JP4485204B2 - ケモカイン受容体に関連する疾患および状態の検出および治療のための組成物および方法 - Google Patents
ケモカイン受容体に関連する疾患および状態の検出および治療のための組成物および方法 Download PDFInfo
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Description
本出願は、2001年11月30日に提出された米国特許出願第(USSN)60/338,100号、2001年11月30日に提出された米国特許出願第60/337,961号、2002年9月16日に提出された米国特許出願第10/245,850号、および2002年10月1日に提出された欧州特許第02256808.3号(これらはそれぞれ、その全体がすべての目的に関して参照として本明細書に明示的に組み入れられる)の優先権を主張する。
ケモカインは、炎症の際に産生されて白血球の動員を調節する、低分子サイトカインのファミリーを構成している(Baggiolini, M.ら、Adv. Immunol. 55: 97-179 (1994);Springer, T. A., Annu. Rev. Physiol. 57: 827-872 (1995);ならびにSchall, T. J.およびK. B. Bacon、Curr. Opin. Immunol. 6: 865-873 (1994))。ケモカインは、好中球、単球、マクロファージ、好酸球、好塩基球、マスト細胞、およびリンパ球(T細胞およびB細胞を含む)などの白血球を含む、生物学的特徴を備えた血液要素(赤血球を除く)の走化性を選択的に誘導することができる。走化性を誘発することに加えて、反応性細胞におけるその他の変化もケモカインによって選択的に誘導可能であり、これには細胞の形状の変化、細胞内遊離カルシウムイオン(Ca2+)の濃度の一過性上昇、顆粒のエキソサイトーシス、インテグリンのアップレギュレーション、生理活性脂質(例えば、ロイコトリエン)の形成、および白血球活性化に伴う呼吸バーストが含まれる。すなわち、ケモカインは、炎症メディエーターの放出、感染部位または炎症部位への走化性および血管外遊走を引き起こす、炎症反応の初期誘因である。
本発明は、第1のトポロジーを有するケモカイン受容体とは結合するが第2のトポロジーを有するケモカイン受容体とは結合しない作用物質を同定する方法を提供する。いくつかの面において、本方法は以下を含む:i. 第1のトポロジーを有するケモカイン受容体を含む第1の細胞、および第2のトポロジーを有するケモカイン受容体を含む第2の細胞を提供する工程;ii. 1,500ダルトン未満の作用物質をケモカイン受容体と接触させる工程;ならびにiii. ケモカイン受容体の第1のトポロジーとは結合するが第2のトポロジーを有するケモカイン受容体とは結合しない作用物質を選択する工程。いくつかの面において、作用物質は600ダルトン未満である。
「抗体」とは、分析物(抗原)と特異的に結合してそれを認識する、1つまたは複数の免疫グロブリン遺伝子によって実質的にコードされるポリペプチドまたはその断片のことを指す。一般に認められている免疫グロブリン遺伝子には、κ、λ、α、γ、δ、ε、およびμ定常領域遺伝子のほか、無数の免疫グロブリン可変領域遺伝子が含まれる。軽鎖はκまたはλのいずれかに分類される。重鎖はγ、μ、α、δ、またはεに分類され、これによってそれぞれIgG、IgM、IgA、IgD、およびIgEという免疫グロブリンのクラスが規定される。
1)アラニン(A)、グリシン(G);
2)アスパラギン酸(D)、グルタミン酸(E);
3)アスパラギン(N)、グルタミン(Q);
4)アルギニン(R)、リジン(K);
5)イソロイシン(I)、ロイシン(L)、メチオニン(M)、バリン(V);
6)フェニルアラニン(F)、チロシン(Y)、トリプトファン(W);
7)セリン(S)、トレオニン(T);および
8)システイン(C)、メチオニン(M)
(例えば、Creighton、「Proteins」(1984)を参照されたい)。
I.序論
本発明は、ケモカイン受容体が、異なる細胞種上で異なるトポロジーを形成するという驚くべき発見を提供する。異なる細胞種は、異なるリガンド特異性、薬理学的特徴、および機能を有する。トポロジーとは、タンパク質(例えば、ケモカイン受容体タンパク質)の状態または形態のことである。異なるトポロジーが同一のポリヌクレオチドによってコードされることが可能であり、同様または同一なアミノ酸配列を有することも可能である。ケモカイン受容体の異なるトポロジーは異なる特性を有しており、異なる生物的および/または病的な機能を媒介する可能性がある。
ケモカイン受容体の新規なトポロジーはさまざまな方法によって同定可能である。細胞特異的トポロジーを同定するためには、少なくとも2つの細胞種を用意し、抗原性、リガンド結合、またはケモカイン受容体と関係のあるその他の能力の違いに関してスクリーニングする。ある細胞種が新規なトポロジーと疑われるケモカイン受容体を発現したならば、その細胞種上でのトポロジーを、本明細書に記載する通りにさらに特徴づけることができる(例えば、抗原性、リガンド結合、低分子親和性、機能などに関して)。実施例の項で示すように、同じ受容体のリガンド特異性が異なることは、異なる細胞がトポロジーの異なる受容体を保有していることを示す。
ケモカイン受容体の調節物質、すなわちケモカイン受容体活性に対するアゴニストまたはアンタゴニストまたは作用物質は、哺乳類のさまざまな疾患を治療するのに有用である。
細胞における、特に哺乳動物細胞における、とりわけヒト細胞における、ケモカイン受容体の特定のトポロジーの活性または機能のレベルを調節する作用物質を同定するために、数多くの種類のスクリーニングプロトコールを利用することができる。一般的には、スクリーニング方法は、例えばケモカイン受容体と結合させる工程、阻害物質とケモカイン受容体との結合を妨げる工程、またはケモカイン受容体を活性化することによってケモカインの特定のトポロジーと相互作用する作用物質を同定するために、複数の作用物質をスクリーニングする工程を含む。いくつかの態様において、アンタゴニストまたはアゴニストはケモカイン受容体の1つのトポロジーのみの活性を調節し、第2のトポロジーの活性は調節しない。いくつかの態様において、ケモカイン受容体のすべてのトポロジーがアンタゴニストまたはアゴニストによって調節される。いくつかの態様において、作用物質は1つのトポロジーと、第2のトポロジーに対する作用物質の親和性の少なくとも約1.5、2、3、4、5、10、20、50、100、300、500、または1000倍の親和性で結合する。いくつかの態様において、作用物質は1つのトポロジーと、第2のトポロジーに対する作用物質の親和性の約0.5、0.3、0.2、0.1、0.05、0.01、0.001倍未満の親和性で結合する。
ケモカイン受容体のあるトポロジーと結合しうる作用物質をスクリーニングすることにより、そのようにして同定された作用物質の少なくともいくつかはケモカイン受容体の調節物質である可能性が高いことから、予備的なスクリーニングを行うことができる。結合アッセイ法は通常、ケモカイン受容体タンパク質のあるトポロジーを1つまたは複数の被験作用物質と接触させ、タンパク質および被験作用物質が結合複合体を形成するのに十分な時間をおくことを含む。形成された結合複合体は、確立されたさまざまな分析技法の任意のものを用いて検出することができる。タンパク質結合アッセイ法には、免疫組織化学的結合アッセイ法、フローサイトメトリー、またはケモカイン受容体のトポロジーが保たれるその他のアッセイ法が非制限的に含まれる。この種のアッセイ法に用いるケモカイン受容体は、自然下で発現されるものでもクローニングされたものでも合成されたものでもよい。
本発明のスクリーニング方法は、インビトロアッセイ法または細胞系(cell-based)アッセイ法として行うことができる。インビトロアッセイ法は、ケモカイン受容体が溶液中で複数の異なるトポロジーを形成しうる場合に行われる。細胞系アッセイ法は、ケモカイン受容体が発現される任意の細胞で行いうる。
ケモカイン受容体のトポロジーのシグナル伝達活性はさまざまなやり方で決定することができる。例えば、調節物質が細胞内のカルシウム動員を誘導しうるか否かを定性的および定量的に決定することにより、シグナル伝達を測定することができる。カルシウム動員アッセイ法は、例えば、Dairaghiら、J. Biol. Chem. 272(45): 28206-9 (1997)に記載されている。サイクリックAMPまたはイノシトールリン酸などのその他の二次メッセンジャー、さらにはリン酸化イベントまたは脱リン酸化イベントを観測することもできる。例えば、Premackら、Nature Medicine 2: 1174-1178 (1996)およびBokoch, Blood 86: 1649-1660 (1995)を参照されたい。
前記のいずれかのスクリーニング方法によって当初同定された作用物質を、明らかな活性のバリデーションを行うためにさらに試験することができる。このような試験は、適した動物モデルを用いて行うことが好ましい。このような方法の基本形式は、初期スクリーニングの際に同定されたリード化合物を、ヒトのモデルとして役立つ動物に投与し、その後に、ケモカイン受容体が実際に調節作用を受けるか、および/または疾患もしくは状態が改善されるかを判定する工程を含む。バリデーション試験に用いられる動物モデルは一般に、何らかの種類の哺乳動物である。適した動物の具体的な例には、霊長動物、マウス、およびラットが非制限的に含まれる。
ケモカイン受容体の少なくとも1つのトポロジーに対する調節物質として試験される作用物質は、ポリペプチド、糖、核酸、または脂質などの任意の低分子化合物または生物的実体でよい。または、調節物質は遺伝的に改変された型のケモカインまたは他のリガンドでもよい。一般に、被験化合物は低分子の化合物およびペプチドであると考えられる。本質的にあらゆる化合物を、本発明のアッセイ法におけるリガンドまたは調節物質の候補として用いることができるが、水性溶液または有機溶液(特にDMSOをベースとするもの)中に溶解しうる化合物を用いることが最も多い。アッセイ法は、アッセイ法の工程を自動化し、任意の好都合な源から化合物をアッセイ法に提供し、一般にはそれを平行して稼働させることにより(例えば、自動化アッセイ法でのマイクロタイタープレート上でのマイクロタイター形式による)、大規模化学ライブラリーをスクリーニングするように設計する。化合物の供給元が、Sigma社(St. Louis, MO)、Aldrich社(St. Louis, MO)、Sigma-Aldrich社(St. Louis, MO)、Fluka Chemika-Biochemica Analytika社(Buchs, Switzerland)などを含め、数多くあることは知られていると考えられる。
本発明のハイスループットアッセイ法では、最大で数千種もの異なる調節物質またはリガンドを1日でスクリーニングすることが可能である。詳細には、マイクロタイタープレートの各ウェルを、選択した調節物質の候補に対して別々のアッセイ法を実行するために用い、または、濃度もしくはインキュベーション時間の影響を観察しようとする場合には、単一の調節物質を試験するためにウェルを5〜10個ずつ用いることができる。このため、1枚の標準的なマイクロタイタープレートで、約100種(例えば、96種)の調節物質をアッセイすることが可能である。1536穴のウェルプレートを用いれば、1枚のプレートで約100〜約1500種の異なる化合物をアッセイすることができる。1日当たり数枚の異なるプレートをアッセイできれば、本発明の統合システムを用いて最大で約6,000〜20,000種類の化合物をアッセイ法でスクリーニングすることが可能である。さらに最近では、試薬操作のための微少流体アプローチが開発されている。
ケモカイン受容体の活性または機能を調節する化合物に関するさらにもう1つのアッセイ法は、アミノ酸配列にコードされた構造情報に基づいてケモカイン受容体の三次元構造を作成するためにコンピュータシステムを用いる、コンピュータ支援による薬物設計である。入力したアミノ酸配列がコンピュータプログラム内にあらかじめ設定したアルゴリズムと直接かつ能動的に相互作用し、タンパク質の二次、三次、および四次構造モデルが生成される。同様の解析を、ケモカイン受容体の1つのトポロジーのみに対する結合パートナーまたはリガンドを含む、ケモカイン受容体の既知の結合パートナーもしくはリガンドまたはその候補に対して行うこともできる。続いて、結合能を有する構造領域を同定するためにタンパク質構造のモデルを検討する。次にこれらの領域を利用して、タンパク質と結合する化合物を同定する。
目的のケモカイン受容体の複数の異なるトポロジーを検出するためにアッセイ法を用いることができる。例えば、イムノアッセイ法を用いて、ケモカイン受容体のトポロジーを定性的または定量的に分析することができる。適用しうる技術に関する一般的な概説は、Harlow & Lane、「Antibodies:A Laboratoiy Manual」(1988)に記載されている。または、ケモカイン受容体の特定のトポロジーに対する親和性を備えた非抗体分子を、ケモカイン受容体のトポロジーの検出に用いることもできる。
目的のタンパク質またはタンパク質の特定のトポロジーと特異的に反応するポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体を作製するための方法は当業者に周知である(例えば、Coligan、前記;ならびにHarlowおよびLane、前記;Stitesら、前記およびそれに引用された参考文献;Goding、前記;ならびにKohlerおよびMilstein、Nature, 256: 495-497 (1975)を参照されたい)。このような技法には、ファージベクターまたは類似のベクターにおける組換え抗体のライブラリーからの抗体の選択による抗体の調製が含まれる(例えば、Huseら、前記;およびWardら、前記を参照のこと)。例えば、イムノアッセイ法に用いるための抗血清を作製するためには、本明細書の記載のように、目的のタンパク質またはその抗原性断片を単離する。例えば、組換えタンパク質を形質転換細胞系において産生させる。マウス、ラット、モルモット、またはウサギの近交系に対して、フロイントアジュバントなどの標準的アジュバントおよび標準的な免疫処置プロトコールを用いてタンパク質の免疫処置を行う。または、本明細書に開示する配列に由来し、担体タンパク質と結合させた合成ペプチドを免疫原として用いることもできる。もう1つの選択肢は、そのタンパク質(例えば、特定のトポロジーのもの)を発現する細胞、または特定のトポロジーを含む膜画分もしくはリポソームを抗原として用いることである。例えば、CXCR4の乳癌特異的なトポロジーを発現する乳癌細胞株を、そのトポロジーに対して特異的な抗体を産生させるために用いることができる。続いて、細胞、膜画分、またはリポソームに対して産生された抗体を、タンパク質との結合に関して選択する。この方法は、タンパク質のその特定のトポロジーが特定の細胞種における発現に依存的である場合に特に有用である。
1つの好ましい態様において、目的のタンパク質は、よく知られたさまざまな免疫学的結合アッセイ法のうち任意のものを用いて検出および/または定量化される(例えば、米国特許第4,366,241号;第4,376,110号;第4,517,288号;および第4,837,168号を参照)。一般的なイムノアッセイ法の概説については、Asai, 「Methods in Cell Biology Volume 37:Antibodies in Cell Biology」、Academic Press, Inc. NY (1993);Stites、前記を参照されたい。免疫学的結合アッセイ法(またはイムノアッセイ法)には一般に、分析物(この場合にはケモカイン受容体の1つのトポロジーまたはその抗原性部分配列)と特異的に結合し、しばしばそれを固定化する「捕捉剤(capture agent)」が用いられる。捕捉剤は分析物と特異的に結合する部分(moiety)である。1つの好ましい態様において、捕捉剤は、例えば、ケモカイン受容体の1つのトポロジーと特異的に結合する抗体である。抗体(例えば、抗ケモカイン受容体抗体)を、当業者に周知の数多くの手段および上記の手段のうち任意のものを用いて作製してもよい。
組織試料から目的のタンパク質を検出するためのイムノアッセイ法は競合的でも非競合的でもよい。非競合イムノアッセイ法は、捕捉された分析物(例えば、タンパク質)の量を直接測定するアッセイ法である。例えば、1つの好ましい「サンドイッチ」アッセイ法では、捕捉剤(例えば、抗ケモカイン受容体抗体)を、それを固定化するための固体基質に対して直接結合させることができる。続いて、これらの固定化された抗体は、被験試料中に存在する1つのトポロジーのケモカイン受容体を捕捉する。このようにして固定化されたケモカイン受容体に対して、次に、標識を有する第2の抗ケモカイン受容体抗体などの標識剤を結合させる。または、第2の抗体には標識がなく、その代わりに、第2の抗体の由来となった種の抗体に対して特異的な第3の抗体をそれと結合させてもよい。第2の抗体は、酵素標識ストレプトアビジンなどの第3の標識分子が特異的に結合しうる、ビオチンなどの標識可能な部分によって調節することができる。
競合アッセイ法では、試料中に存在する分析物によって捕捉剤から解離した(競合に敗れた)、添加した(外因性の)分析物(例えば、ケモカイン受容体の目的のトポロジー)の量を測定することにより、試料中に存在する標的タンパク質(分析物)の量を間接的に測定する。1つの競合アッセイ法では、既知の量の目的のタンパク質を試料に添加し、続いて試料を捕捉剤、この場合にはケモカイン受容体の1つのトポロジーと特異的に結合する抗体と接触させる。抗体と結合した免疫原の量は、試料中に存在する免疫原の濃度と反比例する。1つの特に好ましい態様では、抗体を固体基質上に固定化する。例えば、抗体と結合したケモカイン受容体の量は、ケモカイン受容体タンパク質/抗体複合体中に存在する被験タンパク質の量を測定することにより、または、複合体を形成していない残ったタンパク質の量を測定することによって決定しうる。標識したケモカイン受容体分子を用意することにより、ケモカイン受容体の量を検出することもできる。
アッセイ法に用いる個々の標識または検出可能基は、アッセイ法に用いる抗体の特異的結合に大きな妨げとならない限り、本発明の特に重要な面ではない。検出可能基は、検出可能な物理的または化学的特性を有する任意の物質でありうる。このような検出可能な標識はイムノアッセイ法の分野では十分に開発されており、通常、このような方法に有用なほとんどすべての標識を本発明に適用することができる。すなわち、標識は、分光学的、光化学的、生化学的、免疫化学的、電子的、工学的、または化学的な手段によって検出可能な任意の組成物である。本発明において有用な標識には、磁気ビーズ(例えば、Dynabeads(商標))、蛍光色素(例えば、フルオレセイン、イソチオシアネート、テキサスレッド、ローダミンなど)、放射性標識(例えば、3H、125I、35S、14C、または32P)、酵素(例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、およびELISAに一般に用いられる他のもの)、およびコロイド金または着色ガラスまたはプラスチックビーズ(例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックスなど)などの比色定量用標識が含まれる。
ケモカイン受容体の特定のトポロジーと特異的に結合する作用物質は、特定のトポロジーを有する細胞集団の単離、同定、および検出のために用いうる。例えば、試料中の、特定のトポロジーを発現する白血球部分集団または腫瘍細胞を検出することができる。または、特定のトポロジーを発現する細胞を、そのトポロジーを発現する細胞と結合してそれを試料から精製するための作用物質を用いて試料から単離することもできる。細胞の単離方法の例には、アフィニティークロマトグラフィー、ならびに細胞数測定および蛍光活性化セルソーター(FACS)の使用が含まれる。
本発明は、抗ケモカイン受容体抗体、または受容体の特定のトポロジーを特異的に検出するその他の作用物質を用いて、本明細書に記載したアッセイ法を実施するための、組成物、キット、および統合システムを提供する。
ケモカイン受容体の特定のトポロジーに対する調節物質(例えば、アンタゴニストまたはアゴニスト)を、インビボでのケモカイン受容体シグナル伝達の調節のために、哺乳動物対象に対して直接投与することができる。投与は、調節性化合物を導入し、治療しようとする組織に最終的に接触させるために通常用いられ、当業者に周知である任意の経路によって行われる。特定の化合物の投与には複数の経路を用いうるが、1つの特定の経路で別の経路よりも即時的かつより効果的な反応が得られることがしばしばである。
本発明は、試料中のケモカイン受容体の特定のトポロジーを検出する方法を提供する。タンパク質と結合する作用物質を用いる検出方法はよく知られており、これには例えば、フローサイトメトリーが含まれる。フローサイトメトリーを用いると、混合集団内の目的の特定抗原を発現する細胞を同定することができる。簡潔に述べると、細胞を、目的のタンパク質(例えば、1つのトポロジーの状態にあるが第2のトポロジーにはない)に対して特異的な抗体と反応させる。抗体を蛍光標識してもよく(直接的な染色方法)、またはそれを標識しない場合には、第1の抗体と反応する第2の抗体を蛍光標識することもできる(間接的な染色方法)。続いて細胞を、蛍光シグナルの検出が可能な装置に通過させる。細胞を吸引し、単細胞懸濁液を作製する。この細胞懸濁液に、この時点では細胞に結合している蛍光色素標識抗体を励起するレーザーを透過させ、このデータを収集する。輝度の高い(すなわち、蛍光標識抗体と反応する)ことが認められた細胞は目的のタンパク質を発現している;輝度の低い(すなわち、蛍光標識抗体と反応しない)細胞は目的のタンパク質を発現していない。
ケモカイン受容体トポロジーは、特に、抗体結合性表現型の点から区別される。抗体結合性表現型は、同一の受容体の複数のトポロジー上に共通かつ特有のエピトープがあり、一方、他のエピトープが特定のトポロジーに特有であることを示す。同一のケモカイン受容体の複数の異なるトポロジーは同一のアミノ酸配列を有するため、特有なエピトープは異なるトポロジーを区別するように生成される。特定のトポロジーに特有なエピトープはその特有のエピトープが病態を誘発する細胞、例えば腫瘍細胞上に発現される場合には、臨床用途に利用される。これらの場合に、個々の受容体トポロジーに共通するエピトープは、標準的なエピトープマッピングにより、例えば、受容体の細胞外ドメイン全体にわたる連続したペプチド(例えば、約12mer〜約18mer)を作製して、それらのペプチドに対する適切な「共通」抗体の結合を評価することにより、同定される。個々の抗体結合ペプチドに関する微細なエピトープマッピングは、各回毎に1つのアミノ酸位置に変更を加えた類縁ペプチドのファミリーを作製することによって行いうる。共通エピトープが同定されたならば、そのような共通エピトープを除去した組換え型の受容体を作製する。これは例えば、同じ受容体をコードするcDNAの共通エピトープの部位での点変異誘発、または受容体を変異もしくは改変させる他の方法によって行いうる。続いて、1つのトポロジー(例えば、病態関連トポロジー)に特有なエピトープのみを含む変異型のcDNAまたはコードされるポリペプチドを、病態を引き起こす細胞、例えば腫瘍細胞上に発現される受容体トポロジーに対して個体に予防的または治療的なワクチン接種を行うための免疫原として利用する。例えば、いくつかの態様においては、MCF-7細胞に認められるCXCR4トポロジーの特有のエピトープを含む抗原を、癌細胞、例えば、乳癌細胞、子宮頸癌細胞、子宮頸癌細胞、バーキットリンパ腫細胞、膠芽腫細胞、またはその他の癌細胞に対する免疫応答を誘発させるために用いる。いくつかの態様においては、変異型または改変型のcDNAを、適した細胞種、例えばHLAを一致させた細胞種において、その細胞へのトランスフェクションによって発現させる。変異型cDNAを発現する細胞は、注射(例えば、皮内、皮下、筋肉内、腹腔内など)を含む、種々の様式で投与しうると考えられる。または、特有のエピトープを含むが共通エピトープは含まないペプチドを担体と結合させてワクチンとして用いることも可能と考えられる。さらに、ケモカイン受容体の特定のトポロジーに対して特異的なエピトープをコードするポリヌクレオチドをベクター中に挿入して、遺伝子治療のために用いることもできる。
実施例1
本実施例は、CXCR4が、異なる細胞では異なるトポロジーを形成することを示す。
試薬および細胞
ヒト、ウイルスおよびマウスの組換えケモカインを、指示の通りに、R&D Systems(Minneapolis, MN)およびPeproTech(Rocky Hill, NJ)から入手した。125I標識SDF-1αはPerkinElmer Life Sciences, Inc.(Boston, MA)から購入し、125I標識I-TACはAmersham Pharmacia Biotech(Buckinghamshire, UK)から入手した。フローサイトメトリーおよびリガンド結合競合に用いたモノクローナル抗体はR&D Systems(Minneapolis, MN)から入手した:抗CXCR4クローン12G5、44708.111(171)、44716.111(172)、44717.111(173)、nmIgG2a、およびnmIgG2b。フローサイトメトリーによる抗体結合の検出には二次抗体、ヤギ抗マウスIgG PE結合物(Coulter Immunotech, Miami, FL)を用いた。以下の細胞株はAmerican Type Culture Collection(Manassas, VA)から入手した:MCF-7(腺癌;乳腺)、MDA MB-231(腺癌;乳腺)、MDA MB-435s(乳管癌;乳腺)、DU 4475(乳腺)、ZR 75-1(乳管癌;乳腺)、およびHEK 293(ヒト胎児腎臓)。CEM-NKr(急性リンパ性白血病;末梢血;Tリンパ芽球)細胞はNIHのAIDS Research and Reference Reagent Programから入手した。細胞株は、5%CO2/空気混合ガスを満たした加湿インキュベーター内で、10%ウシ胎仔血清(FBS)(HyClone Logan, UT)を添加したDMEM(Mediatech, Herndon, VA)中にて37℃で培養した。ヒト末梢血単核細胞(PBMC)は、Ficoll-Hypaque密度勾配下での遠心処理により、健常ドナーのバフィコートから入手した(Stanford Blood Center, Palo Alto, CA)。単離したPBMCを、5%CO2/空気混合ガスを満たした加湿インキュベーター内で、10%FBSを添加した37℃のRPMI-1640(Mediatech、Herndon、VA)中にて、2.5ug/mlフィトヘマグルチニン(PHA)(Sigma Chemical Company, St. Louis, MO)および10ng/ml組換えヒトIL-2(R&D Systems, Minneapolis, MN)により3日間にわたり活性化した。活性化の後に細胞を洗浄し、10%FBSおよび10ng/ml IL-2を添加したRPMI中にて、細胞を用いる日まで3〜4日毎に培地を交換しながら培養した。
本発明者らは、MCF-7細胞およびCEM-NKr細胞上のCXCR4とケモカインリガンドとの相互作用の全体的プロフィールの検討に、独自の技法であるDisplaceMaxを用いた。この技術では、以前に記載したように(Kledal T Nら、Science 277: 1656-1659 (1997);Dairaghiら、J Biol Chem 274: 21569-74 (1999);Gosling, J.ら、J Immunol 164: 2851-6 (2000))、濾過プロトコールを用いる、拡張され、効率が最大限に高められた放射性リガンド結合を利用する。これらのアッセイ法において、DisplaceMaxは、記載したプロトコールを用いて(Dairaghiら、J Biol Chem 274: 21569-74 (1999);Gosling, J.ら、J Immunol 164: 2851-6 (2000))、125I放射標識したSDF-1αまたはI-TAC(指定の通り)を置換する能力に関して、110種を上回る別個の精製ケモカインによる、MCF-7細胞またはCEM-NKr細胞(指定通り)の同時インタロゲーションを用いる。簡潔に述べると、ケモカイン因子を細胞とともにインキュベートした後に、放射標識ケモカイン(125I SDF-1αまたは125I h I-TAC)を添加し、以下の結合培地(25mM HEPES、140mM NaCl、1mM CaCl2、5mM MgCl2、および0.2%ウシ血清アルブミン、pH 7.1に調整)中にて4℃で3時間おく。指定した場合には、抗CXCR4抗体またはアイソタイプ対照を結合反応に含める。これらの実験では、放射標識ケモカインの添加の前に、細胞を指定濃度の抗体とともに4℃で30分間プレインキュベートした。指定したいくつかのアッセイ法には低分子を含めた。これらのアッセイ法では、化合物を指定濃度でプレートに添加し、その後に放射標識ケモカインを添加した。続いて全アッセイ物を静かに攪拌しながら4℃で3時間インキュベータした。すべての結合アッセイ法において、インキュベーションの後に、反応物を吸引し、細胞収集装置(Packard)を用いてPEI処理GF/Bガラスフィルター(Packard)上に収集した上で2回洗った(25mM HEPES、500mM NaCl、1mM CaCl2、5mM MgCl2、pH 7.1に調整)。シンチラント(MicroScint 10, Packard)をウェルに添加し、フィルターをPackard Topcountシンチレーションカウンターでカウントした。データの解析およびプロットには、Prism(GraphPad Prismバージョン3.0a、マッキントッシュ用、GraphPad Software)を用いた。
上記の濾過利用アッセイ法を用いて、細胞を1)緩衝液のみ、2)過剰量のSDF-1β(最終90nM)、または3)MIG(最終175nM)のいずれかと指定の通りに4℃で30分間プレインキュベートした。このインキュベーション後に、指定した規定濃度の非放射性ケモカイン競合物質および125I h I-TACを結合反応物に添加した。続いて上記の通りにすべてのアッセイ物をインキュベートし、収集した上で分析した。
標準的な技法を用いてmRNAを細胞から単離した。PCRにより、CXCR3およびCXCR4の発現に関して相補的DNAを分析した。特異的プライマーはIntegrated DNA Technologies(Coralville, IA)から入手した。35サイクルの間の特異的PCR産物をHybaid Omn-E(E&K Scientific Products, Inc., Saratoga, CA)によって測定した。GAPDHを対照として測定した。
浸潤アッセイ法は製造者の指示に従って行った。簡潔に述べると、ケモカインを、0.1%ウシアルブミン(Sigma Chemical Company, St. Louis, MO)を添加したHBSS(Life Technologies, Gaithersburg, MD)中に希釈した上で、BD BioCoatマトリゲル(Matrigel)浸潤チャンバー(BD Biosciences, Bedford, MA)の下方のウェルに添加した。MDA MB-231細胞をマトリゲルをコーティングしたインサートに添加し、プレートを、5%CO2/空気混合ガスを満たした加湿インキュベーター内で37℃にて22時間インキュベートした。このインキュベーション後に、インサートを新たなプレートに移し、インサート内の培地を除去した。各ウェルから綿棒を用いてマトリゲルプラグを採取した。続いて、フィルターをプロトコールHema染色システム(Biochemical Sciences, Inc., Swedesboro, NJ)を用いて染色した。浸潤細胞を、40倍レンズを装着したNikon Elipse E800(Nikon, Inc., Melville, NY)顕微鏡を用いて観察した。細胞を各フィルターにつき5つずつの視野で算定した。データは3回ずつ試験した各フィルターの5つの視野の平均を表す。
最近の報告で、いくつかの腫瘍細胞種上でのCXCR4発現が同定されており(Sehgalら、J Surg Oncol 69: 99-104 (1998);Sehgal, A.ら、J Surg Oncol 69: 239-48 (1998);Burgerら、Blood 94: 3658-67 (1999);Rempelら、Clin Cancer Res 6: 102-11 (2000);Koshiba, T.ら、Clin Cancer Res 6: 3530-5 (2000);Muller, A.ら、Nature 410: 50-6 (2001);Robledoら、J Biol Chem 276: 45098-45105 (2001))、その一例ではこの発現が乳房腫瘍細胞の転移と関連づけられている(Muller, A.ら、Nature 410: 50-6 (2001))。腫瘍細胞表面のケモカイン受容体の役割をさらに検討するために、本発明者らはいくつかのヒト乳房腫瘍細胞株上でのCXCR4の発現の評価に着手した。最初に、CXCR4発現パターンをフローサイトメトリーによって評価した。抗CXCR4染色のT細胞性表現型を決定するために、初代IL-2培養Tリンパ球、ならびにCEM-NKrおよびジャーカットという2つのT細胞系を検討した。3種の乳房腫瘍細胞株MCF7、MDA MB-231、およびMDA MB-435sも検討した(図1,a)。検討した4種の抗CXCR4クローンはすべてT細胞を染色した。驚いたことに、乳房腫瘍細胞はCXCR4を発現すると報告されているが、広く用いられているクローン12G5では乳房腫瘍細胞上にCXCR4が検出されなかった。検討した他の3種のクローンでは乳房腫瘍細胞上に弱くかつ程度の異なる反応性が検出された。乳房腫瘍細胞株DU 4475およびZR 75-1もこのアッセイ法で検討したところ(非提示データ)、検討した他の乳房腫瘍細胞類似の抗体染色プロフィールが見いだされた。このため、CXCR4に対する一群のmAbの染色パターンからは、「白血球」性CXCR4表現型(CEM-NKr、ジャーカット、およびIL-2リンパ球の染色に代表される)および乳房腫瘍細胞性表現型(MCF-7およびMDA MB-231乳房腫瘍細胞株上での弱い染色に代表される)という異なる2種類の反応性が示唆されるように思われる。
本実施例は、CCR1が、異なる細胞では異なるトポロジーを形成することを示す。
ある1つの受容体遺伝子によって採用される、発現タンパク質の複数の異なるトポロジーは、一群の抗体(受容体ポリペプチドに相当する組換えタンパク質に対して産生されたモノクローナル抗体など)に対する反応として異なる染色プロフィールを示す可能性がある。ケモカイン受容体CCR1の場合がそうである。5種類のモノクローナル抗体(クローン番号1〜5と命名)は、すべての被験細胞がCCR1受容体を発現するという事実にもかかわらず、異なる細胞種では異なる反応を示す。図6を参照。例えば、クローン番号5および番号2は、トランスフェクト体(HEK-293およびNSO-CCR1)、THP-1細胞(急性単球性白血病)、未熟樹状細胞(DC)、および好中球上に発現されたCCR1を認識するが、単球のものは認識しない。クローン番号4は、トランスフェクト体およびTHP-1細胞上のCCR1を認識するが、検討した初代細胞(単球、好中球、および未熟DC)のものは認識しない。このように、同一のタンパク質(CCR1)を標的とする抗体は、CCR1が発現される細胞種に応じて異なる認識パターンを示す。
ある1つの受容体遺伝子によってコードされる複数のケモカイン受容体トポロジーは、リガンド結合プロフィールの点で異なる可能性がある。それらは異なるリガンド結合「フィンガープリント」を有すると思われる(すなわち、それらは異なる範囲にわたる別個のリガンドと結合する)。さらに、それらはそのフィンガープリントに含まれるリガンドと、異なるトポロジーでは異なる親和性で結合すると思われる。いくつかのCCR1リガンドの場合がそうである。ヒトCCケモカインCCL23の2つの選択的スプライシング形態であるCKβ8およびCKβ8-1が報告されている。CKβ8はCCL23の99アミノ酸形態(アミノ酸1〜99)であり、一方、そのスプライス変種であるCKβ8-1はアミノ酸1〜116からなる。この2つの成熟形態はいずれもCCR1の機能性リガンドとされている。CKβ8の2種類のNH2末端切断変種(24-99および25-99)が記載されており、これらはCCR1上のCKβ8の成熟形態よりもはるかに効力が強いことが示されている。本発明者らはここで、これらのCKβ8形態の2つであるCKβ8(1-99)およびCKβ8(25-99)、さらには別の2つのCCR1リガンドであるMIP-1αおよびロイコタクチンの生物活性に注目した。図7参照。例えば、HEK293-CCR1細胞上での125I MIP-1αとCKβ8(1-99)との競合では、算出されたIC50は64nMである。しかし、NSO-CCR1細胞上でのこの同じ競合では、算出されたIC50は3.9nMである。このように、異なる細胞種上の同一のタンパク質(CCR1)に対する結合に関して競合する同じ複数のケモカインにより、非常に異なる結合特性が生じる。
そのトポロジーに基づき、ケモカイン受容体は、異なる細胞性または病態生理学的な状況において異なる生物的機能を制御または付与する。それらは、異なる細胞状況下で異なるリガンド結合スペクトルを有することにより、機能(例えば、細胞移動)を異なる形で制御する。それらは、異なる細胞状況下での異なる共役および二次メッセンジャー性シグナル伝達により(異なるGタンパク質との結びつきを生じることなどにより)、細胞機能を異なる形で制御する。CCR1の複数のトポロジーはこの現象の一例を示す。
ある1つの受容体の複数のトポロジーは、アミノ酸配列の点で同一または極めて類似した共通のポリペプチド骨格を有する;これらの配列は遺伝的には同一である。CCR1タンパク質をコードするcDNAを、HEK293およびジャーカットという2種類の細胞にトランスフェクトした。これらのトランスフェクト体は、遺伝的に同一なCCR1を発現するという事実にもかかわらず、異なる抗体反応性を示した。図10参照。
Claims (24)
- ケモカイン受容体CCR1の第1のトポロジーとは結合するがケモカイン受容体CCR1の第2のトポロジーとは結合しない作用物質をスクリーニングする方法であって、以下を含む方法:
i) 第1のトポロジーを有するケモカイン受容体CCR1を含む第1の細胞、および第2のトポロジーを有するケモカイン受容体CCR1を含む第2の細胞を、1500ダルトン未満である作用物質と、該ケモカイン受容体において接触させる工程;ならびに
ii) ケモカイン受容体CCR1の第1のトポロジーとは結合するが第2のトポロジーを有するケモカイン受容体CCR1とは結合しない作用物質を選択する工程。 - 作用物質が600ダルトン未満である、請求項1記載の方法。
- ケモカイン受容体CCR1の第1のトポロジーとは結合するがケモカイン受容体CCR1の第2のトポロジーとは結合しない抗体をスクリーニングする方法であって、以下を含む方法:
i) 第1のトポロジーを有するケモカイン受容体CCR1を含む第1の細胞、および第2のトポロジーを有するケモカイン受容体CCR1を含む第2の細胞を、抗体と、該ケモカイン受容体において接触させる工程;ならびに
ii) ケモカイン受容体CCR1の第1のトポロジーとは結合するが第2のトポロジーを有するケモカイン受容体CCR1とは結合しない抗体を選択する工程。 - ケモカイン受容体CCR1の第1のトポロジーに対するリガンド結合によって誘発される細胞内シグナル伝達を調節する作用物質を選択する工程をさらに含み、それによって第1のトポロジーを有するケモカイン受容体へのリガンド結合によっては誘発されるが第2のトポロジーを有するものへの結合によっては誘発されない細胞内シグナル伝達を調節する作用物質を同定する、請求項1〜3のいずれか1項記載の方法。
- 作用物質が、ケモカイン受容体CCR1の第1のトポロジーに対するリガンドの結合に反応した細胞内カルシウムの動員を調節する、請求項4記載の方法。
- 第1の細胞または第2の細胞が、以下からなる群より選択される、請求項1〜5のいずれか1項記載の方法:
(i) 癌細胞;
(ii) 乳癌細胞;
(iii) 好中球;
(iv) 単球;
(v) マクロファージ;
(vi) 好酸球;
(vii) 好塩基球;
(viii) マスト細胞;
(ix) B細胞;
(x) HIV感染の担体にならない細胞;および
(xi) T細胞ではない細胞。 - 第1の細胞または第2の細胞が癌細胞である、請求項6記載の方法。
- 第1の細胞または第2の細胞が白血病癌細胞、好中球、単球、および樹状細胞より選択される、請求項6記載の方法。
- 結合に関して、作用物質がケモカイン受容体CCR1の天然リガンドと競合する、請求項1〜8のいずれか1項記載の方法。
- 動物におけるケモカイン受容体CCR1を介した細胞応答または組織応答を調節する作用物質をインビトロで選択する工程をさらに含み、それにより動物におけるケモカイン受容体CCR1を介した組織応答または細胞応答を調節する作用物質を同定する、請求項1〜9のいずれか1項記載の方法。
- 細胞応答または組織応答が、細胞の走化性を含む、請求項10記載の方法。
- 走化性細胞が白血球である、請求項11記載の方法。
- 白血球の走化性が低下する、請求項11記載の方法。
- 白血球の走化性が上昇する、請求項11記載の方法。
- 細胞応答または組織応答が炎症を含む、請求項10記載の方法。
- ケモカイン受容体CCR1の新規なトポロジーをスクリーニングする方法であって、以下を含む方法:
i) それぞれの細胞種がケモカイン受容体CCR1を発現する、少なくとも第1の細胞種および第2の細胞種を提供する工程;
ii) 2つの細胞種上のケモカイン受容体CCR1と結合する能力に関して複数の異なるケモカインの試験を行う工程;および
iii) 第1の細胞種上のケモカイン受容体CCR1とは結合するが第2の細胞種上のケモカイン受容体CCR1とは結合しないケモカインを同定することにより、ケモカイン受容体CCR1の新規なトポロジーを同定する工程。 - 少なくとも3種の細胞種の試験を行う、請求項16記載の方法。
- 少なくとも10種のケモカインの試験を行う、請求項16、または17記載の方法。
- ケモカインが、CL1、XCL2、CX3CL1、CXCL1、CXCL2、CXCL3、CXCL4、CXCL5、CXCL6、CXCL7、CXCL8、CXCL9、CXCL10、CXCL11、CXCL12、CXCL13、CXCL14、CXCL15、CXCL16、CCL1、CCL2、CCL3、CCL4、CCL5、CCL6、CCL7、CCL8、CCL9、CCL10、CCL11、CCL12、CCL13、CCL14、CCL15、CCL16、CCL17、CCL18、CCL19、CCL20、CCL21、CCL22、CCL23、CCL24、CCL25、CCL26、CCL27、およびCCL28からなる群より選択される、請求項16〜18のいずれか一項記載の方法。
- ケモカインが固体支持体に対して係留されている、請求項16〜19のいずれか一項記載の方法。
- 試験の段階が、各細胞種における、ケモカインがケモカイン受容体CCR1と結合するリガンドと競合する能力を決定する工程を含む、請求項16〜20のいずれか一項記載の方法。
- リガンドが標識されている、請求項21記載の方法。
- 少なくとも1つの細胞種が、内因性ケモカイン受容体CCR1を発現する、請求項16〜22のいずれか一項記載の方法。
- 少なくとも1つの細胞種が、組換え的に発現されるケモカイン受容体CCR1を発現する、請求項16〜23のいずれか一項記載の方法。
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