JP3507079B2 - 前立腺特異的抗原(psa)及びヒトの腺のカリクレイン(hgk−1)濃度を包含する比率を測定することによる前立腺がん(cap)の早期検出 - Google Patents
前立腺特異的抗原(psa)及びヒトの腺のカリクレイン(hgk−1)濃度を包含する比率を測定することによる前立腺がん(cap)の早期検出Info
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Description
カリクレイン(hGK−1)を用いることによる前立腺が
ん(CAP)の早期検出のためのバイオアフィニティ検出
方法に関する。
られた刊行物及び他の資料及び特に実施に関する追加の
細部を提供する事例は参照により組み込まれる。
り分泌される豊富な33kDa糖タンパク質である(Brawer
「Acta Oncol」30:p.161〜8,1991年)。PSAの血清中の
濃度は通常非常に低いが、前立腺がん(CAP)患者にお
いては、しばしば正常(すなわち、4μg/)より増加
することが公知である。したがって、血清PSAを測定す
る免疫検出方法は、病気の進行及び前立腺除去後のCAP
の再発を監視するために定期的に用いられている(Braw
er他「Vrology」5(補):p.11〜6,1989年,Oesterling
「J Urol」145:p.907〜23,1991年)。しかしながら、が
ん検出のためのPSA検出方法の特異性は、正常より高い
レベルが良性前立腺過形成(BPH)のすべての患者の30
〜50%にも見い出されるという事実により限定される
(Stamey他,「New Eng J Med」317:p.909〜16,1987年,
Hudson他「J Urol」142:p.1011〜7,1989年)。4〜20μ
g/の間のPSAの血清濃度はBPH患者及び限られた、もし
かすると治癒できるCAPの臓器を可能性を与える患者に
おいて特に普通である。これは前立腺がんの早期診断に
おけるPSA検出方法の有用性を減じる。
ーゼであって、血清中で主としてセリンプロテアーゼ阻
害α−1−アンチキモトリプシン(ACT)と複合体とし
て現われる(Lilja他「Clin Chem」37:p.1618〜25,1991
年)。大過剰のACTにもかかわらず、少量のPSAは遊離の
非複合体形で血清中において循環する(Lilja他,1991
年)。ほとんどの市販のPSA検出方法は、総PSA分画(PS
A−T)を構成する遊離PSA及びPSA−ACT複合体の両方を
検出する。しかしながら、すべての検出方法は等しい有
効性を有するその2つの形を検出しない(Stamey他「J
Urol」152:p.1〜5,1994年)。PSA−ACT複合体形の割合
は、CAP患者の血清においてBPHのそれに比較して高いと
いうことが立証されたので、これはCAPを検出する能力
に影響を与えるかもしれない(Stenman他「Cancer Re
s」51:p.222〜6,1991年,Christensson他「J Urol」150:
p.100〜5,1993年)。これはBPHにおいてより、CAPにお
ける遊離:総PSA比が低いという発見と矛盾しない(Chr
istensson他,1993年)。報告データは、異なるPSA形の
特異的測定がCAPの早期診断を改良することも示してい
る。
精液の中に分泌される。低濃度のPSAは通常一般的な循
環において見い出される。PSAの血清濃度は前立腺の種
々の病気の状態、特にCAPにおいて増加する。免疫検出
方法によるPSA測定は、主に腫瘍容積との高い相関性の
ため、CAPの監視において卓越したマーカーである。米
国がん学会は、最近、CAPの早期検出を改良するために
デジタル直腸検査と兼備したPSAの測定を、50才を超え
た男性に適用すべきであると勧めた(Kramer他「Ann In
tern Med」119:p.914〜23,1993年)。しかしながら、血
清中のPSA測定の診断可能性は、PSAレベルがBPHの多く
の患者においても上昇するという事実により限定され
る。血清PSA測定の診断特異性を高めるためにいくらか
の改良が示唆された。
た実験は、前立腺は他の高度に同様な遺伝子(hGK−I
と同定された)を発現することを明らかにした(Chapde
laine他「FEBS Lett」236:p.205〜8,1988年)。PSA及び
hGK−1の両方がすべての組織カリクレインにより共有
される遺伝子構造を有する。それらの配列の85%は類似
であって、それらのイントロンは79〜86%類似で、それ
らのプロモーター領域は91%類似である(Lundwall「Bi
ochem Biophys Res Commun」161:p.1151〜9,1989年,Rei
gman他「Biochem Biophys Commun」159:p.95〜102,1989
年Schiedlich他「Clin Exp Pharmacol Physiol」15:p.3
39〜44,1988年)。PSAと予想されたhGK−1タンパク質
との間の類似性はまさに断言され、PSA及びKLKI(カリ
クレイン1)とhGK−1及びKLKIのいずれかの間の類似
性よりも高い。hGK−1の前立腺の発現は分泌上皮細胞
に限定されていることが立証され、hGK−1及びPSA mRN
Aのそれぞれの前立腺レベルにより示されたPSAのものよ
りも10〜50%低いかもしれない(Young他「Biochemist
y」31:p.818〜24,1992年)。現在まで、前立腺はhGK−
1遺伝子発現の唯一の同定された場所である。したがっ
て、hGK−1遺伝子がPSA遺伝子と同じ前立腺上皮細胞に
発現されているけれども、予想されたhGK−1タンパク
質はイン−ビボと特徴づけられたままである。しかしな
がら、hGK−1のコード配列は、成熟糖タンパク質の237
残基を生ずるであろう261アミノ酸プレタンパク質を予
測する。
ク質は237アミノ酸から成る(Lundwall及びLilja「FEBA
Lett」214:p.317〜22,1987年,Riegman他「Biochem Bio
phys Res Commun」155:p.181〜8,1988年,Henttu他「Bio
chem Biophys Res Commun」160:p.903〜10,1989年)。
成熟PSAのアミノ酸配列も精製タンパク質の分析により
確認された(Schaller他「Eur J Biochem」170:p.111〜
20,1987年,Watt他「Proc Natl Acad Sci USA」83:p.316
6〜70,1986年)。hGK−1アミノ酸配列は1つのアスパ
ラギン連結糖タンパク質部位を、しかしながら、PSAと
比較した時に異なった位置に予想する。hGK−1タンパ
ク質は、なお、単離及び特徴づけられるべきままであ
る。
を図1に示す(Henttu他「Ann Med」26:p.165〜71,1994
年)。PSA及びhGK−1の三次元構造は、両タンパク質が
カリクレインの折りたたみに含まれる10個のシステイン
残基を保持しているので、非常に類似しているようであ
る。PSA及びhGK−1ポリペプチド鎖には、15個の連続的
なアミノ酸が等しい6つの領域がある。したがって、PS
A及びhGK−1は両タンパク質中に暴露された、抗原エピ
トープを共有していることは、これらの領域もこのタン
パク質中に親水性領域を広げるので、非常にありそうな
ことである(Henttu他,1989年)。
1及びPSAを産生した。前記発現されたタンパク質の構
造が確認された。両タンパク質についてのエピトープ地
図を、PSAに対して前もって生じさせ、特徴づけたモノ
クローナル抗体の広い選択を用いて構築した。モノクロ
ーナル抗体は、PSAのみを認識するモノクローナル抗体
に加えて、PSA及びhGK−1の両方に共通な抗原エピトー
プを共有することを確認した。確認されたモノクローナ
ル抗体を、総PSA+hGK−1及び総PSAのみを測定する検
出方法を設計するのに用いた。CAP及びBHP患者からの血
清試料を遊離PSA、総PSA、総PSA+hGK−1及びPSA−ACT
の濃度を測定するのに用いた。その結果の臨床的確認を
行なった。さらに、血清試料中のhGK−1のみの濃度を
測定するための別の検出方法を設計した。これはPSA及
びhGK−1の両方を検出する検出方法により検出されるP
SAを防ぐために、PSA特異的モノクローナル抗体を有す
る血清を前もってインキュベートすることにより達成さ
れる。タンパク分解活性PSAは、インビトロでα−1−
アンチキモトリプシン(ACT)、α−2−マクログロブ
リン、プロテインC−阻害剤及び妊娠性血漿タンパク質
とゆっくりと安定な複合体を形成する。1991年(Lilja
他,1991年)には、ACTと複合体を形成するPSAは血漿中
のPSAの主要な形であることが明らかになった。遊離の
非−複合体形成PSAに特異的な免疫測定検出方法をこの
形で生じる平均15〜20%の総PSA濃度を評価するのに用
いた。この研究で報告された、PSA−T(すなわち、総P
SA)、PSA−ACT(すなわち、ACTと複合を形成したPSA)
及びPSA−F(すなわち、遊離PSA)の2部位の免疫測定
検出方法は、後で、PSA−F/PSA−Tの比率(BPHよりもC
APで小さい)またはPSA−ACT/PSA−Tの比率(BPHより
もCAPで大きい)が2つの群の患者の間の識別を改良す
ることを証明する(Christensson他,1993年,Lilja他国
際特許出願公開92/01936号公報)のに用いられた。別々
の発見は、当初のPSA−F/PSA−Tの比率の測定により得
られたCAP及びBPHの間の増加した識別性の所見を後で確
認した。本発明により、異なった形のPSAに加えてhGK−
1の測定が可能になった時、CAP及びBPH患者からの血清
試料を、これらの2つの患者の群の識別において、hGK
−1または異なった形のPSAといっしょのhGK−1の有用
性について分析した。
タンパク質の発生及び濃度が測定された。選択されたモ
ノクローナル抗体の特異性のため、hGK−1+PSA−Tの
両方の濃度またはPSA−Tのみの濃度のいずれかを測定
するのに2部位免疫測定検出方法を用いた。他の2部位
免疫測定検出方法をPSA−Fの濃度を測定するのに用い
た。4番目の2部位免疫測定検出方法をPSA−ACT(α−
1−アンチキモトリプシンと複合体を形成したPSA)の
濃度を測定するのに用いた。PSA−F/(PSA−T+hGK−
1)またはPSA−ACT/(PSA−T+hGK−1)の比率の測
定による本発明により、CAPの早期検出と効率的なCAPと
BPHの間の識別が得られた。バイオアフィニティ検出方
法は、抗体の使用に基づく免疫検出方法として実施する
ことができる。代替的にバイオアフィニティ検出方法
は、一般的に構築された当該抗体に対して特異的なバイ
オアフィニティ成分(すなわち、抗体断片)を用いるこ
とにより実施できる(Marks他「J Biol Chem」267:p.16
007〜10,1992年,Wenter他「Annu Rev Immunol」12:p.43
3〜55,1994年,Owens及びYoung「J Immunol Methods」16
8:p.149〜165,1994年)。
共通のエピトープを認識する抗体または抗体断片を用い
ることにより同時に測定することができる。代替的に、
PSA−T及びhGK−1の量を、前記合計を算出した後で別
々に測定する。CAP及びBPHの間の識別についての新しい
比率〔すなわち、PSA−F/(PSA−T+hGK−1)またはP
SA−ACT/(PSA−T+hGK−1)〕の臨床的な有用性は、
PSA−F/PSA−TまたはPSA−ACT/PSA−Tのそれぞれの比
率の測定における有用性と比較した時、同様であるかま
たはことによると増加する。したがって、本発明によっ
て測定する時、比率PSA−F/(PSA−T+hGK−1)も、B
PHでよりもCAPで小さいと同時に比率PSA−ACT/PSA−T
+hGK−1)はBPHでよりもCAPで大きい。
成熟PSAとhGK−1ポリペプチド鎖の間で異なるアミノ酸
をhGK−1図中に黒丸で示した。5つのジスルフィド結
合の位置(円の内の文字Cで示す)と活性部位残基(円
の内の文字)は、セリンプロテアーゼの典型的な構造に
基づく。PSAの基質特異性(すなわち、セリン183)及び
hGK−1の基質特異性(すなわち、アスパラギン183)を
測定するのに包含されると考えられる活性部位残基を四
角の内の文字で示す。グリコシル化部位(すなわち、PS
A中のアスパラギン45及びhGK−1中のアスパラギン78)
を分枝構造で示す。図はビルハルツ(Bilhartz)他
(「Urology」38:p.95〜102,1991年)のものを修飾する
ものであって、ポリペプチド鎖の三次元折りたたみを図
解する意図はなかった。
いるタンパク質のECLウエスタンブロット検出を図解す
る。図は当初の実験データにしたがって描かれている。
ープ地図を示す。重なり合っている円はサンドイッチを
形成しないことを表わす。接触している円はサンドイッ
チ形成の阻害を表わす。分離した円は独立したエピトー
プを表わす。
めのバイオアフィニティー検出方法(免疫検出方法)の
設計を図解する。
合体を含有する試料をPSAのみを特異的に認識する過剰
のMab A5と反応させる。これは、連続する免疫反応にお
けるPSAの関与をまさに阻止するのに役立つ。この阻止
段階はストレプトアビジンを被覆したウェル中で行なわ
れる。
B6〔PSA及びhGK−1(及びそれらの複合体)を等しく
よく認識する〕を、hGK−1をストレプトアビジン表面
に捕獲するために加える。Mab B6とPSAの間の反応はMab
A5の存在により阻止されている。インキュベーション
の完了後、ウェルを洗浄する。これはPSAとその複合体
を完全に除去する。
1(PSA及びhGK−1の両方並びにそれらの複合体を認識
する)を加えて、Mab B6を介して、ストレプトアビジン
表面に結合しているhGK−1を検出する。
率の組み合せ、PSA−F/(hGK−1+PSA−T),PSA−F/P
SA−T,PSA−C/(hGK−1+PSA−T)及びPSA−C/PSA−
Tを用いて、CAP患者からCAPでない男性患者(BPH+正
常)を区別するための受信機運用特性を示す。曲線(AV
C)の下の面積を算定し、比較する。試料の数:BPH+正
常=57,CAP=32。PSA−Tカットオフ 1〜20μg/。
年)中のPSA cDNAクローンに由来した。hGK−1 cDNAを
ヤング他(1992年)に記載のようにクローン化し、プラ
スミドベクターpuc19に結合した。ベクターである、pSF
V1,pSFV3,pSFV3−lacZ及びpSFV−Helper2は、P.リルジ
ストローム(Liljestrm及びGaroff「Biotechnolog
y」9:p.1356〜61,1991年)からの贈り物であった。PCR
プライマーである5′−PSAV3:5′−TAT GGA TCC CAT G
TG GGT CCC GGT TGT C−3′,3′−PSA:3′−TAT GGA T
CC TTA GGG GTT GGC CAC GAT GGT G−5′,5′−hGK−1
V3:5′−TAT GGA TCC CAT GTG GGA CCT GGT TCT C−
3′,3′−hGK−1:3′−TAT GGA TTC TTA GGG GTT GGC
TGC GAT GGT−5′並びに配列化プライマーであるSP1及
びSP2(Liljestrm及びGaroff,1991),5′−PSAM:5′
−AGC CTC CTG AAG AAT CG−3′,3′−PSAM:3′−TGA
CCT TCA CAG CAT CCG−5′,5′−hGK1M:5′−CCT TAG
ACC AGA TGA AG−3′及び3′−hGK1M:3′−GAC CTT C
AC AAC ATC TG−5′をアプライド・バイオシステムズ
のオリゴヌクレオチド合成機で合成した。分子生物学試
薬及び酵素は、アプリジーン(Appligene)、ベーリン
ガー・マンハイム(Boehringer Mannheim)、ファルマ
シア・バイオテク(Pharmacia Biotech)またはプロメ
ガ(Promega)から得た。配列決定はPRISMシクエナーゼ
ターミネーター(Applied Biosystems,フォスターシ
ティー,カリフォルニア州)を用いて行った。ウエスタ
ンブロット試薬はアマ−シャム(Amersham)(Buckingh
amshire,英国)からであった。
の装置で行なった。PCRをミニサイクラー(Mini Cycle
r)(SDS,Falkenberg,スェーデン)を用いて行なった。
配列ゲルをアプライド・バイオシステムズからの373DNA
シクエンサーを用いて行い、そして分析した。エレクト
ロポーレーションはジーン・パルサー(Gene Pulser)
(Bio−Rad,リッチモンド,カリフォルニア州)を用い
て行なった。ドデシル硫酸ナトリウム・ポリアクリルア
ミド・ゲル電気泳動(SDS−PAGE)はバイオ・ラド(Bio
−Rad)からのミニ・プロティーン(Mini PROTEAN)II
システムを用いて行なった。タンパク質のウェスタンブ
ロットは、ケム・エン・テク(Kem En Tec)からのセミ
・ドライ・ブロッター(Semi Dry Blotter)IIを用いて
行なった。
ば、サムブロック他(「A Laboratory Mannual」1989
年,第2版,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spri
ng Harbor,ニューヨーク州)により記載された慣用技術
を用いて行なった。作業において用いられた細菌の細胞
は大腸菌DH5alfaであった。コンピテント細胞は、バイ
オラド・ジーン・パルサーの手引きに記載されたように
調製した。プレプロPSAをコードするDNAを5′PSAV3及
び3′−PSAプライマーを有するpGEM−PSAから、並びに
プレプロhGK1をコードするDNAを、5′−hGK1V3及び
3′−hGK1プライマーを有するpUC19−hGKIからPfu DAN
ポリメラーゼを用いてポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を
用いて増幅した(Strotagene,LaJolla,カリフォルニア
州)。反応は最初の94℃で50秒間の5サイクルの変性、
58℃で1分間のアニール及び72℃で2分間の重合、それ
に続く94℃で50秒の25サイクルの連続する変性、64℃で
1分間のアニール及び72℃で2分間の重合から成った。
すべてのプライマーは断片をベクターに結合するのに用
いられたBamH1制限部位を含有していた。BamH1を用いて
断片を切断後、それらをジェットソルブ(Jet Sorb)
(Genomed GmbH,Bad Oeynhausen,ドイツ国)を用いて寒
天ゲルから単離し、精製し、puc18中に結合した。その
断片をBamH1を用いてpuc18から切断して取り出し、前と
同じように精製し、次にpSFV3中に結合した。最終構築
物のヌクレオチド配列はDNA配列分析により確かめた。
配列反応に用いられたプライマーはSP1,SP2,5′−PSAM,
3′−PSAM,5′−hGK1M及び3′−hGK1Mであった。
(Semliki Forest Virus)発現システム(Berglund他
「Biotechnolgy」11:p.916〜920,1993年)を用いて行な
われた。用いられたプロトコルはSFV1Helper2遺伝子発
現システムの使用者の手引き(Life Technologies,Gibc
o BRL)からであった。ベクターを最初にSpe Iを用いて
直鎖状にした。さらに1mMのATP,CTP及びUTP,0.5mMのGT
P,1mMのm7G(5′)ppp(5′)G並びに50単位のRNasi
nを含有する、SP6緩衝液中で、1.5μgの直鎖状ベクタ
ーから30単位のSP6ポリメラーゼを用いて、総量50μl
のmRNAを生じさせた。反応混合物を37℃で2時間インキ
ュベートした。エレクトロポーレーションによりmRNAの
半分をBHK−21細胞に転移させた。BHK−21細胞を2mMの
グルタミン、100U/mlのペニシリン、100μg/mlのストレ
プトマイシン、非必須アミノ酸(ICN Biomedicals,Cost
a Mesa,カリフォルニア州)及び5%の牛の胎児の血清
を補足したHEM(Gibco BRL)中で増殖させた。細胞をト
リプシン−EDTAを用いて分離し、Mg2+及びCa2+を含有し
ないPBSで洗浄し、約10×7細胞/mlの濃度まで懸濁し
た。エレクトロポーレーションは、0.8mlの細胞混合物
を用いて、0.4cmのキュベット中で850V/25μFで2回パ
ルスを与えることにより行なった。エレクトロポーレー
ション後、細胞を20mlの培地に懸濁させ、培養びんに移
した。発現タンパク質を含有する上清を48時間または72
時間後に回収した。我々の手元にある発現システムの機
能は、pSFV3−lacZを用いるβ−ガラクトシダーゼの発
現に並行して、PSA及びhGK1の発現のすべての段階を行
なうことによってチェックした(Liljestrm及びGaro
ff,1991年)。
ゲルを用いて、ミニ−プロティーン電気泳動細胞説明書
中に記載されたように、SDS−PAGE作業で行なった。発
現タンパク質のサイズを、SDS−PAGEのための分子量マ
ーカー(Pharmacia,ウプサラ,スエーデン)を用い、製
造者の示唆したプロトコルを用いてECL−ウエスタンブ
ロット(Amersham,Buckinghamshire,英国)により確か
めた。ビオチニル化モノクローナル抗体B1及びB6並びに
ストレプトアビジン−ホースラディシュ・ペルオキシダ
ーゼの0.1μg/mlの混合物を用いて検出を行なった。
認するために、プレプロ形のタンパク質をコードするヌ
クレオチド配列及びpSFV3に挿入されたDNAの方向づけ
を、ヌクレオチド配列決定により確かめた。pSFV3−PSA
は261aaプレプロPSAをコードし、pSFV3−hGK1は261aaプ
レプロhGK1をコードする。両構築物はタンパク質の最初
に余分のMet−Asp−Proをコードしている配列を含有し
ていた。hGK−1をコードするヌクレオチド配列は、前
に報告されたゲノム配列(Schedlich他「DNA」6:p.429
〜437,1987年)とヌクレオチド600(G−>A)及び663
(G−>T)(開始コドンと関連する)で異なる。これ
らの変化はcDNA配列において前に報告されたものと異っ
ている(Riegman他「Molecular and Cellular Endocrin
ology」76:p.181〜190,1991年,Young他,1992年)。その
変化は、アミノ酸配列に影響を与えず、アミノ酸配列は
以前に報告されたもの(Schedlich他,1987年)と同一で
ある。
抗体B1及びB6を用いてウェスタンブロットにより決定し
た。組換えPSA及びhGK−1のサイズは精液血漿から精製
したPSAのサイズと同一であった(図2)。
刷中)を用いるエピトープ地図の作製研究を、入手可能
なモノクローナル抗PSA抗体のすべての可能な組み合せ
の免疫検出能の分析によって実施した:すなわち、抗体
として精製されたPSA(精液から単離された)または組
換えにより生産したPSAもしくはhGK−1のいずれかを用
いることにより、1方のMabをミクロ滴定ウェルに固定
し、他方をEu−キレートで標識した。最初の定量試験の
後(結合無し対検出可能な結合)、前に報告された手順
(Pettersson他「Clin Chem」印刷中)にしたがって、r
hGK−1を認識するPSA−Mabについて、アフィニティ常
数を決定した。データを表1に示す。PSA,PSA−ACT及び
hGK−1についてのエピトープを認識するモノクローナ
ル抗体についてのそれぞれのエピトープ地図を図3に示
す。6つの試験したモノクローナル抗−PSA抗体(B1,B
2,B3,B4,B6及びB7)は、精液から精製したrhGK−1,rPSA
及びPSAと等しく反応性であることを見い出した。1つ
の追加のモノクローナル抗体(B5)もrhGK−1を認識し
たが、hGK−1についての親和性はPSAについての親和性
より著るしく低かった。全体として、7つの試験したモ
ノクローナル抗−PSA抗体(A1〜A7)が、PSAに特有でrh
GK−1を共有しないエピトープを認識した。これらのエ
ピトープは遊離PSA及びPSA−ACTの両方で暴露されてお
り、5つ(C1〜C5)は遊離PSAのみに暴露されているPSA
に独特なエピトープを認識し、7つ(B1〜B7)は、hGK
−1に共通である、遊離PSA及びPSA−ACTの両方につい
て利用できるエピトープを認識した。モノクローナル抗
体の特異性を表1に示す。
PSA−F,PSA−T,PSA−T+hGK−1及びPSA−ACTの特異的
測定のための検出方法 PSA及びhGK−1エピトープ地図及びアフィニティ常数
の決定から得られた情報に基づき、2つの免疫蛍光測定
検出方法を構築した。固相上のモノクローナル抗体B1と
トレーサーとしてのモノクローナル抗体B6の組み合せは
PSA及びhGK−1(PSA−T+hGK−1)を共検出する。固
相上のモノクローナル抗体A1とトレーサーとしてのモノ
クローナル抗体B1の組み合せは、遊離PSA及びPSA−ACT
(PSA−T)の両方の特異的測定を提供するが、hGK−1
を共検出しない。固相上のモノクローナル抗体B1及びト
レーサーとしてのモノクローナル抗体C2を用いて、追加
の検出方法を遊離PSA(PSAF)の特異的測定について最
高に活用した。この検出方法はhGK−1を共検出しなか
った。PSAの遊離形を特異的に検出するすべてのモノク
ローナル抗体がhGK−1を認識することができなかった
ので、PSAの遊離形を特異的に検出し、hGK−1をも共検
出する検出方法を設計することはできなかった。さら
に、固相上のモノクローナル抗体及びトレーサーとして
のモノクローナル抗体Dを用いることにより、PSA−ACT
のみを測定する別個の検出方法を作った。以前に出版さ
れた手順(Lilja他,1991年,Pettersson他「Clin Chem」
印刷中)にしたがって、検出方法の手順を整えた。
した。直接及び排他的にhGK−1を認識するがPSAを認識
しないだろうモノクローナル抗体を入手できなかったの
で、この検出方法は遊離形のPSA及びPSA−ACTの両方の
認識をすっかり及び特異的に阻止する別個の段階を用い
る。これは過剰のモノクローナル抗体A5の添加により達
成され、それは遊離形のPSA及びPSA−ACTの両方を認識
するが、hGK−1と交差反応しない。これは、阻止段階
なしでPSAとhGK−1を等しくよく測定する、連続する免
疫蛍光測定検出方法(捕獲抗体としてのビオチニル化モ
ノクローナル抗体B6/トレーサーとしての標識化モノク
ローナル抗体B1)においてPSAが反応するのを阻止す
る。これはA5及びB6エピトープの間の重なりによる(図
3)。この検出方法の詳細な実施の例は図4A〜図4Cに記
載されている。hGK−1のための対照検出方法、すなわ
ちPSA+hGK−1検出方法を、PSA阻止モノクローナル抗
体A5を用いる段階を除く以外は、同一の方法で実施し
た。
たはPSA−ACT/(PSA−T+hGK−1)の測定による臨床
的なBPH及びCAPの間の識別 正常な男性の被験者及びBPHにかかっており、CAPの証
拠のない患者からの57血清試料及び証明されたCAPを有
する患者からの32の処置前の試料をPSA−F,PSA−T,PSA
−T+hGK−1及びPSA−ACTについての検出方法で試験
した(表2)。それぞれの比率、すなわち、PSA−F/PSA
−T,PSA−F/(PSA−T+hGK−1),PSA−ACT/PSA−T及
びPSA−ACT/(PSA−T+hGK−1)をすべての試料につ
いて算定した。受信機運用特性(ROC)分析を上述の4
つの異なった検出方法の組み合せについて得られた比率
を用いて、CAPからBPHの識別のために算定した(図
5)。曲線の下の面積は、それぞれ、PSA−F/PSA−Tの
比率を用いると0.80、PSA−F/(PSA−T+hGK−1)を
用いると0.83、PSA−ACT/PSA−Tを用いると0.69、PSA
−ACT/(PSA−T+hGK−1)を用いると0.63であった。
したがって、PSA−F/(PSA−T+hGK−1)の間の比率
が最も性能よく、PSA−ACT/(PSA−T+hGK−1)の間
の比率が患者の群の間で最も低い識別を示した。この結
果によると、比率を算定するのに用いられた、PSA−F
またはPSA−ACTの測定と合わせて用いたとき、PSA−T
+hGK−1の測定のための検出方法は、CAPからのBPHの
識別及びCAPの早期検出に有用であることが明らかであ
る。
た臨床的裏付けデータのない243試料をhGK−1検出方法
で分析し(図4)、その結果を、hGK−1と交差反応し
ない阻止モノクローナル抗−PSA抗体A5を除外した、PSA
+hGK−1検出方法と比較した。試料をそのPSA−T濃度
を基礎とする4つの異なるカテゴリーに分類した。PSA
−T+hGK−1濃度の平均値並びにhGK−1検出方法によ
り測定された時に試料中に含有されていたhGK−1の平
均割合(%)を算定した。この結果によると、試料に含
有されたhGK−1の割合はPSA−Tの割合に比例して1〜
3%変化するが、PSA−T濃度が高い方では多少の%増
加が認められる。
明の方法には、多様な態様の形が入ることは明らかであ
ろう。当業者には、本発明の精神から離れない他の態様
が存在することは明らかであろう。したがって、本明細
書に記載された態様は例示であって、限定と解すべきで
はない。
Claims (7)
- 【請求項1】前立腺がん(CAP)の早期検出のための前
立腺特異的抗原(PSA)のバイオアフィニティ検出方法
であって、 前記検出方法は、体液試料中の −総PSA(PSA−T)の濃度及び遊離形のPSA(PSA−F)
の濃度の測定、または −総PSA(PSA−T)の濃度及びα−1−アンチキモトリ
プシンと複合体を形成したPSA(PSA−ACT)の濃度のい
ずれかの測定を含んで成り、 PSA−TはPSA−F及びPSA−ACTの合計であり、前記方法
は、さらに体液試料中のヒトの腺のカリクレインであ
る、hGK−1の濃度の測定を含み、PSA−T及びhGK−1
の濃度は1回の単一の検出方法または別々の検出方法で
測定することができ、PSA−T及びhGK−1の濃度の合計
を、 a)PSA−F/(PSA−T+hGK−1)及び/または b)PSA−ACT/(PSA−T+hGK−1)である 比率を決定するのに用いる、前記検出方法。 - 【請求項2】比率PSA−F/(PSA−T+hGK−1)を、良
性前立腺過形成(BPH)にかかっている患者または前立
腺のがん(CAP)にかかっていない正常な男性被験者か
ら、CAPにかかっている患者を識別するのに用いる、請
求項1に記載のバイオアフィニティ検出方法。 - 【請求項3】比率PSA−ACT/(PSA−T+hGK−1)を、
良性前立腺過形成(BPH)にかかっている患者または前
立腺のがん(CAP)にかかっていない正常な男性被験者
から、CAPにかかっている患者を識別するのに用いる、
請求項1に記載のバイオアフィニティ検出方法。 - 【請求項4】PSA−T及びhGK−1の濃度の合計を、PSA
及びhGK−1の両方に関する共通のエピトープを認識す
る抗体または遺伝子的に構築された抗体断片を用いるこ
とにより同時に測定する、請求項1に記載のバイオアフ
ィニティ検出方法。 - 【請求項5】少なくとも2つの異なったモノクローナル
抗体、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体とポリ
クローナル抗体との組み合せまたは遺伝子的に構築され
た抗体断片を用いる非−競合バイオアフィニティ検出方
法を用いる、請求項4に記載のバイオアフィニティ検出
方法。 - 【請求項6】PSA−T及びhGK−1を別個に測定し、その
後PSA−T及びhGK−1の量の合計を算定する、請求項1
に記載のバイオアフィニティ検出方法。 - 【請求項7】非−競合検出方法において2つの異なった
モノクローナル抗体または抗体断片及び、PSA−Tと非
−競合検出方法で用いられる2つのモノクローナル抗体
または抗体断片との反応を阻止する第3のモノクローナ
ル抗体または抗体断片を用いることによって、hGK−1
の濃度を測定する、請求項6に記載のバイオアフィニテ
ィ検出方法。
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