JP4320262B2

JP4320262B2 - Ｇ２ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの新規な治療用途

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Publication number: JP4320262B2
Application number: JP2003577897A
Authority: JP
Inventors: ユンヒキム; ドンクンソン; ホンウォンス; スンオヒュ
Original assignee: Biosynergen Inc
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Filing date: 2003-03-25
Publication date: 2009-08-26
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Description

本発明はＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの新規の治療学的用途に関し、より詳しくはＬＰＣ（リゾホスファチジルコリン）、ＳＰＣ（スフィンゴシルホスホリルコリン）又はこれらの誘導体を患者に投与することよりなる、好中球の蓄積及び過活性及び／又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患又は感染性疾患を治療する方法に関するものである。

炎症は、病原体、異物及び組織損傷に対する重要な生体防御反応である。炎症は熱、脱力、食欲減退、悪寒などの全身症状又は発赤、浮腫、痛み、機能障害などの局所的症状を伴う。炎症は持続期間によって急性炎症、亜急性炎症、及び慢性炎症に分けられる。急性炎症反応は血管で起こり、好中球が主に関与する。特に化膿性炎症の場合には、著しい好中球の増加が観察される。慢性炎症は数週又は数ヶ月間持続する。組織の損傷及び治癒が同時に起こることが急性炎症との相違点である（Robbins Pathological Basis of Disease by R.S. Cotran, V. Kumar, and S.L. Robbins, W. B. Saunders Co., p. 75, 1989）。慢性炎症は急性炎症から直接移行され得るが、通常、慢性炎症は例えば、遅延された過敏性反応を引き起こす継続的な感染（例えば、結核、梅毒、真菌感染症）、持続的な内毒素（例えば、増加した血漿脂質）又は外毒素（例えば、シリカ、石綿、タール、手術縫合糸）に対する露出、又は自己組織に対する自己免疫反応（例えば、リウマチ性関節炎、全身性紅斑性狼瘡、多発性硬化症、乾癬）の結果であって、時間の経過に従って進行する潜行性発現を引き起こすことができる。したがって、慢性炎症はリウマチ性関節炎、再狭窄症、乾癬、多発性硬化症、手術癒着、結核及び慢性炎症性肺疾患（例えば、喘息、塵肺症、慢性閉塞性肺疾患、肺線維症）のような多くの医学的症状を含む。亜急性炎症は急性と慢性の中間段階の炎症を示す。

主要炎症性疾患としては、感染性鼻炎、アレルギー性鼻炎、慢性鼻炎、急性副鼻腔炎及び慢性副鼻腔炎などのような鼻炎及び副鼻腔炎；急性化膿性中耳炎及び慢性化膿性中耳炎などのような中耳炎；細菌性肺炎、気管支肺炎、大葉性肺炎、レジオネラ肺炎及びウイルス性肺炎などのような肺炎；急性又は慢性胃炎；感染性全腸炎、クローン病（Crohn’s disease）、特発性潰瘍性大腸炎、偽膜性大腸炎などのような腸炎；及び化膿性関節炎、結核性関節炎、変形性関節症及び関節リウマチのような関節炎などがある。そのほかに、初期に極度の全身的炎症反応を伴う敗血症がある。敗血症は宿主がグラム陰性菌の内毒素などに対して過度に反応することにより発生する。従来は、敗血症を治療するため、抗菌剤とステロイド製剤が使用されてきたが、その効果が小さいため、敗血症による宿主の死亡率は依然として高い実情である。

また、過度の炎症は周囲組織の永久的損傷をもたらし、急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）は過度な炎症による組織損傷の結果として発生する代表的な炎症性疾患の一つであるとされている。ＡＲＤＳは肺胞毛細血管障壁の透過性が増加して発生する肺水腫による急性低酸素性呼吸不全である。これは急性肺損傷（ＡＬＩ）の最も重症な症例であるとされている。患者をＡＲＤＳに誘導する臨床症状は外傷、出血又は敗血症などのように多様であり、ＡＲＤＳはこれらの症状による過度の全身的な炎症反応に起因する。これに対し、低酸素症の治療、気管内挿管、機械的人工換気などの治療が行われているが、ＡＲＤＳによる死亡率は５０〜７０％に達している。循環する炎症細胞、特に好中球が急性肺損傷、例えば肺水腫、炎症反応など、の開始と進行に重要な役割をするものとして知られている（Abraham et al., Am. J. Physiol., 279, L1137-L1145, 2000）。何人かの学者は、ＡＲＤＳ患者の肺内に、好中球が広範囲に蓄積されることを立証した（Weinacker & Vaszar, Annu. Rev. Med., 52: 221-37, 2001）。好中球は一旦活性化されると、マトリックスメタロプロテアーゼなどの蛋白質分解酵素及び肺損傷に起因する他の媒体を放出する。したがって、肺への好中球の蓄積を抑制すると、急性肺損傷によるＡＲＤＳを治療することができるであろう。

また、多臓器不全症候群（ＭＯＤＳ）は敗血症などの合併症による疾患である。ＭＯＤＳの例としては、急性肝不全、急性腎不全、肺不全、消化管出血などがある。ＭＯＤＳを治療するため、抗菌剤とステロイド製剤が使用されているが、その効果は弱い。

一方、好中球（多形核白血球（ＰＭＮｓ)ともいう）は宿主防衛機序（host defense mechanism）に重要な役割をする食細胞で、体内で循環する白血球の約６０％を占める。好中球の膜はＧＭ−ＣＳＦ（顆粒球マクロファージコロニー刺激因子）、Ｇ−ＣＳＦ（顆粒球コロニー刺激因子）などの造血成長因子、オプソニン及び化学走化性因子対する受容体に関連した信号伝達に関与するＧ蛋白質、Ｎａ＋、Ｋ＋、Ｃａ２＋など、イオン交換に関与するイオンチャンネル、酵素及びリン脂質を有する。また、好中球の表面には、ＣＤ１６及びＣＤ３２のようなＩｇＧ抗体に対するＦｃ受容体とＣＲ１及びＣＲ３のようなＣ３補体蛋白質に対する受容体が存在する。したがって、これらに結合された抗原を容易に認識して除去することができる。好中球の顆粒には、ペルオキシダーゼ、ラクトフェリン、白血球接着受容体（leukocyte adhesion receptor）、アルカリホスファターゼなどのような殺菌に関与するデフェンシン及び殺菌／浸透促進蛋白質（bactericidal/permeability-increasing protein；ＢＰＩ）などがあり、感染源を破壊するか又は炎症反応の進行に関与する。好中球は、これらのほかにも、ＣＤ１１ａ／ＣＤ１８（ＬＦＡ−１）、セレクチンなどのような細胞接着蛋白質も発現しており、これらは炎症反応において好中球の移動に重要な役割をする。

正常人において、好中球は、１日に体重１ｋｇ当り０．８５〜１．６×１０９個が生産される。骨髄でおよそ１４日間にわたって生成、分化された後、末梢血に入り、約６時間循環する。これらは組織に浸透し、組織内で数日間生存してから死ぬか又は粘膜で消失される。好中球はおよそ６から１０時間の短い半減期を有し、アポトーシスによりマクロファージ中で除去される。好中球のアポトーシスは自発的に又は外部の刺激により生じる。外部刺激の代表的なものとしては、Ｆａｓ経路が挙げられる。Ｆａｓは好中球の表面に存在するＴＮＦ受容体に似ている物質で、Ｆａｓリガンドにより刺激されると、細胞内のＦＡＤＤ経路を介してアポトーシスを引き起こす。この経路においては、カスパーゼが重要な役割をすると知られている。好中球のアポトーシスは多様な炎症媒介因子により遅延又は抑制されると知られている。一部の報告は、ＡＲＤＳ患者で観察される好中球アポトーシスの遅延（抑制）がＧＭ−ＣＳＦによるものであると提示している。しかし、好中球のアポトーシスを遅延させる細胞内の伝達経路は殆ど明かされていない。このように、多くの炎症性疾患においては、多様な炎症媒介因子により生理的に活発な好中球のアポトーシスが抑制され、その結果として、好中球が過度に蓄積されるので、持続的な炎症反応が起こって周囲組織の損傷をもたらす。前記炎症媒介因子としては、体外から由来するＬＰＳ（lipopolysaccharide）と内因性因子であるＧ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−２、ＩＬ−６などが知られている。

近年、脂質性伝達物質として知られたＬＰＡ（リゾホスファチジル酸）又はＳＩＰ（スフィンゴシン１−リン酸）の構造にコリンが結合した構造を有するＬＰＣ（リゾホスファチジルコリン）とＳＰＣ（スフィンゴシルホスホリルコリン）に対して多くの研究が進んでいる。ＬＰＣとＳＰＣはＬＰＡとＳ１Ｐとともに細胞膜生合成の中間体であるだけでなく信号伝達分子として重要な役割をするものと知られている（Fukushima, N. et al., Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 41: 507-534, 2001）。これらはその受容体と結合し、多くの信号伝達系を介して細胞増殖、分化、運動、細胞死などの多様な細胞反応を引き起こす（Lynch, K. R. et al., Trends Pharmacol. Sci., 20(12): 473-475, 1999）。これらが結合する受容体はＧ蛋白結合性受容体（G protein-coupled receptors）に分類される受容体の一種である。ＯＧＲ−１ (orphan G-protein-coupled receptor 1)がＳＰＣの受容体として最初に発見され（Xu, Y. et al., Nat. Cell. Biol., 2(5):264-267, 2000）てから、ＯＧＲ−１と類似構造の受容体であるＧＰＲ４とＧ２Ａ受容体に対するリガンドを糾明しようとする研究が進行された。その結果、ＧＰＲ４がＳＰＣとＬＰＣをリガンドとして認識し、ＯＧＲ−１がＳＰＣによる細胞増殖を抑制するのに対し、ＧＰＲ４はＳＰＣとＬＰＣによる細胞増殖を促進するとということが確認された（Zhu, K. et al., J. Biol. Chem., 276(44): 41325-41335, 2001）。また、Ｇ２ＡはＬＰＣに対して大きな親和性を有するが、ＳＰＣに対しては低い親和性を有すると報告された（Kabarowski, J. H. et al., Science, 293(5530): 702-705, 2001）。Ｇ２Ａはリンパ球に多く見出され、その発現はストレス又は遅延された有糸分裂情報（prolonged mitogenic signal）により上方に調整される。Ｇ２Ａ受容体のないノックアウトマウス（knock-out mouse）においては、自己免疫疾患が生じたと報告された（Le, L. Q. et al., Immunity, 14(5): 561-571, 2001）。

したがって、本発明者らは炎症性疾患を治療するための治療剤を開発するために研究を繰り返したところ、好中球に存在するＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドが炎症媒介因子による好中球アポトーシスの抑制及び好中球と単球のＩＬ−８（interleukin-8）放出を阻害して、炎症性疾患、特に好中球の過度な活性とＩＬ−８の過剰放出に関連した炎症性疾患又は微生物感染性疾患に優れた治療効果を有することを確認し、本発明を完成した。

したがって、本発明の目的は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを用いて、細胞、組織又は体内で好中球のアポトーシスを誘発する方法を提供することにある。

本発明の他の目的は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを用いて、細胞、組織又は体内でＩＬ−８の過剰な放出を抑制する方法を提供することにある。

本発明のさらに他の目的は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを用いて、好中球の殺菌作用を増強する方法を提供することにある。

本発明のさらに他の目的は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを用いて、好中球のアポトーシス抑制又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患を治療する方法を提供することにある。

さらに、本発明の他の目的は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを有効成分とする医薬用又は治療用組成物を提供することにある。

本発明のさらに他の目的は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの新規な治療用途を提供することにある。

前記のような目的を達成するため、本発明は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを好中球のアポトーシスを誘導するのに効果的な量で、細胞、組織又は体内に投与することよりなる、細胞、組織又は体内で好中球のアポトーシスを誘発する方法を提供する。

本発明の他の目的を達成すため、本発明は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドをＩＬ−８の放出を抑制するのに効果的な量で、細胞、組織又は体内に投与することよりなる、細胞、組織又は体内でＩＬ−８の放出を抑制する方法を提供する。

本発明のさらに他の目的を達成すため、本発明は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを好中球の殺菌作用を増加させるのに効果的な量で、細胞、組織又は体内に投与することを含む、細胞、組織又は体内で好中球の殺菌作用を増加させる方法を提供する。

本発明のさらに他の目的を達成すため、本発明は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを被験者に投与することよりなる、体内の好中球のアポトーシス抑制又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患を治療又は予防する方法を提供する。

本発明のさらに他の目的を達成すため、本発明は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを有効成分とする、好中球のアポトーシスを誘発するか又はＩＬ−８の放出を抑制する医薬組成物を提供する。

本発明のさらに他の目的を達成すため、本発明は、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを有効成分とする、好中球のアポトーシス抑制又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患の治療又は予防用組成物を提供する。

本発明のさらに他の目的を達成すため、本発明は、細胞、組織又は体内で好中球のアポトーシスを誘発するか又はＩＬ−８の放出を抑制する医薬組成物の製造のためのＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの用途を提供する。

本発明のさらに他の目的を達成すため、本発明は、好中球のアポトーシス抑制又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患を治療する薬剤の製造のためのＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの用途を提供する。

以下、本発明を詳細に説明する。
本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドはＬＰＣ（リゾホスファチジルコリン）、ＳＰＣ（スフィンゴシルホスホリルコリン）及びこれらの誘導体を含む。

本発明に使用されるＬＰＣは下記の式Ｉで示される。

式中、Ｒ_１はＣ_４−３０のアルキル基、あるいは１又はそれ以上の二重結合を有するＣ_４−３０のアルケニル基である。好ましいＬＰＣは、１−ステアロイル（１８：０）リゾホスファチジルコリン（_Ｌ-_α-Lysophosphatidylcholine stearoyl; Lysolecithin stearoyl)、１−オレオイル（１８：１）リゾホスファチジルコリン（_Ｌ-_α-Lysophosphatidylcholine oleoyl; Lysolecithin oleoyl)、１−ミリストイル（１４：０）リゾホスファチジルコリン（_Ｌ-_α-Lysophosphatidylcholine myristoyl）、及び１−パルミトイル（１６：０）リゾホスファチジルコリン（_Ｌ-_α-Lysophosphatidylcholine palmitoyl; Lysolecithin palmitoyl; DL-α-Lysophosphatidylcholine palmitoyl）からなる群より選択できるが、これらに制限されない。

また、本発明に使用されるＳＰＣは下記の式ＩＩで示される。

前記式ＩＩのＳＰＣにおいて、スフィンゴシン部分の末端炭素数は４〜３０であり得る。

さらに、本発明には前記ＬＰＣ又はＳＰＣの誘導体が使用できる。好ましくは下記の式ＩＩＩで示されるＬＰＣのエーテル誘導体であり得る。

式中、Ｒ_２はＣ_４−３０のアルキル基、あるいは一つ又はそれ以上の二重結合を有するＣ_４−３０のアルケニル基である。より好ましくは、_Ｌ−_α−リゾホスファチジルコリン−_γ−Ｏ−アルク−１−エニル（リゾホスファチダルコリン）、_Ｌ−_α−リゾホスファチジルコリン−_γ−Ｏ−アルキル（リゾ−血小板活性化因子）、_ＤＬ−_α−リゾホスファチジルコリン−_γ−Ｏ−ヘキサデシル（rac-リゾ−血小板活性化因子）、及び_Ｌ−_α−リゾホスファチジルコリン−_γ−Ｏ−ヘキサデシル（リゾ−血小板活性化因子；Lyso-PAF-C_１６）からなる群より選択できるが、これらに制限されない。

ＬＰＣ、ＳＰＣ及びこれらの誘導体は商業的に容易に購入することができる。具体的に、シグマ社（Sigma Chemical Co., 米国）から購入することができる。また、動物から分離することができ、当業界でよく知られた合成方法によっても製造することができる。ＬＰＣ、ＳＰＣ及びこれらの誘導体は哺乳動物の体内内在性物質であるので、安全性は立証されているよに良好である。

本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドは主に２種の活性を表す。第１には、これらはｉｎｖｉｔｒｏでは直接的な抗菌作用を示さないが、ｉｎｖｉｖｏでは好中球の抑制されたアポトーシス及び好中球と単球でのＩＬ−８の放出を遮断する機能を有する。したがって、これらを好中球のアポトーシス抑制及び／又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患の治療又は予防に効果的に使用することができる。

第２に、本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドは、殺菌能力を増強させるこよにより、好中球がより容易に病原体を殺し得るようにする。したがって、本発明による作用剤リガンドは、病原体に対して直接的な殺菌作用示さないが、好中球が病原体を迅速に除去できるので、新しいタイプの抗菌剤と言うことができる。したがって、本発明による作用剤リガンドは多様な微生物感染性疾患に対する治療剤又は治療補助剤として使用できる。

本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドを含む医薬組成物又は治療又は予防用組成物は薬学的に許容される担体、例えば経口投与用担体又は非経口投与用担体をさらに含むことができる。経口投与用担体は、ラクトース、澱粉、セルロース誘導体、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸などを含むことができる。経口投与用の場合、本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドは賦形剤と混合されて、摂取用錠剤、バッカル錠（buccal tablet）、トローチ、カプセル、エリキシル剤、懸濁剤、シロップ及びウェハーなどの形態で使用できる。また、非経口投与用担体としては、水、適当なオイル、食塩水、水性グルコース及びグリコールなどを含み、安定化剤及び保存剤をさらに含むことができる。適当な安定化剤としては、アスコルビン、亜硫酸ナトリウム又は酸亜硫酸水素ナトリウムのような抗酸化剤がある。適当な保存剤としては、塩化ベンザルコニウム、メチル−又はプロピル−パラベン及びクロロブタノールがある。その他の薬学的に許容される担体としては、つぎの文献に記載されているものを参照することができる（Remington's Pharmaceutical Sciences, 19th ed., Mack Publishing Company, Easton, PA, 1995）。

本発明による医薬組成物又は治療用組成物は多様な非経口又は経口投与形態に剤形化できる。非経口投与用剤形の代表的なものは注射用剤形で、等張性水溶液又は懸濁液が好ましい。注射用剤形は、適当な分散剤、湿潤剤又は懸濁化剤を使用して、当業界に知られた技術により製造することができる。例えば、各成分を食塩水又は緩衝液に溶解させて注射用の剤形に製剤化できる。また、経口投与用剤形としては、例えば錠剤、カプセル剤などがあるが、これらの剤形は有効成分のほかに、希釈剤（例えば、ラクトース、ブドウ糖、スクロース、マンニトール、ソルビトール、セルロース及び／又はグリシン）、又は潤滑剤（例えば、シリカ、タルク、ステアリン酸及びそのマグネシウム又はカルシウム塩及び／又はポリエチレングリコール）を含むことができる。また、錠剤は、ケイ酸アルミニウム・マグネシウム、澱粉糊、ゼラチン、トラガカント、メチルセルロース、ナトリウムカルボキシメチルセルロース及び／又はポリビニルピロリジンのような結合剤をさらに含むことができ、場合によっては、澱粉、寒天、アルギン酸又はそのナトリウム塩のような崩壊剤又は発泡剤混合物及び／又は吸収剤、着色剤、香味剤、及び甘味剤を含むことができる。前記剤形は通常の混合、顆粒化又はコーティング法により製造することができる。

本発明の医薬組成物又は治療用組成物は、防腐剤、水和剤又は乳化促進剤、浸透圧調節のための塩及び／又は緩衝剤などの補助剤及びその他の治療的に有用な物質のような添加剤含むことができ、通常の方法により製剤化できる。

本発明の医薬組成物又は治療用組成物の有効成分としてＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドは、人間を含む哺乳動物に対し１日０．０１〜１００ｍｇ／ｋｇ（体重）の量で１日１回又は数回、非経口又は経口的で投与することができる。投与量の範囲は、患者の年齢、体重、健康状態、性別、疾患の程度、食餌、投与時間、排泄率及び投与経路などによって適宜変化できる。本発明による医薬組成物又は治療用組成物は本発明の効果を保持す限り、その特定の剤形、投与経路及び投与方法を制限しない。また、本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドは炎症性疾患に適用される場合、抗生剤又は炎症疾患に一般に使用される炎症治療剤などとともに併用して投与することができ、微生物感染性疾患の治療に適用される場合、既存の抗生剤を含む多様な抗菌剤とともに投与することができる。

本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドは、好中球アポトーシス抑制による蓄積及び過活性及び／又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患、特に炎症性疾患の治療に有用に使用できる。本発明による作用剤リガンドが適用可能な炎症性疾患は、好中球のアポトーシス抑制及び過活性及び／又はＩＬ−８過剰放出に関連した急性又は慢性炎症性疾患及びこれらの合併症を全て含む。“慢性炎症”とは、好中球の過度な蓄積及び過活性及び／又はＩＬ−８の過剰放出によって、組織損傷を誘発するか又は持続的な炎症を誘発する全ての疾患及びその合併症をいう。具体的に、本発明の作用剤リガンドが適用可能な炎症性疾患は、クローン病及び潰瘍性大腸炎のような炎症性腸疾患、腹膜炎、骨髄炎、蜂巣炎、脳膜炎、脳炎、膵炎、外傷誘発ショック、気管支喘息、アレルギー性鼻炎、嚢胞性線維症、脳卒中、急性気管支炎、慢性気管支炎、急性細気管支炎、慢性細気管支炎、変形性関節症、痛風、脊髄関節症、強直性脊椎炎、ライター症候群、乾癬性関節症、腸疾患脊椎炎、年少者性関節症、年少者性強直性脊椎炎、反応性関節症、感染性関節炎、後−感染性関節炎、淋菌性関節炎、結核性関節炎、ウイルス性関節炎、真菌性関節炎、梅毒性関節炎、ライム病、“血管炎症候群”に関連した関節炎、結節性多発性動脈炎、過敏性血管炎、ヴェグナー肉芽腫症、リウマチ性多発性筋痛、巨細胞動脈炎、カルシウム結晶沈着関節症、偽痛風、非関節リウマチ、粘液嚢炎、腱滑膜炎、上顆炎（テニスエルボー）、神経障害性関節症（シャルコー関節）、関節血症、ヘーノホ−シェーンライン紫斑病、肥大性骨関節症、多中心性細網組織腫、脊柱側弯症、血色素症、鎌状赤血球症及びその他の異常血色素症、高リポ蛋白血症、低ガンマグロブリン血症、家族性地中海熱、ゲルハルト疾患、全身性紅斑性狼瘡、回帰熱、乾癬、多発性硬化症、敗血症、敗血症性ショック、急性呼吸窮迫症候群、多臓器不全症候群、慢性閉塞性肺疾患、関節リウマチ、急性肺損傷及び気管支肺異形成症などを含むが、これらに制限されない。

また、虚血−再潅流障害患者において、好中球が過度に蓄積することが報告されたことがある。すなわち、心臓、脳、腎臓、肝臓などを含む生体内の殆ど全ての臓器と組織は、血流の障害が発生すると、再潅流によって組織損傷を被る。この過程において好中球が重要な役割をするとが知られている（Jordan et al., Cardiovasc. Res., 43, 860-78, 1999）。したがって、本発明による作用剤リガンドは、炎症性疾患だけでなく、虚血性脳疾患、虚血性心疾患、虚血性腎臓病、虚血性肝疾患、虚血性腸疾患、器官移植時の血流障害による器官損傷など含む虚血−再潅流損傷の治療にも適用できる。

また、本発明はＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの治療学的用途を提供する。具体的に、本発明は細胞、組織又は体内で好中球の抑制されたアポトーシスを回復させるか、ＩＬ−８の放出を抑制するか、又は好中球の殺菌作用を増加させる医薬組成物の製造のためのＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの用途を提供する。前記医薬組成物は、前記式ＩのＬＰＣ、式ＩＩのＳＰＣ又はこれらの誘導体、好ましくは式ＩＩＩのＬＰＣのエーテル誘導体に薬学的に許容される担体をさらに含むことができる。薬学的に許容される担体の例は前記のようである。また、本発明による医薬組成物は経口又は非経口投与が可能であり、経口投与及び非経口投与の例は前記のようである。また、本発明は、好中球のアポトーシス抑制及び過活性及び／又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患治療剤の製造のためのＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドの用途を提供する。本発明による作用剤リガンドが適用できる疾患の例は前記のようである。

以下、本発明を実施例に基づいて詳細に説明する。
ただし、下記の実施例は本発明を例示するもので、本発明の範囲がこれに限定されるものではない。また、下記の実施例において、固体と固体混合物、液体と液体、及び液体と固体に対する百分率はそれぞれ重量／重量、体積／体積、及び重量／体積に基づいたもので、特別な指示がない限り、全ての反応は室温で行った。

炎症媒介因子による好中球の抗−アポトーシスに対するＬＰＣの抑制作用

＜１−１＞好中球の分離
Szucs, Sらの方法（J. Immunol. Methods, 167: 245-251, 1994）により、パーコルを用いる不連続密度勾配法（discontinuous percoll gradient）を用いて、健康な成人から好中球を分離した。まず、ヘパリン処理された全血から血漿を分離した後、赤血球をデキストラン沈殿（dextran sedimentation）で除去した。その後、白血球を比重１．０７７及び１．０９４のパーコル勾配（percoll gradient, Phharmacia, Sweden）で重畳させた。好中球層をパーコル勾配境界面から回収した後、ＨＢＳＳ（Hank’s balanced salt solution, Sigma Chemical Co., USA）で洗浄した。残っているペレットを１０％ＦＢＳ（牛胎児血清）と２ｍＭゲンタマイシンを含有するＲＰＭＩ１６４０培地に再懸濁させた。ライト−ギームザ（Wright-Giemsa, Sigma Chemical Co., USA）により染色されたシトスピン（cytospin）を試験した結果、再懸濁溶液に９５％以上の好中球が含まれていることを確認した。また、トリパンブルーを用いる染色法（trypan blue dye exclusion method）で試験した結果、９８％以上の好中球が観察された。

＜１−２＞外因性炎症媒介因子による好中球の抗−アポトーシスに対するＬＰＣの抑制作用
前記実施例＜１−１＞で分離された好中球細胞１×１０５個を１０％ＦＢＳを含有するＲＰＭＩ１６４０倍地を添加した９６−ウェルプレートで培養した。その後、１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）を１５μＭ及び３０μＭの濃度でそれぞれ処理した。１時間後、前記好中球細胞を１μｇ／ｍｌＬＰＳ（Sigma Chemical Co., USA）で処理した。２４時間後、培地をプレートから除去し、残余の細胞を４℃のＰＢＳ（phosphate-buffered saline）緩衝液で２回洗浄した。プレートの底に付いている細胞を全て掻き出し、１．５ｍｌエペンドルフチューブ（eppendorf tube）に入れた。その後、２５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上層液を除去した。さらに、４℃のＰＢＳ緩衝液０．１ｍｌを添加し、ピペットでよく混合した。前記細胞懸濁液２５μｌに１００μｇ／ｍｌのアクリジンオレンジ（acridine orange、ＡｃＯｒ）と１００μｇ／ｍｌエチジウムブロマイド（ethidium bromide、ＥｔＢｒ）が混合されたＡｃＯｒ／ＥｔＢｒ染色液２μｌを添加した。その後、好中球細胞を蛍光顕微鏡で観察して、アポトーシス細胞／総細胞の百分率を計算した。その結果、図１のＡに示すように、ＬＰＳにより減少した好中球のアポトーシスのパーセンテージが１−ステアロイルＬＰＣにより濃度依存的に増加することが確認できた。これによって、ＬＰＣが好中球のアポトーシスを阻害する外因性炎症媒介因子の作用を効果的に遮断することが分かった。

＜１−３＞内因性炎症媒介因子による好中球の抗−アポトーシスに対するＬＰＣの抑制作用
前記実施例＜１−１＞で分離された好中球を、ＬＰＳの代わりに、１００ｎｇ／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦ（Sigma Chemical Co.）、１００ｎｇ／ｍｌのＧ−ＣＳＦ（Sigma Chemical Co.）及び１００ｎｇ／ｍｌのＩＦＮ−γ（Sigma Chemical Co.）で処理したことを除き、前記実施例＜１−２＞と同様な方法で実験を行った。その結果、図１のＢに示すように、内因性炎症媒介因子により減少した好中球アポトーシスのパーセンテージが１−ステアロイルＬＰＣにより濃度依存的に増加することが確認できた。これによって、ＬＰＣが外因性炎症媒介因子だけでなく、内因性炎症媒介因子による好中球アポトーシスの阻害作用を効果的に遮断することが分かる。

炎症誘発サイトカインであるＩＬ−８の放出に対するＬＰＣの抑制作用
炎症性疾患の発生機序として重要視されている好中球及び血液単球での重要な炎症誘発サイトカインであるＩＬ−８の放出に対するＬＰＳの作用を試験した。

＜２−１＞好中球の分離
前記実施例＜１−１＞に記載したように、Szucs, S. らの方法により好中球を分離した。

＜２−２＞単球の分離
健康な人から末梢血を採取してヘパリンの入っている容器に入れ、１×ＰＢＳ緩衝液を添加してよく混合した。その後、フィコール−ヒパーク溶液（Ficoll-Hypaque solution、比重1.077, Sigma Chemical Co., USA）に重畳させた後、４℃で２５分間２５００ｒｐｍで遠心分離した。フィコール層とプラズマ層間にある単球を、気をつけて回収した後、１×ＰＢＳ緩衝液を添加してよく混合し、さらに４℃で２５分間２５００ｒｐｍで遠心分離した。このような遠心分離過程を、赤血球が除去されるまで、２回繰り返した。その後、ペレットを３７℃のＦＢＳで１５分間培養し、２５００ｒｐｍで１０分間遠心分離した。さらに、ペレットに１×ＰＢＳ緩衝液を添加した。分離した細胞をパーコル溶液（比重１．０６６）に重畳させた後、４℃で３０分間２５００ｒｐｍで遠心分離した。分離された層から単球層のみを回収した後、１×ＰＢＳ緩衝液を添加し、２５００ｒｐｍで１５分間遠心分離を行った。遠心分離を２〜３回繰り返した後、分離された単球を１０％ＦＢＳを含有するＲＰＭＩ１６４０倍地に接種し、３７℃、５％ＣＯ２インキュベータで培養した。

＜２−３＞ＩＬ−８の測定
前記実施例＜２−１＞及び＜２−２＞で分離された好中球と単球をそれぞれ１×１０５／well／０．２ｍｌの濃度で１０％ＦＢＳを含有するＲＰＭＩ１６４０倍地を添加した９６−ウェルプレートで培養した。その後、１−ステアロイルＬＰＣを１５μＭ及び３０μＭでそれぞれ処理した後、１時間後に１μｇ／ｍｌＬＰＳで処理した。３時間後、上層液を収集してエペンドルフチューブに入れた。その後、ＥＬＩＳＡキット（Biosource, USA）を用いてＩＬ−８の濃度を測定した。その結果、図２に示すように、好中球（Ａ；人ＰＭＮＳ）と単球（Ｂ；人ＰＢＭＣ）において、ＬＰＳにより増加したＩＬ−８の放出濃度がＬＰＣにより濃度依存的に抑制されることが確認できた。

好中球に存在するＬＰＣ−特異的受容体の探索
現在まで、ＬＰＣが特異的に結合する受容体としては、Ｇ２ＡとＧＰＲ４が知られている（Zhu, K. et al., J. Biol. Chem., 276(44): 41325-41335, 2001; Kabarowski, J. H. et al., Science, 293(5530): 702-705, 2001）。特に、単球にＬＰＣの受容体としてＧ２Ａが存在するという事実が最近リキタケら（Rikitake et al., Arterioscler Thromb Vasc Bio.l, 22: 2049-53, 2002）により報告された。しかし、好中球においては何も知られていない。したがって、本発明者らは好中球にＬＰＣ−特異的受容体が存在するか否かについて検討した。

まず、人の血液から前記実施例＜１−１＞と同様な方法で好中球を抽出した後、抽出された好中球からトリゾール試薬（TRIZOL reagent, GibcoBRL, USA）でＲＮＡを分離した。配列表１及び配列表２で表示されるＧ２Ａに特異的なプライマーと、配列表３及び配列表４で表示されるＧＰＲ４に特異的なプライマーをそれぞれ用いてＲＴ−ＰＣＲを行った。各プライマーにより増幅されるＧ２ＡとＧＰＲ４の大きさはそれぞれ４０９ｂｐ及び２４７ｂｐである。ＰＣＲの反応条件は９４℃／２分、６０℃／１．５分、７２℃／２分であって、総４０サイクルを行った。この際、逆転写酵素（ＲＴ）を添加しないでＲＴ−ＰＣＲを行ったものを対照群とした。その結果、図３に示すように、Ｇ２Ａの発現濃度が、対照群に比べて、著しく増加することが分かる。反面、ＧＲＰ４は対照群の発現濃度と変わりがなかった。対照群の場合にも各受容体が発現したことは、ＲＮＡ分離過程でＤＮＡが完全に除去されなかったからと思われる。この実験結果からＬＰＣがＧ２Ａ受容体に作用して、抗−アポトーシス抑制作用を有し、ＩＬ−８の放出を阻害すると思われる。

炎症媒介因子による好中球の抗−アポトーシスに対するＳＰＣの抑制作用
Ｇ２Ａ受容体の他のリガンドとして知られている、ＳＰＣもＬＰＣと同一の作用をするかを調べるため、ＬＰＣの代わりにＳＰＣ（Sigma-Aldrich Co.）を使用したことを除き、前記実施例＜１−２＞と同様な方法で実験を行った。その結果を図４に示す。図４に示すように、ＬＰＳにより減少した好中球のアポトーシスのパーセンテージがＳＰＣの濃度に依存して増加した。これによって、Ｇ２Ａ受容体に特異的な他の作用剤リガンドであるＳＰＣもＬＰＣと同一の機能を有することが分る。

＜参考例１＞
敗血症モデルの製造
＜１−１＞直接的に誘発された敗血症モデル：細菌−誘発敗血症モデル及びＬＰＳ−誘発敗血症モデル
ａ）細菌−誘発敗血症モデル
ＩＣＲマウス（体重２５〜３０ｇ；MJ Ltd.）に０．５ｍｌのＰＢＳ（リン酸−緩衝食塩液）に懸濁している１０^８個／ｍｌの生きている大腸菌（ＤＨ５ａ）を腹腔内注射して腹膜炎を引き起こして敗血症を誘発させた。
ｂ）ＬＰＳ−誘発敗血症モデル
ＩＣＲマウス（体重２５〜３０ｇ；MJ Ltd.）にＬＰＳ（E. coli ０５５：Ｂ５より誘発）を１ｍｇ／ｋｇの量で腹腔内注射して敗血症を誘発させた。
＜１−２＞間接的に誘発された敗血症モデル：ＣＬＰ−誘発敗血症モデル
ＩＣＲマウス（体重２５〜３０ｇ；MJ Ltd.）をペントバルビタールで麻酔した後、腹部右側部を１ｃｍの長さに切開して盲腸を露出させ、回盲弁の下部を結紮した。その後、盲腸に２１ゲージ針で４〜６個の孔を形成した後、腹部を縫合して腹膜炎を引き起こして敗血症を誘発させた。

＜参考例２＞
肺組織のミエロペルキシダーゼ活性の測定
肺組織での好中球の指標であるミエロペルキシダーゼ（ＭＰＯ）活性はゴールドブラムらの方法（Goldblum et al., J. Appl. physiol. 59: 1978, 1985）及びパレーらの方法（Parey et al., J. Immunol. 160:1007, 1998）に従って測定した。まず、マウスを殺して肺組織を取った。その組織をリン酸カリウム緩衝液中でホモジナイズし、ついで遠心分離を行ってペレットを得た。前記ペレットを０．５％のヘキサデシルトリメチルアンモニウムブロマイド（ＨＴＡＢ）を含有するリン酸カリウム緩衝液中で超音波処理し、６０℃で１２０分間培養した。遠心分離して上層液を収得し、０．０２ｍｌ上層液を、０．１６７ｍｇ／ｍｌのｏ−ジアニシジン二塩酸と０．０００５％の過酸化水素を含有するリン酸カリウム緩衝液（０．１８ｍｌ）と混合した。その後、４６０ｎｍの波長で混合物の吸光度を測定した。

＜参考例３＞
腹腔内大腸菌数の測定
マウスの腹腔を露出させた後、滅菌生理食塩水（２ｍｌ）で洗浄した。腹腔を洗浄した液をＨＢＳＳ（Sigma Chemical Co., USA）で１／１０００に希釈した後、それぞれの希釈液を１０μｌずつトリプチカーゼソイ寒天（Trypticase Soy agar, BBL, Becton Dickinson Co., USA）プレートに塗末した。３７℃で１夜培養し、コロニー形成単位（colony forming unit；CFU）を測定した。

細菌−誘発敗血症モデルにおける１−ステアロイルＬＰＣの治療効果
参考例＜１−１＞のａ）による細菌−誘発敗血症モデルのＩＣＲマウス１４匹を７匹ずつ２群に分けた。７匹のマウスには、大腸菌を腹腔内注射した後、２時間及び１４時間後にそれぞれ１回ずつ脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ（牛血清アルブミン）溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）をそれぞれ１０ｍｇ／ｋｇの量で皮下注射で投与した（実験群）。残りの７匹のマウスには、ＬＰＣの代わりに、同量の脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液を同様な方式で投与した（対照群）。その後、時間経過による実験群及び対照群のマウスの生存率を調査した。また、大腸菌の腹腔内注射２４時間後の腹腔内大腸菌数を参考例３に記載した方法で測定した。その平均値を算出して図５に示す。図５Ａの及び５Ｂに示すように、ＬＰＣが投与された実験群のマウスは敗血症による死亡率が有意に抑制され（Ｐ＜０．０５）、腹腔内大腸菌数も著しく減少した（Ｐ＜０．０１）。

ＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおける１−ステアロイルＬＰＣの治療効果

＜６−１＞ＣＬＰ手術２時間及び１０時間後そにれぞれＬＰＣを投与した場合
参考例＜１−２＞によるＣＬＰ−誘発敗血症モデルのＩＣＲマウス１４匹を７匹ずつ２群に分けた。７匹のマウスにはＣＬＰ手術２時間及び１４時間後にそれぞれ１回ずつ、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）を１０ｍｇ／ｋｇの量で皮下注射で投与し（た実験群。残り７匹のマウスには、同量の脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液を同様な方式で投与した（対照群）。ＣＬＰ手術２４時間後、参考例３に従って、実験群及び対照群のＩＣＲマウスの腹腔内大腸菌数を測定した。その平均値を算出して図６Ａに示す。図６Ａに示すように、ＬＰＣが投与された実験群のマウスの腹腔内大腸菌数が著しく減少した（Ｐ＜０．０１）ことが確認できた。

＜６−２＞ＣＬＰ手術２時間後、１２時間の間隔でＬＰＣを４回投与した場合
参考例＜１−２＞によるＣＬＰ−誘発敗血症モデルのＩＣＲマウス４０匹を１０匹ずつ４群に分けた。各１０匹のＩＣＲマウスに、ＣＬＰ手術２時間後から１２時間の間隔で４回、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）をそれぞれ５、１０、２０ｍｇ／ｋｇの量で腹腔内投与した（実験群−１、−２及び−３）。残り１０匹のＩＣＲマウスには脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液のみを投与した（対照群）。その後、時間経過による実験群及び対照群のマウスの生存率を調査した。その結果を図６Ｂに示す。図６Ｂに示すように、ＬＰＣを投与した実験群のマウスの生存率が対照群のマウスに比べて遥かに高かった。

＜６−３＞ＣＬＰ手術１０時間後、１２時間の間隔でＬＰＣを４回投与した場合
ＬＰＣが敗血症の進行後にも治療効果を表すかを観察するため、参考例＜１−２＞によるＣＬＰ−誘発敗血症モデルのＩＣＲマウス２０匹を２群に分けた。１０匹の実験群マウスには、ＣＬＰ手術後１０時間後、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）の１０ｍｇ／ｋｇの量を１２時間の間隔で４回腹腔投与した。残り１０匹の対照群マウスには脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液のみを投与した。その後、時間経過による実験群及び対照群マウスの生存率を調査した。その結果を図６Ｃに示す。図６Ｃに示すように、敗血症がさらに進行された場合にもＬＰＣは優れた治療効果を表した。

ＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおける１−オレオイル−ＬＰＣ及び１−ミリストイル−ＬＰＣの治療効果
１−ステアロイルでない他の置換基（Ｒ_１）を有するＬＰＣも敗血症に効果があるかを調べるため、１−オレオイル又は１−ミリストイルを有するＬＰＣを１０ｍｇ／ｋｇの量で実施例＜６−２＞と同様な方法で腹腔内に投与した。その結果、図７に示すように、１−オレオイルＬＰＣ及び１−ミリストイルＬＰＣも敗血症に対する優れた治療効果を示した。

＜比較例＞
ＬＰＣのｉｎｖｉｔｒｏ抗菌作用
ＬＢ培地に１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）を１２、６０及び３００ｍＭの濃度でそれぞれ添加し、６０ｍｍペトリ皿に注いで固めた（実験群−１、−２及び−３）。各群当り４つのペトリ皿を使用した。対照群としては、４つの６０ｍｍペトリ皿にＬＢ培地のみを注いで固めた。、実施例＜６−１＞によるマウスの腹膜液を滅菌生理食塩水で洗浄した。この洗浄液をＨＢＳＳで１／１００に希釈し、次いで１０μｌの希釈液を各群の培地上に塗末した。その後、３７℃細菌培養器で１２時間培養した後、コロニー形成単位（ＣＦＵ）を肉眼で測定した。その結果を下記の表１に示す。

前記表１に示すように、ＬＰＣはｉｎｖｉｔｒｏで大腸菌に対して直接的な抗菌作用を表さなかった。

ＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおけるＳＰＣの効果
ＣＬＰ−誘発敗血症モデルマウスに、ＣＬＰ手術２時間後、１２時間の間隔で４回、１−ステアロイルＬＰＣの代わりに、ＳＰＣを３ｍｇ／ｋｇ及び３０ｍｇ／ｋｇの用量でそれぞれ皮下注射した。マウスの生存率を調査した。その結果、図８に示すように、ＳＰＣも、ＬＰＣと同様に、ＣＬＰ敗血症による死亡率を３０ｍｇ／ｋｇの用量で効果的に抑制することが確認できた。

急性呼吸窮迫症候群に対するＬＰＣの治療効果

＜９−１＞ＬＰＳ−誘発急性肺損傷（ＡＬＩ）モデル
ＬＰＳをマウスの気管支内に投与し直接的な急性肺損傷を引き起こして急性呼吸窮迫症候群を誘発した。
３５匹のＩＣＲマウス（体重２５〜３０ｇ；MJ Ltd.）を７匹ずつ５群（シャム群、実験群−１、−２、−３及び対照群）に分けた。ペントバルビタールで麻酔させた後、皮膚を１ｃｍの長さに切開して気管支を露出させたた。シャム群のマウスには、ＰＢＳ緩衝液（５０μｌ）を気管支に投与した後、縫合し、実験群及び対照群のＩＣＲマウスには、ＬＰＳ（６μｇ／５０μｌＰＢＳ緩衝液）を気管支に直接投与した後、縫合した。その後、実験群−１、−２及び−３のマウスに、ＬＰＳ投与２時間及び１４時間後に、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）を５、１０及び２０ｍｇ／ｋｇの量でそれぞれ皮下注射で投与した。一方、対照群のマウスには、ＬＰＣの代わりに、同量の脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液を同一方式で投与した。ＬＰＳ投与２４時間後、各群のマウスの肺組織における、好中球の指標である、ＭＰＯ活性を、参考例２に記載したように、測定し、その平均値を図９Ａに示す。図９Ａに示すように、ＬＰＳを気管支内に投与したとき、ＭＰＯ活性が有意に増加した（ｐ＜０．００１）。実験群のマウスは、対照群のマウスに比べ、ＭＰＯ活性が濃度依存的に抑制された。ＬＰＣを２０ｍｇ／ｋｇの量でＩＣＲマウスに投与した場合（実験群−３）が最も優れた効果を表した（ｐ＜０．０１）。

＜９−２＞全身ＬＰＳ−誘発急性肺損傷モデル
ＬＰＳの全身投与による間接的な急性肺損傷を引き起こして急性呼吸窮迫症候群を誘発した。
参考例＜１−１＞ｂ）によるＬＰＳ−誘発敗血症モデルの３５匹のＩＣＲマウスを７匹ずつ５群（シャム群、実験群−１、―２、−３及び対照群）に分けた。シャム群のマウスには、ＬＰＳの代わりに、ＰＢＳ緩衝液（０．５ｍｌ／１００ｇ体重）を腹腔内に投与した。実験群−１、−２及び−３のマウスには、ＬＰＳ投与２時間及び１４時間後、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）をそれぞれ５、１０、２０ｍｇ／ｋｇの量でそれぞれ皮下注射で投与した。一方、対照群のマウスには、ＬＰＣの代わりに、同量の脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液を同様な方式で投与した。ＬＰＳ投与２４時間後、各群のマウスの肺組織における、好中球の指標であるＭＰＯ活性を、参考例２に示すように、測定し、その平均値を図９Ｂに示す。図９Ｂに示すように、ＬＰＳを腹腔内に投与したとき、ＭＰＯ活性が有意に増加した（ｐ＜０．０１）。実験群のマウスは、対照群のマウスに比べ、ＭＰＯ活性が濃度依存的に抑制された。ＬＰＣを２０ｍｇ／ｋｇの用量でＩＣＲマウスに投与場合(実験群−３)、最も優れた効果を表した。（ｐ＜０．０１）。

＜９−３＞ＣＬＰ−誘発敗血症による急性肺損傷モデル
ＣＬＰ−誘発敗血症モデルを用い、間接的な急性肺損傷を引き起こして急性呼吸窮迫症候群を誘発した。
参考例＜１−２＞によるＣＬＰ−誘発敗血症モデルのＩＣＲマウス２０匹を２群に分けた。１０匹の実験群マウスにはＣＬＰ手術２時間及び１４時間後にそれぞれ１回ずつ脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶かした１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）を１０ｍｇ／ｋｇの量で皮下注射で投与した。残り１０匹の対照群マウスには、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液のみを投与した。一方、１０匹のＩＣＲマウス（体重２５〜３０ｇ；MJ Ltd.）はペントバルビタールで麻酔させた後、腹部右側部を１ｃｍの長さに切開し、盲腸を露出させた後、縫合した（シャム群）。ＣＬＰ手術直後、及び４、８、１６時間後にに各群のマウスの肺組織における、好中球の指標であるＭＰＯ活性を参考例２と同様に測定し、図９Ｃに示した。図９Ｃに示すように、ＭＰＯ活性はＣＬＰ手術後４時間から著しく増加し、１６時間まで同一水準に維持された。実験群のＩＣＲマウスにおいては、ＣＬＰ手術により増加したＭＰＯ活性が対照群に比べて著しく抑制された。

多臓器不全症候群に対するＬＰＣの治療効果
敗血症はその合併症により多臓器不全症候群をもたらし、代表的な器官として肺、肝臓、腎臓などが損傷を被る。多臓器不全症候群の一つとして、肝臓損傷に対するＬＰＣの効果を調査した。参考例＜１−２＞によるＣＬＰ−誘発敗血症モデルのＩＣＲマウス２０匹を２群に分けた。１０匹の実験群マウスには、ＣＬＰ手術２時間及び１４時間後、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液に溶解した１−ステアロイルＬＰＣ（Sigma Chemical Co., USA）を１０ｍｇ／ｋｇの量でそれぞれ皮下注射で投与した。残り１０匹の対照群マウスには、脂肪酸を含有していない１％ＢＳＡ溶液のみを投与した。一方、１０匹のＩＣＲマウス（体重２５〜３０ｇ；MJ Ltd.）をペントバルビタールで麻酔させた後、腹部右側部を１ｃｍの長さに切開し、盲腸を露出させた後、縫合した（シャム群）。ＣＬＰ手術の１６時間後に各群のマウスから血液を採取し、肝毒素の指標であるアラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）の濃度をライトマン−フランケル法（Witter & Grubbs, Clin Chim Acta, 13:524-7, 1966）によって測定した。その結果、図１０に示すように、実験群ＩＣＲマウスにおいては、ＣＬＰ手術により増加したＡＬＴ濃度が対照群に比べて著しく抑制された。

細菌−誘発敗血症モデルにおける好中球の殺菌作用に対するＬＰＣの効果
本発明者らは、前記実施例５において、ＬＰＣの投与によりマウスの腹腔内大腸菌数が著しく減少する機序を調査するため、次のような実験を行った。
前記参考例＜１−１＞（ａ）で作成した細菌−誘発敗血症モデルマウスから血液を採取し、好中球を分離した。分離された好中球を、３７℃の細胞培養器内で、ポリ−Ｌ−リシン（０．０１％）でコートされたカバースリップに１０^６個／ｍｌの濃度で１時間付着させた。その後、そこへ大腸菌を１０^６個／ｍｌの濃度で添加し、１時間培養した。好中球に取り込まれなかった大腸菌を、カバースリップをＰＢＳ緩衝液で洗浄して、除去した。カバースリップを３０μＭの１−ステアロイルＬＰＣで処理し、さらに１時間培養した。この際、対照群は、ＬＰＣの代わりに、ＰＢＳ緩衝液で処理した。その後、新鮮ななＲＰＭＩ−１６４０倍地に交換し、さらに１時間培養すると、殺菌が始まった。ついで、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（０．０５％）で好中球を破砕して、大腸菌を回収した。回収された大腸菌をプレートに塗末し３７℃の培養器で培養した。その後、培地上の成長した大腸菌の数をカウントして統計処理を行った。その結果、図１１に示すように、ＬＰＣで処理した実験群は生きている大腸菌の数が有意に減少したことが確認できた。これは、ＬＰＣが好中球を直接刺激して好中球の殺菌能力を増加させることを示すものである。これによって、ＬＰＣが好中球の抑制されたアポトーシスを阻害し、好中球／単球のＩＬ−８の放出を抑制することができるだけでなく、好中球の殺菌作用を増加させることが分かる。

以上説明したように、本発明により、Ｇ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンドであるＬＰＣ、ＳＰＣ及びこれらの誘導体が好中球の抗−アポトーシス作用及びＩＬ−８の過剰放出作用を効果的に抑制ことが確認された。また、本発明による作用剤リガンドが、好中球の殺菌能力を増加させて、微生物感染時、病原体を効果的に除去し得ることが明らかにされた。したがって、本発明によるＧ２Ａ受容体に特異的な作用剤リガンド及びこれを含む医薬組成物又は治療用組成物は好中球の蓄積及び／又はＩＬ−８の過剰放出に関連した疾患、特に炎症性疾患又は微生物感染性疾患の治療に非常に有用に使用できる。

図１は外因性炎症媒介因子（ＬＰＳ；Ａ）又は内因性炎症媒介因子（ＧＭ−ＣＳＦ、Ｇ−ＣＳＦ及びＩＦＮ−γ；Ｂ）により誘導された好中球アポトーシス抑制に対する１−ステアロイルＬＰＣの阻害効果を示す。図２は好中球（Ａ）と単球（Ｂ）において、ＬＰＳにより誘導されたＩＬ−８の過剰放出に対する１−ステアロイルＬＰＣの阻害効果を示す。図３は好中球から分離したＲＮＡを鋳型とし、Ｇ２Ａ−又はＧＲＰ４受容体に特異的なプライマーを使用して、ＲＴ−ＰＣＲを行った結果を示す。ＲＴ（＋）：逆転写酵素を添加してＲＴ−ＰＣＲ実行ＲＴ（−）：逆転写酵素を添加しないでＲＴ−ＰＣＲ実行（対照群）図４はＬＰＳにより誘導された好中球アポトーシス抑制に対するＳＰＣの阻害効果を示す。図５は大腸菌−誘発敗血症モーでにおける、１−ステアロイルＬＰＣの効果を示す。Ａ：ＬＰＣ投与後の時間経過によるマウスの生存率Ｂ：ＬＰＣ投与２４時間後のマウスの腹腔内大腸菌の数図６はＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおける、１−ステアロイルＬＰＣの効果を示す。Ａ：ＣＬＰ手術２時間及び１４時間後、ＬＰＣをそれぞれ投与した場合のマウスの腹腔内大腸菌の数Ｂ：ＣＬＰ手術２時間後、１２時間間隔でＬＰＣを４回投与した場合の時間経過によるマウスの生存率Ｃ：ＣＬＰ手術１０時間後、１２時間間隔でＬＰＣを４回投与した場合の時間経過によるマウスの生存率。図７はＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおける、１−ミリストイルＬＰＣ（１４：０ＬＰＣ）及び１−オレオイルＬＰＣ（１８：１ＬＰＣ）の効果を示す。図８はＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおける、ＳＰＣの効果を示す。図９は局所投与ＬＰＳ−誘発急性肺損傷モデル（Ａ）、全身投与ＬＰＳ−誘発敗血症による急性肺損傷モデル（Ｂ）及びＣＬＰ−誘発敗血症による急性肺損傷モデル（Ｃ）における、急性呼吸窮迫症候群に対する１−ステアロイルＬＰＣの効果を示す。図１０はＣＬＰ−誘発敗血症モデルにおける、多臓器不全症候群に対する１−ステアロイルＬＰＣの効果を示す。図１１は細菌−誘発敗血症モデルにおける、好中球の殺菌作用に対する１−ステアロイルＬＰＣの効果を示す。

Claims

（ａ）下記の式Ｉ

（式中、Ｒ_１はＣ_４−３０のアルキル基、あるいは１又はそれ以上の二重結合を有するＣ_４−３０のアルケニル基である）で示されるリゾホスファチジルコリン（ＬＰＣ）、及び
（ｂ）下記の式ＩＩ

で示されるスフィンゴシルホスホリルコリン（ＳＰＣ）からなる群より選択される化合物を有効成分とする、敗血症、敗血症性ショック、急性呼吸窮迫症候群、多臓器不全症候群及び急性肺損傷からなる群より選択される疾患を治療するための医薬組成物。
前記リゾホスファチジルコリンが、１−ステアロイルリゾホスファチジルコリン、１−オレオイルリゾホスファチジルコリン、１−ミリストイルリゾホスファチジルコリン、及び１−パルミトイルリゾホスファチジルコリンからなる群より選択される、請求項１に記載の医薬組成物。
前記疾患が、敗血症又は敗血症性ショックである、請求項１又は２に記載の医薬組成物。