JP2993979B2 - トランスジェニック塊茎形成双子葉植物の製法、発現カセットを含有する植物細胞、パタチンプロモータ配列及び発現カセット - Google Patents
トランスジェニック塊茎形成双子葉植物の製法、発現カセットを含有する植物細胞、パタチンプロモータ配列及び発現カセットInfo
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Description
る発現カセツトの新規DNA配列、並びにこのDNA配列を植
物ゲノム中に転移微生物としてアグロバクテリウム属菌
(Agrobacterium)を使用して転移することに関する。
このDNA配列はパタチン遺伝子プロモータを有するパタ
チン遺伝子を含有する。このDNAは栽培植物中で内生産
物の調節にも外来産物の製造にも役立つ。
に高まる食料品及び原料に対する要求により、長期的に
予測すると耕地面積が減少するので有用植物及びその内
容成分の生産高を上昇させるということが増々大きなバ
イオテクノロジーの研究課題となつている。生産高の上
昇は植物に対する有害動植物及び植物の病気及び/又は
不利な土壌状態に対する有用植物の抵抗性を強めること
により達せられる。抵抗性の強化は、例えば植物を誘発
し、保護物質の形成を増大させるようにすることにより
達せられる。このためには植物の代謝を操作しなければ
ならない。このことは特に細胞核中に含有されるデオキ
シリボ核酸(DNA)の変化により惹起される。植物の1
つ又は複数の部分領域中での転写に、又は植物成長サイ
クルにおける一定の時期における転写に関与するDNA片
に作用を与えることがしばしば有利である。従つて、内
生植物産物の転写又は発現に関与する植物ゲノム中のDN
A配列の同定には大きな興味が寄せられる。この種のDNA
配列を見い出すために、まず初めに細胞成長サイクルの
一定期間に、又は一定の植物部分に現われる産物をさが
さなければならない。これに属する遺伝子を同定し、単
離したならば、この配列の十分な調査と特に所望の転写
調節領域の同定及び単離が必要である。引続いて、その
機能が実験により証明されなければならない好適なモデ
ルをつくらなければならない。この種のDNA配列の同定
は、多くの誤りと不確かさを伴なう挑戦的な研究課題で
ある。植物を遺伝学的に変更するという可能性への興味
は一層大きくなり、このことは、これと関連する、転写
配列の同定及び一定の用途へのその配列の操作に伴なう
費用及び努力を正当化するものである。双子葉及び単子
葉植物の遺伝学的変更法はすでに公知であり(ヨーロツ
パ特許第267159号明細書)、更に多くの文献が出ている
〔Crouch等著、In.:Molecular Form and Function of t
he Plant Genome、編者、van Volten−Doting、Groot a
nd Hall、Plenum Publishing Corp.、1985年、第555〜5
66頁;Crouch及びSussex著、Planta、1981年、第153巻、
第64〜74頁;Crouch等著、J.Mol.Appl.Genet、1983年、
第2巻、第273〜283頁;及びSimon等著、Plant Molecul
ar Biology、1985年、第5巻、第191〜201頁(前記の文
献中にはBrassica napus中の蓄積蛋白質の種々の形を記
載している:Beachy等著、EMBO J.、1985年、第4巻、第
3047〜3057頁;Sengupta−Gopalan等著、Proc.Natl.Aca
d.Sci.USA、1985年、第82巻、第3320〜3324頁;Greenwoo
d及びChrispeels著、Plant Physiol、1985年、第79巻、
第65〜71頁及びChen等著、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、19
86年、第83巻、第8560〜8564頁(前記文献中には種子蓄
積蛋白質及び遺伝学的操作を包含する実験が記載されて
いる)及びEckes等著、Mol.Gen.Genet.、1986年、第205
巻、第14〜22頁及びFluhr等著、Science、1986年、第23
2巻、第1106〜1112頁(これらの文献は光誘発性植物遺
伝子の遺伝学的操作を記載している)〕。
列が提供され、このDNA配列にはジヤガイモ塊茎特異性
調節域が局在しており、かつパタチン(Patatin)遺伝
子プロモータを有するパタチン遺伝子を含有する。
の配列の後に、該当する細胞組織の表現型の変更及び内
生生成物の形成並びに量分布又は新しい機能のための外
来性発現生成物の形成のための情報を有する配列が接続
してよい。転写域及び終止域を転写方向において、この
配列を挿入するための制限部位1個又は数個を含有する
リンカー又はポリリンカーにより作成すると有利であ
る。一般に、リンカーは制限部位1〜10個、殆んどの場
合1〜8個、殊に2〜6個を有する。一般に、リンカー
は100bpより少ない大きさ、しばしば60bpより少なく、
しかしながら少なくとも5bpの大きさを有する。転写開
始域は宿主植物に対して天然もしくは相同性であつて
も、また異種もしくは非相同性であつてもよい。特に重
要なことは、ジヤガイモのほふく茎の形成から熟成した
塊茎までのジヤガイモ塊茎の全成長にわたつて発現する
ジヤガイモ(ソラヌム・ツベロスム:Solanum tuberosu
m)パタチン遺伝子と対合している転写開始域である。
転写カセツトの中味は5′−3′の転写方向において、
その植物に典型的な転写及び翻訳のための域、任意の配
列及び転写及び翻訳の終止域である。終止域は任意に交
換可能である。
読枠も、また1個又は数個のイントロンも含有していて
よい。例として次のものが挙げられる:酵素のための配
列;a)転写解読枠であつてもよいゲノム配列に対して、
b)イントロンに対して、c)コードしないリーダー配
列(Leitsequenz)に対して、d)相補性により転写、m
RNAプロセツシング(例えばスプライシング)又は翻訳
を阻害する配列に対して相補性である配列。所望のDNA
配列を合成してもよいし、または天然であつてもよく、
もしくは合成DNA成分と天然DNA成分とからの混合物を含
有してもよい。一般に、植物において優先的であるコド
ンを有する合成DNA配列を生成する。この植物において
優先するコドンは、殆んどの興味深い植物種において発
現する、最大蛋白質頻度のコドンから決定することがで
きる。転写カセツトの生成の際に、種々のDNAフラグメ
ントを操作して、有利に正しい方向で解読しかつ正しい
解読枠を有するDNA配列を得ることができる。DNAフラグ
メント相互の結合には、フラグメント末端でアダプター
又はリンカーを使用することができる。更に、適合する
制限部位を供給したり又は余分のDNA又は制限部位を除
去したりという操作を適用することができる。挿入、欠
失又は例えばトランジシヨン及びトランバージヨンのよ
うな置換が該当する場合には、試験管内突然変異、プラ
イマー修復、制限又は連結を適用することができる。
はブラント末端(blunt−end)の突出部分を満たすよう
な好適な操作では、一緒にして連結するためのフラグメ
ントの相補性末端を使用することができる。異なる工程
を実施するに当り、DNA量を高めかつ望ましい処理結果
を確保するのに有用なDNA分析をするにはクローン化が
必要である。E.コリ中の複製機構及び形質転換した細胞
の選択を可能にするマーカーを含む多数のクローン化用
ベクターを使用することができる。ベクターは例えばpB
R332、pUCシリーズ、M13mpシリーズ、pACYC184等を含
む。それに相応して配列を適当な制限部位でベクター中
に導入することができる。得られたプラスミドをE.コリ
中で形質転換するために使用する。E.コリ細胞を好適な
培地中で培養し、引続いて収穫しかつ溶菌する。プラス
ミドを再び取得する。分析法としては、一般に配列分
析、制限分析、電気泳動及び他の生化学的−分子生物学
的方法を実施する。核操作後に、使用したDNA配列を制
限しかつ次のDNA配列と結合する。それぞれのプラスミ
ド配列を同一の又は他のプラスミド中でクローン化する
ことができる。所望の遺伝子を植物中に導入する方法に
応じて他のDNA配列が必要となるはずである。例えば形
質転換に植物細胞のTi−又はRiプラスミドを使用する場
合、少なくとも右側の境界、しかししばしば左右の境界
をTi−及びRiプラスミドに導入すべき遺伝子のフランケ
ン域(Flankenbereich)として結合させなければならな
い。植物細胞の形質転換のためにT−DNAを使用するこ
とについては熱心に研究されかつヨーロツパ特許第1205
16号明細書;Hoehema著,The Binary Plant Vector Syste
m Offset−drukkerij Kanters B.V.,Ablasserdam(198
5),第V章;Fraley等著,Crit.Rev.Plant Sci.,4巻,1〜
46頁及びAn等著,EMBO J.(1985)4巻,277〜284頁に十
分に記載されている。
でも比較的安定でありかつ一般的にはもはやとび出さな
い。DNAは通常、殺生物剤もしくはカナマイシン、G41
8、ブレオマイシン、ヒグロマイシン又はクロラムフエ
ニコール等のような抗生物質に対する耐性を形質転換植
物細胞に付与する選択マーカーを含有する。それ故、マ
ーカーは形質転換した細胞を、導入DNAが欠損している
細胞から選択するのを可能にする。
術が使える。この技術には形質転換手段としてアグロバ
クテリウム・ツメフアチエンス(Agrobacterium tumefa
ciens)又はアグロバクテリウム・リゾゲネス(Agrobac
terium rhizogenes)を使うT−DNAによる形質転換、融
合、注入又はエレクトロポレーシヨン等がある。形質転
換にアグロバクテリウム属菌を使う場合、導入すべきDN
Aを特別なプラスミド中に、つまり中間ベクター(inter
mediaerer Vektor)又はバイナリー(binaerer)ベクタ
ー中にクローン化すべきである。中間ベクターは、T−
DNA中の配列に相同の配列に基づいて相同組み換えによ
りTi−又はRiプラスミド中に組込むことができる。更
に、このプラスミドはT−DNAの転移に必要なVir領域を
有する。中間ベクターはアグロバクテリウム属菌中では
複製しない。ヘルパープラスミドによつて中間ベクター
はアグロバクテリウム・ツメフアチエンスに転移させる
ことができる(接合)。バイナリーベクターはE.コリ中
でも、アグロバクテリウム属菌中でも複製し得る。それ
は、右側及び左側のT−DNA限界域にとり囲まれる選択
マーカー遺伝子及びリンカー又はポリリンカーを含有す
る。それらを直接アグロバクテリウム属菌中に形質転換
させることができる〔Holsterts等著,Mol.Gen.Genet.
(1978年),163巻,181〜187頁〕。宿主細胞として有用
なアグロバクテリウム属菌は、T−DNAが植物細胞中に
転移するのに必要なVir域を有するプラスミドを含有す
べきであり、その際に付加的なT−DNAが含まれていて
もよい。このように形質転換された細菌を植物細胞の形
質転換に使用する。DNAの植物細胞中への転移には、植
物外植片を有利にアグロバクテリウム・ツメフアチエン
ス又はアグロバクテリウム・リゾゲネスと一緒に培養す
ることができる。感染した植物材料(例えば葉、茎、根
あるいはプロトプラスト又は浮遊培養した細胞)から好
適な培地(これは選択のために抗生物質又は殺生剤を含
有していてもよい)中で植物全体を再生することがで
き、その後この植物を導入されたDNAの存在について試
験することができる。注入及びエレクトロポレーシヨン
の場合は、プラスミドに対して特別な要件はなく、例え
ばpUC誘導体のような簡単なプラスミドを使用すること
ができる。
明らかであるが、例えば血液因子;リンホカイン;コロ
ニー刺激因子;インターフエロン;プラスミノーゲンア
クチベータ;例えばスーパーオキシドジスムターゼ又は
キモシンのような酵素;ホルモン;ラツト乳からのチオ
エステラーゼ−2又はヒト血清アルブミンのような哺乳
動物生産物の遺伝子の発現が特に興味深い、他の可能性
は、塊茎蛋白質、特に最適なアミノ酸組成(必須アミノ
酸)を有する突然変異塊茎蛋白質の量を高めることであ
り、かつこのようにして塊茎の栄養価を高めることがで
きる。
に、プロモータに対して偽方向づけで遺伝子又はその一
部を発現させることが考えられ、これは内生遺伝子全体
又はその一部に相補性であるRNAの合成に案内し、それ
故この遺伝子の転写もしくは内生mRNAのプロセツシング
及び/又は翻訳を阻害することができる。
ick等著,Plant Cell Reports(1986年),5巻,81〜84頁
も参照〕。これらの植物は正常に成育させることができ
かつ形質転換した同じ遺伝素質又は他の遺伝素質を有す
る植物と交叉させることができる。その結果発生するハ
イブリツド個体は相応する発現型特性を有する。この発
現型特性が確実に保持されかつ遺伝するように、2世代
又はそれ以上成育させるべきである。また、確実に相応
する発現型又は他の特性が含まれているようにするため
に、種子もまた収獲すべきである。塊茎特異性発現用の
宿主植物としてはすべての茎葉−又は塊根形成植物種、
特にソラヌム・ツベロスムが好適である。
ができる。通常この際に、植物の一定の部分(塊茎)か
ら単離したmRNAを使用する。特異的に組織又は植物の段
階に関連するmRNAの付加的な濃度上昇のためにcDNAを調
製することができ、その際にこのmRNA又はcDNAに非特異
的なcDNAを他の組織又は植物段階(例えば塊茎/葉)か
ら取り除くことができる。残りのcDNAを、相補性配列の
ゲノムのプローブ検査(Sondierung)のために、好適な
植物ライブラリーの利用下に使用することができる。蛋
白質が単離されているか又は単離されるところでは部分
的に配列することができ、それにより植物DNAライブラ
リー中の相応する配列を直接同定するためのプローブを
製造することができる。引続いて、プローブによりハイ
ブリツド形成する配列を単離しかつ操作することができ
る。更に、コード付け領域を伴なう未翻訳5′域を単離
しかつ発現カセツト中で未翻訳の5′域の転写活性を同
定するために使用することができる。未翻訳5′域を使
用する、得られた発現カセツトを植物中で形質転換する
ことができ(前記参照)、それによつて外来構造遺伝子
(未翻訳の5′域を伴なう野生型の転写解読枠とは別の
もの)を有するその機能性及び塊茎特異性を試験する。
このようにして、塊茎に特異的な転写に必要な特異的配
列を同定することができる。特に重要な発現カセツトは
パタチン遺伝子の転写開始部位を含む。
たmRNAのコピー mRNA=メツセンジヤーリボ核酸 T−DNA=転移DNA(アグロバクテリウム・ツメフアチエ
ンスのTiプラスミド上に局在) 概 念 ブラント末端=2つのDNA鎖が正確に同じ長さであるDNA
末端 チユーイングバツク=DNA分子の相補性鎖よりより長いD
NA鎖のヌクレオチドの酵素的除去 電気泳動=大きさ及び荷電により蛋白質及び核酸を分離
するための生化学分離法 発現=遺伝子の活性 遺伝子=遺伝因子、遺伝物の単位、一定の特性の部分情
報の担い手、遺伝子は核酸(例えばDNA,RNA)より成
る。
ヌクレオチド塩基(トリプレツト)が、一定のアミノ酸
をコード付けするコドンを形成する。
て存在するわけではなく、コード付けしない配列(イン
トロン)を含有していてもよい。
る。
子型が同じである。クローン化により細胞系統の単一性
を高めることができる。
ル基との間のホスホジエステル結合の酵素的形成 リンカー、ポリリンカー=制限切断部位1個又は数個を
直接的な順序で含有する合成DNA配列 ノザンプロツト、サザンプロツト=電気泳動で分離した
RNA又はDNAをニトロセルロース膜又はナイロン膜上に転
移させかつ固定すること パタチン=ジヤガイモ塊茎の主要蓄積蛋白質の慣用名、
分子量約40kdのグリコ蛋白質 発現型=遺伝子型とは反対に生体中で現われる全特性 プラスミド=細菌細胞中(場合によつては真核生物中)
の付加的な染色体外DNA遺伝子担体で、これは細菌染色
体とは関係なく倍加する。プラスミドは他の宿主DNA中
に組み込むことができる。
とのできるポリヌクレオチド鎖 プロモータ=相同又は外来のDNA遺伝子配列の転写を保
証するDNA発現の制御配列 複製=DNA配列の培加 制限酵素=エンドデオキシリボヌクレアーゼの亜族であ
る制限エンドヌクレアーゼ(例えばE.コリからのEcoR I は基質を認識する高い特異性により優れている(↓=切
断部位)。
報の翻訳 転位=塩基対置換、プリン−ピリミジンがプリン−ピリ
ミジンに、例えばA−TがG−Cにより 転換=塩基対置換、プリン−ピリミジンがピリミジン−
プリンに、例えばA−TがT−Aにより 欠失=1個又は数個の塩基対の除去 挿入=1個又は数個の塩基対の導入;転位、転換、欠失
及び挿入は点突然変異である。
宿主特異的な、複製可能な構造。プラスミドはベクター
として使用することができる。
西ドイツ国、ブラウンシユヴアイク在)に次の微生物を
寄託した(寄託番号): プラスミドpBI101−B33を含有するアグロバクテリウム
・ツメフアチエンスLBA4405、A−tumB33(DSM5089)。
に、この実験に必要な公知の方法を予め記載する: 1.クローン化ベクター クローン化のために、ベクターpUC18/19及びM13mp18/
19〔Yanisch−Perron等著,Gene(1985年),33巻,103〜1
19頁〕を使用した。
クターBIN19〔Bevan著,Nucl.Acids.Res.(1984年),12
巻,8711〜8720頁〕中にクローン化した。
sing等著,Proc.Nat.Acad.Sci.USA(1977年),24巻,6342
〜6346頁〕又はTB1を使用した。ベクターBIN19には専ら
菌株TB1を使つた。TB1は菌株JM101の組換えマイナス、
テトラサイクリン耐性誘導体である〔Yanisch−Perron
等著,Gene(1985年),33巻,103〜119頁〕。TB1菌株の遺
伝子型は(Bart Barrel,pers.Mitteilung):F′(traD3
6,proAB,lacl,lacZ△M15),△(lac,pro),SupE,thiS,
recA,Sr1::Tn10(TcR)である。
ンス菌株LBA4404〔Bevan,M.,Nucleic Acids Research12
巻,8711〜8721頁(1984年);BIN19誘導体〕を用いて実
施した。
プトン0.8%、場合により寒天1.5% YEB培地:牛肉エキス0.5%、酵母エキス0.1%、ペプ
トン0.5%、サツカロース0.5%、MgSO4 2mM、場合によ
り寒天1.5% MS培地:Murashige及びSkoogによる〔Physiologia Pla
ntarum(1962年)、15巻、473〜497頁〕 3.アグロバクテリウム・ツメフアチエンスの形質転換 Bin19誘導体ではアグロバクテリウム属菌中へのDNAの
導入はHolster等の方法〔Mol.Gen.Genet.(1978年),16
3巻,181〜187頁〕で直接形質転換により行なう。形質転
換されたアグロバクテリウム属菌のプラスミドDNAをBir
nboim及びDolyの方法〔Nucl.Acids,Res.(1979年),7
巻,1513〜1523頁〕により単離しかつ好適な制限切断に
よりゲル電気泳動で分離する。
て、それを、選択下に成長したアグロバクテリウム・ツ
メフアチエンス−一晩培養物30〜50μを含有する、サ
ツカロース2%含有MS培地10ml中に浸した。3〜5分間
軽く振盪した後でペトリ皿を25℃暗所で恒温保持した。
2日後、葉をグルコース1.6%、ゼアチンリボース2mg/
、ナフチル酢酸0.02mg/、ジベレリン酸0.02mg/、
クラホラン(Claforan)500mg/、カナマイシン50mg/
及びバクト寒天0.8%を含有するMS培地上にのせた。2
5℃、3000Luxで1週間恒温保持した後で培地中のクラホ
ラン濃度を半分に低めた。
l.Biol.(1985年),5巻,69〜76頁〕により行なつた。
サザンプロツトにより検出すべきDNA配列の組込みにつ
いて試験した。
m.(1987年),163巻,16〜20頁〕により行なつた。
トにより目的の転写物の存在を試験した。
活性をJefferson法〔Plant Mol.Biol.Rep.(1987年),5
巻,387〜405頁〕により測定した。蛋白質測定はBradfor
d法〔Anal.Biochem.(1976年),72巻,248〜254頁〕によ
り行なつた。GUS活性の測定には蛋白質50μgを使用
し、恒温保持を37℃で30分間行なつた。
モータの単離及び同定並びに機能及び使用について詳説
する。
化及び構造分析 ジヤガイモのパタチン蛋白質をコードするcDNA−クロ
ーンをジヤガイモの変種ベロリーナ(Berolina)から単
離しかつ配列した〔Rosahl等著,Mol.Gen.Genetics(198
6年),203巻,214〜220頁〕。このcDNA−クローンは、内
生ゲノムパタチンクローンをジヤガイモの変種ベロリー
ナ(Max−Planck−Institut fuer Zuechtungsforschun
g,Koeln在)から単離するのに有用であつた。
造 λフアージから誘導されたベクターEMBL4中で形成さ
れた、ジヤガイモの変種ベロリーナからの核DNAのゲノ
ムライブラリーをパタチンcDNA pcT58によりスクリーニ
ングした。13個の独立したクローンが得られ、それらの
うち部分配列後にクローンB33をそれ以後の操作に使用
した。クローンB33の制限地図は第1図に図示した。遺
伝子の一部を配列し、転写調節に重要な領域の配列は第
2図に図示した。
節領域の同定 位置+14と−1513との間に局在している1.527kbのDra
I/Dra I−フラグメント(第2図参照)をプラスミドpB
I101〔Jefferson等著,EMBO J.(1987年),6巻,3901〜39
07頁〕のSma I切断部位中に挿入した。これにより、パ
タチン遺伝子B33のこのプロモータフラグメントはE.コ
リからのβ−グルコロニダーゼのコード付け領域及びノ
パリンシンターゼ遺伝子のポリ−A含有領域と融合した
(第3図参照)。この構成物をアグロバクテリウム属菌
LBA4404〔Bevan,M.著,Nucl.Acids Res.(1984年),12
巻,8711〜8721頁〕中に転移させ、かつキメラパタチン
遺伝子を含有するアグロバクテリウム属菌をジヤガイモ
の葉の形質転換に使用する。
ロニダーゼ遺伝子の存在をサザンプロツト分析により検
出した、独立して得られた10個の形質転換体について
葉、茎、塊茎及び根のβ−グルクロニダーゼ活性を試験
した。
ロニダーゼ遺伝子と融合したパタチン遺伝子B33のDra I
/Dra I−フラグメントが強力な塊茎特異的β−グルクロ
ニダーゼ活性を誘発することが全く明らかである。
分で記載した。
応する活性を示す。
ローンの制限地図の図、第2図はパタチン遺伝子の、転
写調節に重要である領域の核酸配列を示す図であり、配
列中、Dra I/Dra I−フラグメントの位置は+14と−151
3との間で矢印で示し、▼で示すATGは翻訳開始点であ
り、第3図は2.0kbのカナマイシン耐性遺伝子、1.527kb
のパタチンプロモータB33、2.0kbのβ−グルクロニダー
ゼ遺伝子及びノパリンシンターゼターミネータをその中
に含む13.5kbのプラスミドpBI101−B33の構造を示す図
である。
Claims (7)
- 【請求項1】トランスジェニック塊茎形成双子葉植物を
製造する方法において、該トランスジェニック塊茎形成
双子葉植物がその塊茎中に非相同オリジンのDNA配列を
特異的に発現すること、及び該方法は次の工程: a)次の配列: i)Kpn I/Hind IIIフラグメントの配列: の位置+14〜−1513の間に位置するDra I/Dra I−フラ
グメントからなる、ソラヌム・ツベロスムから得られ
た、パタチン遺伝子のB33プロモータ配列、これは該B33
プロモータ配列に融合した配列の塊茎特異的発現に導
く、 ii)該B33プロモータ配列にセンス方向で融合する非相
同オリジンのDNA配列、及び iii)転写及び翻訳終止のためのDNA配列、 を有する発現カセットを製造する工程; b)塊茎形成双子葉植物の細胞中に該発現カセットを導
入する工程、これにより形質転換塊茎形成双子葉植物細
胞が製造される;及び c)形質転換した塊茎形成双子葉植物細胞から完全なト
ランスジェニック塊茎形成双子葉植物全体を再生する工
程、その際トランスジェニック塊茎形成双子葉植物はそ
の塊茎中で非相同オリジンのDNA配列を特異的に発現す
る; からなることを特徴とするトランスジェニック塊茎形成
双子葉植物の製造法。 - 【請求項2】B33プロモータ配列が のDNA配列からなる、請求項1記載の方法。
- 【請求項3】トランスジェニックジャガイモ植物を製造
する方法において、該トランスジェニックジャガイモ植
物がその塊茎中に非相同オリジンのDNA配列を特異的に
発現すること、及び該方法は次の工程: a)次の配列: i)Kpn I/Hind IIIフラグメントの配列: の位置+14〜−1513の間に位置するDra I/Dra I−フラ
グメントである、ソラヌム・ツベロスムから得られた、
パタチン遺伝子のB33プロモータ配列、これは該B33プロ
モータ配列に融合した配列の塊茎特異的発現に導く、 ii)該B33プロモータ配列にセンス方向で融合する非相
同オリジンのDNA配列、及び iii)転写及び翻訳終止のためのDNA配列、 を有する発現カセットを製造する工程; b)ジャガイモ細胞中への該発現カセットを導入する工
程、これにより形質転換したジャガイモ細胞が製造され
る;及び c)該形質転換したジャガイモ細胞から完全なトランス
ジェニックジャガイモ植物全体を再生する工程、その際
トランスジェニックジャガイモ植物はその塊茎中で非相
同オリジンのDNA配列をその根、茎又は葉中に比較して
少なくとも100倍高いレベルで発現する、 からなることを特徴とするトランスジェニックジャガイ
モ植物の製造法。 - 【請求項4】次の配列: i) のDNA配列からなるソラヌム・ツベロスムから得られた
パタチン遺伝子のプロモータ配列、 ii)該プロモータ配列にセンス方向で融合する非相同オ
リジンのDNA配列、及び iii)転写及び翻訳終止のためのDNA配列、 を有する発現カセットを含有する植物細胞。 - 【請求項5】DNA配列: からなる単離されたパタチンプロモータ配列。
- 【請求項6】次の要素: i) のDNA配列からなるソラヌム・ツベロスムから得られた
パタチン遺伝子のプロモータ配列、 ii)該プロモータ配列にセンス方向で融合する非相同オ
リジンのDNA配列、及び iii)転写及び翻訳終止のためのDNA配列、 を有するキメラ遺伝子を有するトランスジェニックジャ
ガイモ。 - 【請求項7】次の配列: i)Kpn I/Hind IIIフラグメントの配列: の位置+14〜−1513の間に位置するDra I/Dra I−フラ
グメントからなる、ソラヌム・ツベロスムから得られ
た、パタチン遺伝子のB33プロモータ配列、これは該B33
プロモータ配列に融合した配列の塊茎特異的発現に導
く、 ii)前記B33プロモータ配列にセンス方向で融合する非
相同オリジンのDNA配列、及び iii)転写及び翻訳終止のためのDNA配列、 を有する発現カセット。
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