JP4745976B2 - 局所適用のための調製物及び活性剤の基体への送達方法 - Google Patents
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Description
活性剤を含むエマルションの適用の際、及び基体の空気への暴露の際には、溶媒がエマルションから放出され、基体表面にはフィルムが形成される。
このフィルムは活性剤を含む。
局所的包帯剤は、液体、半固体、または固体であって良い。
この実験は、シリコーンマトリックスからのプロテアーゼB酵素の持続性放出を評価するために行った。まず、親水性相を、8.71gの親水性担体PVA溶液(水中40%のMowiol 3-83)と0.767mlのプロテアーゼB酵素原液(1ml当たり42 mgのプロテアーゼB酵素)とを混合することにより調製した。その後、20.43 gのシリコーン相をこの混合物に加えた。この場合はシリコーンマトリックスはDow Corning(登録商標)PSA 7-4602感圧性接着剤であった。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Franz Cell Assembly及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(suc-AAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Franz Cell本体を溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを前記セルの上に取り付けた。前記セルから、15分、1時間、2時間、4時間、8時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。図2は、プロテアーゼ B 酵素を含むこのマトリックスからの酵素放出の結果を示す。約50%のプロテアーゼBの制御された放出が、24時間に亘って観察された。
この実験は、1倍、10倍、及び100倍の酵素ローディングを用いたシリコーンマトリックスからのLG 12プロテアーゼの持続性放出を評価するために行った。まず、親水性相を、13gの親水性担体PVA溶液(水中40%のMowiol 3-83)と3.192mlのLG-12プロテアーゼ 酵素原液を混合することによって調製した。その後、30gのシリコーン相をこの混合物に加えた。酵素原液は、酵素ローディングが1倍の場合には0.4098mg/ml、10倍の場合には4.098mg/ml、さらに100倍の場合には40.98mg/mlとした。この場合の シリコーンマトリックスは、Dow Corning(登録商標)PSA 7-4602感圧性接着剤であった。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Hanson SR8 Plus Dissolution Tester及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(sucAAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Hanson SR8 Pius Dissolution Testerを溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを容器内に置いた。前記セルから、10分、1時間、2時間、4時間、8時間、16時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。図3は、このマトリックスからの酵素放出の結果を示す。24時間の間にLG12プロテアーゼの完全な放出が観察された。この製剤中の酵素ローディングを増大させることにより、パッチからの酵素放出を比例的に増大させることができる。
この実験は、シリコーンマトリックスからのプロテアーゼB 酵素の持続性放出を評価するために行った。まず、親水性相を、17.4gの親水性担体PVA溶液(水中10%のMowiol 30-92)と0.42gのプロテアーゼB酵素原液(1ml当たり42 mgのプロテアーゼ酵素)を混合することによって調製した。その後、10.04gのシリコーン相をこの混合物に加えた。この場合はシリコーンマトリックスはDow Corning(登録商標)高分子量2220非イオン性エマルションであった。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Franz Cell Assembly及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(suc-AAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Franz Cell本体を溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを前記セルの上に取り付けた。前記セルから、15分、1時間、2時間、4時間、8時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。図4は、このマトリックスからの酵素放出の結果を示す。約40%のプロテアーゼBの制御された放出が、24時間に亘って観察された。
この実験は、架橋シリコーンマトリックスからのプロテアーゼB酵素の持続性放出を評価し、製剤中におけるグリセリンの役割を判断するために行った。まず、0.49gのDow Corning(登録商標)1-3502 Si-H fluidを、60gのDow Corning(登録商標)SFD 128ビニルシリコーンポリマーに混合した。次いで、10.08gの10% Mowiol(30-92)界面活性剤を、高度固体エマルションが生成するまで前記混合物に加えた。その後、0.44gのPt触媒をエマルション形態の前記製剤(Dow Corning(登録商標)2-1271)に混合した。この製剤は、Dow Corning(登録商標)9090シリコーンエラストマーエマルションと類似である。この後、エマルションを65%のシリコーン固体含量にまで希釈し、この製剤に0.88gのプロテアーゼB酵素原液(1ml当たり42 mgのプロテアーゼB酵素)を加えた。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。第二の製剤においては、2%の乾燥重量をグリセリンで置き換え、製剤中にPVAと同一工程において添加した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させ、硬化させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Franz Cell Assembly及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(suc-AAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Franz Cell本体を溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを前記セルの上に取り付けた。前記セルから、15分、1時間、2時間、4時間、8時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。図5は、プロテアーゼ B 酵素のこれらマトリックスからの放出速度を示す。
この実験は、Dow Corning(登録商標)PSA 7-4602感圧性接着性シリコーンマトリックスからのプロテアーゼB酵素の持続性放出に対する、グリセリンの影響を評価するために行った。まず、親水性相を、8.71gの親水性担体PVA溶液(40%のMowiol 3-83)と0.767mlのプロテアーゼB酵素原液(1ml当たり42 mgのプロテアーゼ酵素)を混合することにより調製した。その後、20.43gのシリコーン相をこの混合物に加えた。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。第二の製剤においては、2%の乾燥重量をグリセリンで置き換え、製剤中にPVAと同一工程において添加した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Franz Cell Assembly及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(suc-AAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Franz Cell本体を溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを前記セルの上に取り付けた。前記セルから、15分、1時間、2時間、4時間、8時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。図6は、プロテアーゼ B 酵素のこれらマトリックスからの放出速度を示す。
この実験は、Dow Corning(登録商標)PSA 7-4602感圧性接着性シリコーンマトリックスからのLG-12 プロテアーゼの持続性放出に対する加工効果を評価するために行った。まず、親水性相を、13gの親水性担体PVA溶液(40%のMowiol 3-83)と0.896mlのLG-12プロテアーゼ酵素原液とを混合することにより調製した。その後、30gのシリコーン相をこの混合物に加えた。第一の場合には、シリコーン成分を一工程で加え、第二の場合にはシリコーンを二工程で加えた。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Hanson SR8 Plus Dissolution Tester及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(suc-AAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Hanson SR8 Plus Dissolution Testerを溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを容器内に置いた。前記セルから、10分、1時間、2時間、4時間、8時間、16時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。
この実験は、Dow Corning(登録商標)PSA 7-4602感圧接着性シリコーンマトリックスからのLG 12プロテアーゼの持続性放出に対する銀コロイドの影響を評価するために行った。40.98mg/mlの酵素原液を銀コロイド溶液(Natural Immunogenics Corp.(Miami, Fla.)製)で10倍に希釈した。まず、親水性相を、6.5gの親水性担体PVA溶液(40%のMowiol 3-83)と1.596mlのLG-12プロテアーゼ酵素/銀コロイド溶液を混合することによって調製した。その後、15gのシリコーン相をこの混合物に加えた。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。サンプルを、Hanson SR8 Plus Dissolution Tester及びN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリド(sucAAPF-pNA)アッセイを用いてタンパク質分解活性について試験した。Hanson SR8 Pius Dissolution Testerを溶解バッファ(10mMのMES、10mMのCaCl2、及び0.005%のTween 80(pH 5.4))で満たし、パッチサンプルを容器内に置いた。前記セルから、10分、1時間、2時間、4時間、8時間、16時間、及び24時間後にサンプルを回収した。回収したサンプルそれぞれからアリコートをピペットでとり、アッセイバッファ(100mMのTris及び0.005%のTween 80(pH 8.6))及びsuc-AAPF-pNA基体を含むキュベットに直接入れた。その後、酵素活性を紫外/可視分光計で測定し、溶解バッファ中の酵素濃度(mg/ml)を得た。図8は、このマトリックスからの酵素放出が4時間の後には完了したことを示す。
さらに、酵素放出をスキムミルクプレート上でも追跡した。
瓶内において、スキムミルク粉末を水に溶解させ、別の瓶内において酵母抽出物、塩化ナトリウム、及び寒天を合わせて撹拌した。これら瓶を、Hirayamaオートクレーブを用いて121℃にて15分間オートクレーブにかけた。その後、これらを水浴中で45℃に冷却した。この後、スキムミルク溶液を寒天に添加し、混合溶液をペトリ皿にあけて固化させた。酵素を含むシリコーンマトリックスフィルムの小片を切り出し、スキムミルク寒天に押し込んだ。ペトリ皿プレートを30±2°でインキュベートした。図9は24時間のインキュベートの後にスキムミルクプレート上に調製したパッチから放出された酵素を示す。
この実験は、Dow Corning(登録商標)PSA 7-4602感圧接着性シリコーンマトリックスからのLG 12プロテアーゼの持続性放出に対するDC 5700シランの影響を評価するために行った。まず、親水性相を、6.54gの親水性担体PVA溶液(40%のMowiol 3-83)と0.767mlのプロテアーゼB酵素(1ml当たり42 mgのプロテアーゼB酵素)とを混合することによって調製した。その後、2.17gのDC5700シランと、次いで20.43gのシリコーン相とをこの混合物に加えた。各添加工程の後に、サンプルをHouschild AM-501デンタルミキサーで二度撹拌した。調製したエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製のドローダウンバーを用いてDC 7-4107シリコーン膜/ポリカーボネート基体上に塗布した。塗設したフィルムを通風フード内で24時間に亘って薄いフィルムとなるまで乾燥させた。乾燥させたフィルムからパッチを切り出し、酵素放出活性について分析した。酵素放出をスキムミルクプレート上で追跡した。
瓶内において、スキムミルク粉末を水に溶解させ、別の瓶内において酵母抽出物、塩化ナトリウム、及び寒天を合わせて撹拌した。これら瓶を、Hirayamaオートクレーブを用いて121℃にて15分間オートクレーブにかけた。その後、これらを水浴中で45℃に冷却した。この後、スキムミルク溶液を寒天に添加し、混合溶液をペトリ皿にあけて固化させた。酵素を含むシリコーンマトリックスフィルムの小片を切り出し、スキムミルク寒天に押し込んだ。ペトリ皿プレートを30±2°でインキュベートした。図10は24時間のインキュベートの後にスキムミルクプレート上に調製したパッチから放出された酵素を示す。少量の酵素がこの製剤から放出されることが観察された。
この実験は、シリコーンマトリックス中の酵素安定性を評価するために行った。乾燥PSA 7-4602シリコーン+PVAフィルム(乾燥重量1g当たりおよそ0.400mgのLG12を含有)を3.5cmのディスク状に切り出し、42°に設定したSYBRON Thermolyne Type 3700培地インキュベーター中で10日間及び20日間に亘りインキュベートした。これらディスクの半数は湿分喪失を最低限にするためにオートクレーブパウチ内に置き、一方で残りの半数は覆わずに置いた。インキュベートしていないディスクを計量し、Hanson SR8 Plus Dissolution Testerの溶解容器に入れ、この実験のコントロールとして用いた。用いた溶解バッファは10mMのMES(pH 5.2)+0.005%のTween-80+10mMの塩化カルシウムであった。10分後、1、2、4、8、16、及び24時間後にフラクションを回収した。これらフラクションを、シリコーンディスクから放出される酵素の量を定量するための基体としてN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリドを用いて、プロテアーゼ活性について評価した。42℃でインキュベートしたディスクについては、ディスクから放出された残りの活性酵素の量を、同様のアッセイで測定した。図11及び12にはシリコーンマトリックス中の酵素安定性に対する湿分損失の影響が示される。
この実験は、DC 3563を加えてより粘着性のシリコーン+PVA+酵素フィルムを作成するために行った。様々な濃度のDC 3563をDow Corning(登録商標)PSA 7-4602のシリコーン相と混合した。その後このシリコーン混合物を、PVA溶液(水中40%のMowial 3-83)とプロテアーゼB酵素とをいずれも含む親水性相に添加してエマルションを生成させた。このエマルションを、Paul N. Gardner Company, Inc.製の金属展延機を用いて Mylar基体に取り付けたDC 7-4107表面にフィルム状に展延した。乾燥フィルムを3.5cmのディスク状に切り出し、計量し、Hanson SR8 Plus Dissolution Testerの溶解容器に入れた。用いた溶解バッファは10mMのMES(pH 5.2)+0.005%のTween-80+10mMの塩化カルシウムであった。10分後、1、2、4、8、16、及び24時間後にフラクションを回収した。これらフラクションを、シリコーンディスクから放出される酵素の量を定量するための基体としてN-スクシニル-L-Ala-L-Ala-L-Pro-L-Phe-p-ニトロアニリドを用いてプロテアーゼ活性について評価した。図13には酵素放出に対するDC3563の様々な濃度の影響が示される。
Claims (18)
- 基体への局所適用のための放出制御組成物であって、前記組成物は、
実質的に親油性溶媒を含まず且つ油中水型エマルションの機械的転化により形成される水中油型エマルション;及び
前記水中油型エマルションに導入されるタンパク質を含む活性剤;
を含み、前記水中油型エマルションが、前記活性剤、水、及び担体を含む親水性相、並びにシリコーン成分を含む疎水性相を有する、放出制御組成物。 - 前記親水性相と疎水性相との間に界面活性剤をさらに含む、請求項1に記載の放出制御組成物。
- 前記担体が、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ポロキサマー、アルコール、多価アルコール、水、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、及びこれらの組み合わせの群から選択される、請求項1に記載の放出制御組成物。
- 前記担体が前記水との溶液状である、請求項1に記載の放出制御組成物。
- 前記タンパク質が酵素である、請求項1に記載の放出制御組成物。
- 前記酵素が、天然酵素、合成酵素、改変酵素、及びこれらの組み合わせの群から選択される、請求項5に記載の放出制御組成物。
- 前記酵素が、オキシドレダクターゼ類、トランスフェラーゼ類、イソメラーゼ類、リガーゼ類、ヒドロラーゼ類、クチナーゼ類、オキシダーゼ類、レダクターゼ類、ヘミセルラーゼ類、エステラーゼ類、ペクチナーゼ類、ラクターゼ類、ペルオキシダーゼ類、ラッカーゼ類、カタラーゼ類、抗体類、ポリペプチド類、ペプチド類、ホルモン類、サイトカイン類、成長因子類、生物学的調節因子類、及びこれらの組み合わせの群から選択される、請求項5に記載の放出制御組成物。
- 前記酵素が、プロテアーゼA、プロテアーゼB、またはLG12を含む、請求項5に記載の放出制御組成物。
- 前記活性剤を分散させるための分散剤をさらに含む、請求項2に記載の放出制御組成物。
- 前記分散剤が、前記界面活性剤とは異なるシリコーンベースの界面活性剤を含む、請求項9に記載の放出制御組成物。
- 前記シリコーン成分が、シリコーンガム、シリコーンゴム、シリコーンエラストマー、シリコーン樹脂、高分子量シリコーン類、シリコーンエマルション類、及びこれら成分の組み合わせからなる群より選択される、請求項1に記載の放出制御組成物。
- 前記シリコーン成分が、感圧性接着剤を含む、請求項1に記載の放出制御組成物。
- 前記感圧性接着剤が、ヒドロキシ末端ブロックポリジメチルシロキサンポリマーとヒドロキシ官能性シリケート樹脂との反応生成物を含む、請求項12に記載の放出制御組成物。
- 前記ヒドロキシ官能性シリケート樹脂が、トリメチルシロキシ及びヒドロキシ末端ブロックシリケート樹脂としてさらに定義される、請求項13に記載の放出制御組成物。
- (A)請求項1に記載の放出制御組成物から形成される放出制御層;
(B)前記包帯剤の基体への接着のための、前記放出制御層に隣接して設けられた接着層;及び
(C)裏当て層、クッション層、吸収層、第二接着層、及びこれらの組み合わせの群より選択される付加的な層;
を含む多層包帯剤の形態である、請求項1に記載の放出制御組成物。 - 前記放出制御層が基体に隣接し、前記付加的な層が前記放出制御層から離れた前記接着層に隣接して設けられている、請求項15に記載の放出制御組成物。
- 前記放出制御層が前記包帯剤中で乾燥しており、前記放出制御層が前記放出制御組成物によって形成された後には前記放出制御層が水を含まない、請求項15に記載の放出制御組成物。
- 基体への局所適用のための多層包帯剤の製造のための、請求項1に記載の放出制御組成物の使用。
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