JP3917825B2

JP3917825B2 - 血管新生抑制剤

Info

Publication number: JP3917825B2
Application number: JP2001111306A
Authority: JP
Inventors: 育男森田
Original assignee: Spirulina Bio Lab Ltd
Current assignee: Spirulina Bio Lab Ltd
Priority date: 2001-04-10
Filing date: 2001-04-10
Publication date: 2007-05-23
Anticipated expiration: 2021-04-10
Also published as: JP2002308765A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、炎症、癌等の腫瘍増殖や転移、網膜症、動脈硬化の治療などに用いられる血管新生抑制剤に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
血管新生は既存の血管より血管内皮細胞が浸潤、増殖、遊走などの過程を経て形成されるものである。この血管新生は炎症、創傷治癒、網膜症、動脈硬化、固形腫瘍、慢性関節リウマチなどの血管新生症に認められるものであり、これらの疾患との関係に興味が集まっている。そのため、これら疾患の治療目的で各種の血管新生抑制剤が開発されており、例えば、ドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ）やイコサペンタエン酸（ＥＰＡ）を有効成分とする血管新生抑制剤が提案されている。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、ＤＨＡやＥＰＡを有効成分とする血管新生抑制剤よりもさらに効果の高い血管新生抑制剤が望まれていた。
【０００４】
本発明は上記の点に鑑みてなされたものであり、血管新生抑制効果の高い血管新生抑制剤を提供することを目的とするものである。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
本発明の請求項１に係る血管新生抑制剤は、ドコサペンタエン酸又はドコサペンタエン酸のエステル、グリセリド、塩類から選ばれる誘導体のみからなることを特徴とするものであり、ドコサペンタエン酸あるいはドコサペンタエン酸のエステル、グリセリド、塩類から選ばれる誘導体が、血管新生を促進する因子である増殖因子（ＶＥＧＦ；Vascuar Endothelial Growth Factor）の受容体（ＶＥＧＦ受容体）の発現量を変化させることにより、血管新生を抑制することができると考えられる。
【０００６】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の実施の形態を説明する。
【０００７】
本発明の血管新生抑制剤はドコサペンタエン酸及び／又はその誘導体を有効成分とするものである。ドコサペンタエン酸（ＤＰＡ）はｎ−３系の不飽和脂肪酸（２２：５，ｎ−３）であって、魚類より抽出した魚油やアザラシ（タテゴトアザラシ、頭巾アザラシ等を含む）等の海洋哺乳動物から抽出した油に遊離酸として含まれている。特に、アザラシ油にはドコサペンタエン酸が豊富に含まれている。本発明では魚油やアザラシ油を単離精製して得たドコサペンタエン酸を用いることができるが、魚油やアザラシ油には他の有用な不飽和脂肪酸（ＥＰＡやＤＨＡ）なども含まれているので、これら他の成分を含んだ状態で精製したものを用いても良い。また、上記魚油やアザラシ油からの抽出以外に、遺伝子組み換え技術を用いた方法によって微生物が産生したものを精製して得られるドコサペンタエン酸及びその誘導体を用いても良い。
【０００８】
ドコサペンタエン酸の誘導体はドコサペンタエン酸のエステルやグリセリド及び塩類であって、ドコサペンタエン酸のエステルとしてはエチルエステルやメチルエステルなどを、ドコサペンタエン酸のグリセリドとしてはモノグリセリド、ジグリセリド、トリグリセリドを、ドコサペンタエン酸の塩類としてはナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩などをそれぞれ例示することができる。本発明では魚油やアザラシ油から単離精製したドコサペンタエン酸の誘導体を用いることができる。また、本発明では上記の精製されたドコサペンタエン酸からドコサペンタエン酸の誘導体を合成して用いても良い。
【０００９】
そして、本発明ではドコサペンタエン酸あるいはドコサペンタエン酸の誘導体を血管新生抑制剤とするものである。
【００１０】
本発明の血管新生抑制剤は他の成分と混合せずにそのままで経口的あるいは非経口的に投与することができる。また、本発明の血管新生抑制剤は製薬上容認しうる他の成分と混合して経口投与剤や非経口投与剤の医薬組成物を調製し、これらを投与することができる。経口投与剤としては粉末、顆粒、錠剤、カプセル剤、シロップ剤および液剤等を例示することができる。粉末、顆粒、錠剤等として処方される場合は公知の製薬担体を用いることができ、例えば、澱粉やブドウ糖等の賦形剤、ステアリン酸マグネシウム等の滑沢剤、結晶セルロース等の崩壊剤、アラビアゴム等の結合剤などを用いて構成することができる。また、カプセル剤として処方される場合は公知の成分、例えば、ゼラチン等で作製したカプセルに内包させて構成することができる。また、シロップや液剤として処方される場合は公知の成分、例えば、エデト酸ナトリウム等などの安定剤、アラビアゴム等の懸濁化剤、ブドウ糖等の矯味剤などを用いて構成することができる。また、非経口投与剤としては注射剤等を例示することができる。注射剤として処方される場合、例えば、注射用蒸留水や生理食塩水等の溶剤、エデト酸ナトリウム等の安定化剤、塩酸やクエン酸等のｐＨ調整剤、メチルセルロース等の懸濁化剤などを用いて構成することができる。
【００１１】
尚、上記の他に、公知の方法を用いて経口投与剤や非経口投与剤の医薬組成物を調製することができる。
【００１２】
また、本発明の血管新生抑制剤は公知の食品、例えば、ジュース、清涼飲料、パン、クッキー、菓子等に添加し、健康食品や栄養補助食品等を形成しても良い。
【００１３】
本発明の血管新生抑制剤の投与量は疾患の種類や患者の年齢、性別、体重、症状によって異なるが、成人一日当たり３ｍｇ以上にするのが好ましく、これよりも少ないと血管新生抑制の効果を充分に得ることができなくなる恐れがある。また、本発明の血管新生抑制剤は多量に摂取しても人体に害はなく、特に一日当たり投与量の上限は設定されない。
【００１４】
そして、本発明の血管新生抑制剤はドコサペンタエン酸あるいはその誘導体が血管新生を促進する因子である増殖因子（ＶＥＧＦ；Vascuar Endothelial Growth Factor）の受容体（ＶＥＧＦ受容体）の発現量を変化させることにより、血管新生を抑制することができると考えられる。すなわち、ドコサペンタエン酸あるいはその誘導体がＶＥＧＦ受容体のうちFlt-1の発現量を通常（ドコサペンタエン酸あるいはその誘導体を投与しない場合）よりも上昇(up-regulation)させ、且つドコサペンタエン酸あるいはその誘導体がＶＥＧＦ受容体のうちKDR(F1k-1)の発現量を通常よりも抑制(down-regulation)させることにより、血管新生が抑制されるものと考えられる。
【００１５】
そして、本発明の血管新生抑制剤は、炎症、癌等の腫瘍増殖や転移、網膜症、動脈硬化、慢性関節リウマチなどの血管新生症の治療に好適に用いることができる。特に、癌細胞をγ線照射や従来の制癌剤でたたいた後又は手術で摘出した後に、癌の転移を抑制するために本発明の血管新生抑制剤を用いることができる。又、従来の制癌剤の副作用の軽減を目的として、制癌剤の投与量を減らして本発明の血管新生抑制剤を投与するのが好ましい。
【００１６】
【実施例】
以下本発明を実施例によって具体的に説明する。
【００１７】
［ウシ頸動脈内皮細胞の培養］
ウシの頸動脈をDispase（合同酒精株式会社製のメタロプロテアーゼ）を用いて処理してウシ頸動脈内皮細胞を得た。Dispaseの濃度は１０００ユニット/ミリリットル、温度は３７℃とし、処理時間を１５分間とした。次に、分離したウシ頸動脈内皮細胞をイーグル最小必須培地（Gibco研究所製のＭＥＭであって、１．０ｇ／リットルのグルコース）で培養した。この時、イーグル最小必須培地には２０％の胎児ウシ血清（Whittaker社製のＦＢＳ）と、１００ユニット／ミリリットルのペニシリンと、１００μｇ／ミリリットルのストレプロマイシンを添加した。また、ウシ頸動脈内皮細胞は二酸化炭素濃度が５％のしめった空気中で３７℃の温度で培養した。また、上記の抗生物質は培養の最初に添加した。
【００１８】
次に、上記のウシ頸動脈内皮細胞を１：４の割合に機械的に分けると共に分けたウシ頸動脈内皮細胞を１０％の胎児ウシ血清を添加した培地で培養した。培養したウシ頸動脈内皮細胞には電子顕微鏡により細胞質のWeibel-Palade小体がある内皮細胞が観測され、それらはフルオレセイン・トレースのアセチル低濃度リポタンパク質組込調査によってその均質性が確認された。
【００１９】
そして、このようにして４−７代継代したウシ頸動脈内皮細胞を得た。
【００２０】
（実施例）
以下の実験は複製された直径１２ｍｍで１２−Ｗｅｌｌの培地を用いて行った。
【００２１】
まず、１０％のＦＢＳを添加した１．５ミリリットルのＭＥＭ中で１×１０⁵個に培養されたウシ頸動脈内皮細胞（４−７代継代）にドコサペンタエン酸（Biomol研究所から入手した純度９７％以上のもの）を５μｇ／ミリリットルになるように添加し、４８時間静置して前処理を行った。次に、前処理されたウシ頸動脈内皮細胞を０．７５ミリリットルのコラーゲンゲルで培養した。このコラーゲンゲルとしては、８体積部のVitrogen100（９５〜９８％のタイプＩコラーゲンと、残部をタイプIIIコラーゲンで構成したものであって、コラーゲン社製）と、１体積部の水酸化ナトリウム水溶液（濃度０．１Ｎ）と、１体積部のＭＥＭ（ｐＨ７．４で１０倍に希釈したもの）とを混合したものを用い、培養時間は２４時間とした。
【００２２】
この後、上記のコラーゲンゲルの培地の上澄み液を吸引除去し、次に、この培地に０．５ミリリットルのコラーゲンゲルを被せて蓋をした。この状態で３日間培養した後、形成された管腔の長さを測定した。
【００２３】
（比較例１）
ドコサペンタエン酸の代わりに、アラキドン酸（ＡＡ；２０：４，ｎ−６）を用いた以外は実施例１と同様にした。
【００２４】
（比較例２）
ドコサペンタエン酸の代わりに、エイコサペンタエン酸（ＥＰＡ；２０：５，ｎ−３）を用いた以外は実施例１と同様にした。
【００２５】
（比較例３）
ドコサペンタエン酸の代わりに、ドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ；２２：６，ｎ−３）を用いた以外は実施例１と同様にした。
【００２６】
（比較例４）
ドコサペンタエン酸を用いなかった以外は実施例１と同様にした。
【００２７】
上記の結果を図１にグラフで示す。
【００２８】
図１から明らかなように、ドコサペンタエン酸で前処理した実施例は比較例１〜４と対比して、形成された管腔の長さが短く、血管形成が抑制されたことが確認された。
【００２９】
また、ドコサペンタエン酸及びその誘導体を用いて以下のような試験を行った。
【００３０】
ラットにＤＰＡ、ＤＰＡエチルエステル、ＤＰＡ含有トリグリセリドをそれぞれ摂取させた。上記の成分はＤＰＡ量として６０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙになるように食餌に添加して４週間後の肝臓のリン脂質に含有されるＤＰＡ量をガスクロマトグラフィーで分析したところ、全脂肪酸に対するＤＰＡの割合は投与前値の０．３±０．１からそれぞれ１．７±０．３（ＤＰＡを投与したもの）、１．９±０．４（ＤＰＡエチルエステルを投与したもの）、２．１±０．３（ＤＰＡ含有トリグリセリドを投与したもの）とほぼ同様な上昇が認められた。
【００３１】
この結果より、ＤＰＡの種々の誘導体は生体内でＤＰＡとして同様な作用を有することが推測される。
【００３２】
尚、この試験の条件は以下の通りである。
動物：１４週雄性ラット、各群６匹
食餌：脂肪として１０％となるように調整、１日あたり摂取量１５ｇ、各々摂取されたＤＰＡとしてはおよそ６０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ
投与期間：４週間
脂肪酸分析：肝臓リン脂質分画中の各種脂肪酸をメチルエステル化して下記条件のガスクロマトグラフィーで分析

【００３３】
【発明の効果】
上記のように本発明の請求項１の発明は、ドコサペンタエン酸又はドコサペンタエン酸のエステル、グリセリド、塩類から選ばれる誘導体のみからなることを特徴とするものであり、ドコサペンタエン酸あるいはドコサペンタエン酸のエステル、グリセリド、塩類から選ばれる誘導体で血管新生を促進する因子である増殖因子の受容体の発現量を変化させることができ、血管新生抑制効果を高くすることができるものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例及び比較例１〜４の実験結果を示すグラフである。

Claims

ドコサペンタエン酸又はドコサペンタエン酸のエステル、グリセリド、塩類から選ばれる誘導体のみからなることを特徴とする血管新生抑制剤。