JP3419084B2 - 活性型ｍａｐキナーゼを認識する抗体 - Google Patents
活性型ｍａｐキナーゼを認識する抗体Info
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- JP3419084B2 JP3419084B2 JP13605294A JP13605294A JP3419084B2 JP 3419084 B2 JP3419084 B2 JP 3419084B2 JP 13605294 A JP13605294 A JP 13605294A JP 13605294 A JP13605294 A JP 13605294A JP 3419084 B2 JP3419084 B2 JP 3419084B2
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、活性型ＭＡＰキナーゼ
を認識する抗体、その製造方法およびその利用に関す
る。
を認識する抗体、その製造方法およびその利用に関す
る。
【０００２】
【従来の技術】従来、活性型ＭＡＰ(Mitogen-Activated
Protein) キナーゼの検出には、放射性標識されたリン
等の存在下で細胞内基質である各種の蛋白質と供試ＭＡ
Ｐキナーゼを反応させることによって上記のリン等を各
種の蛋白質へ取り込ませ、該蛋白質中のリン酸化量をＸ
線フィルムの感光スポットまたはバンドとして検出する
ことによって供試ＭＡＰキナーゼ中の活性型ＭＡＰキナ
ーゼの存在（量）を調べる方法が知られていた。
Protein) キナーゼの検出には、放射性標識されたリン
等の存在下で細胞内基質である各種の蛋白質と供試ＭＡ
Ｐキナーゼを反応させることによって上記のリン等を各
種の蛋白質へ取り込ませ、該蛋白質中のリン酸化量をＸ
線フィルムの感光スポットまたはバンドとして検出する
ことによって供試ＭＡＰキナーゼ中の活性型ＭＡＰキナ
ーゼの存在（量）を調べる方法が知られていた。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、この方
法は放射性標識されたリン等のラジオアイソトープを使
用するために試料の調製、反応等に手間と時間および熟
練が必要であり、かつ大かがりな測定装置や特別な施設
が必須であった。このために簡便性に欠けるという欠点
を有していた。また検出感度という面でも必ずしも充分
なものではなかった。
法は放射性標識されたリン等のラジオアイソトープを使
用するために試料の調製、反応等に手間と時間および熟
練が必要であり、かつ大かがりな測定装置や特別な施設
が必須であった。このために簡便性に欠けるという欠点
を有していた。また検出感度という面でも必ずしも充分
なものではなかった。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の状
況を鑑み、活性型ＭＡＰキナーゼのすぐれた検出・分析
方法を見い出すべく鋭意検討を重ねた結果、活性型ＭＡ
Ｐキナーゼを認識する抗体を利用することによりきわめ
て効率的に活性型ＭＡＰキナーゼの検出・分析が可能で
あることを見い出し、本発明を完成した。すなわち、本
発明は、活性型ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩＩと
サブドメインＶＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を含む
抗原性ペプチドを直接またはスペーサーを介して間接的
に高分子量担体分子に結合せしめた複合体を抗原として
得られうる抗体であって、(1) 特有なアミノ酸配列が N
- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C である、(2) ０．１
％(w/v) ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡＰキナーゼと反応
し、非存在下では実質的に反応しない、(3) 不活性型Ｍ
ＡＰキナーゼに対して、交差反応性を実質的に示さな
い、ことを特徴とする、活性型ＭＡＰキナーゼを認識す
る抗体（以下、本発明抗体と記す。）、および活性型Ｍ
ＡＰキナーゼのサブドメインＶＩＩとサブドメインＶＩ
ＩＩの間の特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを
直接またはスペーサーを介して間接的に高分子量担体分
子に結合せしめた複合体に対して哺乳動物を免疫した
後、該哺乳動物から血液を採取して、該血液から分離・
精製することを特徴とする抗体の製造方法（以下、本発
明製造方法と記す。）およびその利用を提供するもので
ある。
況を鑑み、活性型ＭＡＰキナーゼのすぐれた検出・分析
方法を見い出すべく鋭意検討を重ねた結果、活性型ＭＡ
Ｐキナーゼを認識する抗体を利用することによりきわめ
て効率的に活性型ＭＡＰキナーゼの検出・分析が可能で
あることを見い出し、本発明を完成した。すなわち、本
発明は、活性型ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩＩと
サブドメインＶＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を含む
抗原性ペプチドを直接またはスペーサーを介して間接的
に高分子量担体分子に結合せしめた複合体を抗原として
得られうる抗体であって、(1) 特有なアミノ酸配列が N
- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C である、(2) ０．１
％(w/v) ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡＰキナーゼと反応
し、非存在下では実質的に反応しない、(3) 不活性型Ｍ
ＡＰキナーゼに対して、交差反応性を実質的に示さな
い、ことを特徴とする、活性型ＭＡＰキナーゼを認識す
る抗体（以下、本発明抗体と記す。）、および活性型Ｍ
ＡＰキナーゼのサブドメインＶＩＩとサブドメインＶＩ
ＩＩの間の特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを
直接またはスペーサーを介して間接的に高分子量担体分
子に結合せしめた複合体に対して哺乳動物を免疫した
後、該哺乳動物から血液を採取して、該血液から分離・
精製することを特徴とする抗体の製造方法（以下、本発
明製造方法と記す。）およびその利用を提供するもので
ある。
【０００５】ＭＡＰキナーゼは真核生物において広く保
持されているセリン・スレオニンキナーゼの一種で、細
胞外からの増殖刺激を細胞内に伝える経路（細胞内シグ
ナル伝達経路）において重要な役割を果たしている酵素
の一つである。たとえば、細胞が増殖因子、ホルモン等
による外部からの増殖刺激を受けると、その刺激を受容
体が認識し、ＭＡＰキナーゼ活性化酵素を活性化するた
めのシグナルを発生する。このシグナルにより活性化さ
れたＭＡＰキナーゼ活性化酵素は、ＭＡＰキナーゼに作
用して、このＭＡＰキナーゼを活性化状態にする。活性
化されたＭＡＰキナーゼ、すなわち、「活性型ＭＡＰキ
ナーゼ」は細胞内基質である各種の蛋白質をリン酸化す
ることによって細胞を増殖状態に導く。このようにし
て、外部からの増殖刺激に対して細胞は応答し、細胞増
殖を開始する。 増殖刺激 → 受容体 → ＭＡＰキナーゼ活性化酵素
→ 〔（不活性型）ＭＡＰキナーゼ → 活性型ＭＡ
Ｐキナーゼ〕 → 〔（不活性型）細胞内基質→ 活性
型細胞内基質〕 → 細胞増殖 したがって、活性型ＭＡＰキナーゼの存在有無を検出・
分析できれば細胞増殖の状態を判断することが可能とな
り、また無制限に増殖する癌細胞の早期検出にも利用可
能となる。本発明では、活性型ＭＡＰキナーゼのすぐれ
た検出・分析方法として活性型ＭＡＰキナーゼを認識す
る抗体を利用している。本発明抗体は、活性型ＭＡＰキ
ナーゼのサブドメインＶＩＩとサブドメインＶＩＩＩの
間の特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接ま
たはスペーサーを介して間接的に高分子量担体分子に結
合せしめた複合体を抗原として得られる抗体であって、
(1) 特有なアミノ酸配列が N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3
H2) -C である、(2) ０．１％(w/v) ＳＤＳ存在下では
活性型ＭＡＰキナーゼと反応し、非存在下では実質的に
反応しない、(3) 不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交
差反応性を実質的に示さない、ことを特徴としている新
規な抗体である。
持されているセリン・スレオニンキナーゼの一種で、細
胞外からの増殖刺激を細胞内に伝える経路（細胞内シグ
ナル伝達経路）において重要な役割を果たしている酵素
の一つである。たとえば、細胞が増殖因子、ホルモン等
による外部からの増殖刺激を受けると、その刺激を受容
体が認識し、ＭＡＰキナーゼ活性化酵素を活性化するた
めのシグナルを発生する。このシグナルにより活性化さ
れたＭＡＰキナーゼ活性化酵素は、ＭＡＰキナーゼに作
用して、このＭＡＰキナーゼを活性化状態にする。活性
化されたＭＡＰキナーゼ、すなわち、「活性型ＭＡＰキ
ナーゼ」は細胞内基質である各種の蛋白質をリン酸化す
ることによって細胞を増殖状態に導く。このようにし
て、外部からの増殖刺激に対して細胞は応答し、細胞増
殖を開始する。 増殖刺激 → 受容体 → ＭＡＰキナーゼ活性化酵素
→ 〔（不活性型）ＭＡＰキナーゼ → 活性型ＭＡ
Ｐキナーゼ〕 → 〔（不活性型）細胞内基質→ 活性
型細胞内基質〕 → 細胞増殖 したがって、活性型ＭＡＰキナーゼの存在有無を検出・
分析できれば細胞増殖の状態を判断することが可能とな
り、また無制限に増殖する癌細胞の早期検出にも利用可
能となる。本発明では、活性型ＭＡＰキナーゼのすぐれ
た検出・分析方法として活性型ＭＡＰキナーゼを認識す
る抗体を利用している。本発明抗体は、活性型ＭＡＰキ
ナーゼのサブドメインＶＩＩとサブドメインＶＩＩＩの
間の特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接ま
たはスペーサーを介して間接的に高分子量担体分子に結
合せしめた複合体を抗原として得られる抗体であって、
(1) 特有なアミノ酸配列が N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3
H2) -C である、(2) ０．１％(w/v) ＳＤＳ存在下では
活性型ＭＡＰキナーゼと反応し、非存在下では実質的に
反応しない、(3) 不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交
差反応性を実質的に示さない、ことを特徴としている新
規な抗体である。
【０００６】活性型ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩ
ＩとサブドメインＶＩＩＩの間のアミノ酸配列として
は、たとえば、N- Asp-His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H
2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-Trp-Tyr-Arg-Ala-
Pro-Glu -C 等があげられ、そのなかにおいて特有なア
ミノ酸配列として、 N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C
がある。この特有なアミノ酸配列を含むペプチドとして
は、たとえば、下記のアミノ酸配列で示されるペプチド
が考えられる。 (1) N- Asp-His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr
(PO3H2)-Val-Ala -C (2) N- His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H
2)-Val-C (3) N- Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-V
al-Ala -C (4) N- Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-C (5) N- Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C (6) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C (7) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala -C (8) N- Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr -
C (9) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg -
C (10) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-
Trp -C (11) N- Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-
Thr-Arg-Trp -C (12) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-
Trp-Tyr-Arg -C (13) N- Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-
Arg-Trp-Tyr-Arg-Ala -C (14) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-
Trp-Tyr-Arg-Ala-Pro -C (15) N- Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-
Thr-Arg-Trp-Tyr-Arg-Ala-Pro-Glu -C このようなペプチドであって、抗原性（エピトープ性）
を有すればいかなるものであってもよい。上記のペプチ
ドは、そのアミノ酸配列の順にアミノ酸を重合すること
によって製造する（固相法）ことができる。たとえば、
通常の自動アミノ酸合成装置を用いて製造すれば容易で
ある。
ＩとサブドメインＶＩＩＩの間のアミノ酸配列として
は、たとえば、N- Asp-His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H
2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-Trp-Tyr-Arg-Ala-
Pro-Glu -C 等があげられ、そのなかにおいて特有なア
ミノ酸配列として、 N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C
がある。この特有なアミノ酸配列を含むペプチドとして
は、たとえば、下記のアミノ酸配列で示されるペプチド
が考えられる。 (1) N- Asp-His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr
(PO3H2)-Val-Ala -C (2) N- His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H
2)-Val-C (3) N- Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-V
al-Ala -C (4) N- Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-C (5) N- Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C (6) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C (7) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala -C (8) N- Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr -
C (9) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg -
C (10) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-
Trp -C (11) N- Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-
Thr-Arg-Trp -C (12) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-
Trp-Tyr-Arg -C (13) N- Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-
Arg-Trp-Tyr-Arg-Ala -C (14) N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-Thr-Arg-
Trp-Tyr-Arg-Ala-Pro -C (15) N- Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2)-Val-Ala-
Thr-Arg-Trp-Tyr-Arg-Ala-Pro-Glu -C このようなペプチドであって、抗原性（エピトープ性）
を有すればいかなるものであってもよい。上記のペプチ
ドは、そのアミノ酸配列の順にアミノ酸を重合すること
によって製造する（固相法）ことができる。たとえば、
通常の自動アミノ酸合成装置を用いて製造すれば容易で
ある。
【０００７】本発明抗体はたとえば次の方法によって製
造することができる。 〔特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドの完全抗原
（免疫原）化工程〕特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペ
プチドを直接またはスペーサーを介して間接的に高分子
量担体分子に結合し、複合体を得る。用いられる特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドは、純度の高いもの
が好ましい。このため、必要に応じて事前に高速液体ク
ロマトグラフィー等の通常の方法により精製することが
できる。用いられる高分子量担体分子は、特有なアミノ
酸配列を含む抗原性ペプチドおよびこれらにスペーサー
が結合してなる化合物（以下、両者のことをまとめて不
完全抗原と記す。）との連結反応に自由に利用され得る
反応基を有し、かつ該不完全抗原に連結されることによ
りそれに免疫原性を付与し得るか、または既に存在する
それらの免疫原性を高め得る巨大分子化合物であればよ
い。自由に利用可能な反応性アミノ基を含む巨大分子化
合物が特に好ましい。たとえば、分子量が約１万から約
１５万の間のリシンに富むタンパク質等をあげることが
できる。具体的には、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ：分
子量 66200) 、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ：分子量 5
8000) 、ウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ：分子量 6800
0) 、ヤギ血清アルブミン（ＧＳＡ：分子量 68000) ま
たはキーホールカサガイヘモシアニン（ＫＬＨ：分子量
＞1000000)等があげられる。その他の巨大分子化合物が
上記の要求に合致しさえすれば、それらを担体分子とし
て使用することは可能であり、そのような化合物には、
たとえば、Ｂ２ミクログロブリン、ヘモシアニン、免疫
グロブリン、毒素（コレラ毒素、破傷風毒素、ジフテリ
ア毒素その他）、多糖、リポ多糖、天然または合成ポリ
アデニル酸およびポリウリジル酸、ポリアラニンおよび
ポリリシンポリペプチド、または細胞膜成分、たとえば
ホルマリンまたはグルタルアルデヒド処理赤血球細胞膜
等をあげることができる。上記の不完全抗原の高分子担
体分子への結合方法は、不完全抗原中の特有なアミノ酸
配列部位が自由に利用可能のままであり、それゆえに特
異的な免疫応答を誘発しうる、すなわち特異的な抗体の
産生を誘導可能にするような方法であればよい。具体的
には、たとえば、(1) 不完全抗原中の特有なアミノ酸配
列部位ができるだけ外側になるような不完全抗原を選択
し、かつ(2) 選択された不完全抗原中の特有なアミノ酸
配列部位が高分子担体分子からできるだけ外側になるよ
うにする、ことが好ましい。不完全抗原の反応基が反応
性アミノ基の場合には、ジアルデヒド、たとえばグルタ
ルアルデヒドを用いて不完全抗原の反応基を高分子量担
体分子の反応性アミノ基の１つに結合させる。不完全抗
原の反応基が反応性ＳＨ基の場合には、酸化反応により
不完全抗原の反応基を高分子量担体分子の反応性ＳＨ基
の１つに結合させる。不完全抗原の反応基が反応性カル
ボキシル基の場合には、たとえばカルボジイミド、好ま
しくは１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピ
ル）カルボジイミド塩酸塩を用いて不完全抗原の反応基
を高分子量担体分子の反応性アミノ基の１つに結合させ
る。具体的な例として、たとえば、Chem. Pharm. Bull.
31,(11), 4001-4007 (1983) に記載されるH.Hosodaら
による活性エステル法またはJ.Biol. Chem.,234, 1090-
1094 (1959) に記載されるB.F.Erlangerらによる混合酸
無水物法等により、反応性カルボキシル基を有する不完
全抗原を高分子量担体分子の反応性アミノ基に結合させ
ることにより製造することができる。
造することができる。 〔特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドの完全抗原
（免疫原）化工程〕特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペ
プチドを直接またはスペーサーを介して間接的に高分子
量担体分子に結合し、複合体を得る。用いられる特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドは、純度の高いもの
が好ましい。このため、必要に応じて事前に高速液体ク
ロマトグラフィー等の通常の方法により精製することが
できる。用いられる高分子量担体分子は、特有なアミノ
酸配列を含む抗原性ペプチドおよびこれらにスペーサー
が結合してなる化合物（以下、両者のことをまとめて不
完全抗原と記す。）との連結反応に自由に利用され得る
反応基を有し、かつ該不完全抗原に連結されることによ
りそれに免疫原性を付与し得るか、または既に存在する
それらの免疫原性を高め得る巨大分子化合物であればよ
い。自由に利用可能な反応性アミノ基を含む巨大分子化
合物が特に好ましい。たとえば、分子量が約１万から約
１５万の間のリシンに富むタンパク質等をあげることが
できる。具体的には、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ：分
子量 66200) 、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ：分子量 5
8000) 、ウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ：分子量 6800
0) 、ヤギ血清アルブミン（ＧＳＡ：分子量 68000) ま
たはキーホールカサガイヘモシアニン（ＫＬＨ：分子量
＞1000000)等があげられる。その他の巨大分子化合物が
上記の要求に合致しさえすれば、それらを担体分子とし
て使用することは可能であり、そのような化合物には、
たとえば、Ｂ２ミクログロブリン、ヘモシアニン、免疫
グロブリン、毒素（コレラ毒素、破傷風毒素、ジフテリ
ア毒素その他）、多糖、リポ多糖、天然または合成ポリ
アデニル酸およびポリウリジル酸、ポリアラニンおよび
ポリリシンポリペプチド、または細胞膜成分、たとえば
ホルマリンまたはグルタルアルデヒド処理赤血球細胞膜
等をあげることができる。上記の不完全抗原の高分子担
体分子への結合方法は、不完全抗原中の特有なアミノ酸
配列部位が自由に利用可能のままであり、それゆえに特
異的な免疫応答を誘発しうる、すなわち特異的な抗体の
産生を誘導可能にするような方法であればよい。具体的
には、たとえば、(1) 不完全抗原中の特有なアミノ酸配
列部位ができるだけ外側になるような不完全抗原を選択
し、かつ(2) 選択された不完全抗原中の特有なアミノ酸
配列部位が高分子担体分子からできるだけ外側になるよ
うにする、ことが好ましい。不完全抗原の反応基が反応
性アミノ基の場合には、ジアルデヒド、たとえばグルタ
ルアルデヒドを用いて不完全抗原の反応基を高分子量担
体分子の反応性アミノ基の１つに結合させる。不完全抗
原の反応基が反応性ＳＨ基の場合には、酸化反応により
不完全抗原の反応基を高分子量担体分子の反応性ＳＨ基
の１つに結合させる。不完全抗原の反応基が反応性カル
ボキシル基の場合には、たとえばカルボジイミド、好ま
しくは１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピ
ル）カルボジイミド塩酸塩を用いて不完全抗原の反応基
を高分子量担体分子の反応性アミノ基の１つに結合させ
る。具体的な例として、たとえば、Chem. Pharm. Bull.
31,(11), 4001-4007 (1983) に記載されるH.Hosodaら
による活性エステル法またはJ.Biol. Chem.,234, 1090-
1094 (1959) に記載されるB.F.Erlangerらによる混合酸
無水物法等により、反応性カルボキシル基を有する不完
全抗原を高分子量担体分子の反応性アミノ基に結合させ
ることにより製造することができる。
【０００８】スペーサーを介して間接的に連結する場合
の用いられるスペーサーは、高分子量担体分子の自由に
利用可能な反応基の共有結合を形成し得る少なくとも１
種またはそれ以上の反応基を含む化合物である。たとえ
ば、２個から１６個の間の架橋性炭素原子を含み、かつ
反応基として１個またはそれ以上の反応基、たとえばア
ミノ基、カルボキシル基、マレイミド基またはＳＨ基等
を有する化合物をあげることができる。具体的には、一
般式 Ｈ2 Ｎ（ＣＨ2 ）n ＣＯＯＨ（ｎは２から１６ま
での整数）が好ましいものとしてあげられる。スペーサ
ーの特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドへの連結
は、前記の不完全抗原の反応基を高分子量担体分子の反
応基の１つに結合させる方法と同様な方法を用いること
ができる。
の用いられるスペーサーは、高分子量担体分子の自由に
利用可能な反応基の共有結合を形成し得る少なくとも１
種またはそれ以上の反応基を含む化合物である。たとえ
ば、２個から１６個の間の架橋性炭素原子を含み、かつ
反応基として１個またはそれ以上の反応基、たとえばア
ミノ基、カルボキシル基、マレイミド基またはＳＨ基等
を有する化合物をあげることができる。具体的には、一
般式 Ｈ2 Ｎ（ＣＨ2 ）n ＣＯＯＨ（ｎは２から１６ま
での整数）が好ましいものとしてあげられる。スペーサ
ーの特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドへの連結
は、前記の不完全抗原の反応基を高分子量担体分子の反
応基の１つに結合させる方法と同様な方法を用いること
ができる。
【０００９】〔哺乳動物の免疫感作化工程および本発明
抗体取得工程〕このようにして得られた複合体に対し
て、たとえば、マウス、ハムスター、モルモット、ニワ
トリ、ラット、ウサギ、イヌ等の哺乳動物を免疫するに
は、たとえば、J. ASSOC. OFF. ANAL. CHEM. 70(6) 102
5-1027 (1987) 等に記載されるW.H.Newsome 等の通常の
免疫感作の方法を用いて、たとえば、複合体の１回また
はそれ以上の投与により行われる。たとえば、７ないし
３０日間隔で２または３回の投与等が好ましい。投与量
は１回につき、たとえば、複合体約０．０５から２ｍｇ
程度を目安とする。投与経路は、皮下投与、皮内投与、
腹膜腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与等を選択するこ
とができるが、静脈内、腹膜腔内もしくは皮下に行われ
うる注射が好ましい投与形態である。さらに皮下注射と
腹膜腔内注射との組合せが特に好ましい。なおこの場
合、複合体は適当な緩衝液、たとえば完全フロイントア
ジュバンド（Aracel A,Bayol F, 結核死菌を混合したも
の）、ＲＡＳ〔MPL(Monophosphoryl Lipid A)+TDM(Synt
hetic Trehalose Dicorynomycolate)+CWS(Cell Wall Sk
eleton) アジュバントシステム] 、水酸化アルミニウム
等の通常用いられるアジュバントの１種を含有するナト
リウム系リン酸緩衝液、生理食塩水等に溶解して用いら
れるが、投与経路や条件等によっては、上記のようなア
ジュバントを使用しないこともある。ここでアジュバン
トとは抗原とともに投与したとき、非特異的にその抗原
に対する免疫反応を増強する物質を意味する。そして、
上記の哺乳動物を 0.5ないし４ケ月間処置せずに放置し
た後、該哺乳動物の血清を耳静脈等から少量サンプリン
グし、抗体価を測定する。抗体価が上昇してきたら、状
況に応じて複合体の投与を適当回数実施する。たとえば
１００μｇないし１０００μｇ、特に５０μｇないし５
００μｇの複合体の投与量で１回ないし５回の投与が行
われる。最後の投与の２日間ないし２ケ月間後に免疫感
作した哺乳動物から通常の方法により血液を採取して、
該血液を、たとえば遠心分離、硫酸アンモニウムまたは
ポリエチレングリコールを用いることによる沈澱、ゲル
ろ過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィ
ー、アフィニティクロマトグラフィー等のクロマトグラ
フィー等の通常の方法によって分離・精製することによ
り、ポリクローナル抗血清として本発明抗体を得ること
ができる。なお抗血清は、たとえば、５６℃で３０分間
処理することによって補体系の不活性化を実施してもよ
い。また、上記の免疫感作した哺乳動物から免疫適格Ｂ
細胞が単離され、該免疫適格Ｂ細胞が連続的に細胞分裂
し得る腫瘍細胞と融合され、生成する融合物が単離さ
れ、そして選択の後、所望の抗体を産生するハイブリド
ーマ細胞がクローン化され、そしてモノクローナル抗体
を製造するために該ハイブリドーマ細胞が試験管内また
は生体内で培養されることにより、高度の特異性および
親和性を有する本発明抗体も製造することができる。
抗体取得工程〕このようにして得られた複合体に対し
て、たとえば、マウス、ハムスター、モルモット、ニワ
トリ、ラット、ウサギ、イヌ等の哺乳動物を免疫するに
は、たとえば、J. ASSOC. OFF. ANAL. CHEM. 70(6) 102
5-1027 (1987) 等に記載されるW.H.Newsome 等の通常の
免疫感作の方法を用いて、たとえば、複合体の１回また
はそれ以上の投与により行われる。たとえば、７ないし
３０日間隔で２または３回の投与等が好ましい。投与量
は１回につき、たとえば、複合体約０．０５から２ｍｇ
程度を目安とする。投与経路は、皮下投与、皮内投与、
腹膜腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与等を選択するこ
とができるが、静脈内、腹膜腔内もしくは皮下に行われ
うる注射が好ましい投与形態である。さらに皮下注射と
腹膜腔内注射との組合せが特に好ましい。なおこの場
合、複合体は適当な緩衝液、たとえば完全フロイントア
ジュバンド（Aracel A,Bayol F, 結核死菌を混合したも
の）、ＲＡＳ〔MPL(Monophosphoryl Lipid A)+TDM(Synt
hetic Trehalose Dicorynomycolate)+CWS(Cell Wall Sk
eleton) アジュバントシステム] 、水酸化アルミニウム
等の通常用いられるアジュバントの１種を含有するナト
リウム系リン酸緩衝液、生理食塩水等に溶解して用いら
れるが、投与経路や条件等によっては、上記のようなア
ジュバントを使用しないこともある。ここでアジュバン
トとは抗原とともに投与したとき、非特異的にその抗原
に対する免疫反応を増強する物質を意味する。そして、
上記の哺乳動物を 0.5ないし４ケ月間処置せずに放置し
た後、該哺乳動物の血清を耳静脈等から少量サンプリン
グし、抗体価を測定する。抗体価が上昇してきたら、状
況に応じて複合体の投与を適当回数実施する。たとえば
１００μｇないし１０００μｇ、特に５０μｇないし５
００μｇの複合体の投与量で１回ないし５回の投与が行
われる。最後の投与の２日間ないし２ケ月間後に免疫感
作した哺乳動物から通常の方法により血液を採取して、
該血液を、たとえば遠心分離、硫酸アンモニウムまたは
ポリエチレングリコールを用いることによる沈澱、ゲル
ろ過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィ
ー、アフィニティクロマトグラフィー等のクロマトグラ
フィー等の通常の方法によって分離・精製することによ
り、ポリクローナル抗血清として本発明抗体を得ること
ができる。なお抗血清は、たとえば、５６℃で３０分間
処理することによって補体系の不活性化を実施してもよ
い。また、上記の免疫感作した哺乳動物から免疫適格Ｂ
細胞が単離され、該免疫適格Ｂ細胞が連続的に細胞分裂
し得る腫瘍細胞と融合され、生成する融合物が単離さ
れ、そして選択の後、所望の抗体を産生するハイブリド
ーマ細胞がクローン化され、そしてモノクローナル抗体
を製造するために該ハイブリドーマ細胞が試験管内また
は生体内で培養されることにより、高度の特異性および
親和性を有する本発明抗体も製造することができる。
【００１０】本発明抗体は、活性型ＭＡＰキナーゼのサ
ブドメインＶＩＩとサブドメインＶＩＩＩの間の特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接またはスペー
サーを介して間接的に高分子量担体分子に結合せしめた
複合体を抗原として得られる抗体であって、(1) 特有な
アミノ酸配列が N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C で
ある、(2) ０．１％(w/v) ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡ
Ｐキナーゼと反応し、非存在下では実質的に反応しな
い、(3) 不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交差反応性
を実質的に示さない、ことを特徴としている新規な抗体
である。本発明抗体は、たとえば、アフリカツメガエル
等の両生類およびラット等の哺乳動物等の種々の生物由
来の活性型ＭＡＰキナーゼを認識するが、ここで「０．
１％(w/v) ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡＰキナーゼと反
応し、非存在下では実質的に反応しない」とは、水溶
液、生理食塩水、緩衝液または生体試料等の反応系中に
終濃度として０．１％(w/v) ＳＤＳを含む場合には、本
発明抗体は活性型ＭＡＰキナーゼを認識するが、一方、
ＳＤＳを含まない場合には、本発明抗体は活性型ＭＡＰ
キナーゼを実質的に認識しないことを意味する。また
「不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交差反応性を実質
的に示さない」とは、目的とする活性型ＭＡＰキナーゼ
と異なるＭＡＰキナーゼ、すなわち不活性型ＭＡＰキナ
ーゼに対して、交差反応性が約１／４未満、好ましくは
約１／２０未満、そしてより好ましくは１／１００未満
であるような選択的認識が実質的に可能であることを意
味する。ここで、交差反応性の程度は、たとえば活性型
ＭＡＰキナーゼを後述するイムノブロット法によって検
出することができる基質蛋白質濃度を１としたときに不
活性型ＭＡＰキナーゼが同方法によって検出されてくる
基質蛋白質濃度をＣとすれば、１／Ｃのように決定され
る。
ブドメインＶＩＩとサブドメインＶＩＩＩの間の特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接またはスペー
サーを介して間接的に高分子量担体分子に結合せしめた
複合体を抗原として得られる抗体であって、(1) 特有な
アミノ酸配列が N- Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H2) -C で
ある、(2) ０．１％(w/v) ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡ
Ｐキナーゼと反応し、非存在下では実質的に反応しな
い、(3) 不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交差反応性
を実質的に示さない、ことを特徴としている新規な抗体
である。本発明抗体は、たとえば、アフリカツメガエル
等の両生類およびラット等の哺乳動物等の種々の生物由
来の活性型ＭＡＰキナーゼを認識するが、ここで「０．
１％(w/v) ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡＰキナーゼと反
応し、非存在下では実質的に反応しない」とは、水溶
液、生理食塩水、緩衝液または生体試料等の反応系中に
終濃度として０．１％(w/v) ＳＤＳを含む場合には、本
発明抗体は活性型ＭＡＰキナーゼを認識するが、一方、
ＳＤＳを含まない場合には、本発明抗体は活性型ＭＡＰ
キナーゼを実質的に認識しないことを意味する。また
「不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交差反応性を実質
的に示さない」とは、目的とする活性型ＭＡＰキナーゼ
と異なるＭＡＰキナーゼ、すなわち不活性型ＭＡＰキナ
ーゼに対して、交差反応性が約１／４未満、好ましくは
約１／２０未満、そしてより好ましくは１／１００未満
であるような選択的認識が実質的に可能であることを意
味する。ここで、交差反応性の程度は、たとえば活性型
ＭＡＰキナーゼを後述するイムノブロット法によって検
出することができる基質蛋白質濃度を１としたときに不
活性型ＭＡＰキナーゼが同方法によって検出されてくる
基質蛋白質濃度をＣとすれば、１／Ｃのように決定され
る。
【００１１】本発明抗体の利用としては、活性型ＭＡＰ
キナーゼに作用させた本発明抗体または該抗体に対する
抗体を、それら抗体が有する標識によって検出すること
によって活性型ＭＡＰキナーゼを免疫学的に検出する方
法をあげることができる。具体的には、たとえば、イム
ノブロット法、免疫沈降による分離法、間接競合阻害法
（ELISA 法）、細胞または組織の免疫学的染色法等によ
って活性型ＭＡＰキナーゼを分析する方法をあげること
ができる。該分析方法は、簡便でかつ迅速に処理できる
精度の高い分析方法である。たとえば、以下の方法によ
って行うことができる。
キナーゼに作用させた本発明抗体または該抗体に対する
抗体を、それら抗体が有する標識によって検出すること
によって活性型ＭＡＰキナーゼを免疫学的に検出する方
法をあげることができる。具体的には、たとえば、イム
ノブロット法、免疫沈降による分離法、間接競合阻害法
（ELISA 法）、細胞または組織の免疫学的染色法等によ
って活性型ＭＡＰキナーゼを分析する方法をあげること
ができる。該分析方法は、簡便でかつ迅速に処理できる
精度の高い分析方法である。たとえば、以下の方法によ
って行うことができる。
【００１２】Ｉ．イムノブロット法
固体支持材に結合される試料に存在する活性型ＭＡＰキ
ナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認識させ、そ
の抗体を検出する方法である。試料を結合させる固体支
持材としては、膜、シート、フィルター等の形状にされ
たニトロセルロースが一般的に使用されるが、試料の吸
着がよくかつその試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼ
の抗原性を消失させないものであれば特に制限はない。
ニトロセルロースを使用する場合、試料のニトロセルロ
ースへの結合は、たとえばリン酸緩衝生理食塩水等の適
当な緩衝液に試料を溶解して得られた溶液をニトロセル
ロース上にスポットすることで達成される。なお、定量
化のためのスポット量は、抗原である活性型ＭＡＰキナ
ーゼに対する本発明抗体（第１抗体）の量が過剰になる
ような量が望ましく、１μｌ／３ｍｍ角程度がよい。ま
た、試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼを本発明抗体
（第１抗体）によって認識させるためには、試料をあら
かじめ0.1%(w/v)SDS等で処理しておくかそれともニトロ
セルロースへの結合時に使用する緩衝液に0.1%(w/v)SDS
等を含ませて処理することが必要である。このようにし
てスポットされたニトロセルロースを約１分間から約２
４時間、適当な湿度条件下でインキュベートする。イン
キュベート後、スポットした部位以外への非特異的な吸
着を防止するために、試料を結合させた固体支持材を本
発明抗体（第１抗体）によって認識されない高分子量担
体分子、すなわち、前記の特有なアミノ酸配列を含む抗
原性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程において用い
ることができる高分子量担体分子のうちで、本発明抗体
（第１抗体）の製造において用いられない高分子量担体
分子（ヤギ、ウシ等の別種の動物の血清アルブミンやス
キムミルク）を含む溶液と約２０分間から約２４時間、
室温下でインキュベートすることによって該高分子量担
体分子で固体支持材の表面を覆う。インキュベート後、
得られた固体支持材をよく洗浄して遊離状態にある上記
の高分子量担体分子を除去する。このように調製された
固体支持材を本発明抗体（第１抗体）を含む調製液と混
合した後、約１０分間から約３時間、振とうしながらイ
ンキュベートする。なお本発明抗体（第１抗体）を含む
調製液とは、本発明抗体（第１抗体）を遊離の状態で、
蒸留水、緩衝液、生理食塩水等の溶液中に存在しうる調
製液をいう。このようにして、試料に存在する活性型Ｍ
ＡＰキナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認識さ
せる。つぎに、その抗体を検出する方法について説明す
る。本発明抗体（第１抗体）が、たとえばペルオキシダ
ーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダ
ーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭
酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾ
チーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコース−６−
ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素等で標識されて
いる場合には、インキュベート後、遊離の状態にある本
発明抗体（第１抗体）を洗浄によって除去してから、上
記の標識酵素の基質を作用させて、発色等で反応を測定
することによって本発明抗体（第１抗体）を検出するこ
とができる。たとえば、 ペルオキシダーゼで標識され
る場合には、基質として過酸化水素、発色試薬としてジ
アミノベンジジンまたはＯ−フェニレンジアミンを組み
合わせることにより褐色または黄色の発色を生じる。グ
ルコースオキシダーゼで標識される場合には、基質とし
て、たとえば２，2'−アシド−ジ−（３−エチルベンゾ
チアゾリン−６−スルホン酸（ＡＢＴＳ）等を用いる。
また、本発明抗体（第１抗体）を認識しかつ結合する酵
素等で標識された第２抗体を使用する場合には、インキ
ュベート後、遊離の状態にある本発明抗体（第１抗体）
を洗浄によって除去してから、第２抗体とインキュベー
トされる。この酵素等で標識された第２抗体としては、
たとえばペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、
β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、
グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリ
ンエステラーゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナー
ゼ、グルコース−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等
の酵素を結合した第１抗体（本発明抗体）に対する抗体
をあげることができる。具体的な例としては、第１抗体
（本発明抗体）としてウサギ抗血清を使用する場合、第
２抗体としては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ
免疫グロブリン（ＩｇＧ）ヤギ免疫グロブリン（Ｉｇ
Ｇ）を好ましくあげることができる。なお、該抗ウサギ
ＩｇＧヤギＩｇＧは市販されており、容易に入手可能で
ある。第２抗体の検出としては、上記の標識された本発
明抗体（第１抗体）の場合と同様な方法をあげることが
できる。
ナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認識させ、そ
の抗体を検出する方法である。試料を結合させる固体支
持材としては、膜、シート、フィルター等の形状にされ
たニトロセルロースが一般的に使用されるが、試料の吸
着がよくかつその試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼ
の抗原性を消失させないものであれば特に制限はない。
ニトロセルロースを使用する場合、試料のニトロセルロ
ースへの結合は、たとえばリン酸緩衝生理食塩水等の適
当な緩衝液に試料を溶解して得られた溶液をニトロセル
ロース上にスポットすることで達成される。なお、定量
化のためのスポット量は、抗原である活性型ＭＡＰキナ
ーゼに対する本発明抗体（第１抗体）の量が過剰になる
ような量が望ましく、１μｌ／３ｍｍ角程度がよい。ま
た、試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼを本発明抗体
（第１抗体）によって認識させるためには、試料をあら
かじめ0.1%(w/v)SDS等で処理しておくかそれともニトロ
セルロースへの結合時に使用する緩衝液に0.1%(w/v)SDS
等を含ませて処理することが必要である。このようにし
てスポットされたニトロセルロースを約１分間から約２
４時間、適当な湿度条件下でインキュベートする。イン
キュベート後、スポットした部位以外への非特異的な吸
着を防止するために、試料を結合させた固体支持材を本
発明抗体（第１抗体）によって認識されない高分子量担
体分子、すなわち、前記の特有なアミノ酸配列を含む抗
原性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程において用い
ることができる高分子量担体分子のうちで、本発明抗体
（第１抗体）の製造において用いられない高分子量担体
分子（ヤギ、ウシ等の別種の動物の血清アルブミンやス
キムミルク）を含む溶液と約２０分間から約２４時間、
室温下でインキュベートすることによって該高分子量担
体分子で固体支持材の表面を覆う。インキュベート後、
得られた固体支持材をよく洗浄して遊離状態にある上記
の高分子量担体分子を除去する。このように調製された
固体支持材を本発明抗体（第１抗体）を含む調製液と混
合した後、約１０分間から約３時間、振とうしながらイ
ンキュベートする。なお本発明抗体（第１抗体）を含む
調製液とは、本発明抗体（第１抗体）を遊離の状態で、
蒸留水、緩衝液、生理食塩水等の溶液中に存在しうる調
製液をいう。このようにして、試料に存在する活性型Ｍ
ＡＰキナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認識さ
せる。つぎに、その抗体を検出する方法について説明す
る。本発明抗体（第１抗体）が、たとえばペルオキシダ
ーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダ
ーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭
酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾ
チーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコース−６−
ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素等で標識されて
いる場合には、インキュベート後、遊離の状態にある本
発明抗体（第１抗体）を洗浄によって除去してから、上
記の標識酵素の基質を作用させて、発色等で反応を測定
することによって本発明抗体（第１抗体）を検出するこ
とができる。たとえば、 ペルオキシダーゼで標識され
る場合には、基質として過酸化水素、発色試薬としてジ
アミノベンジジンまたはＯ−フェニレンジアミンを組み
合わせることにより褐色または黄色の発色を生じる。グ
ルコースオキシダーゼで標識される場合には、基質とし
て、たとえば２，2'−アシド−ジ−（３−エチルベンゾ
チアゾリン−６−スルホン酸（ＡＢＴＳ）等を用いる。
また、本発明抗体（第１抗体）を認識しかつ結合する酵
素等で標識された第２抗体を使用する場合には、インキ
ュベート後、遊離の状態にある本発明抗体（第１抗体）
を洗浄によって除去してから、第２抗体とインキュベー
トされる。この酵素等で標識された第２抗体としては、
たとえばペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、
β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、
グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリ
ンエステラーゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナー
ゼ、グルコース−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等
の酵素を結合した第１抗体（本発明抗体）に対する抗体
をあげることができる。具体的な例としては、第１抗体
（本発明抗体）としてウサギ抗血清を使用する場合、第
２抗体としては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ
免疫グロブリン（ＩｇＧ）ヤギ免疫グロブリン（Ｉｇ
Ｇ）を好ましくあげることができる。なお、該抗ウサギ
ＩｇＧヤギＩｇＧは市販されており、容易に入手可能で
ある。第２抗体の検出としては、上記の標識された本発
明抗体（第１抗体）の場合と同様な方法をあげることが
できる。
【００１３】ＩＩ．免疫沈降による分離法
試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼを本発明抗体（第
１抗体）によって認識させ、その抗体と活性型ＭＡＰキ
ナーゼからなる免疫複合体を精製することによって試料
から活性型ＭＡＰキナーゼのみを分離し、分離した活性
型ＭＡＰキナーゼをゲル電気泳動法、酵素活性測定法、
イムノブロット法等の方法によって検出する方法に利用
する。まず、試料と活性型ＭＡＰキナーゼに対する本発
明抗体（第１抗体）を、たとえば、約１時間から約２４
時間、４℃で攪拌しながら混合することによって免疫複
合体を形成させる。この際の試料と本発明抗体（第１抗
体）との混合比としては、たとえば１：８程度をあげる
ことができるが、試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼ
の量によって適宜増減される。なお、試料をあらかじめ
0.1%(w/v)SDS等で処理しておくことが必要である。つぎ
に形成された免疫複合体に、抗体に特異的に結合しかつ
抗体および抗体と結合している活性型ＭＡＰキナーゼを
溶液中から分離することができる２次試薬を添加し、こ
の混合物をインキュベートすることによって、免疫複合
体と２次試薬からなる複合体を形成させ、これを回収す
る。ここで２次試薬としては、たとえば、プロテイン
Ａ，プロテインＧ等の抗体と結合する細菌細胞壁蛋白質
または抗免疫グロブリン抗体があげられる。なお、これ
ら２次試薬は不溶性の支持材に結合されたものを用いる
と免疫複合体と２次試薬からなる複合体の回収（遠心分
離、洗浄等）がきわめて容易である。不溶性の支持材
は、非常に広範囲のデザインを有し、そして使用に際し
て意図された特定の目的に応じて非常に異なる形状を有
することができる。たとえば、ビーズ、皿、球、プレー
ト、小型ロッド、セル、小型ボトル、小型チューブ、フ
ァイバー、ネット等をあげることができる。具体的な例
としては、アガロース等の多糖体（たとえば、セファロ
ース、バイオゲル等）からなるビーズや透明プラスチッ
ク材料、たとえばポリ塩化ビニルまたはポリスチレンか
らなるミクロタイタープレート、ポリスチレンおよびポ
リスチレンラテックスからなる小球、チューブまたはロ
ッド等が使用可能である。回収された複合体を加熱処理
等の操作によって活性型ＭＡＰキナーゼを遊離させても
よい。そして遊離の状態にあるまたは複合体のままの活
性型ＭＡＰキナーゼをゲル電気泳動法、酵素活性測定
法、イムノブロット法等の方法によって検出すればよ
い。
１抗体）によって認識させ、その抗体と活性型ＭＡＰキ
ナーゼからなる免疫複合体を精製することによって試料
から活性型ＭＡＰキナーゼのみを分離し、分離した活性
型ＭＡＰキナーゼをゲル電気泳動法、酵素活性測定法、
イムノブロット法等の方法によって検出する方法に利用
する。まず、試料と活性型ＭＡＰキナーゼに対する本発
明抗体（第１抗体）を、たとえば、約１時間から約２４
時間、４℃で攪拌しながら混合することによって免疫複
合体を形成させる。この際の試料と本発明抗体（第１抗
体）との混合比としては、たとえば１：８程度をあげる
ことができるが、試料に存在する活性型ＭＡＰキナーゼ
の量によって適宜増減される。なお、試料をあらかじめ
0.1%(w/v)SDS等で処理しておくことが必要である。つぎ
に形成された免疫複合体に、抗体に特異的に結合しかつ
抗体および抗体と結合している活性型ＭＡＰキナーゼを
溶液中から分離することができる２次試薬を添加し、こ
の混合物をインキュベートすることによって、免疫複合
体と２次試薬からなる複合体を形成させ、これを回収す
る。ここで２次試薬としては、たとえば、プロテイン
Ａ，プロテインＧ等の抗体と結合する細菌細胞壁蛋白質
または抗免疫グロブリン抗体があげられる。なお、これ
ら２次試薬は不溶性の支持材に結合されたものを用いる
と免疫複合体と２次試薬からなる複合体の回収（遠心分
離、洗浄等）がきわめて容易である。不溶性の支持材
は、非常に広範囲のデザインを有し、そして使用に際し
て意図された特定の目的に応じて非常に異なる形状を有
することができる。たとえば、ビーズ、皿、球、プレー
ト、小型ロッド、セル、小型ボトル、小型チューブ、フ
ァイバー、ネット等をあげることができる。具体的な例
としては、アガロース等の多糖体（たとえば、セファロ
ース、バイオゲル等）からなるビーズや透明プラスチッ
ク材料、たとえばポリ塩化ビニルまたはポリスチレンか
らなるミクロタイタープレート、ポリスチレンおよびポ
リスチレンラテックスからなる小球、チューブまたはロ
ッド等が使用可能である。回収された複合体を加熱処理
等の操作によって活性型ＭＡＰキナーゼを遊離させても
よい。そして遊離の状態にあるまたは複合体のままの活
性型ＭＡＰキナーゼをゲル電気泳動法、酵素活性測定
法、イムノブロット法等の方法によって検出すればよ
い。
【００１４】ＩＩＩ．間接競合阻害法（ELISA 法）
基本的には、固体支持材に結合される抗原である特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドと試料中に含まれる
活性型ＭＡＰキナーゼとの競合、たとえば固体支持材に
結合される抗原である特有なアミノ酸配列を含む抗原性
ペプチドと標識が施されている第２抗体によって認識さ
れる第１抗体の遊離抗原である活性型ＭＡＰキナーゼと
の競合に基づいている。これに関連して、固体支持材へ
の抗原である特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチド
の結合は直接、あるいはスペーサーおよび／または第１
抗体（すなわち、本発明抗体）によって認識されない高
分子量担体分子を介して起こり得る。ここで、第１抗体
（すなわち、本発明抗体）によって認識されない高分子
量担体分子とは、前記の特有なアミノ酸配列を含む抗原
性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程において用いる
ことができる高分子量担体分子のうちで、第１抗体の製
造において用いられない高分子量担体分子のことであ
る。これは本発明抗体がポリクローナルである場合に重
要である。また、抗原である特有なアミノ酸配列を含む
抗原性ペプチドをスペーサーおよび／または第１抗体に
よって認識されない高分子量担体を介して結合する場
合、これらの結合には、前記の特有なアミノ酸配列を含
む抗原性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程と同様な
方法または準ずる方法を用いることができる。抗原であ
る特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドの直接また
は間接的な結合に用いられる固体支持材としては、たと
えばミクロタイタープレートまたは試験管のプラスチッ
ク表面、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニ
ル、ガラスまたはプラスチック等からなるビーズ表面、
ろ紙、デキストラン、セルロースもしくはニトロセルロ
ースまたはその他の類似の材料の細片の表面等をあげる
ことができる。これらの固体支持材に、抗原である特有
なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接、あるいは
スペーサーおよび／または第１抗体（本発明抗体）によ
って認識されない高分子量担体分子を介して間接的に結
合する（以下、コーティングと記す。）には、たとえ
ば、あらかじめ、グルタルアルデヒドまたは臭化シアン
等を用いる通常の方法によって固体支持材の活性化を行
う。用いられるコーティング液としては、たとえば１４
０ｍＭの塩化ナトリウムを含む約１０ｍＭのリン酸緩衝
液（ｐＨ７．４）等をあげることができる。コーティン
グの条件として、たとえば抗原である特有なアミノ酸配
列を含む抗原性ペプチド、あるいはスペーサーおよび／
または第１抗体によって認識されない高分子量担体分子
を有する抗原である特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペ
プチドのコーティング液内の濃度は、たとえば抗原であ
る特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドとして、約
０．０５μｇ／mlから約１μｇ／ml等を好ましくあげる
ことができる。またコーティング時間としては、たとえ
ば約６時間ないし２４時間をあげることができる。な
お、上記の具体的な例としては、たとえば固体支持材と
してポリスチレン製の９６穴ミクロタイタープレートを
使用して、第１抗体を産生させるための複合体（特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接またはスペー
サーを介して間接的に高分子量担体分子に結合したも
の）に用いられる高分子量担体分子としてウシ等の動物
の血清アルブミンまたはキーホールカサガイヘモシアニ
ンを使用し、また特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプ
チドを固体支持材に間接的に結合する際に用いられる高
分子量担体分子として第１抗体によって認識されない高
分子量担体分子であるヤギ等の別種の動物の血清アルブ
ミンを使用することをあげることができる。このように
して得られる固体支持材に直接または間接的に結合する
特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドは次に、試料
中に含まれる検出すべき抗原である活性型ＭＡＰキナー
ゼおよび第１抗体（本発明抗体）を含有する試験溶液と
混合され、該混合物はインキュベートされる。なお、試
料中に含まれる検出すべき抗原である活性型ＭＡＰキナ
ーゼは、この際に遊離の形態で、水溶液、生理食塩水、
緩衝液または生体試料等の成分として存在し得る。約１
０分間ないし約２時間のインキュベート後に、混合物は
第１抗体（本発明抗体）を認識し、そして結合する酵素
等で標識された第２抗体とインキュベートされる。この
酵素等で標識された第２抗体としては、たとえばペルオ
キシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラク
トシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラー
ゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラー
ゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコー
ス−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素を結合
した第１抗体（本発明抗体）に対する抗体をあげること
ができる。具体的な例としては、第１抗体（本発明抗
体）としてウサギ抗血清を使用する場合、第２抗体とし
ては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ免疫グロブ
リン（ＩｇＧ）ヤギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）を好まし
くあげることができる。なお、該抗ウサギＩｇＧヤギＩ
ｇＧは市販されており、容易に入手可能である。 ペル
オキシダーゼで標識される場合には、基質として過酸化
水素、発色試薬としてジアミノベンジジンまたはＯ−フ
ェニレンジアミンを組み合わすことにより褐色または黄
色の発色を生じる。グルコースオキシダーゼで標識され
る場合には、基質として、たとえば２，2'−アシド−ジ
−（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸（Ａ
ＢＴＳ）等を用いる。
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドと試料中に含まれる
活性型ＭＡＰキナーゼとの競合、たとえば固体支持材に
結合される抗原である特有なアミノ酸配列を含む抗原性
ペプチドと標識が施されている第２抗体によって認識さ
れる第１抗体の遊離抗原である活性型ＭＡＰキナーゼと
の競合に基づいている。これに関連して、固体支持材へ
の抗原である特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチド
の結合は直接、あるいはスペーサーおよび／または第１
抗体（すなわち、本発明抗体）によって認識されない高
分子量担体分子を介して起こり得る。ここで、第１抗体
（すなわち、本発明抗体）によって認識されない高分子
量担体分子とは、前記の特有なアミノ酸配列を含む抗原
性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程において用いる
ことができる高分子量担体分子のうちで、第１抗体の製
造において用いられない高分子量担体分子のことであ
る。これは本発明抗体がポリクローナルである場合に重
要である。また、抗原である特有なアミノ酸配列を含む
抗原性ペプチドをスペーサーおよび／または第１抗体に
よって認識されない高分子量担体を介して結合する場
合、これらの結合には、前記の特有なアミノ酸配列を含
む抗原性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程と同様な
方法または準ずる方法を用いることができる。抗原であ
る特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドの直接また
は間接的な結合に用いられる固体支持材としては、たと
えばミクロタイタープレートまたは試験管のプラスチッ
ク表面、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニ
ル、ガラスまたはプラスチック等からなるビーズ表面、
ろ紙、デキストラン、セルロースもしくはニトロセルロ
ースまたはその他の類似の材料の細片の表面等をあげる
ことができる。これらの固体支持材に、抗原である特有
なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接、あるいは
スペーサーおよび／または第１抗体（本発明抗体）によ
って認識されない高分子量担体分子を介して間接的に結
合する（以下、コーティングと記す。）には、たとえ
ば、あらかじめ、グルタルアルデヒドまたは臭化シアン
等を用いる通常の方法によって固体支持材の活性化を行
う。用いられるコーティング液としては、たとえば１４
０ｍＭの塩化ナトリウムを含む約１０ｍＭのリン酸緩衝
液（ｐＨ７．４）等をあげることができる。コーティン
グの条件として、たとえば抗原である特有なアミノ酸配
列を含む抗原性ペプチド、あるいはスペーサーおよび／
または第１抗体によって認識されない高分子量担体分子
を有する抗原である特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペ
プチドのコーティング液内の濃度は、たとえば抗原であ
る特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドとして、約
０．０５μｇ／mlから約１μｇ／ml等を好ましくあげる
ことができる。またコーティング時間としては、たとえ
ば約６時間ないし２４時間をあげることができる。な
お、上記の具体的な例としては、たとえば固体支持材と
してポリスチレン製の９６穴ミクロタイタープレートを
使用して、第１抗体を産生させるための複合体（特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドを直接またはスペー
サーを介して間接的に高分子量担体分子に結合したも
の）に用いられる高分子量担体分子としてウシ等の動物
の血清アルブミンまたはキーホールカサガイヘモシアニ
ンを使用し、また特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプ
チドを固体支持材に間接的に結合する際に用いられる高
分子量担体分子として第１抗体によって認識されない高
分子量担体分子であるヤギ等の別種の動物の血清アルブ
ミンを使用することをあげることができる。このように
して得られる固体支持材に直接または間接的に結合する
特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチドは次に、試料
中に含まれる検出すべき抗原である活性型ＭＡＰキナー
ゼおよび第１抗体（本発明抗体）を含有する試験溶液と
混合され、該混合物はインキュベートされる。なお、試
料中に含まれる検出すべき抗原である活性型ＭＡＰキナ
ーゼは、この際に遊離の形態で、水溶液、生理食塩水、
緩衝液または生体試料等の成分として存在し得る。約１
０分間ないし約２時間のインキュベート後に、混合物は
第１抗体（本発明抗体）を認識し、そして結合する酵素
等で標識された第２抗体とインキュベートされる。この
酵素等で標識された第２抗体としては、たとえばペルオ
キシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラク
トシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラー
ゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラー
ゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコー
ス−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素を結合
した第１抗体（本発明抗体）に対する抗体をあげること
ができる。具体的な例としては、第１抗体（本発明抗
体）としてウサギ抗血清を使用する場合、第２抗体とし
ては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ免疫グロブ
リン（ＩｇＧ）ヤギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）を好まし
くあげることができる。なお、該抗ウサギＩｇＧヤギＩ
ｇＧは市販されており、容易に入手可能である。 ペル
オキシダーゼで標識される場合には、基質として過酸化
水素、発色試薬としてジアミノベンジジンまたはＯ−フ
ェニレンジアミンを組み合わすことにより褐色または黄
色の発色を生じる。グルコースオキシダーゼで標識され
る場合には、基質として、たとえば２，2'−アシド−ジ
−（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸（Ａ
ＢＴＳ）等を用いる。
【００１５】また本発明は、活性型ＭＡＰキナーゼの免
疫学的検出・分析用キットを包含する。上記の試験キッ
トは、たとえば次の構成成分を含有し得る：(1) 活性型
ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩＩとサブドメインＶ
ＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチド
を直接、あるいはスペーサーおよび／または第１抗体
（本発明抗体）によって認識されない高分子量担体分子
を介して間接的に結合する固体支持材、(2) 本発明抗体
を含有する試薬、(3) 本発明抗体に対する標識された抗
体を含有する試薬、すなわち第１抗体（本発明抗体）を
認識し、そして結合する酵素等で標識された第２抗体を
含有する試薬。さらに補助的に、(4) 抗原である特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドまたは活性型ＭＡＰ
キナーゼの標準化溶液、(5) 緩衝液、(6) 非特異的吸着
および凝集体の形成を防止するポリペプチド、界面活性
剤等の添加剤、および(7) ピペット、反応容器、計算曲
線等を含めるとよい。上記の固体支持材は、非常に広範
囲のデザインを有し、そして使用に際して意図された特
定の目的に応じて非常に異なる形状を有することができ
る。たとえば、皿、球、プレート、小型ロッド、セル、
小型ボトル、小型チューブ、ファイバー、ネット等をあ
げることができる。具体的な例としては、透明プラスチ
ック材料、たとえばポリ塩化ビニルまたはポリスチレン
からなるミクロタイタープレート、ポリスチレンおよび
ポリスチレンラテックスからなる小球、チューブまたは
ロッド等が使用可能である。
疫学的検出・分析用キットを包含する。上記の試験キッ
トは、たとえば次の構成成分を含有し得る：(1) 活性型
ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩＩとサブドメインＶ
ＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を含む抗原性ペプチド
を直接、あるいはスペーサーおよび／または第１抗体
（本発明抗体）によって認識されない高分子量担体分子
を介して間接的に結合する固体支持材、(2) 本発明抗体
を含有する試薬、(3) 本発明抗体に対する標識された抗
体を含有する試薬、すなわち第１抗体（本発明抗体）を
認識し、そして結合する酵素等で標識された第２抗体を
含有する試薬。さらに補助的に、(4) 抗原である特有な
アミノ酸配列を含む抗原性ペプチドまたは活性型ＭＡＰ
キナーゼの標準化溶液、(5) 緩衝液、(6) 非特異的吸着
および凝集体の形成を防止するポリペプチド、界面活性
剤等の添加剤、および(7) ピペット、反応容器、計算曲
線等を含めるとよい。上記の固体支持材は、非常に広範
囲のデザインを有し、そして使用に際して意図された特
定の目的に応じて非常に異なる形状を有することができ
る。たとえば、皿、球、プレート、小型ロッド、セル、
小型ボトル、小型チューブ、ファイバー、ネット等をあ
げることができる。具体的な例としては、透明プラスチ
ック材料、たとえばポリ塩化ビニルまたはポリスチレン
からなるミクロタイタープレート、ポリスチレンおよび
ポリスチレンラテックスからなる小球、チューブまたは
ロッド等が使用可能である。
【００１６】ＩＶ． 細胞または組織の免疫学的染色法
固定された細胞または組織標本中に存在する活性型ＭＡ
Ｐキナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認識さ
せ、その抗体を検出する方法であり、細胞または組織中
の存在量、局在状態を調べるのに役立つ。調べたい細胞
または組織を固定し、光学顕微鏡または電子顕微鏡等の
観察が可能な標本を作製する。細胞または組織の固定に
使用する試薬は、顕微鏡下での観察に適したもので、か
つ抗原である活性型ＭＡＰキナーゼを認識する本発明抗
体の能力を消失させないものであれば特に制限はない
が、好ましくは３．７％ホルマリン液、１００％メタノ
ール、１００％エタノール、４％パラホルムアルデヒド
溶液、１％グルタールアルデヒド溶液等があげられる。
なお、固定された細胞または組織標本中に存在する活性
型ＭＡＰキナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認
識させるために、細胞または組織をあらかじめ0.1%(w/
v)SDS等で処理してもよい。そして固定された細胞また
は組織標本を約３０分間から約２４時間、４℃または室
温等でインキュベートすることによって、固定された細
胞または組織標本中に存在する活性型ＭＡＰキナーゼを
本発明抗体（第１抗体）によって認識させる。つぎに、
その抗体を検出する方法について説明する。本発明抗体
（第１抗体）が、たとえばペルオキシダーゼ、アルカリ
ホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコー
スオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラー
ゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレー
トデヒドロゲナーゼ、グルコース−６−ホスフェートデ
ヒドロゲナーゼ等の酵素等で標識されている場合には、
インキュベート後、遊離の状態にある本発明抗体（第１
抗体）を洗浄によって除去してから、上記の標識酵素の
基質を作用させて、発色等で反応を測定することによっ
て本発明抗体（第１抗体）を検出することができる。た
とえば、 ペルオキシダーゼで標識される場合には、基
質として過酸化水素、発色試薬としてジアミノベンジジ
ンまたはＯ−フェニレンジアミンを組み合わせることに
より褐色または黄色の発色を生じる。グルコースオキシ
ダーゼで標識される場合には、基質として、たとえば
２，2'−アシド−ジ−（３−エチルベンゾチアゾリン−
６−スルホン酸（ＡＢＴＳ）等を用いる。また、本発明
抗体（第１抗体）を認識しかつ結合する酵素等で標識さ
れた第２抗体を使用する場合には、インキュベート後、
遊離の状態にある本発明抗体（第１抗体）を洗浄によっ
て除去してから、第２抗体とインキュベートされる。こ
の酵素等で標識された第２抗体としては、たとえばペル
オキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラ
クトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラ
ーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラー
ゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコー
ス−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素を結合
した第１抗体（本発明抗体）に対する抗体をあげること
ができる。具体的な例としては、第１抗体（本発明抗
体）としてウサギ抗血清を使用する場合、第２抗体とし
ては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ免疫グロブ
リン（ＩｇＧ）ヤギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）を好まし
くあげることができる。なお、該抗ウサギＩｇＧヤギＩ
ｇＧは市販されており、容易に入手可能である。第２抗
体の検出としては、上記の標識された本発明抗体（第１
抗体）の場合と同様な方法をあげることができる。以
下、実施例を挙げて本発明を説明するが、本発明は下記
の実施例にのみ限定されないことは言うまでもない。
Ｐキナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認識さ
せ、その抗体を検出する方法であり、細胞または組織中
の存在量、局在状態を調べるのに役立つ。調べたい細胞
または組織を固定し、光学顕微鏡または電子顕微鏡等の
観察が可能な標本を作製する。細胞または組織の固定に
使用する試薬は、顕微鏡下での観察に適したもので、か
つ抗原である活性型ＭＡＰキナーゼを認識する本発明抗
体の能力を消失させないものであれば特に制限はない
が、好ましくは３．７％ホルマリン液、１００％メタノ
ール、１００％エタノール、４％パラホルムアルデヒド
溶液、１％グルタールアルデヒド溶液等があげられる。
なお、固定された細胞または組織標本中に存在する活性
型ＭＡＰキナーゼを本発明抗体（第１抗体）によって認
識させるために、細胞または組織をあらかじめ0.1%(w/
v)SDS等で処理してもよい。そして固定された細胞また
は組織標本を約３０分間から約２４時間、４℃または室
温等でインキュベートすることによって、固定された細
胞または組織標本中に存在する活性型ＭＡＰキナーゼを
本発明抗体（第１抗体）によって認識させる。つぎに、
その抗体を検出する方法について説明する。本発明抗体
（第１抗体）が、たとえばペルオキシダーゼ、アルカリ
ホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコー
スオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸アンヒドラー
ゼ、アセチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、マレー
トデヒドロゲナーゼ、グルコース−６−ホスフェートデ
ヒドロゲナーゼ等の酵素等で標識されている場合には、
インキュベート後、遊離の状態にある本発明抗体（第１
抗体）を洗浄によって除去してから、上記の標識酵素の
基質を作用させて、発色等で反応を測定することによっ
て本発明抗体（第１抗体）を検出することができる。た
とえば、 ペルオキシダーゼで標識される場合には、基
質として過酸化水素、発色試薬としてジアミノベンジジ
ンまたはＯ−フェニレンジアミンを組み合わせることに
より褐色または黄色の発色を生じる。グルコースオキシ
ダーゼで標識される場合には、基質として、たとえば
２，2'−アシド−ジ−（３−エチルベンゾチアゾリン−
６−スルホン酸（ＡＢＴＳ）等を用いる。また、本発明
抗体（第１抗体）を認識しかつ結合する酵素等で標識さ
れた第２抗体を使用する場合には、インキュベート後、
遊離の状態にある本発明抗体（第１抗体）を洗浄によっ
て除去してから、第２抗体とインキュベートされる。こ
の酵素等で標識された第２抗体としては、たとえばペル
オキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラ
クトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラ
ーゼ、炭酸アンヒドラーゼ、アセチルコリンエステラー
ゼ、リゾチーム、マレートデヒドロゲナーゼ、グルコー
ス−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ等の酵素を結合
した第１抗体（本発明抗体）に対する抗体をあげること
ができる。具体的な例としては、第１抗体（本発明抗
体）としてウサギ抗血清を使用する場合、第２抗体とし
ては、ペルオキシダーゼを結合した抗ウサギ免疫グロブ
リン（ＩｇＧ）ヤギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）を好まし
くあげることができる。なお、該抗ウサギＩｇＧヤギＩ
ｇＧは市販されており、容易に入手可能である。第２抗
体の検出としては、上記の標識された本発明抗体（第１
抗体）の場合と同様な方法をあげることができる。以
下、実施例を挙げて本発明を説明するが、本発明は下記
の実施例にのみ限定されないことは言うまでもない。
【００１７】
製造例１ 複合体の調製（その１：特有なアミノ酸配列
を含む抗原性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程） 下記のアミノ酸配列を有するペプチドを、そのアミノ酸
配列の順にアミノ酸を自動アミノ酸合成装置（アプライ
ドバイオシステム社製、４０３Ａ型）を用いて重合する
ことによって３０ｍｇ製造した。なお、純度はＨＰＬＣ
による分析で９５．５％であった。 N- Asp-His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H
2)-Val-Ala -C 製造されたペプチド（以下、本ペプチドと記す。）１
５．８ｍｇおよびグルタルアルデヒド２６．８ｍｇを2.
0ml の0.2Mリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ 2 ＨＰ
Ｏ4 、pH8.0)に溶解し、25% グルタルアルデヒド30μl
を攪拌しながらゆっくり添加し10℃で一晩攪拌した。反
応終了後、水酸化シアノほう素ナトリウムを過剰量加え
て30分間還元した。次に、この混合液を透析チューブ
（三光純薬製）に入れ、8Mウレアに対して室温で5 時
間、流水に対して10℃で一晩、蒸留水に対して5 時間透
析（透析中、3 回の新しい蒸留水に交換）した。透析
後、該混合液を凍結乾燥することにより、ＫＬＨ複合体
を得た。
を含む抗原性ペプチドの完全抗原（免疫原）化工程） 下記のアミノ酸配列を有するペプチドを、そのアミノ酸
配列の順にアミノ酸を自動アミノ酸合成装置（アプライ
ドバイオシステム社製、４０３Ａ型）を用いて重合する
ことによって３０ｍｇ製造した。なお、純度はＨＰＬＣ
による分析で９５．５％であった。 N- Asp-His-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3H
2)-Val-Ala -C 製造されたペプチド（以下、本ペプチドと記す。）１
５．８ｍｇおよびグルタルアルデヒド２６．８ｍｇを2.
0ml の0.2Mリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ 2 ＨＰ
Ｏ4 、pH8.0)に溶解し、25% グルタルアルデヒド30μl
を攪拌しながらゆっくり添加し10℃で一晩攪拌した。反
応終了後、水酸化シアノほう素ナトリウムを過剰量加え
て30分間還元した。次に、この混合液を透析チューブ
（三光純薬製）に入れ、8Mウレアに対して室温で5 時
間、流水に対して10℃で一晩、蒸留水に対して5 時間透
析（透析中、3 回の新しい蒸留水に交換）した。透析
後、該混合液を凍結乾燥することにより、ＫＬＨ複合体
を得た。
【００１８】製造例２ 複合体の調製（その２：固体支
持材に間接的に結合される抗原への高分子量担体分子の
連結） キーホールカサガイヘモシアニン（ＫＬＨ）の代りにウ
シ血清アルブミン（ＢＳＡ）を用いる以外は製造例２と
同様な方法に従い、ＢＳＡ複合体を得る。
持材に間接的に結合される抗原への高分子量担体分子の
連結） キーホールカサガイヘモシアニン（ＫＬＨ）の代りにウ
シ血清アルブミン（ＢＳＡ）を用いる以外は製造例２と
同様な方法に従い、ＢＳＡ複合体を得る。
【００１９】製造例３ 哺乳動物の免疫感作化工程およ
び本発明抗体取得工程 製造例１によって得られたＫＬＨ複合体を１mg／mlの濃
度になるように生理食塩水に溶解した。この水溶液２ml
にあらかじめ４２℃から４３℃にインキュベートされた
ＲＡＳ〔MPL(Monophosphoryl Lipid A)+TDM(Synthetic
Trehalose Dicorynomycolate)+CWS(Cell Wall Skeleto
n) アジュバントシステム〕（Sigma 社製）を４０μｌ
を加え、よく混合した。得られた混合物をニュージーラ
ンドホワイト種ウサギ（雌、１４週齢、平均２．４kg）
一羽あたり１mlの液量投与した。その内訳は、５０μｌ
ずつ背部６ヶ所に皮内投与、２００μｌずつ各後ろ足に
筋肉内投与、１００μｌずつ背部３ヶ所に皮下投与であ
った。その後、４週間後、８週間後に再度初回と同様に
投与を行った。この間ウサギの耳静脈から少量の血液を
サンプリングし、抗体価を測定した。３回目の投与後に
抗体価が上昇したため、３回目投与の約３週間後から３
ないし４日間隔で４回、上記の混合物を１００μｌずつ
耳静脈内投与した。最後の投与の５日後に免疫感作した
供試ウサギの心臓から全採血し、得られた血液をセパラ
ピットチューブ（積水化学社製）に入れ、３７℃で２時
間インキュベートした後、遠心分離（3000rpm 、20min
、室温）して上清を回収することにより、抗血清を得
た。さらに得られた抗血清を５６℃で３０分間処理し、
補体系の不活性化を行った。これを（第１）抗体として
下記の試験に用いた。
び本発明抗体取得工程 製造例１によって得られたＫＬＨ複合体を１mg／mlの濃
度になるように生理食塩水に溶解した。この水溶液２ml
にあらかじめ４２℃から４３℃にインキュベートされた
ＲＡＳ〔MPL(Monophosphoryl Lipid A)+TDM(Synthetic
Trehalose Dicorynomycolate)+CWS(Cell Wall Skeleto
n) アジュバントシステム〕（Sigma 社製）を４０μｌ
を加え、よく混合した。得られた混合物をニュージーラ
ンドホワイト種ウサギ（雌、１４週齢、平均２．４kg）
一羽あたり１mlの液量投与した。その内訳は、５０μｌ
ずつ背部６ヶ所に皮内投与、２００μｌずつ各後ろ足に
筋肉内投与、１００μｌずつ背部３ヶ所に皮下投与であ
った。その後、４週間後、８週間後に再度初回と同様に
投与を行った。この間ウサギの耳静脈から少量の血液を
サンプリングし、抗体価を測定した。３回目の投与後に
抗体価が上昇したため、３回目投与の約３週間後から３
ないし４日間隔で４回、上記の混合物を１００μｌずつ
耳静脈内投与した。最後の投与の５日後に免疫感作した
供試ウサギの心臓から全採血し、得られた血液をセパラ
ピットチューブ（積水化学社製）に入れ、３７℃で２時
間インキュベートした後、遠心分離（3000rpm 、20min
、室温）して上清を回収することにより、抗血清を得
た。さらに得られた抗血清を５６℃で３０分間処理し、
補体系の不活性化を行った。これを（第１）抗体として
下記の試験に用いた。
【００２０】試験例１ イムノブロット法による活性型
ＭＡＰキナーゼの分析 ほとんど全てのＭＡＰキナーゼが活性化状態であるアフ
リカツメガエル未受精卵および逆にほとんど全てのＭＡ
Ｐキナーゼが不活性化状態であるアフリカツメガエル未
成熟卵、ならびに上皮細胞増殖因子によって刺激された
ラット由来３Ｙ１細胞株および何らの刺激も与えていな
いラット由来３Ｙ１細胞株の４種類の細胞を用いて活性
型ＭＡＰキナーゼの分析を行った。アフリカツメガエル
未受精卵からの抽出液は、以下の方法によって調製され
た。アフリカツメガエルの雌にゴナドトロピン（帝国臓
器社製）を３００ＩＵ／匹の割合で注射し、２２℃で１
２時間飼育した後、未受精卵を取り出した。取り出され
た未受精卵のゼリー層を２％(w/v) システイン塩酸塩(p
H7.8) で除去し、抽出バッファー（組成：60mMβ−グリセ
ロリン 酸,20mM Tris-HCl(pH7.5),10mM EGTA,10mM MgCl2,2
mMジチオスレイトール,1mM Na3VO4 ,1mM フェニルメチルスルホニルフルオライド,2
0 μg/ml アプロチニン）を未受精卵の体積の２倍量加えた。
この混合物を氷冷しながらホモジナイズし、遠心分離
（200,000xg,20min,4 ℃）後、上清を未受精卵抽出液と
して採取した。次に、アフリカツメガエル未成熟卵から
の抽出液は、以下の方法によって調製された。アフリカ
ツメガエルの雌から卵巣を摘出し、1mg/mlのコラゲナー
ゼを含むMBS-Ca2 + 〔組成：88mM NaCl,1mM KCl,2.4mM
NaHC03,0.82mM MgSO4,15mM Tris-HCl(pH7.6)〕で23℃、
2 時間インキュベートし、ステージVI（未成熟卵）の卵
〔卵の中で最も大きいもので、最も動物極側（黒）に近
い植物極側（クリーム）の色が白化している状態の卵〕
を肉眼で選び出した後、抽出バッファー（組成：60mMβ
−グリセロリン 酸,20mM Tris-HCl(pH7.5),10mM EGTA,10mM M
gCl2,2mMジチオスレイトール,1mM Na3VO4,1mM フェニルメチルスルホニルフルオ
ライド，20μg/ml アプロチニン）を未成熟卵の体積の２倍量加
えた。この混合物を氷冷しながらホモジナイズし、遠心
分離（200,000xg,20min,4 ℃）後、上清を未成熟卵抽出
液として採取した。次に、ラット由来３Ｙ１細胞株から
の抽出液は、以下の方法によって調製された。直径１０
ｃｍシャーレにラット由来３Ｙ１細胞を１０％(v/v) の
牛胎児血清を含むダルベッコMEM 培地（日水製薬社製）
上、３７℃でコンフルエントまで培養し、さらに血清を
含まないダルベッコMEM 培地（日水製薬社製）で２日
間、３７℃で培養することによって細胞をＧ0/Ｇ1 期に
同調させた。この状態で上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）
（Collaborative 社製）を３０ｎＭ添加し、３７℃で５
分間処理する刺激を与えた。上皮細胞増殖因子（ＥＧ
Ｆ）によって刺激されたラット由来３Ｙ１細胞および何
らの刺激も与えていないラット由来３Ｙ１細胞はそれぞ
れ氷冷したHEPES バッファー(pH 7.3)で１回洗浄し、40
0 μl の抽出バッファー〔組成：20mMβ−グリセロリン 酸,1
5mM Tris-HCl(pH7.7),350mM Sucrose,10mMメタビスルフェイト,5
mM KCl,5mM EGTA,5mM MgCl2,0.1mM EDTA,6mMジチオスレイトー
ル,1mM Na3VO4,1mM フェニルメチルスルホニルフルオライド,20 μg/ml ア
プロチニン〕を加えて細胞をゴムべらでかきとり、ホモジナ
イズした。得られたホモジナイズ液を遠心分離（5000x
g,5min,4 ℃）し、回収された上清をさらに遠心分離（5
00,000xg,20min,4 ℃）した。遠心分離後、上清を３Ｙ
１細胞抽出液として回収した。調製された抽出液１００
μｇを１０％(w/v) ポリアクリルアミドゲルを用いる電
気泳動（30mA,1時間）によってゲル上においてＭＡＰキ
ナーゼと他の蛋白質とを分離した。このゲルにIMMOBILO
N 膜（5x5cm,ミリポア社製）を重ね、TransferBuffer
[組成：24mM Tris,192mM グリシン,0.1%(w/v)SDS+20%(v/v)
メタノール〕中に浸した状態でSemi-transfer 装置（１mA/cm
2、９０分間；Biocraft社製,BE-300 型）を用いてＭＡ
Ｐキナーゼと他の蛋白質をIMMOBILON 膜に移動させた。
つぎに得られたIMMOBILON 膜をTween20 を含む TBS溶液
〔組成：0.05%(V/V)Tween20+20mM Tris-HCl(pH7.5),500
mM NaCl 〕で軽く洗浄した後、ブロッキングのためにス
キムミルク（森永乳業社製）を含むTBS 溶液〔組成：３
％(w/v) スキムミルク+20mMTris-HCl(pH7.5),500mM NaC
l〕で１時間、室温下でインキュベートした。ブロッキ
ング処理後のIMMOBILON 膜をTween20 を含む TBS溶液
〔組成：0.1%(V/V)Tween20+20mM Tris-HCl(pH7.5),500m
M NaCl〕で軽く洗浄した後、BSA を含むTBS 溶液〔組
成：１％(w/v)BSA +20mM Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl
〕で２００倍に希釈された第１抗体調製液（実施例３
で得られた抗血清を用いて調製された）１ml中に１０時
間、４℃で浸した。第１抗体処理後のIMMOBILON 膜をTw
een20 を含むTBS 溶液〔組成：0.1%(V/V)Tween20+20mM
Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl〕で１０分間ずつ３回洗浄
した後、スキムミルク（森永乳業社製）を含むTBS 溶液
〔組成：３％(w/v) スキムミルク+20mM Tris-HCl(pH7.
5),500mM NaCl〕で５０００倍に希釈されたペルオキシ
ダーゼ(HRP) を結合したロバ抗ウサギ免疫グロブリン
（ＩｇＧ、アマシャム社製）溶液（第２抗体調製液）２
０ml中に30分間、室温下で浸した。第２抗体処理後のIM
MOBILON 膜をTween20 を含む TBS溶液〔組成：0.1%(V/
V)Tween20+20mM Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl〕で１５
分間で１回、５分間ずつ４回洗浄した後、ECL 発色キッ
ト（アマシャム社製）を用いて、IMMOBILON 膜中に残存
した第１抗体を発色反応で検出した。その結果、アフリ
カツメガエル未受精卵および上皮細胞増殖因子によって
刺激されたラット由来３Ｙ１細胞株から調製された抽出
液を試料とした場合には、第２抗体の標識による発色反
応が認められが、一方、アフリカツメガエル未成熟卵お
よび何らの刺激も与えていないラット由来３Ｙ１細胞株
から調製された抽出液を試料とした場合には、第２抗体
の標識による発色反応が全く認められなかった。以上よ
り、本発明抗体は活性型ＭＡＰキナーゼのみを認識し、
不活性型ＭＡＰキナーゼに対して交差反応性を実質的に
示さないことが明らかになった。さらに本発明抗体は両
生類、哺乳動物由来の活性型ＭＡＰキナーゼに対して動
物種を越えて同様に反応することもわかった。結果を模
式図として表わす（図１参照）。また、アフリカツメガ
エルのＭＡＰキナーゼは１種類であり、ラットのＭＡＰ
キナーゼは２種類であるが、レーンＢでは１本、レーン
Ｄでは２本のバンド（活性型ＭＡＰキナーゼ）がそれぞ
れ認められた。結果を模式図として表わす（図１参
照）。さらに、実施例３によって得られた本発明抗体に
関して、その不活性型ＭＡＰキナーゼに対する交差反応
性の程度を検討した。交差反応性の程度は、活性型ＭＡ
Ｐキナーゼを上記のイムノブロット法によって検出する
ことができる基質蛋白質濃度を１としたときに不活性型
ＭＡＰキナーゼが同方法によって検出されてくる基質蛋
白質濃度をＣとすれば、１／Ｃのように決定された。そ
の結果、実施例３によって得られた本発明抗体は、１／
１００未満である選択的認識が可能であった。結果を模
式図として表わす（図２参照）。
ＭＡＰキナーゼの分析 ほとんど全てのＭＡＰキナーゼが活性化状態であるアフ
リカツメガエル未受精卵および逆にほとんど全てのＭＡ
Ｐキナーゼが不活性化状態であるアフリカツメガエル未
成熟卵、ならびに上皮細胞増殖因子によって刺激された
ラット由来３Ｙ１細胞株および何らの刺激も与えていな
いラット由来３Ｙ１細胞株の４種類の細胞を用いて活性
型ＭＡＰキナーゼの分析を行った。アフリカツメガエル
未受精卵からの抽出液は、以下の方法によって調製され
た。アフリカツメガエルの雌にゴナドトロピン（帝国臓
器社製）を３００ＩＵ／匹の割合で注射し、２２℃で１
２時間飼育した後、未受精卵を取り出した。取り出され
た未受精卵のゼリー層を２％(w/v) システイン塩酸塩(p
H7.8) で除去し、抽出バッファー（組成：60mMβ−グリセ
ロリン 酸,20mM Tris-HCl(pH7.5),10mM EGTA,10mM MgCl2,2
mMジチオスレイトール,1mM Na3VO4 ,1mM フェニルメチルスルホニルフルオライド,2
0 μg/ml アプロチニン）を未受精卵の体積の２倍量加えた。
この混合物を氷冷しながらホモジナイズし、遠心分離
（200,000xg,20min,4 ℃）後、上清を未受精卵抽出液と
して採取した。次に、アフリカツメガエル未成熟卵から
の抽出液は、以下の方法によって調製された。アフリカ
ツメガエルの雌から卵巣を摘出し、1mg/mlのコラゲナー
ゼを含むMBS-Ca2 + 〔組成：88mM NaCl,1mM KCl,2.4mM
NaHC03,0.82mM MgSO4,15mM Tris-HCl(pH7.6)〕で23℃、
2 時間インキュベートし、ステージVI（未成熟卵）の卵
〔卵の中で最も大きいもので、最も動物極側（黒）に近
い植物極側（クリーム）の色が白化している状態の卵〕
を肉眼で選び出した後、抽出バッファー（組成：60mMβ
−グリセロリン 酸,20mM Tris-HCl(pH7.5),10mM EGTA,10mM M
gCl2,2mMジチオスレイトール,1mM Na3VO4,1mM フェニルメチルスルホニルフルオ
ライド，20μg/ml アプロチニン）を未成熟卵の体積の２倍量加
えた。この混合物を氷冷しながらホモジナイズし、遠心
分離（200,000xg,20min,4 ℃）後、上清を未成熟卵抽出
液として採取した。次に、ラット由来３Ｙ１細胞株から
の抽出液は、以下の方法によって調製された。直径１０
ｃｍシャーレにラット由来３Ｙ１細胞を１０％(v/v) の
牛胎児血清を含むダルベッコMEM 培地（日水製薬社製）
上、３７℃でコンフルエントまで培養し、さらに血清を
含まないダルベッコMEM 培地（日水製薬社製）で２日
間、３７℃で培養することによって細胞をＧ0/Ｇ1 期に
同調させた。この状態で上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）
（Collaborative 社製）を３０ｎＭ添加し、３７℃で５
分間処理する刺激を与えた。上皮細胞増殖因子（ＥＧ
Ｆ）によって刺激されたラット由来３Ｙ１細胞および何
らの刺激も与えていないラット由来３Ｙ１細胞はそれぞ
れ氷冷したHEPES バッファー(pH 7.3)で１回洗浄し、40
0 μl の抽出バッファー〔組成：20mMβ−グリセロリン 酸,1
5mM Tris-HCl(pH7.7),350mM Sucrose,10mMメタビスルフェイト,5
mM KCl,5mM EGTA,5mM MgCl2,0.1mM EDTA,6mMジチオスレイトー
ル,1mM Na3VO4,1mM フェニルメチルスルホニルフルオライド,20 μg/ml ア
プロチニン〕を加えて細胞をゴムべらでかきとり、ホモジナ
イズした。得られたホモジナイズ液を遠心分離（5000x
g,5min,4 ℃）し、回収された上清をさらに遠心分離（5
00,000xg,20min,4 ℃）した。遠心分離後、上清を３Ｙ
１細胞抽出液として回収した。調製された抽出液１００
μｇを１０％(w/v) ポリアクリルアミドゲルを用いる電
気泳動（30mA,1時間）によってゲル上においてＭＡＰキ
ナーゼと他の蛋白質とを分離した。このゲルにIMMOBILO
N 膜（5x5cm,ミリポア社製）を重ね、TransferBuffer
[組成：24mM Tris,192mM グリシン,0.1%(w/v)SDS+20%(v/v)
メタノール〕中に浸した状態でSemi-transfer 装置（１mA/cm
2、９０分間；Biocraft社製,BE-300 型）を用いてＭＡ
Ｐキナーゼと他の蛋白質をIMMOBILON 膜に移動させた。
つぎに得られたIMMOBILON 膜をTween20 を含む TBS溶液
〔組成：0.05%(V/V)Tween20+20mM Tris-HCl(pH7.5),500
mM NaCl 〕で軽く洗浄した後、ブロッキングのためにス
キムミルク（森永乳業社製）を含むTBS 溶液〔組成：３
％(w/v) スキムミルク+20mMTris-HCl(pH7.5),500mM NaC
l〕で１時間、室温下でインキュベートした。ブロッキ
ング処理後のIMMOBILON 膜をTween20 を含む TBS溶液
〔組成：0.1%(V/V)Tween20+20mM Tris-HCl(pH7.5),500m
M NaCl〕で軽く洗浄した後、BSA を含むTBS 溶液〔組
成：１％(w/v)BSA +20mM Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl
〕で２００倍に希釈された第１抗体調製液（実施例３
で得られた抗血清を用いて調製された）１ml中に１０時
間、４℃で浸した。第１抗体処理後のIMMOBILON 膜をTw
een20 を含むTBS 溶液〔組成：0.1%(V/V)Tween20+20mM
Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl〕で１０分間ずつ３回洗浄
した後、スキムミルク（森永乳業社製）を含むTBS 溶液
〔組成：３％(w/v) スキムミルク+20mM Tris-HCl(pH7.
5),500mM NaCl〕で５０００倍に希釈されたペルオキシ
ダーゼ(HRP) を結合したロバ抗ウサギ免疫グロブリン
（ＩｇＧ、アマシャム社製）溶液（第２抗体調製液）２
０ml中に30分間、室温下で浸した。第２抗体処理後のIM
MOBILON 膜をTween20 を含む TBS溶液〔組成：0.1%(V/
V)Tween20+20mM Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl〕で１５
分間で１回、５分間ずつ４回洗浄した後、ECL 発色キッ
ト（アマシャム社製）を用いて、IMMOBILON 膜中に残存
した第１抗体を発色反応で検出した。その結果、アフリ
カツメガエル未受精卵および上皮細胞増殖因子によって
刺激されたラット由来３Ｙ１細胞株から調製された抽出
液を試料とした場合には、第２抗体の標識による発色反
応が認められが、一方、アフリカツメガエル未成熟卵お
よび何らの刺激も与えていないラット由来３Ｙ１細胞株
から調製された抽出液を試料とした場合には、第２抗体
の標識による発色反応が全く認められなかった。以上よ
り、本発明抗体は活性型ＭＡＰキナーゼのみを認識し、
不活性型ＭＡＰキナーゼに対して交差反応性を実質的に
示さないことが明らかになった。さらに本発明抗体は両
生類、哺乳動物由来の活性型ＭＡＰキナーゼに対して動
物種を越えて同様に反応することもわかった。結果を模
式図として表わす（図１参照）。また、アフリカツメガ
エルのＭＡＰキナーゼは１種類であり、ラットのＭＡＰ
キナーゼは２種類であるが、レーンＢでは１本、レーン
Ｄでは２本のバンド（活性型ＭＡＰキナーゼ）がそれぞ
れ認められた。結果を模式図として表わす（図１参
照）。さらに、実施例３によって得られた本発明抗体に
関して、その不活性型ＭＡＰキナーゼに対する交差反応
性の程度を検討した。交差反応性の程度は、活性型ＭＡ
Ｐキナーゼを上記のイムノブロット法によって検出する
ことができる基質蛋白質濃度を１としたときに不活性型
ＭＡＰキナーゼが同方法によって検出されてくる基質蛋
白質濃度をＣとすれば、１／Ｃのように決定された。そ
の結果、実施例３によって得られた本発明抗体は、１／
１００未満である選択的認識が可能であった。結果を模
式図として表わす（図２参照）。
【００２１】試験例２ 本発明抗体を用いた免疫沈降法
による活性型ＭＡＰキナーゼの分析 ほとんど全てのＭＡＰキナーゼが活性化状態であるアフ
リカツメガエル未受精卵または逆にほとんど全てのＭＡ
Ｐキナーゼが不活性化状態であるアフリカツメガエル未
成熟卵からの抽出液を試験例１と同様な方法によって調
製した。調製した抽出液４０μｌ、第１抗体（実施例３
で得られた抗血清）５μｌ、プロテインＡセファロース
６ＭＢ溶液（Pharmacia Fine Chem.社製) ５μｌおよび
１％(w/v) のＳＤＳ水溶液５．５μｌを混合し、該混合
物を４℃で１．５時間インキュベートした。処理後の混
合物にTween40 を含む TBS溶液〔組成：0.１%(V/V)Twee
n40+20mM Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl 〕１mlを加え混
合した後、遠心分離（5000rpm 、2min、4 ℃）して沈澱
を回収した。回収された沈澱を終濃度としてTween40 を
含む TBS溶液〔組成：0.１%(V/V)Tween40+20mM Tris-HC
l(pH7.5),500mM NaCl 〕１mlで２回洗浄した。洗浄され
た沈澱にローディングバッファー（Tris-SDS-BME Separ
asol,EnproTech社製, 第一化学薬品）１０μｌを添加
し、これを加熱処理（９０℃、３分間）することによ
り、第１抗体とともに免疫沈降した活性型ＭＡＰキナー
ゼを遊離させた。このようにして活性型ＭＡＰキナーゼ
のみを分離・抽出する操作を行った。上記操作によって
得られたおのおのの溶液または上記操作をすることなく
調製された抽出液１０μｌを、ミエリン塩基性蛋白質を
0.5mg/ml含む１０％(w/v) ポリアクリルアミドゲルを用
いる電気泳動（３０ｍＶ，１時間）によってゲル上にお
いてＭＡＰキナーゼと他の蛋白質とを分離した。このゲ
ルを２０％(w/v) ２−プロパノール／50mM Tris-HCl(pH
8.0)溶液５０ml中に１時間、室温下で浸しながら振とう
した（３０分間につき１回洗浄液を交換）。そして洗浄
のためにＡバッファー〔組成：５mMメルカプトエタノー
ル／５０mM Tris-HCl(pH8.0)〕５０ml中に１時間、室温
下で浸しながら振とうした（３０分間につき１回洗浄液
を交換）。つぎに洗浄後のゲルを６Ｍグアニジン塩酸を
含むＡバッファー５０ml中に室温下１時間振とうし、さ
らに0.04%(V/V)Tween40 を含むＡバッファー５０ml中に
４℃で１４時間静置した（途中、４回の新しい洗浄液に
交換）。最後にＢバッファー〔組成：0.1mM EGTA〔エチ
レングリコールビス( β- アミノエチルエーテル）-N,
N,N',N'- 四酢酸〕、15mM MgCl2、2mM DTT(ジチオスレ
イトール) 、40mM HEPES〔Ｎ−（２−ヒドロキシエチ
ル）ピペラジン−Ｎ’−２−エタンスルホン酸〕-NaOH
(pH8.0)〕５０ml中に室温下３０分間浸しながら振とう
した。このように処理されたゲルを２５μＭ ＡＴＰ、
２５μＣｉ[ γ-32 Ｐ] ＡＴＰを含むＢバッファー１５
ml中に室温下１時間浸した後、５％(v/v) トリクロロ酢
酸／１％(v/v) ピロリン酸ナトリウム溶液２５０mlで一
晩充分に洗浄した（途中、４回の新しい洗浄液に交
換）。つぎに上記のように調製されたゲルに含まれるミ
エリン塩基性蛋白質のリン酸化量をイメージアナライザ
ー（富士写真フィルム社製、Fujix BAS2000)によって測
定し、この測定値から活性型ＭＡＰキナーゼの量を定量
した。その結果、アフリカツメガエル未受精卵または未
成熟卵からの抽出液をそのまま電気泳動した場合には、
ＭＡＰキナーゼ以外の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白
質のリン酸化が認められた。一方、アフリカツメガエル
未受精卵からの抽出液を本発明抗体を用いて免疫沈降さ
せた溶液を電気泳動した場合には、ＭＡＰキナーゼ以外
の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白質のリン酸化は認め
られなかった。また、アフリカツメガエル未成熟卵から
の抽出液を本発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を電
気泳動した場合には、ミエリン塩基性蛋白質のリン酸化
は認められなかった（図３参照）。
による活性型ＭＡＰキナーゼの分析 ほとんど全てのＭＡＰキナーゼが活性化状態であるアフ
リカツメガエル未受精卵または逆にほとんど全てのＭＡ
Ｐキナーゼが不活性化状態であるアフリカツメガエル未
成熟卵からの抽出液を試験例１と同様な方法によって調
製した。調製した抽出液４０μｌ、第１抗体（実施例３
で得られた抗血清）５μｌ、プロテインＡセファロース
６ＭＢ溶液（Pharmacia Fine Chem.社製) ５μｌおよび
１％(w/v) のＳＤＳ水溶液５．５μｌを混合し、該混合
物を４℃で１．５時間インキュベートした。処理後の混
合物にTween40 を含む TBS溶液〔組成：0.１%(V/V)Twee
n40+20mM Tris-HCl(pH7.5),500mM NaCl 〕１mlを加え混
合した後、遠心分離（5000rpm 、2min、4 ℃）して沈澱
を回収した。回収された沈澱を終濃度としてTween40 を
含む TBS溶液〔組成：0.１%(V/V)Tween40+20mM Tris-HC
l(pH7.5),500mM NaCl 〕１mlで２回洗浄した。洗浄され
た沈澱にローディングバッファー（Tris-SDS-BME Separ
asol,EnproTech社製, 第一化学薬品）１０μｌを添加
し、これを加熱処理（９０℃、３分間）することによ
り、第１抗体とともに免疫沈降した活性型ＭＡＰキナー
ゼを遊離させた。このようにして活性型ＭＡＰキナーゼ
のみを分離・抽出する操作を行った。上記操作によって
得られたおのおのの溶液または上記操作をすることなく
調製された抽出液１０μｌを、ミエリン塩基性蛋白質を
0.5mg/ml含む１０％(w/v) ポリアクリルアミドゲルを用
いる電気泳動（３０ｍＶ，１時間）によってゲル上にお
いてＭＡＰキナーゼと他の蛋白質とを分離した。このゲ
ルを２０％(w/v) ２−プロパノール／50mM Tris-HCl(pH
8.0)溶液５０ml中に１時間、室温下で浸しながら振とう
した（３０分間につき１回洗浄液を交換）。そして洗浄
のためにＡバッファー〔組成：５mMメルカプトエタノー
ル／５０mM Tris-HCl(pH8.0)〕５０ml中に１時間、室温
下で浸しながら振とうした（３０分間につき１回洗浄液
を交換）。つぎに洗浄後のゲルを６Ｍグアニジン塩酸を
含むＡバッファー５０ml中に室温下１時間振とうし、さ
らに0.04%(V/V)Tween40 を含むＡバッファー５０ml中に
４℃で１４時間静置した（途中、４回の新しい洗浄液に
交換）。最後にＢバッファー〔組成：0.1mM EGTA〔エチ
レングリコールビス( β- アミノエチルエーテル）-N,
N,N',N'- 四酢酸〕、15mM MgCl2、2mM DTT(ジチオスレ
イトール) 、40mM HEPES〔Ｎ−（２−ヒドロキシエチ
ル）ピペラジン−Ｎ’−２−エタンスルホン酸〕-NaOH
(pH8.0)〕５０ml中に室温下３０分間浸しながら振とう
した。このように処理されたゲルを２５μＭ ＡＴＰ、
２５μＣｉ[ γ-32 Ｐ] ＡＴＰを含むＢバッファー１５
ml中に室温下１時間浸した後、５％(v/v) トリクロロ酢
酸／１％(v/v) ピロリン酸ナトリウム溶液２５０mlで一
晩充分に洗浄した（途中、４回の新しい洗浄液に交
換）。つぎに上記のように調製されたゲルに含まれるミ
エリン塩基性蛋白質のリン酸化量をイメージアナライザ
ー（富士写真フィルム社製、Fujix BAS2000)によって測
定し、この測定値から活性型ＭＡＰキナーゼの量を定量
した。その結果、アフリカツメガエル未受精卵または未
成熟卵からの抽出液をそのまま電気泳動した場合には、
ＭＡＰキナーゼ以外の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白
質のリン酸化が認められた。一方、アフリカツメガエル
未受精卵からの抽出液を本発明抗体を用いて免疫沈降さ
せた溶液を電気泳動した場合には、ＭＡＰキナーゼ以外
の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白質のリン酸化は認め
られなかった。また、アフリカツメガエル未成熟卵から
の抽出液を本発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を電
気泳動した場合には、ミエリン塩基性蛋白質のリン酸化
は認められなかった（図３参照）。
【００２２】さらに、上記のように調製された、アフリ
カツメガエル未受精卵または未成熟卵からの抽出液を本
発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を試料として、か
つ「第１抗体調製液（実施例３で得られた抗血清を用い
て調製された）」の代わりに「活性型および不活性型Ｍ
ＡＰキナーゼの両者に反応する抗血清」を用いて試験例
１記載のイムノブロット法に準じて活性型ＭＡＰキナー
ゼの分析を行った。その結果、未受精卵からの抽出液を
本発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を試料とした場
合には、第２抗体の標識による発色反応が認められが、
一方、未成熟卵からの抽出液を本発明抗体を用いて免疫
沈降させた溶液を試料とした場合には、第２抗体の標識
による発色反応が全く認められなかった。したがって、
本発明抗体は活性型ＭＡＰキナーゼのみを認識し、活性
型ＭＡＰキナーゼを特異的に分離（免疫沈降による）す
ることも確認された。
カツメガエル未受精卵または未成熟卵からの抽出液を本
発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を試料として、か
つ「第１抗体調製液（実施例３で得られた抗血清を用い
て調製された）」の代わりに「活性型および不活性型Ｍ
ＡＰキナーゼの両者に反応する抗血清」を用いて試験例
１記載のイムノブロット法に準じて活性型ＭＡＰキナー
ゼの分析を行った。その結果、未受精卵からの抽出液を
本発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を試料とした場
合には、第２抗体の標識による発色反応が認められが、
一方、未成熟卵からの抽出液を本発明抗体を用いて免疫
沈降させた溶液を試料とした場合には、第２抗体の標識
による発色反応が全く認められなかった。したがって、
本発明抗体は活性型ＭＡＰキナーゼのみを認識し、活性
型ＭＡＰキナーゼを特異的に分離（免疫沈降による）す
ることも確認された。
【００２３】試験例３ 間接競合阻害法による活性型Ｍ
ＡＰキナーゼの分析（その１） ポリスチレン製の９６穴ミクロタイタープレートに、製
造例２によって得られるＢＳＡ複合体を１〜１０μｇ／
mlの濃度で含むコーティング液〔塩化ナトリウムを１４
０mg／ｌの濃度で含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2
ＰＯ4 −Ｎａ2ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)〕を 0.1ml／ウェル
の割合で添加した後、４℃で一晩インキュベートする。
そしてコーティング液を除去した後、ＢＳＡ複合体によ
ってコーティングされたミクロタイタープレートを１０
mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ 4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、
ｐＨ7.4)中に浸すことにより１回洗浄し、４℃下で該ミ
クロタイタープレートの上面を下にしてペーパータオル
上で軽く打ちつけることによりプレート内の水分を除去
する。次に、該ミクロタイタープレートに１%(w/v)のウ
シ血清アルブミンを 0.1ml／ウェルの割合で添加した
後、室温で１時間インキュベートする。そして再び４℃
で保存されたミクロタイタープレートは0.05％(w/v) の
Tween２０を含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ
4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)を用いて３回洗浄する。
次に、製造例３によって得られた第１抗体を、 0.5mg／
mlの濃度でウシ血清アルブミンを含む１０mMのリン酸緩
衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)で１
０ないし１０8 倍希釈した第１抗体調製液を上記のミク
ロタイタープレートに 0.1ml／ウェルの割合で添加した
後、室温で２時間インキュベートする。そして第１抗体
調製液を除去した後、0.05％(w/v) の Tween２０を含む
１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ
4 、ｐＨ7.4)を用いて３回洗浄する。次に、市販のペル
オキシダーゼ標識抗ウサギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）ヤ
ギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）〔生化学工業社製〕を、
0.5mg／mlの濃度でウシ血清アルブミンを含む１０mMの
リン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ
7.4)で５０００倍に希釈した第２抗体調製液を上記のミ
クロタイタープレートに、 0.1ml／ウェルの割合で添加
した後、室温で２時間インキュベートする。そして第２
抗体調製液を除去した後、0.05％(w/v) の Tween２０を
含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 Ｈ
ＰＯ4 、ｐＨ7.4)を用いて３回洗浄し、４℃下で該ミク
ロタイタープレートの上面を下にしてペーパータオル上
で軽く打ちつけることによりプレート内の水分を除去す
る。次に、0.32μｇ／mlの濃度でｏ−フェニレンジアミ
ンおよび0.01％(v/v) の濃度で過酸化水素を含む 0.5Ｍ
のクエン酸ナトリウム水溶液を使用直前に調製し、該試
薬および0.15Ｍのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ
2 ＨＰＯ4 、ｐＨ6.0)を上記のミクロタイタープレート
に各々、 0.1ml／ウェルの割合で添加した後、該ミクロ
タイタープレートをアルミホイールで被覆し、室温で３
０分間インキュベートする。そして４Ｎの硫酸 0.05ml
を加えることにより、酵素反応を停止し、ミクロタイタ
ープレート内の発色をマルチスキャニングスペクトロフ
ォトメーター（日立製作所社製）を用いて、４９２nmで
の吸光度を測定する。
ＡＰキナーゼの分析（その１） ポリスチレン製の９６穴ミクロタイタープレートに、製
造例２によって得られるＢＳＡ複合体を１〜１０μｇ／
mlの濃度で含むコーティング液〔塩化ナトリウムを１４
０mg／ｌの濃度で含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2
ＰＯ4 −Ｎａ2ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)〕を 0.1ml／ウェル
の割合で添加した後、４℃で一晩インキュベートする。
そしてコーティング液を除去した後、ＢＳＡ複合体によ
ってコーティングされたミクロタイタープレートを１０
mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ 4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、
ｐＨ7.4)中に浸すことにより１回洗浄し、４℃下で該ミ
クロタイタープレートの上面を下にしてペーパータオル
上で軽く打ちつけることによりプレート内の水分を除去
する。次に、該ミクロタイタープレートに１%(w/v)のウ
シ血清アルブミンを 0.1ml／ウェルの割合で添加した
後、室温で１時間インキュベートする。そして再び４℃
で保存されたミクロタイタープレートは0.05％(w/v) の
Tween２０を含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ
4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)を用いて３回洗浄する。
次に、製造例３によって得られた第１抗体を、 0.5mg／
mlの濃度でウシ血清アルブミンを含む１０mMのリン酸緩
衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)で１
０ないし１０8 倍希釈した第１抗体調製液を上記のミク
ロタイタープレートに 0.1ml／ウェルの割合で添加した
後、室温で２時間インキュベートする。そして第１抗体
調製液を除去した後、0.05％(w/v) の Tween２０を含む
１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ
4 、ｐＨ7.4)を用いて３回洗浄する。次に、市販のペル
オキシダーゼ標識抗ウサギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）ヤ
ギ免疫グロブリン（ＩｇＧ）〔生化学工業社製〕を、
0.5mg／mlの濃度でウシ血清アルブミンを含む１０mMの
リン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ
7.4)で５０００倍に希釈した第２抗体調製液を上記のミ
クロタイタープレートに、 0.1ml／ウェルの割合で添加
した後、室温で２時間インキュベートする。そして第２
抗体調製液を除去した後、0.05％(w/v) の Tween２０を
含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 Ｈ
ＰＯ4 、ｐＨ7.4)を用いて３回洗浄し、４℃下で該ミク
ロタイタープレートの上面を下にしてペーパータオル上
で軽く打ちつけることによりプレート内の水分を除去す
る。次に、0.32μｇ／mlの濃度でｏ−フェニレンジアミ
ンおよび0.01％(v/v) の濃度で過酸化水素を含む 0.5Ｍ
のクエン酸ナトリウム水溶液を使用直前に調製し、該試
薬および0.15Ｍのリン酸緩衝液（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ
2 ＨＰＯ4 、ｐＨ6.0)を上記のミクロタイタープレート
に各々、 0.1ml／ウェルの割合で添加した後、該ミクロ
タイタープレートをアルミホイールで被覆し、室温で３
０分間インキュベートする。そして４Ｎの硫酸 0.05ml
を加えることにより、酵素反応を停止し、ミクロタイタ
ープレート内の発色をマルチスキャニングスペクトロフ
ォトメーター（日立製作所社製）を用いて、４９２nmで
の吸光度を測定する。
【００２４】試験例４ 間接競合阻害法による活性型Ｍ
ＡＰキナーゼの分析（その２） 製造例３によって得られた第１抗体を、１０mg／mlの濃
度でウシ血清アルブミンを含む１０mMのリン酸緩衝液
（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)で１０倍
希釈系列を調製する。一方、製造例１によって得られる
ＫＬＨ複合体を、１０mg／mlの濃度でウシ血清アルブミ
ンを含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2ＰＯ4 −Ｎａ
2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)で対応する１０倍希釈系列を調製
する（標準化溶液）。前者の第１抗体調製液と後者のＫ
ＬＨ複合体調製液（標準化溶液）混合し、約２０℃で一
晩インキュベートする。次に、ＢＳＡ複合体によってコ
ーティングされたミクロタイタープレートに、上記の反
応液を 0.1ml／ウェルの割合で添加した後、２０℃で１
時間インキュベートする。そして反応液を除去した後、
0.05％(v/v) の Tween２０を含む１０mMのリン酸緩衝液
（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)を用いて
３回洗浄する。以下の操作（たとえば、第２抗体との反
応、標識酵素による発色反応等）は試験例３と同様に行
い、ＫＬＨ複合体の定量用検量線を作成する。
ＡＰキナーゼの分析（その２） 製造例３によって得られた第１抗体を、１０mg／mlの濃
度でウシ血清アルブミンを含む１０mMのリン酸緩衝液
（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)で１０倍
希釈系列を調製する。一方、製造例１によって得られる
ＫＬＨ複合体を、１０mg／mlの濃度でウシ血清アルブミ
ンを含む１０mMのリン酸緩衝液（ＮａＨ2ＰＯ4 −Ｎａ
2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)で対応する１０倍希釈系列を調製
する（標準化溶液）。前者の第１抗体調製液と後者のＫ
ＬＨ複合体調製液（標準化溶液）混合し、約２０℃で一
晩インキュベートする。次に、ＢＳＡ複合体によってコ
ーティングされたミクロタイタープレートに、上記の反
応液を 0.1ml／ウェルの割合で添加した後、２０℃で１
時間インキュベートする。そして反応液を除去した後、
0.05％(v/v) の Tween２０を含む１０mMのリン酸緩衝液
（ＮａＨ2 ＰＯ4 −Ｎａ2 ＨＰＯ4 、ｐＨ7.4)を用いて
３回洗浄する。以下の操作（たとえば、第２抗体との反
応、標識酵素による発色反応等）は試験例３と同様に行
い、ＫＬＨ複合体の定量用検量線を作成する。
【００２５】
【発明の効果】本発明抗体を利用することにより、簡便
でかつ迅速に処理できる精度の高い活性型ＭＡＰキナー
ゼの分析が可能となった。
でかつ迅速に処理できる精度の高い活性型ＭＡＰキナー
ゼの分析が可能となった。
【図１】 イムノブロット法による活性型ＭＡＰキ
ナーゼの分析結果を示す模式図である。レーンＡはアフ
リカツメガエル未成熟卵、レーンＢはアフリカツメガエ
ル未受精卵、レーンＣは何らの刺激も与えていないラッ
ト由来３Ｙ１細胞株、レーンＤは上皮細胞増殖因子によ
って刺激されたラット由来３Ｙ１細胞株を試料とした。
レーンＢおよびＤでは、第２抗体の標識による発色反応
が認められたが、一方、レーンＡおよびＣでは、第２抗
体の標識による発色反応が全く認められなかった。ま
た、アフリカツメガエルのＭＡＰキナーゼは１種類であ
り、ラットのＭＡＰキナーゼは２種類であるが、レーン
Ｂでは１本、レーンＤでは２本のバンド（活性型ＭＡＰ
キナーゼ）がそれぞれ認められた。
ナーゼの分析結果を示す模式図である。レーンＡはアフ
リカツメガエル未成熟卵、レーンＢはアフリカツメガエ
ル未受精卵、レーンＣは何らの刺激も与えていないラッ
ト由来３Ｙ１細胞株、レーンＤは上皮細胞増殖因子によ
って刺激されたラット由来３Ｙ１細胞株を試料とした。
レーンＢおよびＤでは、第２抗体の標識による発色反応
が認められたが、一方、レーンＡおよびＣでは、第２抗
体の標識による発色反応が全く認められなかった。ま
た、アフリカツメガエルのＭＡＰキナーゼは１種類であ
り、ラットのＭＡＰキナーゼは２種類であるが、レーン
Ｂでは１本、レーンＤでは２本のバンド（活性型ＭＡＰ
キナーゼ）がそれぞれ認められた。
【図２】 本発明抗体の不活性型ＭＡＰキナーゼに
対する交差反応性の程度を検討した結果を示す模式図で
ある。レーンＡおよびＢはアフリカツメガエル未受精卵
からの抽出液（それぞれ１／１００，１／２５量）、レ
ーンＣ、Ｄ、ＥおよびＦはアフリカツメガエル未成熟卵
（それぞれ１／１００，１／２５，１／５，１量）を電
気泳動した場合である。レーンＡおよびＢでは、ＭＡＰ
キナーゼのバンドが特異的に認められが、一方、レーン
Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦでは、ＭＡＰキナーゼのバンドが特
異的に認められなかった。
対する交差反応性の程度を検討した結果を示す模式図で
ある。レーンＡおよびＢはアフリカツメガエル未受精卵
からの抽出液（それぞれ１／１００，１／２５量）、レ
ーンＣ、Ｄ、ＥおよびＦはアフリカツメガエル未成熟卵
（それぞれ１／１００，１／２５，１／５，１量）を電
気泳動した場合である。レーンＡおよびＢでは、ＭＡＰ
キナーゼのバンドが特異的に認められが、一方、レーン
Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦでは、ＭＡＰキナーゼのバンドが特
異的に認められなかった。
【図３】 本発明抗体を用いた免疫沈降法による活
性型ＭＡＰキナーゼの分析結果（イムノアッセイ法）を
示す図である。レーンＡは、アフリカツメガエル未受精
卵からの抽出液をそのまま電気泳動した場合である。レ
ーンＢ〜Ｆは、アフリカツメガエル未受精卵からの抽出
液を本発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を電気泳動
した場合である。レーンＡでは、ＭＡＰキナーゼおよび
それ以外の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白質のリン酸
化がともに認められた。一方、レーンＢ〜Ｆでは、ＭＡ
Ｐキナーゼ以外の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白質の
リン酸化は認められなかった。
性型ＭＡＰキナーゼの分析結果（イムノアッセイ法）を
示す図である。レーンＡは、アフリカツメガエル未受精
卵からの抽出液をそのまま電気泳動した場合である。レ
ーンＢ〜Ｆは、アフリカツメガエル未受精卵からの抽出
液を本発明抗体を用いて免疫沈降させた溶液を電気泳動
した場合である。レーンＡでは、ＭＡＰキナーゼおよび
それ以外の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白質のリン酸
化がともに認められた。一方、レーンＢ〜Ｆでは、ＭＡ
Ｐキナーゼ以外の蛋白質によるミエリン塩基性蛋白質の
リン酸化は認められなかった。
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名)
C07K 16/40
ＢＩＯＳＩＳ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＷＰＩＤ
Ｓ（ＳＴＮ)
Claims (4)
- 【請求項１】活性型ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩ
ＩとサブドメインＶＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を
含む抗原性ペプチドを直接またはスペーサーを介して間
接的に高分子量担体分子に結合せしめた複合体を抗原と
して製造された抗体であって、 （１）特有なアミノ酸配列がN-Thr(PO3H2)-Glu-Tyr(PO3
H2)-Cである、 （２）０．１％(w/v)ＳＤＳ存在下では活性型ＭＡＰキ
ナーゼと反応し、非存在下では実質的に反応しない、 （３）不活性型ＭＡＰキナーゼに対して、交差反応性を
実質的に示さない、 ことを特徴とする、活性型ＭＡＰキナーゼを認識する抗
体。 - 【請求項２】活性型ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩ
ＩとサブドメインＶＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を
含む抗原性ペプチドを直接またはスペーサーを介して間
接的に高分子量担体分子に結合せしめた複合体に対して
哺乳動物を免疫した後、該哺乳動物から血液を採取し
て、該血液から分離・精製することを特徴とする請求項
１記載の抗体の製造方法。 - 【請求項３】活性型ＭＡＰキナーゼに作用させた請求項
１記載の抗体または該抗体に対する抗体を、それら抗体
が有する標識によって検出することを特徴とする活性型
ＭＡＰキナーゼの免疫学的検出方法。 - 【請求項４】活性型ＭＡＰキナーゼのサブドメインＶＩ
ＩとサブドメインＶＩＩＩの間の特有なアミノ酸配列を
含む抗原性ペプチドが直接、あるいはスペーサーおよび
／または請求項１記載の抗体によって認識されない高分
子量担体分子を介して間接的に結合されてなる固体支持
材、請求項１記載の抗体を含有する試薬、および請求項
１記載の抗体に対する標識された抗体を含有する試薬を
含有することを特徴とする活性型ＭＡＰキナーゼの免疫
学的検出・分析用キット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13605294A JP3419084B2 (ja) | 1994-06-17 | 1994-06-17 | 活性型ｍａｐキナーゼを認識する抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13605294A JP3419084B2 (ja) | 1994-06-17 | 1994-06-17 | 活性型ｍａｐキナーゼを認識する抗体 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH085632A JPH085632A (ja) | 1996-01-12 |
| JP3419084B2 true JP3419084B2 (ja) | 2003-06-23 |
Family
ID=15166062
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP13605294A Expired - Fee Related JP3419084B2 (ja) | 1994-06-17 | 1994-06-17 | 活性型ｍａｐキナーゼを認識する抗体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3419084B2 (ja) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6001580A (en) * | 1995-03-28 | 1999-12-14 | Takeda Chemical Industries, Inc. | Method for assaying ERK2 map kinase |
| JP5576585B2 (ja) * | 2007-05-31 | 2014-08-20 | 栄研化学株式会社 | リン酸化タンパク質免疫測定用試薬 |
| US8796428B2 (en) * | 2008-11-26 | 2014-08-05 | Julius-Maximilians-Universitaet Wuerzburg | Erk1/2 posphorylation site specific antibody |
-
1994
- 1994-06-17 JP JP13605294A patent/JP3419084B2/ja not_active Expired - Fee Related
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ＥＭＢＯ Ｊ．１０（４）（１９９１）ｐ．８８５−８９２ |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH085632A (ja) | 1996-01-12 |
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