JP3864230B2 - ヨーネ菌抗原タンパク質、該タンパク質をコードする遺伝子、及び該タンパク質を用いるヨーネ病の診断方法 - Google Patents
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Description
本発明は、ヨーネ菌抗原タンパク質、該タンパク質をコードする遺伝子、及び該タンパク質を用いるヨーネ病の診断方法に関し、詳しくは、インターフェロン・ガンマ（ＩＦＮ−γ）誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原タンパク質、該タンパク質をコードする遺伝子、及び該タンパク質を用いることにより、ヨーネ病を正確且つ高感度に診断できるヨーネ病の診断方法に関する。
ヨーネ病は、現在我が国で発生している家畜法定伝染病の中で最も摘発頭数が多い疾病であり、診断方法の改良等、本病防疫対策の一層の高度化が要求されている。
原因菌であるヨーネ菌に対する細胞性免疫を指標としたヨーネ病の診断方法は、早期診断法として重要である。特に、最近、牛の血液細胞をヨーネ菌由来抗原で刺激し、ＩＦＮ−γの産生を検出するヨーネ病の診断方法が注目されている（例えば、非特許文献１及び２参照）。
原因菌であるヨーネ菌に対する細胞性免疫を指標としたヨーネ病の診断方法は、早期診断法として重要である。特に、最近、牛の血液細胞をヨーネ菌由来抗原で刺激し、ＩＦＮ−γの産生を検出するヨーネ病の診断方法が注目されている（例えば、非特許文献１及び２参照）。
これらの診断法では、ヨーネ菌由来抗原として本菌の培養上清から調製した精製ツベルクリンタンパク質体（Purified Protein Derivative、ＰＰＤ）が用いられている。
しかし、ヨーネ菌の培養期間が長期に及ぶため、ＰＰＤの調製には最短でも２ヶ月以上が必要とされる。しかも、ＰＰＤの調製には、特殊な装置が必要とされる。
さらに、ＰＰＤ中には種々のタンパク質等が含まれ、それらの中には他の抗酸菌と交差反応性を有する抗原も含まれる。従って、ＰＰＤは特異性の点でも問題があり、ヨーネ病の正確な診断には問題があった。
従って、ＩＦＮ−γの検出によるヨーネ病の診断方法に際し、容易に且つ大量に作製することが可能で、しかも特異性の高い抗原の開発が期待されている。
しかし、ヨーネ菌の培養期間が長期に及ぶため、ＰＰＤの調製には最短でも２ヶ月以上が必要とされる。しかも、ＰＰＤの調製には、特殊な装置が必要とされる。
さらに、ＰＰＤ中には種々のタンパク質等が含まれ、それらの中には他の抗酸菌と交差反応性を有する抗原も含まれる。従って、ＰＰＤは特異性の点でも問題があり、ヨーネ病の正確な診断には問題があった。
従って、ＩＦＮ−γの検出によるヨーネ病の診断方法に際し、容易に且つ大量に作製することが可能で、しかも特異性の高い抗原の開発が期待されている。
一方、ヨーネ菌抗原の遺伝的情報が明らかとなれば、遺伝子組換えタンパクを用いることにより、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原を、容易に、且つ大量に作製することが可能となると考えられる。
ヨーネ菌のゲノムＤＮＡを他の類似菌と比較することにより、種々の遺伝子を見出そうとする試みが既に報告されているが（非特許文献３及び４参照）、ヨーネ菌のゲノムＤＮＡを他の類似菌と単に比較するだけでは、ヨーネ菌抗原の抗原性や生物活性に関する情報を得ることは困難であり、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原に関する遺伝的情報を解明することはできなかった。
ヨーネ菌のゲノムＤＮＡを他の類似菌と比較することにより、種々の遺伝子を見出そうとする試みが既に報告されているが（非特許文献３及び４参照）、ヨーネ菌のゲノムＤＮＡを他の類似菌と単に比較するだけでは、ヨーネ菌抗原の抗原性や生物活性に関する情報を得ることは困難であり、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原に関する遺伝的情報を解明することはできなかった。
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本発明の第一の目的は、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原タンパク質を提供することにある。
また、本発明の第二の目的は、ヨーネ菌抗原タンパク質に関する遺伝的情報を解明し、ヨーネ菌抗原タンパク質の容易且つ大量生産を可能とすることにある。
更に、本発明の第三の目的は、このような特異性の高いヨーネ菌抗原タンパク質を用いた正確且つ高感度なヨーネ病の診断方法を提供することにある。
また、本発明の第二の目的は、ヨーネ菌抗原タンパク質に関する遺伝的情報を解明し、ヨーネ菌抗原タンパク質の容易且つ大量生産を可能とすることにある。
更に、本発明の第三の目的は、このような特異性の高いヨーネ菌抗原タンパク質を用いた正確且つ高感度なヨーネ病の診断方法を提供することにある。
本発明者らは、上記の目的を達成すべく、鋭意検討を重ねた。その過程で、ヨーネ菌ＤＮＡの組換え大腸菌を作製し、それらの中からＩＦＮ−γ誘導能を示すものを分離し、クローニングサイトに挿入された塩基配列を解析したところ、２６４ヌクレオチド及び１，２４８ヌクレオチドからなる２つの塩基配列を確認した。
これらの塩基配列をプラスミドベクターに組み込み、大腸菌へ導入して得た組換え大腸菌から精製された組換えタンパク質は、ヨーネ菌感染牛の血液細胞中のＩＦＮγ誘導能を強く誘導した。
このような検討の結果から、本発明者らは、２６４ヌクレオチド及び１，２４８ヌクレオチド部分がそれぞれコードする８８アミノ酸及び４１６アミノ酸は、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原タンパク質であり、これらは正確且つ高感度なヨーネ病の診断に有用であることを見出し、本発明に到達した。
本発明は、係る知見に基づくものである。
これらの塩基配列をプラスミドベクターに組み込み、大腸菌へ導入して得た組換え大腸菌から精製された組換えタンパク質は、ヨーネ菌感染牛の血液細胞中のＩＦＮγ誘導能を強く誘導した。
このような検討の結果から、本発明者らは、２６４ヌクレオチド及び１，２４８ヌクレオチド部分がそれぞれコードする８８アミノ酸及び４１６アミノ酸は、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原タンパク質であり、これらは正確且つ高感度なヨーネ病の診断に有用であることを見出し、本発明に到達した。
本発明は、係る知見に基づくものである。
請求項１記載の本発明は、配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるヨーネ菌抗原タンパク質である。
請求項２記載の本発明は、配列表の配列番号４に記載の塩基配列からなるヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子である。
請求項３記載の本発明は、請求項２記載の遺伝子が発現可能に導入された細胞である。
請求項２記載の本発明は、配列表の配列番号４に記載の塩基配列からなるヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子である。
請求項３記載の本発明は、請求項２記載の遺伝子が発現可能に導入された細胞である。
請求項４記載の本発明は、非ヒト被検動物の細胞に請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加して培養した後、培養上清中のインターフェロン・ガンマ濃度を検出することを特徴とするヨーネ病の診断方法である。
請求項５記載の本発明は、非ヒト被検動物の細胞に請求項３記載の細胞を添加して培養した後、培養上清中のインターフェロン・ガンマ濃度を検出することを特徴とするヨーネ病の診断方法である。
請求項５記載の本発明は、非ヒト被検動物の細胞に請求項３記載の細胞を添加して培養した後、培養上清中のインターフェロン・ガンマ濃度を検出することを特徴とするヨーネ病の診断方法である。
本発明によれば、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原タンパク質が提供される。
また、本発明によれば、ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子が提供されるので、ヨーネ菌抗原タンパク質の大量生産への道が開かれる。
更に、本発明によれば、ＩＦＮγ誘導能を有するヨーネ菌抗原タンパク質を用いた正確且つ高感度なヨーネ病の診断方法が提供される。
また、本発明によれば、ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子が提供されるので、ヨーネ菌抗原タンパク質の大量生産への道が開かれる。
更に、本発明によれば、ＩＦＮγ誘導能を有するヨーネ菌抗原タンパク質を用いた正確且つ高感度なヨーネ病の診断方法が提供される。
（１）ヨーネ菌抗原タンパク質
まず、本発明のヨーネ菌抗原タンパク質について、説明する。
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質は、請求項１に係る本発明のヨーネ菌抗原タンパク質である。
まず、請求項１に係る本発明のヨーネ菌抗原タンパク質は、配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列からなる。この請求項１に係る本発明のタンパク質は、実施例１に示すように、本発明者らが請求項２に係る本発明の遺伝子の塩基配列から解読されて、ＩＦＮ−γ誘導能の存在によりヨーネ菌抗原タンパク質であることが明らかにされたものである。
まず、本発明のヨーネ菌抗原タンパク質について、説明する。
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質は、請求項１に係る本発明のヨーネ菌抗原タンパク質である。
まず、請求項１に係る本発明のヨーネ菌抗原タンパク質は、配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列からなる。この請求項１に係る本発明のタンパク質は、実施例１に示すように、本発明者らが請求項２に係る本発明の遺伝子の塩基配列から解読されて、ＩＦＮ−γ誘導能の存在によりヨーネ菌抗原タンパク質であることが明らかにされたものである。
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質は、ヨーネ菌（Mycobacterium avium subsp．paratuberculosis）から得ることができる。ここで、ヨーネ菌としては、ＡＴＣＣ１９６９８株を用いることができる。例えば、後述の請求項２に係るヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子を発現させて得ることができ、具体的には例えば、後述の（３）細胞の項で説明するように、請求項２に係る遺伝子が発現可能に導入された細胞を培養し、発現誘導を行って、十分に発現が誘導された段階で細胞を収穫してからアフィニティーカラム等により精製して得ることができる。
一方、ペプチド合成装置等を用いて配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列を人工的に合成して製造することもできる。
一方、ペプチド合成装置等を用いて配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列を人工的に合成して製造することもできる。
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質は、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原であることから、ヨーネ病の診断用抗原として用いることができる。また、ヨーネ病のワクチンに応用することもできる。
（２）ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子は、請求項２に係る本発明の遺伝子である。
まず、請求項２に係る本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子は、配列表の配列番号４に記載の塩基配列からなる。請求項２に係る本発明の遺伝子は、請求項１にかかる本発明のヨーネ菌抗原タンパク質に対応する遺伝子である。
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子は、請求項２に係る本発明の遺伝子である。
まず、請求項２に係る本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子は、配列表の配列番号４に記載の塩基配列からなる。請求項２に係る本発明の遺伝子は、請求項１にかかる本発明のヨーネ菌抗原タンパク質に対応する遺伝子である。
本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子は、ヨーネ菌から、以下のようにして取得することができる。ヨーネ菌については、（１）ヨーネ菌抗原タンパク質の項で説明した通りである。
ＤＮＡの調製は、例えばヨーネ菌の菌体をリパーゼ、リゾチーム、タンパク質分解酵素等を用いて酵素分解（溶菌）し、フェノールクロロフォルム等の溶媒抽出及びエタノール沈殿により行うことができる。
次に、ＤＮＡライブラリーを作製する。即ち、まず、ＤＮＡを適当な制限酵素で限定消化する。制限酵素としては、種々の酵素を用いることができるが、本発明者らは、実施例１に示すように、Ｓａｕ３Ａ Ｉを用いた。限定消化の条件は、使用する制限酵素の種類に応じて切断反応温度、時間等を調節する。例えば、Ｓａｕ３Ａ Ｉの場合、切断反応温度は３０〜４０℃、好ましくは３７℃、切断反応時間は３０分〜１時間とすることができる。
ＤＮＡの調製は、例えばヨーネ菌の菌体をリパーゼ、リゾチーム、タンパク質分解酵素等を用いて酵素分解（溶菌）し、フェノールクロロフォルム等の溶媒抽出及びエタノール沈殿により行うことができる。
次に、ＤＮＡライブラリーを作製する。即ち、まず、ＤＮＡを適当な制限酵素で限定消化する。制限酵素としては、種々の酵素を用いることができるが、本発明者らは、実施例１に示すように、Ｓａｕ３Ａ Ｉを用いた。限定消化の条件は、使用する制限酵素の種類に応じて切断反応温度、時間等を調節する。例えば、Ｓａｕ３Ａ Ｉの場合、切断反応温度は３０〜４０℃、好ましくは３７℃、切断反応時間は３０分〜１時間とすることができる。
次いで、限定消化されたＤＮＡを、ベクターにライゲーションする。ベクターとしては、上記限定消化の際に用いた制限酵素（例えば、Ｓａｕ３Ａ Ｉ）サイトと相補的な制限酵素（例えば、ＢａｍＨ Ｉ）サイトを持つベクターを用いることができる。
ライゲーションは、限定消化されたＤＮＡとベクターとを混合し、これにＴ４ ＤＮＡリガーゼを作用させて行うことができる。
尚、ベクターとして、市販のZAP Express Vector（STRATAGENE社製）を用いると、ライゲーションから後述のin vivo Excisionまでの処理をZAP Express Predigested Vector Kit and ZAP Express Predigested Gigapack Cloning Kits（STRATAGENE社製）添付のプロトコールに従い実施することができ、簡便である。
ライゲーションは、限定消化されたＤＮＡとベクターとを混合し、これにＴ４ ＤＮＡリガーゼを作用させて行うことができる。
尚、ベクターとして、市販のZAP Express Vector（STRATAGENE社製）を用いると、ライゲーションから後述のin vivo Excisionまでの処理をZAP Express Predigested Vector Kit and ZAP Express Predigested Gigapack Cloning Kits（STRATAGENE社製）添付のプロトコールに従い実施することができ、簡便である。
こうして作製されたＤＮＡライブラリー（ファージライブラリー）から、ヨーネ菌実験感染牛から分離された血液細胞におけるＩＦＮ−γ誘導能により、ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子を選抜する。
即ち、まず、ＤＮＡライブラリーをin vivo excisionにより、大腸菌等の細胞に導入し、組換え細胞を得る。例えば、細胞が大腸菌の場合を例に取ると、アンピシリン加ＬＢ培地で１〜５時間、更にＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を添加して更に２〜１０時間培養した後、ヨーネ菌感染動物の細胞とともに培養する。ここで、ヨーネ菌感染動物の細胞とは、ヨーネ菌に感染する可能性のある動物の細胞であり、例えば、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の反芻動物のほか、シカ、キツネ、ウサギ、サル、ヒト等のヨーネ病に感染する可能性のある動物全般の細胞、具体的には例えば、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）等の血液細胞である。培養条件は、被検動物の細胞が生育可能で、且つＩＦＮ−γの誘導が阻害されない条件とすれば、特に限定されず、例えば、ＰＢＭＣの場合、牛胎児血清加ＲＰＭＩ１６４０培地を用いて、培養期間は１〜３日、培養温度は３７〜３８℃とすることができる。培養後、ＩＮＦ−γの産生量をＥＬＩＳＡ法、イミュノクロマトグラフィー等により測定し、非組換え細胞を同様に培養し、これを陰性コントロールとしてＩＦＮ−γの誘導能を判定する。
即ち、まず、ＤＮＡライブラリーをin vivo excisionにより、大腸菌等の細胞に導入し、組換え細胞を得る。例えば、細胞が大腸菌の場合を例に取ると、アンピシリン加ＬＢ培地で１〜５時間、更にＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を添加して更に２〜１０時間培養した後、ヨーネ菌感染動物の細胞とともに培養する。ここで、ヨーネ菌感染動物の細胞とは、ヨーネ菌に感染する可能性のある動物の細胞であり、例えば、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の反芻動物のほか、シカ、キツネ、ウサギ、サル、ヒト等のヨーネ病に感染する可能性のある動物全般の細胞、具体的には例えば、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）等の血液細胞である。培養条件は、被検動物の細胞が生育可能で、且つＩＦＮ−γの誘導が阻害されない条件とすれば、特に限定されず、例えば、ＰＢＭＣの場合、牛胎児血清加ＲＰＭＩ１６４０培地を用いて、培養期間は１〜３日、培養温度は３７〜３８℃とすることができる。培養後、ＩＮＦ−γの産生量をＥＬＩＳＡ法、イミュノクロマトグラフィー等により測定し、非組換え細胞を同様に培養し、これを陰性コントロールとしてＩＦＮ−γの誘導能を判定する。
ＩＦＮ−γの誘導能が確認された組換え細胞から、プラスミドを調製し、クローニングサイトに挿入された塩基配列を切り出して、本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子を得ることができる。本発明のプラスミドの調製は、Wizard Plus Midipreps DNA Purification System（PROMEGA社製）を用いると、簡便に行うことができる。また、得られた配列が配列表の配列番号４に記載の塩基配列を有することの確認は、サイクルシークエンス法（実験医学別冊 新 遺伝子工学ハンドブック、Ｐ１２３−１２９、１９９６、羊土社）により解析することができる。
一方、ヌクレオチド合成装置等を用いて配列表の配列番号４に記載の塩基配列を人工的に合成して製造することもできる。
一方、ヌクレオチド合成装置等を用いて配列表の配列番号４に記載の塩基配列を人工的に合成して製造することもできる。
このような本発明のヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子は、前述したヨーネ菌抗原タンパク質の容易且つ大量な生産に用いることができるので、有用である。
（３）細胞
請求項３に係る本発明の細胞は、請求項２記載の遺伝子が発現可能に導入されたものである。
ここで、細胞としては、大腸菌（ＪＭ１０９株等）、酵母等通常遺伝子の発現に用いられる各種細胞を使用できる。
請求項３に係る本発明の細胞は、上述の請求項２記載の遺伝子をプラスミドベクターにクローニングし、これを細胞へ導入して得ることができる。
即ち、まず、請求項２記載の遺伝子の両端に制限酵素サイトをそれぞれ付加する。ここで、制限酵素サイトとしては、種々の酵素に対応した制限酵素サイトを用いることができるが、本発明者らは、実施例１に示すように、ＢａｍＨ Ｉサイト及びＰｓｔ Ｉサイトを用いた。サイト付加の条件は、使用する制限酵素の種類に応じて温度、時間等を調節して行うことができる。
請求項３に係る本発明の細胞は、請求項２記載の遺伝子が発現可能に導入されたものである。
ここで、細胞としては、大腸菌（ＪＭ１０９株等）、酵母等通常遺伝子の発現に用いられる各種細胞を使用できる。
請求項３に係る本発明の細胞は、上述の請求項２記載の遺伝子をプラスミドベクターにクローニングし、これを細胞へ導入して得ることができる。
即ち、まず、請求項２記載の遺伝子の両端に制限酵素サイトをそれぞれ付加する。ここで、制限酵素サイトとしては、種々の酵素に対応した制限酵素サイトを用いることができるが、本発明者らは、実施例１に示すように、ＢａｍＨ Ｉサイト及びＰｓｔ Ｉサイトを用いた。サイト付加の条件は、使用する制限酵素の種類に応じて温度、時間等を調節して行うことができる。
次に、両端に制限酵素サイトの付加された遺伝子を、プラスミドベクターの対応する制限酵素サイトにライゲーションする。プラスミドベクターとしては、対応する制限酵素サイトを有するものであれば、特に制限なく用いることができ、本発明者らは，実施例１に示すように、ｐＱＥ３０を用いた。ライゲーションは、Ligation high（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて、キット添付のプロトコールに従い実施すると簡便である。
そして、プラスミドベクターを細胞に導入することにより、請求項３に係る本発明の細胞を得ることができる。プラスミドベクターの細胞への導入は、細胞が大腸菌の場合はＮ末端にヒスチジン・タグを付加したタンパク質として導入すると、ヒスチジン・タグとニッケルとの親和性を利用したアフィニティーカラムにより、ヨーネ菌抗原タンパク質を容易に製造することができる。
そして、プラスミドベクターを細胞に導入することにより、請求項３に係る本発明の細胞を得ることができる。プラスミドベクターの細胞への導入は、細胞が大腸菌の場合はＮ末端にヒスチジン・タグを付加したタンパク質として導入すると、ヒスチジン・タグとニッケルとの親和性を利用したアフィニティーカラムにより、ヨーネ菌抗原タンパク質を容易に製造することができる。
このよう請求項３に係る本発明の細胞は、前述したヨーネ菌抗原タンパク質の容易且つ大量な生産に用いることができる。
請求項３に係る本発明の細胞からのヨーネ菌抗原タンパク質の精製は、細胞を培養後、発現誘導を行って、十分に発現が誘導された段階で細胞を収穫してからアフィニティーカラム等により精製して得ることができる。
細胞の培養、並びに発現誘導は、細胞が大腸菌の場合を例に取ると、アンピシリン加ＬＢ培地で１〜５時間、更にＩＰＴＧを添加して更に２〜１０時間培養して行うことができる。
精製は、例えば、細胞を超音波破砕した後、可溶性分画又は不溶性の沈殿分画を用いて、組換えタンパク質に付加されたヒスチジン・タグとニッケルとの親和性を利用したアフィニティーカラムにより行うことができる。即ち、ヒスチジン・タグ付加組換えタンパクをカラムに流し、組換えタンパク質をニッケル担体に結合させ、非吸着成分を洗浄により除去した後、イミダゾール液等を用いて溶出する。このようにして、精製されたヨーネ菌抗原タンパク質を得ることができる。
請求項３に係る本発明の細胞からのヨーネ菌抗原タンパク質の精製は、細胞を培養後、発現誘導を行って、十分に発現が誘導された段階で細胞を収穫してからアフィニティーカラム等により精製して得ることができる。
細胞の培養、並びに発現誘導は、細胞が大腸菌の場合を例に取ると、アンピシリン加ＬＢ培地で１〜５時間、更にＩＰＴＧを添加して更に２〜１０時間培養して行うことができる。
精製は、例えば、細胞を超音波破砕した後、可溶性分画又は不溶性の沈殿分画を用いて、組換えタンパク質に付加されたヒスチジン・タグとニッケルとの親和性を利用したアフィニティーカラムにより行うことができる。即ち、ヒスチジン・タグ付加組換えタンパクをカラムに流し、組換えタンパク質をニッケル担体に結合させ、非吸着成分を洗浄により除去した後、イミダゾール液等を用いて溶出する。このようにして、精製されたヨーネ菌抗原タンパク質を得ることができる。
（４）ヨーネ病の診断方法
請求項４に係る本発明のヨーネ病の診断方法は、非ヒト被検動物の細胞に請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加して培養した後、培養上清中のＩＦＮ−γ濃度を検出することを特徴とする。
被検動物としては、例えば、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の反芻動物のほか、シカ、キツネ、ウサギ、サル等のヨーネ病に感染する可能性のある動物全般が挙げられる。
細胞としては、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）等の血液細胞が挙げられる。
請求項４に係る本発明のヨーネ病の診断方法は、非ヒト被検動物の細胞に請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加して培養した後、培養上清中のＩＦＮ−γ濃度を検出することを特徴とする。
被検動物としては、例えば、ウシ、ヤギ、ヒツジ等の反芻動物のほか、シカ、キツネ、ウサギ、サル等のヨーネ病に感染する可能性のある動物全般が挙げられる。
細胞としては、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）等の血液細胞が挙げられる。
請求項４に係る本発明のヨーネ病の診断方法においては、このような被検動物の細胞に請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加して培養する。ここで、請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を直接添加することもできるが、請求項５に記載するように、請求項３記載の細胞を添加して、細胞内でタンパク質を発現させることもできる。
ここで、請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加する場合は、培地に対し１〜２０μｇ／ｍｌ、中でも５〜１０μｇ／ｍｌ程度とすることが好ましい。１μｇ／ｍｌ未満であると、添加した効果がなく、一方、２０μｇ／ｍｌを超えると、培地に悪影響を及ぼしたり、ＩＦＮ−γ誘導が抑制される可能性がある。また、請求項３記載の細胞を添加する場合、培地に対し２ｘ１０５〜２ｘ１０７ｃｅｌｌｓ／ｍｌ、特に２ｘ１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ程度とすることが好ましい。２ｘ１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌ未満であると、添加した効果がなく、一方、２ｘ１０７ｃｅｌｌｓ／ｍｌを超えると、培地に悪影響を及ぼしたり、ＩＦＮ−γ誘導が抑制される可能性がある。
その他の培養条件については、被検動物の細胞が生育でき、且つ、ＩＮＦ−γの誘導が阻害されない条件を適宜設定することができる。例えば、培養期間は１〜３日、培養温度は３７〜３８℃とすることができる。
ここで、請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加する場合は、培地に対し１〜２０μｇ／ｍｌ、中でも５〜１０μｇ／ｍｌ程度とすることが好ましい。１μｇ／ｍｌ未満であると、添加した効果がなく、一方、２０μｇ／ｍｌを超えると、培地に悪影響を及ぼしたり、ＩＦＮ−γ誘導が抑制される可能性がある。また、請求項３記載の細胞を添加する場合、培地に対し２ｘ１０５〜２ｘ１０７ｃｅｌｌｓ／ｍｌ、特に２ｘ１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ程度とすることが好ましい。２ｘ１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌ未満であると、添加した効果がなく、一方、２ｘ１０７ｃｅｌｌｓ／ｍｌを超えると、培地に悪影響を及ぼしたり、ＩＦＮ−γ誘導が抑制される可能性がある。
その他の培養条件については、被検動物の細胞が生育でき、且つ、ＩＮＦ−γの誘導が阻害されない条件を適宜設定することができる。例えば、培養期間は１〜３日、培養温度は３７〜３８℃とすることができる。
請求項４に係る本発明のヨーネ病の診断方法においては、続いて、培養上清中のＩＦＮ−γ濃度を検出する。検出の方法としては、ＩＦＮ−γを検出できる方法であれば、いずれも適用することができる。このようなＩＦＮ−γを検出できる方法としてはＥＬＩＳＡ法やイミュノクロマトグラフィー法等を挙げることができるが、最も簡便な点で、ＥＬＩＳＡ法が最も好ましい。ＥＬＩＳＡ法による場合、例えば、被検動物に対応した抗ＩＦＮ−γモノクローナル抗体がコーティングされた９６穴マイクロプレートを用意し、細胞上清を各穴に添加して１５〜３０℃で１〜３時間感作させた後、洗浄してから更にビオチンで標識した被検動物に対応する抗ＩＦＮ−γ抗体を添加し、３０分〜２時間感作、洗浄後、酵素で標識したストレプトアビジンを添加し、１時間感作する。再度洗浄後、基質（テトラメチルベンチジン、ＴＭＢ）を添加して５〜１５分感作後、吸光度を測定し、ＩＦＮ−γ濃度を検出することができる。
被検動物がヨーネ病に感染しているか否かの判断は、ヨーネ病にかかっていないことが明らかな動物の細胞に、同様に組換え細胞を作用させ、ＩＦＮ−γ濃度の比較を行うことにより、明らかである。
被検動物がヨーネ病に感染しているか否かの判断は、ヨーネ病にかかっていないことが明らかな動物の細胞に、同様に組換え細胞を作用させ、ＩＦＮ−γ濃度の比較を行うことにより、明らかである。
このような本発明の診断方法により、ヨーネ病を正確且つ高感度に診断できる。
以下、実施例により本発明を具体的に説明する。
実施例１（ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子の解明）
ヨーネ菌ＡＴＣＣ１９６９８株から、以下の手順でＤＮＡを調製した。即ち、ヨーネ菌１００ｍｇを、リパーゼ８，０００ＩＵ、リゾチーム５ｍｇ／ｍｌ、及びプロテアーゼＫ（タンパク質分解酵素）２ｍｇ／ｍｌで処理し、フェノールクロロフォルム抽出後、エタノール沈殿により精製ＤＮＡを調製した。
次に、調製したＤＮＡを制限酵素Ｓａｕ３Ａ Ｉ（ＴＯＹＯＢＯ社製）で３７℃、１時間処理して限定消化して、ZAP Express Vector（STRATAGENE社製）のＢａｍＨ Ｉサイトにライゲーションすることにより、ファージライブラリーを作製した。ライゲーションは、ZAP Express Predigested Vector Kit and Express Predigested Gigapack Cloning Kits（STRATAGENE社製）を用いて、キット添付のプロトコールに従って実施した。
その後、パッケージング、ファージライブラリーの増幅、及びin vivo excisionを、上記キットを用いてキット添付のプロトコールに従って実施し、プラスミドベクターを大腸菌ＸＬＯＬＲ株に導入した。
実施例１（ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子の解明）
ヨーネ菌ＡＴＣＣ１９６９８株から、以下の手順でＤＮＡを調製した。即ち、ヨーネ菌１００ｍｇを、リパーゼ８，０００ＩＵ、リゾチーム５ｍｇ／ｍｌ、及びプロテアーゼＫ（タンパク質分解酵素）２ｍｇ／ｍｌで処理し、フェノールクロロフォルム抽出後、エタノール沈殿により精製ＤＮＡを調製した。
次に、調製したＤＮＡを制限酵素Ｓａｕ３Ａ Ｉ（ＴＯＹＯＢＯ社製）で３７℃、１時間処理して限定消化して、ZAP Express Vector（STRATAGENE社製）のＢａｍＨ Ｉサイトにライゲーションすることにより、ファージライブラリーを作製した。ライゲーションは、ZAP Express Predigested Vector Kit and Express Predigested Gigapack Cloning Kits（STRATAGENE社製）を用いて、キット添付のプロトコールに従って実施した。
その後、パッケージング、ファージライブラリーの増幅、及びin vivo excisionを、上記キットを用いてキット添付のプロトコールに従って実施し、プラスミドベクターを大腸菌ＸＬＯＬＲ株に導入した。
一方、ヨーネ菌実験感染牛から末梢血単核球（ＰＢＭＣ）を分離し、牛胎児血清１０％添加ＲＰＭＩ１６４０培地に再浮遊した。尚、牛胎児血清１０％添加ＲＰＭＩ１６４０培地とは、RPMI medium 1640（Invitrogen社製）に１０％牛胎児血清（JRH Biosciences社製）を添加した培地である。
一方、上記の組換え大腸菌を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ加ＬＢ培地で２時間培養した後、ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を１ｍＭ添加後、４時間培養した。この組換え大腸菌を、上記のＰＢＭＣに接種後、３７℃、５％炭酸ガス下で３日間培養した。培養温度は、Ｃｌｏｎｅ ３７については３０℃、Ｃｌｏｎｅ ６０については３７℃とした。
続いて、培養上清を２０倍に希釈し、ＥＬＩＳＡ法によりＩＦＮ−γ濃度を測定して、ＩＦＮ−γ誘導能を判定した。判定基準は、非組換え大腸菌接種培養上清を２０倍に希釈したものを陰性コントロールとして、この陰性コントロールのＥＬＩＳＡ吸光度（４５０ｎｍ）と比較して０．２以上高い値を示した場合に、ＩＦＮ−γ誘導能を有すると判定した。
一方、上記の組換え大腸菌を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ加ＬＢ培地で２時間培養した後、ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を１ｍＭ添加後、４時間培養した。この組換え大腸菌を、上記のＰＢＭＣに接種後、３７℃、５％炭酸ガス下で３日間培養した。培養温度は、Ｃｌｏｎｅ ３７については３０℃、Ｃｌｏｎｅ ６０については３７℃とした。
続いて、培養上清を２０倍に希釈し、ＥＬＩＳＡ法によりＩＦＮ−γ濃度を測定して、ＩＦＮ−γ誘導能を判定した。判定基準は、非組換え大腸菌接種培養上清を２０倍に希釈したものを陰性コントロールとして、この陰性コントロールのＥＬＩＳＡ吸光度（４５０ｎｍ）と比較して０．２以上高い値を示した場合に、ＩＦＮ−γ誘導能を有すると判定した。
その結果、組換え大腸菌のうちの２株（Ｃｌｏｎｅ ３７及びＣｌｏｎｅ ６０）がＩＦＮ−γ誘導能を示した。そこで、これらの組換え大腸菌から、Wizard Plus Midipreps DNA Purification System（PROMEGA社製）を用いてプラスミドを調製し、クローニングサイトに挿入されたヨーネ菌由来塩基配列を、サイクルシークエンス法により解析した。
その結果、Ｃｌｏｎｅ ３７及びＣｌｏｎｅ ６０のそれぞれにおいて、配列表の配列番号３記載の塩基配列からなる領域、及び配列表の配列番号４記載の塩基配列からなる領域がβ−ガラクトシダーゼをコードしている領域に組み込まれていることが明らかとなった。
その結果、Ｃｌｏｎｅ ３７及びＣｌｏｎｅ ６０のそれぞれにおいて、配列表の配列番号３記載の塩基配列からなる領域、及び配列表の配列番号４記載の塩基配列からなる領域がβ−ガラクトシダーゼをコードしている領域に組み込まれていることが明らかとなった。
実施例２（組換え大腸菌の製造、及び該細胞からのヨーネ菌抗原タンパク質の精製）
実施例１で得られた２種類の塩基配列は、それぞれ、配列表の配列番号１記載の８８アミノ酸からなるアミノ酸配列、及び配列表の塩基配列２記載の４１６アミノ酸からなるアミノ酸配列をコードする領域が、β−ガラクトシダーゼとの融合タンパク質として発現が予想された。
そこで、実施例１で得られた配列表の配列番号３記載の塩基配列からなる領域、及び配列表の配列番号４記載の塩基配列からなる領域を、それぞれプラスミドベクターｐＱＥ３０（Quiagen社）へクローニングした。即ち、それぞれの塩基配列の両端に、ＰＣＲ法により制限酵素ＢａｍＨ Ｉサイト及びＰｓｔ Ｉサイトをそれぞれ付加し、制限酵素ＢａｍＨ Ｉ及びＰｓｔ Ｉ処理後、プラスミドベクターｐＱＥ３０のＢａｍＨ Ｉサイト及びＰｓｔ Ｉサイトへライゲーションした。ライゲーションは、Ligation high（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて、キット附属のプロトコールに従い実施した。
実施例１で得られた２種類の塩基配列は、それぞれ、配列表の配列番号１記載の８８アミノ酸からなるアミノ酸配列、及び配列表の塩基配列２記載の４１６アミノ酸からなるアミノ酸配列をコードする領域が、β−ガラクトシダーゼとの融合タンパク質として発現が予想された。
そこで、実施例１で得られた配列表の配列番号３記載の塩基配列からなる領域、及び配列表の配列番号４記載の塩基配列からなる領域を、それぞれプラスミドベクターｐＱＥ３０（Quiagen社）へクローニングした。即ち、それぞれの塩基配列の両端に、ＰＣＲ法により制限酵素ＢａｍＨ Ｉサイト及びＰｓｔ Ｉサイトをそれぞれ付加し、制限酵素ＢａｍＨ Ｉ及びＰｓｔ Ｉ処理後、プラスミドベクターｐＱＥ３０のＢａｍＨ Ｉサイト及びＰｓｔ Ｉサイトへライゲーションした。ライゲーションは、Ligation high（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて、キット附属のプロトコールに従い実施した。
続いて、プラスミドベクターを大腸菌ＪＭ１０９株へ導入し、Ｎ末にヒスチジンタグを付加した組換えタンパク質を大腸菌で発現させた。即ち、組換え大腸菌を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ加ＬＢ培地で２時間培養した後、ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を１ｍＭ添加後、４時間培養した。培養温度は、Ｃｌｏｎｅ ３７については３０℃、Ｃｌｏｎｅ ６０については３７℃とした。
さらに、培養後の組換え大腸菌を超音波破砕し、Ｃｌｏｎｅ ３７については可溶性分画を、Ｃｌｏｎｅ ６０については不溶性の沈殿分画を用いて、組換えタンパク質に付加されたヒスチジン・タグとニッケルとの親和性を利用したアフィニティーカラムにより精製した。まず、ヒスチジン・タグ付加組換えタンパクをカラムに流し、組換えタンパク質をニッケル担体に結合させた。非吸着成分を洗浄により除去した後、３００ｍＭ イミダゾール液を用いて、２種類の精製された遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質を溶出した。
さらに、培養後の組換え大腸菌を超音波破砕し、Ｃｌｏｎｅ ３７については可溶性分画を、Ｃｌｏｎｅ ６０については不溶性の沈殿分画を用いて、組換えタンパク質に付加されたヒスチジン・タグとニッケルとの親和性を利用したアフィニティーカラムにより精製した。まず、ヒスチジン・タグ付加組換えタンパクをカラムに流し、組換えタンパク質をニッケル担体に結合させた。非吸着成分を洗浄により除去した後、３００ｍＭ イミダゾール液を用いて、２種類の精製された遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質を溶出した。
実施例３（ウシのヨーネ病の診断）
実施例２で得られた２種類の遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質が、ヨーネ病の診断に用いることができるか、の確認を行った。
ヨーネ菌実験感染牛３頭（♯３１、♯３３及び♯３５）及び健康対照牛２頭（♯０８２６及び♯０８２９）より比重遠心法によりＰＢＭＣを分離した。即ち、各個体から採取した血液を２倍希釈して得られるヘパリン加血液を、Ficoll-Paque PLUS（Amersham Biosciences社製）に重層し、１，８００ｒｐｍで３０分間遠心後、バフィーコート（白血球層）を採取し、ＨＡＮＫ’Ｓ ＢＡＬＡＮＣＥＤ ＳＡＬＴ ＳＯＬＵＴＩＯＮ（ハンクス液）で洗浄した後、牛胎児血清１０％添加ＲＰＭＩ１６４０培地を用いて細胞濃度２ｘ１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに再浮遊した。
実施例２で得られた２種類の遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質が、ヨーネ病の診断に用いることができるか、の確認を行った。
ヨーネ菌実験感染牛３頭（♯３１、♯３３及び♯３５）及び健康対照牛２頭（♯０８２６及び♯０８２９）より比重遠心法によりＰＢＭＣを分離した。即ち、各個体から採取した血液を２倍希釈して得られるヘパリン加血液を、Ficoll-Paque PLUS（Amersham Biosciences社製）に重層し、１，８００ｒｐｍで３０分間遠心後、バフィーコート（白血球層）を採取し、ＨＡＮＫ’Ｓ ＢＡＬＡＮＣＥＤ ＳＡＬＴ ＳＯＬＵＴＩＯＮ（ハンクス液）で洗浄した後、牛胎児血清１０％添加ＲＰＭＩ１６４０培地を用いて細胞濃度２ｘ１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに再浮遊した。
２４穴細胞培養用プレートに、１穴当たり１ｍｌずつ、各個体のＰＢＭＣ浮遊液を分注し、さらに、実施例２で得られた２種類の遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質をそれぞれ、最終濃度５μｇ／ｍｌに添加後、３７℃、５％炭酸ガス下で３日間培養した。
細胞培養上清を回収し、抗牛ＩＦＮ−γモノクローナル抗体及びポリクローナル抗体を用いたＥＬＩＳＡサンドイッチ法により、遺伝子組換え牛ＩＦＮ−γ（ｒｂＩＦＮ−γ）を標準品として細胞培養上清中のＩＦＮ−γ濃度を算出した。即ち、まず、抗牛ＩＦＮ−γモノクローナル抗体（Serotec社製）がコーティングされた９６穴マイクロプレートを作製した。プレートを洗浄後、各細胞培養上清を各穴に添加し、室温で２時間感作させた。プレートを洗浄後、ビオチン標識抗牛ＩＦＮ−γ抗体を添加し、１時間感作、洗浄後、ペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを添加し、１時間感作する。再度洗浄後、基質（テトラメチルベンチジン、ＴＭＢ）を添加して５〜１５分感作後、ＥＬＩＳＡリーダーにて波長４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。
一方、ｒｂＩＦＮ−γを２５ｎｇ／ｍｌ〜０．２ｎｇ／ｍｌまで希釈し、同様にＥＬＩＳＡを行ない、ｒｂＩＦＮ−γの濃度−吸光度曲線を作成し、該曲線より得られた計算式により、各サンプル中のＩＦＮ−γ濃度を吸光度より計算した。
各細胞培養上清のＩＦＮ−γ濃度（ｎｇ／ｍｌ）を図１及び表１に示す。
細胞培養上清を回収し、抗牛ＩＦＮ−γモノクローナル抗体及びポリクローナル抗体を用いたＥＬＩＳＡサンドイッチ法により、遺伝子組換え牛ＩＦＮ−γ（ｒｂＩＦＮ−γ）を標準品として細胞培養上清中のＩＦＮ−γ濃度を算出した。即ち、まず、抗牛ＩＦＮ−γモノクローナル抗体（Serotec社製）がコーティングされた９６穴マイクロプレートを作製した。プレートを洗浄後、各細胞培養上清を各穴に添加し、室温で２時間感作させた。プレートを洗浄後、ビオチン標識抗牛ＩＦＮ−γ抗体を添加し、１時間感作、洗浄後、ペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを添加し、１時間感作する。再度洗浄後、基質（テトラメチルベンチジン、ＴＭＢ）を添加して５〜１５分感作後、ＥＬＩＳＡリーダーにて波長４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。
一方、ｒｂＩＦＮ−γを２５ｎｇ／ｍｌ〜０．２ｎｇ／ｍｌまで希釈し、同様にＥＬＩＳＡを行ない、ｒｂＩＦＮ−γの濃度−吸光度曲線を作成し、該曲線より得られた計算式により、各サンプル中のＩＦＮ−γ濃度を吸光度より計算した。
各細胞培養上清のＩＦＮ−γ濃度（ｎｇ／ｍｌ）を図１及び表１に示す。
図１及び表１から明らかなように、ヨーネ菌実験感染牛由来のＰＢＭＣを精製遺伝子組換えタンパク抗原で刺激して得られる細胞培養上清中には、健康対照牛由来のそれに比べ、高い濃度のＩＦＮ−γが検出された。
このように、遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質の刺激により、ヨーネ菌感染牛のＰＢＭＣからＩＦＮ−γ産生を強く誘導することが可能であることから、ヨーネ病の正確な診断が可能であることが実証された。
このように、遺伝子組換えヨーネ菌抗原タンパク質の刺激により、ヨーネ菌感染牛のＰＢＭＣからＩＦＮ−γ産生を強く誘導することが可能であることから、ヨーネ病の正確な診断が可能であることが実証された。
本発明によれば、ＩＦＮ−γ誘導能を有する単一のヨーネ菌抗原タンパク質が提供される。
また、本発明によれば、ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子が提供されるので、ヨーネ菌抗原タンパク質の大量生産への道が開かれる。
更に、本発明によれば、ＩＦＮ−γ誘導能を有するヨーネ菌抗原タンパク質を用いた正確且つ高感度なヨーネ病の診断方法が提供される。
また、本発明によれば、ヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子が提供されるので、ヨーネ菌抗原タンパク質の大量生産への道が開かれる。
更に、本発明によれば、ＩＦＮ−γ誘導能を有するヨーネ菌抗原タンパク質を用いた正確且つ高感度なヨーネ病の診断方法が提供される。
Claims (5)
- 配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるヨーネ菌抗原タンパク質。
- 配列表の配列番号４に記載の塩基配列からなるヨーネ菌抗原タンパク質をコードする遺伝子。
- 請求項２記載の遺伝子が発現可能に導入された細胞。
- 非ヒト被検動物の細胞に請求項１記載のヨーネ菌抗原タンパク質を添加して培養した後、培養上清中のインターフェロン・ガンマ濃度を検出することを特徴とするヨーネ病の診断方法。
- 非ヒト被検動物の細胞に請求項３記載の細胞を添加して培養した後、培養上清中のインターフェロン・ガンマ濃度を検出することを特徴とするヨーネ病の診断方法。
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