JP5443156B2 - 前立腺癌を判定する方法 - Google Patents

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Description

本発明は、前立腺癌を判定する新規な方法に関する。より詳細には、本発明は、前立腺特異抗原（ＰＳＡ）の糖鎖構造の差異に基づき、前立腺癌を判定する新規な方法に関する。
前立腺癌（ｐｒｏｓｔａｔｅ ｃａｒｃｉｎｏｍａ：以下「ＰＣ」と称する）は男性の主要な死亡原因の１つである。前立腺特異抗原（ｐｒｏｓｔａｔｅ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｇｅｎ：以下「ＰＳＡ」と称する）は、ＰＣに対する主な腫瘍マーカーとして認識されている（たとえば、非特許文献１参照）。ＰＳＡは、約２６ｋＤａの分子量を有する２３７個のアミノ酸残基からなるタンパク部分と、該タンパク部分の４５番目のアミノ酸残基（アスパラギン）に結合した糖鎖部分とから構成される約３０ｋＤａの分子量を有する糖タンパク質またはその誘導体である。
ＰＣの初期診断に対する血清ＰＳＡ濃度試験の有用性は既に多くの文献に記載されているが、血清ＰＳＡ濃度４ｎｇ／ｍＬ〜１０ｎｇ／ｍＬはグレーゾーン（ｇｒａｙ ｚｏｎｅ）と呼ばれ、ＰＣに罹患しているとは断定できない濃度領域である（たとえば、非特許文献２参照）。この問題を解決するために、これまでにいくつかの試み（たとえば、ＰＳＡ密度、ＰＳＡ勾配（年間増加度）、遊離ＰＳＡ／全ＰＳＡの比などによる判定）が実施されてきたが、確定的な診断手法は未だ確立されていない。
最近、コンカナバリンＡ、植物凝集素Ｅ４（ＰＨＡ−Ｅ４）およびＰＨＡ−Ｌ４を組み合わせた連続的レクチンアフィニティークロマトグラフィー法による研究において、ＰＳＡのアスパラギンに結合する糖鎖の構造が、ＰＣ組織と前立腺肥大症組織（あるいは正常組織）との間で相違するという結果が報告された（非特許文献３参照）。この非特許文献３には、ＰＳＡ中のＮ−結合糖鎖がヒト前立腺における癌化の過程で変化すること、および、ＰＳＡ中のＮ−結合糖鎖がＰＣの診断ツールとして役立つ可能性があることが記載されている。
一方、ＰＳＡの構造を検出することによって、ＰＣと良性前立腺肥大症（ｂｅｎｉｇｎ ｐｒｏｓｔａｔｉｃ ｈｙｐｅｒｐｌａｓｉａ：以下「ＢＰＨ」と称する）とを判別する方法として、ＰＳＡの糖鎖に結合する結合分子を用いるいくつかの免疫学的方法が提案されてきている。たとえば、ＰＳＡをレクチンと接触させ、ＰＳＡの糖鎖とレクチンとの親和性に基づいて分別されたＰＳＡを測定することによって、ＰＣとＢＰＨとを判定する方法が報告されている（特許文献１参照）。この報告において、ＰＳＡの糖鎖とレクチン（イヌエンジュ（Ｍａａｃｋｉａ ａｍｕｒｅｎｓｉｓ）レクチンなど）との親和性の差異は、糖鎖末端に付加するシアル酸の配向に基づくと記載されている。しかしながら、ＰＣに罹患した被験者のＰＳＡ糖鎖の具体的構造を決定してはいない。
また、ＰＳＡ中に少なくとも三分岐の糖鎖が存在するかどうかに基づいてＰＣを判定する方法が報告されている（特許文献２参照）。この方法においては、少なくとも三分岐の糖鎖に結合するが、一分岐および二分岐の糖鎖とは結合しない結合分子を用いる。用いることができる結合分子は、レクチン（ＰＨＡ−Ｌなど）や抗体を含む。しかしながら、この報告には三分岐の糖鎖にＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）が存在（付加）する構造は示されていない。
さらに、ＰＳＡ中のＮ−アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）の含有量に注目した報告がなされている（非特許文献４参照）。該報告は、ＰＳＡ糖鎖の構造を詳細に検証し、精漿由来ＰＳＡ糖鎖におけるＧａｌＮＡｃ含有量が２５％であるのに対し、前立腺癌細胞株（ＬＮＣａＰ）のＰＳＡ糖鎖にはＧａｌＮＡｃが６５％程度含まれることを記載している。この著者らは膵ガン由来細胞株（Ｃａｐａｎ−１）においても同様の変化を観察しており（非特許文献５参照）、そこからＧａｌＮＡｃの含有量変化は癌性変異に起因するものであると類推している。
また、特異的抗体と多数のレクチンからなるアレイを用いてＰＳＡを含む対象タンパク質の糖鎖を網羅的に解析する手法が報告されている（非特許文献６参照）。この方法において、前立腺癌細胞株に由来するＰＳＡの糖鎖構造上の非還元末端にはＬａｃｄｉＮＡｃ構造（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン構造）が多く存在することが明らかにされている。しかしながら、ＰＣに罹患した被験者のＰＳＡ糖鎖を対象にはしていない。
関連して、ＬａｃｄｉＮＡｃ構造を癌細胞に特異的に発現されるオリゴ糖配列であると開示し、生物学的試料中に検出されるその存在を指標に癌の検出を行なう方法について特許出願がなされている（特許文献３参照）。しかしながらその検出に関する具体的な手法は記載されておらず、更にはＰＣの判定を対象にしていない。
あるいはまた、ＰＳＡを含む標的糖タンパク質の糖鎖の糖プロファイルを決定することにより、被験者の臨床状態を評価する方法が提案されている（特許文献４参照）。該文献は、ＭＡＬＤＩ−ＭＳ法を用いた解析において、ＰＣに罹患した被験者のＰＳＡ糖鎖が、正常なＰＳＡ糖鎖とは異なることを記載している。しかしながら、ＰＣに罹患した被験者のＰＳＡ糖鎖の具体的構造を記載していない。
上記のように、ＰＳＡ糖鎖構造が疾患により変化するという事象は多数報告されているが、ＰＣ患者においてＰＳＡ糖鎖の網羅的な解析が成された例は未だ少なく、更には具体的な糖鎖構造に基づいてＰＣを判定することはこれまでなされていない。
特開２００２−０５５１０８号公報 特表２０００−５１４９１９号公報 特表２００５−５０００５７号公報 特表２００６−５１５９２７号公報
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したがって、本発明の課題は、ＰＣに罹患した被験者のＰＳＡ糖鎖を検出し、ＰＳＡの糖鎖構造に基づいてＰＣを的確に判定する方法を提供することである。
本発明者らは、ＰＣに罹患した被験者のＰＳＡ糖鎖において、ＬａｃｄｉＮＡｃ構造を有する３本鎖の糖鎖が存在することを世界で初めて発見したことに基づき、その存在を指標にして前立腺癌を判定できることを見出して、本発明を完成した。
すなわち、本発明は以下の方法である。
［１］
被験者由来の試料中のＰＳＡの糖鎖構造を分析する工程を含み、ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）を有する３本鎖以上の糖鎖が存在するときに前立腺癌であると判定することを特徴とする前立腺癌を判定する方法。
［２］
上記ＰＳＡの糖鎖構造の分析を、上記ＰＳＡに対してレクチンを作用させる方法、上記ＰＳＡに対して抗体を作用させる方法、高速液体クロマトグラフィー法もしくは質量分析法、またはこれらを組み合わせた分析手段により行うことを特徴とする［１］に記載の前立腺癌を判定する方法。
［３］
（１）被験者由来の試料からＰＳＡを精製する工程と、
（２）工程（１）で精製したＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製する工程と、
（３）工程（２）で得られたＰＳＡ誘導体を標識する工程と、
（４）工程（３）で得られた標識化ＰＳＡ誘導体を質量分析法により分析する工程を含み、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖が存在するときに前立腺癌であると判定することを特徴とする［２］に記載の前立腺癌を判定する方法。
［４］
上記工程（２）において調製されるＰＳＡ誘導体が、ＰＳＡ由来の糖鎖であることを特徴とする［３］に記載の前立腺癌を判定する方法。
［５］
上記工程（２）において調製されるＰＳＡ誘導体が、ＰＳＡ由来の糖ペプチドであることを特徴とする［３］に記載の前立腺癌を判定する方法。
［６］
上記工程（１）で精製されたＰＳＡに対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該ＰＳＡの中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡを除去し、ＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡを得る工程を含み、上記工程（２）においては、該工程で得られたＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製することを特徴とする［３］に記載の前立腺癌を判定する方法。
［７］
上記工程（２）で調製されたＰＳＡ誘導体に対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該誘導体の中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を除去し、ＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を得る工程を含み、上記工程（３）においては、該工程で得られたＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を標識することを特徴とする［３］に記載の前立腺癌を判定する方法。
［８］
下記式（１）で表される糖ペプチドを有することを特徴とする単離されたＰＳＡ。
Figure 0005443156
 ［式（１）中、Ｇａｌはガラクトース、Ｍａｎはマンノース、Ｆｕｃはフコース、ＧａｌＮＡｃはＮ−アセチルガラクトサミン、ＧｌｃＮＡｃはＮ−アセチルグルコサミンを示す。括弧は３ヶ所の非還元末端の何れかに結合していることを示す。「ＧａｌＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ−」又は「Ｇａｌ−ＧｌｃＮＡｃ−」を含む残基は、Ｍａｎα１−６Ｍａｎ側にあっても、Ｍａｎα１−３側にあってもよく、Ｍａｎへの結合様式は、β１−２、β１−４又はβ１−６の何れであってもよい。「Ｐｅｐｔｉｄｅ」とは、ＩＲＮＫＳ（Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ｓｅｒ）であり、ＧｌｃＮＡｃはＮに結合している。］
本発明によれば、上記問題点と課題を解決し、前立腺特異抗原（ＰＳＡ）の糖鎖構造を検出し、その構造の差異を基に、前立腺癌であるか否かを的確に判定する方法を提供できる。更には、前立腺癌（ＰＣ）であるか良性前立腺肥大症（ＢＰＨ）であるかを的確に判定する方法を提供できる。
すなわち、現行のＰＣのスクリーニングに汎用されている血清中のＰＳＡ濃度を測定する方法において、高いＰＳＡ値（例えば、４ｎｇ／ｍＬ以上）を示し、苦痛な２次検査である針生検を受けていた被験者についても、本発明を適用することによって不必要な検査を回避することができる。
また、血清中などのＰＳＡ濃度は年齢とともに上昇する傾向があることが知られている。よって、特に、今後の高齢化社会において、高濃度のＰＳＡを示した被験者の中から、高精度でＰＣであるか否かを判定する本発明手法は、医学的な貢献のみならず、医療経済にも良好な効果を奏することが期待される。
更には、ＰＳＡ濃度が正常とほぼ同レベルの被験者についても、そのＰＳＡ糖鎖に含まれる、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖を検出することで、ＰＣを高精度で識別判定することも可能であり、ＰＣに罹患した人を見逃すことを回避することができる。
実施例１で得られたポジティブイオンＭＳスペクトルを示す図である。 実施例１において、ｍ／ｚ ２７９２で得られたシグナルＰ１をプリカーサーイオンとして得られるポジティブイオンＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 実施例２で得られたポジティブイオンＭＳスペクトルを示す図である。
以下、本発明について説明するが、本発明は以下の実施の具体的態様に限定されるものではなく、任意に変形して実施することができる。
本発明のＰＣを判定する方法においては、被験者がＰＣであるか否かを判定する方法であり、「被験者由来の試料」に含有されるＰＳＡの糖鎖構造を分析する工程を有しており、その工程において、ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）を有する３本鎖以上の糖鎖が存在するか否かを確認する。そして、かかる「ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）を少なくとも１本は有する３本鎖以上の糖鎖」が存在するときに、その被験者を前立腺癌であると判定する。
本発明において、「ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）」とは、糖鎖の末端に位置する、下記式（ａ）で表される化学構造である。
ＧａｌＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ− （ａ）
［式（ａ）中、「Ｇａｌ」はガラクトースを示し、「Ｇｌｃ」はグルコースを示し、「Ａｃ」はアセチル基を示し、「ＮＡｃ」で、グルコサミン又はガラクトサミンのＮ（窒素原子）にアセチル基が結合していることを示す。］
本発明においては、「Ｇａｌ−Ｇｌｃ」が、Ｌａｃ（ラクトース）であることから、式（ａ）で表される化学構造を、「ＬａｃｄｉＮＡｃ」と略記することがある。
また、「ＬａｃｄｉＮＡｃを有する糖鎖」には、「ＬａｃｄｉＮＡｃ」に、シアル酸、フコースなどの別の化学構造が結合している場合も含まれる。被験者由来の試料中のＰＳＡの糖鎖には、シアル酸、フコースなどの別の化学構造が結合している場合があり、糖鎖構造を分析する工程では、それらは除く場合がある。
「３本鎖以上の糖鎖が存在する」とは、ＰＳＡはタンパク部分と糖鎖部分とから構成されるが、その糖鎖部分の末端において、少なくとも３本以上が上記式（ａ）又は下記式（ｂ）で表される化学構造になっていることをいう。なお、下記化学構造にシアル酸、フコースなどの別の化学構造が結合している場合も含まれる。
Ｇａｌ−ＧｌｃＮＡｃ− （ｂ）
［式（ｂ）中、「Ｇａｌ」はガラクトースを示し、「Ｇｌｃ」はグルコースを示し、「Ａｃ」はアセチル基を示し、「ＧｌｃＮＡｃ」で、グルコサミンのＮ（窒素原子）にアセチル基が結合していることを示す。］
本発明は、被験者由来の試料中のＰＳＡの糖鎖構造を分析する工程を含み、該ＰＳＡの糖鎖の末端が、３本以上の「ＧａｌＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ−」又は「Ｇａｌ−ＧｌｃＮＡｃ−」を含む残基で構成されており、かつ、そのうちの１本以上が「ＧａｌＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ−」を含む残基であるときに前立腺癌であると判定することを特徴とする前立腺癌を判定する方法、でもある。被験者由来の試料中のＰＳＡの糖鎖は、上記したように、シアル酸、フコース等で修飾されている場合があり、分析工程ではそれらを除く場合があるので、上記したように広く「残基」とし、その場合も本発明に含まれることを明らかにした。
本発明では、末端に式（ａ）又は式（ｂ）で表される構造を含む３本鎖以上の糖鎖が存在し、かつ、そのうちの１本鎖以上が、上記式（ａ）で表される化学構造を含んでいるＰＳＡが存在するときにＰＣと判定する。例えば、３本鎖の糖鎖が存在する場合、そのうちの１本鎖のみが上記式（ａ）で表される化学構造を含んでいる場合にＰＣと判定し、２本鎖が上記式（ａ）で表される化学構造を含んでいる場合もＰＣと判定し、３本鎖の全てが上記式（ａ）で表される化学構造を含んでいる場合もＰＣと判定する。また、例えば、４本鎖の糖鎖が存在する場合、１本、２本、３本又は４本が（すなわち１本以上が）、上記式（ａ）で表される化学構造を含んでいる場合、ＰＣと判定する。それ以上の糖鎖の場合も同様である。「ＧａｌＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ−」又は「Ｇａｌ−ＧｌｃＮＡｃ−」を含む残基は、Ｍａｎα１−６Ｍａｎ側にあっても、Ｍａｎα１−３側にあってもよく、更に、Ｍａｎへの結合様式は、β１−２、β１−４又はβ１−６の何れであってもよい。
本発明において用いられる「被験者由来の試料」は、血液（血清、血漿などを含む）、尿、精液（精漿）などの体液；細胞・組織；などである。
本発明の前立腺癌を判定する方法では、上記ＰＳＡの糖鎖構造の分析を、
＊上記ＰＳＡに対してレクチンを作用させる方法、
＊上記ＰＳＡに対して抗体を作用させる方法、
＊高速液体クロマトグラフィー法、もしくは、
＊質量分析法、
または、
＊これらを組み合わせた分析手段
により行うことが好ましい。
すなわち、本発明に係るＰＣの判定方法は、被験者由来の試料中のＰＳＡを、レクチン、抗体といった特異的結合分子を用いる方法によって、高速液体クロマトグラフィーによって、質量分析法によって、または、それらの組み合わせにより分析することによって、それらの工程において、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖構造を被験者のＰＳＡに検出した際に、その被験者を前立腺癌（ＰＣ）であると判定することが好ましい。
中でもより好ましくは、質量分析法によって、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖構造を検出した際にＰＣであると判定する方法である。
質量分析法においても、特に好ましい本発明に係るＰＣの判定方法は、質量分析法により分析する工程において、
（１）被験者由来の試料からＰＳＡを精製する工程と、
（２）工程（１）で精製したＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製する工程と、
（３）工程（２）で得られたＰＳＡ誘導体を標識する工程と、
（４）工程（３）で得られた標識化ＰＳＡ誘導体を質量分析法により分析する工程と、
を含み、
ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）を有する３本鎖以上の糖鎖が存在するときに、すなわちＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖を検出したときに、前立腺癌であると判定する方法である。
工程（１）において、被験者由来の試料からＰＳＡを精製する。工程（１）は、当該技術において知られている任意の方法で実施することができる。
あるいは、工程（１）において被験者由来の血清を試料として用いる場合、数種のアフィニティークロマトグラフィーを組み合わせた方法を用いることができる。たとえば、被験者由来の血清に対して、親イオウ吸着に基づくアフィニティー担体であるフラクトゲル（Ｆｒａｃｔｏｇｅｌ）（登録商標）ＥＭＤ ＴＡ）やＣｉｂａｃｒｏｎ Ｂｌｕｅ ３ＧＡなど、あるいは、プロテインＡセファロースＣＬ−４Ｂ、ＨｉＴｒａｐヘパリンカラムＨＰＬＣなどを行う（非特許文献７参照）。その溶離液をエタノールアミンで処理して、遊離のＰＳＡを得る。得られたＰＳＡを前述の免疫沈降法を用いて処理し、ＰＳＡ誘導体を得る。前述の文献によれば、得られたＰＳＡ誘導体の解析を行うために、被験者由来の試料中に約６３μｇのＰＳＡが必要であった。
さらに、工程（１）における試料として被験者由来の血清以外を用いる場合、１工程の親イオウ吸着に基づく親和性担体を用いて、ＰＳＡの精製を実施することができる（非特許文献８参照）。たとえば、３Ｓ，Ｔ−ｇｅｌスラリー（フラクトゲル（登録商標）ＥＭＤ ＴＡ）を用いるクロマトグラフィーによって、ヒト精液、前立腺癌患者の血清、前立腺癌細胞（ＬＮＣａＰ）培養液の上清からＰＳＡを精製し、ウェスタンブロット法を用いて、ＰＳＡ単体またはα１−アンチキモトリプシン（ＡＣＴ）などとの複合体を同定することができる。
あるいはまた、被験者由来の精液を試料として用いる場合、親イオウ吸着に基づくアフィニティークロマトグラフィーとゲル濾過を組み合わせることによって、ＰＳＡを精製してもよい（非特許文献８参照）。たとえば、フラクトゲル（登録商標）ＴＡ ６５０（Ｓ）と、ゲル濾過担体であるＵｌｔｒｏｇｅｌ ＡｃＡ−５４とを組み合わせることができる。この組み合わせ方法では、遊離のＰＳＡを７２％の収率で回収することができた。
あるいはまた、工程（１）における試料として被験者由来の精液を用いる場合、以下の方法を用いてＰＳＡの精製を行うことができる（非特許文献９および１０参照）。たとえば、硫酸アンモニウムの添加による沈殿、疎水性相互作用クロマトグラフィー（Ｐｈｅｎｙｌ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ−ＨＰカラム）、ゲル濾過（Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ Ｓ−２００カラム）、およびアニオン交換クロマトグラフィー（Ｒｅｓｏｕｒｓｅ Ｑカラム）を順次行うことによって、ＰＳＡを精製することができる。この方法において、試料中に３３．９ｍｇのＰＳＡが含まれる場合、最終的なＰＳＡの回収率が３０．１％であったことが報告されている。
さらに、工程（１）における試料として被験者由来のアンドロゲン依存性のＬＮＣａＰを用いる場合、限外濾過と各種クロマトグラフィーとを組み合わせた方法によって、ＰＳＡを精製することができる（非特許文献５参照）。たとえば、適切な手段で培養したＬＮＣａＰを含む培養液の限外濾過（５ｋＤａカットオフ・ポリスルホン膜（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ））、アフィニティークロマトグラフィー（Ｃｉｂａｃｒｏｎ Ｂｌｕｅ ３ＧＡ）、ゲル濾過（Ｂｉｏｇｅｌ Ｐ６０）、アフィニティークロマトグラフィー（Ｃｉｂａｃｒｏｎ Ｂｌｕｅ ３ＧＡ）、および逆相クロマトグラフィー（２１４ＴＰ−ＲＰ Ｃ４、ＨＰＬＣ使用）を順次行うことによって、ＰＳＡを精製することができる。
次いで、工程（２）において、精製されたＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製する。本発明における「ＰＳＡ誘導体」とは、ＰＳＡ由来の糖鎖または糖ペプチドを意味し、具体的には、ＰＳＡから分離される糖鎖または糖ペプチドを意味する。たとえば、ＰＳＡに対して、エンドプロテアーゼ（サーモリシン、エンドプロテイナーゼＡｒｇ−Ｃ、エンドプロテイナーゼＬｙｓ−Ｃ、トリプシン、キモトリプシン、ペプシン、プロリン特異的エンドペプチダーゼ、プロテアーゼＶ８、プロテイナーゼＫ、アミノペプチダーゼＭ，カルボキシペプチダーゼＢなど）またはペプチド結合開裂剤を作用させて糖ペプチドを形成し、糖ペプチドを工程（３）で使用してもよい。
別法として、ＰＳＡを酵素的に処理して遊離の糖鎖を形成してもよい。あるいはまた、ＰＳＡから誘導された前述の糖ペプチドを酵素的に処理して遊離の糖鎖を形成してもよい。このようにして得られた糖鎖を工程（３）で使用してもよい。この酵素的処理においては、たとえば、ペプチドＮ−グリカナーゼ（ＰＮＧａｓｅ Ｆ、ＰＮＧａｓｅ Ａ）、エンドグリコシダーゼ（ＥｎｄｏＨ， ＥｎｄｏＦ）、および／または１つまたは複数のプロテアーゼ（トリプシン、エンドプロテイナーゼＬｙｓ−Ｃなど）を用いることができる。あるいはまた、ＰＳＡまたはＰＳＡから誘導された糖ペプチドを化学的手段（無水ヒドラジンによる分解、還元的または非還元的β−脱離など）を用いて処理して、遊離の糖鎖を形成してもよい。このようにして得られる遊離の糖鎖を、以下の工程（３）で使用してもよい。また、シアリダーゼ処理または酸加水分解を行なってシアル酸を除去した糖鎖または糖ペプチドを用いてもよい。
また、工程（１）の最終段階で電気泳動を行い、ＰＳＡのバンドを切り出した場合、切り出したバンドに対して上記の反応剤を作用させてゲル内消化を行い、糖ペプチドおよび／または糖鎖を生成してもよい。
工程（３）において、ＰＳＡ誘導体を標識する。標識化合物としては、ナフタレン、アントラセン、ピレンなどの縮合多環炭化水素部分と、分析対象の分子と結合することが可能である反応性官能基と、必要に応じて該縮合多環炭化水素部分と該反応性官能基とを連結するスペーサー部分とを有する化合物を用いることができる。
縮合多環炭化水素部分は、好ましくはピレンである。反応性官能基は、シアル酸のカルボキシ基または糖の還元末端との反応性を有し、たとえばジアゾメチル基、アミノ基、ヒドラジド基などを含む。スペーサー部分は、たとえば直鎖または分岐状のアルキレン基などを含む。本発明において用いることができる標識化合物は、１−ピレニルジアゾメタン（ＰＤＡＭ）、１−ピレンブタン酸ヒドラジド（ＰＢＨ）、１−ピレン酢酸ヒドラジド、１−ピレンプロピオン酸ヒドラジド、アミノピレン（構造異性体を含む）、１−ピレンメチルアミン、１−ピレンプロピルアミン、１−ピレンブチルアミンなどを含む。最も好ましく用いられる標識化合物は、ＰＤＡＭである。
工程（３）は、ＰＳＡ誘導体および標識化合物を混合し、加熱することによって行うことができる。加熱は、たとえば４０〜８０℃の範囲内の温度で実施することができる。任意選択的に、水溶性カルボジイミドまたはＮ−ヒドロキシスクシンイミドなどの促進剤の存在下で、標識を行ってもよい。より好適には、ＭＡＬＤＩ法にて用いられるターゲットプレート上にＰＳＡ誘導体の溶液を滴下して乾燥させ、その上に標識化合物の溶液を滴下して加熱乾燥させることによって、標識を実施することができる。
本発明は、標識されたＰＳＡ誘導体を質量分析法により分析する方法に関する。以下、「質量分析法による分析」を「ＭＳ分析」と略記することがある。工程（４）のＭＳ分析において用いることができるイオン化部は、マトリクス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）型、またはエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）型の装置を含む。
本発明においては、ピレンなどの縮合多環炭化水素基を結合することによって、ＭＡＬＤＩ法における標識されたＰＳＡ誘導体のイオン化効率が、未標識のＰＳＡ誘導体と比較して向上する。また、本発明の標識されたＰＳＡ誘導体は、ＥＳＩ法の適用がより容易である。なぜなら、ＰＳＡ誘導体は親水性が高く、ＥＳＩ法に用いる試料の有機溶液を得るのが困難であるのに比較して、本発明の標識されたＰＳＡ誘導体は、縮合多環炭化水素基の導入によって有機溶媒に可溶性となっているためである。
工程（４）のＭＳ分析において用いることができる分離部は、飛行時間型（ＴＯＦ型）、二重収束型、四重極収束型などの当該技術において知られている任意の装置を含む。特に、ＭＳｎ（ｎ≧２）分析を行うことを考慮して、イオントラップを有する装置を用いることが便利である。特に好適な装置は、四重極イオントラップ−飛行時間型（ＱＩＴ−ＴＯＦ）である。ここで、飛行時間型装置として、リニア型、リフレクトロン型または周回型のいずれの装置を用いてもよい。
次いで、得られたＭＳスペクトルにおいて、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖構造に起因するシグナルを探索し、その検出が確認された際に前立腺癌であると判定する。
本工程において得られるＭＳスペクトルにおいて、標識化合物、シアル酸、ガラクトース、フコース、ＧｌｃＮＡｃといった一部の糖が質量分析装置中で脱離したシグナルで該糖鎖を選定し、上記の判定手順を実施してもよい。
ＣｏｎＡ（Ｃｏｎｃａｎａｖａｌｉｎ Ａ（コンカナバリンＡレクチン））は、Ｃ−３、Ｃ−４およびＣ−６位の水酸基が未置換であるａｌｐｈａ−Ｄ−マンノースを２残基以上含む構造に特異性を有する。よって、Ｎ−結合型糖鎖においては、マンノースの６位と３位に他のマンノースが結合した母核構造（トリマンノシルコア）を認識し、高マンノース型糖鎖、混成型糖鎖、および二本鎖糖鎖に結合能を有するが、３本鎖や４本鎖といった多分岐複合型糖鎖への結合能は弱く、更にマンノースにβ１−４で結合したＧｌｃＮＡｃの存在で著しくその結合が阻害される（非特許文献１１）。
従って、本発明の更に好ましい態様は、上記工程（２）で調製されたＰＳＡ誘導体に対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該誘導体の中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を除去し、ＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を得る工程を含み、上記工程（３）においては、該工程で得られたＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を標識することを特徴とする上記の前立腺癌を判定する方法である。
すなわち、ＰＳＡ誘導体を工程（２）の後にＣｏｎＡに供し、結合しない画分について工程（３）以降を実施することは、ＰＳＡ誘導体中に含まれる主たる糖鎖構造を排除し、ＬａｃｄｉＮＡｃ構造を有する３本鎖以上の糖鎖が検出しやすくなるという利点がある。
また、同様の観点から、工程（２）でＰＳＡ誘導体を調製する前に、ＰＳＡに対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該ＰＳＡの中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡを除去し、その後、誘導体化することも好ましい。
従って、本発明の更に好ましい態様は、上記工程（１）で精製されたＰＳＡに対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該ＰＳＡの中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡを除去し、ＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡを得る工程を含み、上記工程（２）においては、該工程で得られたＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製することを特徴とする上記の前立腺癌を判定する方法である。
すなわち、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）の接触は、工程（１）と工程（２）の間に行ってもよいし、工程（２）と工程（３）の間に行ってもよい。
通常、レクチンを使用する際は、結合する糖鎖に着目するのが一般的であるため、結合しない糖鎖に着目してレクチンを使用する上記方法は極めて特徴的であり、当業者が容易に想到できるものではないと考えられる。
本発明は、上記したように、被験者由来の試料中のＰＳＡの糖鎖構造を質量分析法により分析する前立腺癌の判定方法であると共に、上記のＰＳＡの糖鎖構造の分析を、上記のＰＳＡに対してレクチンを作用させる方法、上記のＰＳＡに対して抗体を作用させる方法、高速液体クロマトグラフィー法もしくは上記した質量分析法、またはこれらを組み合わせた分析手段により行う前立腺癌の判定方法でもある。
被験者由来の試料に含まれるＰＳＡをそのまま測定してもよいし、ＰＳＡを抽出や精製してから測定してもよい。試料に含まれるＰＳＡや抽出や精製されたＰＳＡなどは、アンチキモトリプシンなどと複合体を形成している場合も遊離の場合もあるが、それらの混合物のままの場合、複合体と遊離体を分離する場合、複合体を遊離体にする場合などがある。さらに、それらのＰＳＡからＰＳＡ誘導体として糖鎖や糖ペプチドなどを調製してもよい。
本発明はＰＳＡの分析手段として高速液体クロマトグラフィー（「ＨＰＬＣ」と略記する場合がある）を用いる方法に関する。例えば、Ａｍｉｄｅカラムなどに代表される順相ＨＰＬＣにより検出対象の分子量に依存した分離、あるいはＯＤＳカラムなどに代表される逆相ＨＰＬＣにより検出対象の構成糖鎖配向に依存した分離を行なう。分析で得られるクロマトグラム中にＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖構造に起因するシグナルを検出することにより判定を行う。検出には任意の吸光波長、あるいは選択した標識化合物に特定の蛍光波長を用いることができる。
あるいは、本発明はＰＳＡに対して特異的結合分子を作用させ、その組み合わせによる分析手法を用いる方法に関する。特異的結合分子は、数種のレクチン、抗体およびそれらの断片を含む。例えば、ＥＬＩＳＡプレート、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜、ガラスあるいはシリコン製アレイチップに固相化した検出対象に特異的結合分子を反応させ、対象物を検出する。
検出にはアルカリフォスファターゼやホースラデッシュペルオキシダーゼといった酵素を結合させたレクチンや抗体を用い、酵素反応を介してブロモクロロインドリル燐酸（ＢＣＩＰ）またはニトロブルーテトラゾリウム（ＮＢＴ）を用いた化学発色、あるいはルミノール試薬を用いた化学発光を用いることができ、あるいはまた、表面プラズモン共鳴を用いることができる。関連して、固相化した特異的結合分子に対して該検出対象を結合させ、そこに別種のレクチン、または抗体を反応させて一連の検出を行うことができる。本発明では、「特異的抗体」を単に「抗体」と、「特異的レクチン」を単に「レクチン」と略記する場合がある。
特異的結合分子としてレクチンを用いる場合、例えば非還元末端ＧａｌＮＡｃを認識するＷＦＡレクチン（Ｗｉｓｔｅｒｉａ ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａ ａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ）をＰＳＡに作用させることでＬａｃｄｉＮＡｃ糖鎖を検出することができる。特異的結合分子として抗体を使用する際、ＰＳＡに対する抗体は市販のポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体を使用することができる。
特異的結合分子として特定の糖鎖構造を認識する抗体を使用する方法に関連して、本発明はＬａｃｄｉＮＡｃ構造を認識するポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体を作製する次の工程に関する。まず、ＬａｃｄｉＮＡｃ構造を含む糖鎖構造、その類似体、あるいは誘導体を、生物試料から調製、あるいは化学的若しくは生化学的に合成し、同構造の多価結合体を作製する。次に、免疫反応活性化物質と共に多価結合体で動物を免疫する。この時、多価結合体は免疫反応活性化物質に結合していることが好ましく、結合体は、単独、あるいは更なる免疫反応活性化物質と共に免疫に用いる。より好ましくは、多価結合体を少なくとも一種のアジュバント分子と共に抗体産生生物に注射、あるいは粘膜投与する。
以下に、実施例を挙げて本発明を更に具体的に説明するが、本発明は、その要旨を超えない限りこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例１
生検によりＰＣと診断され、識別コードを付した１名の被験者（Ｎ−３１５）の血清（３３７．９ｎｇ ＰＳＡ／ｍＬ）を用いた。なお、手順の実施に際し医療機関の倫理審査の承認を受け、被験者にはインフォームドコンセントを行なった。
（ａ）工程１ ＰＳＡの単離
最初に血清から免疫グロブリンの除去を行った。５ｍＬのプロテインＡアガロース担体（ＰＩＥＲＣＥ）をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で平衡化した。これをディスポーザブルプラスティックカラム（ＰＩＥＲＣＥ）に充填し、該被験者の血清およびＰＢＳの混合物を添加し、４℃にて３０分間振盪した。この担体に結合しないＰＳＡを含む画分を回収し、さらに担体の３倍体積（３ＣＶ）のＰＢＳにてプロテインＡアガロース担体を洗浄した画分を回収後、両画分の混合溶液に最終濃度が１ＭになるようにＮａ２ＳＯ４を加えた。
次に、ＰＳＡ含有画分から血清中の主要タンパクであるアルブミンの除去を行った。２．５ｍＬのフラクトゲル（商標）ＥＭＤ ＴＡ（Ｓ）（Ｍｅｒｃｋ）をディスポーザブルプラスティックカラムに充填し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．４、Ｎａ２ＳＯ４（１Ｍ）含有）にて平衡化させた。フラクトゲル充填カラムに対して上記にて得られた画分を添加し、ポンプを用いて７ＣＶの同緩衝液を送液し、アルブミンの除去を行った。
次いで、フラクトゲル（商標）に吸着したタンパク質を２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．４、Ｎａ２ＳＯ４不含）にて溶出し、ＰＳＡを含む画分を得た。引き続き、この画分をＰＢＳにて平衡化させた２ｍＬのプロテインＡアガロース担体に添加し、４℃にて３０分間振盪することにより、除去しきれなかった免疫グロブリンを除去した。プロテインＡアガロース担体に結合しないＰＳＡを含む画分および３ＣＶのＰＢＳにて洗浄した画分の混合溶液を次の免疫沈降に用いた。
引き続いて、免疫沈降に用いる抗ＰＳＡ抗体ビーズの作製をおこなった。ＮＨＳ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ４ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社）を１ｍＭのＨＣｌで３回洗浄した。次に洗浄したビーズに対して、市販の抗ヒトＰＳＡ・ウサギポリクローナル抗体（ＤＡＫＯ社）を添加し、室温にて３０分間にわたって振盪することで、抗体とビーズの架橋を行った。
続いて、０．５ＭのＮａＣｌを含む０．５Ｍのモノエタノールアミン水溶液を加え、室温にて３０分間にわたって振盪することで残余活性基の不活化を行った。得られた抗ＰＳＡ抗体ビーズを０．５ＭのＮａＣｌを含む０．１Ｍの酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．０）、および０．５ＭのＮａＣｌを含む１Ｍのトリス緩衝液（ｐＨ９．０）で交互に３回洗浄した。次いで、抗ＰＳＡ抗体ビーズをＰＢＳで３回洗浄した。最後に、同ビーズを０．０２％アジ化ナトリウム含有ＰＢＳで洗浄し、使用時まで４℃にて保存した。
次いで、免疫沈降を行った。前述のＰＳＡを含む混合溶液画分に対して、４０μＬの抗ＰＳＡ抗体ビーズを添加し、４℃にて１時間にわたり振盪した。続いて、抗ＰＳＡ抗体ビーズをＭｉｃｒｏ Ｂｉｏ−Ｓｐｉｎクロマトグラフィーカラム（バイオ・ラッドラボラトリーズ社）に移した。抗ＰＳＡ抗体ビーズカラムを、ＰＢＳで４回、０．０２％のＴｗｅｅｎ−２０を含むＰＢＳで３回、および蒸留水で２回洗浄した。さらに、抗ＰＳＡ抗体ビーズカラムに１Ｍのプロピオン酸水溶液を加え、ビーズに吸着したタンパク質を溶出させて回収した。プロピオン酸水溶液による溶出は全５回にわたって行い、その溶離液を混合して遠心濃縮機を用いて乾固させた。
得られたタンパク質画分の一部をウェスタンブロット法に供し、半定量的な解析をおこなったところ、最初の血清に含まれていたＰＳＡの７０％以上を回収できることが判明した。
（ｂ）工程２ 糖ペプチドの調製
工程（ａ）で得られた減圧乾固サンプルの入ったチューブに対して、５０単位のサーモリシン（Ｃａｌｂｉｏ）を含む５０ｍＭ炭酸水素アンモニウム水溶液（ｐＨ８．０）、１００μＬを直接加え、１８時間にわたって５６℃で静置反応させた。反応混合物を遠心濃縮機によって乾固させた後、得られた固形物を、０．８％トリフルオロ酢酸水溶液に溶解し、４０分間にわたって８０℃で静置し、脱シアル酸反応を行った。反応サンプルを遠心濃縮機で乾固させた。
続いて、カーボングラファイト充填カートリッジであるＩｎｔｅｒｓｅｐ ＧＣ ５０ｍｇ（ＧＬサイエンス）を用いて、得られたサンプルから糖ペプチドの粗精製および脱塩を行った。最初に、カートリッジに対して、１ＭのＮａＯＨ水溶液、蒸留水、３０％酢酸水溶液、ならびに５％アセトニトリルおよび１％トリフルオロ酢酸を含有する水溶液を順次送液し、カーボングラファイトの洗浄、ならびに平衡化を行った。
次に、乾固した糖ペプチドサンプルを、「５％アセトニトリルおよび１％トリフルオロ酢酸を含有する水溶液」に溶解し、カートリッジに送液した。カートリッジに吸着させた糖ペプチドに対して、蒸留水、「５％アセトニトリルおよび１％トリフルオロ酢酸を含有する水溶液」を順次送液し、洗浄を行った。その後、「８０％アセトニトリルおよび１％トリフルオロ酢酸を含有する水溶液」をカートリッジに送液して、吸着した糖ペプチドを溶出することで粗精製糖ペプチド画分を得た。得られた溶液は、遠心濃縮機を用いて乾固させた。
Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ，ｆｉｂｒｏｕｓ（シグマアルドリッチ社）を用いて、糖ペプチドの精製を行った。使用前にＣｅｌｌｕｌｏｓｅを５０％エタノール水溶液で５回洗浄し、次いで、ブタノール：蒸留水：エタノール＝４：１：１で５回洗浄した。乾固させた粗精製糖ペプチド画分を同混合溶液で溶解し、その溶液に対して洗浄済みのＣｅｌｌｕｌｏｓｅ溶液を２０μＬ加え、１時間にわたって室温にて振盪することで糖ペプチドを吸着させた。次いで、前述の混合溶液を用いて６回にわたってＣｅｌｌｕｌｏｓｅを洗浄した。
糖ペプチドの吸着したＣｅｌｌｕｌｏｓｅに対して５０％エタノール水溶液を加え、３０分間にわたって室温で振盪することにより糖ペプチドの溶離を行った。溶離した糖ペプチドを含む溶液を回収し、遠心濃縮機にて乾固させた。次いで、乾固させた糖ペプチドを５％アセトニトリル水溶液４μＬに溶解した。
（ｃ）工程３ 糖ペプチド（ＰＳＡ誘導体）の標識
ＭＡＬＤＩ用ターゲットプレートの上に、工程２で得られた糖ペプチド溶液１．０μＬを滴下し、風乾させた。次に、ターゲットプレート上に、１−ピレニルジアゾメタン（ＰＤＡＭ、５００ｐｍｏｌ）のＤＭＳＯ溶液０．２５μＬを滴下し、約５分間にわたって８０℃に加熱し、乾燥させた。この操作によって、ターゲットプレート上に、ＰＤＡＭで標識された糖ペプチドが得られた。
（ｄ）工程４ ＭＳ分析
工程３で得られた標識糖ペプチドを担持したターゲットプレートに対して、２，５−ジヒドロキシ安息香酸（ＤＨＢＡ）の６０％アセトニトリル溶液（濃度１０ｍｇ／ｍＬ）１．０μＬを滴下し、室温において乾燥させた。
得られたターゲットプレートを、ＭＡＬＤＩ−ＱＩＴ−ＴＯＦＭＳ装置ＡＸＩＭＡ−ＱＩＴ（島津製作所／Ｋｒａｔｏｓ社製）に設置し、ＭＳ分析を行った。定量的な比較を行うために、ターゲットプレート上の試料の広がりよりも大きい外周で囲まれた領域をラスタースキャンし、有意な全シグナルを積算した。
得られたＭＳスペクトルの代表例を図１に示す。図１中、Ｐ１で示したように、ＰＳＡ由来のペプチド４３−４７に、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する下記式（１）で表される３本鎖糖鎖が見いだされた。該構造は、これまでＰＳＡでは報告のない新規構造であり、本発明により初めてＰＣ患者に見いだされたものである。
［Ｐ１］ （ｍ／ｚ ２７９２）
Figure 0005443156
 ［式（１）中、Ｇａｌはガラクトース、Ｍａｎはマンノース、Ｆｕｃはフコース、ＧａｌＮＡｃはＮ−アセチルガラクトサミン、ＧｌｃＮＡｃはＮ−アセチルグルコサミンを示す。括弧は３ヶ所の非還元末端の何れかに結合していることを示す。「ＧａｌＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ−」又は「Ｇａｌ−ＧｌｃＮＡｃ−」を含む残基は、Ｍａｎα１−６Ｍａｎ側にあっても、Ｍａｎα１−３側にあってもよく、Ｍａｎへの結合様式は、β１−２、β１−４又はβ１−６の何れであってもよい。「Ｐｅｐｔｉｄｅ」とは、ＩＲＮＫＳ（Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ｓｅｒ）であり、ＧｌｃＮＡｃはＮに結合している。］
従って、ＰＣと診断された被検者のＰＳＡは天然物ではあるが、質量分析法用のターゲットプレート上に存在する下記式（１）で表される糖ペプチドを有するＰＳＡは新規な状態である。また、下記実施例３に示すように、上記ＰＳＡは単離できるので、上記式（１）で表される糖ペプチドを有することを特徴とする単離されたＰＳＡは新規なものである。
ｍ／ｚ ２７９２イオンをプリカーサーイオンとして用いたＭＳ２分析を行った結果を図２に示した。図２に示したように、フラグメントイオンから、上記式（１）で示した構造であると確認された。フラグメントイオンｍ／ｚ７０１、８２１、９６７は、それぞれ８３ＤａのＧｌｃＮＡｃクロスリングフラグメント、ＧｌｃＮＡｃ、ＧｌｃＮＡｃ−Ｆｕｃが結合したペプチドＩＲＮＫＳを示し、ＰＳＡタンパク質上に結合していることを証明している。糖鎖を遊離せずに糖ペプチドとして解析した本法は、夾雑タンパク質の影響を受けず極めて精度の高い結果が得られた。
実施例１に示すように、癌患者由来ＰＳＡの糖ペプチド中に、健常者由来ＰＳＡにはみいだされていない、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖糖鎖を検出することができた。この知見は、ＰＳＡの糖鎖構造の差異に基づき前立腺に係る癌性変化の有無を判定するという本件の有効性を示すのみでなく、癌生物学的解明や治療への応用のために非常に有意義な発見である。
実施例２
実施例１で使用したサンプルと同じ血清を対象に、工程１、工程２のサーモリシン反応および脱シアル酸反応を実施した後に、固相化コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）担体を使用し、担体に結合しない画分を調製することで、３本鎖以上の糖鎖を選択的に検出した。
はじめに、ｐＨ７．４に調節した１０ｍＭ酢酸アンモニウム緩衝液を、Ｄｉａ Ｃｈｒｏｍ ＣｏｎＡ Ｔｉｐ（Ｇｌｙｇｅｎ ｃｏｒｐ）中に１０μＬ吸引し排出することでチップ内の平衡化を行なった。平衡化の操作は３回行なった。次に、工程１、工程２のサーモリシン反応および脱シアル酸反応を実施した後に、減圧乾固させたサンプルを１０μＬの酢酸アンモニウム緩衝液に溶解し、平衡化を終えたチップでの吸引、排出を２０回繰り返した。
その後、該サンプル溶液をチップ中に吸引した状態で３０分間静置することで、ＣｏｎＡに特定の種類の糖ペプチドを反応させた。続いて、１０μＬの蒸留水を吸引、排出することでチップの洗浄を行ない、更に、１０μＬの蒸留水を吸引した状態で１０分間静置し、その後排出する操作を３回繰り返した。ＣｏｎＡに供した後のサンプル溶液および洗浄に使用した蒸留水をＣｏｎＡに対する非結合画分としてまとめ、遠心濃縮機を用いて乾固させた。
続いて、Ｉｎｔｅｒｓｅｐ ＧＣにより粗精製および脱塩を終えた非結合画分溶液を遠心濃縮機により乾固させた。乾固させた非結合画分は、Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅに供することなく、５％アセトニトリル水溶液４μＬに溶解し、工程３以降の操作を実施例１と同様に実施し、ＭＳ分析をおこなった。
得られたＭＳスペクトルを図３に示す。図３中、Ｐ１で示したように、ＰＳＡ由来のペプチド４３−４７にＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖糖鎖（上記式（１）で示す構造）が見いだされた。一方、癌患者以外の被験者由来のＰＳＡにも存在する、２本鎖構造である、ｍ／ｚ ２３８６イオンや、そのピレン標識誘導体であるｍ／ｚ ２６００イオンは、ほとんど検出されなかった。その他のシグナルをＭＳ／ＭＳ解析することによって、上記式（１）で示す構造以外のＰＳＡ由来のペプチド４３−４７に糖鎖が結合した糖ペプチドは検出されなかった。更に、実施例１のＭＳスペクトル中に見られたシグナルと異なるシグナルは検出されず、実施例２に示す工程は癌特異的糖鎖構造を選択的に検出する点において好ましいことが分かった。
実施例３
実施例１で使用したサンプルと同じ血清を対象に、工程１を実施した後に、固相化コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）担体を使用し、担体に結合しない画分を調製することで、式（１）で表される糖ペプチドを有するＰＳＡを選択的に単離できる。
はじめに、実施例２と同様に１０ｍＭ酢酸アンモニウム緩衝液を用いてＤｉａ Ｃｈｒｏｍ ＣｏｎＡ Ｔｉｐ（Ｇｌｙｇｅｎ ｃｏｒｐ）チップの平衡化を行なう。次に、工程１を実施した後に減圧乾固させたサンプルを１０μＬの酢酸アンモニウム緩衝液に溶解し、平衡化を終えたチップにて吸引、排出を２０回繰り返す。
その後、該サンプル溶液をチップ中に吸引した状態で３０分間静置することで、ＣｏｎＡと反応させる。続いて、１０μＬの蒸留水を吸引、排出することでチップの洗浄を行ない、更に、１０μＬの蒸留水を吸引した状態で１０分間静置し、その後排出する操作を３回繰り返す。ＣｏｎＡに供した後のサンプル溶液および洗浄に使用した蒸留水をＣｏｎＡに対する非結合画分としてまとめ、凍結乾燥させる。この画分が、式（１）で表される糖ペプチドを有する単離されたＰＳＡであることは、次のようにして確認できる。
すなわち、実施例１と同様に工程２以降の操作を行うことでＰＳＡ糖ペプチドを調製する。最後に乾固させたサンプルを５％アセトニトリル水溶液４μＬに溶解し、工程３以降の操作を実施例１と同様に実施し、ＭＳ分析を行う。
上記の操作で得られたサンプルをＭＳ解析に供することで、図３と同様の、上記式（１）で示す構造のみが検出されるマススペクトルが得られ、上記のＣｏｎＡ非結合画分が、式（１）で表される糖ペプチドを有する単離されたＰＳＡであることが確認できる。
本発明の前立腺癌を判定する方法によれば、前立腺癌（ＰＣ）であるか否かを的確に判定でき、２次検査である苦痛な針生検を回避することができる。また、ＰＳＡ濃度が正常レベルの被験者についても、ＬａｃｄｉＮＡｃを有する３本鎖以上の糖鎖を検出することで、ＰＣを高精度で識別判定することも可能であるので、高精度でＰＣを判定する本発明は広く利用されるものである。

Claims (6)

  1. 被験者由来の試料中のＰＳＡの糖鎖構造を分析する工程を含み、ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）を有する３本鎖以上の糖鎖が存在するときに前立腺癌であると判定することを特徴とする前立腺癌を判定する方法。
  2. 上記ＰＳＡの糖鎖構造の分析を、上記ＰＳＡに対してレクチンを作用させる方法、上記ＰＳＡに対して抗体を作用させる方法、高速液体クロマトグラフィー法もしくは質量分析法、またはこれらを組み合わせた分析手段により行うことを特徴とする請求項１に記載の前立腺癌を判定する方法。
  3. （１）被験者由来の試料からＰＳＡを精製する工程と、
    （２）工程（１）で精製したＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製する工程と、
    （３）工程（２）で得られたＰＳＡ誘導体を標識する工程と、
    （４）工程（３）で得られた標識化ＰＳＡ誘導体を質量分析法により分析する工程を含み、ＬａｃｄｉＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン−Ｎ−アセチルグルコサミン）を有する３本鎖以上の糖鎖が存在するときに前立腺癌であると判定することを特徴とする請求項２に記載の前立腺癌を判定する方法。
  4. 上記工程（２）において調製されるＰＳＡ誘導体が、ＰＳＡ由来の糖鎖または糖ペプチドであることを特徴とする請求項３に記載の前立腺癌を判定する方法。
  5. 上記工程（１）で精製されたＰＳＡに対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該ＰＳＡの中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡを除去し、ＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡを得る工程を含み、上記工程（２）においては、該工程で得られたＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡからＰＳＡ誘導体を調製することを特徴とする請求項３に記載の前立腺癌を判定する方法。
  6. 上記工程（２）で調製されたＰＳＡ誘導体に対し、コンカナバリンＡレクチン（ＣｏｎＡ）を接触させることによって、該誘導体の中からＣｏｎＡに結合する糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を除去し、ＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を得る工程を含み、上記工程（３）においては、該工程で得られたＣｏｎＡに結合しない糖鎖構造を有するＰＳＡ誘導体を標識することを特徴とする請求項３に記載の前立腺癌を判定する方法。
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