JP4931527B2

JP4931527B2 - フッ素化ホスファチジルセリン化合物

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Publication number: JP4931527B2
Application number: JP2006254062A
Authority: JP
Inventors: 和信 ▲高▼橋; 和広相川
Original assignee: Fujifilm Corp
Current assignee: Fujifilm Corp
Priority date: 2006-09-20
Filing date: 2006-09-20
Publication date: 2012-05-16
Anticipated expiration: 2026-09-20
Also published as: JP2008074739A

Description

本発明は、フッ素化ホスファチジルセリン化合物に関する。この化合物はリポソームの膜構成成分として利用することができ、このリポソームはＭＲＩまたはＰＥＴ造影における造影剤として用いることができる。

非侵襲的な動脈硬化の診断法としては、主にＸ線血管造影法が挙げられる。しかし、この方法は、水溶性のヨード造影剤で血液の流れを造影する方法であるため、病変組織と正常組織との区別がつけにくい。そのため、狭窄が５０％以上進んだ病巣しか検出することができず、虚血性疾患の発作が発症する前に病巣を検出することが困難である。

上記以外の診断法として、近年、動脈硬化巣プラーク中に多く動態分布される造影剤を用いて核磁気共鳴トモグラフィー（MRI）により疾患を検出する方法が報告されている。しかし、該造影剤として報告されている化合物はいずれも診断法に用いることには問題がある。例えば、ヘマトポルフィリン誘導体（特許文献１参照）は皮膚への沈着・着色の欠点が指摘されており、また、脂質に富んだプラークに集積するとの報告があるパーフルオロ側鎖を有するガドリニウム錯体（非特許文献１参照）は、脂肪肝・腎臓上皮・筋組織の腱などの、生体における脂質豊富な組織、器官への集積が危惧されている。

化合物の観点からは、アルキル基がフッ素置換されたホスファチジルコリン型の化合物（例えば、非特許文献２参照）が知られているが、本発明におけるセリン型の化合物に関しては知られていない。
米国特許第4577636号サーキュレーション（Circulation）, 109, 2890 (2004) ラングムイアー（Langmuir）, 19, 4889 (2003)

本発明の課題は、病巣選択的に造影するためのリポソーム造影剤に適した化合物を提供することである。

本発明者等は上記の課題を解決すべく研究を行った結果、フッ素化ホスファチジルセリン化合物が造影剤としてのリポソームの構成成分として優れた性質を有していることを見出した。本発明は上記の知見を基にして完成された。

すなわち、本発明は、下記一般式（Ｉ）：

［式中、ｌおよびｎはそれぞれ独立に１〜９の整数を表し；ｍおよびｏはそれぞれ独立に２〜１０の整数を表す］で表される化合物又はその塩を提供するものである。

この発明の好ましい態様によれば、ｌおよびｎがそれぞれ独立に５〜９の整数であり、ｍおよびｏがそれぞれ独立に５〜１０の任意の整数である上記化合物又はその塩が提供される。

本発明の別の態様としては、下記一般式（II）：

［式中、ｌおよびｎはそれぞれ独立に１〜９の整数を表し；ｍおよびｏはそれぞれ独立に２〜１０の整数を表す］で表される化合物、またはその塩が提供され、さらに好ましい態様によれば、ｌおよびｎがそれぞれ独立に５〜９の整数であり、ｍおよびｏはそれぞれ独立に５〜１０の整数である上記化合物又はその塩が提供される。

この発明の別の形態における好ましい態様としては、化合物を構成するフッ素原子のうち、少なくとも一つが¹⁸Ｆ（放射性同位体）である上記の化合物又はその塩が提供される。

別の観点からは、本発明により、上記の化合物又はその塩を膜構成成分として含むリポソームが提供され、その好ましい態様によれば、ホスファチジルコリン及びホスファチジルセリンを膜構成成分として含む上記リポソームが提供される。
また、本発明により、上記のリポソームを含むＭＲＩ造影剤が提供される。この発明の好ましい態様によれば、血管疾患の造影に用いる上記ＭＲＩ造影剤；泡沫化マクロファージの影響で異常増殖した血管平滑筋細胞の造影に用いる上記ＭＲＩ造影剤；マクロファージが局在化する組織又は疾患部位の造影に用いる上記のＭＲＩ造影剤；マクロファージが局在化する組織が肝臓、脾臓、肺胞、リンパ節、リンパ管、及び腎臓上皮からなる群から選ばれる上記のＭＲＩ造影剤；マクロファージが局在化する疾患部位が腫瘍、炎症部位、及び感染部位からなる群から選ばれる上記のＭＲＩ造影剤が提供される。

また、同様に、本発明により上記のリポソームを含むＰＥＴ造影剤が提供される。この発明の好ましい態様によれば、血管疾患の造影に用いる上記ＰＥＴ造影剤；泡沫化マクロファージの影響で異常増殖した血管平滑筋細胞の造影に用いる上記ＰＥＴ造影剤；マクロファージが局在化する組織又は疾患部位の造影に用いる上記のＰＥＴ造影剤；マクロファージが局在化する組織が肝臓、脾臓、肺胞、リンパ節、リンパ管、及び腎臓上皮からなる群から選ばれる上記のＰＥＴ造影剤；マクロファージが局在化する疾患部位が腫瘍、炎症部位、及び感染部位からなる群から選ばれる上記のＰＥＴ造影剤が提供される。

さらに、上記ＭＲＩ造影剤/ＰＥＴ造影剤の製造のための上記の化合物、又はその塩の使用；ＭＲＩ造影/ＰＥＴ造影法であって、上記の化合物、又はその塩を膜構成成分として含むリポソームを、ヒトを含む哺乳類動物に投与した後にＭＲＩ造影/ＰＥＴ造影する工程を含む方法；血管疾患の病巣の造影方法であって、上記の化合物、又は塩を膜構成成分として含むリポソームを、ヒトを含む哺乳類動物に投与した後にＭＲＩ造影/ＰＥＴ造影する工程を含む方法が本発明により提供される。

本発明の化合物またはその塩は、ＭＲＩ/ＰＥＴ造影剤のためのリポソームの構成脂質として、そのリポソーム封入量において優れた性質を有しており、この化合物を含むリポソームを用いてＭＲＩ造影/ＰＥＴ造影することにより血管の病巣を選択的に造影できる。

ｌおよびｎはそれぞれ独立に１〜９の範囲の任意の整数を表すが、より好ましくは３〜９の任意の整数を表す場合であり、５〜９の範囲の任意の整数を表す場合が最も好ましい。ｍおよびｏは、それぞれ独立に２〜１０の範囲の任意の整数を表すが、４〜１０の範囲の任意の整数であることがより好ましく、５〜９の範囲の任意の整数であることが最も好ましい。

本発明の化合物は１以上の不斉中心を有する場合があるが、この場合、不斉中心に基づく光学活性体又はジアステレオ異性体などの立体異性体が存在する。純粋な形態の任意の立体異性体、任意の立体異性体の混合物、又はラセミ体などは、いずれも本発明の範囲に包含される。また、本発明の化合物はオレフィン性の二重結合を１個又は２個以上有する場合があるが、その配置はＥ又はＺのいずれであってもよく、両者の混合物として存在していてもよい。本発明の化合物は互変異性体として存在する場合もあるが、任意の互変異性体、又はそれらの混合物は本発明の範囲に包含される。さらに、本発明の化合物は塩を形成する場合があり、遊離形態の化合物又は塩の形態の化合物が水和物又は溶媒和物を形成する場合もあるが、このような場合も本発明の範囲に包含される。塩の種類は特に限定されず、酸付加塩又は塩基付加塩のいずれであってもよい。

以下に本発明の化合物の好ましい例を示すが、本発明の化合物はこれらの例に限定されることはない。

上記一般式（I）または（II）で表される化合物におけるフッ素原子のうち、少なくとも１つが¹⁸Fである化合物としては、いずれの式で表される化合物においても、１個以上１０個以下の¹⁸Fを有する化合物が好ましく、１個以上５個以下の¹⁸Fを有する化合物がより好ましく、１個以上３個以下の¹⁸Fを有する化合物が最も好ましい。また¹⁸Fの置換位置は特に規定されないが、フッ素置換脂肪酸のＣＦ₃末端にあることがより好ましい。

以下に、本発明の化合物の一般的な合成法について説明するが、本発明の化合物の合成法はこれらに限定されるものではない。本発明の化合物の部分構造である末端にフッ素を有するアルキル脂肪酸は、通常市販されているものを使用してもよく、あるいは用途に応じて適宜合成してもよい。合成により入手する場合には、例えばRichard C. Larock著、Comprehensive organic transformations（VCH）に記載の方法により、対応するアルコールやアルキルハライド等を原料として用いることができる。

上記のカルボン酸は、保護されたグリセリンや1,3-ジヒドロキシアセトンのようなグリセリン誘導体と縮合してグリセリド体へと導く。この際、必要な場合には保護基を用いることもできるが、この場合の保護基とは、例えば、T. W. Green & P. G. M. Wuts著、Protecting groups in organic synthesis（John Wiley & sonc, inc.）に記載のものを適宜選択して用いることができる。

上記のグリセリド体は、適宜、前述のProtecting groups in organic synthesis（John Wiley & sonc, inc.）に記載の方法を用いて脱保護した後、適切なリン酸クロリド、リン酸アミド、その他リン酸誘導体と反応させることで、目的の化合物へと導くことができる。この際、例えば前述のRichard C. Larock著、Comprehensive organic transformations（VCH）に記載の方法に準拠して行うことができる。

また、上記一般式（I）または（II）で表される化合物におけるフッ素原子のうち、少なくとも１つが¹⁸Fである化合物は、例えば、J.Labelled Compd. Radiopharm., 40, 11-13 (1997)に記載の方法に準拠して合成することができる。

本発明の化合物又はその塩はリポソームの膜構成成分として用いることができる。本発明の化合物又はその塩を用いてリポソームを調整する場合、本発明の化合物又はその塩の使用量は、膜構成成分の全質量に対して５から９０質量％程度、好ましくは５から８０質量％である。本発明の化合物は膜構成成分として１種類を用いてもよいが、２種類以上を組み合わせて用いてもよい。
リポソームの他の膜構成成分としては、リポソームの製造に通常用いられている脂質化合物をいずれも用いることが可能である。例えば、Biochim. Biophys. Acta 150(4), 44 (1982)、Adv. In Lipid. Res. 16(1), 1 (1978)、RESEARCH IN LIPOSOMES (P. Machy, L. Leserman著、John Libbey EUROTEXT社)、「リポソーム」（野島、砂本、井上編、南江堂）等に記載されている。脂質化合物としてはリン脂質が好ましく、特に好ましいのはホスファチジルコリン（PC）類である。ホスファチジルコリン類の好ましい例としては、eggPC（卵由来のPC）、ジミリストイルPC（DMPC）、ジパルミトイルPC（DPPC）、ジステアロイルPC（DSPC）、ジオレイルPC（DOPC）等があげられるが、これらに限定されるものではない。

本発明の好ましい態様では、リポソームの膜構成成分として、ホスファチジルコリンとホスファチジルセリン（PS）を組み合せて用いることができる。ホスファチジルセリンとしては、ホスファチジルコリンの好ましい例として挙げたリン脂質と同様の脂質部位を有する化合物が挙げられる。ホスファチジルコリンとホスファチジルセリンを組み合せて用いる場合、PCとPSの好ましい使用モル比はPC：PS＝９０：１０から１０：９０の間であり、さらに好ましくは、３０：７０から７０：３０の間である。
本発明のリポソームにおける別の好ましい態様によると、膜構成成分として、ホスファチジルコリンとホスファチジルセリンを含み、さらにリン酸ジアルキルエステルを含むリポソームが挙げられる。リン酸ジアルキルエステルのジアルキルエステルを構成する２個のアルキル基は同一であることが好ましく、それぞれのアルキル基の炭素数は６以上であり、１０以上が好ましく、１２以上がさらに好ましい。好ましいリン酸ジアルキルエステルの例としては、ジラウリルフォスフェート、ジミリスチルフォスフェート、ジセチルフォスフェート等が挙げられるが、これに限定されることはない。この態様において、ホスファチジルコリン及びホスファチジルセリンの合計質量に対するリン酸ジアルキルエステルの好ましい使用量は１から５０質量％までであり、好ましくは１から３０質量％であり、さらに好ましくは１から２０質量％である。

ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、リン酸ジアルキルエステ及び本発明の化合物を膜構成成分として含むリポソームにおいて、上記成分の好ましい質量比はPC：PS：リン酸ジアルキルエステル：本発明の化合物が５〜５０質量％：５〜５０質量％：１〜１０質量％：１〜８０質量％の間で選択することができる。
本発明のリポソームの構成成分は上記４者に限定されず、他の成分を加えることができる。その例としては、コレステロール、コレステロールエステル、スフィンゴエミリン、FEBS Lett. 223, 42 (1987); Proc. Natl. Acad. Sci., USA 85, 6949 (1988)等に記載のモノシアルガングリオキシドGM1誘導体、Chem. Lett. 2145 (1989); Biochim. Biophys. Acta 1148, 77 (1992)等に記載のグルクロン酸誘導体、Biochim. Biophys. Acta 1029, 91 (1990); FEBS Lett. 268, 235 (1990)等に記載のポリエチレングリコール誘導体が挙げられるが、これに限られるものではない。

本発明のリポソームは、当業者が利用可能ないかなる方法で製造してもよい。製造法の例としては、先に挙げたリポソームの総説成書類の他、Ann. Rev. Biophys. Bioeng. 9, 467 (1980)、"Liposomes" (M. J. Ostro編、MARCELL DEKKER、INC.)等に記載されている。具体例としては、超音波処理法、エタノール注入法、フレンチプレス法、エーテル注入法、コール酸法、カルシウム融合法、凍結融解法、逆相蒸発法等が挙げられるが、これに限られるものではない。本発明のリポソームのサイズは、上記の方法で作成できるサイズのいずれであっても構わないが、通常は平均が400nm以下であり、200nm以下が好ましい。リポソームの構造は特に限定されず、ユニラメラ又はマルチラメラなどのいずれの形態でもよい。また、リポソームの内部に適宜の薬物や他の造影剤の１種又は２種以上を配合することも可能である。

本発明のリポソームを造影剤として用いる場合には、好ましくは非経口的に投与することができ、より好ましくは静脈内投与することができる。例えば、注射剤や点滴剤などの形態の製剤を凍結乾燥形態の粉末状組成物として提供し、用事に水又は他の適当な媒体（例えば生理食塩水、ブドウ等輸液、緩衝液など）に溶解ないし再懸濁して用いることができる。本発明のリポソームを造影剤として用いる場合、投与量はリポソーム中の化合物含有量が従来の造影剤の化合物含有量と同程度になるように適宜決定することが可能である。

いかなる特定の理論に拘泥するわけではないが、動脈硬化、若しくはPTCA（経皮的冠動脈形成術）後の再狭窄等の血管疾患においては、血管の中膜を形成する血管平滑筋細胞が異常増殖を起こすと同時に内膜に遊走し、血流路を狭くすることが知られている。正常の血管平滑筋細胞が異常増殖を始めるトリガーはまだ完全に明らかにされていないが、マクロファージの内膜への遊走と泡沫化が重要な要因であることが知られており、その後に血管平滑筋細胞がフェノタイプ変換（収縮型から合成型）をおこすことが報告されている。

本発明のリポソームを用いると、泡沫化マクロファージの影響で異常増殖した血管平滑筋に対して規定の造影剤となる化合物を選択的に取り込ませることができる。その結果、病巣と非疾患部位とをコントラストをつけて造影することが可能である。従って、本発明の造影剤は、特に血管疾患の造影に好適に使用でき、例えば、動脈硬化巣やPTCA後の再狭窄等の造影を行うことができる。

また、例えば J. Biol. Chem., 265, 5226 (1990)に記載されているように、リン脂質よりなるリポソーム、特にPCとPSから形成されるリポソームが、スカベンジャーレセプターを介してマクロファージに集積しやすいことが知られている。従って本発明のリポソームを使用することにより、本発明の化合物をマクロファージが局在化している組織又は疾患部位に集積させることができる。本発明のリポソームを用いると、公知技術であるサスペンジョン又はオイルエマルジョンを用いる場合に比べて、より多くの規定の化合物をマクロファージに集積させることが可能である。

マクロファージの局在化が認められ、本発明の方法で好適に造影可能な組織としては、例えば、血管、肝臓、肺胞、リンパ節、リンパ管、腎臓上皮を挙げることができる。また、ある種の疾患においては、疾患部位にはマクロファージが集積していることが知られている。こうした疾患としては、腫瘍、動脈硬化、炎症、感染等を挙げることができる。従って、本発明のリポソームを用いることにより、これらの疾患部位を特定することができる。特に、アテローム性動脈硬化病変の初期過程において、スカベンジャーレセプターを介して変性LDLを大量に取り込んだ泡沫化マクロファージが集積していることが知られており〔Am. J. Pathol., 103, 181(1981)、Annu. Rev. Biochem., 52, 223(1983)〕、このマクロファージに本発明のリポソームを集積化させて造影をすることにより、他の手段では困難な動脈硬化初期病変の位置を特定することが可能である。

本発明のリポソームを用いた造影方法は特に限定されない。例えば、フッ素の核スピンを測定することにより、ＭＲＩ造影剤として用いた造影方法を行うことができる。また、¹⁸Ｆ等の放射性同位体を用いることで、ＰＥＴ造影剤として使用することも可能である。

以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明の範囲は下記の実施例に限定されることはない。なお、下記の実施例中の化合物番号は上記に示した化合物例の番号に対応している。また、実施例中の化合物の構造はNMRスペクトル、massスペクトルにより確認した。

化合物１−５の合成
6-（パーフルオロヘキシル）ヘキサノール6.32ｇをジクロロメタン 60mLに溶かし、トリエチルアミン3.15mLを加え、０℃で攪拌した。さらに、メタンスルホニルクロリド1.28mLを滴下して加え、室温まで昇温して撹拌した。反応溶液に飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて、ジクロロメタンで２回抽出し、得られた有機層を１規定塩酸水溶液と飽和食塩水で洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥後、除媒し、対応するスルホン酸エステルを7.31g（98％）得た。

水素化ナトリウム（オイル分散、60％）0.71gにジメチルホルムアミド（DMF）25mLを加え、０℃で撹拌した。マロン酸ジエチル2.82gをDMF３mLに溶かしたものを滴下し、室温まで昇温した。上述のスルホン酸エステル7.31gをDMF10mLに溶かしたものを滴下し、室温で２時間、80℃で２時間、撹拌した。反応溶液に１規定塩酸水溶液を加えて、ジクロロメタンで２回抽出し、得られた有機層を飽和食塩水で洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥後、除媒し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、対応するマロン酸誘導体を4.83g（58％）得た。

上述のマロン酸誘導体4.83gを95％エタノール70mLに溶かし、水酸化リチウム0.62gを加えて室温で撹拌した。反応溶液に３規定塩酸1.2mLを加えて反応停止した。反応溶液にジクロロメタンと１規定塩酸水溶液を加えて、ジクロロメタンで２回抽出した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、除媒した。得られた残渣をピリジン20mLに溶かし、濃塩酸２mLを加えて、130℃で３時間、撹拌した。シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、対応するマロン酸誘導体を4.83g（58％）得た。反応溶液にジクロロメタンと１規定塩酸水溶液を加えて、ジクロロメタンで２回抽出した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥後、除媒し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、対応するカルボン酸を3.55g（89％）得た。

水素化ナトリウム0.8gにDMF 5mLとテトラヒドロフラン（THF）20mLを加え、０℃で攪拌した。( S )-(+)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキソラン-4-メタノール2.4gのDMF（3mL）とTHF（3mL）混合溶液を滴下し、０℃で１時間攪拌した。4-メトキシベンジルクロリド2.8mLを加え、室温で３時間攪拌した。飽和塩化アンモニウム溶液を加えて、酢酸エチルで２回抽出し、得られた有機層を水で４回、飽和食塩水で１回洗浄した。有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥後、除媒し、( S )-(+)-4-（4-メトキシベンジルオキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキソランの粗製物を4.1g（89%）得た。

( S )-(+)-4-（4-メトキシベンジルオキシメチル)-2,2-ジメチル-1,3-ジオキソランの粗製物4.1gをメタノール10mLに溶解し、１規定塩酸を加えて室温で１日攪拌した。飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加えてpHを６に調整し、ジクロロメタンで４回抽出した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、除媒し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して( R )-(+)-3-（4-メトキシベンジルオキシ)-1,2-プロパンジオールを2.4g（収率69%）得た。

( R )-(+)-3-（4-メトキシベンジルオキシ）-1,2-プロパンジオール0.61gをジクロロメタン4mLに溶解し、上記で製造したカルボン酸2.63gとジメチルアミノピリジン69mg、エチルジメチルアミノプロピルカルボジイミド塩酸塩1.25gを加えて、室温で２日攪拌した。反応溶液に水を加えて、ジクロロメタンで２回抽出し、得られた有機層を無水硫酸マグネシウムで乾燥後、除媒し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、1,2-ジグリセリドを2.33g（74％）得た。

上記1,2-ジグリセリド1.79gにジクロロメタン25mLと水2.5mLを加え、さらに2,3-ジクロロ-5,6-ジシアノ-1,4-ベンゾキノン0.55gを加えて、室温で激しく２時間攪拌した。１規定水酸化ナトリウムを加えた後、酢酸エチルで抽出し、得られた有機層を飽和塩化アンモニウム溶液、飽和食塩水で洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、除媒し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、脱保護された1,2-ジグリセリドを1.26g（79％）得た。

Boc-Ser-O^tBu 0.34gを５mlのジクロロメタンに溶解し、トリエチルアミン0.40gを加えて０℃で撹拌した。塩化 N, N-ジイソプロピルメチルフォスフォンアミド0.32mLを加えて０℃で20分間撹拌した。氷冷の飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加えて、ジクロロメタンで２回抽出し、得られた有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、除媒した。
得られた残渣に、上記1,2-ジグリセリド体1.26gを20mlのジクロロメタンに溶解して加え、テトラゾール0.13gを加えて室温で１時間撹拌した。反応溶液に過酸化水素水（31％）0.5mLを加えて、室温で20分間撹拌した後、反応溶液に飽和食塩水を加えた。この溶液をジクロロメタンで２回抽出し、得られた有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、除媒し、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、リン酸トリエステルを1.22g（71％）得た。

上記リン酸トリエステル1.22gをメチルエチルケトン10mLに溶かし、ヨウ化ナトリウム0.70gを加えて30分間加熱還流した。反応溶液に１規定塩酸を加え、クロロホルム/メタノール（5/1）の混合溶液で抽出し、得られた有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥後、除媒し、リン酸ジエステルを1.15g（95％）得た。

上記リン酸ジエステル1.15gに塩酸/ジオキサン溶液（〜４mol/L）４mLを加えて室温で撹拌した。溶媒を留去して、得られた残渣にアセトニトリルを加えて、再結晶（３回）を行い、化合物１−５を0.92g（91％）得た。
化合物１−５
¹H-NMR (400MHz, CD₃OD) δ: 5.30-5.20 (1H, m), 4.43 (1H, dd), 4.40-4.27 (3H, m), 4.18 (1H, dd), 4.12-4.00 (2H, m), 2.36 (4H, dt), 2.28(2H, t), 2.13 (4H, ddd), 1.70-1.28 (20H, m).
Mass(MALDI-TOFF) : m/z (α-cyano-4-hydroxycinnamic acid) 1170(M+Na)； 1146 (M-H)

試験例１：リポソーム形成
J. Med. Chem., 25(12), 1500 (1982) に記載の方法に従い、下記に示した割合のジ・パルミトイルＰＣ（フナコシ社製、No.1201-41-0225）、ジ・パルミトイルＰＳ（フナコシ社製、No.1201-42-0237）を、本発明の化合物とともにナス型フラスコ内でクロロホルムに溶解して均一溶液とした後、溶媒を減圧で留去してフラスコ底面に薄膜を形成した。この薄膜を真空で乾燥後、0.9%生理食塩水（光製薬社製、No512）を適当量加え、超音波照射（Branson社製、No.3542プローブ型発振器、0.1mW）を氷冷下５分実施することにより、均一なリポソーム分散液を得た。得られた分散液の粒径をWBCアナライザー（日本光電社製、A-1042）で測定した結果、粒子径は85から110nmであった。このように本発明の化合物は効率よく下記組成リポソームに封入することができ、造影剤のためのリポソームの構成脂質として優れた性質を有することが明らかである。

リポソーム形成最大量
PC 50nmol + PS 50nmol + １−５ 20nmol

試験例２：マウス３日間連続投与毒性試験
ＩＣＲマウス雄６週齢（日本チャールスリバー）を購入し、１週間の検疫期間の後、クリーン動物舎内（空調：へパフィルタークラス1000、室温：２０℃〜２４℃ 湿度：３５％〜６０％）で１週間馴化した。その後、ＭＴＤ（最大耐量）値を求めるため、尾静脈より被験化合物のマウス血清懸濁液を投与した。被験化合物のマウス血清懸濁液は、生理食塩水（光製薬社製）又はグルコース溶液（大塚製薬社製）のいずれかを溶媒として投与した。次に求められたＭＴＤ値をもとに、その1/2量を３日間、尾静脈より３日間連続で投与した（ｎ＝３匹とする）。症状観察は各投与後６時間までとし、神経毒性を観察後、剖検を行ない、主要臓器について所見を取った。本発明の化合物は低毒性で、神経毒性も示さないことが明らかであり、造影剤のためのリポソームの構成脂質として優れた性質を有することが明らかである。
化合物：MTD(mg/kg)；神経毒性（「−」は神経毒性陰性、「＋」は神経毒性陽性を示す）
化合物１−５：400mg/kg；−

Claims

下記の一般式（Ｉ）：

［式中、ｌおよびｎはそれぞれ独立に１〜９の整数を表し；ｍおよびｏはそれぞれ独立に２〜１０の整数を表す］で表される化合物、またはその塩。
ｌおよびｎがそれぞれ独立に５〜９の整数であり、ｍおよびｏがそれぞれ独立に５〜１０の整数である請求項１に記載の化合物、またはその塩。
下記の一般式（II）：

［式中、ｌおよびｎはそれぞれ独立に１〜９の整数を表し；ｍおよびｏはそれぞれ独立に２〜１０の整数を表す］で表される化合物、またはその塩。
ｌおよびｎがそれぞれ独立に５〜９の整数であり、ｍおよびｏはそれぞれ独立に５〜１０の整数である請求項３に記載の化合物、またはその塩。
化合物を構成するフッ素原子のうち、少なくとも１つが¹⁸Fである請求項１〜４のいずれか一項に記載の化合物、またはその塩。
請求項１〜５のいずれか一項に記載の化合物又はその塩を膜構成成分として含むリポソーム。
ホスファチジルコリン及びホスファチジルセリンを膜構成成分として含む請求項６に記載のリポソーム。
請求項６又は７に記載のリポソームを含むＭＲＩ造影剤。
血管疾患の造影に用いるための請求項８に記載のＭＲＩ造影剤。
泡沫化マクロファージの影響で異常増殖した血管平滑筋細胞の造影に用いる請求項８に記載のＭＲＩ造影剤。
マクロファージが局在化する組織又は疾患部位の造影のための請求項８に記載のＭＲＩ造影剤。
マクロファージが局在化する組織が肝臓、脾臓、肺胞、リンパ節、リンパ管、及び腎臓上皮からなる群から選ばれる請求項１１に記載のＭＲＩ造影剤。
マクロファージが局在化する疾患部位が腫瘍、炎症部位、及び感染部位からなる群から選ばれる請求項１１に記載のＭＲＩ造影剤。
請求項６又は７に記載のリポソームを含むＰＥＴ造影剤。
血管疾患の造影に用いるための請求項１４に記載のＰＥＴ造影剤。
泡沫化マクロファージの影響で異常増殖した血管平滑筋細胞の造影に用いる請求項１４に記載のＰＥＴ造影剤。
マクロファージが局在化する組織又は疾患部位の造影のための請求項１４に記載のＰＥＴ造影剤。
マクロファージが局在化する組織が肝臓、脾臓、肺胞、リンパ節、リンパ管、及び腎臓上皮からなる群から選ばれる請求項１７に記載のＰＥＴ造影剤。
マクロファージが局在化する疾患部位が腫瘍、炎症部位、及び感染部位からなる群から選ばれる請求項１７に記載のＰＥＴ造影剤。