JP4759508B2 - ペプチドの水溶性及び金属標識効率を改善した医療用組成物及び該ペプチドが金属標識された医療用製剤 - Google Patents
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Description
従来、金属標識可能なペプチドは、そのペプチド構造内にアルキル基などの疎水部分が多い分子ほど水系溶媒への溶解性が低く、そのようなペプチドを水系溶媒に溶解するには、ジメチルスルホオキシド(DMSO)やジメチルホルムアミド(DMF)などの有機溶媒に予め溶解させておき、必要とする量の水、あるいは緩衝液、またあるいは何らかの水溶液と混合する手法が用いられる。例えば、ペプチドの一つであるホルミル−Met−Leu−Phe(FMLP)は中性の緩衝液に難溶であることが知られている。この化合物を金属標識可能とした化合物ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ヒドラジノニコチン酸(fMLFK−HYNIC)を水系溶媒に溶解するためには、DMSOを用いて溶解した後、必要な緩衝液あるいは水系溶媒を加える必要がある(非特許文献1参照)。
しかしながら、上記方法で溶解させる場合、水系溶媒と混合したときに溶解可能な有機溶媒の溶液に占める割合が減少し、ある一定の有機溶媒濃度を下回ると、白濁や析出などペプチドの不溶化が起こる場合があった。
例えば、fMLFK−HYNICは、室温30分〜60分の反応条件が必要とされている(非特許文献1参照)。
FMLPの誘導体であるペプチド群は炎症などの白血球浸潤を伴う疾患の画像化に有用とされるが、完全な水系溶媒でかつ金属標識が室温で可能な条件については明らかではない(非特許文献2参照)。
更に本発明は、上記医療用組成物を凍結乾燥することによって得られることを特徴とする凍結乾燥した医療用組成物に関する。
更に本発明は、上記医療用組成物における金属標識可能なペプチドを金属で標識することにより得られることを特徴とする医療用製剤に関する。
更に本発明は、金属標識可能なペプチドに金属を標識する方法であって、該ペプチドを塩基性有機化合物の水系溶媒に溶解させた後、金属を標識することを特徴とする金属標識方法に関する。
更に本発明は、上記金属標識方法を用いることを特徴とする、金属標識されたペプチドを含有する医療用製剤の製造方法に関する。
塩基性有機化合物としては、例えば、塩基性アミノ酸やイミダゾール環を有する塩基性化合物が挙げられる。塩基性アミノ酸としては特に限定されないが、例えばアルギニン、リジン、ヒスチジン、ヒドロキシリジンなどが挙げられ、好ましくはアルギニン、リジン、ヒスチジン、より好ましくはアルギニンを使用する。イミダゾール環を有する塩基性化合物としては特に限定されないが、イミダゾールを例示することができる。塩基性アミノ酸あるいはイミダゾール環を有する塩基性化合物は1種を単独で用いることもできるが、2種以上を組み合わせて使用してもよい。
上記濃度範囲において、組成物として好ましい溶液のpHは8〜12であり、より好ましくはpH8.5〜12である。pHが8より酸性の場合、塩基性有機化合物による溶解促進効果が損なわれるため好ましくなく、pH12よりもアルカリ性の場合、生体へ悪影響を与える恐れがあるため好ましくない。
(化1)
Z−Y−Leu−Phe−(X)n−Lys(NH2)m−ε(−(R)o−(T)l−U)(1)
で表される化合物が好適に用いられる。ここで、化学式(1)は、白血球のホルミルペプチド受容体との結合部位Z−Y−Leu−Phe−、全白血球中の単球、リンパ球への結合率を向上させる結合部分−(R)o−、放射性金属、常磁性金属を標識可能な構造−U−、およびこれらを結合するスペーサー−(X)n−、−Lys(NH2)m−および−(T)l−よりなっている。
化学式(1)中、Zはアミノ基の保護基を表し、YはMetまたはNleを表し、(X)nにおいて、Xは1個もしくはそれ以上のアミノ酸又は有機合成可能な化合物よりなるスペーサー、nは1または0を表し、(NH2)mにおいて、NH2はLysのα位のカルボキシル基の保護基としてのアミド基、mは1または0を表し、ε(−(R)o−(T)l−U)において、RはLysのε−アミノ基にアミド結合したSerまたはThr、oは1または0、Tは1個もしくはそれ以上のアミノ酸又は有機合成可能な化合物よりなるスペーサー、lは1または0、Uは金属標識可能な基を表す。但し、XとTは同じでも異なっていてもよい。
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−Cys−Gly−Asn)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−Cys−Gly−Asp)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys−ε(−Ser−Cys−Asp−Asp)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−D−Arg−Asp−Cys−Asp−Asp)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−e(−Ser−D−Arg−ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA))、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA))、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Asp−Asp−メルカプトアセチル)、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Gly−Asp−メルカプトアセチル)、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Gly−Gly−メルカプトアセチル)、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Asp−Gly−メルカプトアセチル)、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA))、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ヒドラジノニコチン酸
などが挙げられる。
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−Cys−Gly−Asn)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−Cys−Gly−Asp)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys−ε(−Ser−Cys−Asp−Asp)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−ε(−Ser−D−Arg−Asp−Cys−Asp−Asp)、
N−ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−e(−Ser−D−Arg−ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA))、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Asp−Asp−メルカプトアセチル)、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Gly−Asp−メルカプトアセチル)、
N−ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−ε(−Gly−Gly−メルカプトアセチル)
などが挙げられる。
化学式(1)に記載の化合物を本発明に用いる場合には、金属標識可能な基を、適当な保護基で保護したものを用いることもできる。
(1)全てアミノ酸から構成される場合は、アプライドバイオシステムズ社製ペプチド自動合成機等の汎用的に使用されているペプチド自動合成装置によりBoc法、あるいはFmoc法等により合成することができる。合成された複合体は、固相用樹脂担体に結合した状態から脱保護基と樹脂担体切り放しを同時に行い、その後、逆相系カラム等を用いた高速液体クロマトグラフ法(以下、HPLC法という)にて精製することができる。その他、ペプチド液相合成法により調製してもよく、また、動物等から採取してもよい。
他の金属標識可能なペプチドも上記方法を採用することによリ容易に合成することができる。
親水性有機溶媒としては特に限定されないが、例えば、エタノール、プロパノール、ブタノール、アセトニトリル、アセトン、メチルエチルケトンなどの極性有機溶媒を挙げることができる。親水性有機溶媒の添加量は、好ましくは医療用組成物中0.1〜10重量%であり、より好ましくは0.2〜1重量%である。
還元剤は、標識される金属が酸化されるのを防ぐために添加される。還元剤としては特に限定されないが、例えば、塩化第一スズ、アスコルビン酸、水素化ホウ素ナトリウムなどを挙げることができる。還元剤を添加する際の濃度は、医療用組成物中0.01mM〜10mMとなるように添加することが好ましく、さらに好ましくは、0.05mM〜1mMの範囲で添加する。
pH調整剤としては特に限定されないが、例えば、塩酸、酢酸、トリフルオロ酢酸(以下、「TFA」とする)、クエン酸、リン酸、アスコルビン酸、水酸化ナトリウム、アンモニアなどを挙げることができる。
安定化剤としては特に限定されないが、例えば、アスコルビン酸、アスコルビン酸ナトリウム、p−アミノ安息香酸、p−アミノ安息香酸ナトリウム、ゲンチシン酸、ゲンチシン酸ナトリウムなどを挙げることができる。安定化剤を添加する際の濃度は、組成物中0.1mM〜1Mとなるように添加することが好ましく、さらに好ましくは、5mM〜500mMの範囲で添加する。
水系溶液の形態あるいは凍結乾燥した形態にある本発明の医療用組成物は、金属などを含む標識用試薬などと共に、診断薬あるいは治療用医薬品として、供することができる。
金属で標識する際の条件としては、室温で5分〜24時間、好ましくは5〜60分、より好ましくは10〜30分、攪拌や振倒する等の条件を用いることができる。
例えば、ヒトを対象とする場合、Tc−99m標識ペプチドを用いた診断剤の投与量は、Tc−99mの放射能量として37MBq〜1110MBqの範囲であり、好ましくは185MBq〜1110MBqである。Re−186またはRe−188標識ペプチドを用いた治療剤の場合は、放射能量として37MBq〜18500MBqの範囲であり、好ましくは370MBq〜7400MBqである。Y−90標識ペプチドを用いた治療剤の場合は、放射能量として37MBq〜3700MBqの範囲であり、好ましくは37MBq〜1110MBqの範囲である。他の放射性金属で標識した標識ペプチドの投与量もほぼ同様である。Gd、Fe、Mn、Cu、Dyなどの常磁性金属で標識した標識ペプチドを用いた診断剤の投与量は、MRI画像化装置の感度、標的組織、投与の特定の様式および使用の意図される効果に応じて適宜選択される。
例えば、ヒトに対して静脈内投与する場合であって、用いる金属がGdである場合は、通常は、体重当り0.01〜0.3mmol/kgの範囲の投与量が好ましく用いられる。
実施例において得られた物質の測定方法、使用した試薬等を下記に示す。
(1)ガンマカウンター: 血液内分布は、オートウェルガンマカウンター(アロカ株式会社製)を用いて測定した。体内分布検討は、NaIシングルチャンネルアナライザー(応用光研工業株式会社製)を用いて測定した。
(2)ガンマカメラ:GMS−550U(東芝メディカル株式会社製)、またはMillennium MG(GE横河メディカルシステム株式会社製)を用いて測定した。
(3)逆相HPLC:逆相カラムCosmosil 5C18−AR−300(ナカライテスク株式会社製、4.6×150mm)を用いた。
(4)ペプチド化合物は全て、固相合成法により作製した。
(5)99mTcO4 −:99Mo/99mTcジェネレーター(商品名;メジテック、日本メジフィジックス株式会社製)を用い、生理食塩液にて溶出したものを用いた。
(6)試薬はすべて特級試薬以上の製品を用いた。
(7)すべての実験動物は実験に先立ち1週間12時間毎の明暗サイクル条件下で飼育した。その期間、餌および水は自由に摂取させた。
ペプチド1:ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−e(−Ser−D−Arg−Asp−Cys−Asp−Asp)
ペプチド2:ホルミル−Nle−Leu−Phe−Nle−Tyr−Lys(NH2)−e(−Ser−D−Arg−DTPA*)
ペプチド3:ホルミル−Met−Leu−Phe−Lys−e(−Gly−Asp−Ac−S−Bzl)
*:DTPA:ジエチレントリアミンペンタ酢酸
ペプチド1を、固相合成法により製造し、以下の実施例に用いた。
アプライドバイオシステムズ社製ペプチド合成機(モデル430A)を用い、Boc法によりMBHA樹脂(p-Methoxy-Benzhydrylamine Resin hydrochloride,1%Divinylbenzene-polystyrene copolymer)を用いて0.5mMスケールの条件で合成を行った。この際C末端、Lys残基の側鎖はFmoc基で保護した。ペプチド鎖を伸長、N末端アミノ基をホルミル化した後、Lys残基の側鎖Fmoc基を20%ピペリジン/DMFで切断し、側鎖側にペプチド鎖を伸長した。ペプチドの切出しは、無水フッ化水素:p−クレゾール(80:20)中、−2℃から−5℃において1.0時間反応させて行った。
合成したペプチドにつき、HPLC法(カラム:YMC−Pack ODS−A SH−365−5(商品名、株式会社ワイエムシイ製、30×250mm)、カラム温度:室温、溶出速度:20mL/分、検出器:紫外可視吸光光度計(吸収波長:220nm)、溶出液A:0.1% TFA/精製水、溶出液B:0.1% TFA/アセトニトリル、(A/B(80%/20%)→A/B(30%/70%)90分))を用いて主ピークを分取し、凍結乾燥した。得られたペプチドにつき、逆相HPLC(カラム:Zorbax300SB−C18(商品名、横河アナリティカルシステムズ株式会社製、4.6×150mm)、カラム温度:50℃、流速:1.0mL/分、検出器:紫外可視吸光光度計(吸収波長:220nm)、溶出液A:0.1%TFA/精製水、溶出液B:0.1% TFA/アセトニトリル(A/B(80%/20%)→A/B(30%/70%)25分))を用いて、分析を行った。その結果、得られたペプチドの純度は93.2%(面積百分率)であった。
なお、MBHA樹脂のかわりにプレロードレジンを用いても同様に合成が可能であった。
アミノ酸組成分析条件
機種:L−8800形日立高速アミノ酸分析計
クロマト条件
カラムサイズ:4.6mm I.D.x60.0mm
固定相:日立カスタムイオン交換樹脂#2622
移動相:クエン酸ナトリウム系緩衝液(4種類及び分析カラム再生用0.2N−
NaOH試液)の段階的溶出法
(1)L−8500−PH1:0.16N,pH3.3
(2)L−8500−PH2:0.2N,pH3.2
(3)L−8500−PH3:0.2N,pH4.0
(4)L−8500−PH4:1.2N,pH4.9
流速:0.40mL/分
カラム温度:57℃
検出
試薬:(1)ニンヒドリン試液(2)ニンヒドリン用緩衝液(Ninhydrin Re agent L-8500 Set)
反応試薬流速:0.35mL/分
反応装置:電子加熱反応カラム,設定温度:135℃
検出波長:570nmおよび440nm
標準アミノ酸
試薬:味の素Amino Acid Calibration Mixture
濃度:各50nmol/mL (但しProは100nmol/mL)
希釈液:0.2M Na Citrate Buffer(pH2.2)
注入量:40μL(各アミノ酸2nmol,Proは4nmol))
定量計算方法:面積値による1点絶対検量線法
以下に得られたペプチド1のアミノ酸組成の分析値(分子当たりの個数)及び質量分析の結果を示す。なお、丸かっこ内は、目的ペプチドのアミノ酸組成の理論値を示す。
また、得られたペプチド1のESI−MSの分析値を示す。丸かっこ内は、目的ペプチドの分子量の理論値を示す。
ESI−MS:MW=514.4(1514.7)
(1)方法
ペプチド1、ペプチド2及びペプチド3の各100μgを410mMのアルギニン溶液(pH11)に加え、全量を700μLとした。この時のモル濃度は、ペプチド1は94μM、ペプチド2は99μM、ペプチド3は161μMとなる。外観観察により白濁の有無を確認した後、各試料液から200μLを孔径0.22μmのフィルター、マイレクス(登録商標)−GV(商品名、日本ミリポア株式会社製)にてろ過し、フィルターろ過前の試料液とフィルターろ過後の試料液をそれぞれ逆相HPLCにて分析し、フィルター前後のペプチドのピーク面積値からピーク面積百分率を求め、溶出率とした。HPLC分析条件を下記に示す。
比較例として、水、ジメチルスルホオキシド(DMSO)それぞれに、ペプチド1、ペプチド2およびペプチド3を溶解させ、それぞれ94μM、99μM、161μMのペプチド濃度とした試料について、同様に検討を行った。
HPLC条件
カラム:Cosmosil 5C18−AR−300(ナカライテスク株式会社製、4.6×150mm)
溶出速度:1mL/分
検出:紫外可視吸光光度計(検出波長:220nm)
HPLCシステム:Alliance(日本ウォーターズ株式会社製)
溶出液A:0.1%トリフルオロ酢酸(以下TFA)/精製水
溶出液B:0.1%TFA/アセトニトリル
濃度勾配:0分(溶出液B20%)→25分(溶出液B70%)
得られた結果を表1および図1に示す。各ペプチドを溶解後、外観を観察した結果、3種のペプチドは水では白濁がみられたのに対し、アルギニン水溶液では3種のペプチドの全てが無色澄明な外観を示した。これはDMSOの試料溶液と同様な外観を示した。逆相HPLCを用いた溶出率においては、アルギニンおよびDMSOの各試料溶液のいずれもが、約100%の溶出率を示した。これらの結果より、DMSOと同様に、アルギニンはペプチドの溶解性を高めていることが確認された。
(1)方法
アルギニン、リジンおよびヒスチジンを水に溶解し、アルギニン溶液は410mM、リジン溶液は489mM、ヒスチジン溶液は90mMの濃度にて調製した。これらの溶液に水酸化ナトリウム水溶液および塩酸にて、リジンおよびヒスチジン水溶液はpH8、9、10、11に、アルギニン水溶液はpH8、8.5、9、9.5、10、11に調整した。続いてペプチド1をこれら水溶液に加えて94μMの濃度にて調製し、外観観察により白濁の有無を確認した。各試料液から200μLを孔径0.22μmのフィルター、マイレクス(登録商標)−GV(商品名、日本ミリポア株式会社製)にてろ過し、フィルターろ過前の試料液とフィルターろ過後の試料液をそれぞれ逆相HPLCにて分析し、フィルター前後のペプチド1のピーク面積値からピーク面積百分率を求め、溶出率とした。HPLC分析条件は実施例1記載と同じ条件にて実施した。
得られた結果を表2に示す。アルギニン水溶液はpH8で明らかな白濁が認められた。アルギニン、リジン、及びヒスチジンの各水溶液ではpH8.5以下では弱い白濁が見られたが、リジン及びヒスチジン水溶液は、pH8においても20%強の溶出率が認められ、リジン及びヒスチジンは、pH8においてもペプチドを溶解させる効果があることが確認された。さらに、アルギニン、リジン、及びヒスチジン水溶液において、pH9以上では無色澄明な溶液となり、ペプチドの溶出率も85%以上であった。従って、これらの塩基性アミノ酸は、pH8以上で、ペプチドの溶解性を奏し得ることが示された。
(1)方法
イミダゾールを水に溶解し、1mMの濃度にて調製した。この溶液に塩酸を適当量加えることにより、pH8、8.5、9に調整した。続いてペプチド1をこれらイミダゾール溶液に加えて94μMの濃度にて調製し、外観観察により白濁の有無を確認した。各試料液から200μLを孔径0.22μmのフィルター、マイレクス(登録商標)−GV(商品名、日本ミリポア株式会社製)にてろ過し、フィルターろ過前の試料液とフィルターろ過後の試料液をそれぞれ逆相HPLCにて分析し、フィルター前後のペプチド1のピーク面積値からピーク面積百分率を求め、溶出率とした。HPLC分析条件は実施例1記載と同じ条件にて実施した。
得られた結果を表3に示す。pH8、8.5、9のいずれの溶液においても無色澄明であり、またpH8.5、9以上では80%以上の溶出率を示した。よって、ペプチド1に対しイミダゾールは高い溶解性を示すことが確認された。
(1)方法
リン酸水素二ナトリウム、クエン酸二水素ナトリウム、アスコルビン酸ナトリウム、イミダゾールを水に溶解し、pH9の各水溶液を表4に記載の濃度にて調製した。pH調整は塩酸および水酸化ナトリウム水溶液を用いて実施した。秤量したペプチド1に前記の水溶液を加え、94μMとし、外観観察により白濁の有無を確認した。また同様に、実施例2で得られた、アルギニン、リジンおよびヒスチジン水溶液に溶解されたペプチド1水溶液についても白濁の有無を確認し、比較対照であるリン酸水素二ナトリウム、クエン酸二水素ナトリウム、アスコルビン酸ナトリウムの各水溶液によるペプチド1試料溶液と比較した。続いて各試料液から200μLを孔径0.22μmのフィルター、マイレクス(登録商標)−GV(商品名、日本ミリポア株式会社製)にてろ過し、フィルターろ過前の試料液とフィルターろ過後の試料液をそれぞれ逆相HPLCにて分析し、フィルター前後のペプチド1のピーク面積値からピーク面積百分率を求め、溶出率とした。また、HPLC測定後にpHを測定し、pH実測値とした。HPLC分析条件は実施例1記載と同じ条件にて実施した。
得られた結果を表5および図2に示す。ペプチド1を溶解した結果、3種の塩基性アミノ酸であるアルギニン、リジンおよびヒスチジンのpH9における水溶液は、無色澄明の外観を示し、またイミダゾールもその水溶液を用いたペプチド1の試料溶液は無色澄明の外観を示した。
一方、比較対照であるアスコルビン酸ナトリウム、クエン酸二水素ナトリウムの各水溶液は、ペプチド1を添加後白濁を示し、またリン酸水素二ナトリウムの水溶液は、ペプチド1を添加後、無色澄明の外観を示したが、HPLC分析により算出した溶出率は53.8%という値を示し、3種の塩基性アミノ酸やイミダゾールと比較して低かった。よって、3種の塩基性アミノ酸やイミダゾールは、単にpHによる溶解性亢進の作用の他に、ペプチド1の溶解性を高める作用を有していることが確認された。
アルギニンによるTc99m標識促進効果
(1)方法
実施例2で得られたpH10のアルギニン水溶液にペプチド1を溶解し、9.4μMのペプチド/アルギニン溶液を調製した。0.01M塩酸10mLに塩化第一スズ溶液5mgを加えた溶液の25μLをペプチド/アルギニン溶液700μLに加え、速やかにTc−99m−過テクネチウム酸ナトリウム(以下99mTcO4 −)溶液0.6〜1.0GBqを加え、全量を1mLとした。標識操作後のペプチド濃度は6.6μMに希釈された。数秒間の振倒後、室温で反応させた。標識操作後10分、90分において、その一部を取り、HPLC、TLCにより各Tc−99m標識率を求めた。HPLC、TLC分析は下記の条件で実施した。
比較対照として、ジメチルスルホオキシド(DMSO)にペプチド1を溶解した後、pH10の100mMリン酸緩衝液(以下PB)で10倍に希釈し、ペプチドの終濃度を9.4μMとしたペプチド/DMSO/PB溶液、およびPBにペプチド1を溶解し、ペプチドの終濃度を9.4μMとしたペプチド/PB溶液をペプチド/アルギニン溶液と同様に標識を行い、HPLC、TLCにより各Tc−99m標識率を求めた。標識操作後のペプチド濃度は6.6μMに希釈された。
HPLC条件
カラム:Cosmosil 5C18−AR−300(ナカライテスク株式会社製、4.6×150mm)
溶出速度:1mL/分
検出:紫外可視吸光光度計(検出波長:220nm)
放射能検出器:STEFFI NaIシンチレーター(Raytest社製)
溶出液A:0.1%TFA/精製水
溶出液B:0.1%TFA/アセトニトリル
濃度勾配:0分(溶出液B20%)→25分(溶出液B70%)
TLC 条件
プレート:Silicagel 60F254(メルク株式会社製)
展開溶媒:28%アンモニア水/アセトニトリル=1/2
放射能検出器:Gita NaIシンチレーター(Raytest社製)
得られた結果のピーク面積から算出された放射化学的純度を表6に示す。410mMのアルギニン水溶液は、HPLC分析において標識後10分に放射化学的純度90%以上、標識後90分まで放射化学的純度95%以上を示した。さらにTLC分析においても標識後10分および90分では放射化学的純度85%以上を示し、加熱を必要とせずに、高いTc99m標識率と高い標識安定性が示された。
一方、比較対照であるペプチド/DMSO/PB溶液及びペプチド/PB溶液の放射化学的純度は、ペプチド/DMSO/PB溶液がHPLC分析で標識後10分:72.0%、標識後90分:75.4%、およびTLC分析で標識後10分:45.7%、標識後90分:41.9%を示し、またペプチド/PB溶液がHPLC分析で標識後10分:55.3%、およびTLC分析で標識後10分:28.0%、標識後90分:33.6%を示した。
以上の結果より、いずれの時間点においても、ペプチド/アルギニン溶液は比較対照よりも放射化学的純度が高いことが確認された。よって、アルギニン添加を伴う溶解法を用いることで、非加熱で高い標識率を達成することができ、かつ調製した標識体の安定性も向上することが示された。
(1)方法
アルギニン12.5、25および50mgを秤りとり、水に溶解し、塩酸にてpH10 に調整し、全量をそれぞれ700μLにした。このときのモル濃度はそれぞれ102.5mM、205mM、410mMである。これらアルギニン水溶液にペプチド1を溶解させ、9.4μMのペプチド/アルギニン溶液をそれぞれ調製した。0.01M塩酸10mLに塩化第一スズ溶液5mgを加えた溶液の25μLをそれぞれのペプチド/アルギニン溶液に加え、速やかに99mTcO4 −溶液0.6〜1.0GBqを加え、全量を1mLとした。数秒間の振倒後、室温で反応させた。標識操作後30分、90分、180分、360分、24時間、30時間において、その一部を取り、実施例5記載の条件によるTLC分析にて、放射化学的純度を求めた。
ピーク面積から算出された放射化学的純度を表7に示す。標識後30時間までの全ての結果において放射化学的純度80%以上を示し、さらにアルギニン濃度が205mM以下では、標識後30時間まで放射化学的純度85%以上を示した。よって、アルギニンを使用する溶解法は、アルギニンの濃度に依存することなく、加熱を必要とせずに、高いTc99m標識率と高い標識安定性を示すTc99m標識されたペプチドを供することが可能であることが確認された。
(1)方法
黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)の約108個の生菌を生理食塩液1mLに懸濁させ、その内の100μLをウサギ(ニュージーランドホワイト系、オス、体重約2kg)の右大腿部に筋肉内投与し、24時間経過後、明らかに炎症が認められたモデルウサギにペントバルビタール麻酔を施し、実施例5で得られたTc99mで標識したペプチド1(アルギニン/非加熱)の37〜74MBqを耳静脈内投与し、投与後5分、1時間、2時間、3時間、4時間及び5時間にガンマカメラにてイメージを撮像した。また比較対照としてペプチド/ジメチルホルムアミド(DMF)/水により調製し加熱したTc99m標識ペプチド1(DMF/加熱)を同様に投与し検討をおこなった。比較対照の調製法は次の通りである。134mMのグルコヘプトン酸300μLと2.6mMの塩化第一スズ溶液50μLの混合液を含有するバイアル中に99mTcO4 −溶液1.1〜3.0GBqを加え、全量を1.35mLとした。時折転倒させることにより撹拌しながら室温で30分間反応させ、その一部を取り、セルロースアセテート膜電気泳動法にてTc−99m−グルコヘプトン酸のTc−99m標識率が95%以上であることを確認した。次に、ペプチド1を、ジメチルホルムアミド(DMF)に溶解し943μMに調製し、ついで水を用いて10倍に希釈し94μMの濃度に調製した。この溶液700μLに、Tc−99mグルコヘプトン酸溶液300μLを各々加え、混合攪拌し、100℃から120℃に加熱して10分間反応させた。標識後、その一部を取り、HPLCにより各Tc−99m標識率を求めた。HPLC条件は以下の通りである。
HPLC条件
カラム:Puresil 5μm C18(Millipore社製、4.6×150mm)
溶出速度:1mL/分
検出:紫外可視吸光光度計(検出波長:220nm)
放射能検出器:STEFFI NaIシンチレーター(Raytest社製)
溶出液A:0.1% TFA/精製水
溶出液B:0.1%TFA/アセトニトリル
濃度勾配:0分(溶出液B20%)→25分(溶出液B70%)
得られた結果の代表図を、図3および図4に示す。イメージ上に関心領域を設定し、全身カウントに対する各関心領域1000画素あたりのカウントの割合(%投与量/K pixel)を求めた結果を表8および図5に示す。その結果、従来技術のTc99m−ペプチド1(DMF/加熱)および、本発明のTc99m−ペプチド1(アルギニン/非加熱)は、いずれも感染部位を明瞭に描出することができ、また両者の描出パターンは共通していた。炎症への集積は全ての時間点において本発明にかかる処方、すなわち、アルギニンを添加し非加熱条件下で調製した溶液が、従来法、すなわち、DMFを添加し100℃以上に加熱して調製した溶液よりも、上回っており、投与後1時間の1.59±0.32%投与量/K pixelから、投与後5時間では2.62±0.55%投与量/K pixelと増大した。よって、本発明である、白血球結合性化合物をアルギニンを用いて溶解し非加熱によりTc99m標識する方法は、従来技術で得られる標識体よりも炎症集積性の高い標識体を提供することができることが確認された。
Claims (15)
- 金属標識可能なペプチド及び医薬品添加物として許容されうる塩基性有機化合物を含有することを特徴する医療用組成物であって、
金属標識可能なペプチドは、化学式(1)
(化1)
Z-Y-Leu-Phe-(X)n-Lys(NH2)m-ε(-(R)o-(T)l-U)(1)
(式(1)中、
Zはアミノ基の保護基を表し;
YはMetまたはNleを表し;
(X)nにおいて、Xは1個もしくはそれ以上のアミノ酸又は有機合成可能な化合物よりなるスペーサー、nは1または0を表し;
(NH2)mにおいて、NH2はLysのα位のカルボキシル基の保護基としてのアミド基、mは1または0を表し;
ε(-(R)o-(T)l-U)において、Rは、Lysのε-アミノ基にアミド結合したSerまたはThr、oは1または0、Tは、1個もしくはそれ以上のアミノ酸又は有機合成可能な化合物よりなるスペーサー、lは1または0、Uは、金属標識可能なトリペプチド、ジペプチドメルカプトアシレート、炭素数8から20の窒素含有環状化合物、炭素数8から20の窒素含有環状カルボン酸化合物、炭素数8から20の窒素含有環状カルボン酸化合物の誘導体及び炭素数4から10のアルキレンアミンカルボン酸から選択される金属標識可能な基を表す;
但し、XとTは同じでも異なっていてもよい)
で表される化合物であり、及び
塩基性有機化合物は、塩基性アミノ酸又はイミダゾール環を有する塩基性化合物である、
医療用組成物。 - 塩基性アミノ酸が、アルギニン、ヒスチジン及びリジンから選択される1種以上である、請求項1記載の医療用組成物。
- イミダゾール環を有する塩基性化合物がイミダゾールである請求項1記載の医療用組成物。
- 金属標識可能なペプチドが診断薬もしくは治療用医薬品の有効成分として利用可能なペプチドである請求項1〜3のいずれか一項に記載の医療用組成物。
- 金属標識可能なペプチドがアミノ酸30残基以下又は分子量4500以下である請求項1〜4のいずれか一項に記載の医療用組成物。
- 金属標識可能なペプチドが白血球結合性化合物である請求項1〜5のいずれか一項に記載の医療用組成物。
- 化学式(1)中、Uが、-Cys-Gly-Asp、-Cys-Asp-Asp、-Cys-Asp-Gly、-Cys-Gly-Glu、-Cys-Glu-Glu、-Cys-Glu-Gly、-Cys-Gly-Asn、-Cys-Asn-Asn、-Cys-Asn-Gly、-Cys-Gly-Gln、-Cys-Gln-Gln、-Cys-Gln-Gly、-Cys-Gly-Lys、-Cys-Lys-Lys、-Cys-Lys-Gly、-Cys-Gly-Arg、-Cys-Arg-Arg、-Cys-Arg-Gly、-Asp-Asp-メルカプトアセチル、-Gly-Asp-メルカプトアセチル、-Gly-Gly-メルカプトアセチル、1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン(Cyclen)、1,4,8,11-テトラアザシクロテトラデカン(Cyclam)、1,4,8,12-テトラアザシクロペンタデカン、1,4,8,11-テトラアザシクロテトラデカン-5,7-ジオン(Dioxocycam)、1,4,8,11-テトラアザシクロテトラデカン-1,4,8,11-テトラ酢酸(TETA)、1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-N,N’,N”,N”’-テトラ酢酸(DOTA)、1,4,8,11-テトラアザシクロテトラデカン-5,7-ジオン-N,N’,N”,N”’-テトラ酢酸、1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-酪酸、1,4,8,10-テトラアザシクロドデカン-酪酸、1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-1-アミノエチルカルバモイルメチル-4,7,10-トリス〔R,S〕-メチル酢酸(DO3MA)、1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-1,4,7,10−α, α’, α’’, α’’’-テトラメチル酢酸(DOTMA)、エチレンジアミンテトラ酢酸(EDTA)、ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA)、トリエチレンテトラミンヘキサ酢酸及びエチレングリコール-(2-アミノエチル)-N, N, N’, N’-テトラ酢酸(EGTA)から選択される金属標識可能な基である、請求項1〜6のいずれか一項に記載の医療用組成物。
- 化学式(1)中、Zがホルミル基である、請求項1〜7のいずれか一項に記載の医療用組成物。
- 金属標識可能なペプチドが、
N-ホルミル-Nle-Leu-Phe-Nle-Tyr-Lys(NH2)-ε(-Ser-Cys-Gly-Asn)、
N-ホルミル-Nle-Leu-Phe-Nle-Tyr-Lys(NH2)-ε(-Ser-Cys-Gly-Asp)、
N-ホルミル-Nle-Leu-Phe-Nle-Tyr-Lys-ε(-Ser-Cys-Asp-Asp)、
N-ホルミル-Nle-Leu-Phe-Nle-Tyr-Lys(NH2)-ε(-Ser-D-Arg-Asp-Cys-Asp-Asp)、
N-ホルミル-Nle-Leu-Phe-Nle-Tyr-Lys(NH2)-ε(-Ser-D-Arg-ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA))、
N-ホルミル-Met-Leu-Phe-Lys-ε(-Asp-Asp-メルカプトアセチル)、
N-ホルミル-Met-Leu-Phe-Lys-ε(-Gly-Asp-メルカプトアセチル)、及び
N-ホルミル-Met-Leu-Phe-Lys-ε(-Gly-Gly-メルカプトアセチル)から選択される、請求項1〜8のいずれか一項に記載の医療用組成物。 - 還元剤、pH調整剤、界面活性剤、親水性有機溶媒及び安定化剤から選ばれる1種以上の添加剤を含有する、請求項1〜9のいずれか一項に記載の医療用組成物。
- 請求項1〜10のいずれか一項に記載の医療用組成物を凍結乾燥することによって得られることを特徴とする凍結乾燥した医療用組成物。
- 請求項1〜11のいずれか一項に記載の医療用組成物における金属標識可能なペプチドを金属で標識することにより得られることを特徴とする医療用製剤。
- 金属が放射性金属又は常磁性金属である請求項12記載の医療用製剤。
- 放射性金属が、Tc−99m、In−111、Ga−67、Y−90、Sn−117m、Sm−153、Re−186及びRe−188から選択される、請求項13記載の医療用製剤。
- 常磁性金属が、Gd、Fe、Mn、Cu及びDyから選択される、請求項13記載の医療用製剤。
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