JP3831754B2 - トキソプラズマ・ゴンディ抗原、これをコードする核酸並びに該抗原に対する抗体 - Google Patents
トキソプラズマ・ゴンディ抗原、これをコードする核酸並びに該抗原に対する抗体 Download PDFInfo
- Publication number
- JP3831754B2 JP3831754B2 JP2000066080A JP2000066080A JP3831754B2 JP 3831754 B2 JP3831754 B2 JP 3831754B2 JP 2000066080 A JP2000066080 A JP 2000066080A JP 2000066080 A JP2000066080 A JP 2000066080A JP 3831754 B2 JP3831754 B2 JP 3831754B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- toxoplasma gondii
- antigen
- amino acid
- antibody
- protein
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規なトキソプラズマ・ゴンディ(Toxoplasma gondii)抗原、該抗原をコードする核酸、該核酸を含む組換えベクター、該抗原に対する抗体及び該抗原又は該抗体を用いて抗トキソプラズマ・ゴンディ抗体又はトキソプラズマ・ゴンディ抗原を免疫測定する方法に関する。本発明はトキソプラズマ・ゴンディによる感染症の診断に利用することができる。
【0002】
【従来の技術】
現在、トキソプラズマ虫体の各型に特異的な抗原に関して、幾つかの抗原領域について明確化されているが、増殖型虫体特異的抗原として116、78、64、61、54、52、42、30、24、6KDa蛋白質が知られている。また、シスト型虫体特異的抗原としては、36、34、21、18KDa蛋白質が知られている。さらに、スポロゾイト特異的抗原としては、25、67KDaが存在する。これら様々な抗原の中でトキソプラズマ症に於ける病変は増殖型虫体の増殖が原因で発生することから臨床的側面から現存している各種抗トキソプラズマ特異抗体検出試薬は増殖型虫体抗原を使用している例が多く存在する。また、最近では、分子生物学的な手法を用いて増殖型虫体抗原の一つであるトキソプラズマ膜抗原であるP30を大腸菌発現やそれらの領域の抗原エピトープを含む合成ペプタイドを用いた試薬も存在している。
【0003】
トキソプラズマは、哺乳類、鳥類の血液、組織の細胞内に寄生する細胞内寄生性原虫であり、広く世界に分布する。その生活史は、終宿主であるネコの粘膜上皮細胞内で有性生殖によってオーシストを生じ便内に排出する。外界に出たオーシストはやがて8個のスポロゾイトを生じ成熟オーシストとなり感染力を持つようになる。成熟オーシストの経口感染によって腸管内でスポロゾイトが遊離して、腸管壁から侵入し、増殖型虫体となり増殖しながら全身に伝播される。
【0004】
トキソプラズマ症の急性期には増殖体によって発熱、リンパ節腫脹の症状を呈し、網脈絡膜炎、肺炎、心筋炎などが起きるが、やがて慢性期に移行すると、脳、リンパ節や筋肉内に嚢子型虫体を包含する嚢子を形成して、ほとんど増殖を止めた状態でおとなしく感染を継続する。
【0005】
トキソプラズマ原虫は、地域、年齢によって異なるが、日本においても数十パーセントから70〜80%の感染率を示す重要な原虫感染疾患である。最も悲惨なトキソプラズマ症は先天性トキソプラズマ症である。
【0006】
AIDSの日和見感染として注目されているトキソプラズマ症は、最近、医原病としての重要性が言われてきている。すなわち未感染の臓器移植患者がトキソプラズマ感染臓器の移植を受ける事により、急性トキソプラズマ症を起こす。臓器移植による拒絶反応を抑える為に使用される免疫抑制剤は、同時に移植患者の感染症に対する免疫反応を低下させ、その結果、感染臓器の移植によって感染した場合のトキソプラズマ症は重症であり、致命的な場合が多い。
【0007】
トキソプラズマ原虫は細胞内寄生によって増殖、生存可能である。感染初期に於け る防御免疫の面からはマクロファージ感染が重要である。マクロファージが異物を貪食するとファゴソームを形成し、このファゴソームはやがてリソソームと融合し、ファゴリソソーム(二次リソソーム)になり、プロテアーゼによる酵素分解を行う。細胞内寄生体はこの異物消化機序から逃れられる。
【0008】
トキソプラズマ原虫の場合は、マクロファージに侵入、感染すると、細胞内に侵入したトキソプラズマ原虫によってファゴソーム膜は修飾され、parasite-phorous vacuoleと呼ばれる特異的な細胞内構造物を作り上げる。このparasitophorous vacuole membraneは宿主細胞質膜分子を欠いている。やがて、ロプトリーから分泌された物質によりparasito phorous networkと呼ばれる索状構造物が出来る。これはトキソプラズマ原虫の生存、増殖に必要な栄養、環境の維持に機能しているのだと考えられている。さらに、生存しているトキソプラズマ原虫が感染しているparasitophorous vacuoleはリソソームと融合せす゛プロテアーゼによる攻撃を受けない。一方、死んだトキソプラズマの場合にはマクロファージによって取り込まれた液胞(ファゴソーム)はリソソームと融合し酵素消化を受ける。
【0009】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、従来知られていない新規なトキソプラズマ・ゴンディ抗原を提供することである。また、本発明の目的は、本発明の新規トキソプラズマ・ゴンディ抗原をコードする核酸、該核酸を含む組換えベクター、該抗原に対する抗体及び該抗原又は該抗体を用いて抗トキソプラズマ・ゴンディ抗体又はトキソプラズマ・ゴンディ抗原を免疫測定する方法を提供することである。
【0010】
【課題を解決するための手段】
本願発明者は、鋭意研究の結果、トキソプラズマ・ゴンディには、ヒトhsp70蛋白質(Hunt, C., and R.I. Morimoto. 1985. Conserved features of eukaryotic hsp70 genes revealed by comparison with the nucleotide sequence of human hsp70. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 82; 6455-6459)にある程度類似した新規な抗原が存在することを見出し、該抗原をコードするDNAのクローニング及び発現並びに該抗原の精製に成功し、本発明を完成した。
【0011】
すなわち、本発明は、配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸残基が置換され、欠失され、挿入され及び/又は付加されたアミノ酸配列であって、トキソプラズマ・ゴンディに特異的な抗原性を発揮するアミノ酸配列から成る、トキソプラズマ・ゴンディ抗原を提供する。また、本発明は、上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原をコードする核酸を提供する。さらに、本発明は、上記本発明の核酸を含み、宿主細胞中で上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原を発現することができる組換えベクターを提供する。さらに、本発明は、上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原に対する抗体を提供する。
【0012】
【発明の実施の形態】
下記実施例において精製された、本発明の新規トキソプラズマ・ゴンディ抗原の好ましい一例は、配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列を有する。
【0013】
なお、一般に、タンパク質抗原において、該タンパク質のアミノ酸配列のうち少数のアミノ酸残基が置換し若しくは欠失し、又は少数のアミノ酸残基が挿入若しくは付加された場合であっても、元のタンパク質とほぼ同じ抗原性を有している場合があることは当業者において広く知られている。従って、配列番号1に示されるアミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸残基が置換され、欠失され、挿入され及び/又は付加されたアミノ酸配列を有し、かつ、トキソプラズマ・ゴンディに特異的な抗原性を発揮するアミノ酸配列から成る抗原も本発明の範囲に含まれる。なお、ここで、「トキソプラズマ・ゴンディに特異的な抗原性」とは、配列番号1で示されるアミノ酸配列から成るタンパク質に対する抗体と特異的に抗原抗体反応を行うことを意味する。
【0014】
また、本発明は、上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原をコードする核酸を提供する。下記実施例においてクローニングされた、配列番号1で示されるアミノ酸配列を有するトキソプラズマ・ゴンディ抗原をコードするDNAの塩基配列が、そのコードする推定アミノ酸配列とともに配列表の配列番号2に示されている。なお、配列番号2に示されるアミノ酸配列は配列番号1に示されるアミノ酸配列と同じである。なお、上記した本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原(配列番号1のアミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入及び/又は付加されたものを包含する)をコードするいずれの核酸も本発明の範囲内に含まれる。
【0015】
さらに、本発明は、上記本発明の核酸を含み、宿主細胞中で上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原を発現することができる組換えベクターを提供する。この組換えベクターは、宿主中での複製を可能にする複製開始点と、プロモーターと、該プロモーターの下流にクローニング部位とを少なくとも有する発現ベクターのクローニング部位に上記本発明の核酸を挿入、連結することにより作製することができる。上記のような発現ベクターは、この分野において周知であり、種々のものが市販されている。本発明の組換えベクターは、このような市販の発現ベクターのマルチクローニング部位に常法により本発明の核酸を挿入、連結することにより容易に作製することができる。なお、下記実施例に組換えベクター作製の手順の一例が具体的に記載されている。
【0016】
本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原は、上記の組換えベクターで常法により宿主細胞を形質転換し、得られた形質転換体から目的のタンパク質を精製することにより得ることができる。組換えベクター中に挿入される核酸は、下記実施例において具体的に記載する方法によっても作製することができるし、また、該核酸の塩基配列が本発明により明らかにされているので、トキソプラズマ・ゴンディ細胞から常法であるRT−PCR法により容易に作製することもできる。
【0017】
本発明はさらに、上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原に対する抗体を提供する。この抗体は、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよいが、免疫測定に用いた場合の測定結果の信頼性の観点からモノクローナル抗体がより好ましい。ポリクローナル抗体もモノクローナル抗体も常法により得ることができる。すなわち、ポリクローナル抗体は、上記抗原を常法により動物に免疫し、抗血清として又は抗血清からさらに精製することにより得ることができる。また、モノクローナル抗体は、上記抗原を常法により動物に免疫し、脾細胞又はリンパ球を回収してミエローマ細胞と常法により融合し、融合細胞を選択し、上記抗原と抗原抗体反応を行うモノクローナル抗体を産生しているクローンを選択し、該クローンを培養してモノクローナル抗体を回収することにより得ることができる。なお、モノクローナル抗体の作製方法の一例が下記実施例に具体的に記載されている。
【0018】
本発明はさらに、上記本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原又は上記本発明の抗体を用いて検体中の抗トキソプラズマ・ゴンディ抗体又はトキソプラズマ・ゴンディ抗原を免疫測定する方法を提供する。免疫測定方法自体はこの分野において周知であり、種々の方式のものが知られているが、そのいずれの方式をも採用することができる。すなわち、例えば、反応形式により分類すると、サンドイッチ法、競合法、凝集法等があるが、これらのいずれであってもよく、また、用いる標識の種類により分類すると、酵素免疫測定法、放射免疫測定法、蛍光免疫測定法、ビオチン免疫測定法等があるがこれらのいずれであってもよい。要するに、本発明のトキソプラズマ・ゴンディ抗原と、検体中の抗トキソプラズマ・ゴンディ抗体との抗原抗体反応を利用して検体中の抗トキソプラズマ・ゴンディ抗体を測定する免疫測定方法、及び本発明の抗体と、検体中のトキソプラズマ・ゴンディ抗原との抗原抗体反応を利用して検体中のトキソプラズマ・ゴンディ抗原を測定する免疫測定方法は全て本発明の範囲に含まれる。
【0019】
本発明の免疫測定方法の対象となる検体としては、トキソプラズマ・ゴンディによる感染が疑われる人の血液や血清等の体液が挙げられるがこれらに限定されるものではない。
【0020】
【実施例】
以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
【0021】
実施例1
トキソプラズマ・ゴンディのhsp70様蛋白質をコードする遺伝子のクローニング
MOSEI cDNAライブラリー作製キット(Amersham LIFE SCIENCE社より市販)を用い、トキソプラズマ・ゴンディRH株のtayzoiteから分離したpoly(A)+RNAから構成されたcDNAを作製した。これらのcDNAライブラリーに対してヒトのhsp70 DNAを放射性核種である(32P)で標識したプローブ(ATCC受託番号57494ヒトgDNA由来)を用いてクロスハイブリダイゼーション法によってヒトhsp70遺伝子領域と特異的に反応するトキソプラズマ・ゴンディ遺伝子のスクリーニングを行った。ハイブリダイゼーション時に使用したハイブリダイゼーションバッファー、洗浄バッファーの各組成及び反応温度は次の通りであった。すなわち、3×SSC、5×デンハート液、50mMトリスベース(pH7.5)、1mM EDTA、0.5% SDS及び60℃で変性した20μg/μlのサケ精子を各々添加してハイブリダイゼーションに用いた。また、0.1×SSC、0.1%SDSを各々添加し、各々60℃で反応及び洗浄を行った。この方法によって1×105個のcDNAクローンからヒトhsp70 DNAプローブに対して特異的に反応する15クローンを取得した。
【0022】
また、これらの15クローンの内最もcDNAのサイズが大きいpTH14クローンをクローニングベクターpBluescript SKII(+)(Stratagene社製)のマル チクローニングサイト内の制限酵素サイトBamHI内に挿入し、クローン化した。
【0023】
実施例2
クローン化DNA:pTH14の塩基配列の決定
塩基配列の決定は、ジェネティックアナライザー310(パーキンエルマー社製)を使用して行った。この際、シークエンスプライマーの標識には、サイクルシークエンスキットFS(パーキンエルマー社製)を使用しダイターミネーター法により実施した。また、シークエンシングに際しては、合計12個のプライマーを合成し(パーキンエルマー社 ABI DNAシンセサ イザー 391型)プライマーウォーキングによるシークエンシングに供試した。決定された塩基配列を、これがコードする推定アミノ酸配列とともに配列番号2に示す。
【0024】
実施例3 塩基配列のデータ解析
遺伝子塩基配列及びアミノ酸配列の解析は、Genetyx-Mac software( Software development)を用いて行った。
【0025】
実施例4
組換えトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質の発現と精製
(1)発現ベクターの構築
発現ベクターを構築する際には、pTH14クローンを鋳型としてPCR法を用いてT.gondii hsp70領域を増幅し、発現ベクターpET15b(米国Novagen社より市販)の制限酵素サイトXhoI−BamHI内に再クローニングした。この際、5’末端の転写開始コドンを設定プライマー内から除外する事で削除した。この際目的領域を増幅する為に使用したプライマーを以下に示す。
【0026】
TH: 5'-CGGGATCCTTAACCGAGAGAGAGAGGCGC-3'
T7: 5'-CATCTCGAGCTGGAGACAGCTGGTGGT-3'
【0027】
(2)目的遺伝子の発現及び発現蛋白質の精製
トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質をコードする遺伝子を含む発現ベクター pET15bで形質転換した宿主細胞 Escherichia coli BL21を培養して目的遺伝子の発現を行った。その際、培養液としてLB培地(BIO 101社製)を使用し、抗生物質アンピシリンを50μg/μlになる様に添加した。また、培養温度は37℃で実施した。更に、蛋白質の発現は終濃度1mMのIPTG(ナカライ タスク社製)を添加し、3時間誘導した。
【0028】
(3)発現蛋白質の回収及び精製
5mMイミダゾール、0.5M NaCl、20mM Tris(pH8.0)10mlに発現抗原を浮遊させ、超音波破砕装置(オリンパス社製)によって200W、5分、0℃の条件で細胞を破砕した。次に、これらの細胞破砕物を除外する為に12000rpm、10分、4℃の条件で遠心沈殿した。
【0029】
次に、細胞破砕物を結合バッファ中(60mM イミダゾール、0.5M NaCl、20mM Tris−HCl pH8.0)でホモジナイズした。遠心沈殿後の上清をニッケルキレートカラム精製の為にProbond column(Invitrogen、San Diego、CA)に10mlアプライした。次に、Probond columnを洗浄バッファー(60mMイミダゾール、0.5M NaCl、20mM Tris−HCl pH8.0)4mlで2回洗浄した。
【0030】
そして最終的にカラムに結合した精製発現蛋白質は、溶出バッファー(1Mイミダゾール、0.5M NaCl、20mM Tris−HCl)5mlを用いて溶出した。これらの蛋白質は、セントリプレップ−30(アミコン社製)濃縮器を用いて遠心濃縮した。その結果、これらの組換え蛋白質の収量は、1Lの培養で約1mgであった。更に、これらの精製済み発現蛋白質の精製度は、クマシーブリリアントブルー蛋白質染色で76KDa,46KDa,31KDaの三本のメジャーなバンドとして確認出来た。
【0031】
実施例5
トキソプラズマ・ゴンディhsp70様組換え精製蛋白質の抗原性の確認
実施例4で精製した組換えトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質を用いてその免疫学的な特異性について臨床材料を用いてウエスタンブロッティングによる抗原解析を行った。この操作の具体的な手順は次の通りであった。すなわち、組換えトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質1μgを10%SDS−ポリアクリラマイドゲルで電気泳動した後、ニトロセルロース膜へ再び電気泳動によって転写した。ニトロセルロース膜の活性基を脱脂粉乳液(明治乳業製)でコートした後、リン酸緩衝液(0.01 M, pH7.2)で100倍に希釈した血清検体1mlで室温2時間反応させた後、リン酸緩衝液(0.01 M, pH7.2)で4回洗浄した。その後、パーオキシダーゼ結合抗ヒト免疫グロブリン抗体(Amersham製)を反応させ、ECLキット(Amersham製)にてフィルム(フジフィルム)に感光させた。
【0032】
その結果、各種特異抗体の検出状況とウエスタンブロッティングの結果が完全に一致する結果となった。結果を下記表1に示す。
【0033】
【表1】
*:イムノグロブリンクラスIgG及びIgM抗体使用
【0034】
実施例6
トキソプラズマ・ゴンディhsp70様精製発現蛋白質を用いた抗体の作製
トキソプラズマ・ゴンディHR株のTachyzoitesは、ヒトB細胞系ARHで生成した。また、トキソプラズマ・ゴンディFUKAYA株は、B10.A(4R)マウスで生成した。
【0035】
(1)抗トキソプラズマ・ゴンディhsp70様タンパク質モノクローナル抗体の作製
BALB/cマウスに対して、200μg/mlの精製組換えトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質をFreundの完全アジュバントと1:1で混合し、体幹部皮下の3ヶ所に対して各々0.25ml接種し初回免疫を実施した。次に、2週間後、初回免疫時同様の抗原を用いてFreundの不完全アジュバントによって誘導免疫を行った。この際のアジュバントと抗原の混合比、接種容量及び接種部位は初回免疫時と同様である。
【0036】
さらに、誘導免疫以後3日後にハイブリドーマ作製のためマウス脾臓細胞を取り出し細胞融合装置SSH−1型(島津製作所社製、京都)を用いてBALB/cマウス由来SP2ミエローマ細胞と融合した。なお、摘出された脾臓細胞はケラーらの方法(Kohler et al.,Nature, vol.256,p495-497(1975))により実施した。
【0037】
さらに、融合細胞は、HAT選択培地(ベーリンガーマンハイム社製)で中2日ごとに2回に亘り細胞選択を行った。この際の培養上清から、ELISAによって抗トキソプラズマ・ゴンディhsp 70様タンパク質モノクローナル抗体の存在を確認した。陽性ハイブリドーマ細胞は、限界希釈法によってクローニングを行った。また、ヒト hsp70に対して非特異的な反応を示すモノクローナル抗体については、ポリエチレングリコールを用いた細胞融合方法を使用した事を除き他は同様の方法によって選択した。さらに、取得した腹水は、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィーによってIgGを精製しモノクロナール抗体とした。
【0038】
(2)ELISAの構築
上記の工程で行なったELISAは次ぎのように行なった。ELISAは、Current Protocols in immunology 1997, vol. 1, 2.1.2-2.1.20に従い構築した。すなわち、平底マイクロタイタープレート(Dynatech社製、Zug、スイス国)に2μg/mlの濃度にPBS(−)で調整した精製組換えトキソプラズマ・ゴンディhsp70様発現 蛋白質を固相した。固相条件は、4℃で12時間以上静置した。前述の固相プレートは、ブロッキング液(0.05%Tween20加ホウ酸バッファー、1mM EDTA、0.25% BSA、0.05%NaN3)を用いてブロッキングを行った。ブロッキングの条件は、4℃で一夜静置した。
【0039】
以下にこれらの条件で作製した抗トキソプラズマ・ゴンディIgG抗体ELISAの行程を示す。
【0040】
1.非検血清及び培養上清を適宜希釈した後各ホール内へ100μl滴下し、むらなく免疫反応が起こる様に振とうした後静置して常温(15〜25℃)で1時間インキュベートした。
【0041】
2.1.の操作の後、洗浄液(0.05% Tween20、1.4mMリン酸二水素カリウム3.6mM リン酸水素二ナトリウム・12水和物、146mM 塩化ナトリウム)を用いて3回洗浄後、2000倍希釈アルカリフォスファターゼ標識抗マウスIgGコンジュゲート(Tago、Camarillo、CA)を100μl各ホール内に分注し振とうした後常温で1時間インキュベートした。
【0042】
3.2.の操作後、前出同一の洗浄液にて3回洗浄後、1mM p−ニトロフェニルリン酸を各ホールに100μl分注した後、振とうし、常温暗所で30分間発色させる。その後1.5N硫酸 100μlを添加し反応を停止した。
【0043】
4.発色済みプレートは492nmの波長を用いて吸光度の測定を行った。
【0044】
実施例7
トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質に対するIgG抗体(ヒト)検出酵素免疫測定法の構築
平底マイクロタイタープレート(Dynatech社製、Zug、スイス国)に10μg蛋白/mlの濃度に0.01MPBS(pH7.0)で調整した精製組み換えトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質を50μl固相した。 固相条件は、4℃で一晩静置した。 前述のプレートは、ブロッキング液(0.2%BSA、0.1%Tween20加、0.01MPBS(pH7.0))200μlを用いてブロッキングを行った。ブロッキングの条件は常温(15〜25℃)2時間静置した。ブロッキング後洗浄液(ブロッキング液と同様のもの)200μlで3回洗浄した。
【0045】
以下にこれらの条件で作製した抗トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質IgG抗体(ヒト)酵素免疫測定法の行程を示す。
【0046】
1. 0.01MPBS(pH7.0)で100倍に希釈した被検血清及び髄液50μlを各ホール内へ滴下し、むらなく免疫反応が起きるように振とうした後静置して常温で2時間インキュベートした。
【0047】
2. 1.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.01MPBS(pH7.0)で1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識抗ヒトIgG(Tago社製)50μlを各ホール内に分注し振とうした後常温で2時間インキュベートした。
【0048】
3. 2.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.05M炭酸ナトリウム及び0.5mM塩化マグネシウムの入った溶液で3mMとなるように希釈したp−ニトロフェニルリン酸100μlを各ホール内に分注し振とうした後常温で30〜60分間インキュベートした。
【0049】
4. 反応終了後405nmの波長を用いて吸光度の測定を行った。このときODが0.110以下を陰性、0.200以上を陽性、0.110〜0.200を判定保留とした。
【0050】
5.結果を表2に示す。
【0051】
【表2】
【0052】
6. これらは水頭症のなかで、血清でのトキソプラズマ・ゴンディ特異IgM抗体の検出、胎盤でのPCR法によるトキソプラズマ・ゴンディ特異DNAの検出により先天性トキソプラズマ症と診断した症例で、健常人2例に比べて先天性トキソプラズマ症新生児やその母はODが高く、トキソプラズマ・ゴンディ感染急性期及び治療効果判定のマーカーとして有用である。
【0053】
実施例8 トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質の検出酵素免疫測定法の構築
平底マイクロタイタープレート(Dynatech社製、Zug、スイス国)に10μg蛋白/mlの濃度に0.01MPBS(pH7.0)で調整したトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質に対するモノクローナル抗体を100μl固相した。 固相条件は、4℃で一晩静置した。 前述のプレートは、ブロッキング液(0.2%BSA、0.1%Tween20加、0.01MPBS(pH7.0))200μlを用いてブロッキングを行った。ブロッキングの条件は、常温(15〜25℃)2時間静置した。ブロッキング後洗浄液(ブロッキング液と同様のもの)200μlで3回洗浄した。
【0054】
以下にこれらの条件で作製したトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質検出の酵素免疫測定法の行程を示す。
【0055】
1. 0.01MPBS(pH7.0)で10倍に希釈した被検血清及び髄液100μlを各ホール内へ滴下し、むらなく免疫反応が起きるように振とうした後静置して常温で1時間インキュベートした。
【0056】
2. 1.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.01MPBS(pH7.0)で希釈したビオチン標識トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質50μl(0.1μg蛋白)を各ホール内に分注し振とうした後常温で2時間インキュベートした。
【0057】
3.2.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.01MPBS(pH7.0)で希釈したアルカリフォスファターゼ標識アビジン(1μg/ml Sigma製、Mo、米国)100μlを各ホール内に分注し振とうした後常温で30分間インキュベートした。
【0058】
4.3.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.05M炭酸ナトリウム及び0.5mM塩化マグネシウムの入った溶液で3mMとなるように希釈したp−ニトロフェニルリン酸100μlを各ホール内に分注し振とうした後常温で30〜60分間インキュベートした。
【0059】
5.反応終了後405nmの波長を用いて吸光度の測定を行った。このときODが1.000以上を陰性、0.800以下を陽性、0.800〜1.000を判定保留とした。
【0060】
6.結果を表3に示す。
【0061】
【表3】
【0062】
7.これらは水頭症のなかで、血清でのトキソプラズマ・ゴンディ特異IgM抗体の検出、胎盤でのPCR法によるトキソプラズマ・ゴンディ特異DNAの検出により先天性トキソプラズマ症と診断した症例で、健常人2例に比べて先天性トキソプラズマ症新生児やその母はODが低く、トキソプラズマ・ゴンディ感染急性期及び治療効果判定のマーカーとして有用である。
【0063】
実施例9 トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質の検出酵素免疫測定法の構築
平底マイクロタイタープレート(Dynatech社製、Zug、スイス国)に10μg蛋白/mlの濃度に0.01MPBS(pH7.0)で調整したトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質に対するモノクローナル抗体(YA−1)を100μl固相した。 固相条件は、4℃で一晩静置した。 前述のプレートは、ブロッキング液(0.2%BSA、0.1%Tween20加、0.01MPBS(pH7.0))200μlを用いてブロッキングを行った。ブロッキングの条件は、常温(15〜25℃)2時間静置した。ブロッキング後洗浄液(ブロッキング液と同様のもの)200μlで3回洗浄した。
【0064】
以下にこれらの条件で作製したトキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質検出の酵素免疫測定法の行程を示す。
【0065】
1.0.01MPBS(pH7.0)で10倍に希釈した被検血清及び髄液100μlを各ホール内へ滴下し、むらなく免疫反応が起きるように振とうした後静置して常温で1時間インキュベートした。
【0066】
2.1の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後0.01MPBS(pH7.0)で希釈したビオチン標識トキソプラズマ・ゴンディhsp70様蛋白質に対するモノクローナル抗体(YA−2)50μl(0.1μg蛋白/ml)を各ホール内に分注し振とうした後常温で2時間インキュベートした。
【0067】
3.2.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.01MPBS(pH7.0)で希釈したアルカリフォスファターゼ標識アビジン(1μg/ml Sigma製、Mo、米国)100μlを各ホール内に分注し振とうした後常温で30分間インキュベートした。
【0068】
4.3.の操作の後、洗浄液200μlを用いて2回、蒸留水200μlで1回洗浄後、0.05M炭酸ナトリウム及び0.5mM塩化マグネシウムの入った溶液で3mMとなるように希釈したp−ニトロフェニルリン酸100μlを各ホール内に分注し振とうした後常温で30〜60分間インキュベートした。
【0069】
5.反応終了後405nmの波長を用いて吸光度の測定を行った。このときODが0.150以下を陰性、0.500以上を陽性、0.150〜0.500を判定保留とした。
【0070】
6.結果を表4に示す。
【0071】
【表4】
【0072】
7.これらは水頭症のなかで、血清でのトキソプラズマ・ゴンディ特異IgM抗体の検出、胎盤でのPCR法によるトキソプラズマ・ゴンディ特異DNAの検出により先天性トキソプラズマ症と診断した症例で、健常人2例に比べて先天性トキソプラズマ症新生児やその母はODが高く、トキソプラズマ・ゴンディ感染急性期及び治療効果判定のマーカーとして有用である。
【0073】
【発明の効果】
本発明により、新規なトキソプラズマ・ゴンディ抗原が提供された。本発明の方法に従い、この抗原又はこの抗原に対する抗体を免疫測定することにより、トキソプラズマ・ゴンディの感染を診断することができる。特に、本発明の抗原を用いた免疫測定によると、感染初期に生じる抗体を感度良く測定することができる。
【0074】
【配列表】
【0076】
【0077】
【0078】
Claims (8)
- 配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸残基が置換され、欠失され、挿入され及び/又は付加されたアミノ酸配列であって、トキソプラズマ・ゴンディに特異的な抗原性を発揮するアミノ酸配列から成る、トキソプラズマ・ゴンディ抗原。
- 前記トキソプラズマ・ゴンディ抗原は、配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列又はその一部分であってトキソプラズマ・ゴンディに特異的な抗原性を発揮するアミノ酸配列から成る請求項1記載のトキソプラズマ・ゴンディ抗原。
- 配列表の配列番号1に示されるアミノ酸配列から成る請求項2記載のトキソプラズマ・ゴンディ抗原。
- 請求項1ないし3のいずれか1項に記載のトキソプラズマ・ゴンディ抗原をコードする核酸。
- 配列表の配列番号2に示される塩基配列を有する請求項4記載の核酸。
- 請求項4又は5記載の核酸を含み、宿主細胞中で請求項1ないし3のいずれか1項に記載のトキソプラズマ・ゴンディ抗原を発現することができる組換えベクター。
- 請求項1ないし3のいずれか1項に記載のトキソプラズマ・ゴンディ抗原に対する抗体。
- モノクローナル抗体である請求項7記載の抗体。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30926297 | 1997-10-23 | ||
JP9-309262 | 1997-10-23 |
Related Parent Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP32001598A Division JP3336275B2 (ja) | 1997-10-23 | 1998-10-23 | トキソプラズマ・ゴンディ抗原、該抗原に対する抗体及び該抗原又は抗体を用いた免疫測定方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2000300278A JP2000300278A (ja) | 2000-10-31 |
JP3831754B2 true JP3831754B2 (ja) | 2006-10-11 |
Family
ID=17990889
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2000066080A Expired - Fee Related JP3831754B2 (ja) | 1997-10-23 | 2000-03-10 | トキソプラズマ・ゴンディ抗原、これをコードする核酸並びに該抗原に対する抗体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP3831754B2 (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101137674A (zh) | 2005-03-08 | 2008-03-05 | 肯顿有限公司 | 刚地弓形虫的嵌合重组抗原 |
US7432046B2 (en) * | 2005-11-02 | 2008-10-07 | Abbott Laboratories | Methods for the determination of antibody IgG avidity |
-
2000
- 2000-03-10 JP JP2000066080A patent/JP3831754B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2000300278A (ja) | 2000-10-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR100916992B1 (ko) | B형 간염 바이러스 s 항원의 검출법 | |
NO321090B1 (no) | Fremgangsmate for pavisning av naervaer av perinukleaert, antinoytrofilt, cytoplasmatisk antistoff (p-ANC) forbundet med type 1 autoimmunhepatitt og primaer, skleroserende cholangitt i en prove og fremgangsmate for a skille primaer, skleroserende cholangitt fra type 1 autoimmunhepatitt. | |
JPH09502162A (ja) | 三日熱マラリア原虫血液段階抗原、抗体、および診断用分析法 | |
US11714085B2 (en) | Method of detecting Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis | |
US20080138794A1 (en) | Method for detecting or measuring HBV | |
JP4234207B2 (ja) | アレルギー性気管支肺アスペルギルス症の診断方法 | |
US20070141076A1 (en) | Antigen fragments for the diagnosis of Toxoplasma gondii | |
JP3831754B2 (ja) | トキソプラズマ・ゴンディ抗原、これをコードする核酸並びに該抗原に対する抗体 | |
JP3336275B2 (ja) | トキソプラズマ・ゴンディ抗原、該抗原に対する抗体及び該抗原又は抗体を用いた免疫測定方法 | |
JPWO2006073133A1 (ja) | 新規タンナーゼ遺伝子およびそのタンパク質 | |
JP4602084B2 (ja) | 遺伝子操作したp30抗原、改善された抗原カクテル及びそれらの使用 | |
JPWO2006004207A1 (ja) | 抗シノビオリン抗体 | |
JP3987430B2 (ja) | ノーウォークウイルスに対する抗体及びこの抗体を用いたウイルスの検出方法 | |
US11174310B2 (en) | Disulfide-type HMGB1-specific antibody, method for measuring disulfide-type HMGB1 and kit for said measurement, and measurement method capable of quantitating all of HMGB1 molecules including reduced HMGB1, disulfide-type HMGB1 and thrombin-cleavable HMGB1 and kit for said measurement | |
US6855319B1 (en) | Gene encoding merozoite protein of Babesia caballi, recombinant protein obtained therefrom and utilization thereof | |
JP7051096B2 (ja) | ウシプロカルシトニンを特異的に認識する抗体、その抗原結合断片、および、その使用 | |
JP2002267673A (ja) | う蝕性リスクの判定方法及び判定薬 | |
EP0716095A1 (en) | Method for quantitative determination of fas antigen | |
EP1130030A1 (en) | Human erythroid differentiation related factor | |
CA2379235A1 (en) | Antigenic epitopes and mosaic polypeptides of hepatitis c virus proteins | |
CN116813764A (zh) | 一种白色念珠菌人源化抗体的制备方法 | |
WO2001029079A1 (en) | IMMUNO-INTERACTIVE FRAGMENTS OF THE αC SUBUNIT OF INHIBIN | |
CN117362424A (zh) | 一种抗幽门螺旋杆菌单克隆抗体及其应用 | |
JP3336775B2 (ja) | 抗フコシルトランスフェラーゼ抗体、抗フコシルトランスフェラーゼモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ及び該抗体を用いたフコシルトランスフェラーゼの測定方法 | |
WO2005056597A1 (ja) | 免疫グロブリンFc受容体タンパク質 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20050215 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20050418 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20050419 |
|
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20060404 |
|
A711 | Notification of change in applicant |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711 Effective date: 20060508 |
|
RD02 | Notification of acceptance of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7422 Effective date: 20060508 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20060508 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20060508 |
|
A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20060621 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090728 Year of fee payment: 3 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100728 Year of fee payment: 4 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100728 Year of fee payment: 4 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110728 Year of fee payment: 5 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110728 Year of fee payment: 5 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120728 Year of fee payment: 6 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120728 Year of fee payment: 6 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130728 Year of fee payment: 7 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
S531 | Written request for registration of change of domicile |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531 |
|
R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |