JP3001338B2 - 新規の微生物株、その菌株を含む細菌製剤、および酵母およびカビの制御のための上記菌株および製剤の使用 - Google Patents
新規の微生物株、その菌株を含む細菌製剤、および酵母およびカビの制御のための上記菌株および製剤の使用Info
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る優れた阻害効果を持つ新規微生物株、上記菌株のみま
たは他の細菌および/または添加物と組み合わせた細菌
製剤、および酵母およびカビの阻害のための上記菌株お
よび上記細菌製剤の使用に関するものである。
び効用は、例えば、酵母およびカビによる損傷によって
損なわれる場合が多い。酵母およびカビは食料品の生産
においても問題を生じ得る。特に発酵業においては有害
な効果が大きい。
プロピオン酸が食料品中の酵母およびカビの阻害に多く
使用されている。しかし、この種の添加剤の使用を縮小
する傾向があり、例えば、ヨーロッパ諸国の中にはソル
ビン酸塩の使用を禁止しているところもある。プロピオ
ン酸塩の欠点には、常に十分な効果がもたらされるとは
限らない事実および食料品にフレーバーを与えるという
事実が含まれる。様々な国における異なる食料品法律と
同様に、添加物に対する反発が増加しているという消費
者態度も考慮にいれなければならないことから、本工業
は、こうした添加物にとって代わる天然の生物防腐剤を
見出だすことに凌ぎを削ってきた。
ルおよびバクテリオシンなどの様々な抗菌性化合物を生
産することが知られており、これらを食料品の貯蔵寿命
の改善のための添加物として利用することが試みられて
きた。商業的に有用なのは、細菌ラクトコッカスラクテ
ィス(Lactococcus lactis)により
生産されるナイシンの精製物を含みグラム陽性菌のみに
効果を持つ(従って、カビや酵母の繁殖には阻害効果を
持たない)産物ニサプリン(Nisaplin(Apl
in&Barrett)である。
てみることによる、例えば飼料の保存において乳酸菌を
大いに利用するような様々な努力によりなされてきた。
しかし、そのような組み合わせは酵母やカビの繁殖に対
する阻害効果を持たず、それ故、酵母およびカビによっ
てもたらされる問題への解決策を提供するものではなか
った。
トバシルス(Lactobacillus)種の培養お
よび増殖培地中に放出される産物の単離によって、酵母
およびカビの阻害産物を調製するプロセスを開示してい
る。これらの産物は低分子量化合物(MW<1000)
の複雑な混合物であると述べられており、多段階プロセ
ス(ブタノールおよびエタノールを用いて行なわれる抽
出段階に加えて、カラムクロマトグラフィーおよびアセ
トン沈殿または透析段階を含む)により増殖培地から単
離される。このような複雑なプロセスは大量生産には適
さない。上記出願では、ペニシリウムオキザリカム(P
enicillium oxalicum)の胞子が阻
害効果を示すものとして用いられている。
およびカビにより引き起こされる問題の新しい解決策を
見出だすことであった。種々の乳酸菌およびプロピオン
菌の抗菌性因子の、酵母およびカビの繁殖に対する効果
が研究されたとき、ラクトバシルス属の新規の細菌株、
ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
(Lactobacllus casei ssp.r
hamnosus LC−705)が、カビ(例えばペ
ニシリウム(Penicillum)種、アスペルギル
ス(Aspergillus)種、クラドスポリウム
(Cladosporium)種、およびフサリウム
(Fusarium)種というカビ))および酵母(例
えばカンジダ(Candida)種)に対し、特にその
発酵培地への細胞懸濁液として使用した場合に、優れた
阻害効果を持つことが予期せず見出だされた。
サスLC−705株の効果がプロピオニバクテリウム
(Propionibacterium)属の細菌、特
にプロピオニバクテリウムシェルマニーJS株(Pro
pionibacteriumshermanii J
S)によって本質的に改良され得ることが予期せず見出
だされた。本効果はラクトバシルス カゼイ亜種ラムノ
サス LC−705株を別のラクトバシルス カゼイ
株、特にラクトバシルス カゼイ亜種シュードプランタ
ルム1931株(pseudoplantarum 1
931)と組み合わせることによっても改良することが
できる。
ルアラニンなどの、酵母およびカビの阻害に使用される
既知の物質によっても、上記株または上記組み合わせの
効果を改善することが可能である。
新規の細菌株、ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサス
LC−705(DSM7061)である。
ス カゼイ亜種ラムノサス LC−705(DSM70
61)のみ、もしくはプロピオニバクテリウム属の細菌
または他のラクトバシルス カゼイ細菌と組み合わせた
(好適には発酵培地への細胞懸濁液としての)細菌製剤
である。
繁殖を阻害する方法、ラクトバシルス カゼイ亜種ラム
ノサス LC−705株(DSM7061)のみ、もし
くはプロピオニバクテリウム属の細菌または他のラクト
バシルス カゼイ細菌と組み合わせた(好適には発酵培
地への細胞懸濁液としての)細菌製剤を用いること特徴
であるような方法である。
および細胞培養物コレクションGmbH(Deutsc
he Sammlung von Mikroorga
nismen undZellkulturen Gm
bH)(DSM)に寄託番号DSM7061として19
92年5月13日に寄託され、以下の性質を持っている
新規のラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサス LC−
705株に基づいている: −グラム陽性の短い鎖状桿菌 −ホモ発酵性 −良好増殖温度15−45℃ −本菌株はタンパク質加水分解活性を持たない −アルギニンからアンモニアを生産しない −カタラ−ゼ陰性 −MRS培地(LAB M)で増殖させた場合、本菌株
はL(+)立体配置の光学活性を持つ1.6%乳酸を生
産する;本菌株はクエン酸(0.169%)を分解しジ
アセチルおよびアセトインを生産する;本菌株は少なく
とも以下の炭水化物(糖、糖アルコール)を発酵する:
リボース、ガラクトース、D−グルコ−ス、D−フルク
トース、D−マンノース、L−ソルボース、ラムノー
ス、マンニトール、ソルビトール、メチル−D−グルコ
シド、N−アセチルグルコサミン、アミグダリン、アル
ブチン、エスクリン、サリシン、セロビオース、マルト
ース、ラクトース、ショ糖、トレハロース、メレジトー
ス、ジェンチオビオース、D−トゥラノースおよびD−
タガロース −5%の塩分でも十分生存可能、10%の塩分でもかな
り生存可能。
S株は、ドイツ国微生物および細胞培養コレクションG
mbHに寄託番号DSM7067として1992年5月
13日に寄託され、以下の性質を持っている: −グラム陽性の短い桿菌 −グルコース、フルクトース、ガラクトースおよびラク
トースを発酵する −乳酸をよく発酵する −最適増殖温度32℃。
ンタルム1931株は、フィニッシュデイリーズ セン
トラル コオペラティブ ソサイエティ バリオ(Fi
nnish Dairies´ Central Co
−Operative Society Valio)
から生産物番号1931で入手可能であり、以下の性質
を持っている: −グラム陽性の短い桿菌 −任意のヘテロ発酵性 −良好増殖温度15−45℃ −タンパク質加水分解活性なし −アルギニンからアンモニアを生産しない −D(−)およびL(+)乳酸を生産する。
C−705株は、例えばホエーをベースにした増殖培地
で30−37℃でpH調整ありまたはなしで2から3日
間増殖させることにより産生される。細胞を含む発酵培
地を回収し例えば濃縮、または凍結乾燥して使用する。
濃縮はミクロ濾過装置またはこれに相当する他の方法を
用いて行なってもよい。ラクトバシルス カゼイ亜種ラ
ムノサスLC−705株の細胞を含む発酵培地は、冷所
(冷蔵庫の温度)で保存した場合は最低2か月、そして
凍結乾燥の場合はもっと長く、その酵母およびカビ阻害
活性を保持している。
れる他の細菌または添加物を、この細胞含有発酵培地に
加えることができる。細菌が使用される場合、上記の他
の細菌株をラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC
−705株と同時にまたは独立して培養することができ
る。本菌株の同時培養はその単純性および容易性から有
利である。一方、本菌株の独立培養は、必要に応じて細
菌製剤に含ませる本菌株の割合を変えることが可能であ
る。両方の細菌の凍結乾燥製剤を使用し、これらを同時
にまたは独立に再構成することは当然可能である。
クトバシルス カゼイ細菌の別の菌株の細胞を、ラクト
バシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株を含む
発酵培地に加えること、即ち本菌株をプロピオニバクテ
リウム属の細菌またはラクトバシルス カゼイ細菌の別
の菌株と共に培養するのが望ましい。好適な製剤は、ラ
クトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株お
よびプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株また
はラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705
株およびラクトバシルス カゼイ亜種シュードプランタ
ルム1931株を含むものである。
種ラムノサスLC−705株を含む発酵培地にプロピオ
ニバクテリウム シェルマニーJS株を加えること、即
ち2つの菌株を共に培養することである。
C−705株のみまたはそれと例えばプロピオニバクテ
リウム シェルマニーJS株などのプロピオニバクテリ
ウム属の細菌またはラクトバシルス カゼイ亜種シュー
ドプランタルム1931株などのラクトバシルス カゼ
イ細菌の別の菌株を組み合わせて含む細菌製剤は、多く
の工業分野における酵母およびカビによってもたらされ
る問題の予防のため(例えば、製造過程において酵母お
よびカビの繁殖を阻害するため、または例えば食品、発
酵および飼料工業の産物について、酵母およびカビによ
る腐敗を阻害するため)に利用することができる。
載されるであろう。これらの実施例は本発明を明らかに
するためにのみあるもので、その範囲を制限するものと
して理解されるべきではない。
株の産生 5%のホエーパーミエート(Valio)、2%のカゼ
イン水解物(Valio)および1%の酵母エキストラ
クト(Difco)を滅菌水中に含む、ホエーをベース
とした増殖培地でラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサ
スLC−705株を増殖させた。増殖において、増殖培
地のpHを自動pH調整機により4.5に維持した。培
養はバッチ培養として30−37℃で2日間行なわれ、
その後ステーショナリーな増殖ステージにおいて細胞を
回収した。細胞含有発酵培地中の細菌含有量は109C
FU/mlのオーダーであった。この細胞含有発酵培地
はそのままで、または濃縮して使用することができる。
濃縮液の調製にあたっては、細胞含有発酵培地を例えば
10−15倍濃縮した。濃縮はミクロ濾過装置を用いて
行なった。これに相当する他の方法を用いることもでき
る。この濃縮液の細菌含有量は1010CFU/mlのオ
ーダーであった。本発酵培地はそのままで、または濃縮
液として、約4℃でまたは凍結乾燥して保存した。
lask)の使ってプロピオン発酵培地中で3日間、プ
ロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を増殖させ
た。本プロピオン発酵培地は、0.5%のトリプトン
(Difco)、1.0%の酵母エキストラクト(Di
fco)および4.1%の乳酸ナトリウム(30%、V
alio)を滅菌水中に含むものであった。栄養組成に
おける変動は可能である。増殖はステーショナリー期に
あるときに、発酵培地中の細胞を回収した。プロピオニ
バクテリウム シェルマニーJS含有量は1010CFU
/mlのオーダーであった。細胞含有発酵培地はそのま
まで、または濃縮して使用することができる。濃縮は実
施例1に示したようにして行なうことができる。この細
胞懸濁液(細胞の入った発酵培地)をそのままで、また
は濃縮して約4℃の温度で保存することができる。
株とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を含
む製剤の産生 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を、最
終産物のプロピオン酸の必要な含有量に応じて1:2ま
たは1:5の比率でホエーをベースにした発酵培地に接
種した。ホエーをベースにした増殖培地の組成は、1)
3.5%のホエーパーミエート、1.0%のカゼイン水
解物、1.0%の酵母エキストラクトおよび0.5%の
クエン酸ナトリウム、2)3.5%のホエーパーミエー
ト、1.0%のカゼイン水解物、1.0%の酵母エキス
トラクト、0.5%のクエン酸ナトリウムおよび0.5
%の塩化ナトリウム、もしくは3)4.0%のホエーパ
ーミエート、1.0%のカゼイン水解物および1.0%
の酵母エキストラクトであった。
がら、菌株を30℃で3日間培養した。培養の最後に、
細胞を含んだ発酵培地を回収した。このような細胞含有
発酵培地は冷蔵した場合、最低2か月は有用である。
大きい細胞含有発酵培地を、カビおよび酵母の増殖を阻
害する製剤として使用した。本製剤の乳酸含有量は約
0.8−1.3%、プロピオン酸の含有量は約200−
550mg/100g(使用した接種量(例えば1%ま
たは5%)に依存する)、および酢酸含有量は約150
−250mg/100gであった。
その活性を完全には失わないが、70℃での処理にはそ
の酵母およびカビの阻害活性が明らかに損なわれる。
株とラクトバシルスカゼイ亜種シュードプランタルム
1931株を含む製剤の産生 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とラクトバシルス カゼイ亜種シュードプランタルム1
931株を、5.0%のホエーパーミエート、2.0%
のカゼイン水解物および1.0%の酵母エキストラクト
を含むホエーをベースにした増殖培地において30−3
7℃で2−3日間増殖させた。この細胞を含む発酵培地
をミクロ濾過装置で濃縮した。この発酵培地はそのまま
で(細菌含有量約109CFU/mlのオーダー)また
はカビおよび酵母の阻害に関して約1010CFU/ml
の細胞含有量になるように濃縮して使用した。
を用いたカビおよび酵母の阻害 パンから単離したカンジダ属の酵母と同じく、パンおよ
びチーズなどの食料品から単離したペニシリウム、アス
ペルギルスおよびクラドスポリウム属のカビ、およびサ
イレージから単離したフサリウム種のカビを阻害検定に
使用した。 フサリウムカビを除き、これらのカビおよ
び酵母を実際の検定前にマルト寒天(MEA)スロープ
で2回再増殖させた。最終培養は25℃で2から3日間
行なわれた。マルト寒天は2%のマルトエキストラクト
(Difco)、0.1%のペプトン(Difco)、
2.0%のグルコースおよび1.5%の寒天を含むもの
であった。フサリウムカビはポテトデキストロース寒天
(PD寒天、LAB M)で再増殖させた。
溶液をカビまたは酵母スロープにピペットで加え、スロ
ープ上の増殖物を滅菌ループで混ぜながら上記溶液中に
注意深く懸濁した。この懸濁液1mlを100mlの滅
菌した0.9%塩化ナトリウム溶液にピペットで移し
た。この段階でのカビ/酵母含有量は105−106CF
U/mlであった。このベース懸濁液0.1mlを各検
定皿に用いた。
09CFU/ml)1ml(または0.5ml)をディ
ッシュにピペットで入れ、そこに45℃のPC寒天(プ
レートカウントアガー(Plate Count Ag
ar),Difco)10mlを乗せ、寒天を固化し
た。フサリウムカビについては、PD寒天(ポテトデキ
ストロースアガー、LAB M)を使用した。上記カビ
または酵母懸濁液0.1mlを固まった寒天上にピペッ
トで加え、ディッシュ上に均一に延ばした、このディッ
シュを30℃で1日培養しそれから25℃で2日培養し
た。培養後、このディッシュを試験製剤を加えていない
コントロールディッシュと比較した。コントロールと比
較したカビまたは酵母の増殖強度をディッシュから読み
取った。
シルス カゼイ亜種ラムノサス LC−705株の酵母
およびカビに対する阻害効果を表1に示す。表中の酵母
およびカビの種の略号は、カビではペニシリウム種1
(16A)、ペニシリウム種2(114)、ペニシリウ
ム ディジタトゥム(digitatum)(L5)、
アスペルギルス ニガー(niger)(L22)、ク
ラドスポリウム種1(P1)、ペニシリウム種3(MZ
1)およびフサリウム種1(FH−1)そして酵母では
カンジダ種1(L9)およびカンジダルシタニエー(C
andida lusitaniae)(L18)であ
る。表に示された結果の注釈は以下の通りである:++
+=コントロールと同様非常に強いカビ繁殖;++=強
いカビ繁殖;+=弱いカビ繁殖;−=カビ繁殖なし。
スLC−705株はペニシリウム種(16AおよびMZ
1)、クラドスポリウム種(P1)およびフサリウム
(FH−1)カビおよびカンジダ酵母を阻害した。一
方、5%添加ではフサリウム(FH−1)カビのみの繁
殖が完全に阻害された。
株とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株
(1:2)を組み合わせたカビおよび酵母の阻害 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株の製剤
(LC705とJS製剤,1:2)を実施例3のように
して産生した。細胞懸濁液および細胞懸濁液濃縮液の両
方について、本製剤の10%濃度での酵母およびカビに
対する阻害効果を、ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノ
サスLC−705株について実施例5で記載したのと同
様にして検定した。その結果を表2に示す。表に使われ
ているカビおよび酵母の種の略号および提示されている
結果の注釈は上記実施例5と同様である。表中に使われ
ているSSという略号は細胞含有発酵培地を示し、Ko
nsという略号は濃縮された細胞含有発酵培地を示し、
SNという略号は細胞を含まない発酵培地を示す。
ム(16A,L5およびMZ1)、クラドスポリウム
(P1)、アスペルギルス ニガー(L22)およびフ
サリウム(FH−1)の増殖が全体的に阻害された。ま
た酵母(L9)および(L18)の増殖も全体的に阻害
された。濃縮した細胞懸濁液で処理したディッシュの
内、2つのディッシュにおいてカビ繁殖が、1つのディ
ッシュニおいて酵母の繁殖が見られた。細胞培養液の上
清(これより細胞は遠心により除かれている)(SN)
はカビおよび酵母の増殖に対して阻害効果を持たなかっ
た。
株とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株
(1:5)を組み合わせたカビおよび酵母の阻害 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株の製剤
(LC705とJS製剤,1:5)を実施例3のように
して産生した。細胞懸濁液および細胞懸濁液濃縮液の両
方について、本製剤の5%濃度での酵母およびカビに対
する阻害効果を、ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサ
スLC−705株について実施例5で記載したのと同様
にして検定した。その結果を表3に示す。表に使われて
いるカビおよび酵母の種の略号および提示されている結
果の注釈および他の略号は上記実施例5および6と同様
である。
ス ニガー(L22)、ペニシリウム種(MZ1)、ク
ラドスポリウム種(P1)およびフサリウム種(FH−
1)の増殖が全体的に阻害された。また酵母カンジダ種
1(L9)の増殖も全体的に阻害された。カビペニシリ
ウム種2およびペニシリウム ディジタトゥム(114
およびL5)および酵母カンジダ ルシタニエー(L1
8)の増殖は明らかに減少した。細胞培養液の上清(そ
れからは細胞は遠心により除かれている)(SN)はカ
ビおよび酵母の増殖に対する阻害効果を持たなかった。
株とプロピオニバクテリウム シェルマニー JS株
(1:1)を組み合わせたカビおよび酵母の阻害 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株をそれ
ぞれ実施例1および実施例2のようにして培養し、その
後細胞を含む発酵培地を1:1の比率で混合した。本混
合物のカビおよび酵母に対する阻害効果を、ラクトバシ
ルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株について実
施例5で記載したのと同様にして検定した。その結果を
表4に示す。表に使われているカビおよび酵母の種の略
号および提示されている結果の注釈および他の略号は上
記実施例5と同様である。
酵母カンジダ種1(L9)の増殖およびカビアスペルギ
ルス ニガー(L22)、クラドスポリウム種(P1)
およびペニシリウム種3(MZ1)の増殖を全体的に阻
害した。5%添加の場合、本製剤はカビL22,P1お
よびMZの増殖を明らかに減少させた。
株とラクトバシルス カゼイ亜種シュードプランタルム
1931株を組み合わせたカビおよび酵母の阻害 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とラクトバシルス カゼイ亜種シュードプランタルム1
931株の製剤(LC705と1931製剤,1:1)
を実施例4のようにして産生した。細胞懸濁液および細
胞懸濁液濃縮液の両方について、本製剤の10%濃度で
の酵母およびカビに対する阻害効果を、ラクトバシルス
カゼイ亜種ラムノサスLC−705株について実施例
5で記載したのと同様にして検定した。その結果を表5
に示す。表に使われているカビおよび酵母の種の略号、
提示されている結果の注釈およびその他の略号は上記実
施例5および6と同様である。
なのは濃縮した細胞含有発酵培地(細胞濃縮液)であっ
た。そのままの細胞含有発酵培地は濃縮液に比べ明らか
に弱い活性しか持っておらず、細胞培養液の上清(これ
より細胞は遠心により除かれている)(SN)はカビお
よび酵母の増殖に対して阻害効果を持たなかった。
株を含む製剤のプレドライサイレージの産生における利
用 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を発酵
槽内でpH4.5、30℃で3日間増殖させた。増殖培
地の組成は以下の通りであった:4%のホエーパーミエ
ート、1%のカゼイン水解物および1%の酵母エキスト
ラクト。LC−705については1.2×109/m
l、JSについては1.1×109/mlの細胞含有量
を持つ細胞懸濁液(細胞を含む発酵培地)を製剤として
使用した。
C−705株とラクトバシルス カゼイ亜種シュードプ
ランタルム1931株をpH4.5、30℃で2日間発
酵槽内で培養し、総含有量約2×1011CFU/mlま
で増殖させた。増殖培地の組成は以下の通りであった:
4%のホエーパーミエート、1%のカゼイン水解物、1
%の酵母エキストラクトおよび0.1%のツイーン(T
ween)80。2×1011CFU/mlの細胞含有量
を持つ細胞濃縮液を製剤として使用した。 ラクトバシ
ルスプランタルム(Lactobacillus pl
antarum) LB7.5−5株を、5%のホエー
パーミエート、0.5%のカゼイン水解物、0.25%
の酵母エキストラクト、0.05g/lのMnSO4お
よび1%のツイーン80からなるH増殖培地を含む発酵
槽内で、pH5.4、30℃で20時間増殖させた。7
×1010CFU/mlの細胞含有量を持つ細胞懸濁液を
製剤として使用した。
ープ上で25℃で3日間増殖させ、その後、増殖したも
のを滅菌した0.9%塩化ナトリウム溶液に懸濁した。
懸濁液中のカビ含有量は約106CFU/mlであっ
た。サイレージには本含有量は約10−100CFU/
gであった。
ージ(15kg)に混合し、その後、サイレージをサイ
ロにぎっしり詰めた。結果は下記の表6から8に示す。
サイロ1は接種していないコントロールサイロである。
サイロ2は製剤LC−705+JS(2.5%)および
カビF67で処理した試料である。サイロ3は製剤LC
705+1931(2.5%)およびカビF67で処理
した試料である。サイロ4は製剤LB7.5−5(2.
5%)およびいカビF67で処理した試料である。サイ
ロ5はカビF67(10−100CFU/ml)で処理
した試料である。試料は、サイロを閉める前の添加直
後、および添加後10週してからサイロから採取した。
以下の組成を持つHDK増殖培地で決定した:0.5%
酵母エキストラクト、2%デキストロースおよび100
mg/mlクロラムフェニコール(1.5%寒天中)。
カビフサリウムはPD寒天で決定した。Colifor
m細菌はVRB寒天(バイオレット レッド バイルア
ガー(Violet Red Bile Agar),
LAB M)で、乳酸菌はMRS寒天で、プロピオン細
菌は以下の組成を持つ乳酸ナトリウム増殖培地で決定し
た:0.5%トリプトン(Difco)、1.25%の
30%乳酸ナトリウムおよび1%酵母エキストラクト
(1.5%寒天中)。細菌全体はPC寒天で決定した。
た。表面に見た目に白い増殖物がサイロ2を除くすべて
のサイロに生じていた(上記増殖物は明らかに酵母であ
る)。サイロ1および5は最も多くの酵母増殖物を含ん
でいた。微生物学的決定(決定感度<1000)から、
サイロ2とサイロ3は好気性細菌または酵母およびカビ
を含んでいなかった。サイロ1、4および5は開封時に
好気性微生物を持っていた。
後)のサイロから得られた決定から、酵母増殖はすべて
のサイロに及んでいた。酵母含有量はサイロ2で最も低
かった。カビ増殖はサイロ3、4および5に及んでい
た。サイロ2に添加された接種物はカビの増殖を阻害し
ていた。
生における、ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスL
C−705株を含む製剤の使用 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を発酵
槽内でpH4.5、30℃で3日間増殖させた。増殖培
地の組成は以下の通りであった:3.5%ホエーパーミ
エート、1.5%カゼイン水解物、1.0%酵母エクス
トラクトおよび0.5%クエン酸ナトリウム(Difc
o)。LC−705について5×108、JSについて
2×101 0/mlの細胞含量を持つ細胞懸濁液を製剤と
して使用した。
含量40%のプレドライ丸形バールサイレージに添加し
た。時間表にしたがって滅菌ボアで丸形バールから試料
を採取した。防腐剤なしで保存したサイレージを対照試
料として使用した。微生物学的結果を下記の表9および
10に示す。
方法により行なわれた。
ルサイレージにはカビも酵母も検出できなかったが、こ
の保存期間では対照サイレージにおける酵母含量は0か
ら7300CFU/g、カビ含量は10から1600C
FU/gの間であった。ラクトバシルス カゼイ亜種ラ
ムノサスLC−705株を含む製剤で処理したサイレー
ジの全体としての微生物学的品質は、防腐剤無しのサイ
レージのそれより優れたものであった。
イ亜種ラムノサスLC−705株を含む製剤の使用 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を、
3.5%ホエーパーミエート、1.0%カゼイン水解
物、1.0%酵母エクストラクトおよび0.5%クエン
酸ナトリウム(Difco)を含むホエーベースの増殖
培地に1:5の比率で接種した。この菌株をpH4.
5、30℃で3日間増殖させた。細胞を含む発酵培地を
回収し、サワーブレッドの生地にそのまま加えた。本製
剤の細菌含量はLC−705について3×109CFU
/ml、JSについて4×109CFU/mlであっ
た。
分量として計算に入れた。
して使用した。このパンをトーストパンに焼き上げた;
24のパンの塊(ローフ)をすべて貯蔵し、86のロー
フをスライスした。パンのローフのカビ繁殖が21日で
視覚的に観察された。結果を表11に示す。
た。最初のカビは6日後に対照ローフで検出され、試験
ローフでは10日後にようやく検出された。すべての対
照ローフの内、ほぼ50%が10日後に腐敗し、一方本
製剤で処理したローフの50%が腐敗したのは17日後
であった。スライスしたローフの内、対照ローフは非常
に早く腐敗した。1日ごとに観察した対照ローフ5パッ
クの内、5パックすべてが10日および11日後に既に
腐敗し、従って対照ローフの観察はここで中断された。
本製剤を添加されたローフの内、初めは13日後に5パ
ックすべてが腐敗したが、次の日のローフの内、3つし
か腐敗していなかった。
イ亜種ラムノサスLC−705株を含む製剤の使用 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株
とプロピオニバクテリウム シェルマニーJS株を、
3.5%ホエーパーミエート、1.0%カゼイン水解
物、1.0%酵母エクストラクトおよび0.5%クエン
酸ナトリウムを含むホエーベースの増殖培地に1:5の
比率で接種した。この菌株をpH4.5、30℃で3日
間培養した。細胞を含む発酵培地を濃縮し凍結乾燥し
た。凍結乾燥した製剤の細菌含量はLC−705および
JSについて2×1011CFU/gであった。
5%および0.5%量だけ生地に添加した。業者の市販
の類似小麦パンを対照パンとして使用した。パンをトー
ストパンに焼き上げた(17ローフ)。パンローフのカ
ビ繁殖を視覚的に9日間観察した。パンの味も評価し
た。 結果を表12に示す。
した。本製剤で処理した小麦ローフの内、0.25%製
剤添加されたものが最もよく保存された。これらのロー
フの50%以上が8日までカビに繁殖されなかったが、
対照ローフの50%以上が6日後にカビ繁殖されてい
た。本製剤で処理したパンローフの総カビ含量もまた、
対照ローフより小さかった。本製剤は小麦パンの味、香
りも改善した。
Claims (19)
- 【請求項1】 酵母及びカビ阻害効果を有するラクトバ
シルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DSM
7061)の生物学的に純粋な培養物。 - 【請求項2】 酵母及びカビ阻害効果を有するラクトバ
シルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DSM
7061)を含む細菌製剤。 - 【請求項3】 発酵培地中の細胞懸濁液として、ラクト
バシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DS
M7061)を含む、請求項2に記載の細菌製剤。 - 【請求項4】 酵母及びカビ阻害効果を有するラクトバ
シルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DSM
7061)とプロピオニバクテリウム属の細菌との組み
合わせを含む細菌製剤。 - 【請求項5】 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサス
LC−705株(DSM7061)をプロピオニバクテ
リウム シェルマニーJS株(DSM7067)と共に
含む請求項4に記載の細菌製剤。 - 【請求項6】 発酵培地中の細胞懸濁液として、酵母及
びカビ阻害効果を有するラクトバシルス カゼイ亜種ラ
ムノサスLC−705株(DSM7061)をプロピオ
ニバクテリウム シェルマニーJS株(DSM706
7)と共に含む請求項5に記載の細菌製剤。 - 【請求項7】 ラクトバシルス カゼイ細菌の別の菌株
と組み合わせた、酵母及びカビ阻害効果を有するラクト
バシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DS
M7061)を含む細菌製剤。 - 【請求項8】 ラクトバシルス カゼイ細菌の別の菌株
と組み合わせた、発酵培地中の細胞懸濁液として、酵母
及びカビ阻害効果を有するラクトバシルスカゼイ亜種ラ
ムノサスLC−705株(DSM7061)を含む請求
項7に記載の細菌製剤。 - 【請求項9】 細胞懸濁液が濃縮された請求項3に記載
の細菌製剤。 - 【請求項10】 細胞懸濁液が凍結乾燥された請求項3
に記載の細菌製剤。 - 【請求項11】 プロピオン酸塩またはフェニルアラニ
ンなどの酵母およびカビ阻害に使われる伝統的な試薬を
更に含む、請求項2に記載の細菌製剤。 - 【請求項12】 プロピオン酸塩またはフェニルアラニ
ンなどの酵母およびカビ阻害に使われる伝統的な試薬を
更に含む、請求項4に記載の細菌製剤。 - 【請求項13】 プロピオン酸塩またはフェニルアラニ
ンなどの酵母およびカビ阻害に使われる伝統的な試薬を
更に含む、請求項7に記載の細菌製剤。 - 【請求項14】 酵母及びカビ阻害効果を有するラクト
バシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DS
M7061)を含む細菌製剤を使用する工程を含む、酵
母およびカビの増殖を阻害する方法。 - 【請求項15】 酵母及びカビ阻害効果を有するラクト
バシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DS
M7061)を細胞懸濁液として含む細菌製剤を使用す
る工程を含む、請求項14に記載の酵母及びカビの増殖
を阻害する方法。 - 【請求項16】 酵母及びカビ阻害効果を有するラクト
バシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(DS
M7061)とプロピオニバクテリウム属の細菌との組
み合わせを含む細菌製剤を使用する工程を含む、酵母お
よびカビの増殖を阻害する方法。 - 【請求項17】 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサ
スLC−705株(DSM7061)とプロピオニバク
テリウム シェルマニーJS(DSM7067)との組
み合わせを含む細菌製剤を使用する工程を含む、請求項
16に記載の酵母およびカビの増殖を阻害する方法。 - 【請求項18】 発酵培地中の細胞懸濁液として、ラク
トバシルス カゼイ亜種ラムノサスLC−705株(D
SM7061)とプロピオニバクテリウムシェルマニー
JS(DSM7067)との組み合わせを含む細菌製剤
を使用する工程含む、請求項17に記載の酵母およびカ
ビの増殖を阻害する方法。 - 【請求項19】 ラクトバシルス カゼイ亜種ラムノサ
スLC−705株(DSM7061)とラクトバシルス
カゼイ細菌の別の菌株との組み合わせを含む細菌製剤
を使用する工程を含む、酵母およびカビの増殖を阻害す
る方法。
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Family
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Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP5017591A Expired - Lifetime JP3001338B2 (ja) | 1992-06-10 | 1993-02-04 | 新規の微生物株、その菌株を含む細菌製剤、および酵母およびカビの制御のための上記菌株および製剤の使用 |
Country Status (1)
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JP (1) | JP3001338B2 (ja) |
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WO2013153070A1 (en) | 2012-04-09 | 2013-10-17 | Chr. Hansen A/S | Bioprotection using lactobacillus paracasei strains |
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WO2015161877A1 (en) * | 2014-04-24 | 2015-10-29 | Molinos Rio De La Plata, S.A. | A synergistic composition comprising a mix of bacteria of the genera lactobacillus and propionobacterium freudenreichii ssp shermanii and uses thereof |
JP2018100228A (ja) * | 2016-12-19 | 2018-06-28 | 国立大学法人広島大学 | 抗菌用組成物、食品、及び菌体若しくは菌体培養物又はこれらの抽出物の製造方法 |
-
1993
- 1993-02-04 JP JP5017591A patent/JP3001338B2/ja not_active Expired - Lifetime
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JPH05336952A (ja) | 1993-12-21 |
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