JP3853838B1 - Ｄｎａが有する標的塩基を判別する方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】標的ＳＮＰ塩基の３’側にすぐ隣接する塩基がＧであり、もう一塩基隣の塩基がＣであるときに、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確にＳＮＰ判別が可能なアレル特異性プライマーを提供する。
【解決手段】３’末端塩基をＳＮＰ対応塩基とし、かつ３’末端から２番目の塩基はＴかＧとし、かつ３’末端から３番目の塩基はＡかＴかＣのいずれかとし、かつ３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの塩基配列を、標的ＳＮＰ塩基から３’側に対して三塩基隣の塩基から所望の塩基までの配列に対して相補的に設計する。
【選択図】図２
【解決手段】３’末端塩基をＳＮＰ対応塩基とし、かつ３’末端から２番目の塩基はＴかＧとし、かつ３’末端から３番目の塩基はＡかＴかＣのいずれかとし、かつ３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの塩基配列を、標的ＳＮＰ塩基から３’側に対して三塩基隣の塩基から所望の塩基までの配列に対して相補的に設計する。
【選択図】図２
Description
本発明は、ＤＮＡが有する標的塩基を判別する方法に関する。
ＳＮＰは遺伝子多型の中で最も高頻度で現れる多型であり、ヒトゲノム中において約０．１％の頻度で現れると考えられている。
実際、これまでに３００万を超える数のＳＮＰの存在が明らかになってきており、このことはＳＮＰが遺伝子検査のマーカーとして非常に有用であることを示している。
これまでのＳＮＰと疾病の関連付けの研究によって、糖尿病や高血圧症などの疾病とＳＮＰが深く関連していることが明らかになってきている。
ＳＮＰ判別を行う技術として、アレル特異性プライマーによるプライマー伸長反応（ＰＣＲ反応を含む）を利用する技術が知られている。
アレル特異性プライマーとは、標的とするＳＮＰの塩基種に依存してプライマー伸長反応効率に著しい差が生じるプライマーのことを言う。
従って、例えばアレル特異性プライマーを用いてＰＣＲ反応を行い、そのＰＣＲ産物量を解析することで簡単に標的ＳＮＰ塩基種を特定できる。
通常、アレル特異性プライマーは特に何の修飾もされていない単なるオリゴＤＮＡである。
ＰＣＲ産物量の解析にはいわゆる通常の電気泳動法を用いればよいため、アレル特異性プライマーによるＳＮＰ判別技術は、コストや反応時間、操作の簡便性といった面において非常に有利と言える。
解析方法については、上記の電気泳動法のみならず、固相系の反応を行えばＱＣＭやＳＰＲによって検出することも可能である。
さらに近年では、プライマー伸長反応の副産物であるＰＰｉ（ピロリン酸）を、ルシフェラーゼ反応を利用して検出する方法も開発されており、アレル特異性プライマーによるＳＮＰ判別の簡便化や迅速化は世界中において精力的に取り組まれている。
アレル特異性プライマーの配列設計は、そのＳＮＰ判別能において非常に重要なファクターである。
最も古典的な例は、３’末端塩基が標的ＳＮＰ塩基に対応しており（すなわち予想される標的ＳＮＰ塩基種のいずれかに相補的となる）、かつそれ以外の配列は標的ＤＮＡ配列に対して完全に相補的であるという例である。
しかし、この場合においては、その反応時間や温度、あるいは反応に用いるｄＮＴＰｓ濃度、またＰＣＲ法を用いるのであればサイクル数などの反応条件を厳密に規定しなければ、擬陽性の問題が生じる。
すなわち、本来であれば、プライマー３’末端のＳＮＰ対応塩基がサンプルの標的ＳＮＰ塩基と非相補的である場合は、そこからのプライマー伸長反応は起きてはいけないのだが、多くの場合において起きてしまう。
上述の擬陽性の問題を解決するために、これまでに幾つかの新規アレル特異性プライマーが開発されている。
特許文献１にて提案されたアレル特異性プライマーは、３’末端塩基がＳＮＰ対応塩基であり、かつ３’末端から３番目の塩基を、標的ＳＮＰ塩基から３’側に二塩基隣の塩基に対して意図的に非相補的にしたアレル特異性プライマーを開発している。
特許文献２では、３’末端から２番目の塩基がＳＮＰ対応塩基であり、かつ３’末端から３番目の塩基を、標的ＳＮＰ塩基から３’側に隣接している塩基に対して意図的に非相補的にしたアレル特異性プライマーが提案されている。この場合、３’→５’ｅｘｏ＋ポリメラーゼであるＫＯＤポリメラーゼを用いるのが特徴である。
特許文献３では、３’末端塩基がＳＮＰ対応塩基であり、かつ３’末端から２番目および３番目の塩基をそれぞれ、標的ＳＮＰ塩基から３’側に隣接する塩基と、もう一塩基隣の塩基に対して意図的に非相補的にしたアレル特異性プライマーが提案されている。これらの中で、特許文献３で提案されたアレル特異性プライマーは特に擬陽性の可能性が低い。
すなわち、上記のとおり設計された特許文献３のアレル特異性プライマーは、図１に示すように、その３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基（図中では「Ｓ’」と示した）が標的ＳＮＰ塩基（図中では「Ｓ」と示した）と相補的である場合、３’末端から２番目および３番目の塩基のみが標的ＤＮＡ配列に対して非相補的となり（図中では、非相補的な塩基対を×と示した）、ループのような構造をとり得る（図１（ａ））。
その結果、ポリメラーゼは効率良く結合し、プライマー伸長反応を行う。
逆に、その３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と非相補的である場合、３’末端の三塩基全てが非相補的となり、枝分かれのような構造になると考えられる（図１（ｂ））。
この場合、プライマー伸長反応はほとんど起こらない。
ポリメラーゼの結合効率が極めて低くなるためと考えられるからである。
したがって特許文献３で提案されたアレル特異性プライマーは、上述のとおり擬陽性の可能性は極めて低くなる。
その他、本発明に関連する文献として、以下の文献を挙げることができる。
特許文献４には、イネの品種識別のために、３’末端が判別すべきＳＮＰ部位に対応し、３’末端から３番目の塩基が、アニールする鋳型配列と相補的な配列から置換されており、当該置換がＧからＡ、ＡからＣへ、ＴからＧへ、またはＣからＡへの置換であるＰＣＲプライマーが開示されている。
さらに、この特許文献４の段落番号００４０には、「１つの局面において、本発明は、３’末端から１番目、２番目、３番目、または４番目の塩基が置換されたプライマーを提供する。この置換は、１つのみであっても、２つ以上の組み合わせでもよい。好ましくは、３’末端から３番目の塩基のみが置換される。このプライマーの置換は、任意の置換であってよいが、好ましくは、ＧからＴ、ＡからＣへ、ＴからＧ、またはＣからＡの置換である。」と開示されている。
米国特許公開第２００３／００４９６２８号
米国特許公開第２００３／０１４８３０１号
米国特許公開第２００４／０１９７８０３号
特開２００４−２４８６３５号公報
特許文献３で提案されたアレル特異性プライマーは、その３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と非相補的である場合のプライマー伸長反応効率は極めて悪い。その結果、擬陽性の問題が解消されるため正確なＳＮＰ判別が可能となる。
しかし、３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と相補的である場合のプライマー伸長反応効率は、３’末端から２番目および３番目の塩基種および、それに対応する標的ＤＮＡ側の塩基種条件（より具体的には、標的ＳＮＰ塩基から３’側に隣接する塩基と、もう一塩基隣の塩基の塩基種条件）によってばらつく問題があった。
より具体的には、例えば、標的ＤＮＡ配列中の標的ＳＮＰ塩基種がＡ（アデニン）かＧ（グアニン）であり、そのＳＮＰ塩基の３’側にすぐ隣接する塩基種をＣ（シトシン）、もう一塩基隣の塩基種をＴ（チミン）とした場合、特許文献３で提案されたアレル特異性プライマーの３’末端塩基はＳＮＰ対応塩基であるため、Ｔ（Ａと相補的とする場合）かＣ（Ｇと相補的とする場合）とすれば良い。
一方、その３’末端から２番目および３番目の塩基は、標的ＤＮＡ配列に対して非相補的でないといけないため、２番目はＡ、Ｔ、Ｃのいずれかであり、また３番目はＴ、Ｇ、Ｃのいずれかとなる。
したがって、特許文献３で提案されたアレル特異性プライマーは、一種類の標的ＤＮＡ配列に対して、その３’末端から２番目および３番目の塩基種の組み合わせは合計９通りとなる。
いずれも非相補的であるという観点から、これらの９種類のアレル特異性プライマーは、ＳＮＰ判別に際してほぼ同じ効率を示すと思われる。
しかし、本発明者らは、これらの９種類のアレル特異性プライマーのうち、特定のアレル特異性プライマーが、他のアレル特異性プライマーと比較して、ＳＮＰ判別に際して非常に高い効率を示すという知見を見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、擬陽性の可能性が少なく、かつ明確に判別することができるＤＮＡが有する標的塩基を判別する方法およびそれに用いられるアレル特異性プライマーを提供することを目的とする。
上記課題を解決する本発明は、ＤＮＡが有する標的塩基を判別する方法であって、
この方法は、 （１） Ａ（アデニン）、Ｔ（チミン）、Ｇ（グアニン）、およびＣ（シトシン）の４種類の塩基の中から前記標的塩基として予想される塩基と相補的な塩基を３’末端に有するアレル特異性プライマーを前記ＤＮＡに結合させてＤＮＡ伸長反応を生じさせるＤＮＡ伸長工程、および
（２） 前記ＤＮＡ伸長工程の効率を調べ、高効率であれば前記標的塩基は前記予想された塩基と同一であると判別され、低効率であれば前記標的塩基は前記予想された塩基とは異なると判別される判別工程
を有し、
前記ＤＮＡにおいて、前記標的塩基の３’末端側にすぐ隣接する塩基がＧであり、もう一塩基隣の塩基がＣであり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端塩基が前記標的塩基であると予想される塩基と相補的であり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端から２番目の塩基がＴかＧであり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端から３番目の塩基がＡかＴかＣのいずれかであり、かつ
前記アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基と５’末端の塩基との間の塩基配列が、前記アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基に対応する前記ＤＮＡ側の塩基と前記アレル特異性プライマーの５’末端の塩基に対応する前記ＤＮＡ側の塩基との間の塩基配列に相補的に結合する。
この方法は、 （１） Ａ（アデニン）、Ｔ（チミン）、Ｇ（グアニン）、およびＣ（シトシン）の４種類の塩基の中から前記標的塩基として予想される塩基と相補的な塩基を３’末端に有するアレル特異性プライマーを前記ＤＮＡに結合させてＤＮＡ伸長反応を生じさせるＤＮＡ伸長工程、および
（２） 前記ＤＮＡ伸長工程の効率を調べ、高効率であれば前記標的塩基は前記予想された塩基と同一であると判別され、低効率であれば前記標的塩基は前記予想された塩基とは異なると判別される判別工程
を有し、
前記ＤＮＡにおいて、前記標的塩基の３’末端側にすぐ隣接する塩基がＧであり、もう一塩基隣の塩基がＣであり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端塩基が前記標的塩基であると予想される塩基と相補的であり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端から２番目の塩基がＴかＧであり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端から３番目の塩基がＡかＴかＣのいずれかであり、かつ
前記アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基と５’末端の塩基との間の塩基配列が、前記アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基に対応する前記ＤＮＡ側の塩基と前記アレル特異性プライマーの５’末端の塩基に対応する前記ＤＮＡ側の塩基との間の塩基配列に相補的に結合する。
ＤＮＡ伸長反応はプライマー伸長反応であることが好ましい。ＤＮＡ伸長反応は、上記アレル特異性プライマーのみからのプライマー伸長反応であることがより好ましい。
プライマー伸長反応により産生されるピロリン酸の濃度を調べることによって効率を調べることが好ましい。なお、ピロリン酸の濃度を発光強度として検出することが好ましい。
ＤＮＡ伸長反応はＰＣＲ反応であることも好ましい。ＤＮＡ伸長反応が、前記アレル特異性プライマーともう一つの異なるプライマーからなるＰＣＲ反応であることがより好ましい。
この場合、ＰＣＲ反応により産生された増幅ＤＮＡの濃度を、電気泳動法により測定することによって効率を調べることが好ましい。
本発明により、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確にＳＮＰ判別などが可能なＤＮＡが有する標的ＳＮＰ塩基を判別する方法が提供される。
以下、本発明の実施の形態について図２〜図４を用いて説明する。
（実施の形態１）
本実施の形態１では、本発明におけるアレル特異性プライマーの塩基種条件について、図２を用いて説明する。
本実施の形態１では、本発明におけるアレル特異性プライマーの塩基種条件について、図２を用いて説明する。
本発明では、図２に示すように、標的ＤＮＡ配列として、標的塩基（以下、「標的ＳＮＰ塩基」という）が５’末端に存在し、かつ５’末端から２番目の塩基がＧであり、かつ５’末端から３番目の塩基がＣであるときを対象としている。
本発明の理解を容易にするために、図２では、標的ＳＮＰ塩基が５’末端に存在すると仮定している。しかし、一般的には、図１に示すように、標的ＳＮＰ塩基は標的ＤＮＡ配列のどこかに存在すれば良く、標的ＤＮＡ配列の５’末端に存在する必要はない。
アレル特異性プライマーの３’末端塩基はＳＮＰ対応塩基であるため、予想される標的ＳＮＰ塩基種が二種類（図２ではＳ１、Ｓ２と示した）である場合、そのいずれかと相補的であるように設計する。図２では、このＳＮＰ対応塩基をＳ１’とし、Ｓ１と相補的であるとしている。
さらにアレル特異性プライマーの３’末端から２番目の塩基はＴかＧであり、かつ３’末端から３番目の塩基はＡかＴかＣのいずれかである。
アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基と５’末端の塩基との間の塩基配列（以下、「残余の塩基配列」または「アレル特異性プライマーの残余の塩基配列」ということがある）は、アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基に対応する標的ＤＮＡ側の塩基とアレル特異性プライマーの５’末端の塩基に対応する標的ＤＮＡ側の塩基との間の塩基配列（以下、「残余の塩基配列」または「標的ＤＮＡ側の残余の塩基配列」ということがある）と相補的であり、これらは結合する。
図２では、アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの塩基配列は、標的ＤＮＡ配列中の５’末端から４番目の塩基から３’末端の塩基までの塩基配列に対して相補的である。
なお、アレル特異性プライマーの残余の塩基配列と標的ＤＮＡ側の残余の塩基配列との間は、完全に相補的であることが望ましいが、ＳＮＰ判別に悪影響を与えない限り、完全に相補的である必要はない。
本発明において、アレル特異性プライマーのＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と相補的な場合は、図２（ａ）のような関係になり、逆に、アレル特異性プライマーのＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と非相補的な場合は、図２（ｂ）のような関係になる。
なお、図２（および図１）において、符号「Ｘ」は、当該符号Ｘを間に挟む２つの塩基が結合しないことを意味する。
符号「Ｘ」が間に挟まれない２つの塩基（例えば、図１（ａ）、図２（ａ）の塩基Ｓ１および塩基Ｓ１’）は結合する。
このようなアレル特異性プライマーと標的ＤＮＡの配列条件下で、３’→５’エキソヌクレアーゼ活性のないポリメラーゼを用いてＤＮＡ伸長反応（すなわち、代表的にはプライマー伸長反応またはＰＣＲ反応）を行うと、図２（ａ）の場合は非常に効率良く反応が進むのに対して、図２（ｂ）の場合はほとんど進まない。
このような効率の差からＤＮＡが有する標的ＳＮＰ塩基を判別することができる。
すなわち、ＤＮＡ伸長工程の効率を調べ、高効率であれば前記標的ＳＮＰ塩基は前記予想された塩基と同一であると判別され、低効率であれば前記標的ＳＮＰ塩基は前記予想された塩基とは異なると判別される。
その結果、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確なＳＮＰ判別が可能となる。
（実施の形態２）
本実施の形態２では、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いてプライマー伸長反応を行うことでＳＮＰを判別する方法について説明する。
本実施の形態２では、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いてプライマー伸長反応を行うことでＳＮＰを判別する方法について説明する。
図３に示すように、まず標的ＤＮＡ配列を含む二本鎖ＤＮＡについて、プライマー伸長反応を行えるように調製する。
ここで標的ＤＮＡ配列条件は、実施の形態１と同じく、標的ＳＮＰ塩基が５’末端に存在し、かつその５’末端から２番目の塩基がＧであり、かつその５’末端から３番目の塩基がＣである。
したがって、標的ＤＮＡ配列の相補鎖においては、その３’末端塩基が標的ＳＮＰ塩基と相補的であり、かつその３’末端から２番目の塩基がＣであり、かつその３’末端から３番目の塩基がＧである。
このような配列条件を満たす二本鎖ＤＮＡを、上記のとおりプライマー伸長反応が行える状態に調製して、実施の形態１で示した配列条件を満たすアレル特異性プライマーと、ＤＮＡポリメラーゼと、ｄＮＴＰｓと、バッファーと、必要に応じて所望の塩を加えてプライマー伸長反応を行えばよい。
プライマー伸長反応の工程についてはこれまで知られている手順で良く、具体的には下記のとおりである。
すなわち、まず上記二本鎖ＤＮＡを変性させるために高温状態に置いた後、本発明におけるアレル特異性プライマーと標的ＤＮＡ配列が結合できるように温度を下げる。
その後、ＤＮＡポリメラーゼが伸長反応を行うことが可能な温度条件に設定すればよい。
この結果、アレル特異性プライマーの３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と相補的であれば、このアレル特異性プライマーからのプライマー伸長反応は効率良く行われる。
逆に、アレル特異性プライマーの３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と非相補的であれば、このアレル特異性プライマーからのプライマー伸長反応効率は著しく悪い。
したがって、このプライマー伸長反応の最中、あるいは反応後に、プライマー伸長反応の結果放出されるピロリン酸量を測定するなどしてそのプライマー伸長反応効率を調べればよい。
これによって、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確なＳＮＰ判別が可能となる。プライマー伸長反応効率を調べる手段としてはピロリン酸量を測定する方法に限られない。
例えば、本発明におけるアレル特異性プライマーの５’末端側を水晶発振子上に固定した状態で、上記プライマー伸長反応を行い、その振動数変化を解析してプライマー伸長反応をモニタリングすることで、プライマー伸長反応効率を調べてもよい。
あるいは本発明におけるアレル特異性プライマーの５’末端側を金表面に固定した状態で、上記プライマー伸長反応を行い、その表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）現象を解析してプライマー伸長反応をモニタリングすることで、プライマー伸長反応効率を調べてもよい。
いずれにしてもプライマー伸長反応効率を調べることができればよい。
ここで、プライマー伸長反応を行う具体的手順は上記の手順に限られることはない。
すなわち、上記の手順では予め必要な試薬類を全て反応液中に混合した上でプライマー伸長反応を行わせるが、例えば、まず標的ＤＮＡ配列を含む二本鎖ＤＮＡおよびアレル特異性プライマーを溶かしたバッファー液（必要に応じて所望の塩を加えればよい）を用意し、高温による変性工程およびアレル特異性プライマーによる標的ＤＮＡ配列への結合を行った後、ＤＮＡポリメラーゼ、ｄＮＴＰｓを順次加えることで反応を行わせてもよい。いずれにしてもプライマー伸長反応を行える工程とすればよい。
またここで、標的ＤＮＡ配列を含むＤＮＡがもともと一本鎖の場合、上記した二本鎖の場合と異なり、二本鎖ＤＮＡを変性させるという意味での高温条件下におく工程は必要ない。
しかし、この一本鎖ＤＮＡとアレル特異性プライマーの結合反応を制御する意味において、これら両者がまず十分解離した状態を調整する必要があるので、そのための高温条件下におく工程が、アレル特異性プライマーと標的ＤＮＡ配列との結合工程の前にあることがより好ましい。
ここで、上記ＤＮＡポリメラーゼは３’→５’エキソヌクレアーゼ活性が弱いか無いことがより好ましい。その方がよりＳＮＰ判別が正確となる。
さらに、上記ＤＮＡポリメラーゼは、上記プライマー伸長反応の手順によっては高温にさらされる場合がある。
その場合は、例えばＰＣＲに用いられるような耐熱性のものを用いる必要があるが、そのような高温にさらされることがない手順でプライマー伸長反応を行う場合は特にその必要はない。
ピロリン酸量を測定する方法については、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， ２００１， Ｖｏｌ．２９， Ｎｏ．１９ ｅ９３やＷＯ ０３／０７８６５５Ａ１や特開２００４−１４１１５８号公報などで提案されている方法がある。
しかしこれらに限られることはなく、ピロリン酸量が測定できればよい。
（実施の形態３）
本実施の形態３では、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いてＰＣＲを行うことでＳＮＰを判別する方法について説明する。
本実施の形態３では、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いてＰＣＲを行うことでＳＮＰを判別する方法について説明する。
図４に示すように、まず標的ＤＮＡ配列を含む二本鎖ＤＮＡについて、ＰＣＲ反応を行えるように調製する。ここで標的ＤＮＡ配列条件は、実施の形態１と同じく、標的ＳＮＰ塩基が５’末端に存在し、かつその５’末端から２番目の塩基がＧであり、かつその５’末端から３番目の塩基がＣである。
したがって、標的ＤＮＡ配列の相補鎖においては、その３’末端塩基が標的ＳＮＰ塩基と相補的であり、かつその３’末端から２番目の塩基がＣであり、かつその３’末端から３番目の塩基がＧである。
このような配列条件を満たす二本鎖ＤＮＡを、上記のとおりＰＣＲ反応が行える状態に調製して、実施の形態１で示した配列条件を満たすアレル特異性プライマーと、このアレル特異性プライマーとフォワードプライマー／リバースプライマーの関係になる第二のプライマーと、ＰＣＲ用ＤＮＡポリメラーゼと、ｄＮＴＰｓと、Ｍｇイオンと、バッファー、また必要であれば所望の塩を加えてＰＣＲ反応を行えばよい。
この結果、アレル特異性プライマーの３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と相補的であれば、このアレル特異性プライマーと第二のプライマーによって挟まれた領域のテンプレートＤＮＡは効率良く増幅される。
逆に、アレル特異性プライマーの３’末端に位置するＳＮＰ対応塩基が標的ＳＮＰ塩基と非相補的であれば、このアレル特異性プライマーと第二のプライマーによって挟まれた領域のテンプレートＤＮＡはほとんど増幅されない。
したがって、上記ＰＣＲ反応の後に、電気泳動などの方法によってこのテンプレートＤＮＡの増幅量を調べれば、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確なＳＮＰ判別が可能となる。
あるいは、上記ＰＣＲ反応の最中、あるいは後に、ＰＣＲ反応の結果放出されるピロリン酸量を測定してもよい。
この場合においても、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確なＳＮＰ判別が可能である。
上記ＰＣＲ用ＤＮＡポリメラーゼは３’→５’エキソヌクレアーゼ活性が弱いか無いことがより好ましい。
テンプレートＤＮＡの増幅量を測定する方法は特に限られず、上記の電気泳動法以外でもよい。
ピロリン酸量を測定する方法については、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， ２００１， Ｖｏｌ．２９， Ｎｏ．１９ ｅ９３やＷＯ ０３／０７８６５５
Ａ１や特開２００４−１４１１５８号公報などで提案されている方法がある。
Ａ１や特開２００４−１４１１５８号公報などで提案されている方法がある。
しかしこれらに限られることはなく、ピロリン酸量が測定できればよい。
（実施の形態４）
本実施の形態４では、本発明におけるアレル特異性プライマーを含むＳＮＰ判別用キットについて説明する。
本実施の形態４では、本発明におけるアレル特異性プライマーを含むＳＮＰ判別用キットについて説明する。
使用者らは、ここで説明するＳＮＰ判別用キットを用いてプライマー伸長反応およびピロリン酸測定反応を行うことで、各自のサンプル中の標的ＳＮＰ塩基種を擬陽性の可能性が極めて低く、かつ正確に判別可能となる。
本実施の形態４におけるＳＮＰ判別用キットは、標的ＤＮＡ配列に対して実施の形態１に示した本発明におけるアレル特異性プライマーを含むアレル特異性プライマー試薬チューブと、ＤＮＡポリメラーゼを含むＤＮＡポリメラーゼ試薬チューブと、必要に応じて所望の塩が添加されたバッファーを含むバッファー試薬チューブと、ｄＮＴＰｓを含むｄＮＴＰｓ試薬チューブと、ピロリン酸測定用試薬を含むピロリン酸試薬チューブからなる。
したがって使用者らは、まず各自の標的ＤＮＡ配列を含む一本鎖ＤＮＡあるいは二本鎖ＤＮＡのサンプルについて、プライマー伸長反応を行える状態に調製した後、上記アレル特異性プライマー試薬チューブに含まれたアレル特異性プライマーおよびＤＮＡポリメラーゼ試薬チューブに含まれたＤＮＡポリメラーゼおよびバッファー試薬チューブに含まれたバッファーおよびｄＮＴＰｓ試薬チューブに含まれたｄＮＴＰｓを用いて、実施の形態２で説明した方法に従ってプライマー伸長反応を行えばよい。
プライマー伸長反応の過程で反応液中に放出されたピロリン酸は、上記ピロリン酸試薬チューブに含まれたピロリン酸測定用試薬を用いて測定することができる。
したがってその測定結果によって標的ＳＮＰ塩基種を擬陽性の可能性が極めて低く、かつ正確に判別可能となる。
ピロリン酸測定用試薬は、ピロリン酸測定ができるものであれば特に限定されないが、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， ２００１， Ｖｏｌ．２９， Ｎｏ．１９ ｅ９３で示されたようにルシフェラーゼによる発光反応を用いるのであれば、ピロリン酸をＡＴＰに変換するためのＡＴＰスルフリラーゼおよび、ＡＴＰと反応して発光反応（波長５２０ｎｍ）を行うルシフェリンおよび、その反応を触媒するルシフェラーゼを含む。
これらは一本のチューブに混合された状態であってもよいし、それぞれ別々のチューブに含まれていてもよい。
いずれにしても使用者らは、上記プライマー伸長反応の過程で放出されるピロリン酸をこれらのピロリン酸測定用試薬を用い、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， ２００１， Ｖｏｌ．２９， Ｎｏ．１９ ｅ９３で示された方法に準じて光学的にピロリン酸を測定することができる。
さらにこの場合、プライマー伸長反応で未反応のまま残ったｄＡＴＰがルシフェリンと反応してしまうため、より好ましくは、これら未反応ｄＡＴＰを分解するための酵素を含むチューブもキットの一部として含まれる。
この酵素は、上記のルシフェラーゼによる反応の前か、あるいはピロリン酸からＡＴＰへの変換反応の前において、プライマー伸長反応液に加えられｄＡＴＰ分解反応が行われることが好ましい。
ピロリン酸測定用試薬については、ＷＯ ０３／０７８６５５Ａ１で示されたピロリン酸の電気化学的測定法を用いるのであれば、ピロリン酸をリン酸に加水分解するためのピロホスファターゼおよび、このリン酸と反応するＧＡＰ（グリセルアルデヒド３−リン酸）とＮＡＤおよび、このリン酸−ＧＡＰ−ＮＡＤの反応を触媒するＧＡＰＤＨ（グリセルアルデヒド３−リン酸デヒドロゲナーゼ）および、このリン酸−ＧＡＰ−ＮＡＤの反応より得られるＮＡＤＨと反応する電子メディエータ（酸化型）および、このＮＡＤＨと電子メディエータとの反応を触媒するジアホラーゼを含む。
これらは一本のチューブに混合された状態であってもよいし、それぞれ別々のチューブに含まれていてもよい。いずれにしても使用者らは、上記プライマー伸長反応の過程で放出されるピロリン酸をこれらのピロリン酸測定用試薬を用い、ＷＯ ０３／０７８６５５ Ａ１で示された方法に準じて電気化学的にピロリン酸を測定することができる。
ピロリン酸測定用試薬については、特開２００４−１４１１５８号公報で示されたピロリン酸の電気化学的測定法を用いるのであれば、ピロリン酸をリン酸に加水分解するとともに、Ｈ＋を輸送するＨ＋−ＰＰａｓｅ（Ｈ＋−ピロホスファターゼ）を含む膜および、Ｈ＋濃度に依存して光学的特性が変わる色素を含む。
これらは一本のチューブに混合された状態であってもよいし、それぞれ別々のチューブに含まれていてもよい。いずれにしても使用者らは、上記プライマー伸長反応の過程で放出されるピロリン酸をこれらのピロリン酸測定用試薬を用い、特開２００４−１４１１５８号公報で示された方法に準じて光学的にピロリン酸を測定することができる。
ピロリン酸を測定する方法に関しては、ここで挙げたもの以外にも数多くの方法が知られている。したがって、もちろんピロリン酸測定用試薬についてもここに挙げたものに限られることなく、ピロリン酸測定に必要な試薬全てあるいは一部を含む構成となっていればよい。
ピロリン酸測定用試薬の代わりに、サイバーグリーンＩのように二本鎖ＤＮＡに結合する蛍光指示薬が本実施の形態４のキットに含まれる構成としてもよい。
すなわち、サイバーグリーンＩに代表される二本鎖ＤＮＡに結合する蛍光指示薬存在下でプライマー伸長反応を行わせると、その蛍光をモニタリングすることでプライマー伸長反応過程をリアルタイムで解析することが可能であり、この解析結果からＳＮＰ判別を行うことができる。
サイバーグリーンＩに代表される二本鎖ＤＮＡに結合する蛍光指示薬は、単独で一本のチューブに含まれていてもよいし、あるいはバッファー試薬チューブなどに含まれている構成としてもよく、この蛍光指示薬をプライマー伸長反応液に混合できるキット構成とすればよい。
同様に、ピロリン酸測定用試薬の代わりに、ＴａｑＭａｎプローブが実施の形態４のキットに含まれる構成としてもよい。
すなわちプライマー伸長反応が進む配列中の所望の領域に結合するようにＴａｑＭａｎプローブを設計しておけば、このＴａｑＭａｎプローブに依存した蛍光をモニタリングすることでプライマー伸長反応過程をリアルタイムで解析することが可能であり、この解析結果からＳＮＰ判別を行うことができる。
そのように設計されたＴａｑＭａｎプローブは、単独で一本のチューブに含まれていてもよいし、あるいはバッファー試薬チューブなどに含まれている構成としてもよく、ＴａｑＭａｎプローブをプライマー伸長反応液に混合できるキット構成とすればよい。
またここで、上記ＤＮＡポリメラーゼは３’→５’エキソヌクレアーゼ活性が弱いか無いことがより好ましい。その方がよりＳＮＰ判別が正確となる。またさらに、上記ＤＮＡポリメラーゼは、耐熱性のものである方がより好ましい。
（実施の形態５）
本実施の形態５では、本発明におけるアレル特異性プライマーを含むＳＮＰ判別用キットについて説明する。
本実施の形態５では、本発明におけるアレル特異性プライマーを含むＳＮＰ判別用キットについて説明する。
使用者らは、ここで説明するＳＮＰ判別用キットを用いることで、各自のサンプル中の標的ＳＮＰ塩基種を擬陽性の可能性が極めて低く、かつ正確に判別するためのＰＣＲ反応を行うことができる。
本実施の形態５におけるＳＮＰ判別用キットは、標的ＤＮＡ配列に対して実施の形態１に示した本発明におけるアレル特異性プライマーおよびこのアレル特異性プライマーとフォワードプライマー／リバースプライマーの関係になる第二のプライマーを含むプライマー試薬チューブと、ＰＣＲ用ＤＮＡポリメラーゼを含むＰＣＲ用ＤＮＡポリメラーゼ試薬チューブと、Ｍｇイオンと必要に応じて所望の塩が添加されたバッファーを含むバッファー試薬チューブと、ｄＮＴＰｓを含むｄＮＴＰｓ試薬チューブからなる。
したがって使用者らは、まず各自の標的ＤＮＡ配列を含む二本鎖ＤＮＡのサンプルについて、ＰＣＲ伸長反応を行える状態に調製した後、上記プライマー試薬チューブに含まれたアレル特異性プライマーと第二のプライマーおよび、ＰＣＲ用ＤＮＡポリメラーゼ試薬チューブに含まれたＰＣＲ用ＤＮＡポリメラーゼおよび、バッファー試薬チューブに含まれたバッファーおよび、ｄＮＴＰｓ試薬チューブに含まれたｄＮＴＰｓを用いて、実施の形態３で説明した方法に従ってＰＣＲ反応を行えばよい。
本実施の形態５におけるキットは、ＰＣＲ反応効率を調べるための試薬を含んでいることがより好ましい。ＰＣＲ反応効率を調べるための試薬としては、実施の形態３同様に、ピロリン酸測定用試薬や、サイバーグリーンＩのように二本鎖ＤＮＡに結合する蛍光指示薬や、ＴａｑＭａｎプローブが挙げられる。
ピロリン酸測定用試薬は、ＰＣＲ反応の過程で反応液中に放出されたピロリン酸を測定することができる。したがってその測定結果によって標的ＳＮＰ塩基種を擬陽性の可能性が極めて低く、かつ正確に判別可能となる。ピロリン酸測定用試薬の種類については、実施の形態４と同じであり、ピロリン酸測定に必要な試薬全てあるいは一部を含む構成となっていればよい。
サイバーグリーンＩのように二本鎖ＤＮＡに結合する蛍光指示薬や、ＴａｑＭａｎプローブについては、これらの存在下でＰＣＲ反応を行うことで、ＰＣＲ反応の過程をリアルタイムでモニタリングでき、その結果によって標的ＳＮＰ塩基種を擬陽性の可能性が極めて低く、かつ正確に判別できる。
したがって、これらは単独で一本のチューブに含まれていてもよいし、あるいはバッファー試薬チューブなどに含まれている構成としてもよく、これらの試薬をＰＣＲ反応液に混合できるキット構成とすればよい。
以上、上記実施の形態１〜５を通じて、本発明におけるアレル特異性プライマーおよび、このアレル特異性プライマーを用いたＳＮＰ判別方法および、このアレル特異性プライマーを含むＳＮＰ判別用キットについて説明した。
これらは特にＳＮＰに限られることなく、突然変異による一塩基の違いの判別や、あるいは人工的にある特定の塩基に変異を起こさせた場合の一塩基の違いの判別についても全く同様の効果を示すことは言うまでもない。
本発明のより具体的な実施例について以下に記す。
（実施例１） 本実施例１では、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いたＰＣＲ反応によってλＤＮＡ中の標的塩基種判別を行った。
すなわち、まずλＤＮＡ（タカラバイオ（株）製）中の７２３５番目のＴ／Ａ塩基対について人工的にＡ／Ｔ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴを作成した。
そしてこれら塩基対の置換の判別を、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＡＴＴ−３’（λ−ＡＴＴ：配列番号１）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＡＧＴ−３’（λ−ＡＧＴ：配列番号２）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＴＴＴ−３’（λ−ＴＴＴ：配列番号３）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＴＧＴ−３’（λ−ＴＧＴ：配列番号４）
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＣＴＴ−３’（λ−ＣＴＴ：配列番号５）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＣＧＴ−３’（λ−ＣＧＴ：配列番号６）
からなる六種類のプライマーを用いて行うこととした。
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＡＴＴ−３’（λ−ＡＴＴ：配列番号１）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＡＧＴ−３’（λ−ＡＧＴ：配列番号２）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＴＴＴ−３’（λ−ＴＴＴ：配列番号３）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＴＧＴ−３’（λ−ＴＧＴ：配列番号４）
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＣＴＴ−３’（λ−ＣＴＴ：配列番号５）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＣＧＴ−３’（λ−ＣＧＴ：配列番号６）
からなる六種類のプライマーを用いて行うこととした。
上記六種類のプライマーを順に、λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴと呼ぶ。
ここで、上記六種類のプライマーの３’末端塩基Ｔは、野生型λＤＮＡの７２１２〜７２３５番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＧＣＴ−３’／５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号７）のうち、５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号７のアンチセンス鎖）の５’末端塩基Ａと相補的である。
上記六種類のプライマーの３’末端から２番目の塩基はＴ（λ−ＡＴＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＣＴＴの場合）あるいはＧ（λ−ＡＧＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＧＴの場合）であり、同様に５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号７）の５’末端から２番目の塩基ＧとＴ／ＧあるいはＧ／Ｇの非相補的な関係である。
上記六種類のプライマーの３’末端から３番目の塩基はＡ（λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴの場合）、あるいはＴ（λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴの場合）、あるいはＣ（λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴの場合）であり、同様に５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号７）の５’末端から３番目の塩基ＡとＡ／Ａ、あるいはＴ／Ａ、あるいはＣ／Ａの非相補的な関係である。
上記六種類のプライマーの３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの配列は、同様に５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号７）の５’末端から４番目の塩基から３’末端の塩基までの配列に対して完全に相補的である。
一方、上記六種類のプライマーの３’末端の三塩基は、変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴの７２１２〜７２３５番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＧＣＡ−３’／５’−ＴＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号８）のうち、５’−ＴＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号８のアンチセンス鎖）の５’末端の三塩基に対して非相補的である（下線部が変異導入部位）。
リバースプライマーとしては、５’−ＧＡＡＴＣＡＣＧＧＴＡＴＣＣＧＧＣＴＧＣＧＣＴＧＡ−３’（配列番号９）からなるＤＮＡを用いた。
このリバースプライマーは、λＤＮＡの７４０６〜７４３０番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＴＣＡＧＣＧＣＡＧＣＣＧＧＡＴＡＣＣＧＴＧＡＴＴＣ−３’（配列番号１０）／５’−ＧＡＡＴＣＡＣＧＧＴＡＴＣＣＧＧＣＴＧＣＧＣＴＧＡ−３’のうち、５’−ＴＣＡＧＣＧＣＡＧＣＣＧＧＡＴＡＣＣＧＴＧＡＴＴＣ−３’（配列番号１０のセンス鎖）と完全に相補的である。
仮に上記六種類のプライマーとのＰＣＲ反応によって良好に反応が進めば、２１９ｂｐのＤＮＡ増幅産物が得られるはずである。
実験は下記のとおりであった。
まず、
Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
１０μｇ／ｍＬの上記野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ、
１μＭの上記六種類のプライマー（λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴ）のいずれか
１μＭの上記リバースプライマー
１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬを調製した。
Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
１０μｇ／ｍＬの上記野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ、
１μＭの上記六種類のプライマー（λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴ）のいずれか
１μＭの上記リバースプライマー
１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬを調製した。
この反応溶液をロシュ・ダイアグノスティクス社製サーマルサイクラーであるＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒを用いて、変性工程：９４℃、１０秒間、アニーリング工程：５８℃、１０秒間、伸長工程：７２℃、１０秒間、サイクル数：２０サイクルとしてＰＣＲ反応を行った。
各ＰＣＲ反応結果については、アジレント・テクノロジーズ社製のＤＮＡ電気泳動用システムであるＢｉｏａｎａｌｙｚｅｒ２１００を用いて解析した。
解析結果を図５に示す。
これらの結果は、各ＰＣＲ反応後における目的のＤＮＡ断片の濃度（ｎＭ）を示している。
この結果より、上記λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴのいずれをフォワードプライマーとして用いた場合も、変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴの場合においては目的のＤＮＡ断片はほとんど検出されなかった。
一方、野生型λＤＮＡの場合は全て、目的のＤＮＡ断片は３０ｎＭ以上であった。
以上の結果より、上記λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴによって明確に判別できることが示された。
（比較例１）
本比較例１では、上記実施例１の比較実験として、上記実施例１の野生型λＤＮＡと変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴの一塩基の違いについて、以下の三種類のプライマーを用いて判別を試みた。
本比較例１では、上記実施例１の比較実験として、上記実施例１の野生型λＤＮＡと変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴの一塩基の違いについて、以下の三種類のプライマーを用いて判別を試みた。
すなわち、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＡＡＴ−３’（λ−ＡＡＴ：配列番号１１）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＴＡＴ−３’（λ−ＴＡＴ：配列番号１２）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＣＡＴ−３’（λ−ＣＡＴ：配列番号１３）
の配列からなる三種類のプライマーを用いて、実施例１と同様の実験を行った。
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＡＡＴ−３’（λ−ＡＡＴ：配列番号１１）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＴＡＴ−３’（λ−ＴＡＴ：配列番号１２）、
５’−ＡＴＧＡＡＣＴＧＡＴＴＧＣＣＣＧＴＣＴＣＣＣＡＴ−３’（λ−ＣＡＴ：配列番号１３）
の配列からなる三種類のプライマーを用いて、実施例１と同様の実験を行った。
これら三種類のプライマーを順に、λ−ＡＡＴ、λ−ＴＡＴ、λ−ＣＡＴと呼ぶ。
これらは、λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴと同じく、その３’末端塩基（Ｔ）が５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’の５’末端塩基（Ａ）と相補的である。
これらの３’末端から２番目および３番目の塩基は、５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’（配列番号７）の５’末端から２番目および３番目の塩基と非相補的である。
その残りの配列が５’−ＡＧＣＧＧＡＧＡＣＧＧＧＣＡＡＴＣＡＧＴＴＣＡＴ−３’ （配列番号７）の残りの配列と完全に相補的である。
解析結果を図６に示す。
これらの結果は、図５と同様に各ＰＣＲ反応後における目的のＤＮＡ断片の濃度（ｎＭ）を示している。
この結果より、まず上記λ−ＡＡＴ、λ−ＴＡＴ、λ−ＣＡＴのいずれをフォワードプライマーとして用いた場合も、野生型λＤＮＡの場合は３ｎＭ以上の目的ＤＮＡ断片が検出されているのに対して、変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴの場合においては目的のＤＮＡ断片はほとんど検出されなかった。
したがって、λ−ＡＡＴ、λ−ＴＡＴ、λ−ＣＡＴによって、野生型λＤＮＡと変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴの一塩基の違いが判別できることが示された。しかしながら、λ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴの場合と比べ、あきらかに野生型λＤＮＡをテンプレートとしたときの増幅産物濃度は小さく（図５および図６の縦軸の大きさに注意）、これよりλ−ＡＴＴ、λ−ＡＧＴ、λ−ＴＴＴ、λ−ＴＧＴ、λ−ＣＴＴ、λ−ＣＧＴの判別能がより優れていることが分かる。
これらの実施例１および比較例１から理解されるように、標的ＳＮＰ塩基の３’末端側にすぐ隣接する塩基がＧであり、もう一塩基隣の塩基がＣである場合には、アレル特異性プライマーの３’末端から２番目の塩基がＴかＧであり、３番目の塩基がＡかＴかＣのいずれかであれば、非常に高い判別能を得ることができる。
（実施例２）
本実施例２では、実施例１や比較例１同様に、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いたＰＣＲ反応によってλＤＮＡ中の標的塩基種判別を行った。
本実施例２では、実施例１や比較例１同様に、本発明におけるアレル特異性プライマーを用いたＰＣＲ反応によってλＤＮＡ中の標的塩基種判別を行った。
まず、以下の３種類の変異型λＤＮＡを作成した。
１．変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ
野生型λＤＮＡ中の７００７番目のＧ／Ｃ塩基対について人工的にＡ／Ｔ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ。
２．変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ
野生型λＤＮＡ中の６９９６番目のＡ／Ｔ塩基対について人工的にＧ／Ｃ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ。
３．変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ
野生型λＤＮＡ中の７０４０番目のＣ／Ｇ塩基対について人工的にＴ／Ａ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ。
野生型λＤＮＡ中の７００７番目のＧ／Ｃ塩基対について人工的にＡ／Ｔ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ。
２．変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ
野生型λＤＮＡ中の６９９６番目のＡ／Ｔ塩基対について人工的にＧ／Ｃ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ。
３．変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ
野生型λＤＮＡ中の７０４０番目のＣ／Ｇ塩基対について人工的にＴ／Ａ塩基対に置換した変異型λＤＮＡ。
そして以下の３パターンの塩基対判別を行うこととした。
判別１
野生型λＤＮＡ中の７００７番目のＧ／Ｃ塩基対と、変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴの７００７番目のＡ／Ｔ塩基対の判別。
判別２
野生型λＤＮＡ中の６９９６番目のＡ／Ｔ塩基対と、変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣの６９９６番目のＧ／Ｃ塩基対の判別。
判別３
野生型λＤＮＡ中の７０４０番目のＣ／Ｇ塩基対と、変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡの７０４０番目のＴ／Ａ塩基対の判別。
野生型λＤＮＡ中の７００７番目のＧ／Ｃ塩基対と、変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴの７００７番目のＡ／Ｔ塩基対の判別。
判別２
野生型λＤＮＡ中の６９９６番目のＡ／Ｔ塩基対と、変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣの６９９６番目のＧ／Ｃ塩基対の判別。
判別３
野生型λＤＮＡ中の７０４０番目のＣ／Ｇ塩基対と、変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡの７０４０番目のＴ／Ａ塩基対の判別。
上記三種類のそれぞれの判別のために、以下のプライマーをフォワードプライマーとして用いた。
判別１用プライマー（括弧内は各プライマーの名前）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＡＡＧ−３’（λ１−ＡＡＧ：配列番号１４）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＡＴＧ−３’（λ１−ＡＴＧ：配列番号１５）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＡＧＧ−３’（λ１−ＡＧＧ：配列番号１６）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＴＡＧ−３’（λ１−ＴＡＧ：配列番号１７）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＴＴＧ−３’（λ１−ＴＴＧ：配列番号１８）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＴＧＧ−３’（λ１−ＴＧＧ：配列番号１９）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＣＡＧ−３’（λ１−ＣＡＧ：配列番号２０）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＣＴＧ−３’（λ１−ＣＴＧ：配列番号２１）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＣＧＧ−３’（λ１−ＣＧＧ：配列番号２２）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＡＡＧ−３’（λ１−ＡＡＧ：配列番号１４）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＡＴＧ−３’（λ１−ＡＴＧ：配列番号１５）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＡＧＧ−３’（λ１−ＡＧＧ：配列番号１６）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＴＡＧ−３’（λ１−ＴＡＧ：配列番号１７）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＴＴＧ−３’（λ１−ＴＴＧ：配列番号１８）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＴＧＧ−３’（λ１−ＴＧＧ：配列番号１９）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＣＡＧ−３’（λ１−ＣＡＧ：配列番号２０）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＣＴＧ−３’（λ１−ＣＴＧ：配列番号２１）
５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＣＧＧ−３’（λ１−ＣＧＧ：配列番号２２）
ここで、上記九種類のプライマーの３’末端塩基Ｇは、野生型λＤＮＡの６９８５〜７００７番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＧＣＧ−３’／５’−ＣＧＣＡＴＣＣＴＧＡＡＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号２３）のうち、５’−ＣＧＣＡＴＣＣＴＧＡＡＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号２３のアンチセンス鎖）の５’末端塩基Ｃと相補的である。
また、上記九種類のプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列はそれぞれ異なるが、いずれも５’−ＣＧＣＡＴＣＣＴＧＡＡＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号２３）の５’末端から２番目および３番目の塩基配列５’−ＧＣ−３’と非相補的な関係である。
また、上記九種類のプライマーの３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの配列は、５’−ＣＧＣＡＴＣＣＴＧＡＡＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号２３）の５’末端から４番目の塩基から３’末端の塩基までの配列に対して完全に相補的である。
一方、上記九種類のプライマーの３’末端の三塩基は、変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴの６９８５〜７００７番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡＴＴＣＡＧＧＡＴＧＣＡ−３’／５’−ＴＧＣＡＴＣＣＴＧＡＡＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号２４）のうち、５’−ＴＧＣＡＴＣＣＴＧＡＡＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧ−３’（配列番号２４のアンチセンス鎖）の５’末端の三塩基に対して非相補的である（下線部が変異導入部位）。
判別２用プライマー（括弧内は各プライマーの名前）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＡＡＡ−３’（λ２−ＡＡＡ：配列番号２５）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＡＴＡ−３’（λ２−ＡＴＡ：配列番号２６）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＡＧＡ−３’（λ２−ＡＧＡ：配列番号２７）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＴＡＡ−３’（λ２−ＴＡＡ：配列番号２８）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＴＴＡ−３’（λ２−ＴＴＡ：配列番号２９）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＴＧＡ−３’（λ２−ＴＧＡ：配列番号３０）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＣＡＡ−３’（λ２−ＣＡＡ：配列番号３１）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＣＴＡ−３’（λ２−ＣＴＡ：配列番号３２）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＣＧＡ−３’（λ２−ＣＧＡ：配列番号３３）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＡＡＡ−３’（λ２−ＡＡＡ：配列番号２５）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＡＴＡ−３’（λ２−ＡＴＡ：配列番号２６）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＡＧＡ−３’（λ２−ＡＧＡ：配列番号２７）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＴＡＡ−３’（λ２−ＴＡＡ：配列番号２８）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＴＴＡ−３’（λ２−ＴＴＡ：配列番号２９）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＴＧＡ−３’（λ２−ＴＧＡ：配列番号３０）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＣＡＡ−３’（λ２−ＣＡＡ：配列番号３１）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＣＴＡ−３’（λ２−ＣＴＡ：配列番号３２）
５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＣＧＡ−３’（λ２−ＣＧＡ：配列番号３３）
ここで、上記九種類のプライマーの３’末端塩基Ａは、野生型λＤＮＡの６９７５〜６９９６番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＡ−３’／５’−ＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧＴＧＣＧＣＡＧＡＣＣ−３’（配列番号３４）のうち、５’−ＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧＴＧＣＧＣＡＧＡＣＣ−３’（配列番号３４のアンチセンス鎖）の５’末端塩基Ｔと相補的である。
また、上記九種類のプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列はそれぞれ異なるが、いずれも５’−ＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧＴＧＣＧＣＡＧＡＣＣ−３’（配列番号３４）の５’末端から２番目および３番目の塩基配列５’−ＧＣ−３’と非相補的な関係である。
また、上記九種類のプライマーの３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの配列は、５’−ＴＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧＴＧＣＧＣＡＧＡＣＣ−３’（配列番号３４）の５’末端から４番目の塩基から３’末端の塩基までの配列に対して完全に相補的である。
一方、上記九種類のプライマーの３’末端の三塩基は、変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣの６９７５〜６９９６番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＧＧＴＣＴＧＣＧＣＡＣＣＴＡＴＧＧＣＴＧＣＧ−３’／５’−ＣＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧＴＧＣＧＣＡＧＡＣＣ−３’（配列番号３５）のうち、５’−ＣＧＣＡＧＣＣＡＴＡＧＧＴＧＣＧＣＡＧＡＣＣ−３’（配列番号３５のアンチセンス鎖）の５’末端の三塩基に対して非相補的である（下線部が変異導入部位）。
判別３用プライマー（括弧内は各プライマーの名前）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＡＡＣ−３’（λ３−ＡＡＣ：配列番号３６）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＡＴＣ−３’（λ３−ＡＴＣ：配列番号３７）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＡＧＣ−３’（λ３−ＡＧＣ：配列番号３８）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＴＡＣ−３’（λ３−ＴＡＣ：配列番号３９）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＴＴＣ−３’（λ３−ＴＴＣ：配列番号４０）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＴＧＣ−３’（λ３−ＴＧＣ：配列番号４１）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＣＡＣ−３’（λ３−ＣＡＣ：配列番号４２）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＣＴＣ−３’（λ３−ＣＴＣ：配列番号４３）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＣＧＣ−３’（λ３−ＣＧＣ：配列番号４４）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＡＡＣ−３’（λ３−ＡＡＣ：配列番号３６）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＡＴＣ−３’（λ３−ＡＴＣ：配列番号３７）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＡＧＣ−３’（λ３−ＡＧＣ：配列番号３８）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＴＡＣ−３’（λ３−ＴＡＣ：配列番号３９）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＴＴＣ−３’（λ３−ＴＴＣ：配列番号４０）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＴＧＣ−３’（λ３−ＴＧＣ：配列番号４１）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＣＡＣ−３’（λ３−ＣＡＣ：配列番号４２）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＣＴＣ−３’（λ３−ＣＴＣ：配列番号４３）
５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＣＧＣ−３’（λ３−ＣＧＣ：配列番号４４）
ここで、上記九種類のプライマーの３’末端塩基Ｃは、野生型λＤＮＡの７０１９〜７０４０番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＧＣＣ−３’／５’−ＧＧＣＡＧＡＧＧＣＧＴＴＡＡＴＧＣＣＴＴＣＧ−３’（配列番号４５）のうち、５’−ＧＧＣＡＧＡＧＧＣＧＴＴＡＡＴＧＣＣＴＴＣＧ−３’（配列番号４５のアンチセンス鎖）の５’末端塩基Ｇと相補的である。
また、上記九種類のプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列はそれぞれ異なるが、いずれも５’−ＧＧＣＡＧＡＧＧＣＧＴＴＡＡＴＧＣＣＴＴＣＧ−３’（配列番号４５）の５’末端から２番目および３番目の塩基配列５’−ＧＣ−３’と非相補的な関係である。
また、上記九種類のプライマーの３’末端から４番目の塩基から５’末端の塩基までの配列は、５’−ＧＧＣＡＧＡＧＧＣＧＴＴＡＡＴＧＣＣＴＴＣＧ−３’（配列番号４５）の５’末端から４番目の塩基から３’末端の塩基までの配列に対して完全に相補的である。
一方、上記九種類のプライマーの３’末端の三塩基は、変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡの７０１９〜７０４０番目からなる二本鎖ＤＮＡ配列５’−ＣＧＡＡＧＧＣＡＴＴＡＡＣＧＣＣＴＣＴＧＣＴ−３’／５’−ＡＧＣＡＧＡＧＧＣＧＴＴＡＡＴＧＣＣＴＴＣＧ−３’（配列番号４６）のうち、５’−ＡＧＣＡＧＡＧＧＣＧＴＴＡＡＴＧＣＣＴＴＣＧ−３’（配列番号４６のアンチセンス鎖）の５’末端の三塩基に対して非相補的である（下線部が変異導入部位）。
リバースプライマーとしては判別１、判別２、判別３のいずれにおいても、実施例１および比較例１と同様に５’−ＧＡＡＴＣＡＣＧＧＴＡＴＣＣＧＧＣＴＧＣＧＣＴＧＡ−３’ （配列番号９）からなるＤＮＡを用いた。
以上のフォワードプライマーおよびリバースプライマーを用い、判別１、判別２、判別３のために、以下のＰＣＲ反応液を調製した。
判別１用ＰＣＲ反応液
・Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
・１０μｇ／ｍＬの野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ、
・１μＭの上記判別１用プライマーのいずれか
・１μＭの上記リバースプライマー
・１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬ。
・Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
・１０μｇ／ｍＬの野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ、
・１μＭの上記判別１用プライマーのいずれか
・１μＭの上記リバースプライマー
・１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬ。
判別２用ＰＣＲ反応液
・Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
・１０μｇ／ｍＬの野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ、
・１μＭの上記判別２用プライマーのいずれか
・１μＭの上記リバースプライマー
・１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬ。
・Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
・１０μｇ／ｍＬの野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ、
・１μＭの上記判別２用プライマーのいずれか
・１μＭの上記リバースプライマー
・１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬ。
判別３用ＰＣＲ反応液
・Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
・１０μｇ／ｍＬの野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ、
・１μＭの上記判別３用プライマーのいずれか
・１μＭの上記リバースプライマー
・１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬ。
・Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ−ＦａｓｔＳｔａｒｔ ＤＮＡ Ｍａｓｔｅｒ ＳＹＢＥＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉキット（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）の酵素ミクスチャーを２μＬ
・１０μｇ／ｍＬの野生型λＤＮＡあるいは変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ、
・１μＭの上記判別３用プライマーのいずれか
・１μＭの上記リバースプライマー
・１．６ｍＭのＭｇＣｌ２
を含む反応溶液２０μＬ。
上記の各ＰＣＲ反応溶液をロシュ・ダイアグノスティクス社製サーマルサイクラーであるＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒを用いて、変性工程：９４℃、１０秒間、アニーリング工程：５８℃、１０秒間、伸長工程：７２℃、１０秒間、サイクル数：２０サイクルとしてＰＣＲ反応を行った。
反応後の目的ＰＣＲ産物濃度については、アジレント・テクノロジーズ社製のＤＮＡ電気泳動用システムであるＢｉｏａｎａｌｙｚｅｒ２１００を用いて解析した。
解析結果より得られた濃度値はさらに下記のように計算処理がなされた。
すなわち、まず判別１、判別２および判別３それぞれにおいて最も高濃度の目的ＰＣＲ産物が得られたのは、テンプレートとしては野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてはそれぞれλ１−ＡＴＧ（判別１の場合）、λ２−ＴＴＡ（判別２の場合）、λ３−ＴＧＣ（判別３の場合）を用いた場合であったので、各判別においてこれらの場合における目的ＰＣＲ産物濃度を１００％としたときのそれぞれの場合における目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）を下記の計算式１、計算式２および計算式３にしたがって算出した。
計算式１
判別１における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ１−ＡＴＧを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
判別１における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ１−ＡＴＧを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
計算式２
判別２における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ２−ＴＴＡを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
判別２における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ２−ＴＴＡを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
計算式３
判別３における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ３−ＴＧＣを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
判別３における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ３−ＴＧＣを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
同様に、実施例１および比較例１についても下記の計算式４によって目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）を求めた。すなわち、実施例１および比較例１においては、テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ−ＡＴＴを用いた場合に最高濃度の目的ＰＣＲ産物が得られたために、これを１００％としたときのそれぞれの場合における目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）を算出した。
計算式４
実施例１および比較例１における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ−ＡＴＴを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
実施例１および比較例１における各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）＝１００×（各目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））／（テンプレートとして野生型λＤＮＡを用い、フォワードプライマーとしてλ−ＡＴＴを用いたときの目的ＰＣＲ産物濃度（ｎＭ））
さらに次に、上記計算式１〜４から得られた各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）について、テンプレートとして野生型λＤＮＡを用いた中で、各フォワードプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列が同じものどうしでその平均値を求めた。同様に、テンプレートとして変異型λＤＮＡを用いた中で、各フォワードプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列が同じものどうしの各目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値を求めた。
したがって、以下の１８種類の平均値が求められた。
平均値１
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＡＡＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＡＡＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＡＡＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＡＡＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＡＡＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＡＡＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＡＡＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＡＡＣ）
平均値２
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＡＡＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＡＡＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＡＡＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＡＡＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＡＡＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＡＡＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＡＡＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＡＡＣ）
平均値３
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＡＴＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＡＴＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＡＴＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＡＴＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＡＴＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＡＴＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＡＴＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＡＴＣ）
平均値４
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＡＴＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＡＴＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＡＴＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＡＴＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＡＴＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＡＴＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＡＴＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＡＴＣ）
平均値５
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＡＧＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＡＧＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＡＧＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＡＧＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＡＧＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＡＧＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＡＧＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＡＧＣ）
平均値６
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＡＧＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＡＧＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＡＧＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＡＧＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＡＧＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＡＧＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＡＧＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＡＧＣ）
平均値７
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＴＡＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＴＡＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＴＡＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＴＡＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＴＡＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＴＡＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＴＡＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＴＡＣ）
平均値８
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＴＡＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＴＡＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＴＡＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＴＡＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＴＡＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＴＡＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＴＡＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＴＡＣ）
平均値９
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＴＴＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＴＴＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＴＴＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＴＴＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＴＴＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＴＴＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＴＴＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＴＴＣ）
平均値１０
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＴＴＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＴＴＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＴＴＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＴＴＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＴＴＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＴＴＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＴＴＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＴＴＣ）
平均値１１
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＴＧＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＴＧＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＴＧＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＴＧＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＴＧＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＴＧＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＴＧＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＴＧＣ）
平均値１２
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＴＧＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＴＧＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＴＧＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＴＧＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＴＧＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＴＧＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＴＧＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＴＧＣ）
平均値１３
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＣＡＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＣＡＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＣＡＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＣＡＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＣＡＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＣＡＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＣＡＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＣＡＣ）
平均値１４
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＣＡＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＣＡＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＣＡＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＣＡＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＣＡＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＣＡＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＣＡＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＣＡＣ）
平均値１５
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＣＴＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＣＴＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＣＴＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＣＴＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＣＴＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＣＴＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＣＴＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＣＴＣ）
平均値１６
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＣＴＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＣＴＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＣＴＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＣＴＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＣＴＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＣＴＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＣＴＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＣＴＣ）
平均値１７
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＣＧＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＣＧＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＣＧＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＣＧＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（野生型λＤＮＡ／λ−ＣＧＴ）
（野生型λＤＮＡ／λ１−ＣＧＧ）
（野生型λＤＮＡ／λ２−ＣＧＡ）
（野生型λＤＮＡ／λ３−ＣＧＣ）
平均値１８
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＣＧＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＣＧＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＣＧＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＣＧＣ）
以下の四種類の（テンプレート／フォワードプライマー）の組み合わせにおける目的ＰＣＲ産物比較濃度（％）の平均値。
（変異型λＤＮＡ−７２３５−ＡＴ／λ−ＣＧＴ）
（変異型λＤＮＡ−７００７−ＡＴ／λ１−ＣＧＧ）
（変異型λＤＮＡ−６９９６−ＧＣ／λ２−ＣＧＡ）
（変異型λＤＮＡ−７０４０−ＴＡ／λ３−ＣＧＣ）
これら平均値について図７にまとめた。
これよりまず、テンプレートとして変異型λＤＮＡを用いた平均値（平均値２、４、６、８、１０、１２、１４、１６および１８）については、総じて小さいことが分かる。すなわち、各フォワードプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列に関係なく判別のためのＰＣＲ反応は抑制されたことが分かる。
一方で、テンプレートとして野生型λＤＮＡを用いた平均値（平均値１、３、５、７、９、１１、１３、１５および１７）は、それぞれ対となる、各フォワードプライマーの３’末端から２番目および３番目の塩基配列が同じでテンプレートとして変異型λＤＮＡを用いた場合の平均値（１に対しては２、３に対しては４、５に対しては６、７に対しては８、９に対しては１０、１１に対しては１２、１３に対しては１４、１５に対しては１６、１７に対しては１８）と比べて優位に大きい。そしてさらに詳細にみると、特に３’末端から２番目および３番目の塩基配列が５’−ＡＴ−３’、５’−ＡＧ−３’、５’−ＴＴ−３’、５’−ＴＧ−３’、５’−ＣＴ−３’、５’−ＣＧ−３’であるフォワードプライマーを用いた場合において、他のプライマーを用いた場合よりも明らかに、野生型λＤＮＡと変異型λＤＮＡ間の平均値の差が大きいことが分かる。
すなわちこのことより、標的ＳＮＰ塩基の３’末端側にすぐ隣接する塩基がＧであり、もう一塩基隣の塩基がＣである場合には、アレル特異性プライマーの３’末端から２番目の塩基がＴかＧであり、３番目の塩基がＡかＴかＣのいずれかであれば、非常に高い判別能を得ることができることが分かる。
本発明により、擬陽性の可能性が極めて低く、かつ明確にＳＮＰ判別が可能なＤＮＡが有する標的ＳＮＰ塩基を判別する方法が提供される。
１：従来技術におけるアレル特異性プライマー
２：従来技術におけるテンプレートＤＮＡ
３：本発明におけるアレル特異性プライマー
４：本発明におけるテンプレートＤＮＡ
２：従来技術におけるテンプレートＤＮＡ
３：本発明におけるアレル特異性プライマー
４：本発明におけるテンプレートＤＮＡ
Claims (8)
- ＤＮＡが有する標的塩基を判別する方法であって、
前記方法は、
（１） Ａ、Ｔ、Ｇ、およびＣの４種類の塩基の中から前記標的塩基として予想される塩基と相補的な塩基を３’末端に有するアレル特異性プライマーを前記ＤＮＡに結合させてＤＮＡ伸長反応を生じさせるＤＮＡ伸長工程、および
（２） 前記ＤＮＡ伸長工程の効率を調べ、高効率であれば前記標的塩基は前記予想された塩基と同一であると判別され、低効率であれば前記標的塩基は前記予想された塩基とは異なると判別される判別工程
を有し、
前記ＤＮＡにおいて、前記標的塩基の３’末端側にすぐ隣接する塩基がＧであり、もう一塩基隣の塩基がＣであり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端塩基が前記標的塩基であると予想される塩基と相補的であり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端から２番目の塩基がＴかＧであり、
前記アレル特異性プライマーの３’末端から３番目の塩基がＡかＴかＣのいずれかであり、かつ
前記アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基と５’末端の塩基との間の塩基配列が、前記アレル特異性プライマーの３’末端から４番目の塩基に対応する前記ＤＮＡ側の塩基と前記アレル特異性プライマーの５’末端の塩基に対応する前記ＤＮＡ側の塩基との間の塩基配列に相補的に結合する、方法。 - 前記ＤＮＡ伸長反応がプライマー伸長反応である、請求項１に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ伸長反応が、前記アレル特異性プライマーのみからのプライマー伸長反応である、請求項１に記載の方法。
- 前記プライマー伸長反応により産生されるピロリン酸の濃度を調べることによって前記効率を調べる、請求項２に記載の方法。
- 前記ピロリン酸の濃度を発光強度として検出する、請求項４に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ伸長反応がＰＣＲ反応である、請求項１に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ伸長反応が、前記アレル特異性プライマーともう一つの異なるプライマーからなるＰＣＲ反応である、請求項１に記載の方法。
- 前記ＰＣＲ反応により産生された増幅ＤＮＡの濃度を、電気泳動法により測定することによって前記効率を調べる、請求項６に記載の方法。
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