JP3525837B2 - 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 - Google Patents
電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法Info
- Publication number
- JP3525837B2 JP3525837B2 JP36624299A JP36624299A JP3525837B2 JP 3525837 B2 JP3525837 B2 JP 3525837B2 JP 36624299 A JP36624299 A JP 36624299A JP 36624299 A JP36624299 A JP 36624299A JP 3525837 B2 JP3525837 B2 JP 3525837B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- oocyte
- electrode
- glass
- cell
- glass electrode
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/483—Physical analysis of biological material
- G01N33/487—Physical analysis of biological material of liquid biological material
- G01N33/48707—Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
- G01N33/48728—Investigating individual cells, e.g. by patch clamp, voltage clamp
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は，卵母細胞を用いる
電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法に関す
る。
電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法に関す
る。
【０００２】
【従来の技術】生体の電気的性質に関する科学は「電気
生理学」として約２００年の歴史を持ち，生理学の中で
も主要な分野の一つとして発展してきた。特に神経・筋
肉に於いては活動電位が興奮の最も本質的な現象であ
り，興奮伝導が電流の媒介によって行われることが明ら
かにされ，電気生理学はその最も重要な研究分野となっ
ている。
生理学」として約２００年の歴史を持ち，生理学の中で
も主要な分野の一つとして発展してきた。特に神経・筋
肉に於いては活動電位が興奮の最も本質的な現象であ
り，興奮伝導が電流の媒介によって行われることが明ら
かにされ，電気生理学はその最も重要な研究分野となっ
ている。
【０００３】電位固定法（Ｖｏｌｔａｇｅ ｃｌａｍｐ
ｍｅｔｈｏｄ）は１９４０年代にアメリカのＣｏｌｅ
によって提案された。この電位固定法は，膜電位が変動
する瞬間に膜電位を抑制する方向に電流を流すフィード
バック回路を利用することで膜電位を常に一定にする方
法である。この電位固定法を用いて膜電位とイオン透過
性の関係についての定量的な計測が可能になり，イギリ
スのＨｏｄｇｉｋｉｎ，ＨｕｘｌｅｙとＫａｔｚらは電
位固定法を用いてヤリイカの巨大神経の膜コンダクタン
スの性質を解析し，その後の神経生物学研究の基礎にな
る多くの業績を挙げた。
ｍｅｔｈｏｄ）は１９４０年代にアメリカのＣｏｌｅ
によって提案された。この電位固定法は，膜電位が変動
する瞬間に膜電位を抑制する方向に電流を流すフィード
バック回路を利用することで膜電位を常に一定にする方
法である。この電位固定法を用いて膜電位とイオン透過
性の関係についての定量的な計測が可能になり，イギリ
スのＨｏｄｇｉｋｉｎ，ＨｕｘｌｅｙとＫａｔｚらは電
位固定法を用いてヤリイカの巨大神経の膜コンダクタン
スの性質を解析し，その後の神経生物学研究の基礎にな
る多くの業績を挙げた。
【０００４】これらの成果はジャーナル・オブ・フィジ
オロジー，第１１６号（１９５２年），第４２４頁から
第４４８頁（Ｈｏｄｇｉｋｉｎ，Ａ，Ｌ．，Ｈｕｘｌｅ
ｙ，Ａ．Ｆ． ａｎｄ Ｋａｔｚ，Ｂ．，Ｊ．Ｐｈｙｓ
ｉｏｌ．，１１６（１９５２），ｐｐ．４２４−４４
８）に報告されている。
オロジー，第１１６号（１９５２年），第４２４頁から
第４４８頁（Ｈｏｄｇｉｋｉｎ，Ａ，Ｌ．，Ｈｕｘｌｅ
ｙ，Ａ．Ｆ． ａｎｄ Ｋａｔｚ，Ｂ．，Ｊ．Ｐｈｙｓ
ｉｏｌ．，１１６（１９５２），ｐｐ．４２４−４４
８）に報告されている。
【０００５】その後，この方法はＮｅｈｅｒとＳａｃｋ
ｍａｎによって更に洗練された。彼らは生きた細胞から
単一チャネル分子に流れる電流をリアルタイムで計測す
ることに成功した。この技術はパッチクランプ法と呼ば
れる。このパッチクランプ法の技術については，サック
マンらによって「シングルチャネルレコーディング」
（１９９５年）（Ｓａｃｋｍａｎ，Ｂ．，Ｎｅｈｅｒ，
Ｅ．（ｅｄｓ．）：Ｓｉｎｇｌｅ−Ｃｈａｎｎｅｌ Ｒ
ｅｃｏｒｄｉｎｇ（２ｎｄ ｅｄ．），Ｐｌｅｎｕｍ
Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９５））に於いて
詳しく述べられている。
ｍａｎによって更に洗練された。彼らは生きた細胞から
単一チャネル分子に流れる電流をリアルタイムで計測す
ることに成功した。この技術はパッチクランプ法と呼ば
れる。このパッチクランプ法の技術については，サック
マンらによって「シングルチャネルレコーディング」
（１９９５年）（Ｓａｃｋｍａｎ，Ｂ．，Ｎｅｈｅｒ，
Ｅ．（ｅｄｓ．）：Ｓｉｎｇｌｅ−Ｃｈａｎｎｅｌ Ｒ
ｅｃｏｒｄｉｎｇ（２ｎｄ ｅｄ．），Ｐｌｅｎｕｍ
Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９５））に於いて
詳しく述べられている。
【０００６】電気的シグナルを記録するための電極とし
て，直径約１ｍｍの硬質ガラス毛細管の中央部をヒータ
ーで熱して軟らかくし，長軸方向に急速に引き伸ばして
引き切ったものを用意する。引き伸ばされた先端が開口
しており，その直径が１μｍ以下であるものを選んで，
この毛細管の内部に３Ｍの塩化カリウム（ＫＣｌ）溶液
を注入して満たし，これを電極として手動で細胞に突き
刺すことで膜電位を測定することが可能である。
て，直径約１ｍｍの硬質ガラス毛細管の中央部をヒータ
ーで熱して軟らかくし，長軸方向に急速に引き伸ばして
引き切ったものを用意する。引き伸ばされた先端が開口
しており，その直径が１μｍ以下であるものを選んで，
この毛細管の内部に３Ｍの塩化カリウム（ＫＣｌ）溶液
を注入して満たし，これを電極として手動で細胞に突き
刺すことで膜電位を測定することが可能である。
【０００７】ホルモンや神経伝達物質の多くは，７回膜
貫通型受容体あるいはＧ蛋白共役型受容体と呼ばれる受
容体を介して細胞に情報を伝えている。近年ヒトゲノム
計画が急速に進展し，遺伝子の塩基配列に関する情報が
大量に蓄積しており，リガンドが不明のいわゆる「オー
ファン」の受容体遺伝子も数多く存在しているものと推
定されている。
貫通型受容体あるいはＧ蛋白共役型受容体と呼ばれる受
容体を介して細胞に情報を伝えている。近年ヒトゲノム
計画が急速に進展し，遺伝子の塩基配列に関する情報が
大量に蓄積しており，リガンドが不明のいわゆる「オー
ファン」の受容体遺伝子も数多く存在しているものと推
定されている。
【０００８】７回膜貫通型受容体のリガンドはホルモ
ン，情報伝達物質，サイトカイン，酵素など多岐にわた
り，分子種としてもアミン，アミノ酸，ペプチド，タン
パク質，脂質，核酸，イオンなどが含まれる。更に，光
や匂い，味などに対する感覚受容体も７回膜貫通型受容
体の一種であり，生体機能の調節に重要な役割を果たし
ている。このため，７回膜貫通型受容体は，しばしば疾
患にも深く関与しているため創薬の重要なターゲットと
されてきた。実際，市販されている医薬品には７回膜貫
通型受容体に結合することにより薬効を示すものが多
い。このようなオーファン受容体のリガンドをスクリー
ニングし，決定する手段の一つとしても，電気生理法は
重要である。
ン，情報伝達物質，サイトカイン，酵素など多岐にわた
り，分子種としてもアミン，アミノ酸，ペプチド，タン
パク質，脂質，核酸，イオンなどが含まれる。更に，光
や匂い，味などに対する感覚受容体も７回膜貫通型受容
体の一種であり，生体機能の調節に重要な役割を果たし
ている。このため，７回膜貫通型受容体は，しばしば疾
患にも深く関与しているため創薬の重要なターゲットと
されてきた。実際，市販されている医薬品には７回膜貫
通型受容体に結合することにより薬効を示すものが多
い。このようなオーファン受容体のリガンドをスクリー
ニングし，決定する手段の一つとしても，電気生理法は
重要である。
【０００９】電気生理法は膜タンパク質分子の機能をリ
アルタイムで計測することのできる数少ない方法の一つ
であり，受容体タンパク質の中心的研究法である。従っ
て，電気生理法は医薬品開発に於いても欠くことのでき
ない技術であり，将来的にもその重要性は増していくも
のと考えられる。
アルタイムで計測することのできる数少ない方法の一つ
であり，受容体タンパク質の中心的研究法である。従っ
て，電気生理法は医薬品開発に於いても欠くことのでき
ない技術であり，将来的にもその重要性は増していくも
のと考えられる。
【００１０】なお，特開平１１−０８３７８５号公報
に，卵母細胞にヒスタミン受容体を発現させ，卵母細胞
のヒスタミンに対する応答を計測し，組織特異的にアレ
ルギー反応を検出する技術が記載されている。
に，卵母細胞にヒスタミン受容体を発現させ，卵母細胞
のヒスタミンに対する応答を計測し，組織特異的にアレ
ルギー反応を検出する技術が記載されている。
【００１１】
【発明が解決しようとする課題】上記したように，電気
生理法はイオンチャネルの研究及び医薬品の開発に欠か
せないものである。しかし，電気生理実験を行なうため
には多くの煩雑な手作業を必要とするという問題があ
る。まず，測定者は細いガラス管を熱して引き延ばし，
先端の直径が１μｍ以下のガラス微小電極を手作業で作
成する必要がある。更に，ガラス電極を細胞に挿入する
ためには，マイクロマニュピレーターを手動で操作する
必要がある。
生理法はイオンチャネルの研究及び医薬品の開発に欠か
せないものである。しかし，電気生理実験を行なうため
には多くの煩雑な手作業を必要とするという問題があ
る。まず，測定者は細いガラス管を熱して引き延ばし，
先端の直径が１μｍ以下のガラス微小電極を手作業で作
成する必要がある。更に，ガラス電極を細胞に挿入する
ためには，マイクロマニュピレーターを手動で操作する
必要がある。
【００１２】マイクロマニュピレーターはガラス電極を
保持し，ガラス電極の微量変位を手動で調節できる装置
であるが，その操作については熟練した技術が要求され
るという問題がある。一般にガラス電極を細胞内に挿入
するためには手動でマイクロマニュピレーターを用い
る。このため，ガラス電極が考案された１９４０年代か
ら現在に至るまで電気生理に関する計測は測定者の職人
的な手作業に大きく依存していた。
保持し，ガラス電極の微量変位を手動で調節できる装置
であるが，その操作については熟練した技術が要求され
るという問題がある。一般にガラス電極を細胞内に挿入
するためには手動でマイクロマニュピレーターを用い
る。このため，ガラス電極が考案された１９４０年代か
ら現在に至るまで電気生理に関する計測は測定者の職人
的な手作業に大きく依存していた。
【００１３】既存技術を用いてガラス電極の卵母細胞へ
の挿入の自動化を考える時，画像認識の応用が考えられ
る。上部からＣＣＤカメラにより卵母細胞の膜表面の存
在位置を計測し，ガラス電極をモータなどで駆動し移動
させ，挿入することが考えられる。しかし，ガラス電極
の挿入時には卵母細胞の膜表面は弾性変形を伴うため，
上方からの画像認識により，膜内にガラス電極が正確に
挿入されたかどうかについて判断を行うことは極めて難
しい。また，画像認識によるガラス電極の挿入制御は，
極めて高価になるため現実的な制御手段とはいえない。
の挿入の自動化を考える時，画像認識の応用が考えられ
る。上部からＣＣＤカメラにより卵母細胞の膜表面の存
在位置を計測し，ガラス電極をモータなどで駆動し移動
させ，挿入することが考えられる。しかし，ガラス電極
の挿入時には卵母細胞の膜表面は弾性変形を伴うため，
上方からの画像認識により，膜内にガラス電極が正確に
挿入されたかどうかについて判断を行うことは極めて難
しい。また，画像認識によるガラス電極の挿入制御は，
極めて高価になるため現実的な制御手段とはいえない。
【００１４】卵母細胞あるいは培養細胞を用いた電気生
理実験に於ける電流変化応答は細胞によるばらつきが大
きいため，多数の細胞からの電流応答を平均化すること
でデータの信頼性を増す必要がある。従って，十分に信
頼できるデータを得るためには各計測者が手作業で細胞
にガラス電極を挿入する電気生理実験を多数回行う必要
がある。そのため，信頼できるデータを得るためには長
時間と多大な労力を要するという問題がある。
理実験に於ける電流変化応答は細胞によるばらつきが大
きいため，多数の細胞からの電流応答を平均化すること
でデータの信頼性を増す必要がある。従って，十分に信
頼できるデータを得るためには各計測者が手作業で細胞
にガラス電極を挿入する電気生理実験を多数回行う必要
がある。そのため，信頼できるデータを得るためには長
時間と多大な労力を要するという問題がある。
【００１５】本発明の目的は，ガラス電極からの電気信
号の基づいてガラス電極を卵母細胞膜内に挿入し，膜電
位を固定し薬物投与した時の反応を自動計測する卵母細
胞を用いる電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測
方法を提供することにある。
号の基づいてガラス電極を卵母細胞膜内に挿入し，膜電
位を固定し薬物投与した時の反応を自動計測する卵母細
胞を用いる電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測
方法を提供することにある。
【００１６】
【課題を解決するための手段】本発明の電気生理自動計
測装置では，アース電極が配置又は形成されるセルの複
数個（例えば，８×１２＝９６個）が規則正しく配列さ
れ成型されている容器の各セルに卵母細胞を保持し，容
器を保持し移動させて所定のセル内の卵母細胞の位置決
めをＸＹステージの移動により行ない，所定のセル内の
卵母細胞に１本又は２本のガラス電極を挿入手段により
挿入して，ガラス電極から発する電気信号を検出手段に
より検出して，卵母細胞の膜電位を固定手段により所定
の値に固定して，マイクロシリンジにより卵母細胞に化
学物質を投与し，卵母細胞についての電気生理測定を自
動で行なう。
測装置では，アース電極が配置又は形成されるセルの複
数個（例えば，８×１２＝９６個）が規則正しく配列さ
れ成型されている容器の各セルに卵母細胞を保持し，容
器を保持し移動させて所定のセル内の卵母細胞の位置決
めをＸＹステージの移動により行ない，所定のセル内の
卵母細胞に１本又は２本のガラス電極を挿入手段により
挿入して，ガラス電極から発する電気信号を検出手段に
より検出して，卵母細胞の膜電位を固定手段により所定
の値に固定して，マイクロシリンジにより卵母細胞に化
学物質を投与し，卵母細胞についての電気生理測定を自
動で行なう。
【００１７】電気生理測定を自動で行なうために，ＸＹ
ステージ，挿入手段，固定手段，及びマイクロシリンジ
は，制御手段により制御される。制御手段は，ガラス電
極から発する電気信号に基づいて，ガラス電極のセル内
の溶液面への接触，卵母細胞の膜表面への接触，卵母細
胞の膜内への挿入を検出識別して，ガラス電極の卵母細
胞への挿入の制御，マイクロシリンジによる卵母細胞へ
の化学物質の投与の制御を行ない，電気生理自動計測装
置の自動化を可能とする。即ち，ガラス電極の抵抗の測
定，ガラス電極の零点電位の調整，ガラス電極のバイブ
レーション，膜電位の固定及び化学物質の投与の制御に
より自動計測を行う。
ステージ，挿入手段，固定手段，及びマイクロシリンジ
は，制御手段により制御される。制御手段は，ガラス電
極から発する電気信号に基づいて，ガラス電極のセル内
の溶液面への接触，卵母細胞の膜表面への接触，卵母細
胞の膜内への挿入を検出識別して，ガラス電極の卵母細
胞への挿入の制御，マイクロシリンジによる卵母細胞へ
の化学物質の投与の制御を行ない，電気生理自動計測装
置の自動化を可能とする。即ち，ガラス電極の抵抗の測
定，ガラス電極の零点電位の調整，ガラス電極のバイブ
レーション，膜電位の固定及び化学物質の投与の制御に
より自動計測を行う。
【００１８】各セルの形状は，円錐の先端に半球を持つ
形状を有し，各セルに卵母細胞を効率よく保持する。
形状を有し，各セルに卵母細胞を効率よく保持する。
【００１９】より好ましくは，電気生理自動計測装置
を，遮蔽手段により電磁波から遮蔽する。また，肉眼で
セルに保持された卵母細胞を光学的にモニタする光学顕
微鏡を配置しても良い。
を，遮蔽手段により電磁波から遮蔽する。また，肉眼で
セルに保持された卵母細胞を光学的にモニタする光学顕
微鏡を配置しても良い。
【００２０】アース電極は，導電性を持つ金属により成
形され，表面が塩化銀により被覆され，セルに個別にア
ース線を付加する。容器を寒天により成型して，寒天の
一部にアース電極を接触させて複数のセルを一様に接地
できる。また，アース電極を１軸上でセルに保持された
溶液内で移動させて，セル毎に独立して接地する構成と
しても良い。
形され，表面が塩化銀により被覆され，セルに個別にア
ース線を付加する。容器を寒天により成型して，寒天の
一部にアース電極を接触させて複数のセルを一様に接地
できる。また，アース電極を１軸上でセルに保持された
溶液内で移動させて，セル毎に独立して接地する構成と
しても良い。
【００２１】より具体的には，８×１２＝９６個の卵母
細胞が各セル内に規則的に配置された卵母細胞保持用プ
レートは，ＸＹステージ上に搭載される。１つの卵母細
胞が保持されているセルにはそれぞれ独立にアース電極
が付加されている。実体顕微鏡の視野中央にＸＹステー
ジにより位置決めされた１つの卵母細胞に，２本のガラ
ス電極をモーター駆動による移動により自動挿入する。
ＸＹステージ，ガラス電極を駆動するモーター，リガン
ド投与用マイクロシリンジを駆動するモーター及び電気
生理計測装置を，ガラス電極からの電気信号に基づいて
外部より一括して制御用コンピューターで制御し，複数
の卵母細胞についての電気生理測定を自動で行なうこと
ができる。計測された卵母細胞の電流応答は計測記録用
コンピューターで記録する。
細胞が各セル内に規則的に配置された卵母細胞保持用プ
レートは，ＸＹステージ上に搭載される。１つの卵母細
胞が保持されているセルにはそれぞれ独立にアース電極
が付加されている。実体顕微鏡の視野中央にＸＹステー
ジにより位置決めされた１つの卵母細胞に，２本のガラ
ス電極をモーター駆動による移動により自動挿入する。
ＸＹステージ，ガラス電極を駆動するモーター，リガン
ド投与用マイクロシリンジを駆動するモーター及び電気
生理計測装置を，ガラス電極からの電気信号に基づいて
外部より一括して制御用コンピューターで制御し，複数
の卵母細胞についての電気生理測定を自動で行なうこと
ができる。計測された卵母細胞の電流応答は計測記録用
コンピューターで記録する。
【００２２】本発明の電気生理自動計測方法では，卵母
細胞を保持し，アース電極が配置又は形成されるセルの
複数個を有する容器をＸＹステージに保持して，ＸＹス
テージを移動させて，所定のセル内の卵母細胞の位置決
めを行ない，所定のセル内の卵母細胞に１本又は２本の
ガラス電極を挿入して，ガラス電極から発する電気信号
を検出して，卵母細胞の膜電位を所定の値に固定して，
マイクロシリンジにより卵母細胞に化学物質を投与し，
卵母細胞についての電気生理測定を自動で行なう。電気
生理測定を自動で行なうために，ＸＹステージの移動の
制御，卵母細胞へのガラス電極を挿入の制御，卵母細胞
の膜電位の固定の制御，卵母細胞への化学物質の投与の
制御の，各制御を，ガラス電極から発する電気信号に基
づいて行なう。上記の各制御は，ガラス電極のセル内の
溶液面への接触，卵母細胞の膜表面への接触，卵母細胞
の膜内への挿入を検出識別することにより行ない，電気
生理自動計測の自動化を可能とする。
細胞を保持し，アース電極が配置又は形成されるセルの
複数個を有する容器をＸＹステージに保持して，ＸＹス
テージを移動させて，所定のセル内の卵母細胞の位置決
めを行ない，所定のセル内の卵母細胞に１本又は２本の
ガラス電極を挿入して，ガラス電極から発する電気信号
を検出して，卵母細胞の膜電位を所定の値に固定して，
マイクロシリンジにより卵母細胞に化学物質を投与し，
卵母細胞についての電気生理測定を自動で行なう。電気
生理測定を自動で行なうために，ＸＹステージの移動の
制御，卵母細胞へのガラス電極を挿入の制御，卵母細胞
の膜電位の固定の制御，卵母細胞への化学物質の投与の
制御の，各制御を，ガラス電極から発する電気信号に基
づいて行なう。上記の各制御は，ガラス電極のセル内の
溶液面への接触，卵母細胞の膜表面への接触，卵母細胞
の膜内への挿入を検出識別することにより行ない，電気
生理自動計測の自動化を可能とする。
【００２３】本発明では，ガラス電極を卵母細胞膜に自
動挿入し膜電位を保持し，薬物投与した時の反応を自動
計測する電気生理自動計測装置を提供する。図３を参照
して，以下に本発明の原理を説明する。まず，空中にあ
るガラス電極１０３をセル内に保持された卵母細胞６０
１に向けて移動する。ガラス電極１０３が溶液面６０３
に着水し，アース電極６０４と通電すると，ガラス電極
の電位は０ｍＶ付近を示す。ガラス電極１０３を移動さ
せ卵母細胞６０１の膜表面にガラス電極１０３が接触す
る時に，−５ｍＶ程度の電位を示す。更に，ガラス電極
１０２を移動させ膜内にガラス電極１０２が挿入された
時，−２０ｍＶ程度の電位を示す。以上のガラス電極の
電位状態を制御用コンピューターにより取り込み，ガラ
ス電極１０２と卵母細胞６０１の相対位置を識別し，ガ
ラス電極１０２を卵母細胞６０１に挿入し膜電位を保持
し薬物を投与する，一連の電気生理計測を自動化する。
動挿入し膜電位を保持し，薬物投与した時の反応を自動
計測する電気生理自動計測装置を提供する。図３を参照
して，以下に本発明の原理を説明する。まず，空中にあ
るガラス電極１０３をセル内に保持された卵母細胞６０
１に向けて移動する。ガラス電極１０３が溶液面６０３
に着水し，アース電極６０４と通電すると，ガラス電極
の電位は０ｍＶ付近を示す。ガラス電極１０３を移動さ
せ卵母細胞６０１の膜表面にガラス電極１０３が接触す
る時に，−５ｍＶ程度の電位を示す。更に，ガラス電極
１０２を移動させ膜内にガラス電極１０２が挿入された
時，−２０ｍＶ程度の電位を示す。以上のガラス電極の
電位状態を制御用コンピューターにより取り込み，ガラ
ス電極１０２と卵母細胞６０１の相対位置を識別し，ガ
ラス電極１０２を卵母細胞６０１に挿入し膜電位を保持
し薬物を投与する，一連の電気生理計測を自動化する。
【００２４】本発明の卵母細胞を用いる電気生理自動計
測装置では，電気生理計測を自動化し計測者の負担を軽
減し，計測の回数を増すことによりデータの信頼性を向
上させることが可能となる。また，自動化により多数の
試料の計測を高速化し，多数の電気生理計測を短時間に
処理することが可能となる。更に，塩基配列が既知であ
るが機能が未知である遺伝子の機能をスクリーニングす
ることも可能となる。
測装置では，電気生理計測を自動化し計測者の負担を軽
減し，計測の回数を増すことによりデータの信頼性を向
上させることが可能となる。また，自動化により多数の
試料の計測を高速化し，多数の電気生理計測を短時間に
処理することが可能となる。更に，塩基配列が既知であ
るが機能が未知である遺伝子の機能をスクリーニングす
ることも可能となる。
【００２５】
【発明の実施の形態】図１は，本発明の実施例の電気生
理自動計測装置の構成例を示す図である。本発明の実施
例の電気生理自動計測装置では，複数の細胞を電気生理
法を用いて連続かつ自動に計測する。
理自動計測装置の構成例を示す図である。本発明の実施
例の電気生理自動計測装置では，複数の細胞を電気生理
法を用いて連続かつ自動に計測する。
【００２６】図１に示すように，本発明の電気生理自動
計測装置は，卵母細胞を観察する実体顕微鏡１１６；卵
母細胞に挿入するガラス電極１０２，１０３；微小電気
信号を増幅する微小電気信号増幅回路部１２２，１２
３；リガンドを卵母細胞に投与するリガンド投与用マイ
クロシリンジ１２６；実体顕微鏡１１６及びガラス電極
１０２，１０３を保持するＸＹステージ１０１；卵母細
胞を保持する９６個の（セル）穴を持つ９６穴卵母細胞
保持用プレート１１１；９６穴プレート用アース電極１
２４；ガラス電極１０２，１０３の電位状態及び抵抗状
態を示す電気信号を測定する電気生理測定回路部１０
９；ＸＹステージ１０１，及びガラス電極１０２，１０
３の移動を行なうためのモーターの駆動を制御するモー
ター駆動用コントローラー１０７；計測結果を記録する
計測記録用コンピューター１２１；電気生理測定回路部
１０９，モーター駆動用コントローラー１０７，及び計
測記録用コンピューター１２１を制御する制御用コンピ
ューター１０８から構成される。
計測装置は，卵母細胞を観察する実体顕微鏡１１６；卵
母細胞に挿入するガラス電極１０２，１０３；微小電気
信号を増幅する微小電気信号増幅回路部１２２，１２
３；リガンドを卵母細胞に投与するリガンド投与用マイ
クロシリンジ１２６；実体顕微鏡１１６及びガラス電極
１０２，１０３を保持するＸＹステージ１０１；卵母細
胞を保持する９６個の（セル）穴を持つ９６穴卵母細胞
保持用プレート１１１；９６穴プレート用アース電極１
２４；ガラス電極１０２，１０３の電位状態及び抵抗状
態を示す電気信号を測定する電気生理測定回路部１０
９；ＸＹステージ１０１，及びガラス電極１０２，１０
３の移動を行なうためのモーターの駆動を制御するモー
ター駆動用コントローラー１０７；計測結果を記録する
計測記録用コンピューター１２１；電気生理測定回路部
１０９，モーター駆動用コントローラー１０７，及び計
測記録用コンピューター１２１を制御する制御用コンピ
ューター１０８から構成される。
【００２７】実体顕微鏡１１６はその光軸が垂直になる
ようにＸＹステージ１０１に配置される。モーター１０
４，１０５によりそれぞれ駆動されるガラス電極１０
２，１０３は，実体顕微鏡１１６を配置した垂直軸から
３０度傾けた位置に対称に配置される。また，ノイズを
低減させ，効率よく電気生理実験を行うためにシールド
により装置全体を覆い，空気中の電磁波を遮蔽する。
ようにＸＹステージ１０１に配置される。モーター１０
４，１０５によりそれぞれ駆動されるガラス電極１０
２，１０３は，実体顕微鏡１１６を配置した垂直軸から
３０度傾けた位置に対称に配置される。また，ノイズを
低減させ，効率よく電気生理実験を行うためにシールド
により装置全体を覆い，空気中の電磁波を遮蔽する。
【００２８】本実施例では，ヒトヒスタミン受容体遺伝
子をインジェクションした後に数日間の培養を経た卵母
細胞を使用する。これらの卵母細胞は，９６穴卵母細胞
保持用プレート１１１に保持される。ヒトヒスタミン受
容体を発現している９６個の卵母細胞は，８×１２＝９
６のマトリックス上に規則正しく配置される。
子をインジェクションした後に数日間の培養を経た卵母
細胞を使用する。これらの卵母細胞は，９６穴卵母細胞
保持用プレート１１１に保持される。ヒトヒスタミン受
容体を発現している９６個の卵母細胞は，８×１２＝９
６のマトリックス上に規則正しく配置される。
【００２９】ガラス電極１０２，１０３の位置は，実体
顕微鏡１１６の視野中央に位置決めされたセル内の１つ
の卵母細胞に挿入が可能な位置に調整されている。
顕微鏡１１６の視野中央に位置決めされたセル内の１つ
の卵母細胞に挿入が可能な位置に調整されている。
【００３０】制御用コンピューター１０８による制御に
より，ガラス電極駆動用モーター１０４，１０５を一軸
（図１に示す矢印で示す）上に駆動させ，実体顕微鏡１
１６の視野中央に位置決めされた卵母細胞に，ガラス電
極１０２，１０３を挿入できる。
より，ガラス電極駆動用モーター１０４，１０５を一軸
（図１に示す矢印で示す）上に駆動させ，実体顕微鏡１
１６の視野中央に位置決めされた卵母細胞に，ガラス電
極１０２，１０３を挿入できる。
【００３１】ガラス電極１０２，１０３の細胞膜内への
挿入の過程を実体顕微鏡１１６により肉眼で観察でき
る。また，実体顕微鏡１１６にＣＣＤカメラを付加し，
ガラス電極１０２，１０３の卵母細胞への挿入状況をモ
ニターし，画像処理からガラス電極１０２，１０３の移
動を制御することも可能である。
挿入の過程を実体顕微鏡１１６により肉眼で観察でき
る。また，実体顕微鏡１１６にＣＣＤカメラを付加し，
ガラス電極１０２，１０３の卵母細胞への挿入状況をモ
ニターし，画像処理からガラス電極１０２，１０３の移
動を制御することも可能である。
【００３２】なお，実体顕微鏡１１６は必ずしもガラス
電極１０２，１０３を卵母細胞へ挿入するために必須な
構成ではなく，ガラス電極１０２，１０３の動作を目視
により確認するためだけのものである。従って，ガラス
電極１０２，１０３の移動機構の精度を高めて，目視に
よる確認なしにガラス電極１０２，１０３を卵母細胞へ
挿入可能な構成とすることにより，実体顕微鏡１１６は
装置から除去することが可能である。
電極１０２，１０３を卵母細胞へ挿入するために必須な
構成ではなく，ガラス電極１０２，１０３の動作を目視
により確認するためだけのものである。従って，ガラス
電極１０２，１０３の移動機構の精度を高めて，目視に
よる確認なしにガラス電極１０２，１０３を卵母細胞へ
挿入可能な構成とすることにより，実体顕微鏡１１６は
装置から除去することが可能である。
【００３３】リガンド投与用マイクロシリンジ１２６
は，支持体１２７を通して微小電気信号増幅回路部１２
２に保持されているため，ガラス電極駆動用モーター１
０５によりガラス電極１０２と共に移動できる。ガラス
電極１０２が卵母細胞膜内に挿入された時に，リガンド
投与用マイクロシリンジ１２６の先端は，卵母細胞の膜
表面付近に十分に接近する位置に調整されており，ヒス
タミンを効率よく投与できる。
は，支持体１２７を通して微小電気信号増幅回路部１２
２に保持されているため，ガラス電極駆動用モーター１
０５によりガラス電極１０２と共に移動できる。ガラス
電極１０２が卵母細胞膜内に挿入された時に，リガンド
投与用マイクロシリンジ１２６の先端は，卵母細胞の膜
表面付近に十分に接近する位置に調整されており，ヒス
タミンを効率よく投与できる。
【００３４】電気生理測定回路部１０９ではガラス電極
１０２，１０３の電位状態及び抵抗状態を示す電気信号
を測定する。細胞膜にガラス電極１０２，１０３が挿入
されたことを示す電気信号が電気生理測定回路部１０９
により取り込まれ，これを識別した制御用コンピュータ
ー１０８は電気生理測定回路部１０９に膜電位を−６０
ｍＶに固定する信号を送り返し，卵母細胞の膜電位が固
定される。
１０２，１０３の電位状態及び抵抗状態を示す電気信号
を測定する。細胞膜にガラス電極１０２，１０３が挿入
されたことを示す電気信号が電気生理測定回路部１０９
により取り込まれ，これを識別した制御用コンピュータ
ー１０８は電気生理測定回路部１０９に膜電位を−６０
ｍＶに固定する信号を送り返し，卵母細胞の膜電位が固
定される。
【００３５】細胞の膜電位の固定を確認した後に，制御
用コンピューター１０８は，マイクロシリンジ駆動用モ
ーター１２５を駆動させて，卵母細胞の膜表面に発現し
ているヒスタミン受容体にリガンドであるヒスタミンを
マイクロシリンジ１２６により投与する。
用コンピューター１０８は，マイクロシリンジ駆動用モ
ーター１２５を駆動させて，卵母細胞の膜表面に発現し
ているヒスタミン受容体にリガンドであるヒスタミンを
マイクロシリンジ１２６により投与する。
【００３６】なお，卵母細胞の膜表面に発現可能な受容
体はヒスタミン受容体に限定されるものではなく，種種
の受容体を発現させることが可能である。卵母細胞の膜
表面に存在するヒスタミン受容体は，ヒスタミンの結合
により活性化され，一連のシグナル伝達が進行し，最終
的に卵母細胞のクロライドチャネルよりクロライドイオ
ンが細胞外に流れ出す。
体はヒスタミン受容体に限定されるものではなく，種種
の受容体を発現させることが可能である。卵母細胞の膜
表面に存在するヒスタミン受容体は，ヒスタミンの結合
により活性化され，一連のシグナル伝達が進行し，最終
的に卵母細胞のクロライドチャネルよりクロライドイオ
ンが細胞外に流れ出す。
【００３７】計測記録用コンピューター１２１は，この
クロライドイオン流を電流変化として捉え記録する。１
つの細胞についての測定が終了した後，制御用コンピュ
ーター１０８は，電気生理測定回路部１０９を通じ，膜
電位の固定を解除し，ガラス電極駆動用モーター１０
４，１０５を初期位置にまで移動させ，２本のガラス電
極１０２，１０３を卵母細胞より引き抜く。次に，ＸＹ
ステージ１０１を隣り合ったセルの間隔分だけ移動さ
せ，実体顕微鏡１１６の視野中央に，次の計測を行なう
卵母細胞の位置決めを行なう。以上の操作を繰り返すこ
とにより，複数の卵母細胞について効率的に連続して電
気生理実験を自動化することが可能である。
クロライドイオン流を電流変化として捉え記録する。１
つの細胞についての測定が終了した後，制御用コンピュ
ーター１０８は，電気生理測定回路部１０９を通じ，膜
電位の固定を解除し，ガラス電極駆動用モーター１０
４，１０５を初期位置にまで移動させ，２本のガラス電
極１０２，１０３を卵母細胞より引き抜く。次に，ＸＹ
ステージ１０１を隣り合ったセルの間隔分だけ移動さ
せ，実体顕微鏡１１６の視野中央に，次の計測を行なう
卵母細胞の位置決めを行なう。以上の操作を繰り返すこ
とにより，複数の卵母細胞について効率的に連続して電
気生理実験を自動化することが可能である。
【００３８】一般に，卵母細胞を用いた電気生理的測定
方法では，ガラス電極１０２，１０３を２本用いる２電
極膜電位固定法が広く用いられている。一方，卵母細胞
より小さな神経細胞では，１本のガラス電極のみを使用
する１電極膜電位固定法が広く用いられている。これは
神経細胞では，ピコアンペアレベルのイオン電流量を測
定するのに対し，卵母細胞の場合は細胞体が大きいため
に，マイクロアンペアの電流量が発生するために，従来
の１電極膜電位固定法をそのまま使用することが困難な
ためである。しかし，原理的には，イオン電流レベルを
卵母細胞で予想される数マイクロアンペアの電流が測定
可能な電気回路を設計することにより，卵母細胞の計測
においても１電極膜電位固定法を適用することが可能で
ある。これにより，２電極膜電位固定法に於ける複数の
ガラス電極の挿入が単純化され，ガラス電極の挿入に伴
うエラーの発生を減少させることが可能である。また，
計測の手続きも同様に簡素化するために，２電極膜電位
固定法と比較して１電極膜電位固定法は単位時間当たり
に計測できる卵母細胞の個数を増すことが可能であるた
め，スループットが向上する。また，装置の製造コスト
も低くできるという利点もある。
方法では，ガラス電極１０２，１０３を２本用いる２電
極膜電位固定法が広く用いられている。一方，卵母細胞
より小さな神経細胞では，１本のガラス電極のみを使用
する１電極膜電位固定法が広く用いられている。これは
神経細胞では，ピコアンペアレベルのイオン電流量を測
定するのに対し，卵母細胞の場合は細胞体が大きいため
に，マイクロアンペアの電流量が発生するために，従来
の１電極膜電位固定法をそのまま使用することが困難な
ためである。しかし，原理的には，イオン電流レベルを
卵母細胞で予想される数マイクロアンペアの電流が測定
可能な電気回路を設計することにより，卵母細胞の計測
においても１電極膜電位固定法を適用することが可能で
ある。これにより，２電極膜電位固定法に於ける複数の
ガラス電極の挿入が単純化され，ガラス電極の挿入に伴
うエラーの発生を減少させることが可能である。また，
計測の手続きも同様に簡素化するために，２電極膜電位
固定法と比較して１電極膜電位固定法は単位時間当たり
に計測できる卵母細胞の個数を増すことが可能であるた
め，スループットが向上する。また，装置の製造コスト
も低くできるという利点もある。
【００３９】また，ガラス微小管を用いて目的となる遺
伝子を手作業で細胞に注入するマイクロインジェクショ
ン法が，従来，細胞への遺伝子導入の主流な方法の一つ
であるが，本実施例のガラス微小管の細胞への挿入方法
を応用し，一定量の遺伝子を細胞に注入する機構を付加
することにより，複数の細胞の各細胞にガラス微小管を
自動挿入した後に，目的となる遺伝子を一定量注入する
装置を製作することが可能である。
伝子を手作業で細胞に注入するマイクロインジェクショ
ン法が，従来，細胞への遺伝子導入の主流な方法の一つ
であるが，本実施例のガラス微小管の細胞への挿入方法
を応用し，一定量の遺伝子を細胞に注入する機構を付加
することにより，複数の細胞の各細胞にガラス微小管を
自動挿入した後に，目的となる遺伝子を一定量注入する
装置を製作することが可能である。
【００４０】図２は，本発明の実施例のアレルギー診断
を行なう電気生理自動計測装置の構成例を示す図であ
る。複数の９６穴卵母細胞保持用プレート１１１がベル
トコンベア８０９により搬送され，プレートスタッカー
８０３に装着される。プレートスタッカー８０３を使用
することにより，ベルトコンベアに８０９により搬送さ
れてきた複数の９６穴卵母細胞保持用プレート１１１を
効率よく整理し，円滑にＸＹステージ１０１に９６穴卵
母細胞保持用プレート１１１を順次送り込むことが可能
となる。各プレート上の卵母細胞にはヒスタミン受容体
が既に発現している。
を行なう電気生理自動計測装置の構成例を示す図であ
る。複数の９６穴卵母細胞保持用プレート１１１がベル
トコンベア８０９により搬送され，プレートスタッカー
８０３に装着される。プレートスタッカー８０３を使用
することにより，ベルトコンベアに８０９により搬送さ
れてきた複数の９６穴卵母細胞保持用プレート１１１を
効率よく整理し，円滑にＸＹステージ１０１に９６穴卵
母細胞保持用プレート１１１を順次送り込むことが可能
となる。各プレート上の卵母細胞にはヒスタミン受容体
が既に発現している。
【００４１】アレルギー診断の具体的な検査項目として
挙げられるのが，杉花粉，ハウスダスト，イエダニなど
である。予め検体から採取された血液にアレルゲンを添
加し，３０〜９０分程インキュベートしたものを遠心分
離し，血漿成分を回収する。この前処理を事前に行って
おく。これらの各検体からの血漿成分を反応ディスク８
０６内の反応容器８０５に設置する。
挙げられるのが，杉花粉，ハウスダスト，イエダニなど
である。予め検体から採取された血液にアレルゲンを添
加し，３０〜９０分程インキュベートしたものを遠心分
離し，血漿成分を回収する。この前処理を事前に行って
おく。これらの各検体からの血漿成分を反応ディスク８
０６内の反応容器８０５に設置する。
【００４２】リガンド投与用マイクロシリンジ１２６に
反応容器８０５内の血漿成分を採取し，モーター８１０
によりマイクロシリンジ１２６を回転させて，９６穴卵
母細胞保持用セル１１１に保持された卵母細胞に血漿成
分を投与する。これにより，多数の検体から採取された
血液について多項目について検査を行うことが可能であ
る。以上の動作を，制御用コンピューター１０８’によ
り統合して行う。制御用コンピューター１０８’は，図
２に図示しない，図１に示すモーター駆動用コントロー
ラー１０７，及び電気生理測定回路部１０９を制御する
と共に，図１に示す計測記録用コンピューター１２１を
兼ねており，計測データの取得，管理も一括して行う。
反応容器８０５内の血漿成分を採取し，モーター８１０
によりマイクロシリンジ１２６を回転させて，９６穴卵
母細胞保持用セル１１１に保持された卵母細胞に血漿成
分を投与する。これにより，多数の検体から採取された
血液について多項目について検査を行うことが可能であ
る。以上の動作を，制御用コンピューター１０８’によ
り統合して行う。制御用コンピューター１０８’は，図
２に図示しない，図１に示すモーター駆動用コントロー
ラー１０７，及び電気生理測定回路部１０９を制御する
と共に，図１に示す計測記録用コンピューター１２１を
兼ねており，計測データの取得，管理も一括して行う。
【００４３】図３は，本発明の実施例で使用する９６穴
卵母細胞保持用プレートの構成例を示す平面図であり，
図４は，図３に示す９６穴卵母細胞保持用プレートの断
面図である。卵母細胞保持用プレート１１１は，８×１
２＝９６個の独立したセル２０２をもつ。セル２０２
は，上方に９０度の角度で開いており，セルの下方部に
半球部２０３をもつ。なお，プレート上のセル数は９６
個に限定する必要はなく，電気生理実験に使用する細胞
の大きさに応じて３８４，８６４，１５３６個のセル数
に拡張することが可能である。
卵母細胞保持用プレートの構成例を示す平面図であり，
図４は，図３に示す９６穴卵母細胞保持用プレートの断
面図である。卵母細胞保持用プレート１１１は，８×１
２＝９６個の独立したセル２０２をもつ。セル２０２
は，上方に９０度の角度で開いており，セルの下方部に
半球部２０３をもつ。なお，プレート上のセル数は９６
個に限定する必要はなく，電気生理実験に使用する細胞
の大きさに応じて３８４，８６４，１５３６個のセル数
に拡張することが可能である。
【００４４】セル２０２のそれぞれは１つの卵母細胞を
保持し，保持することが可能である。卵母細胞保持用プ
レート１１１は，市販の９６穴タイタープレートと同様
の大きさ及び穴（セル）の位置をもつ。卵母細胞保持用
プレート１１１の大きさは縦８５ｍｍ，横１２７ｍｍ，
厚さ１０ｍｍである。セル２０２の直径は９ｍｍであ
り，セル２０２の間隔は９．５ｍｍである。
保持し，保持することが可能である。卵母細胞保持用プ
レート１１１は，市販の９６穴タイタープレートと同様
の大きさ及び穴（セル）の位置をもつ。卵母細胞保持用
プレート１１１の大きさは縦８５ｍｍ，横１２７ｍｍ，
厚さ１０ｍｍである。セル２０２の直径は９ｍｍであ
り，セル２０２の間隔は９．５ｍｍである。
【００４５】セル２０２は卵母細胞をセル下方部の半球
部２０３に保持できる。この半球部２０３の径が大きす
ぎるとガラス電極１０２，１０３の挿入時に，卵母細胞
がセル２０２内に安定して保持されず，移動するため，
安定してガラス電極１０２，１０３を卵母細胞に挿入で
きない。一方，半球部２０３の径が小さすぎると，卵母
細胞が半球部２０３内に入りきらないために，卵母細胞
の安定した保持ができない。２本のガラス電極１０２，
１０３を卵母細胞に挿入する時に，卵母細胞を半球部２
０３内で安定して保持するために最適な径は，１．２ｍ
ｍ±０．１ｍｍである。
部２０３に保持できる。この半球部２０３の径が大きす
ぎるとガラス電極１０２，１０３の挿入時に，卵母細胞
がセル２０２内に安定して保持されず，移動するため，
安定してガラス電極１０２，１０３を卵母細胞に挿入で
きない。一方，半球部２０３の径が小さすぎると，卵母
細胞が半球部２０３内に入りきらないために，卵母細胞
の安定した保持ができない。２本のガラス電極１０２，
１０３を卵母細胞に挿入する時に，卵母細胞を半球部２
０３内で安定して保持するために最適な径は，１．２ｍ
ｍ±０．１ｍｍである。
【００４６】また，実体顕微鏡１１６を用いてガラス電
極１０２，１０３の卵母細胞への挿入を目視により観察
する場合は，ガラス電極１０２，１０３を卵母細胞保持
用プレート１１１の垂直方向から卵母細胞に挿入きな
い。この場合は，ガラス電極１０２，１０３は卵母細胞
保持用プレート１１１から垂直方向の軸に対して一定の
角度を保持する必要がある。
極１０２，１０３の卵母細胞への挿入を目視により観察
する場合は，ガラス電極１０２，１０３を卵母細胞保持
用プレート１１１の垂直方向から卵母細胞に挿入きな
い。この場合は，ガラス電極１０２，１０３は卵母細胞
保持用プレート１１１から垂直方向の軸に対して一定の
角度を保持する必要がある。
【００４７】図５は，本発明の実施例に於けるガラス電
極の卵母細胞への挿入制御を示す図である。本発明で
は，ガラス電極の電位信号に基づいて，ガラス電極の卵
母細胞への挿入のための制御を行なう。
極の卵母細胞への挿入制御を示す図である。本発明で
は，ガラス電極の電位信号に基づいて，ガラス電極の卵
母細胞への挿入のための制御を行なう。
【００４８】卵母細胞保持用プレートの１つのセルに卵
母細胞６０１が保持されている。ガラス電極１０２，１
０３が移動する軸上に卵母細胞６０１は位置している。
リガンド投与用シリンジ１２６は，ガラス電極１０３よ
り微小量後退した位置に調整され，設置されている（従
って，図５には図示せず）。図５に示すグラフは，時間
と共に変化するガラス電極１０２，１０３の電位の変遷
を示し，（ａ）から（ｅ）に示すガラス電極の異なる位
置に対応する異なる電位状態を示す。
母細胞６０１が保持されている。ガラス電極１０２，１
０３が移動する軸上に卵母細胞６０１は位置している。
リガンド投与用シリンジ１２６は，ガラス電極１０３よ
り微小量後退した位置に調整され，設置されている（従
って，図５には図示せず）。図５に示すグラフは，時間
と共に変化するガラス電極１０２，１０３の電位の変遷
を示し，（ａ）から（ｅ）に示すガラス電極の異なる位
置に対応する異なる電位状態を示す。
【００４９】（ａ）に示すように，ガラス電極１０２は
溶液面６０３より上方に位置し，アース電極６０４とは
通電しておらず，従って，電位は無限大となる。制御用
コンピューターは，電位が無限大であることから，ガラ
ス電極１０２が空中にあることを認識する。
溶液面６０３より上方に位置し，アース電極６０４とは
通電しておらず，従って，電位は無限大となる。制御用
コンピューターは，電位が無限大であることから，ガラ
ス電極１０２が空中にあることを認識する。
【００５０】（ｂ）に示すように，卵母細胞６０１に向
かって移動を開始したガラス電極１０２が溶液面６０３
に到達すると，ガラス電極１０２とアース電極６０４と
が溶液６０３を通して接触し通電するため，電位は０±
３ｍＶ付近となる。ガラス電極１０２の溶液面６０３へ
の到達を認識した制御用コンピューターは，ガラス電極
１０２の抵抗が０．８ＭΩ〜２．４ＭΩの許容値の範囲
に収まるかどうかを計測し，判定する。ガラス電極１０
２の抵抗が許容値内に入らない場合は，モーターにより
ガラス電極１０２は引き上げられ，ガラス電極１０２の
交換を行なう。更に，制御用コンピューターは±３ｍＶ
程度のオフセット電位を自動で除去し，０ｍＶに電位を
調整する。
かって移動を開始したガラス電極１０２が溶液面６０３
に到達すると，ガラス電極１０２とアース電極６０４と
が溶液６０３を通して接触し通電するため，電位は０±
３ｍＶ付近となる。ガラス電極１０２の溶液面６０３へ
の到達を認識した制御用コンピューターは，ガラス電極
１０２の抵抗が０．８ＭΩ〜２．４ＭΩの許容値の範囲
に収まるかどうかを計測し，判定する。ガラス電極１０
２の抵抗が許容値内に入らない場合は，モーターにより
ガラス電極１０２は引き上げられ，ガラス電極１０２の
交換を行なう。更に，制御用コンピューターは±３ｍＶ
程度のオフセット電位を自動で除去し，０ｍＶに電位を
調整する。
【００５１】（ｃ）に示すように，制御用コンピュータ
ーは，モーター駆動によりガラス電極１０２を卵母細胞
６０１に向かって移動させる。ガラス電極１０２が卵母
細胞６０１に接触すると，卵母細胞は弾性変形する。こ
の時，ガラス電極の電位は更に，約５ｍＶ程度降下す
る。制御用コンピューターは，この電位降下を検出し，
ガラス電極１０２が卵母細胞６０１の膜表面に接触した
ことを認識する。
ーは，モーター駆動によりガラス電極１０２を卵母細胞
６０１に向かって移動させる。ガラス電極１０２が卵母
細胞６０１に接触すると，卵母細胞は弾性変形する。こ
の時，ガラス電極の電位は更に，約５ｍＶ程度降下す
る。制御用コンピューターは，この電位降下を検出し，
ガラス電極１０２が卵母細胞６０１の膜表面に接触した
ことを認識する。
【００５２】（ｄ）に示すように，制御用コンピュータ
ーは，卵母細胞１０２の膜表面に圧力をかけた状態でガ
ラス電極１０２をモーターの駆動軸上で振動させる。こ
れにより，卵母細胞６０１に大きな損傷を与えることな
く円滑にガラス電極１０２を膜内に挿入することが可能
である。通常の卵母細胞１０２の膜電位は−２０ｍＶ程
度なので，制御用コンピューターは，−２０ｍＶ程度の
電位を検出することにより，ガラス電極１０２が卵母細
胞６０１内に挿入されたことを認識する。
ーは，卵母細胞１０２の膜表面に圧力をかけた状態でガ
ラス電極１０２をモーターの駆動軸上で振動させる。こ
れにより，卵母細胞６０１に大きな損傷を与えることな
く円滑にガラス電極１０２を膜内に挿入することが可能
である。通常の卵母細胞１０２の膜電位は−２０ｍＶ程
度なので，制御用コンピューターは，−２０ｍＶ程度の
電位を検出することにより，ガラス電極１０２が卵母細
胞６０１内に挿入されたことを認識する。
【００５３】（ｅ）に示すように，ガラス電極１０３
も，（ａ）〜（ｄ）の操作を繰り返すことで，卵母細胞
６０１膜内に挿入する。２本のガラス電極１０２，１０
３が卵母細胞６０１に挿入された後に，制御用コンピュ
ーターは電気生理測定回路部１０９に膜電位を−６０ｍ
Ｖに固定する信号を送ることにより，膜電位を−６０ｍ
Ｖに固定する。
も，（ａ）〜（ｄ）の操作を繰り返すことで，卵母細胞
６０１膜内に挿入する。２本のガラス電極１０２，１０
３が卵母細胞６０１に挿入された後に，制御用コンピュ
ーターは電気生理測定回路部１０９に膜電位を−６０ｍ
Ｖに固定する信号を送ることにより，膜電位を−６０ｍ
Ｖに固定する。
【００５４】以上，詳述したように，本実施例ではガラ
ス電極１０２，１０３から得られる電気信号のみを用い
て，卵母細胞６０１に２本のガラス電極１０２，１０３
の挿入を実行でき，更に，ヒスタミン投与に応答する電
流変化を検出することが可能である。
ス電極１０２，１０３から得られる電気信号のみを用い
て，卵母細胞６０１に２本のガラス電極１０２，１０３
の挿入を実行でき，更に，ヒスタミン投与に応答する電
流変化を検出することが可能である。
【００５５】次に，９６穴卵母細胞保持用プレート１１
１を使用して電気生理計測を行う際のアースの３種類の
取り方について以下に説明する。
１を使用して電気生理計測を行う際のアースの３種類の
取り方について以下に説明する。
【００５６】図６は，本発明の実施例で使用する９６穴
プレート用アース電極の形状を示す平面図であり，図７
は，図６に示す９６穴卵母細胞プレート用アース電極の
部分斜視図である。図６は，９６穴卵母細胞保持用プレ
ート１１１に組み合わせる９６穴プレート用アース電極
３０１を示す。９６穴プレート用アース電極３０１の材
質は，銅又はアルミニウムであり，形成された後に銀メ
ッキを施す。更に，銀メッキを施した９６穴プレート用
アース電極３０１を１５０ｍＭの塩化ナトリウム溶液中
に浸し，１．５Ｖ程度の直流電流を流した状態で２４時
間以上放置することにより，銀と塩素イオンとを反応さ
せ，９６穴プレート用アース電極３０１の表面に塩化銀
の皮膜を作る。生体中の細胞外液の主成分はＮａＣｌで
あり，銀電極とＮａＣｌ溶液との間に両方に共通したイ
オンをもつ化学物質（ここでは，塩化銀）があれば分極
電圧の発生を防ぎ，計測上の電気雑音を低減できる。
プレート用アース電極の形状を示す平面図であり，図７
は，図６に示す９６穴卵母細胞プレート用アース電極の
部分斜視図である。図６は，９６穴卵母細胞保持用プレ
ート１１１に組み合わせる９６穴プレート用アース電極
３０１を示す。９６穴プレート用アース電極３０１の材
質は，銅又はアルミニウムであり，形成された後に銀メ
ッキを施す。更に，銀メッキを施した９６穴プレート用
アース電極３０１を１５０ｍＭの塩化ナトリウム溶液中
に浸し，１．５Ｖ程度の直流電流を流した状態で２４時
間以上放置することにより，銀と塩素イオンとを反応さ
せ，９６穴プレート用アース電極３０１の表面に塩化銀
の皮膜を作る。生体中の細胞外液の主成分はＮａＣｌで
あり，銀電極とＮａＣｌ溶液との間に両方に共通したイ
オンをもつ化学物質（ここでは，塩化銀）があれば分極
電圧の発生を防ぎ，計測上の電気雑音を低減できる。
【００５７】図７は，９６穴プレート用アース電極３０
１を斜め上方よりみた図である。９６穴プレート用アー
ス電極３０１は，各セル２０２に対してそれぞれ独立に
伸びるアース部３０２をもち，アース部３０２はセル２
０２の側面に沿って４５度の角度で折り込まれている。
このため，９６穴プレート用アース電極３０１を１箇所
で接地することにより，９６個のセル２０２全てのアー
スをとることが可能である。また，上記の方法以外に，
９６穴卵母細胞保持用プレート１１１に直接アース電極
をパターニングし，アースを取ることもできる。
１を斜め上方よりみた図である。９６穴プレート用アー
ス電極３０１は，各セル２０２に対してそれぞれ独立に
伸びるアース部３０２をもち，アース部３０２はセル２
０２の側面に沿って４５度の角度で折り込まれている。
このため，９６穴プレート用アース電極３０１を１箇所
で接地することにより，９６個のセル２０２全てのアー
スをとることが可能である。また，上記の方法以外に，
９６穴卵母細胞保持用プレート１１１に直接アース電極
をパターニングし，アースを取ることもできる。
【００５８】図８は，本発明の実施例で使用する寒天か
らなる９６穴卵母細胞保持用プレートを作成し，アース
をとる方法を示す図である。次に説明する方法では，寒
天からなる卵母細胞保持用プレート４０５を作成しアー
スをとる。容器４０３に，予め加熱してゾル化した寒天
４０２を流し込む。次に，９６穴卵母細胞保持用セルの
型４０１をゾル化した寒天４０２中に浸し，固定する。
一定時間放置した後，ゾル化した寒天４０２は室温まで
冷却され，ゲル化する。型４０１をゲル化した寒天４０
４より取り外すと，ゲル化した寒天４０４は卵母細胞を
保持可能な形状に成型されており，寒天からなる９６穴
卵母細胞保持用セル４０５を作成できる。ゲル化した寒
天４０４は通電に十分な水溶液をゲル内に含むため，寒
天上の任意の箇所にアース電極４０６を配置することに
より，９６の個々のセルについて一括してアースをとる
ことが可能である。従って，寒天からなる９６穴卵母細
胞保持用セル４０５を用いることにより，煩雑なアース
電極を付加することなく簡便に電気生理測定を連続で行
なうことが可能となる。使い捨て可能な寒天製の容器
は，プラスチックで作成する容器に比較して，非常に安
価である。
らなる９６穴卵母細胞保持用プレートを作成し，アース
をとる方法を示す図である。次に説明する方法では，寒
天からなる卵母細胞保持用プレート４０５を作成しアー
スをとる。容器４０３に，予め加熱してゾル化した寒天
４０２を流し込む。次に，９６穴卵母細胞保持用セルの
型４０１をゾル化した寒天４０２中に浸し，固定する。
一定時間放置した後，ゾル化した寒天４０２は室温まで
冷却され，ゲル化する。型４０１をゲル化した寒天４０
４より取り外すと，ゲル化した寒天４０４は卵母細胞を
保持可能な形状に成型されており，寒天からなる９６穴
卵母細胞保持用セル４０５を作成できる。ゲル化した寒
天４０４は通電に十分な水溶液をゲル内に含むため，寒
天上の任意の箇所にアース電極４０６を配置することに
より，９６の個々のセルについて一括してアースをとる
ことが可能である。従って，寒天からなる９６穴卵母細
胞保持用セル４０５を用いることにより，煩雑なアース
電極を付加することなく簡便に電気生理測定を連続で行
なうことが可能となる。使い捨て可能な寒天製の容器
は，プラスチックで作成する容器に比較して，非常に安
価である。
【００５９】図９は，本発明の実施例に於いてアース電
極を移動させて各セルについてアースをとる構成例を示
す図である。図９に示すように，アース電極をガラス電
極に付随させて移動することにより，各セル内の電気生
理計測でアースをとる。アース電極５０３をガラス電極
１０３の先端付近に支持体５０２を通して固定する。リ
ガンド投与用マイクロシリンジ１２６は，ガラス電極１
０２にオフセットを保った形で固定されている。
極を移動させて各セルについてアースをとる構成例を示
す図である。図９に示すように，アース電極をガラス電
極に付随させて移動することにより，各セル内の電気生
理計測でアースをとる。アース電極５０３をガラス電極
１０３の先端付近に支持体５０２を通して固定する。リ
ガンド投与用マイクロシリンジ１２６は，ガラス電極１
０２にオフセットを保った形で固定されている。
【００６０】ガラス電極１０３を卵母細胞６０１に向か
って移動させていくと，アース電極５０３が溶液面６０
３に接触する。アース電極５０３が溶液６０３に接触し
たことでガラス電極１０３は通電し，オフセット電位を
除去する。ガラス電極１０２についても同様にアースを
取ることが可能である。ガラス電極１０３にアース電極
５０３を付随させることにより，複雑なアース電極を付
加することなく，複数のセルについて安定したアースを
とることが可能である。また，アース電極５０３をガラ
ス電極１０３に付随させるのではなく，新たに一軸上に
アース電極５０３を独立に移動させるアース電極駆動用
モーターを用意する。これにより，ヒスタミン投与時に
於ける卵母細胞の膜表面上での２本のガラス電極，アー
ス電極，リガンド投与用シリンジが非常に接近するた
め，計測上のエラーが発生しやすいという問題を解決
し，安定した状態でアースをとることも可能である。
って移動させていくと，アース電極５０３が溶液面６０
３に接触する。アース電極５０３が溶液６０３に接触し
たことでガラス電極１０３は通電し，オフセット電位を
除去する。ガラス電極１０２についても同様にアースを
取ることが可能である。ガラス電極１０３にアース電極
５０３を付随させることにより，複雑なアース電極を付
加することなく，複数のセルについて安定したアースを
とることが可能である。また，アース電極５０３をガラ
ス電極１０３に付随させるのではなく，新たに一軸上に
アース電極５０３を独立に移動させるアース電極駆動用
モーターを用意する。これにより，ヒスタミン投与時に
於ける卵母細胞の膜表面上での２本のガラス電極，アー
ス電極，リガンド投与用シリンジが非常に接近するた
め，計測上のエラーが発生しやすいという問題を解決
し，安定した状態でアースをとることも可能である。
【００６１】図１０は，本発明の実施例の電気生理自動
計測装置を用いて卵母細胞にヒスタミンを投与した時の
反応を示す実験データである。図１０は，ヒスタミン受
容体を発現させた卵母細胞に対して膜電位の固定を全自
動で行い，ヒスタミンを投与し自動計測を行なった結果
の一例を示す。図５で説明した，ガラス電極の異なる位
置（ａ）〜（ｅ）の状態を経て，矢印（ｅ）で示した時
刻で細胞の膜電位を固定し，矢印（ｆ）で示した時刻で
１μＭのヒスタミンを５μＬ（リットル）投与を行い，
卵母細胞から発する電流応答を自動計測した結果であ
る。
計測装置を用いて卵母細胞にヒスタミンを投与した時の
反応を示す実験データである。図１０は，ヒスタミン受
容体を発現させた卵母細胞に対して膜電位の固定を全自
動で行い，ヒスタミンを投与し自動計測を行なった結果
の一例を示す。図５で説明した，ガラス電極の異なる位
置（ａ）〜（ｅ）の状態を経て，矢印（ｅ）で示した時
刻で細胞の膜電位を固定し，矢印（ｆ）で示した時刻で
１μＭのヒスタミンを５μＬ（リットル）投与を行い，
卵母細胞から発する電流応答を自動計測した結果であ
る。
【００６２】図１０に示す計測では，１個の卵母細胞の
計測に約１８０秒必要である。しかし，計測時間につい
ては，ガラス電極及びステージの移動の高速化，２本の
ガラス電極を同時に卵母細胞へ挿入するなどの工夫によ
り，大幅に短縮することが可能である。また，図１０に
示す例では，２０秒間で膜電位の固定の確認を行ってい
るが，これは省略できる。更に，ヒスタミン濃度のみを
測定するのであれば発生した内向き電流のピーク値（図
１０に示す例では，約１３０秒の点での電流ピーク）の
みを検出すれば良く，ヒスタミン投与後の履歴計測は省
くことができる。従って，６０秒以内での１個の卵母細
胞の計測は容易に達成できる。
計測に約１８０秒必要である。しかし，計測時間につい
ては，ガラス電極及びステージの移動の高速化，２本の
ガラス電極を同時に卵母細胞へ挿入するなどの工夫によ
り，大幅に短縮することが可能である。また，図１０に
示す例では，２０秒間で膜電位の固定の確認を行ってい
るが，これは省略できる。更に，ヒスタミン濃度のみを
測定するのであれば発生した内向き電流のピーク値（図
１０に示す例では，約１３０秒の点での電流ピーク）の
みを検出すれば良く，ヒスタミン投与後の履歴計測は省
くことができる。従って，６０秒以内での１個の卵母細
胞の計測は容易に達成できる。
【００６３】本発明の電気生理自動計測装置によれば，
遺伝子導入によりにある受容体を発現させた複数の卵母
細胞のそれぞれに，全自動でガラス電極を挿入し，電位
を固定し，対応するリガンドを投与した時の電流応答を
計測できる。この結果，例えば，アレルギー関連の診断
を高速化でき，大量の検体について短時間に診断を行え
る。更に，機能が未知である７回膜貫通型受容体の遺伝
子を卵母細胞に導入し，未知の受容体を発現した卵母細
胞に対して対応するリガンドをスクリーニングする作業
を自動化することにより，大規模な遺伝子の機能解析探
索を効率良く行なえる。
遺伝子導入によりにある受容体を発現させた複数の卵母
細胞のそれぞれに，全自動でガラス電極を挿入し，電位
を固定し，対応するリガンドを投与した時の電流応答を
計測できる。この結果，例えば，アレルギー関連の診断
を高速化でき，大量の検体について短時間に診断を行え
る。更に，機能が未知である７回膜貫通型受容体の遺伝
子を卵母細胞に導入し，未知の受容体を発現した卵母細
胞に対して対応するリガンドをスクリーニングする作業
を自動化することにより，大規模な遺伝子の機能解析探
索を効率良く行なえる。
【００６４】
【発明の効果】本発明の電気生理自動計測装置によれ
ば，ルーチンワーク的な仕事の自動化により計測者の負
担を軽減でき，計測を高速化でき，多数の計測を短時間
にできるため，ばらつきの少ない信頼性の高いデーター
を取得できるという効果を奏する。
ば，ルーチンワーク的な仕事の自動化により計測者の負
担を軽減でき，計測を高速化でき，多数の計測を短時間
にできるため，ばらつきの少ない信頼性の高いデーター
を取得できるという効果を奏する。
【図１】本発明の実施例の電気生理自動計測装置の構成
例を示す図。
例を示す図。
【図２】本発明の実施例のアレルギー診断を行なう電気
生理自動計測装置の構成例を示す。
生理自動計測装置の構成例を示す。
【図３】本発明の実施例で使用する９６穴卵母細胞保持
用プレートの構成例を示す平面図。
用プレートの構成例を示す平面図。
【図４】図３に示す９６穴卵母細胞保持用プレートの断
面図。
面図。
【図５】本発明の実施例に於けるガラス電極の卵母細胞
への挿入制御法を示す図。
への挿入制御法を示す図。
【図６】本発明の実施例で使用する９６穴プレート用ア
ース電極の形状を示す平面図。
ース電極の形状を示す平面図。
【図７】図６に示す９６穴卵母細胞プレート用アース電
極の部分斜視図。
極の部分斜視図。
【図８】本発明の実施例で使用する寒天からなる９６穴
卵母細胞保持用プレートを作成し，アースをとる方法を
示す図。
卵母細胞保持用プレートを作成し，アースをとる方法を
示す図。
【図９】本発明の実施例に於いてアース電極を移動させ
て各セルについてアースをとる構成例を示す図。
て各セルについてアースをとる構成例を示す図。
【図１０】本発明の実施例の電気生理自動計測装置を用
いて卵母細胞にヒスタミンを投与した時の反応を示す実
験データ。
いて卵母細胞にヒスタミンを投与した時の反応を示す実
験データ。
【符号の説明】
１０１…ＸＹステージ，１０２，１０３…ガラス電極，
１０４，１０５…ガラス電極駆動用モーター，１０７…
モーター駆動用コントローラー，１０８，１０８’…制
御用コンピューター，１０９…電気生理測定回路部，１
１１…９６穴卵母細胞保持用プレート，１１６…実体顕
微鏡，１２１…計測記録用コンピューター，１２５…マ
イクロシリンジ駆動用モーター，１２６…リガンド投与
用マイクロシリンジ，２０２…セル，２０３…半球部，
３０１…９６穴プレート用アース電極，３０２…アース
部，４０１…型，４０２…ゾル化した寒天，４０４…ゲ
ル化した寒天，４０５…寒天からなる卵母細胞保持用プ
レート，１２７，５０２…支持体，４０６…寒天に挿入
するアース電極，５０３…支持体に固定されたアース電
極，６０４…アース電極，６０３…溶液面，６０１…卵
母細胞，８０３…プレートスタッカー，８０５…反応容
器，８０６…反応ディスク，８０９…ベルトコンベア，
８１０…モーター。
１０４，１０５…ガラス電極駆動用モーター，１０７…
モーター駆動用コントローラー，１０８，１０８’…制
御用コンピューター，１０９…電気生理測定回路部，１
１１…９６穴卵母細胞保持用プレート，１１６…実体顕
微鏡，１２１…計測記録用コンピューター，１２５…マ
イクロシリンジ駆動用モーター，１２６…リガンド投与
用マイクロシリンジ，２０２…セル，２０３…半球部，
３０１…９６穴プレート用アース電極，３０２…アース
部，４０１…型，４０２…ゾル化した寒天，４０４…ゲ
ル化した寒天，４０５…寒天からなる卵母細胞保持用プ
レート，１２７，５０２…支持体，４０６…寒天に挿入
するアース電極，５０３…支持体に固定されたアース電
極，６０４…アース電極，６０３…溶液面，６０１…卵
母細胞，８０３…プレートスタッカー，８０５…反応容
器，８０６…反応ディスク，８０９…ベルトコンベア，
８１０…モーター。
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ
Ｇ０１Ｎ 33/483 Ｇ０１Ｎ 27/30 ３５１
(72)発明者 竹下 智子
東京都国分寺市東恋ケ窪一丁目280番地
株式会社日立製作所中央研究所内
(72)発明者 齊藤 栄
東京都国分寺市東恋ケ窪一丁目280番地
株式会社日立製作所中央研究所内
(72)発明者 松波 正吉
東京都国分寺市東恋ケ窪一丁目280番地
株式会社日立製作所中央研究所内
(72)発明者 守谷 騰
東京都国分寺市東恋ケ窪一丁目280番地
株式会社日立製作所中央研究所内
(56)参考文献 特開 平６−308118（ＪＰ，Ａ)
特開 平11−299496（ＪＰ，Ａ)
特開 平11−83785（ＪＰ，Ａ)
特開 昭57−196145（ＪＰ，Ａ)
実公 昭54−58092（ＪＰ，Ｙ２)
(58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名)
G01N 27/327
G01N 27/30
Claims (4)
- 【請求項１】卵母細胞を保持するセルを複数もつ容器
と， 前記各セルに配置されるアース電極と， 前記容器を保持し移動させて所定の前記セル内の第１の
卵母細胞の位置決めを行うステージと， 前記セル内の前記卵母細胞に１本又は２本のガラス電極
を挿入するための挿入手段と， 前記ガラス電極から発する電気信号を検出する検出手段
と， 前記卵母細胞の膜電位を所定の値に固定する固定手段
と， 前記卵母細胞に化学物質を投与するマイクロシリンジ
と， 前記マイクロシリンジを駆動するマイクロシリンジ駆動
手段と、 前記ステージ，前記挿入手段，前記固定手段，及び前記
マイクロシリンジを制御する制御手段とを有し， 前記制御手段は，前記ガラス電極から発する前記電気信
号に基づき，前記ガラス電極の，前記セル内の溶液面へ
の接触，前記卵母細胞の膜表面への接触，及び前記卵母
細胞の膜内への挿入を識別し、前記固定手段に前記膜電
位を固定する信号を送信し、前記膜電位の固定を認識
し、その後、前記マイクロシリンジ駆動手段に駆動信号
を送信する手段であって、さらに、前記検出手段により
電気信号が測定された後、前記ステージ及び前記挿入手
段を第２の卵母細胞の測定をするように制御する手段で
あり、 更に、前記ガラス電極が前記セル内の溶液面へ接触した
後、前記ガラス電極の抵抗値を計測する手段と、 前記抵抗値が所定の許容値内に入らないとき、前記ガラ
ス電極を引き上げる手段とを有する ことを特徴とした電
気生理自動計測装置。 - 【請求項２】請求項１に記載の電気生理自動計測装置に
於いて，前記アース電極が，表面が塩化銀により被覆さ
れた金属から構成されることを特徴とした電気生理自動
計測装置。 - 【請求項３】請求項１に記載の電気生理自動計測装置に
於いて，前記容器が寒天により成型され，前記アース電
極が前記寒天の一部と接触することを特徴とした電気生
理自動計測装置。 - 【請求項４】請求項１に記載の電気生理自動計測装置に
於いて，前記セルの形状が円錐の先端に半球を持つ形状
であることを特徴とした電気生理自動計測装置。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP36624299A JP3525837B2 (ja) | 1999-12-24 | 1999-12-24 | 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 |
| US09/740,817 US6539244B2 (en) | 1999-12-24 | 2000-12-21 | Automatic electrophysiological measuring apparatus/method |
| US09/799,119 US6470201B2 (en) | 1999-12-24 | 2001-03-06 | Automatic electrophysiological measuring apparatus / method |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP36624299A JP3525837B2 (ja) | 1999-12-24 | 1999-12-24 | 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2000365769A Division JP3799998B2 (ja) | 2000-11-28 | 2000-11-28 | 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2001183329A JP2001183329A (ja) | 2001-07-06 |
| JP3525837B2 true JP3525837B2 (ja) | 2004-05-10 |
Family
ID=18486290
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP36624299A Expired - Fee Related JP3525837B2 (ja) | 1999-12-24 | 1999-12-24 | 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US6539244B2 (ja) |
| JP (1) | JP3525837B2 (ja) |
Families Citing this family (21)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7462324B2 (en) | 1997-08-07 | 2008-12-09 | Panasonic Corporation | Measurement device and method for measuring electric signal from biological sample |
| AU746580B2 (en) | 1997-12-17 | 2002-05-02 | Ecole Polytechnique Federale De Lausanne | Positioning and electrophysiological characterization of individual cells and reconstituted membrane systems on microstructured carriers |
| US7244349B2 (en) * | 1997-12-17 | 2007-07-17 | Molecular Devices Corporation | Multiaperture sample positioning and analysis system |
| GB9812783D0 (en) | 1998-06-12 | 1998-08-12 | Cenes Ltd | High throuoghput screen |
| US7270730B2 (en) * | 2000-08-04 | 2007-09-18 | Essen Instruments, Inc. | High-throughput electrophysiological measurement system |
| US7067046B2 (en) * | 2000-08-04 | 2006-06-27 | Essen Instruments, Inc. | System for rapid chemical activation in high-throughput electrophysiological measurements |
| JP3442357B2 (ja) * | 2000-08-25 | 2003-09-02 | 株式会社日立製作所 | 両生類卵母細胞試料導入装置、両生類卵母細胞試料導入システム、両生類卵母細胞試料導入方法、両生類卵母細胞の製造方法、両生類卵母細胞及びそれを販売又は譲渡する方法、スクリーニング用のセンサーとして用いる方法、容器、及び解析方法 |
| US6468784B1 (en) * | 2001-05-18 | 2002-10-22 | Hitachi, Ltd. | Apparatus and method for oocytes or eggs selection |
| WO2003021230A2 (en) * | 2001-09-05 | 2003-03-13 | Essen Instruments, Inc. | High-throughput electrophysiological measurement system |
| DK1460415T3 (da) * | 2001-11-19 | 2011-04-26 | Panasonic Corp | Måleindretning til måling af et elektrisk signal, der afgives af en biologisk prøve |
| US7407781B2 (en) * | 2002-05-08 | 2008-08-05 | Wyeth | Oocyte recording chamber |
| US20040142572A1 (en) * | 2003-01-16 | 2004-07-22 | Deveau Jason S. T. | Apparatus and method for selectively inducing hydrophobicity in a single barrel of a multibarrel ion selective microelectrode |
| JP2006061048A (ja) * | 2004-08-26 | 2006-03-09 | Hitachi Ltd | ハイスループット細胞アッセイ装置 |
| US20060050376A1 (en) * | 2004-09-02 | 2006-03-09 | Houston Edward S | Robotic microscopy apparatus for high throughput observation of multicellular organisms |
| JP4618674B2 (ja) * | 2005-01-17 | 2011-01-26 | セイコーインスツル株式会社 | 侵襲確認装置 |
| JP2007166981A (ja) * | 2005-12-22 | 2007-07-05 | Fujitsu Ltd | 注入装置及び方法 |
| EP2238235A1 (en) * | 2008-01-23 | 2010-10-13 | CSEM Centre Suisse d'Electronique et de Microtechnique SA - Recherche et Développement | Microinjection apparatus and method |
| JP5710135B2 (ja) * | 2010-03-18 | 2015-04-30 | 章博 挾間 | 顕微授精装置、顕微授精用のプローブおよび顕微授精方法 |
| DE102016109694A1 (de) | 2016-05-25 | 2017-11-30 | Osram Opto Semiconductors Gmbh | Sensorvorrichtung |
| WO2018144814A1 (en) | 2017-02-03 | 2018-08-09 | Infinitesimal Llc | Electroporation system with micromanipulator and probe |
| CN115151346A (zh) * | 2020-01-24 | 2022-10-04 | 科锐丽亚生物系统公司 | 自动分析物测定系统及与其一起使用的试剂盒 |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU1059997A (en) * | 1995-11-08 | 1997-05-29 | Trustees Of Boston University | Cellular physiology workstations for automated data acquisition and perfusion control |
| JP3697852B2 (ja) | 1997-09-08 | 2005-09-21 | 株式会社日立製作所 | 計測システム |
| JP3707303B2 (ja) * | 1999-06-30 | 2005-10-19 | 株式会社日立製作所 | ヒスタミン計測方法およびヒスタミン計測装置 |
-
1999
- 1999-12-24 JP JP36624299A patent/JP3525837B2/ja not_active Expired - Fee Related
-
2000
- 2000-12-21 US US09/740,817 patent/US6539244B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2001
- 2001-03-06 US US09/799,119 patent/US6470201B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US6539244B2 (en) | 2003-03-25 |
| US20010011154A1 (en) | 2001-08-02 |
| US6470201B2 (en) | 2002-10-22 |
| JP2001183329A (ja) | 2001-07-06 |
| US20010005774A1 (en) | 2001-06-28 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP3525837B2 (ja) | 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 | |
| EP1804908B1 (en) | Apparatus for spatially confined electroporation | |
| Schnizler et al. | The roboocyte: automated cDNA/mRNA injection and subsequent TEVC recording on Xenopus oocytes in 96-well microtiter plates | |
| US6063260A (en) | Patch clamp apparatus and technique having high throughput and low fluid volume requirements | |
| US6455303B1 (en) | Detection of biologically active molecules by use of pre-activated cell-based biosensors in liquid-based separation systems | |
| JP3570715B2 (ja) | マルチ電極を備えた信号検出用センサ | |
| US9194875B2 (en) | Platelet aggregation test and device | |
| WO2001007583A1 (en) | Cell/tissue analysis via controlled electroporation | |
| JP5948355B2 (ja) | 電気生理学的分析のためのハンドヘルド装置 | |
| JP2007535345A (ja) | 高処理能力の電気生理学システム | |
| MXPA06012907A (es) | Sistema y aparato de perfusion para registros automatizados tipo parche-pinza de canales multiples, utilizando configuracion de celula completa dentro-fuera. | |
| EP1451339A2 (en) | Liquid interface configurations for automated patch clamp recording | |
| JP3799998B2 (ja) | 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法 | |
| Liu et al. | High-throughput measurement of gap junctional intercellular communication | |
| JPH11299496A (ja) | 卵母細胞用容器およびそれを用いた計測装置 | |
| US6890762B1 (en) | Method for measuring physiocochemical properties of tissues of cells, method for examining chemicals, and apparatus therefor | |
| WO2016070100A1 (en) | Neural circuit probe | |
| JP2004514885A (ja) | 細胞内のシグナル伝達経路の活性化状態を測定する方法 | |
| JP4498139B2 (ja) | 膜体上で電気的測定を実行するための装置および方法 | |
| JP2014124133A (ja) | 細胞外電位計測装置及び方法 | |
| Kluge et al. | Time-resolved in vivo measurement of neuropeptide dynamics by capacitive immunoprobe in porcine heart | |
| US20130037423A1 (en) | Multi-Point Cellular Analysis | |
| JP3182127U (ja) | 細胞外電位計測装置及び方法 | |
| Attwaters et al. | Real Time and Repeated Measurement of Skeletal Muscle Growth in Individual Live Zebrafish Subjected to Altered Electrical Activity | |
| Nadeau et al. | Electrophysiology |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A911 | Transfer of reconsideration by examiner before appeal (zenchi) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911 Effective date: 20031211 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20040127 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20040209 |
|
| S111 | Request for change of ownership or part of ownership |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20080227 Year of fee payment: 4 |
|
| R360 | Written notification for declining of transfer of rights |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R360 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20080227 Year of fee payment: 4 |
|
| S531 | Written request for registration of change of domicile |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20080227 Year of fee payment: 4 |
|
| R370 | Written measure of declining of transfer procedure |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R370 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20080227 Year of fee payment: 4 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| S111 | Request for change of ownership or part of ownership |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20080227 Year of fee payment: 4 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090227 Year of fee payment: 5 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100227 Year of fee payment: 6 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110227 Year of fee payment: 7 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120227 Year of fee payment: 8 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |