JP5284646B2 - 微生物バイオセメンテーション法 - Google Patents
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Description
本発明は、ウレアーゼを産生することができる細菌などのウレアーゼの微生物供給源を利用して、高強度セメントを形成する方法に関する。また本発明は、本方法によって形成されたセメントのさまざまな適用にも関する。
ウレアーゼ産生細菌は、透過性媒体の表面および表面下を修正する(remediate)ために用いられている。鉱物充填(mineral plugging)としても知られるこのプロセスは、石油産業において使用されており、ここでは、処置された媒体の透過性および空隙率の減少が流体流動を低下させ、かつしたがってタンクからの油の回収を増大させることができかつ/または流出部位からの汚染の拡大を制限できる。
本発明は、出発原料と、有効量の(i)ウレアーゼ産生微生物、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンとを混合する段階を含む、透過性出発原料中で高強度セメントを形成する方法であって、有効量のウレアーゼ産生生物が、標準的条件下で、0.5〜50mM尿素加水分解/minの尿素加水分解速度を提供する方法を提供する。
(a)出発原料と、有効量の(i)ウレアーゼ産生微生物、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンとを混合する段階;ならびに
(b)さらなる量の(i)〜(iii)の反応物の少なくとも1つを添加する段階
を含む、透過性出発原料中で高強度セメントを形成する方法であって、有効量のウレアーゼ産生生物が、標準的条件下で、0.5〜50mM尿素加水分解/minの尿素加水分解速度を提供する方法も提供する。
高強度セメントの作製法
出発原料と、有効量の(i)ウレアーゼ産生微生物、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンとを混合する段階を含む、透過性出発原料中で高強度セメントを形成する方法であって、有効量のウレアーゼ産生生物が、標準的条件下で、0.5〜50mM尿素加水分解/minの尿素加水分解速度を提供する、方法。
(i)標準的条件下で、0.5〜50mM尿素加水分解/minの尿素加水分解速度を提供するウレアーゼ産生微生物の適用に起因するセメント;または
(ii)出発原料に加えられた原料1リットルあたり少なくとも33gの方解石の形成に起因するセメント。
(i)好ましくは、強度は、原料を通って送られた超音波の速度を推定することによって決定される、少なくとも0.05〜0.5MPa/(mM尿素加水分解/min)の一軸圧縮強度;および/または
(ii)好ましくは、強度は、原料を通って送られた超音波の速度を推定することによって決定される、少なくとも0.05〜5MPaもしくは2〜5MPaの一軸圧縮強度;および/または
(iii)少なくとも1〜5%の方解石含量。
本発明により高強度セメントを形成する方法は、土木工事、採鉱、砂防、環境の、および特別な材料の製造といった多様な分野における様々な適用を有する。土地改良適用は、本発明に特に適している。
本発明は、固体画分と有効量の(i)ウレアーゼ産生微生物、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンとを混合する段階を含む、高強度セメント製品を形成する方法を提供する。
当業者は、本明細書に記載の本発明が、具体的に記載された以外の変更および改変を受け入れる余地がある事を認識するであろう。本発明には、そのような全ての変更および改変が含まれると理解すべきである。また本発明は、個々にまたは一括して本明細書中で言及または示された、全ての段階、特徴、組成物、および化合物も含み、かつ、任意のおよび全ての組み合わせまたは任意の二種類もしくはそれ以上の段階および特徴も含む。
一般的な原料および方法
(A) S. パストゥリ(S. pasteurii)の培養
(i) アンモニウムYE培養
S. パストゥリを、バッチ条件下で、滅菌前に4M NaOHでpH9に調整した、20g/Lイーストエキストラクトおよび75mM (NH4)2SO4上で、28℃で培養した。
尿素YE培養は、バッチ条件下で、20g/Lイーストエキストラクトおよび75mM CO(NH2)2上で行った。培地のpHは、高圧滅菌後pH7.5であった。高圧滅菌条件下での化学的分解を予防するために、尿素を、高圧滅菌後に0.2μmフィルター滅菌によって加えた。
酢酸YE培養は、培地が10g/Lイーストエキストラクト、100mM NaCH3COO、および75mM (NH4)2SO4を含むことを除き、アンモニウムYE培養と同様の条件下で行った。
尿素の完全な加水分解後に存在する導電率の変化(■)およびアンモニウム濃度(□)の検量線
加水分解された尿素(mM)=導電率(mS)×11.11(R2=0.9988)
加水分解された尿素(mM)=アンモニウム(mM)×0.50(R2=0.9991)
バイオマスは、600nmにおいて分光光度的に測定した。
アンモニウム濃度は、改変ネスラー法によって分光光度的に測定した。試料を、13,500rpmで5分間遠心分離して細胞を除去し、上清を0〜0.5mMの範囲になるよう希釈した。希釈試料2mlをネスラー試薬100μlと混和し、正確に1分間反応させた後、425nmでの吸光度を読み取った。
原料および方法
(A) コア内部へのセメンテーション試薬の適用
セメンテーション用コアは、密度を均一にするため連続振動下で300μm珪砂とともに乾パックされた50mlプラスチックシリンジからなるものであった。次に水をコアに上方流入させ(up-flush)、軽くたたいて、空気ポケットを除去した。水の流入の後、砂粒子間の潤滑効果によって砂が占める容積は減少し、封圧を維持するようにストッパーを調整した。
全長に沿った3箇所(注入末端から15、45、および75mm)において各コアの直径を通る超音波を送ることによって、強度を測定した。測定は、実験の間に繰り返し行った。より高度な凝集(セメンテーション)は、音波をより速い速度で移動させると考えられる(すなわち、速度が速ければ速いほど、セメンテーションの程度が大きい)。同時に、超音波信号による崩壊を回避するため、試料1mlを、コア側面の下部に挿入されたキャピラリー管を通じてコアから回収した。試料を13,500rpmで遠心分離し、全ての懸濁粒子(砂や細菌)を除去した。次に上清を清潔な試験管に移し、アンモニウム分析を待ちながら-20℃で保存した。
σ=1272×exp(-14461/v)
式中、
σ=一軸圧縮強度(MPa)
v=超音波速度(m/s)
v(乾燥)=v(湿潤)−600 m/s
式中、
v(乾燥)=乾燥超音波速度(m/s)
v(湿潤)=湿潤超音波速度(m/s)
アンモニウム濃度は、上述の一般的な原料および方法の項に記載されたように決定した。
8つのコアを、1.5M等モルの尿素/カルシウム溶液(0.75M Ca(NO3)2および0.75M CaCl2としてカルシウムを添加)で処置し、異なる濃度のウレアーゼ(細菌ウレアーゼ活性)を用いて様々な速度でセメント接着させた。2回の流入を行い、超音波測定は24時間後に3箇所(A、B、およびC)において行った。
セメンテーションの間の強度の発達を調べるために、4つのコアの速度を42時間の間連続的にモニタリングし、その間に細菌および反応物の適用を2回行った。これにより、反応の進行に伴う強度変化の観察が可能になった。
複数の酵素適用の効果は、2回の連続した処置にわたって同量の細菌酵素および反応物を適用することにより定量化された。アンモニウムの産生は、コアに挿入されたキャピラリー管を介した試料の周期的除去により決定した。処置の間に、コアを通って水を流入させ、全ての使用済み液体を除去した。第二の処置は、第一の処置から24時間後に適用され、各処置は11mM尿素/minおよび1.5M等モルの尿素/Ca溶液の適用された酵素活性を含んだ。
二回のセメンテーション処置後にコア内に存在する残りのウレアーゼ活性を再利用できるかどうかを判定するため、カルシウムおよび尿素反応物のみを含む(さらなる酵素は全く含まない)第三の適用を加えた。
(A) 酵素の割合が強度に与える影響
各コア上の三箇所(A、B、およびC)における速度測定は±10%以内であり、このことは、コアの全長に沿ったセメンテーションの程度が均一であることを示す。全体的なコアの結果を得るため、三箇所の速度を平均した(図1を参照されたい)。1回のバイオセメンテーション処置の後、酵素活性の増加と共に強度が増加したことが観察された(図1を参照されたい)。
セメンテーションの間の強度の発達についてのデータを、図3に示す。
セメンテーションの初めの数時間の間、第一の処置は7.2mM NH4 +/minのアンモニウム産生速度を維持したが、これは、3.6mM尿素加水分解/minと関連する。第二の適用における初めの尿素加水分解速度はこの速度の2倍であったが(7.8mM尿素/min)、このことは、第一の処置に由来する細菌ウレアーゼ活性が、第二の処置においても依然として活性であったことを示す(図8を参照されたい)。第二の処置におけるより高い活性レベルは、反応のより迅速な完結をもたらす。
たとえさらなる酵素を追加しなかった場合でも、約1Mのアンモニウムが4時間で産生されたが(4.5mMアンモニウム産生/min)、このことは、2.25mM尿素加水分解/minの平均ウレアーゼ活性と関連する(図9を参照されたい)。コア内の残りの酵素は、適用後の最初の数時間しか活性でなく、4時間を超えると、さらなるアンモニウム産生は全く起こらない。
原料および方法
(A) 酢酸ベジマイト(Vegemite Acetate)培地
酢酸ベジマイト培地は、13.5g/Lのベジマイトからなり、ここから重力沈降によって固体を除去し、次に上方画分をデカントして、150mMの酢酸を氷酢酸として加えた。6M NaOHを用いてpH7に調整した。
パイロット規模の接種物を、滅菌条件下、10L滅菌タンク形反応器(Chemap, Germany)中で、30℃、pH8.25の開始pHで増殖させた。
パイロット規模の培養を、非滅菌条件下、120Lの特注のガラス繊維エアリフト反応器(Andrew Brown & Co., Perth提供)中で、作業容積を100Lとして行った。
ウレアーゼ活性、特定のウレアーゼ活性、およびバイオマスは、一般的な原料および方法の項に記載したとおりに計算された。
セメンテーション試験は、<300μmの珪砂(すなわち全砂粒子が300μm未満)、多少の頁岩を含む市販のオランダ製建築用砂(Koolschijn)、または、各実験について示した、Koolschijn砂9に対して泥炭混合物1(Koolschijn、泥炭はGeoDelft, The Netherlandsより供給された)のいずれかにおいて行った。
10L滅菌タンク形反応器を使用して、100Lのパイロット規模の反応器用に適した接種物を作製した。S. パストゥリを、滅菌条件下、酢酸ベジマイト培地上で培養した。
Koolschijn砂のセメンテーションは、酢酸ベジマイトおよびアンモニウム培地で培養されて15psiでコアに注入された細胞由来の、8.75mM尿素/minのウレアーゼ活性を用いて行った。
(A) バイオセメンテーション
バイオセメンテーションに供したKoolschijn砂は、強度および剛性が明確に改善され、剪断強度は平均で8倍増加し、剛性は3倍増加した(図11)。
原料/方法
6mM Ca2+の存在下で細菌を培養し、その後、細菌培養物650mL(約10mM尿素加水分解/minのウレアーゼ活性)を、11:39分間7.5psiの圧力下での上方流入(1.4L/hr)により、1m砂カラムに供した。細菌細胞を内含するカラムを、室温で48時間維持し、その後1.25M Ca2+および1.7M尿素をカラムに上方流入させた。
均一な強度が得られた。セメント接着されたカラムの均一性は、アンモニウム分析により確認した。図13を参照されたい。セメンテーション後のカラムの写真2枚を、図14Aおよび14Bに添付した。
原料/方法
6mMのカルシウムを、バイオセメンテーションに使用するための細菌増殖培地に添加し、砂カラムを流入した後、砂カラムへの細菌の残留を評価した。
6mMカルシウムを増殖培地に添加することによって、使用した細菌株の「剛性」が増大した。細菌をカラム中に1mを上回って流入させ、2回目の流入後に、50%を上回る細菌がカラム中で保持された。カルシウム非存在下で細菌を培養した場合、二回目の流入後に80%を上回る細菌がカラムから失われた。
砂土における土壌安定化への特定の適用を有する珪砂のバイオセメンテーションの例を、以下に示す。
内径29mmの60ml PVCシリンダを、0.300mmに達する洗浄SiO2砂(0.300 mm passing washed SiO2 sand)とともに乾パックした。ウレアーゼ活性細菌培養物(バチルス・パストゥリ(Bacillus pasteurii))を、1L振とうフラスコ内、0.3M尿素および6mM CaCl2を含む培地中で、振とうさせながら28℃で24時間増殖させた。
セメント接着された珪砂円筒形試料を、PVCシリンダから取り出し、その一軸(unconfined)圧縮強度を計測した。測定された一軸(unconfined)圧縮強度は1.7MPaであった。
(図2)第一(○)および第二(●)のバイオセメンテーション処置に関して、ウレアーゼ活性投入量あたりの達成された強度を示すグラフである。
(図3)異なる細菌酵素濃度が、コアに沿った3箇所(15mm(●)、45mm(△)、および75mm(■))におけるセメンテーションの間の強度の発達に、および、付随する、尿素加水分解からのアンモニウムの産生(×)に与える効果を示すグラフである。ウレアーゼは、完全な細菌細胞として、6mM尿素加水分解/min(A)、9mM尿素加水分解/min(B)、および12mM尿素加水分解/min(C)で加えられる。
(図4)セメンテーション反応の間の、注入箇所からコア全長に沿った3箇所(15mm(●)、45mm(△)、および75mm(■))における可溶性植物酵素(9mM尿素加水分解/min)を用いた経時的な強度改善、およびアンモニウム濃度(×)を示すグラフである。
(図5)異なる完全な細胞の細菌ウレアーゼ活性(6mM尿素加水分解/min(□)、9mM尿素加水分解/min(●)、および12mM尿素加水分解/min(△))および可溶性植物酵素(9mM尿素加水分解/min(■))における、コア内部のインサイチュー尿素加水分解速度を示すグラフである。
(図6)高活性のコアに関するそれぞれの間隔における尿素加水分解速度(●)に対する、注入箇所から12mmにおける、加水分解された尿素
あたりの強度の変化を示すグラフである。
(図7)中程度の活性のコアに関するそれぞれの間隔における尿素加水分解速度(●)に対する、注入箇所から45mm
および75mm(□)における、加水分解された尿素あたりの強度の変化を示すグラフである。
(図8)砂のコア内部の酵素および反応物の第一(□)および第二(■)の適用の期間に対する、アンモニウムのインサイチュー産生を示すグラフである。両適用とも、標準的条件下で11mM尿素加水分解/minの酵素活性が加えられた。
(図9)酵素および反応物の2回の前述の適用後にコア内に固定化された残存ウレアーゼ活性を示すグラフである。
(図10)セメンテーション液を砂コアに注入する方法の模式図である。
(図11)バイオセメンテーション処置後(処置の番号を括弧内に示す)の、Koolschijn砂(K)および10%泥炭石と混和されたKoolschijn砂(KP)における剪断強度
および剛性(□)を示すグラフである。
(図12)3回バイオセメンテーション処置されたKoolschijn砂の、処置前後での空隙容積の違いを示すグラフである。
(図13)連続的にセメント接着されたカラムの全長に沿った異なる距離から集めた試料についてのNH4 +分析である。
(図14)本発明の好ましい態様を用いてセメント接着されたカラムの、倍率の異なる2枚の写真である。
Claims (18)
- 出発原料と、有効量の(i)ウレアーゼ産生微生物、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンとを混合する段階を含む、透過性出発原料中で高強度セメントを形成する方法であって、該透過性出発原料が未凝固であるかまたは部分的に凝固している粒状原料であり、該有効量のウレアーゼ産生微生物が、標準的条件下で、0.5〜50mM尿素加水分解/minの尿素加水分解速度を提供し、尿素およびカルシウムイオンの添加前に、出発原料と有効量のウ レアーゼ産生微生物とを混合する、方法。
- 出発原料と、有効量の(i)ウレアーゼ産生微生物、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンとを混合する段階を含む、透過性出発原料中で高強度セメントを形成する方法であって、該透過性出発原料が未凝固であるかまたは部分的に凝固している粒状原料であり、該セメントが、出発原料に加えられた原料1リットルあたり少なくとも22gの方解石の形成に起因し、尿素およびカルシウムイオンの添加前に、出発原料と有効量のウレアーゼ産生微 生物とを混合する、方法。
- 出発原料と混合する前に、(ii)尿素、および(iii)カルシウムイオンを混和する、請求項1または2記載の方法。
- 尿素およびカルシウムイオンの添加前に、微生物を出発原料中に固定する、請求項1ま たは2記載の方法。
- 高強度セメントを形成するために必要とされる尿素およびカルシウムイオンを添加する前に、微生物を3〜8mMのカルシウムイオンと接触させることによって、微生物を出発原料中に固定する、請求項1または2記載の方法。
- 微生物と、出発原料、ならびに高強度セメントを形成するために必要とされる尿素およびカルシウムイオンとを混合する前に、微生物を少なくとも3mMのカルシウムイオンと接触させる、請求項1または2記載の方法。
- 尿素の有効量が、少なくとも350mMの最終濃度までである、請求項1〜6のいずれか一項記載の方法。
- カルシウムイオンの有効量が、少なくとも100mMの最終濃度までである、請求項1〜7のいずれか一項記載の方法。
- カルシウムイオンが塩の形態で提供される、請求項1〜8のいずれか一項記載の方法。
- カルシウムイオンが硝酸カルシウムおよび/または塩化カルシウムとして提供される、請求項9記載の方法。
- 微生物が、バチルス科(Bacillacae)ファミリーに属する細菌である、請求項1〜10のいずれか一項記載の方法。
- 微生物が、以下の条件の少なくとも一つの下での生存および/または増殖に適合化されている、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法:(i)350〜2000mMの尿素濃度;(ii)50〜2000mMのカルシウムイオン濃度;(iii)少なくとも7.5のpH;および(iv)少なくとも300Cの温度。
- 出発原料が粒状の構造を有する、請求項1〜12のいずれか一項記載の方法。
- 出発原料が岩または石を含む、請求項13記載の方法。
- 請求項1〜14のいずれか一項記載のインサイチュー法。
- 出発原料の表面もしくは内部への流入、注入、噴霧、滴下、または細流、および浸漬からなる群より選択される技術によって、出発原料と試薬が混合される、請求項1〜15のいずれか一項記載の方法。
- 請求項1〜16のいずれか一項記載の方法によって形成される、セメント。
- 細菌細胞を含み、かつ少なくとも0.05MPaの強度を有する、請求項17記載のセメント。
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