM CaCl2、0.1%BSA含有)を1/10用量添加した乳酸発酵酒粕および対照酒粕サンプル(あるいは各当該希釈サンプル)を200 μl添加し、37℃、5%CO2、30分インキュベートした。
その後、DNP-BSA抗原 (コスモバイオ社製、終濃度4.0 μg/ml)を20 μl/well添加し、5%CO2、37℃、30分インキュベートして細胞を刺激後、10分氷冷して反応を止めた。
上清に遊離したβ-hexosaminidase活性を測定するため、上清を96 ウェル平底マイクロプレートに2点ずつ50 μl/well添加し、さらに0.1 M citrate buffer(pH 4.5)に溶解した1 mM 4-Nitrophenyl N-acetyl-β-D-glucosaminide(Sigma社製)を50 μl/wellずつ8連ピペットマンで素早く添加して混和後、37℃で30 min反応させた。反応溶液に100 μlのStop buffer (0.1M NaHCO3/Na2CO3,pH10.0) を添加し、反応を停止させた。マイクロプレートリーダーにて吸光度を405 nmで測定した。遊離率は次式により求めた。
量−自然遊離量)/(細胞内全β-hexosaminidase量−自然遊離量)}×100
各サンプルの脱顆粒反応を上清中へのβ-hexosaminidaseの遊離を指標として評価した結果を図5に示す。この図5から、次の(ア),(イ)の点が結論される。
Claims (5)
- 通常仕込みの清酒の醸造により得られる酒粕を乳酸菌により発酵せしめて成り、IgE抗体の産生を抑制せずに1型アレルギーを抑制するとともに、IgG抗体の産生も抑制しないものであることを特徴とする抗アレルギー機能を有する飲食品。
- 請求項1記載の抗アレルギー機能を有する飲食品において、前記乳酸菌はラクトバチルス パラカゼイ(Lactobacillus paracasei)に属する乳酸菌の「ラクトバチルス パラカゼイ NPSRIk-4(Lactobacillus paracasei NPSRIk-4)」株、若しくはラクトバチルス ブレビス(Lactobacillus brevis)に属する乳酸菌の「ラクトバチルス ブレビス NPSRIv-8(Lactobacillus brevis NPSRIv-8)」株であることを特徴とする抗アレルギー機能を有する飲食品。
- 請求項1,2いずれか1項に記載の抗アレルギー機能を有する飲食品において、前記酒粕は、大吟醸酒の醸造により得られる酒粕であることを特徴とする抗アレルギー機能を有する飲食品。
- 通常仕込みの清酒の醸造により得られる酒粕を乳酸菌により発酵させ、IgE抗体の産生を抑制せずに1型アレルギーを抑制するとともに、IgG抗体の産生を抑制しない抗アレルギー機能を有する飲食品を製造することを特徴とする抗アレルギー機能を有する飲食品の製造方法。
- 請求項4記載の抗アレルギー機能を有する飲食品の製造方法であって、前記乳酸菌はラクトバチルス パラカゼイ(Lactobacillus paracasei)に属する乳酸菌の「ラクトバチルス パラカゼイ NPSRIk-4(Lactobacillus paracasei NPSRIk-4)」株、若しくはラクトバチルス ブレビス(Lactobacillus brevis)に属する乳酸菌の「ラクトバチルス ブレビス NPSRIv-8(Lactobacillus brevis NPSRIv-8)」株であることを特徴とする抗アレルギー機能を有する飲食品の製造方法。
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