JP2996517B2 - 採血容器 - Google Patents
採血容器Info
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、採血容器に関し、特
に、凝固・線溶系の検査に好適な採血容器に関する。
に、凝固・線溶系の検査に好適な採血容器に関する。
【０００２】
【従来の技術】血液検査の中でも、血液凝固検査は、各
種の出血性疾患や血栓症等の疾患の判定のための重要な
臨床検査法である。このような血液の凝固系及び線溶系
の検査に際しては、先ず、患者の全血を試料として採血
容器内に採取する。採血容器としては、内部に抗凝固薬
剤が適当量収められたガラスまたはプラスチックからな
るものが用いられていた。抗凝固薬剤としては、クエン
酸ナトリウムやヘパリン等が用いられているが、凝固系
の検査では、通常、３．１〜３．８％の濃度のクエン酸
ナトリウム液が収納されていた。
種の出血性疾患や血栓症等の疾患の判定のための重要な
臨床検査法である。このような血液の凝固系及び線溶系
の検査に際しては、先ず、患者の全血を試料として採血
容器内に採取する。採血容器としては、内部に抗凝固薬
剤が適当量収められたガラスまたはプラスチックからな
るものが用いられていた。抗凝固薬剤としては、クエン
酸ナトリウムやヘパリン等が用いられているが、凝固系
の検査では、通常、３．１〜３．８％の濃度のクエン酸
ナトリウム液が収納されていた。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】患者によっては、線溶
賦活剤として、例えば組織プラスミノーゲンアクチベー
タ（以下、ｔ−ＰＡ）が投与されていることがある。こ
のような場合、該患者から採取したクエン酸ナトリウム
添加血漿では、保存中に血漿中の成分、例えばフィブリ
ノーゲンやプラスミノーゲンがｔ−ＰＡの作用により消
費・分解され、保存後に実施される臨床検査、特に、凝
固・線溶系検査に著しい影響を及ぼすことがあった。
賦活剤として、例えば組織プラスミノーゲンアクチベー
タ（以下、ｔ−ＰＡ）が投与されていることがある。こ
のような場合、該患者から採取したクエン酸ナトリウム
添加血漿では、保存中に血漿中の成分、例えばフィブリ
ノーゲンやプラスミノーゲンがｔ−ＰＡの作用により消
費・分解され、保存後に実施される臨床検査、特に、凝
固・線溶系検査に著しい影響を及ぼすことがあった。
【０００４】よって、本発明は、上述した従来の採血容
器における問題点を解消し、線溶賦活剤が投与された患
者の血液試料をある程度の期間保存した場合であっても
凝固・線溶系の検査を正確に行うことを可能とする採血
容器を提供することを目的とする。
器における問題点を解消し、線溶賦活剤が投与された患
者の血液試料をある程度の期間保存した場合であっても
凝固・線溶系の検査を正確に行うことを可能とする採血
容器を提供することを目的とする。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本願発明者らは、上記の
ような従来の採血容器における問題点につき鋭意検討し
た結果、投与されていたｔ−ＰＡの作用を抑制するため
に、予め採血管内にｔ−ＰＡのインヒビター等を加えて
おけば、ｔ−ＰＡの作用によるフィブリノーゲンやプラ
スミノーゲンの消費・分解を抑制し得るのではないかと
考え、本発明をなすに至った。すなわち、本発明の要旨
は、容器内に、抗凝固薬剤及び抗線溶薬剤を存在させた
ことを特徴とする採血容器である。
ような従来の採血容器における問題点につき鋭意検討し
た結果、投与されていたｔ−ＰＡの作用を抑制するため
に、予め採血管内にｔ−ＰＡのインヒビター等を加えて
おけば、ｔ−ＰＡの作用によるフィブリノーゲンやプラ
スミノーゲンの消費・分解を抑制し得るのではないかと
考え、本発明をなすに至った。すなわち、本発明の要旨
は、容器内に、抗凝固薬剤及び抗線溶薬剤を存在させた
ことを特徴とする採血容器である。
【０００６】本発明において、採血容器は、熱可塑性樹
脂、熱硬化性樹脂もしくは変性天然樹脂のような樹脂ま
たはガラスの何れの材料から形成されていてもよい。熱
可塑性樹脂としては、例えば、ポリエチレン、ポリプロ
ピレン、ポリ−４−メチルペンテン−１、ポリスチレ
ン、ポリメチルメタクリレート、ポリ塩化ビニル、ポリ
エチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレー
ト、スチレン−アクリロニトリル共重合体、スチレン−
ブタジエン共重合体、スチレン−イソプレン共重合体、
スチレン−無水マレイン酸共重合体、スチレン−アクリ
ル酸共重合体、スチレン−メチルメタクリレート共重合
体、エチレン−プロピレン共重合体、エチレン−アクリ
ル酸共重合体、エチレン−アクリル酸エステル共重合
体、ポリビニルアルコールアセタール化物、ポリビニル
アルコールブチラール化物等が、熱硬化性樹脂として
は、例えば、不飽和ポリエステル樹脂、エポキシ樹脂、
エポキシ−アクリレート樹脂等が、変性天然樹脂として
は、酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、酢酸酪
酸セルロース、エチルセルロース、エチルキチン等が用
いられる。
脂、熱硬化性樹脂もしくは変性天然樹脂のような樹脂ま
たはガラスの何れの材料から形成されていてもよい。熱
可塑性樹脂としては、例えば、ポリエチレン、ポリプロ
ピレン、ポリ−４−メチルペンテン−１、ポリスチレ
ン、ポリメチルメタクリレート、ポリ塩化ビニル、ポリ
エチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレー
ト、スチレン−アクリロニトリル共重合体、スチレン−
ブタジエン共重合体、スチレン−イソプレン共重合体、
スチレン−無水マレイン酸共重合体、スチレン−アクリ
ル酸共重合体、スチレン−メチルメタクリレート共重合
体、エチレン−プロピレン共重合体、エチレン−アクリ
ル酸共重合体、エチレン−アクリル酸エステル共重合
体、ポリビニルアルコールアセタール化物、ポリビニル
アルコールブチラール化物等が、熱硬化性樹脂として
は、例えば、不飽和ポリエステル樹脂、エポキシ樹脂、
エポキシ−アクリレート樹脂等が、変性天然樹脂として
は、酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、酢酸酪
酸セルロース、エチルセルロース、エチルキチン等が用
いられる。
【０００７】ガラスとしては、例えば、ソーダ石灰ガラ
ス、リンケイ酸ガラス、ホウケイ酸ガラス等のケイ酸塩
ガラスや石英ガラス等が好ましく用いられる。本発明の
採血容器では、上記のような材料からなる容器内に、抗
凝固薬剤及び抗線溶薬剤が存在する。抗凝固薬剤として
は、従来より用いられているクエン酸ナトリウムやヘパ
リン等が用いられる。例えば、クエン酸ナトリウムの場
合は、通常３．１〜３．８重量％の水溶液が使用され、
採血容器の使用時に、血液中のクエン酸ナトリウムの固
形分濃度が０．２〜０．５重量％、好ましくは、０．３
〜０．４重量％となるように、該容器内に存在させる。
ヘパリンの場合は、例えば生理食塩水に、５００〜１０
００ＩＵ／ｍｌの濃度に溶解されたものが使用され、採
血容器の使用時に、血液中のヘパリン濃度が５〜１００
ＩＵ／ｍｌとなるように、該容器内に存在させる。
ス、リンケイ酸ガラス、ホウケイ酸ガラス等のケイ酸塩
ガラスや石英ガラス等が好ましく用いられる。本発明の
採血容器では、上記のような材料からなる容器内に、抗
凝固薬剤及び抗線溶薬剤が存在する。抗凝固薬剤として
は、従来より用いられているクエン酸ナトリウムやヘパ
リン等が用いられる。例えば、クエン酸ナトリウムの場
合は、通常３．１〜３．８重量％の水溶液が使用され、
採血容器の使用時に、血液中のクエン酸ナトリウムの固
形分濃度が０．２〜０．５重量％、好ましくは、０．３
〜０．４重量％となるように、該容器内に存在させる。
ヘパリンの場合は、例えば生理食塩水に、５００〜１０
００ＩＵ／ｍｌの濃度に溶解されたものが使用され、採
血容器の使用時に、血液中のヘパリン濃度が５〜１００
ＩＵ／ｍｌとなるように、該容器内に存在させる。
【０００８】また、抗線溶薬剤としては、ｔ−ＰＡのイ
ンヒビターまたは低分子セリンプロテアーゼインヒビタ
ーが用いられる。ｔ−ＰＡのインヒビターとしては、プ
ロリル−フェニルアラニル−クロロメチルケトン（ＰＰ
ＡＣＫ）またはプラスミノーゲンアクチベーターインヒ
ビター（ＰＡＩ）が用いられ、低分子セリンプロテアー
ゼインヒビターとしては、ε−アミノカプロン酸（ＥＡ
ＣＡ）、メチル酸ガベキサート（ＦＯＹ）、フェニルメ
タンスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）または（２Ｒ，
４Ｒ）−４−メチル−１−〔Ｎ2 −（３−メチル−１，
２，３，４−テトラヒドロ−８−キノリンスルフォニ
ル）−Ｌ−アルギニル〕−２−ピペリジンカルボキシル
酸モノハイドレイト（ＭＤ８０５）等が用いられる。
ンヒビターまたは低分子セリンプロテアーゼインヒビタ
ーが用いられる。ｔ−ＰＡのインヒビターとしては、プ
ロリル−フェニルアラニル−クロロメチルケトン（ＰＰ
ＡＣＫ）またはプラスミノーゲンアクチベーターインヒ
ビター（ＰＡＩ）が用いられ、低分子セリンプロテアー
ゼインヒビターとしては、ε−アミノカプロン酸（ＥＡ
ＣＡ）、メチル酸ガベキサート（ＦＯＹ）、フェニルメ
タンスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）または（２Ｒ，
４Ｒ）−４−メチル−１−〔Ｎ2 −（３−メチル−１，
２，３，４−テトラヒドロ−８−キノリンスルフォニ
ル）−Ｌ−アルギニル〕−２−ピペリジンカルボキシル
酸モノハイドレイト（ＭＤ８０５）等が用いられる。
【０００９】上記のような抗線溶薬剤が、採血容器の使
用時に、血液中のそれぞれの濃度がＰＰＡＣＫ０．０１
〜０．５ｍＭ、ＰＡＩ０．０１〜０．５ｍＭ、ＥＡＣＡ
０．０１〜０．５ｍＭ、ＦＯＹ０．１〜５００μｇ／ｍ
ｌ、ＰＭＳＦ０．１〜５００μｇ／ｍｌ、ＭＤ８０５に
ついては０．１〜５００μｇ／ｍｌとなるように、該容
器内に存在させる。
用時に、血液中のそれぞれの濃度がＰＰＡＣＫ０．０１
〜０．５ｍＭ、ＰＡＩ０．０１〜０．５ｍＭ、ＥＡＣＡ
０．０１〜０．５ｍＭ、ＦＯＹ０．１〜５００μｇ／ｍ
ｌ、ＰＭＳＦ０．１〜５００μｇ／ｍｌ、ＭＤ８０５に
ついては０．１〜５００μｇ／ｍｌとなるように、該容
器内に存在させる。
【００１０】また、上記抗凝固薬剤及び線溶薬剤は、液
状の状態で採血容器内に存在していてもよく、粉末状態
あるいは凍結乾燥状態で存在していてもよい。また、本
発明の採血容器は、例えばブチルゴム製のキャップが施
され、内部が真空にされた真空タイプのものでも、また
は、非真空タイプのものでもいずれでもよい。
状の状態で採血容器内に存在していてもよく、粉末状態
あるいは凍結乾燥状態で存在していてもよい。また、本
発明の採血容器は、例えばブチルゴム製のキャップが施
され、内部が真空にされた真空タイプのものでも、また
は、非真空タイプのものでもいずれでもよい。
【００１１】
【作用】治療に際しｔ−ＰＡが投与された患者の血漿中
には当然のことながら、該ｔ−ＰＡが存在する。従っ
て、従来の採血容器では、ｔ−ＰＡの作用により、放置
している間に、フィブリノーゲンの分解やプラスミノー
ゲンの分解・消費またはα 2 ＰＩ（α2 プラスミンイン
ヒビター）−プラスミン複合体が生成されてしまってい
た。そのため、フィブリノーゲン値の測定等の凝固・線
溶系の臨床検査に際し正確な値を得ることができなかっ
た。
には当然のことながら、該ｔ−ＰＡが存在する。従っ
て、従来の採血容器では、ｔ−ＰＡの作用により、放置
している間に、フィブリノーゲンの分解やプラスミノー
ゲンの分解・消費またはα 2 ＰＩ（α2 プラスミンイン
ヒビター）−プラスミン複合体が生成されてしまってい
た。そのため、フィブリノーゲン値の測定等の凝固・線
溶系の臨床検査に際し正確な値を得ることができなかっ
た。
【００１２】これに対して、本発明では、採血容器内に
予め抗凝固薬剤だけでなく、上述した抗線溶薬剤が存在
されているため、抗線溶薬剤がｔ−ＰＡのプラスミノー
ゲン活性化作用を阻害する。従って、ｔ−ＰＡを投与さ
れていた患者の血漿をある程度の期間保存したとして
も、該血漿中のフィブリノーゲンやプラスミノーゲン等
の成分の値の変動を防止することができる。
予め抗凝固薬剤だけでなく、上述した抗線溶薬剤が存在
されているため、抗線溶薬剤がｔ−ＰＡのプラスミノー
ゲン活性化作用を阻害する。従って、ｔ−ＰＡを投与さ
れていた患者の血漿をある程度の期間保存したとして
も、該血漿中のフィブリノーゲンやプラスミノーゲン等
の成分の値の変動を防止することができる。
【００１３】
【実施例】以下、本発明の非限定的な実施例を説明する
ことにより、本発明を明らかにする。実施例１ ７ｍｌのポリエチレンテレフタレートよりなる有底採血
管に、予め、３．８％クエン酸ナトリウム及びＰＰＡＣ
Ｋ（カルビオ社製）１ｍＭを含有する液０．５ｍｌを入
れ、本発明の採血容器を得た。この採血容器に、健常者
より採血した血液４．５ｍｌを加え、次いでｔ−ＰＡ
（テクノクローン社製）５μｇを加えた。よく転倒・混
和し、しかる後３０００ｒｐｍの回転速度で１０分間遠
心分離した。遠心分離後、上澄みの血漿を採取し、採取
直後、並びに一定時間経過毎にフィブリノーゲン値及び
α2 ＰＩ−プラスミン複合体値を測定した。
ことにより、本発明を明らかにする。実施例１ ７ｍｌのポリエチレンテレフタレートよりなる有底採血
管に、予め、３．８％クエン酸ナトリウム及びＰＰＡＣ
Ｋ（カルビオ社製）１ｍＭを含有する液０．５ｍｌを入
れ、本発明の採血容器を得た。この採血容器に、健常者
より採血した血液４．５ｍｌを加え、次いでｔ−ＰＡ
（テクノクローン社製）５μｇを加えた。よく転倒・混
和し、しかる後３０００ｒｐｍの回転速度で１０分間遠
心分離した。遠心分離後、上澄みの血漿を採取し、採取
直後、並びに一定時間経過毎にフィブリノーゲン値及び
α2 ＰＩ−プラスミン複合体値を測定した。
【００１４】なお、フィブリノーゲン値の測定は、フィ
ブリノーゲン測定試薬（国際試薬社製）を用い、フィブ
ィロメータ（ＢＢＬ社製）により行った。また、α2 Ｐ
Ｉ−プラスミン複合体の測定は、ＰＩＣテストＥＩＡ
（帝人株式会社製）を用いて行った。結果を、下記の表
１及び表２に示す。比較例１ 採血管内にＰＰＡＣＫを存在させずに、３．８％クエン
酸ナトリウム液０．５ｍｌのみを入れ採血容器を得た。
この容器を使用し、他は実施例１とまったく同様にして
血漿を採取し、実施例１と同様に、採取直後及び一定時
間経過毎にフィブリノーゲン値及びα2 ＰＩ−プラスミ
ン複合体値を測定した。結果を、表１及び表２に示す。
ブリノーゲン測定試薬（国際試薬社製）を用い、フィブ
ィロメータ（ＢＢＬ社製）により行った。また、α2 Ｐ
Ｉ−プラスミン複合体の測定は、ＰＩＣテストＥＩＡ
（帝人株式会社製）を用いて行った。結果を、下記の表
１及び表２に示す。比較例１ 採血管内にＰＰＡＣＫを存在させずに、３．８％クエン
酸ナトリウム液０．５ｍｌのみを入れ採血容器を得た。
この容器を使用し、他は実施例１とまったく同様にして
血漿を採取し、実施例１と同様に、採取直後及び一定時
間経過毎にフィブリノーゲン値及びα2 ＰＩ−プラスミ
ン複合体値を測定した。結果を、表１及び表２に示す。
【００１５】表１及び表２から明らかなように、実施例
１の採血容器では、フィブリノーゲン値及びα2 ＰＩ−
プラスミン複合体値の何れもが採取直後から５時間後に
至るまでほとんど変化していないのに対し、比較例１の
採血容器では、フィブリノーゲン値が時間の経過と共に
大きく低下し、かつα2 ＰＩ−プラスミン複合体値が時
間の経過と共に非常に高くなることがわかる。
１の採血容器では、フィブリノーゲン値及びα2 ＰＩ−
プラスミン複合体値の何れもが採取直後から５時間後に
至るまでほとんど変化していないのに対し、比較例１の
採血容器では、フィブリノーゲン値が時間の経過と共に
大きく低下し、かつα2 ＰＩ−プラスミン複合体値が時
間の経過と共に非常に高くなることがわかる。
【００１６】
【表１】
【００１７】
【表２】
【００１８】実施例２ ５ｍｌの大きさのシリコンコーティングされたガラス採
血管に、３．１３％クエン酸ナトリウム及び１ｍＭのＰ
ＡＩ（アメリカンダイアグノスティカ社製）を含む液
０．２ｍｌを入れ、本発明の採血容器を得た。この採血
容器に、実施例１の場合と同一の健常者より採血した血
液１．８ｍｌを加え、次いでｔ−ＰＡ（テクノクローン
社製）２μｇを加えた。よく転倒・混和し、３０００ｒ
ｐｍ及び１０分間の条件で遠心分離した。しかる後、上
澄みの血漿を採取し、採取直後及び３時間経過後に、血
漿中のプラスミノーゲン活性を測定した。測定は、テス
トチームＰＬＧ（第一化学薬品社製）を用いて行った。
その結果、採取直後のプラスミノーゲン活性が１０５％
であり、３時間経過後においても１０５％と変化のない
ことが確かめられた。比較例２ 採血管内に３．１３％クエン酸ナトリウム液０．２ｍｌ
のみを入れ、採血容器を得た。この採血容器を使用した
ことを除いては、実施例２とまったく同様にして血漿を
採取し、採取直後及び３時間経過後の血漿中のプラスミ
ノーゲン活性を実施例２と同様にして測定した。その結
果、採取直後のプラスミノーゲン活性が１０５％であっ
たのに対し、３時間経過後にはプラスミノーゲン活性は
９５％まで低下していた。
血管に、３．１３％クエン酸ナトリウム及び１ｍＭのＰ
ＡＩ（アメリカンダイアグノスティカ社製）を含む液
０．２ｍｌを入れ、本発明の採血容器を得た。この採血
容器に、実施例１の場合と同一の健常者より採血した血
液１．８ｍｌを加え、次いでｔ−ＰＡ（テクノクローン
社製）２μｇを加えた。よく転倒・混和し、３０００ｒ
ｐｍ及び１０分間の条件で遠心分離した。しかる後、上
澄みの血漿を採取し、採取直後及び３時間経過後に、血
漿中のプラスミノーゲン活性を測定した。測定は、テス
トチームＰＬＧ（第一化学薬品社製）を用いて行った。
その結果、採取直後のプラスミノーゲン活性が１０５％
であり、３時間経過後においても１０５％と変化のない
ことが確かめられた。比較例２ 採血管内に３．１３％クエン酸ナトリウム液０．２ｍｌ
のみを入れ、採血容器を得た。この採血容器を使用した
ことを除いては、実施例２とまったく同様にして血漿を
採取し、採取直後及び３時間経過後の血漿中のプラスミ
ノーゲン活性を実施例２と同様にして測定した。その結
果、採取直後のプラスミノーゲン活性が１０５％であっ
たのに対し、３時間経過後にはプラスミノーゲン活性は
９５％まで低下していた。
【００１９】
【発明の効果】本発明では、採血容器内に抗凝固薬剤及
び抗線溶薬剤が予め入れられているため、該抗線溶薬剤
の作用により患者血漿中に含まれているｔ−ＰＡの作用
を抑制することができ、従ってｔ−ＰＡが投与されてい
た患者の血漿を保存したとしても、保存中のｔ−ＰＡの
作用によるフィブリノーゲン値やプラスミノーゲン活性
等の変動を防止することができる。従って、ｔ−ＰＡを
投与された患者の血漿についての血液凝固・線溶系の検
査を正確に行うことが可能となる。
び抗線溶薬剤が予め入れられているため、該抗線溶薬剤
の作用により患者血漿中に含まれているｔ−ＰＡの作用
を抑制することができ、従ってｔ−ＰＡが投与されてい
た患者の血漿を保存したとしても、保存中のｔ−ＰＡの
作用によるフィブリノーゲン値やプラスミノーゲン活性
等の変動を防止することができる。従って、ｔ−ＰＡを
投与された患者の血漿についての血液凝固・線溶系の検
査を正確に行うことが可能となる。
Claims (2)
- 【請求項１】容器内に、抗凝固薬剤及び抗線溶薬剤を存
在させたことを特徴とする採血容器であって、該抗凝固
薬剤がクエン酸ナトリウムおよび／またはヘパリンであ
り、該抗線溶薬剤が組織プラスミノーゲンアクチベータ
のインヒビターおよび／または低分子セリンプロテアー
ゼインヒビターであることを特徴とする採血容器。 - 【請求項２】請求項１記載の採血容器であって、前記組
織プラスミノーゲンアクチベータのインヒビターが、プ
ロリル−フェニルアラニル−クロロメチルケトンおよび
／またはプラスミノーゲンアクチベーターインヒビター
であり、前記低分子セリンプロテアーゼインヒビター
が、ε−アミノカプロン酸、メチル酸ガベキサート、フ
ェニルメタンスルホニルフルオリド、及び、（２Ｒ，４
Ｒ）−４−メチル−１−〔Ｎ 2 −（３−メチル−１，
２，３，４−テトラヒドロ−８−キノリンスルフォニ
ル）−Ｌ−アルギニル〕−２−ピペリジンカルボキシル
酸モノハイドレイトからなる群より選ばれた少なくとも
１種であることを特徴とする採血容器。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP18791A JP2996517B2 (ja) | 1991-01-07 | 1991-01-07 | 採血容器 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP18791A JP2996517B2 (ja) | 1991-01-07 | 1991-01-07 | 採血容器 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04249767A JPH04249767A (ja) | 1992-09-04 |
| JP2996517B2 true JP2996517B2 (ja) | 2000-01-11 |
Family
ID=11466993
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP18791A Expired - Fee Related JP2996517B2 (ja) | 1991-01-07 | 1991-01-07 | 採血容器 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2996517B2 (ja) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0698398A1 (en) * | 1994-08-23 | 1996-02-28 | Becton, Dickinson and Company | Blood collection device |
| CN102353569A (zh) | 2002-05-13 | 2012-02-15 | 贝克顿·迪金森公司 | 蛋白酶抑制剂样品采集系统 |
| CN110208411B (zh) * | 2019-06-10 | 2021-12-24 | 浙江龙传生物医药科技有限公司 | 用于药物代谢检测的羧酸酯酶抑制剂制剂 |
-
1991
- 1991-01-07 JP JP18791A patent/JP2996517B2/ja not_active Expired - Fee Related
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| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH04249767A (ja) | 1992-09-04 |
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