JP3723231B2 - アジュバント - Google Patents
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Description
本発明は、アジュバント及びそれらのアジュバントを含むワクチンに関する。本発明によれば、アジュバントは、全体の疎水性を維持しながら、アニオン基を供給され得るか又は供給され得ない少なくとも1つの合成疎水性リポ多糖、界面形成性成分及び場合によっては、水性溶質を含むエマルジョンを含んで成る。
【0002】
それらのアジュバントは、動物又はヒトワクチンの調製に使用され得る。
前記合成の疎水性リポ多糖の一部を形成するポリ多糖は、8〜40個の炭素原子の直鎖又は枝分れ鎖の脂質基によりエステル化され;それらの脂質基は脂肪族又は不飽和であり得、そして場合によっては、芳香族基を含むことができる。多糖類の糖基に対する脂質基の平均割合は好ましくは、0.2〜4及びより特定には約1であり得る。
【0003】
場合によっては、リポ多糖は、アニオン基、たとえばホスフェート、スルフェート、ニトレート、又はカルボキシル基、好ましくはスルフェート基を、全体の疎水性を維持しながら、供給される。好ましくは、糖基に対するアニオン基の平均割合は0.1〜2の間である。
【0004】
SLPの疎水性は、Griffin の方法(W.C.Griffin, J.Soc.Cosmet.Chem., 1, 311, 1949) に従って決定され、そしてPorter(M.R.Porter, Handbook of surfactants, Blackie, Glasgow and London, 1991 、42ページ)により引用される、水における界面活性剤の外観に親水性−親油性バランス(HLB)により定義される。疎水性SLPのHLB値は9以下であり(すなわち、不溶性で且つ不安定な分散体又は安定した不透明な分散体)、そして特にそれは4以下であり得る(すなわち不溶性)。
【0005】
界面形成性成分の例は次のものである:
a.水性相と不混和性の液体、たとえば鉱物、動物、植物又は合成油、又は他の有機液体、
b.不溶性塩、たとえばAl(OH)3 ,AlPO4 、カルシウム−オキサレート、ひる石、ベントナイト、シリカ、
c.1又は複数のポリマー又はコポリマー、たとえばポリアクリレート、ポリ(メチル−メタクリレート)、ポリシアノアクリレート、多糖、ポリペプチド、ポリ(エチレン−酢酸ビニル)、ポリ(乳酸)、ポリ(グリコール酸)、ポリ(乳酸/グリコール酸)、ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレン、ポリエチレンイミン、ポリアミドアミンの微小粒子/微小球体、
d.親水性物質、たとえばリン脂質、第四アミンの脂質二重層、
e.1又は複数の次の界面活性剤のミセル:
−アニオン性(たとえばカルボキシレート、ポリアルコキシカルボキシレート、N−アシルサルコシネート、アシル化されたタンパク質加水分解物、スルホネート、アルキルベンゼンスルホネート、エステル結合を有するスルホネート、アミド結合を有するスルホネート、エーテル結合を有するスルホネート、アルコールスルフェート、ホスフェートエステル)、
−非イオン性(たとえばエトキシレート、アルコールエトキシレート、カルボン酸エステル、グリセロールエステル、ポリオキシエチレンエステル、カルボン酸アミド、ポリオキシエチレン脂肪酸アミド、ポリアルキレンオキシドブロックコポリマー)、
−カチオン性(たとえばアミン、酸素含有アミン、2−アルキル−1−(2−ヒドロキシエチル)−2−イミダゾリン、第四アミン)、及び
−両性(たとえばイミダゾリウム誘導体)の界面活性剤。
【0006】
実質的な観点から、SLP安定配合物と組合され、そして受容体(動物又はヒトのいづれか)により十分に耐えられる界面形成性物質が好ましい。この観点において、動物及び植物起原の油、不溶性塩、たとえばAl(OH)3 及びAlPO4 、及び動物又は植物起原のリン脂質の脂質二重層が特に適切である。
【0007】
下記に記載される実験においては、鉱油又はスクアランが界面形成性成分として使用される。スクアランは、動物起原の油であり、そして従って生物適合性及び生物分解性が予測されるので好ましい。
【0008】
水中油又は油中水エマルジョンの安定性を改良するために適切な親水性/親油性バランス(HLB)値を有する界面活性剤の例(種々の商標名を含む)は、次のものである:
a.アニオン性界面活性剤、たとえばSandopan KST;
b.非イオン性界面活性剤、たとえばBrij型番号30,35,58,98,721,Triton型番号N−57,X−100,X−102,Span型番号20,40,60,80,85,Tween型番号20,21,40,60,80,85,Plaronic型番号PE10100,PE10500,RPE2510,RPE2520;
c.カチオン性界面活性剤、たとえばAoquat2HT−75,Arosarf TA100、ビス(水素化牛脂アルキル)ジメチルアンモニウムクロリド;
d.両性界面活性剤、たとえばLonzaine型番号10S,12C,16S,Scherotaine型CAB,IAB,MAB,Amphosal.
【0009】
下記実験においては、非イオン性界面活性剤及び特にTween80が、SLP及び油のエマルジョンを安定化するために使用された。
【0010】
動物油の例はスクアラン及びスクアレンである。適切な植物油は、ダイズ、ピーナッツ、ゴマ、ヤシ、等から得られる。鉱油の例は、Markol52,Krakel,Kremol、等である。
【0011】
本発明のアジュバントに使用するための水性溶質は、たとえば塩溶液、リン酸緩衝溶液又は純粋な水である。
本発明のアジュバントは好ましくは、まず、合成疎水性リポ多糖及び油を混合し、そしてさらに、その油状塊状物を水に分散することによって、又はまず、リポ多糖と界面活性剤とを混合し、水を添加し、そして得られた水相に油を分散することによって調製される。
【0012】
本発明のアジュバントは、ヒト及び動物のためのワクチンへの使用にも向けられる。そのワクチンは、ウィルス、細菌、マイコプラズマ又は寄生体のために特有な、又は免疫応答の上昇を意図されるいづれか他の物体のために特有な抗原性物質を含むことができる。この抗原性物質はたとえば、生存生物、不活性化された生物又はいわゆるサブユニット(たとえば合成的に又は組換えDNA法により調製され、又は損なわれていない生物から単離される)から成り又は含むことができる。ワクチンの調製のためには、抗原性物質は、使用の十分前又は使用のすぐ前で混合される。
本発明は次の例によりさらに例示される。
【0013】
【実施例】
例 1:
アジュバントとしてのSLP−分散体の使用
下記実験においては、親油性スルホリポ多糖(SLP)−誘導体、すなわち約0.1:0.8:1.0のスルフェート:脂質:単糖の平均比を有するSLP−誘導体が、特にことわらない限り使用された。
【0014】
異なった実験において使用されるワクチンは、次の態様の1つで調製された:I.SLPを適切な濃度で油相(スクアラン)に溶解した。SLPの溶解は、スクアランをわずかに加熱することによって改良され得た(70℃)。続いて、油相を、70℃で予備加熱された水性相(2%Tween80を含むリン酸緩衝溶液)に添加し、そして激しく撹拌した。得られたプレーエマルジョンを、超音波破壊器により又は微小流動化することによりさらに乳化した。エマルジョンは、油滴が1μmよりも小さい場合(1000倍での相対比顕微鏡により測定される)、すぐ使用されると思われる。ワクチンは、1体積のアジュバント溶液(約4℃)と1体積の抗原溶液とを混合することによって調製された。
SLPの量は、対照としてFicollを用いての糖含有量として表わされる(乾燥材料は約2倍高い)。
【0015】
II. SLPを有機溶媒(たとえばエタノール、クロロホルム又はジクロロメタン)に溶解し、そして油と共に混合した。溶媒を60又は70℃及び低圧での集中的な蒸発により除去した。続いて、油相を、70℃で予備加熱された水性相(2%のTween80を含むリン酸緩衝溶液)に激しく撹拌しながら添加した。得られるプレーエマルジョンを超音波破壊器又は微小流動化によりさらに乳化した。エマルジョンは、油滴が1μmよりも小さい場合(1000倍での相対比顕微鏡により測定される)、すぐ使用されると思われる。ワクチンは、1体積のアジュバント溶液(約4℃)と1体積の抗原溶液とを混合することによって調製された。
【0016】
III. SLPをアジュバント溶液(たとえば水中鉱油エマルジョン)に添加し、そしてSLPを超音波破壊器により分散した。アジュバント溶液は、沈殿物がマクロスコーピー(40倍)及び顕微鏡(400−及び1000倍)により見えなければ、すぐ使用されると思われた。1体積のアジュバント溶液を1体積の抗原溶液と混合した。
【0017】
IV. SLP、油、及び2%のTween80を含む水性相を容器に置き、激しく混合し、そして続いて、超音波破壊器又は微小流動化により、温度を約70℃に維持しながら、乳化した。そのエマルジョンは、油滴が1μmよりも小さい場合(1000倍での相対比顕微鏡により測定される)、すぐ使用されると思われた。ワクチンは、1体積のアジュバント溶液(約4℃)と1体積の抗原溶液とを混合することによって調製された。
【0018】
V.SLPを適切な体積の液体界面活性剤(たとえばTween80)に溶解し、そして水性相を激しく混合しながら添加し、透明な又は乳白光懸濁液を得た。この懸濁液にスクアランを添加し、そしてその混合物を微小流動化により乳化した。
【0019】
VI. Vと同じであるが、但し、有機溶質におけるSLPを液体界面活性剤(たとえばTween80)と共に混合し、そして有機相を水性相の添加の前又は後で蒸発せしめた。有意な差異はアジュバント活性に見出されないが、調製方法I,II,V及びVIは、比較的容易な方法であり、そして大規模な製造のために容易に適用できるので、好ましい。
【0020】
典型的なSLP/S/W(スルホリポ多糖/スクアラン/水)アジュバントワクチンは、1ml当たり、次の成分を含んで成る:2.5mgSLP,0.05ml(40mg)のスクアラン、0.01ml(10mg)のTween80。使用されるSLP誘導体は、0.8/0.1の平均脂質/スルフェート含有率(多糖における単糖当たりの基の数)を有した。
【0021】
例 2
マウス及びテンジクネズミにおける種々の抗原のためのアジュバントとしてのSLP−H2/スクアラン/水
材料及び方法
動 物
ランダムなSwiss雌マウス及びテンジクネズミを、オランダのHarlan, Zeist から得た。生後、約10週で、5匹の動物のグループを、0及び3週目で、0.2mlのワクチンにより皮下(sc)、腹腔内(ip)又は筋肉内(im)感作し、そして血液を、特にことわらない限り、3及び6週で収集した。
【0022】
SLP−H2/スクアラン/水アジュバント
有機溶媒(ジクロロメタン又はクロロホルムのいづれか)中、SLP−H2を、スクアラン(Sigma Chem.Comp.St.Louis, USA) と共に混合し、そして有機溶媒を、低圧及び60℃で少なくとも6時間、Rotavapar(Badil Lab.-Technik AG, Switzerland) での蒸発により除去した。SLPを含むスクアランを、2%のTween80を含むリン酸緩衝溶液(PBS/2%Tween80)と共に混合し、そしてその混合物を2段階で乳化した。プレーエマルジョンを、激しく振盪することによって製造した。続いて、そのプレーエマルジョンを、圧力を徐々に高めながら(200〜600大気圧)、2又は3回のサイクルで、微小流動化した(Microfluidics Corp.Newton, USA)。得られたエマルジョンを、顕微鏡(1000倍)及び微小粒子−サイザー(Malvern Instruments)により油滴の大きさの評価により分析した。その乳化工程は、ほとんどの液滴が1μm以下の直径を有し、そして10μm以上の直径を有する粒子が存在しなくなるまでくり返えされた。メルチオレートをSLP−H2/S/水エマルジョンに0.01%の最終濃度で添加し、そしてアジュバントを4℃で貯蔵した。使用されるアジュバント溶液は、1ml当たり5mgのSLP,0.1ml(80mg)のスクアラン及び0.02ml(20mg)のTween80を、特にことわらない限り含んだ。
【0023】
ワクチン及び予防接種
試験されるワクチンを、1体積の抗原溶液と1体積のアジュバント溶液とを、注射の少なくとも1日前に混合することによって調製した。マウスは、アジュバントを含むか又は含まない次のワクチンのうち1つのワクチン0.2mlを受けた:
ワクチンIは、投与量当たり10μgのジニトロフェニル化されたウシ血清アルブミンを含んだ(実験I);
ワクチンIIは、投与量当たり10μgのDNP−BSA、1μgのMRC−11及び10μgのオボアルブミン(OVA)を含んだ(実験II);
ワクチンIII は、投与量当たり1μgのMRC−11及び10μgのOVAを含んで(実験III 、IV及びV);そして
ワクチンVIは、5log 10TCID50不活性化狂犬病ウィルス粒子(iPRV)、0.44μgのA/Swine,0.4μgのMRC−11及び0.2μgのX−79を含んだ(実験VI)。テンジクネズミに、アジュバントを含む又は含まないワクチンIVを注射した。ワクチンIVの抗原組成物は、ブタSuvaxyn iAuj/Flu3ワクチンの抗原組成物に相当し、そしてブタのための投与量の1/10をマウス又はテンジクネズミに注射した。
【0024】
次のアジュバントをマウスで試験した:
1.投与量当たり40mgの油を含む、鉱油(Markol52)/リン酸緩衝溶液+1%Tween80(O/W)のエマルジョン(グループ182);
2.投与量当たり0.5mgのSLP及び40mgの鉱油(Markol52)を含むSLP/O/Wのエマルジョン(グループ188);
3.投与量当たり8mgのスクアランを含むスクアラン/W(S/W)のエマルジョン(グループ951,1063,1083,1688及び2322);
4.投与量当たり0.5mgのSLP及び8mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(グループ952,953,1062,1082,1691,1966及び2334);
5.投与量当たり1.0mgのSLP及び8mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(グループ1692);
6.投与量当たり2.5mgのSLP及び8mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(グループ1693);
7.投与量当たり2mgのスクアランを含むS/Wのエマルジョン(グループ1683);
8.投与量当たり0.5mgのSLP及び2mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(グループ1685);
9.投与量当たり1.0mgのSLP及び2mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(グループ1686);
10.投与量当たり2.5mgのSLP及び2mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(グループ1687);
11.投与量当たり0.5mgのSLPを含む、Tween80を含むリン酸緩衝溶液(PBS/T)におけるSLPの懸濁液(グループ973,974,1061,1081,1964及び2327);
12.投与量当たり0.2mgのSLPを含む、Tween80を含むリン酸緩衝溶液(PBS/T)におけるSLPの懸濁液(グループ1962);及び13.投与量当たり8mgのスクアラン及び0.5mgのFicollを含むS/W+Ficollのエマルジョン(グループ1998)。
【0025】
次のアジュバントをテンジクネズミで試験した:
1.投与量当たり40mgの油(Markol52)を含むO/Wのエマルジョ ン(実験IV、グループ1;実験V、グループ2);
2.投与量当たり8mgのスクアランを含むS/Wのエマルジョン(実験I、グループ2;実験II、グループ4;実験III 、グループ9;実験IV、グループ6;実験V、グループ3);
3.投与量当たり0.5mgのSLP及び8mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(実験I、グループ3;実験II、グループ5;実験III 、グループ10;実験V、グループ8);
4.投与量当たり0.25mgのSLP及び8mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(実験IV、グループ7);
5.投与量当たり1.25mgのSLP及び8mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン(実験IV、グループ8)。
【0026】
次のアジュバントをブタで試験した:
1.投与量当たり400mgの油を含むO/Wのエマルジョン;
2.投与量当たり80mgのスクアランを含むS/Wのエマルジョン;
3.投与量当たり5mgのSLP及び80mgのスクアランを含むSLP/S/Wのエマルジョン;及び
4.投与量当たり5mgのSLPを含む、PBS/TにおけるSLPの懸濁液。
【0027】
血清における抗体力価の決定
抗−DNP−BSA抗体応答を、指示細胞としてジニトロフェニル化された羊赤血球細胞(DNP−SRBC)を用いて、血球凝集(HA)反応により測定した。手短に言及すれば、血清を、丸底の96ウェルプレートにおいて、1%の正常なウサギ血清を含む塩溶液(羊赤血球細胞により予備吸着された)により連続的に2倍に希釈し、そしてDNP−SRBC懸濁液を添加した。ちょうど凝集を付与する逆血清希釈度がその力価であると思われた。抗−OVA抗体応答を、OVAにより結合されるSRBCの血球凝集により測定した。
【0028】
抗−iPRV抗体力価を、血清中和試験(SN)により測定した。手短に言及すれは、血清を96−ウェルプレートにおいて2倍に連続的に希釈した。その血清希釈溶液を、100TCID50のAujeszkyウィルス懸濁液と組合した。37℃で24時間のインキュベーションの後、ウェル当たり2.10e4PD5−細胞を血清−ウィルス混合物に添加した。37℃での5日間のインキュベーションの後、ウィルスプラークを数え、そしてウィルスの50%中和を引き起こす血清の逆希釈度がその抗体力価であると思われた。
【0029】
抗−iFlu抗体力価を、血球凝集阻害反応(HI)により測定した。血清を、96−ウェル丸底プレートにおいて1体積の血清を4体積のカオリン(それぞれ50μl+200μl)に添加することによって、カオリンにより前処理した。室温で30分間のインキュベーションの後、カオリンを回転除去し、そして上清液を集め、そして丸底の96−ウェル丸底プレートにおいて、0.1%のBSAを含むベロナール緩衝溶液に連続的に2倍に希釈した。インフルエンザウィルスの4つのHA単位をウェルに添加し、そしてプレートを室温で1時間インキュベートした。ニワトリ赤血球細胞を、0.1%のBSAを含むベロナール緩衝溶液により3度洗浄し、そして0.25%の濃度でウェルに添加した。30分後及び2時間以内に、凝集が検出され、そして血球凝集の阻害を示す最高の逆血清希釈度がその力価であると思われた。
【0030】
結 果
マウスにおけるアジュバント性
種々の抗原に対する抗体応答のためにSLP/S/Wのアジュバント性を、6種の別々の実験においてマウスで研究した(表1)。SLP/S/Wの効果を、アジュバントを含まない、SLP,S/W,O/W又は抗原と比較した。DNP−BSAに対する抗体応答は、SLP/S/Wにより有意に増強されたが、しかしO/Wによりは増強されなかった(実験I)。SLPは単独でSLP/S/Wよりも効果的でなく、そしてS/Wは、SLP又はSLP/S/Wの両者よりも効果的でなかった(実験III)。抗−MRC−11抗体応答は、試験される種々のアジュバントにより有意に刺激された。SLP/S/WはS/W単独よりもより効果的である(但し実験IIを除く)。SLPは単独で、SLP/S/Wのアジュバント性に相当するか(実験IIIa,IIIb及びVIb)、又はそれよりも低い(実験II,V,VIa)相当のアジュバント性を示した。抗−MRC−11抗体応答は、SLPの投与量の上昇及びSLP/S/Wおけるスクアランの量の上昇と共に高まった(実験V)。OVAに対する抗体応答は、SLP,S/W及びSLP/S/Wにより増強されたが、しかしSLP/S/WはSLP又はS/Wのみよりも有意により効果的であった(実験II,IIIa,IIIb及びIV)。抗−OVA応答のためのSLP/S/Wのアジュバント性は、試験された範囲内でのSLP又はスクアランの量の上昇と共に上昇しなかった。iPRVに対する体液性応答を測定し、そしてSLP/S/Wはその応答を有意に増強し(実験VIa 及びVIb)、そしてS/Wよりもより効果的であることがわかった。SLPは単独で、SLP/S/Wとほぼ同じくらい効果的であった。それらの結果は下記表1A及び1Bに要約される。
【0031】
【表1】
【0032】
【表2】
【0033】
テンジュクネズミにおけるアジュバント性
ブタiPRV+iFlu3ワクチンに対する抗体応答に対するSLP/S/Wの効果を、テンジュクネズミにおけるS/W及びO/Wの効果と比較した。この動物種は、ブタワクチン、及びiPRV及びiFlu成分に対する抗体応答のためのモデルとして集中的に使用されており、そしてブタにおけるワクチンの効能のための表示であると思われる。
【0034】
5匹の動物のグループを、0週及び3週で、ワクチン0.2mlにより皮下感作し、そして抗体力価を6週で測定した。次のワクチン組成物が試験された:
a.不活性化された狂犬病ウィルスのためのSLP/S/W(表2;実験I−V)、
b.活性化されたインフルエンザウィルス株A/Swine,MRC−11及びX−79のためのSLP/S/W(実験IV及びV)。
実験I−III は、iPRVに対する抗体力価が水中スクアラン(S/W)及びSLP/S/Wにより有意に増強され、そしてSLP/S/WがS/Wよりも効果的であることを示す。
【0035】
【表3】
【0036】
実験IV及びVにおいては、抗−iPRV抗体力価における小さな差異が種々のグループ間に見出された。しかしながら、それらの実験においては、抗−iFlu3抗体における有意な差異が見出された。SLP/S/W及びO/Wは、S/W又は抗原のみよりも高い抗体力価を誘発した。SLP/S/WはO/Wと同じくらい効果的であった。
【0037】
例 3
ブタにおけるiPRV,iFlu、およひ生存PRVのためのアジュバントとしてのSLP−H2/スクアラン/水
材料及び方法
ブ タ
生後約10週の5匹のブタのグループを、この実験に使用した。動物を、0週及び3週でワクチン2.0mlにより範囲内感作し、そして血液を6週で集めた。
【0038】
ワクチン及び予防接種
試験されるワクチンは、1体積の抗原溶液及び1体積のアジュバント溶液を含んだ。抗原溶液は、6log 10TCID50不活性化狂犬病ウィルス粒子、4.4μgのインフルエンザウィルス株A/Swine,4.0μgのMRC−11及び2.0μgのX−79を含んだ。使用されるアジュバント溶液は、前記のようなSLP/S/W(アジュバント1ml当たりSLP5mg及びスクアラン80mg)又は標準の水中鉱油エマルジョン(50%鉱油)のいづれかであった。凍結乾燥された生存PRVを、希釈溶液又はアジュバント溶液(希釈剤により前もって1:1に希釈された)に再構成し、そして10分以内に注射した。
【0039】
結 果
iPRV及びiFLU3に対する抗体応答の刺激
5種々の別々の実験において、SLP/S/Wのアジュバント性を、ブタにおける標準のO/Wのアジュバント性と比較した。少なくとも5匹のブタのグループを、SLP/S/W又は標準のO/Wにより組合されたiPRV+iFLU3、又はアジュバントを含まないiPRV+iFLU3により感作した(表3)。SLP/S/Wによる感作の後に測定された抗−iPRV抗体力価は、O/Wにより誘発された力価とは有意に異ならなかった(p>0.20)。5種のうち4種の実験において、異なったインフルエンザウィルス株に対する3〜4倍高い力価が、標準のO/Wに比較して、SLP/S/Wによる注射の後、検出された。その結果及び統計学的分析の組合せがA/Swine(p<0.01),MRC−11(p<0.01)及びX79(p<0.01)に対する力価において有意な上昇を証明した。
【0040】
【表4】
【0041】
7匹のブタのグループを、0週及び3週で、iPRV+iFlu3+アジュバントにより感作した。
抗体力価を6週で測定した。上昇因子を次の式により計算した:2e(SLP/S/Wによる力価−O/Wによる力価)。SLP/S/WとO/Wとの間の差異のP値を、スチューデント試験により計算した。>0.05の他は、有意ではないと思われた。NS:有意でない;S:有意。実験IVのグループ1の15匹の動物のうち4匹の動物は、インフルエンザ株MRC−11に対する有意な抗体応答を生成しなかったが(それらの動物における平均力価は<5.6であった)、しかし他の抗原に対する正常な応答が測定された。
【0042】
【表5】
【0043】
生存PRVに対する抗体応答の刺激
4種の別々の実験において、生存PRVに対する抗体応答に対するSLP/S/W及び標準のO/Wの効果を研究した。ブタを2度感作し、そして抗−PRV抗体力価を、個々の感作の3週間後に測定した。すべての場合、低い〜中ぐらいの高さの抗体力価が、最初の注射の後に観察され、そして力価は、第2回目の感作により高まった(表4)。希釈剤における生存PRVと比較して、SLP/S/W及びO/Wは、最初の感作の後、抗体力価をわずかに高めた。2回目の感作の後、抗体力価はSLP/S/W及びO/Wにより有意に高められた。SLP/S/Wは23倍の上昇を誘発し、そしてO/Wは抗−PRV抗体力価の7倍の上昇を引き起こした。
【0044】
生存PRV+アジュバントとしてのSLP/S/Wによる感作による挑戦の後、ウィルス排泄の低下
SLP/S/W又はO/Wのいづれかを含む生存PRVワクチンの効能を、挑戦の後、ウィルス排泄の測定により調べた。動物を、第2回目の感作の5週間後、鼻腔内挑戦し、そして扁桃腺からのスワブにおけるウィルス力価を、14日の連続した日の間、モニターした(図1)。力価は、10log TCID50として表わされる。
【0045】
感作されていない動物は、挑戦後11〜24日間、多量のPRVを排泄した。対照グループの5匹の動物のうち2匹は、試験の期間内に死亡した。アジュバントなしでの動物の感作は、排泄されるウィルスの期間及び力価の両者を減じた。
【0046】
SLP/S/W又はO/Wのいづれかに再構成されたPRVによる感作は、排泄の期間及び排泄されるウィルスの量の追加の低下を引き起こした。O/Wにより、少なくとも4log 10のウィルス力価が4日間、排泄され、そしてSLP/S/Wにより、3.5log 10の最大ウィルス力価が単に1日で測定された。合計のウィルス排泄は、挑戦の後、log ウィルス力価対時間の曲線(AUC)下の面積を計算することによって決定された。対照動物のAUCは、100%であるように思われた。アジュバントなしに抗原を受けた動物のAUCは57%であった。O/W及びSLP/S/Wによる感作は、それぞれ39%及び26%のAUCをもたらした。
【0047】
例 4
ニワトリにおけるアジュバント性
10匹のニワトリのグループを、0週及び3週で、ワクチン0.5mlにより感作し、そして抗体力価を0.3及び6週で測定した。SLP/S/Wを、不活性化されたニューカッスル病(NCD)ウィルスと共に混合した。それらの結果は表5に示される。
【0048】
【表6】
【0049】
例 5
免疫調節活性対免疫アジュバント性
特異滴免疫応答に対する非特異的耐性(特許出願EP295,749号)に対する証明された刺激活性を有する親水性SLP−誘導体の効果を研究した。異なった動物モデルにおいて、0.1/0.8の平均スルフェート/脂質比を有する疎水性SLP−誘導体のアジュバント性を、0.6/0.01又は1.6/0.8の平均スルフェート/脂質比を有する親水性SLP−誘導体のアジュバント性と比較した。異なったSLP/S/Wエマルジョンを、1μm以下の油滴を有するS/WのエマルジョンにSLPを添加し、そして続いてそのエマルジョンを超音波処理することによって調製した。5匹のマウス又はテンジクネズミのグループを、投与量当たり0.5mgのSLP−誘導体及び8mgのスクアランを含んで成るワクチン0.2mlによりsc感作した。ブタを、投与量当たり5mgのSLP−誘導体及び80mgのスクアランを含んで成るワクチン2.0mlにより感作した。結果は下記表6に示される。
【0050】
【表7】
【0051】
種々の抗原に関する及び種々の動物種における実験の結果から、S/Wにおける疎水性SLPはS/Wにおける親水性SLPよりもより効果的なアジュバントであることが明らかに観察される。
【図面の簡単な説明】
【図1】これは、扁桃腺からのスワブにおけるウィルス力価の14日間の連続した日の間でのモニターを示す。
Claims (13)
- ワクチン抗原と共に、スルフェート基及び脂質基を有し且つ平均スルフェート/脂質比が0.1/0.8である合成疎水性リポ多糖少なくとも1種、界面形成性成分及び場合によっては水性溶質を含んで成る免疫アジュバント組成物。
- 前記リポ多糖が、糖基に対する0.8 の脂質基の平均割合を有する請求項1記載のアジュバント組成物。
- 前記リポ多糖が、全体の疎水性を維持しながら、アニオン基を供給される請求項1又は2記載のアジュバント組成物。
- 前記リポ多糖が4以下の親水性−親油性バランス(HLB)を有する請求項1〜3のいずれか1項記載のアジュバント組成物。
- 前記界面形成性成分が水性相と不混和性の液体である請求項1〜4のいづれか1項記載のアジュバント組成物。
- 前記界面形成性成分が水性相において不溶性の固体である請求項1〜5のいずれか1項記載のアジュバント組成物。
- 請求項1〜6のいずれか1項記載の免疫アジュバント組成物及び免疫原を含むワクチン。
- ワクチンと共に使用するための、スルフェート基及び脂質基を有し且つ平均スルフェート/脂質比が0.1/0.8である合成疎水性リポ多糖少なくとも1種、界面形成性成分及び場合によっては水性溶質を含んで成る免疫アジュバント組成物。
- 前記リポ多糖が糖基に対する0.8 の脂質基の平均割合を有する請求項8記載のアジュバント組成物。
- 前記リポ多糖が、全体の疎水性を維持しながら、アニオン基を供給される請求項8又は9記載のアジュバント組成物。
- 前記リポ多糖が4以下の親水性−親油性バランス(HLB)を有する請求項8〜10のいずれか1項記載のアジュバント組成物。
- 前記界面形成性成分が水性相と不混和性の液体である請求項8〜11のいずれか1項記載のアジュバント組成物。
- 前記界面形成性成分が水性相において不溶性の固体である請求項8〜12のいずれか1項記載のアジュバント組成物。
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