JP3679122B2 - フェノール酸化酵素、過酸化水素源及び強化剤の使用を含む漂白方法 - Google Patents
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Description
発明の分野
本発明は、染色された織物（fabric）、特にセルロース系織物、例えばデニムの表面の色の濃さにおける漂白された外観を提供するための方法に関する。
背景技術
デニム織物又はジーンズにおいて漂白されたストーン−ウォッシュ外観を提供する最も一般的な方法は、その織物の色の所望の局在化された色あせを提供するために軽石の存在中でそのような織物から作られたデニム又はジーンズを洗浄することによるものである。この後に、その織物が20分間まで60℃及びpH11〜12において次亜塩素酸ナトリウムにより処理される漂白工程、その後の中和段階及び濯ぎが続く。次亜塩素酸塩の使用は、亜塩素酸塩自体が望ましくないため、及びその中和がその後に、廃棄及び汚染問題を導く多量の塩を作り出すために、望ましくない。
漂白酵素、例えば、過酸化水素と一緒のペルオキシダーゼ又は酸素と一緒のオキシダーゼも、単独又はフェノール、例えばｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシベンゼン・スルホネート、バニリン又はｐ−ヒドロキシ安息香酸と共に、染色された繊維の漂白のために示唆されている（WO92/18683参照）。この開示された方法は、本発明の実施例１から分かるように効率の悪いものである。
従って、染色された織物において漂白された外観を提供するための必要性が未だ存在する。解決されるべき問題は容易ではない。なぜなら、VAT−染料、特に、インジゴ（indigo）は、水に溶解せず、そしてその繊維表面上にひじょうにコンパクトな構造をもち、酵素が攻撃することを困難にするからである。
発明の要約
驚ろくべきことに、染色された織物の表面の色の濃さにおいて漂白された外観を提供するためにひじょうに効率のよい方法であって、水性媒質中で、染色された織物と、フェノール酸化酵素系及び以下の式により表される強化剤：
｛式中、式Ａが、基、例えば、−Ｄ，−CH＝CH−Ｄ，−CH＝CH−CH＝CH−Ｄ，−CH＝Ｎ−Ｄ，−Ｎ＝Ｎ−Ｄ又は−Ｎ＝CH−Ｄであり、ここで、Ｄが、−CO−Ｅ，−SO2−Ｅ，−Ｎ−XY、及び−Ｎ+−XYZから成る群から選ばれ、ここで、Ｅは、−Ｈ，−OH，−Ｒ、又は−ORであることができ、そしてＸとＹとＺが、同一又は相違し、そして−Ｈ及び−Ｒから成る群から選ばれ；Ｒが、Ｃ1−Ｃ16アルキル、好ましくは、Ｃ1−Ｃ8アルキルであってこのアルキルは飽和又は不飽和、分枝又は非分枝であり、そして場合によりカルボキシ、スルホ又はアミノ基により置換されることができ；そしてＢとＣは、同一又は相違し、そしてＣmＨ2m+1；１≦ｍ≦５から選ばれることができる。｝とを、接触させることを含む方法を創出することができることが発見された。
発明の詳細な説明
染色された織物
本発明の方法は、最も有利には、セルロース含有織物、例えば、綿、ビスコース、レーヨン、ラミー、リネン、テンセル（Tencel）、それらの混合物、又はこれらの繊維のいずれかの混合物、又は合成繊維とこれらの繊維のいずれかとの混合物、例えば、綿とスパンデックスとの混合物（ストレッチ−デニム）に適用される。特に、その織物は、デニムである。本発明の方法は、他の天然材料、例えば、絹に適用されることもできる。
上記織物は、バット染料、例えば、インジゴ、又はインジゴ関連染料、例えば、チオインジゴにより染色されることができる。
本発明の方法の最も好ましい態様においては、その織物は、それから製造された衣類を含む、インジゴ染めデニムである。
フェノール酸化酵素系
用語“フェノール酸化酵素系”は、過酸化水素又は分子状酸素を使用することにより、フェノール性基を含む有機化合物を酸化することができる酵素を含む系を意味する。このような酵素の例は、ペルオキシダーゼ及びオキシダーゼである。
フェノール酸化酵素系が過酸化水素の源を必要とする場合、その源は、過酸化水素又は過酸化水素のその場の製造のための過酸化水素前駆体、例えば、過炭酸塩又は過ほう酸塩、又は過酸化水素生成酵素系、例えば、オキシダーゼ及びそのオキシダーゼのための基質、又はアミノ酸オキシダーゼ及び好適なアミノ酸、又は過酸化カルボン酸又はその塩であることができる。過酸化水素は、例えば、0.001〜25mM H2O2に対応する濃度において、その工程の初期又は間に添加されることができる。
このフェノール酸化酵素系が、分子状酸素を必要とする場合、その雰囲気からの分子状酸素は通常、十分な量において存在するであろう。
フェノール酸化酵素系の酵素は、ペルオキシダーゼ活性を示す酵素又はラッカーゼ又は以下に記載するようなラッカーゼ関連酵素であることができる。
本発明に従えば、染色された織物の表面の色の濃さにおける局在化した変化が生じるところの水性媒質中のフェノール酸化酵素の濃度は、0.001〜10000μｇ酵素タンパク質／ｇデニム、好ましくは、0.1〜1000μｇ酵素タンパク質／ｇデニム、より好ましくは、１〜100μｇ酵素タンパク質／ｇデニムであることができる。
ペルオキシダーゼ及びペルオキシダーゼ活性を有する化合物
ペルオキシダーゼ活性を有する化合物は、酵素分類（EC １．11．１．７）に包含されるいずれかのペルオキシダーゼ酵素、又はペルオキシダーゼ活性を示すそれから得られたいずれかの断片、それらの合成又は半合成誘導体であることができる（例えば、ポルフィリン環系又はマイクロペルオキシダーゼ、例えばUS4,077,768，EP537,381，WO91/05858及びWO92/16634を参照のこと。）。
好ましくは、本発明の方法において使用されるペルオキシダーゼは、植物（例えば、西洋のワサビ又は大豆ペルオキシダーゼ）又は微生物、例えば真菌又はバクテリアにより作り出されることができる。いくつかの好ましい真菌は、亜目不完全菌類（Deuteromycotina）、網糸状不完全菌類（Hyphomycetes）に関する株、例えば、フザリウム（Fusarium）、フミコーラ（Humicola）、トリコデルマ（Trichoderma）、ミロテシウム（Myrothecium）、ベルティシラム（Verticillum）、アルスロミセス（Arthromyces）、カルダリオミセス（Caldariomyces）、ウロカルディウム（Ulocladium）、エムベリシア（Embellisia）、クラドスポリウム（Cladosporium）、又はドレスチレラ（Dreschlera）、特にフザリウム・オキシスポラム（Fsarium oxysporum）、（DSM 2672）、フミコーラ・インソレンス（Humicola insolens）、トリコデルマ・レシイ（Trichoderma resii）、ミロセシウム・ベルカナ（Myrothecium verrucana）（IFO 6113）、ベルティシラム・アルボアトゥム（Verticillum alboatrum）、ベルティシラム・ダーリエ（Verticillum dahlie）、アルスロミセス・ラモサス（Arthromyces ramosus）（FERM P-7754）、カルダリオミセス・フマゴ（Caldariomyces fumago）、ウロクラディウム、カルタラム（Ulocladium chartarum）、エンベリシア・アリ（Embellisia alli）又はドレスクレラ・ハロデス（Dreschlera halodes）を含む。
他の好ましい真菌は、亜目担子菌類（Basidiomycotina）、網担子菌類（Basidiomycetes）に属する株、例えば、コプリナス（Coprinus）、ファネロカエート（Phanerochaete）、コリオラス（Coriolus）又はトラメテス（Trametes）、特にコプリナス・シネレウス（Coprinus cinereus）、ｆ．ミクロスポラス（f．microsporus）（IFO 8371）、コプリナス・マクロリザス（Coprinus macrorhizus）、ファネロカエテ・クリソスポリウム（Phanerochaete chrysosporium）（例えば、NA−12）又はトラメテス（Trametes（以前ポリポラス（Polyporus）といわれたもの）、例えば、Ｔ．ベルジコラー（T．versicolor）（例えば、PR４ 28−Ａ）を含む。
さらに好ましい真菌は、亜目接合菌類（Zygomycotina）、網ミコラセアエ（Mycoraceae）に属する株、例えば、リゾプス（Rhizopus）又はムコー（Mucor）、特に、ムコー・ヒエマリス（Mucor hiemalis）を含む。
いくつかの好ましいバクテリアは、放線菌目（Actinomycetales）の株、例えば、ストレプトミセス・スフェロイド（Streptomyces spheroides）（ATTC 23965）、ストレプトミセス・サーモビオラセウス（Streptomyces thermoviolaceus）（IFO 12382）又はストレプトベルティシラム・バーティシリウム（Streptoverticillum verticillium）SSP、バーティシリウム（Verticillium）を含む。
他の好ましいバクテリアは、バチルス・プミラス（Bacillus pumilus）（ATCC 12905）、バチルス・ステアロサーモフィラス（Bacillus stearothermophilus）、ロードバクター・スファエロイデス（Phodobacter sphaeroides）、ロードモナス・パルストリ（Rhodomonas palustri）、ストレプトコッカス・ラクティス（Streptococcus lactis）、シュードモナス・プロシニア（Pseudomonas purrocinia）（ATCC 15958）又はシュードモナス・フルオレッセンス（Pseudomonas fluorescens）（NRRL Ｂ−11）を含む。
さらに好ましいバクテリアは、ミクソコッカス（Myxococcus）、例えば、Ｍ．ビレッセンス（M．Virescens）に属する株を含む。
ペルオキシダーゼはさらに、そのペルオキシダーゼの発現を許容する条件下で、その培養基中、そのペルオキシダーゼをコーディングするDNA配列及びそのペルオキシダーゼをコーディングするDNA配列の発現を許容する機能をコーディングするDNA配列を担持する組換えDNAベクターにより形質転換された宿主細胞を培養し、そしてその培養物からそのペルオキシダーゼを回収することを含む方法により作り出されることができるものであることができる。
特に、組換えにより作り出されたペルオキシダーゼは、コプリナス種（Coprinus sp．）、特に、WO92/16634に従ってＣ．マクロリザス（C．macrorhizus）又はＣ．シネレウス（C．cinereus）から得られたペルオキシダーゼ、又はそれらの変異体、例えば、WO94/12621中に記載された変異体である。
本発明の文脈中、ペルオキシダーゼ作用性化合物は、チトクローム、ヘモグロビン又はペルオキシダーゼ酵素、及びそれらの合成又は半合成誘導体、鉄ポルフィン、鉄ポルフィリン、及び鉄フタロシアニン及びそれらの誘導体から得られたペルオキシダーゼ活性断片を含む。
ペルオキシダーゼ活性の測定：１ペルオキシダーゼ単位（PODU）は、以下の分析条件において１分間当り１μmolの過酸化水素の変換を触媒する酵素の量である：0.88mM過酸化水素、1.67mM ２，２′−アジノビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホネート）、0.1Ｍリン酸塩バッファー、pH7.0を30℃においてインキュベートし、418nmにより分光学的に計測する。
ラッカーゼ及びラッカーゼ関連酵素
本発明の文脈中、ラッカーゼ及びラッカーゼ関連酵素は、酵素分類（EC １．10．３．２）により含まれるいずれかのラッカーゼ酵素、酵素分類（EC １．10．３．１）に含まれるいずれかのカテコール・オキシダーゼ酵素、酵素分類（EC １．３．３．５）に含まれるいずれかのビリルビン・オキシダーゼ酵素又は酵素分類（EC １．14．99．１）に含まれるいずれかのモノフェノール・モノオキシゲナーゼ酵素を企図する。
これらのラッカーゼ酵素であって微生物及び植物起源をもつものが知られている。微生物ラッカーゼ酵素は、バクテリア又は真菌（糸状菌及び酵母を含む）から得られることができ、そして好適な例は、アスペルギルス（Aspergillus）、ニューロスポラ（Neurospora）、例えば、Ｎ．クラッサ（N．crassa）、ポドスポラ（Podospora）、ボトリティス（Botrytis）、コリビア（Collybia）、ホメス（Fomes）、レンチナス（Lentinus）、プレウロタス（Pleurotus）、トラメテス（Trametes）（以前、ポリポラス（Polyporus）といわれたもの）、例えば、Ｔ．ビローサ（T．villosa）及びＴ．ベルシコール（T．vercicolor）、リゾクトニア（Rhizoctonia）、例えば、Ｒ．ソラニ（R．solani）、コプリナス（Coprinus）、例えば、Ｃ．プリカティリス（C．plicatilis）及びＣ．シネレウス（C．cinereus）、サチレラ（Psatyrella）、ミセリオフソラ（Myceliophthora）、例えば、Ｍ．サーモフィラ（M．thermophila）、シタリジウム（Schytalidium）、フレビア（Phlebia）、例えばＰ．ラディタ（P．radita）（WO92/01046）、又はコリオラス（Coriolus）、例えば、Ｃ．ヒルスタス（C．hirsutus）（JP２−238885）の株から得られたラッカーゼを含む。
ラッカーゼ又はラッカーゼ関連酵素は、さらに、そのラッカーゼの発現を許容する条件下培養基中で、そのラッカーゼをコーディングするDNA配列及びそのラッカーゼをコーディングするDNA配列の発現を許容する機能をコーディングするDNA配列を担持する組換えDNAベクターにより形質転換された宿主細胞を培養し、そしてその培養物からそのラッカーゼを回収することを含む方法により作り出されるものであることができる。
ラッカーゼ活性の測定（LACU）
ラッカーゼ活性を、好気条件下でのシリンガルダジン（syringaldazin）の酸化から測定する。生じた紫色を、530nmにおいて分光光度計測する。分析条件は、19μＭシリンガルダジン、23.2mMアセテート・バッファー、pH5.5，30℃，１分間の反応時間である。
１ラッカーゼ単位（LACU）は、上記条件において１分当り1.0μモルのシリンガルダジンの変換を触媒する酵素の量である。
強化剤
本発明において使用される強化剤は、以下の式により記載されることができる：
｛式中、式Ａは、基、例えば、−Ｄ，−CH＝CH−Ｄ，−CH＝CH−CH＝CH−Ｄ，−CH＝Ｎ−Ｄ，−Ｎ＝Ｎ−Ｄ又は−Ｎ＝CH−Ｄであり、ここで、Ｄは、−CO−Ｅ，−SO2−Ｅ，−Ｎ−XY、及び−Ｎ+−XYZから成る群から選ばれ、ここで、Ｅは、−Ｈ，−OH，−Ｒ、又は−ORであることができ、そしてＸとＹとＺは、同一又は相違することができ、そして−Ｈ及び−Ｒから選ばれ；Ｒは、Ｃ1−Ｃ16アルキル、好ましくは、Ｃ1−Ｃ8アルキルであり、ここで、アルキルは、飽和又は不飽和、分枝又は非分枝であり、そして場合により、カルボキシ、スルホ又はアミノ基により置換されることができ；そしてＢとＣは、同一又は相違し、そしてＣmＨ2m+1；１≦ｍ≦５から選ばれることができる。｝。
好ましい態様においては、上述の式は、−CO−Ｅ、ここで、Ｅは、−Ｈ，−OH，−Ｒ、又は−ORであることができ；Ｒは、Ｃ1−Ｃ16アルキル、好ましくは、Ｃ1−Ｃ8アルキル、ここで、アルキルは、飽和又は不飽和、分枝又は非分枝であり、そして場合により、カルボキシ、スルホ又はアミノ基により置換されることができ；そしてＢとＣは、同一又は相違し又はＣmＨ2m+1；１≦ｍ≦５から選ばれることができる。
上述の式中、Ａは、ヒドロキシは、図示したようにそのパラ位に置かれる代わりにそのヒドロキシ基に対してメタに置かれることができる。
特別の態様においては、強化剤は、アセトシリンゴン、メチルシリンゲート、エチルシリンゲート、プロピルシリンゲート、ブチルシリンゲート、ヘキシルシリンゲート、又はオクチルシリンゲートである。
本発明の強化剤は、0.005〜1000μモル／ｇデニムの、好ましくは、0.05〜500μモル／ｇデニム、より好ましくは、0.5〜100μモル／ｇデニムの濃度で存在することができる。
強化剤の基の安定性
いずれの理論に限定されずに、その関連水性媒質中に形成される強化剤の基の半減期と、フェノール酸化酵素系と共にある染色された織物の表面の色の濃さにおける漂白された外観を提供することにおけるその効率との間の正の相関が存在すること、そしてこの半減期が、ｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシベンゼン・スルホネート、バニリン及びｐ−ヒドロキシ安息香酸（すなわち、WO92/18683中に開示された強化剤）から成る群から選ばれた物質のいずれの半減期よりも有意に長いことが、今般、企図される。
それ故、本発明は、さらに、染色された織物の表面の色の濃さにおける漂白された外観を提供する方法であって、水性媒質中、その染色された織物を、フェノール酸化酵素系及び強化剤と接触させることを含む方法に関する。ここでその強化剤は、その水性媒質中、ｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシベンゼン・スルホネート、バニリン及びｐ−ヒドロキシ安息香酸から成る群から選ばれた物質の中のいずれか１の基の、同一の水性媒質中でテストされた、半減期よりも少なくとも10倍長い半減期をもつ基を形成することができ、特に、その強化剤は、上記水性媒質中、ｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシ安息香酸スルホネート、バニリン及びｐ−ヒドロキシ安息香酸の中のいずれか１の基の、同一の水性媒質中でテストされた半減期よりも少なくとも100倍長い半減期をもつ基を形成することができる。
この基の半減期は、とりわけ、その水性媒質のpH、温度、及びバッファーに依存するので、これらの全ての要因が、さまざまな強化剤の基の半減期を比較するときに同一であることがひじょうに重要である。
産業上の利用
本発明の方法は、典型的には、漂白された織物の外観を作るための産業機械において使用される。通常、本発明の方法は、既にストーンウォッシュされた織物上で行われるであろうが、本法は、先にストーンウォッシング工程を経験していない織物にも適用されることができる。最も一般的には、織物は、その製造者の指示に従ってその機械の能力に従ってその機械に加えられる。織物は、水を導入する前にその機械に加えられても、水が導入された後に加えられてもよい。フェノール酸化酵素系と本発明の強化剤は、織物を加える前に水の中に存在しても又はその織物が水に濡らされた後に加えられてもよい。本フェノール酸化酵素系は、本強化剤と同時に加えられても又はそれらは別々に加えられてもよい。織物が、フェノール酸化酵素系及び本発明の強化剤と接触された後に、その織物が十分に水で濡らされることを保証し、そして酵素系と本強化剤の作用を保証するために十分な時間期間にわたり、それは、その機械内で撹拌されなければならない。
吸収された有機ハロゲン（AOX）
非塩素系漂白工程の結果として、AOXは、本発明に係る方法が慣用の亜塩素酸塩に基づく方法に比較して使用されるとき、有意に低いことが予想される。
強度の損失
本発明に係る酵素／強化剤漂白方法は、インジゴをひじょうに特異的に攻撃し、そしてそれ故、本法が、綿のダメージ、特に強度の損失を全くもたらさないことが、企図される。
本発明を以下の実施例にさらに説明するが、請求に係る本発明の範囲をいずれの方法によるかを問わず限定しないことが意図される。
実施例１
デニム漂白のためのテスト手順を以下に記載するように行った：
強化剤：メチルシリンゲート（Methyl syringate）をランカスター（Lancaster）から得た。アセトシリンゴン、ｐ−ヒドロキシ安息香酸、ｐ−ヒドロキシ−ベンゼン−スルホネート、２，４−ジクロロフェノール、バニリン及びｐ−ヒドロキシ桂皮酸を、アルドリッチ（Aldrich）から得た。
酵素：トラメテス・ビローサ（Trametes villosa）（SP 504，Novo Nordisk A/Sから入手可能）由来のラッカーゼを、使用した。
手順：18mlの、0.01Ｍ Ｂ＆Ｒ（Britt & Robinson）バッファー（pH４，６又は８）を、50mlのコニカル・フラスコに入れた。マグネット棒（４cm）とストーン・ウォッシュされたデニムの丸い片（直径3.5cm、約0.4ｇ）を、テストされるべき強化剤の保存溶液１mlと酵素１mlと共にそのフラスコに入れて、１：50のデニム：液体（ｗ／ｗ）比を得た；強化剤と酵素の最終濃度を、以下の表１〜５中に示す。
このフラスコを、水浴中マグネット・スターラー上で３時間インキュベートした（50℃及び約200rpm）。酵素による漂白の後、このデニムの布きれを、蒸留水で濯ぎ、そして風乾し、その後、それを、漂白の程度について評価した。この評価を、視覚的に、そしてMinolta chroma Meter CR 200を使用することにより行った。
評価：（Minolta Corp．から入手可能なMinolta Chroma Meter CR 200を、漂白の程度を評価し、そして、色空間座標Ｌ*ａ*ｂ*（CIELAB−システム）における変化を使用していずれかの変色を推定するために、製造者の指示に従って使用した：ここで、Ｌは、０〜100のスケールにおける白／黒の変化を与え、ａは、緑（−ａ*）／赤（＋ａ*）における変化を与え、そしてｂは、青（−ｂ*）／黄（＋ｂ*）における変化を与える。Ｌ*における減少は、黒色における増加（白色における減少）を意味し、Ｌ*における増加は、白色における増加（黒色における減少）を意味し、ａ*における減少は、緑色における増加（赤色における減少）を意味し、ａ*における増加は、赤色における増加（緑色における減少）を意味し、ｂ*における減少は、青色における増加（黄色における減少）を意味し、そしてｂ*における増加は、黄色における増加（青色における減少）を意味する。
漂白されたストーン・ウォッシュされたデニムの布きれを、非処理ストーン・ウォッシュ布きれと比較した。
Minolta Chroma Meter CR 200を、Ｌ*ａ*ｂ*座標系において操作した。使用した光源は、CIE光標準Ｃであった。各計測は、３回の計測の平均であった。上記装置を、Minolta換算プレート（白）を使用して換算した。10の非処理デニム布きれを各２回計測し、そして座標Ｌ*ａ*ｂ*の平均を計算し、そして対照として組み入れた。次に上記サンプルの座標を、上記座標Ｌ*ａ*ｂ*の対照値からの、各布きれについての３回の計測値の平均の差異（Δ）として計算した。
視覚的に、５付近のΔＬは有意な効果を与え、それ故、pH６におけるアセトシリンゴン及びメチルシリンゲートがデニムの漂白において有意な効果をもつことが、表１〜４に示された結果から分かる。
表５中に示される結果から、従来技術の記載された強化剤のいずれも、デニムの漂白において有意な結果をもたないことが分かる。
実施例２
異なるバッファー中での性能の比較
メチル・シリンゲート（MS）を使用するデニムの漂白を、以下の３つのバッファー：ホスフェート、オギザレート、及びシトレート、それぞれ、Na2HPO4×2H2O（pHを硫酸により調整）、Na2−オキザレート（pHを硫酸により調整）、及びNa−アセテート×３H2O（pHを硫酸により調整）から調整されたもの、全て0.01Ｍ、中で比較した。各バッファーを、それぞれ、pH4.0，5.0，6.0、及び7.0で調製した。300mlの着目のバッファーを、約12ｇの重量の１片のストーン・ウォッシュ・デニムと共に1200ml（全容量）のステンレス・スチール・ビーカーに入れ（デニム：液比＝１：25）；96％エタノール保存溶液中（Lancasterから得た）１mlの15ｇ／ｌMSを、（0.05LACU／ml又は19.5μｇ酵素タンパク質／ｇデニムに対応する）114LACU／mlラッカーゼ保存溶液0.132mlと共に（236μＭ又は5.9μモルMS／ｇデニムに対応する）各ビーカーに加えた。ラッカーゼは、トラメテス・ビローサ（Trametes villosa（TVL））由来であり、そしてNovo Nordisk A/S（SP 504）から入手可能であった。上記ビーカーを密閉し、そしてAtlas LP２ launder−ometer内で30分間60℃において進行させた。工程終了後、上記デニム布きれを、蒸留水中で濯ぎ、そして一夜風乾し、そしてその漂白液の最終pHを計測した。
乾燥したとき、デニムの漂白の程度を、その漂白されたデニムと、それからΔ（Ｌ*ａ*ｂ*）が計算されるところの出発材料の（６計測値の平均である）絶対Ｌ*ａ*ｂ*座標を計測して測定した。得られた結果を、以下の表６中に示す。
表６から、調べたpHのいくつかにおいてバッファーのいくつかの乏しいバッファー能力に起因する各種バッファーにおけるpHのドリフトから生じる効果を除き、漂白工程に対するバッファー選定の大きな影響はないことが分かる。さらに、最適pHが、5.5〜6.5のpH範囲内にあり、これは、実施例１、表４中で得た結果と一致する。
実施例３
各種濃度のメチル・シリンゲート（MS）とラッカーゼの効果の調査
MSと0.01Ｍホスフェート・バッファー（Na2HPO4×2H2Oにより調整され、pHを硫酸により調整したもの）を使用したデニムの漂白を、各種投与量のMSとラッカーゼについてpHレンジ5.0〜6.5において比較した。
300mlのバッファーを、約12ｇの重量の１片のストーン・ウォッシュ・デニムと共に1200ml（全容量）のステンレス・スチール・ビーカーに入れ（デニム：液比＝１：25）、そして96％エタノール保存溶液中の（Lancasterから得た）15ｇ／ｌMS，１又は２mlを、（0.05LACU／ml＝19.5μｇ酵素タンパク質／ｇデニム又は0.10LACU／ml＝39μｇ酵素タンパク質／ｇデニムに対応する）0.132又は0.264mlの、114LACU／mlラッカーゼ保存溶液と共に、（236μＭ＝5.9μモルMS／ｇデニム又は472μＭ＝11.8μモルMS／ｇデニムに対応する）各ビーカーに加えた。これらのラッカーゼは、トラメテス・ビローサ（Trametes villosa）（TVL）由来であり、そしてNovo Nordisk A/S（SP 504）から入手可能である。
上記ビーカーを、密閉し、そしてAtlas LP２ launder−ometer内で30分間60℃において進行させた。工程終了後、デニムの布きれを、蒸留水中で濯ぎ、そして一夜風乾させ、そしてその漂白液の最終pHを計測した。
乾燥したとき、そのデニムの漂白の程度を、その漂白されたデニム及びそれからΔ（Ｌ*ａ*ｂ*）が計算されるところの出発材料の絶対Ｌ*ａ*ｂ*座標（６計測の平均）を計測することにより測定した。得られた結果を以下の表７中に示す。
表７から、MS又はラッカーゼのいずれかの濃度の増加が、漂白を高めることが分かる。さらに、最適pHは5.5〜6.0の範囲内にある。
実施例４
各種増強剤を使用したデニム漂白
強化剤：強化剤を、Lancaster（メチルシリンゲート）、Aldrich（アセトシリンゴン）から得、又はChem．Ber．67,1934，p.67中に記載されたように合成した。
酵素：トラメテス・ビローサ（Trametes villosa）（SP 504，Novo Nordisk A/Sから入手可能なもの）から得られたラッカーゼを、使用した。
手順：18mlの0.01Ｍ Ｂ＆Ｒ（Britt & Robinson）バッファーpH4.0，pH6.0、又はpH8.0を、50mlコニカル・フラスコに加えた。マグネット・バー（４cm）、とストーン・ウォッシュ・デニムの丸片（直径3.5cm＝0.4ｇデニム）を、テストされた強化剤の保存溶液１ml（96％エタノール中0.02Ｍ）及び酵素保存溶液（20LACU／ml）１mlと共に上記フラスコに入れた。
使用した条件の要約：
デニム：液比＝１：50，1.0LACU／ml＝780μｇ酵素タンパク質／ｇデニム、1000μＭ〜50μモル強化剤／ｇデニム。
上記フラスコを、水浴内でマグネット・スターラー上３時間インキュベートした（50℃及び約200rpm）。酵素による漂白の後、デニムの布きれを水で濯ぎ、そして15分間約110℃においてオーブン内で乾燥させ、その後、それを漂白の程度について評価した。この評価を、実施例１中に述べた手順に従って行った。
本発明は、染色された織物（fabric）、特にセルロース系織物、例えばデニムの表面の色の濃さにおける漂白された外観を提供するための方法に関する。
背景技術
デニム織物又はジーンズにおいて漂白されたストーン−ウォッシュ外観を提供する最も一般的な方法は、その織物の色の所望の局在化された色あせを提供するために軽石の存在中でそのような織物から作られたデニム又はジーンズを洗浄することによるものである。この後に、その織物が20分間まで60℃及びpH11〜12において次亜塩素酸ナトリウムにより処理される漂白工程、その後の中和段階及び濯ぎが続く。次亜塩素酸塩の使用は、亜塩素酸塩自体が望ましくないため、及びその中和がその後に、廃棄及び汚染問題を導く多量の塩を作り出すために、望ましくない。
漂白酵素、例えば、過酸化水素と一緒のペルオキシダーゼ又は酸素と一緒のオキシダーゼも、単独又はフェノール、例えばｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシベンゼン・スルホネート、バニリン又はｐ−ヒドロキシ安息香酸と共に、染色された繊維の漂白のために示唆されている（WO92/18683参照）。この開示された方法は、本発明の実施例１から分かるように効率の悪いものである。
従って、染色された織物において漂白された外観を提供するための必要性が未だ存在する。解決されるべき問題は容易ではない。なぜなら、VAT−染料、特に、インジゴ（indigo）は、水に溶解せず、そしてその繊維表面上にひじょうにコンパクトな構造をもち、酵素が攻撃することを困難にするからである。
発明の要約
驚ろくべきことに、染色された織物の表面の色の濃さにおいて漂白された外観を提供するためにひじょうに効率のよい方法であって、水性媒質中で、染色された織物と、フェノール酸化酵素系及び以下の式により表される強化剤：
発明の詳細な説明
染色された織物
本発明の方法は、最も有利には、セルロース含有織物、例えば、綿、ビスコース、レーヨン、ラミー、リネン、テンセル（Tencel）、それらの混合物、又はこれらの繊維のいずれかの混合物、又は合成繊維とこれらの繊維のいずれかとの混合物、例えば、綿とスパンデックスとの混合物（ストレッチ−デニム）に適用される。特に、その織物は、デニムである。本発明の方法は、他の天然材料、例えば、絹に適用されることもできる。
上記織物は、バット染料、例えば、インジゴ、又はインジゴ関連染料、例えば、チオインジゴにより染色されることができる。
本発明の方法の最も好ましい態様においては、その織物は、それから製造された衣類を含む、インジゴ染めデニムである。
フェノール酸化酵素系
用語“フェノール酸化酵素系”は、過酸化水素又は分子状酸素を使用することにより、フェノール性基を含む有機化合物を酸化することができる酵素を含む系を意味する。このような酵素の例は、ペルオキシダーゼ及びオキシダーゼである。
フェノール酸化酵素系が過酸化水素の源を必要とする場合、その源は、過酸化水素又は過酸化水素のその場の製造のための過酸化水素前駆体、例えば、過炭酸塩又は過ほう酸塩、又は過酸化水素生成酵素系、例えば、オキシダーゼ及びそのオキシダーゼのための基質、又はアミノ酸オキシダーゼ及び好適なアミノ酸、又は過酸化カルボン酸又はその塩であることができる。過酸化水素は、例えば、0.001〜25mM H2O2に対応する濃度において、その工程の初期又は間に添加されることができる。
このフェノール酸化酵素系が、分子状酸素を必要とする場合、その雰囲気からの分子状酸素は通常、十分な量において存在するであろう。
フェノール酸化酵素系の酵素は、ペルオキシダーゼ活性を示す酵素又はラッカーゼ又は以下に記載するようなラッカーゼ関連酵素であることができる。
本発明に従えば、染色された織物の表面の色の濃さにおける局在化した変化が生じるところの水性媒質中のフェノール酸化酵素の濃度は、0.001〜10000μｇ酵素タンパク質／ｇデニム、好ましくは、0.1〜1000μｇ酵素タンパク質／ｇデニム、より好ましくは、１〜100μｇ酵素タンパク質／ｇデニムであることができる。
ペルオキシダーゼ及びペルオキシダーゼ活性を有する化合物
ペルオキシダーゼ活性を有する化合物は、酵素分類（EC １．11．１．７）に包含されるいずれかのペルオキシダーゼ酵素、又はペルオキシダーゼ活性を示すそれから得られたいずれかの断片、それらの合成又は半合成誘導体であることができる（例えば、ポルフィリン環系又はマイクロペルオキシダーゼ、例えばUS4,077,768，EP537,381，WO91/05858及びWO92/16634を参照のこと。）。
好ましくは、本発明の方法において使用されるペルオキシダーゼは、植物（例えば、西洋のワサビ又は大豆ペルオキシダーゼ）又は微生物、例えば真菌又はバクテリアにより作り出されることができる。いくつかの好ましい真菌は、亜目不完全菌類（Deuteromycotina）、網糸状不完全菌類（Hyphomycetes）に関する株、例えば、フザリウム（Fusarium）、フミコーラ（Humicola）、トリコデルマ（Trichoderma）、ミロテシウム（Myrothecium）、ベルティシラム（Verticillum）、アルスロミセス（Arthromyces）、カルダリオミセス（Caldariomyces）、ウロカルディウム（Ulocladium）、エムベリシア（Embellisia）、クラドスポリウム（Cladosporium）、又はドレスチレラ（Dreschlera）、特にフザリウム・オキシスポラム（Fsarium oxysporum）、（DSM 2672）、フミコーラ・インソレンス（Humicola insolens）、トリコデルマ・レシイ（Trichoderma resii）、ミロセシウム・ベルカナ（Myrothecium verrucana）（IFO 6113）、ベルティシラム・アルボアトゥム（Verticillum alboatrum）、ベルティシラム・ダーリエ（Verticillum dahlie）、アルスロミセス・ラモサス（Arthromyces ramosus）（FERM P-7754）、カルダリオミセス・フマゴ（Caldariomyces fumago）、ウロクラディウム、カルタラム（Ulocladium chartarum）、エンベリシア・アリ（Embellisia alli）又はドレスクレラ・ハロデス（Dreschlera halodes）を含む。
他の好ましい真菌は、亜目担子菌類（Basidiomycotina）、網担子菌類（Basidiomycetes）に属する株、例えば、コプリナス（Coprinus）、ファネロカエート（Phanerochaete）、コリオラス（Coriolus）又はトラメテス（Trametes）、特にコプリナス・シネレウス（Coprinus cinereus）、ｆ．ミクロスポラス（f．microsporus）（IFO 8371）、コプリナス・マクロリザス（Coprinus macrorhizus）、ファネロカエテ・クリソスポリウム（Phanerochaete chrysosporium）（例えば、NA−12）又はトラメテス（Trametes（以前ポリポラス（Polyporus）といわれたもの）、例えば、Ｔ．ベルジコラー（T．versicolor）（例えば、PR４ 28−Ａ）を含む。
さらに好ましい真菌は、亜目接合菌類（Zygomycotina）、網ミコラセアエ（Mycoraceae）に属する株、例えば、リゾプス（Rhizopus）又はムコー（Mucor）、特に、ムコー・ヒエマリス（Mucor hiemalis）を含む。
いくつかの好ましいバクテリアは、放線菌目（Actinomycetales）の株、例えば、ストレプトミセス・スフェロイド（Streptomyces spheroides）（ATTC 23965）、ストレプトミセス・サーモビオラセウス（Streptomyces thermoviolaceus）（IFO 12382）又はストレプトベルティシラム・バーティシリウム（Streptoverticillum verticillium）SSP、バーティシリウム（Verticillium）を含む。
他の好ましいバクテリアは、バチルス・プミラス（Bacillus pumilus）（ATCC 12905）、バチルス・ステアロサーモフィラス（Bacillus stearothermophilus）、ロードバクター・スファエロイデス（Phodobacter sphaeroides）、ロードモナス・パルストリ（Rhodomonas palustri）、ストレプトコッカス・ラクティス（Streptococcus lactis）、シュードモナス・プロシニア（Pseudomonas purrocinia）（ATCC 15958）又はシュードモナス・フルオレッセンス（Pseudomonas fluorescens）（NRRL Ｂ−11）を含む。
さらに好ましいバクテリアは、ミクソコッカス（Myxococcus）、例えば、Ｍ．ビレッセンス（M．Virescens）に属する株を含む。
ペルオキシダーゼはさらに、そのペルオキシダーゼの発現を許容する条件下で、その培養基中、そのペルオキシダーゼをコーディングするDNA配列及びそのペルオキシダーゼをコーディングするDNA配列の発現を許容する機能をコーディングするDNA配列を担持する組換えDNAベクターにより形質転換された宿主細胞を培養し、そしてその培養物からそのペルオキシダーゼを回収することを含む方法により作り出されることができるものであることができる。
特に、組換えにより作り出されたペルオキシダーゼは、コプリナス種（Coprinus sp．）、特に、WO92/16634に従ってＣ．マクロリザス（C．macrorhizus）又はＣ．シネレウス（C．cinereus）から得られたペルオキシダーゼ、又はそれらの変異体、例えば、WO94/12621中に記載された変異体である。
本発明の文脈中、ペルオキシダーゼ作用性化合物は、チトクローム、ヘモグロビン又はペルオキシダーゼ酵素、及びそれらの合成又は半合成誘導体、鉄ポルフィン、鉄ポルフィリン、及び鉄フタロシアニン及びそれらの誘導体から得られたペルオキシダーゼ活性断片を含む。
ペルオキシダーゼ活性の測定：１ペルオキシダーゼ単位（PODU）は、以下の分析条件において１分間当り１μmolの過酸化水素の変換を触媒する酵素の量である：0.88mM過酸化水素、1.67mM ２，２′−アジノビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホネート）、0.1Ｍリン酸塩バッファー、pH7.0を30℃においてインキュベートし、418nmにより分光学的に計測する。
ラッカーゼ及びラッカーゼ関連酵素
本発明の文脈中、ラッカーゼ及びラッカーゼ関連酵素は、酵素分類（EC １．10．３．２）により含まれるいずれかのラッカーゼ酵素、酵素分類（EC １．10．３．１）に含まれるいずれかのカテコール・オキシダーゼ酵素、酵素分類（EC １．３．３．５）に含まれるいずれかのビリルビン・オキシダーゼ酵素又は酵素分類（EC １．14．99．１）に含まれるいずれかのモノフェノール・モノオキシゲナーゼ酵素を企図する。
これらのラッカーゼ酵素であって微生物及び植物起源をもつものが知られている。微生物ラッカーゼ酵素は、バクテリア又は真菌（糸状菌及び酵母を含む）から得られることができ、そして好適な例は、アスペルギルス（Aspergillus）、ニューロスポラ（Neurospora）、例えば、Ｎ．クラッサ（N．crassa）、ポドスポラ（Podospora）、ボトリティス（Botrytis）、コリビア（Collybia）、ホメス（Fomes）、レンチナス（Lentinus）、プレウロタス（Pleurotus）、トラメテス（Trametes）（以前、ポリポラス（Polyporus）といわれたもの）、例えば、Ｔ．ビローサ（T．villosa）及びＴ．ベルシコール（T．vercicolor）、リゾクトニア（Rhizoctonia）、例えば、Ｒ．ソラニ（R．solani）、コプリナス（Coprinus）、例えば、Ｃ．プリカティリス（C．plicatilis）及びＣ．シネレウス（C．cinereus）、サチレラ（Psatyrella）、ミセリオフソラ（Myceliophthora）、例えば、Ｍ．サーモフィラ（M．thermophila）、シタリジウム（Schytalidium）、フレビア（Phlebia）、例えばＰ．ラディタ（P．radita）（WO92/01046）、又はコリオラス（Coriolus）、例えば、Ｃ．ヒルスタス（C．hirsutus）（JP２−238885）の株から得られたラッカーゼを含む。
ラッカーゼ又はラッカーゼ関連酵素は、さらに、そのラッカーゼの発現を許容する条件下培養基中で、そのラッカーゼをコーディングするDNA配列及びそのラッカーゼをコーディングするDNA配列の発現を許容する機能をコーディングするDNA配列を担持する組換えDNAベクターにより形質転換された宿主細胞を培養し、そしてその培養物からそのラッカーゼを回収することを含む方法により作り出されるものであることができる。
ラッカーゼ活性の測定（LACU）
ラッカーゼ活性を、好気条件下でのシリンガルダジン（syringaldazin）の酸化から測定する。生じた紫色を、530nmにおいて分光光度計測する。分析条件は、19μＭシリンガルダジン、23.2mMアセテート・バッファー、pH5.5，30℃，１分間の反応時間である。
１ラッカーゼ単位（LACU）は、上記条件において１分当り1.0μモルのシリンガルダジンの変換を触媒する酵素の量である。
強化剤
本発明において使用される強化剤は、以下の式により記載されることができる：
好ましい態様においては、上述の式は、−CO−Ｅ、ここで、Ｅは、−Ｈ，−OH，−Ｒ、又は−ORであることができ；Ｒは、Ｃ1−Ｃ16アルキル、好ましくは、Ｃ1−Ｃ8アルキル、ここで、アルキルは、飽和又は不飽和、分枝又は非分枝であり、そして場合により、カルボキシ、スルホ又はアミノ基により置換されることができ；そしてＢとＣは、同一又は相違し又はＣmＨ2m+1；１≦ｍ≦５から選ばれることができる。
上述の式中、Ａは、ヒドロキシは、図示したようにそのパラ位に置かれる代わりにそのヒドロキシ基に対してメタに置かれることができる。
特別の態様においては、強化剤は、アセトシリンゴン、メチルシリンゲート、エチルシリンゲート、プロピルシリンゲート、ブチルシリンゲート、ヘキシルシリンゲート、又はオクチルシリンゲートである。
本発明の強化剤は、0.005〜1000μモル／ｇデニムの、好ましくは、0.05〜500μモル／ｇデニム、より好ましくは、0.5〜100μモル／ｇデニムの濃度で存在することができる。
強化剤の基の安定性
いずれの理論に限定されずに、その関連水性媒質中に形成される強化剤の基の半減期と、フェノール酸化酵素系と共にある染色された織物の表面の色の濃さにおける漂白された外観を提供することにおけるその効率との間の正の相関が存在すること、そしてこの半減期が、ｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシベンゼン・スルホネート、バニリン及びｐ−ヒドロキシ安息香酸（すなわち、WO92/18683中に開示された強化剤）から成る群から選ばれた物質のいずれの半減期よりも有意に長いことが、今般、企図される。
それ故、本発明は、さらに、染色された織物の表面の色の濃さにおける漂白された外観を提供する方法であって、水性媒質中、その染色された織物を、フェノール酸化酵素系及び強化剤と接触させることを含む方法に関する。ここでその強化剤は、その水性媒質中、ｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシベンゼン・スルホネート、バニリン及びｐ−ヒドロキシ安息香酸から成る群から選ばれた物質の中のいずれか１の基の、同一の水性媒質中でテストされた、半減期よりも少なくとも10倍長い半減期をもつ基を形成することができ、特に、その強化剤は、上記水性媒質中、ｐ−ヒドロキシ桂皮酸、２，４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシ安息香酸スルホネート、バニリン及びｐ−ヒドロキシ安息香酸の中のいずれか１の基の、同一の水性媒質中でテストされた半減期よりも少なくとも100倍長い半減期をもつ基を形成することができる。
この基の半減期は、とりわけ、その水性媒質のpH、温度、及びバッファーに依存するので、これらの全ての要因が、さまざまな強化剤の基の半減期を比較するときに同一であることがひじょうに重要である。
産業上の利用
本発明の方法は、典型的には、漂白された織物の外観を作るための産業機械において使用される。通常、本発明の方法は、既にストーンウォッシュされた織物上で行われるであろうが、本法は、先にストーンウォッシング工程を経験していない織物にも適用されることができる。最も一般的には、織物は、その製造者の指示に従ってその機械の能力に従ってその機械に加えられる。織物は、水を導入する前にその機械に加えられても、水が導入された後に加えられてもよい。フェノール酸化酵素系と本発明の強化剤は、織物を加える前に水の中に存在しても又はその織物が水に濡らされた後に加えられてもよい。本フェノール酸化酵素系は、本強化剤と同時に加えられても又はそれらは別々に加えられてもよい。織物が、フェノール酸化酵素系及び本発明の強化剤と接触された後に、その織物が十分に水で濡らされることを保証し、そして酵素系と本強化剤の作用を保証するために十分な時間期間にわたり、それは、その機械内で撹拌されなければならない。
吸収された有機ハロゲン（AOX）
非塩素系漂白工程の結果として、AOXは、本発明に係る方法が慣用の亜塩素酸塩に基づく方法に比較して使用されるとき、有意に低いことが予想される。
強度の損失
本発明に係る酵素／強化剤漂白方法は、インジゴをひじょうに特異的に攻撃し、そしてそれ故、本法が、綿のダメージ、特に強度の損失を全くもたらさないことが、企図される。
本発明を以下の実施例にさらに説明するが、請求に係る本発明の範囲をいずれの方法によるかを問わず限定しないことが意図される。
実施例１
デニム漂白のためのテスト手順を以下に記載するように行った：
強化剤：メチルシリンゲート（Methyl syringate）をランカスター（Lancaster）から得た。アセトシリンゴン、ｐ−ヒドロキシ安息香酸、ｐ−ヒドロキシ−ベンゼン−スルホネート、２，４−ジクロロフェノール、バニリン及びｐ−ヒドロキシ桂皮酸を、アルドリッチ（Aldrich）から得た。
酵素：トラメテス・ビローサ（Trametes villosa）（SP 504，Novo Nordisk A/Sから入手可能）由来のラッカーゼを、使用した。
手順：18mlの、0.01Ｍ Ｂ＆Ｒ（Britt & Robinson）バッファー（pH４，６又は８）を、50mlのコニカル・フラスコに入れた。マグネット棒（４cm）とストーン・ウォッシュされたデニムの丸い片（直径3.5cm、約0.4ｇ）を、テストされるべき強化剤の保存溶液１mlと酵素１mlと共にそのフラスコに入れて、１：50のデニム：液体（ｗ／ｗ）比を得た；強化剤と酵素の最終濃度を、以下の表１〜５中に示す。
このフラスコを、水浴中マグネット・スターラー上で３時間インキュベートした（50℃及び約200rpm）。酵素による漂白の後、このデニムの布きれを、蒸留水で濯ぎ、そして風乾し、その後、それを、漂白の程度について評価した。この評価を、視覚的に、そしてMinolta chroma Meter CR 200を使用することにより行った。
評価：（Minolta Corp．から入手可能なMinolta Chroma Meter CR 200を、漂白の程度を評価し、そして、色空間座標Ｌ*ａ*ｂ*（CIELAB−システム）における変化を使用していずれかの変色を推定するために、製造者の指示に従って使用した：ここで、Ｌは、０〜100のスケールにおける白／黒の変化を与え、ａは、緑（−ａ*）／赤（＋ａ*）における変化を与え、そしてｂは、青（−ｂ*）／黄（＋ｂ*）における変化を与える。Ｌ*における減少は、黒色における増加（白色における減少）を意味し、Ｌ*における増加は、白色における増加（黒色における減少）を意味し、ａ*における減少は、緑色における増加（赤色における減少）を意味し、ａ*における増加は、赤色における増加（緑色における減少）を意味し、ｂ*における減少は、青色における増加（黄色における減少）を意味し、そしてｂ*における増加は、黄色における増加（青色における減少）を意味する。
漂白されたストーン・ウォッシュされたデニムの布きれを、非処理ストーン・ウォッシュ布きれと比較した。
Minolta Chroma Meter CR 200を、Ｌ*ａ*ｂ*座標系において操作した。使用した光源は、CIE光標準Ｃであった。各計測は、３回の計測の平均であった。上記装置を、Minolta換算プレート（白）を使用して換算した。10の非処理デニム布きれを各２回計測し、そして座標Ｌ*ａ*ｂ*の平均を計算し、そして対照として組み入れた。次に上記サンプルの座標を、上記座標Ｌ*ａ*ｂ*の対照値からの、各布きれについての３回の計測値の平均の差異（Δ）として計算した。
実施例２
異なるバッファー中での性能の比較
メチル・シリンゲート（MS）を使用するデニムの漂白を、以下の３つのバッファー：ホスフェート、オギザレート、及びシトレート、それぞれ、Na2HPO4×2H2O（pHを硫酸により調整）、Na2−オキザレート（pHを硫酸により調整）、及びNa−アセテート×３H2O（pHを硫酸により調整）から調整されたもの、全て0.01Ｍ、中で比較した。各バッファーを、それぞれ、pH4.0，5.0，6.0、及び7.0で調製した。300mlの着目のバッファーを、約12ｇの重量の１片のストーン・ウォッシュ・デニムと共に1200ml（全容量）のステンレス・スチール・ビーカーに入れ（デニム：液比＝１：25）；96％エタノール保存溶液中（Lancasterから得た）１mlの15ｇ／ｌMSを、（0.05LACU／ml又は19.5μｇ酵素タンパク質／ｇデニムに対応する）114LACU／mlラッカーゼ保存溶液0.132mlと共に（236μＭ又は5.9μモルMS／ｇデニムに対応する）各ビーカーに加えた。ラッカーゼは、トラメテス・ビローサ（Trametes villosa（TVL））由来であり、そしてNovo Nordisk A/S（SP 504）から入手可能であった。上記ビーカーを密閉し、そしてAtlas LP２ launder−ometer内で30分間60℃において進行させた。工程終了後、上記デニム布きれを、蒸留水中で濯ぎ、そして一夜風乾し、そしてその漂白液の最終pHを計測した。
乾燥したとき、デニムの漂白の程度を、その漂白されたデニムと、それからΔ（Ｌ*ａ*ｂ*）が計算されるところの出発材料の（６計測値の平均である）絶対Ｌ*ａ*ｂ*座標を計測して測定した。得られた結果を、以下の表６中に示す。
実施例３
各種濃度のメチル・シリンゲート（MS）とラッカーゼの効果の調査
MSと0.01Ｍホスフェート・バッファー（Na2HPO4×2H2Oにより調整され、pHを硫酸により調整したもの）を使用したデニムの漂白を、各種投与量のMSとラッカーゼについてpHレンジ5.0〜6.5において比較した。
300mlのバッファーを、約12ｇの重量の１片のストーン・ウォッシュ・デニムと共に1200ml（全容量）のステンレス・スチール・ビーカーに入れ（デニム：液比＝１：25）、そして96％エタノール保存溶液中の（Lancasterから得た）15ｇ／ｌMS，１又は２mlを、（0.05LACU／ml＝19.5μｇ酵素タンパク質／ｇデニム又は0.10LACU／ml＝39μｇ酵素タンパク質／ｇデニムに対応する）0.132又は0.264mlの、114LACU／mlラッカーゼ保存溶液と共に、（236μＭ＝5.9μモルMS／ｇデニム又は472μＭ＝11.8μモルMS／ｇデニムに対応する）各ビーカーに加えた。これらのラッカーゼは、トラメテス・ビローサ（Trametes villosa）（TVL）由来であり、そしてNovo Nordisk A/S（SP 504）から入手可能である。
上記ビーカーを、密閉し、そしてAtlas LP２ launder−ometer内で30分間60℃において進行させた。工程終了後、デニムの布きれを、蒸留水中で濯ぎ、そして一夜風乾させ、そしてその漂白液の最終pHを計測した。
乾燥したとき、そのデニムの漂白の程度を、その漂白されたデニム及びそれからΔ（Ｌ*ａ*ｂ*）が計算されるところの出発材料の絶対Ｌ*ａ*ｂ*座標（６計測の平均）を計測することにより測定した。得られた結果を以下の表７中に示す。
実施例４
各種増強剤を使用したデニム漂白
強化剤：強化剤を、Lancaster（メチルシリンゲート）、Aldrich（アセトシリンゴン）から得、又はChem．Ber．67,1934，p.67中に記載されたように合成した。
酵素：トラメテス・ビローサ（Trametes villosa）（SP 504，Novo Nordisk A/Sから入手可能なもの）から得られたラッカーゼを、使用した。
手順：18mlの0.01Ｍ Ｂ＆Ｒ（Britt & Robinson）バッファーpH4.0，pH6.0、又はpH8.0を、50mlコニカル・フラスコに加えた。マグネット・バー（４cm）、とストーン・ウォッシュ・デニムの丸片（直径3.5cm＝0.4ｇデニム）を、テストされた強化剤の保存溶液１ml（96％エタノール中0.02Ｍ）及び酵素保存溶液（20LACU／ml）１mlと共に上記フラスコに入れた。
使用した条件の要約：
デニム：液比＝１：50，1.0LACU／ml＝780μｇ酵素タンパク質／ｇデニム、1000μＭ〜50μモル強化剤／ｇデニム。
上記フラスコを、水浴内でマグネット・スターラー上３時間インキュベートした（50℃及び約200rpm）。酵素による漂白の後、デニムの布きれを水で濯ぎ、そして15分間約110℃においてオーブン内で乾燥させ、その後、それを漂白の程度について評価した。この評価を、実施例１中に述べた手順に従って行った。
Claims (14)
- 染色された織物の表面の色の濃さにおいて漂白された外観を提供する方法であって、水性媒質中で、染色された織物を、フェノール酸化酵素系及び以下の式により表される強化剤：
｛式中、Ａは、基：-D，-CH=CH-D，-CH=CH-CH=CH-D，-CH=N-D，-N=N-D又は-N=CH-Dであり、ここでＤは、-CO-E，-SO2-E，-N-XY及び-N+-XYZから成る群から選ばれ、ここでＥは、-H，-OH，-R又は-ORであってよく、そしてＸとＹとＺは、同一でも又は相違してもよく、そして-H及び-Rから選ばれてよく、ここでＲは、C1-C16アルキルであり、このアルキルは、飽和又は不飽和、分枝又は非分枝であってよく、そして場合によりカルボキシ、スルホ又はアミノ基で置換されてよく；そしてＢとＣは、同一でも又は相違してもよく、そしてCmH2m+1；1≦m≦５から選ばれてよい｝と接触させることを含む方法。 - 前記のＲが、C1-C8アルキルである、請求項１の方法。
- 前記の織物が、バット染料により染色される、請求項１又は２に記載の方法。
- 前記の織物が、セルロース系織物、又はセルロース系繊維の混合物、又はセルロース系繊維と合成繊維との混合物である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
- 前記の織物が、デニムである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
- 前記のフェノール酸化酵素系が、ペルオキシダーゼと過酸化水素源である、請求項１に記載の方法。
- 前記のペルオキシダーゼが、西洋ワサビ・ペルオキシダーゼ、大豆ペルオキシダーゼ、あるいは又はコプリナス菌(Coprinus)、バチルス菌(Bacillus)又はミクソコッカス菌(Myxococcus)由来のペルオキシダーゼ酵素である、請求項６に記載の方法。
- 前記の過酸化水素源が、過酸化水素又は過酸化水素前駆体、あるいは過酸化水素生成酵素系、あるいは過酸化カルボン酸又はその塩である、請求項６又は７に記載の方法。
- 前記の水性媒質が、0.001〜25mM H2O2に対応する濃度で、H2O2又はH2O2前駆体を含んでいる、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
- 前記のフェノール酸化酵素系が、酸素と共にあるラッカーゼ又はラッカーゼ類縁酵素である、請求項１に記載の方法。
- 前記のラッカーゼが、トラメテス菌(Trametes)、又はコプリナス菌(Coprinus)、又はミセリオフトーラ菌(Myceliophthora)に由来する、請求項10に記載の方法。
- 前記のフェノール酸化酵素の濃度が、0.001〜10000μｇ酵素タンパク質／ｇデニムに相当する、請求項５に記載の方法。
- 前記の強化剤が、アセトシリンゴン(acetosyringone)、メチルシリンゲート(methyl syringate)、エチルシリンゲート、プロピルシリンゲート、ブチルシリンゲート、ヘキシルシリンゲート、及びオクチルシリンゲートから成る群に属する、請求項１〜12のいずれか１項に記載の方法。
- 前記の水性媒質中の強化剤が、0.005〜1000μモル／ｇデニムの濃度で存在する、請求項５に記載の方法。
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