JP4879969B2 - 新規なクラスのepspシンターゼの同定 - Google Patents
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Description
本出願は、2005年4月8日に出願された米国仮特許出願番号第60/669,686;2005年5月6日に出願された第60/678,348;2005年6月29日に出願された第60/695,193;2005年10月11日に出願された第60/725,182の利益を主張し、その内容は、本明細書中にその全体を参考として援用する。
発明は、植物分子生物学、特に除草剤であるグリフォセートに対する抵抗性を付与する新規なクラスのEPSPシンターゼに関する。
N−ホスホノメチルグリシンは一般にグリフォセートと呼ばれ、重要な農用化学物質である。グリフォセートは、ホスホエノールピルビン酸(PEP)および3−ホスホシキミ酸(S3P)を5−エノールピルビル−3−ホスホシキミ酸に変換する酵素を阻害する。この酵素(5−エノールピルビルシキミ酸−3−リン酸シンターゼ、本明細書において「EPSPシンターゼ」または「EPSPS」と呼ぶ)の阻害は、シキミ酸経路を妨害することにより芳香族アミノ酸の生合成を阻害することによって植物細胞を死滅させる。
細菌、植物、植物細胞、組織、および種子にグリフォセート耐性を付与する組成物および方法が提供される。組成物には、クラスIIIと呼ばれる新規なクラスのEPSPS酵素、当該酵素をコードするポリヌクレオチド、そのポリヌクレオチドを有するベクター、およびそのベクターを有する宿主細胞がある。この新規なタンパク質は、以下のドメイン(クラスIIIドメイン)から選択される少なくとも1つの配列ドメインを有する:
ドメインI
ドメインIIa
ドメインIII
ドメインXIa
ドメインXIb
ドメインXIc
ドメインXIIa
ドメインXIIc
ドメインXVI
本発明は組成物に向けられており、生物に除草剤耐性、特にグリフォセート耐性を付与する方法が提供される。その方法は、本発明のクラスIIIグリフォセート耐性遺伝子をコードするヌクレオチド配列を用いて生物を形質転換することを伴う。特に、本発明は、グリフォセート耐性を付与するクラスの酵素およびその酵素をコードするヌクレオチド配列を認めている。その配列は、除草剤グリフォセートに対する耐性増大を示す植物を調製することに用途を見出している。したがって、形質転換された細菌、植物、植物細胞、植物組織、および種子が提供される。
ドメインI
ドメインIIa
ドメインIII
ドメインXIa
ドメインXIb
ドメインXIc
ドメインXIIa
ドメインXIIc
ドメインXVI
本発明の一態様は、配列番号1、3、7、45、47、および53に挙げられるポリヌクレオチド配列以外の、本発明のクラスIII配列ドメインの少なくとも1つを有するEPSPシンターゼ酵素をコードする単離されたポリヌクレオチドに関する。「以外の」により、本発明が、配列番号に列挙するポリヌクレオチド配列を含まないことを意味する。
除草剤抵抗性タンパク質もまた本発明に包含される。「除草剤抵抗性タンパク質」により、例えば、上記ドメインの少なくとも1つを有する、配列番号10、12、56、および59を含めたクラスIIIタンパク質を意味する。その断片、生物学的に活性な部分、および変異体もまた提供され、それらを使用して本発明の方法を実施することができる。
細菌細胞の形質転換は、エレクトロポレーションまたは化学的形質転換に限らない、当技術分野において公知のいくつかの技法の1つにより実現される(例えばAusubel(編)(1994年)Current Protocols in Molecular Biology、John Wiley and Sons, Inc.、インディアナポリス、インディアナ州)。毒性物質に対する抵抗性を付与するマーカーは、非形質転換細胞(被験DNAを含まず、発現もしていない)から形質転換された細胞(被験DNAを取り上げて発現している)を見分けるために有用である。本発明の一態様では、遺伝子は、細菌細胞または植物細胞の形質転換を評価するためのマーカーとして有用である。
本発明の方法は、植物にヌクレオチド構築物を導入することを伴う。「導入する」により、ヌクレオチド構築物が植物細胞の内部にアクセスする方法で、その植物にその構築物を提示することを意味する。本発明の方法は、ヌクレオチド構築物を植物に導入する特定の方法を使用する必要がなく、植物の少なくとも1つの細胞の内部にヌクレオチド構築物がアクセスすることだけが必要である。植物にヌクレオチド構築物を導入する方法は、安定形質転換法、一過性形質転換法、およびウイルス介在法を含めて当技術分野において公知であるが、それに限定されるわけではない。
本発明は、単子葉類および双子葉類を非限定的に含めた任意の植物種の形質転換のために使用してもよい。関心対象の植物の例には、トウモロコシ、モロコシ、コムギ、ヒマワリ、トマト、アブラナ科植物、コショウ、ジャガイモ、ワタ、イネ、ダイズ、サトウダイコン、サトウキビ、タバコ、オオムギ、ナタネ、アブラナ属種(Brassica sp.)、アルファルファ、ライムギ、ミレット、サフラワー、ラッカセイ、サツマイモ、キャッサバ、コーヒー、ココナッツ、パイナップル、柑橘類植物、ココア、チャ、バナナ、アボカド、イチジク、グアバ、マンゴー、オリーブ、パパイヤ、カシュー、マカダミア、アーモンド、カラスムギ、野菜、観賞植物、および針葉樹があるが、それに限定されるわけではない。
異種外来DNAを植物細胞に導入した後に、植物ゲノム中の異種遺伝子の形質転換または組み込みは、組み込まれた遺伝子に関連するポリヌクレオチド、タンパク質、および代謝物の分析などの様々な方法により確認される。
本発明の方法および同定されたドメインを使用して、グリフォセート耐性を付与する追加的なポリペプチド(例えば配列番号2、4、46、および48)を同定することができる。これらの追加的なポリペプチドは、EPSPシンターゼ配列を有する配列データベースを検索することにより、および/またはクラスIIIドメインの存在を検索するためのEPSPシンターゼのポリペプチド配列のアライメントにより同定することができる。これらのポリペプチドには、公知のポリペプチドおよび新たに同定されたポリペプチドがある。これらのドメインの幾分かの変更は、これらのドメインがグリフォセート抵抗性を付与する性質を破壊せずに事実上許容されるため、本明細書に挙げるドメインと等価であることが了解されている。
EPSPS遺伝子の単離
クラスIII EPSPS酵素をコードする遺伝子は、7つの異なる細菌(肺炎桿菌、アグロバクテリウムラジオバクター(Agrobacterium radiobacter)、リゾビウム種(Rhizobium sp.)、ブレブンドモナスベシキュラリス(Brevundomonas vesicularis)、アグロバクテリウムツメファシエンス、シュードモナスシリンゲ(Pseudomonas syringae)、およびブルセラ(Brucella)/オクロバクトラム(Ochrobactrum)から単離されている。
(実施例2)
シュードモナスシリンゲpvトマト(Pseudomonas syringae pv tomato)DC3000株由来EPSPシンターゼ遺伝子をクローニングする
次のプライマーを使用して、シュードモナスシリンゲpvトマトDC3000株(ATCC BAA−871)のゲノムDNAからEPSPシンターゼのコード配列をPCR増幅した:
(実施例3)
アグロバクテリウムラジオバクターC58株からEPSPシンターゼ遺伝子をクローニングする
次のプライマーを使用して、アグロバクテリウムツメファシエンスC58株(ATCC 33970)のゲノムDNAからEPSPシンターゼのコード配列をPCR増幅した:
(実施例4)
グリフォセート抵抗性についてgrg6およびgrg9を試験する
大腸菌細胞にそれぞれgrg6およびgrg9を有するプラスミドpAX703およびpAX702を形質転換し、様々な濃度のグリフォセートを含有するM63寒天培地に画線した。ベクタープラスミドpUC18をグリフォセート感受性対照として使用した。結果を下の表1に示す。この結果は、grg6またはgrg9の発現が高レベルのグリフォセートに対する抵抗性を付与することを実証している。
シュードモナスシリンゲpvシリンゲ(Pseudomonas syringae pv syringae)B728a株からEPSPシンターゼ遺伝子をクローニングする
次のプライマーを使用して、シュードモナスシリンゲpvシリンゲB728a株の単一ウェル単離コロニーからEPSPシンターゼコード配列をPCR増幅した:
(実施例6)
シュードモナスシリンゲpvファセオリコラ(Pseudomonas syringae pv phaseolicola)1148a株からのEPSPシンターゼ遺伝子のクローニング
シュードモナスシリンゲpvファセオリコラ1148a株のEPSPSについての配列データは、www.tigr.orgのThe Institute for Genomic Researchのホームページから得た。The Institute for Genomic Research(「TIGR」)から入手できるDNA配列(個人的に得た情報)に基づき設計された次のプライマーを使用して、シュードモナスシリンゲpvファセオリコラ1148a株(ATCC BAA−978)のゲノムDNAからシュードモナスシリンゲpvファセオリコラ1148a株のEPSPシンターゼのコード配列をPCR増幅した:
(実施例7)
グリフォセート抵抗性についてのgrg5およびgrg7の試験
それぞれgrg5、grg7、およびgrg7m1を有するプラスミドpAX713、pAX1923、およびpAX712を大腸菌細胞に形質転換し、様々な濃度のグリフォセートを含有するM63寒天培地に画線した。ベクタープラスミドpUC18をグリフォセート感受性対照として使用した。結果を下の表2に示す。この結果は、grg5、grg7、またはgrg7m1の発現が高レベルのグリフォセートに対する抵抗性を付与することを実証している。
ATX20019の単離
唯一のリン源としてグリフォセートを含有するHEPES無機塩培地(HMSM)のプレートに土壌試料を蒔くことによりATX20019を単離した。HMSMは芳香族アミノ酸を有さないことから、この培地上で成長するためには、株はグリフォセートに抵抗性でなければならない。
(実施例9)
コスミドライブラリーの調製およびスクリーニング
当技術分野において一般に公知の方法を使用して、ATX20019の培養物から総DNAを抽出した。制限酵素Sau3A1でDNAを部分消化し、製造業者の指示に従ってSuperCos(Stratagene)ベクター断片に連結した。GigaPack III XLパッケージング抽出物(Stratagene)を使用して連結産物をファージ粒子にパッケージし、大腸菌aroA−細胞にトランスフェクトした。大腸菌aroA−は、EPSPシンターゼをコードする天然aroA遺伝子が欠失した株である。この株は、外部から供給した芳香族アミノ酸を必要とするため、M63培地上では生育できない。EPSPシンターゼ遺伝子を有するコスミドが存在すると、AroA−表現型を遺伝的に相補でき、すなわち、外部から供給した芳香族アミノ酸なしにこの株をM63培地上で生育させる。
(実施例10)
コスミドpAX1101におけるgrg12の同定
コスミドpAX1101により示されるグリフォセート抵抗性を担う遺伝子を同定するために、このクローン由来のDNAを転移因子を用いて突然変異誘発した。この方法では、トランスポゾンの挿入を受け、グリフォセート抵抗性を付与する能力を失ったクローンが同定される。トランスポゾン挿入部の位置により、グリフォセート抵抗性表現型を担うオープンリーディングフレームが同定される。
(実施例11)
他のタンパク質とのGRG12の相同性
GRG12は、EPSPシンターゼ酵素と相同性を有する。GRG12のアミノ酸配列(配列番号10)と、他のEPSPシンターゼのアミノ酸配列とのアライメントを図1に示す。表3に様々なEPSPシンターゼとのGRG12の同一率を挙げる。アミノ酸配列(配列番号10)の調査により、それがクラスII EPSPシンターゼ酵素に典型的な4つのドメインを有さないことが明らかとなった。したがって、GRG12は新規な、クラスIIではないグリフォセート抵抗性EPSPシンターゼである。
(実施例12)
大腸菌にGRG12タンパク質を発現させるためのgrg12の操作
grg12のオープンリーディングフレーム(ORF)をPCRにより増幅し、やや変更したバージョンのプラスミドベクターpUC18にクローニングし、大腸菌DH5α株に形質転換した。pUC18への変更は次の通りであった:ストップコドンをlacZオープンリーディングフレームに挿入し、(挿入したgrg12 ORFの翻訳開始を最適化するための)リボソーム結合部位をBamHI制限部位上流に挿入した。プラスミドDNAを調製し、grg12挿入部の存在および方向を制限消化により決定した。ベクター中でlacプロモーターに関して順方向にORFを有する一クローンをpAX1106と名付け、グリフォセートに対する抵抗性を付与できる能力について試験した。0から200mMグリフォセートを含有するM63寒天プレート上に、pAX1106または空のベクタープラスミドを有する大腸菌細胞を画線した。結果を下の表4に示す。これらの結果は、grg12が高レベルのグリフォセートに対する抵抗性を付与することを実証している。
大腸菌に6×Hisタグ付きタンパク質として発現したGRG12の精製
PFUULTRA(商標)DNAポリメラーゼ(Stratagene)を使用したPCRによりgrg12のコード領域を増幅する。PCRを刺激するために使用するオリゴヌクレオチドは、結果として生じるPCR産物の5’末端および3’末端近くに制限酵素認識部位を導入するように設計する。適切な制限酵素を用いて、結果として生じるPCR産物を消化し、消化産物を6×Hisタグ発現ベクターpRSF1b(Novagen)にクローニングする。結果として生じるクローンは、6×Hisタグと同じ翻訳リーディングフレーム中に、そして6×Hisタグに直接隣接するC末端にgrg12を有する。当該クローンを作製するための、そして6×Hisタグを有するタンパク質を発現させるための一般的な戦略は、当技術分野において十分に公知である。
(実施例14)
ATX4150の単離
ATX4150は、唯一のリン源としてグリフォセートを含有する強化最少培地(EMM)のプレートに土壌試料を蒔くことにより単離した。EMMは芳香族アミノ酸を含有しないことから、この培地上で生育するためには、株はグリフォセートに抵抗性でなければならない。
(実施例15)
コスミドライブラリーの調製およびスクリーニング
当技術分野において一般に公知の方法を使用して、ATX4150の培養物から総DNAを抽出した。DNAを制限酵素Sau3A1で部分消化し、SuperCos(Stratagene)ベクター断片を製造業者の指示通りに用いて連結した。GigaPack III XLパッケージング抽出物(Stratagene)を使用して連結産物をファージ粒子にパッケージし、大腸菌aroA−細胞にトランスフェクトした。大腸菌aroA−は、EPSPシンターゼをコードする天然aroA遺伝子が欠失した株である。この株は、外部から供給した芳香族アミノ酸を必要とするため、M63培地上では生育できない。EPSPシンターゼ遺伝子を有するコスミドが存在すると、AroA−表現型を遺伝的に相補でき、すなわちコスミドは外部から供給した芳香族アミノ酸なしにこの株をM63培地上で生育させる。
(実施例16)
コスミドpAX305中のgrg15の同定
コスミドpAX305により示されるグリフォセート抵抗性を担う遺伝子を同定するために、転移因子を用いてこのクローン由来のDNAを突然変異誘発した。EZ::TN Insertion Kit(Epicentre、マディソン、ウィスコンシン州)および製造業者のプロトコールを使用したin vitroトランスポゾン突然変異誘発にコスミドpAX305を供した。pAX305のトランスポゾン挿入クローンを大腸菌に形質転換し、グリフォセートを含有するM63培地のプレートに蒔いた。グリフォセートの存在下で生育できる能力を失った多数のクローンが見出された。これは、トランスポゾンが、抵抗性を担う遺伝子を破壊したことを示している。
(実施例17)
GRG15と他のタンパク質との相同性
GRG15はEPSPシンターゼ酵素に相同性を有する。GRG15のアミノ酸配列(配列番号12)と、他のEPSPシンターゼのアミノ酸配列とのアライメントを図1に示す。表5に様々なEPSPシンターゼとのGRG15の同一率を挙げる。アミノ酸配列(配列番号12)の調査により、それがクラスII EPSPシンターゼ酵素に典型的な4つのドメインを有さないことが明らかとなった。したがって、GRG15は新規な、クラスIIではないグリフォセート抵抗性EPSPシンターゼである。
グリフォセート抵抗性非クラスII酵素(クラスIII)間の相同性ブロック
GRGタンパク質(非クラスIIグリフォセート抵抗性タンパク質)のアミノ酸配列の比較は、GRGタンパク質が相互に有意な相同性を有し、以前に同定されたグリフォセート抵抗性EPSPシンターゼとは別個であることを示している(図1参照)。
(実施例19)
保存されたドメインの同定
7つの公知のEPSPシンターゼのアミノ酸配列を、クラスIまたはクラスII EPSPシンターゼのいずれにも存在しない保存されたドメインについて解析した。これらのEPSPシンターゼに次のドメインが見出される(太字はこのクラスの間だけに保存されている残基を表し、斜体字は全てのEPSPS酵素で保存されている残基を表す)。
ドメインI
ドメインIIa
ドメインIII
ドメインXIa
ドメインXIb
ドメインXIc
ドメインXIIa
ドメインXIIc
ドメインXVI
(実施例20)
植物形質転換のためのgrg12の操作
完全長cDNAテンプレートからPCRによりgrg12のオープンリーディングフレーム(ORF)を増幅する。PCRの間にORFの各末端にHindIII制限部位を付加する。そのうえ、この遺伝子の開始コドンの5’に直接、ヌクレオチド配列ACCを付加して、翻訳効率を増大させる(Kozak(1987年)Nucleic Acids Research15巻:8125〜8148頁;Joshi(1987年)Nucleic Acids Research15巻:6643〜6653頁)。当技術分野において十分に公知の技法を使用してPCR産物をクローニングおよび配列決定し、PCRの間に突然変異が導入されていないことを確認する。
(実施例21)
植物細胞へのgrg12の形質転換
受粉の8〜12日後にトウモロコシの穂を最もよく採集する。穂から胚を単離する。形質転換に使用するためには大きさ0.8〜1.5mmの胚が好ましい。DN62A5S培地(3.98g/L N6塩類、1mL/L N6ビタミン類(1000×原液)、800mg/L L−アスパラギン、100mg/Lミオイノシトール、1.4g/L L−プロリン、100mg/Lカザミノ酸、50g/Lスクロース、1mL/L 2,4−D(1mg/mL原液))などの適切なインキュベーション培地のプレート上に胚を胚盤側を上にして蒔く。しかし、DN62A5S以外の培地および塩類も当技術分野において公知である。暗条件で25℃で一晩胚をインキュベートする。しかし、胚を一晩インキュベートすることは本質的に必要ない。
表6.DN62A5S培地
(実施例22)
アグロバクテリウム介在性形質転換によるトウモロコシ植物細胞へのgrg12の形質転換
受粉の8〜12日後にトウモロコシの穂を最もよく採集する。穂から胚を単離する。形質転換に使用するためには大きさ0.8〜1.5mmの胚が好ましい。適切なインキュベーション培地のプレート上に胚を胚盤側を上にして蒔き、暗条件で25℃で一晩インキュベートする。しかし、胚を一晩インキュベートすることは本質的に必要ではない。Tiプラスミド介在導入を約5〜10分間行うために、適切なベクターを有するアグロバクテリウム株と胚を接触させ、次に同時培養培地のプレート上にその胚を約3日間蒔く(25℃暗条件)。同時培養後に、外植片を回復期培地に約5日間(25℃暗条件)移す。利用する特定の選択の性質および特徴に応じて、外植片を選択培地中で最長8週間インキュベートする。選択期の後に、結果として生じたカルスを、成熟体細胞胚の形成が観察されるまで胚成熟培地に移す。次に、結果として生じた成熟体細胞胚を微光下に置き、当技術分野において公知の再生過程を開始させる。結果として生じたシュートを発根培地上で発根させ、結果として生じた植物を育苗ポットに移植し、トランスジェニック植物として繁殖させる。
Claims (31)
- グリフォセート耐性5−エノールピルビルシキミ酸−3−リン酸シンターゼ(EPSPS)酵素をコードするポリヌクレオチドであって、該ポリヌクレオチドは、以下:
a)配列番号9、11、55、57、58、もしくは60のヌクレオチド配列、またはその相補体、
b)配列番号9、11、57、58、もしくは60のヌクレオチド配列と少なくとも95%の配列同一性を有するヌクレオチド配列またはその相補体、
c)受託番号B−30833もしくは受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物の除草剤抵抗性ヌクレオチド配列またはその相補体であって、該受託番号B−30833として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号57であり、該受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号11である、ヌクレオチド配列またはその相補体、
d)配列番号10、12、56、または59のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするヌクレオチド配列、および
e)配列番号10のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、配列番号59のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、または、配列番号12のアミノ酸配列と少なくとも96%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
からなる群から選択される、ポリヌクレオチド。 - 前記ポリヌクレオチドが、植物細胞における該ポリヌクレオチドの発現を指向させ得るプロモーターに連結している、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- 前記ポリヌクレオチドが、植物細胞において機能するプロモーターに連結しており、コードされるEPSPS酵素の十分な発現を可能にするRNA配列の産生を引き起こし、前記ポリヌクレオチドを用いて形質転換された植物細胞のグリフォセート耐性を高める、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- 植物細胞において前記RNA配列の3’末端へのひと続きのポリアデニル化ヌクレオチドの付加を引き起こすように機能する3’非翻訳領域をさらに含む、請求項3に記載のポリヌクレオチド。
- 前記プロモーターが、前記ポリヌクレオチドに対して異種である、請求項3に記載のポリヌクレオチド。
- アミノ末端クロロプラスト輸送ペプチドおよび前記EPSPS酵素を含む融合ポリペプチドをコードする、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- a)植物細胞のゲノムに、
i)植物細胞においてRNA配列の産生を引き起こすように機能するプロモーター、
ii)グリフォセート耐性5−エノールピルビルシキミ酸−3−リン酸シンターゼ(EPSPS)酵素をコードするポリヌクレオチドであって、該ポリヌクレオチドは、以下:
1)配列番号9、11、55、57、58、もしくは60のヌクレオチド配列、またはその相補体、
2)配列番号9、11、57、58、もしくは60のヌクレオチド配列と少なくとも95%の配列同一性を有するヌクレオチド配列またはその相補体、
3)受託番号B−30833もしくは受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物の除草剤抵抗性ヌクレオチド配列またはその相補体であって、該受託番号B−30833として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号57であり、該受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号11である、ヌクレオチド配列またはその相補体、
4)配列番号10、12、56、または59のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするヌクレオチド配列、および
5)配列番号10のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、配列番号59のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、または、配列番号12のアミノ酸配列と少なくとも96%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
からなる群から選択される、ポリヌクレオチド、および
iii)植物細胞において前記RNA配列の3’末端へのひと続きのポリアデニル化ヌクレオチドの付加を引き起こすように機能する3’非翻訳ポリヌクレオチド
を含むポリヌクレオチドを挿入する工程と、
b)形質転換された植物細胞を得る工程と、
c)前記形質転換された植物細胞から、グリフォセート除草剤に対して増大した耐性を有する遺伝的に形質転換された植物を再生する工程と
を含む、グリフォセート除草剤に対して耐性を有する、遺伝的に形質転換された植物を作出する方法。 - 前記形質転換された植物を得る工程が、グリフォセート除草剤に対する耐性の増強についてスクリーニングすることを含む、請求項7に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチドが、アミノ末端クロロプラスト輸送ペプチドおよびEPSPS酵素を含む融合ポリペプチドをコードする、請求項7に記載の方法。
- 請求項1に記載の異種ポリヌクレオチドを含む、グリフォセート耐性植物細胞。
- トウモロコシ、コムギ、イネ、オオムギ、ダイズ、ワタ、サトウダイコン、ナタネ、カノーラ、アマ、ヒマワリ、ジャガイモ、タバコ、トマト、アルファルファ、ポプラ、マツ、ユーカリ、リンゴ、レタス、エンドウ、レンズマメ、ブドウ、およびシバクサからなる群から選択される、請求項10に記載のグリフォセート耐性植物細胞。
- 請求項10に記載の植物細胞を有するグリフォセート耐性植物。
- 請求項12に記載の植物の形質転換された種子。
- トウモロコシ、コムギ、イネ、オオムギ、ダイズ、ワタ、サトウダイコン、ナタネ、カノーラ、アマ、ヒマワリ、ジャガイモ、タバコ、トマト、アルファルファ、ポプラ、マツ、ユーカリ、リンゴ、レタス、エンドウ、レンズマメ、ブドウ、およびシバクサからなる群から選択される、請求項12に記載のグリフォセート耐性植物。
- a)配列番号10、12、56、または59のアミノ酸配列を含むポリペプチド;
b)配列番号9、11、55、57、58、または60のヌクレオチド配列によりコードされるポリペプチド;
c)配列番号10のアミノ酸配列と少なくとも99%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド、配列番号59のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、または、配列番号12のアミノ酸配列と少なくとも96%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチドであって、除草剤抵抗活性を有するポリペプチド;
d)配列番号9、11、57、58、または60のヌクレオチド配列と少なくとも95%同一のヌクレオチド配列によりコードされるポリペプチドであって、除草剤抵抗活性を有するポリペプチド;および
e)受託番号B−30833または受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物の除草剤抵抗性ヌクレオチド配列またはその相補体によりコードされるポリペプチドであって、該受託番号B−30833として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号57であり、該受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号11である、ポリペプチド
からなる群から選択される、ポリペプチド。 - 異種アミノ酸配列をさらに含む、請求項15に記載のポリペプチド。
- 植物種子または植物を有する圃場での雑草を選択的に制御する方法であって、
a)i)植物細胞においてRNA配列の産生を引き起こすように機能するプロモーター、
ii)グリフォセート耐性5−エノールピルビルシキミ酸−3−リン酸シンターゼ(EPSPS)酵素をコードするポリヌクレオチドであって、該ポリヌクレオチドは、以下:
1)配列番号9、11、55、57、58、もしくは60のヌクレオチド配列、またはその相補体、
2)配列番号9、11、57、58、もしくは60のヌクレオチド配列と少なくとも95%の配列同一性を有するヌクレオチド配列またはその相補体、
3)受託番号B−30833もしくは受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物の除草剤抵抗性ヌクレオチド配列またはその相補体であって、該受託番号B−30833として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号57であり、該受託番号B−30838として寄託されたプラスミドのDNA挿入物のヌクレオチド配列は配列番号11である、ヌクレオチド配列またはその相補体、
4)配列番号10、12、56、または59のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするヌクレオチド配列、および
5)配列番号10のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、配列番号59のアミノ酸配列と少なくとも99%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチド、または、配列番号12のアミノ酸配列と少なくとも96%のアミノ酸配列同一性を有するポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
からなる群から選択される、ポリヌクレオチド、および
iii)植物細胞において前記RNA配列の3’末端にひと続きのポリアデニル化ヌクレオチドの付加を引き起こすように機能する3’非翻訳ポリヌクレオチド
を有する異種ポリヌクレオチドを含むポリヌクレオチドがゲノムに組み込まれている、グリフォセート耐性の前記種子または植物を定植する工程ならびに、
b)前記植物に有意に影響を与えずに、前記雑草を制御するために十分な量のグリフォセート除草剤を、前記圃場の前記植物および前記雑草に適用する工程
を含む方法。 - 前記植物または植物種子が作物植物を含む、請求項17に記載の方法。
- 前記プロモーターが、前記ポリヌクレオチドに対して異種であり、前記ポリヌクレオチドを用いて形質転換された植物のグリフォセート耐性を高めるために前記EPSPS酵素の十分な発現を引き起こすように適合されている、請求項17に記載の方法。
- a)植物細胞のゲノムに請求項1に記載のポリヌクレオチドを挿入する工程、
b)形質転換された植物細胞を得る工程、および
c)前記形質転換された植物細胞から、グリフォセート除草剤に対して増大した耐性を有する、遺伝的に形質転換された植物を再生する工程
を含む、グリフォセート除草剤に対して耐性を有する、遺伝的に形質転換された植物を作出する方法。 - 請求項1に記載のポリヌクレオチドを含むDNA構築物を用いて植物細胞を形質転換すること、および形質転換された植物を再生することを含む、グリフォセートに耐性の、遺伝的に形質転換された植物を作出する方法。
- 前記DNA構築物が、植物細胞において機能するプロモーターをさらに含み、コードされるEPSPS酵素の十分な発現を可能にするRNA配列の産生を引き起こし、前記ポリヌクレオチドを用いて形質転換された植物細胞のグリフォセート耐性を高める、請求項21に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチドが、アミノ末端クロロプラスト輸送ペプチドおよびEPSPS酵素を含む融合ポリペプチドをコードする、請求項21に記載の方法。
- 配列番号9、11、55、57、58、および60からなる群から選択されるポリヌクレオチドを含む、グリフォセート耐性植物細胞。
- トウモロコシ、コムギ、イネ、オオムギ、ダイズ、ワタ、サトウダイコン、ナタネ、カノーラ、アマ、ヒマワリ、ジャガイモ、タバコ、トマト、アルファルファ、ポプラ、マツ、ユーカリ、リンゴ、レタス、エンドウ、レンズマメ、ブドウ、およびシバクサからなる群から選択される、請求項24に記載のグリフォセート耐性植物細胞。
- 請求項24に記載の植物細胞を含むグリフォセート耐性植物。
- トウモロコシ、コムギ、イネ、オオムギ、ダイズ、ワタ、サトウダイコン、ナタネ、カノーラ、アマ、ヒマワリ、ジャガイモ、タバコ、トマト、アルファルファ、ポプラ、マツ、ユーカリ、リンゴ、レタス、エンドウ、レンズマメ、ブドウ、およびシバクサからなる群から選択される、請求項26に記載のグリフォセート耐性植物。
- 請求項26に記載の植物の形質転換された種子。
- 定植された種子または植物を有する圃場における雑草を選択的に制御する方法であって、
a)請求項26に記載の植物、またはそれから得られた形質転換された種子を定植する工程、および
b)前記植物に有意に影響を与えずに、前記雑草を制御するために十分量のグリフォセート除草剤を、前記圃場の前記植物および雑草に適用する工程
を含む方法。 - 前記植物または植物種子が作物植物を含む、請求項29に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチドが、アミノ末端クロロプラスト輸送ペプチドおよびEPSPS酵素を含む融合ポリペプチドをコードする、請求項29に記載の方法。
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