JP2954663B2 - Gene DNA involved in leucine analog resistance and responsible for leucine biosynthesis, and use thereof - Google Patents

Gene DNA involved in leucine analog resistance and responsible for leucine biosynthesis, and use thereof

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【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、ロイシンアナログ耐性株に由来するLEU4遺
伝子領域を有するDNA、それがベクターに組み込まれた
プラスミド、そのプラスミドを用いて形質転換せしめた
サッカロマイセス属酵母およびそれを利用する醗酵飲食
品等の製造法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Application Field] The present invention relates to a DNA having a LEU4 gene region derived from a leucine analog-resistant strain, a plasmid having the LEU4 gene region incorporated in a vector, and a transformant using the plasmid. The present invention relates to a method for producing yeast of the genus Saccharomyces and fermented foods and drinks using the yeast.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

一般に、香りはアルコール飲料や食品の品質を決定す
る重要な要素であり、香気エステルである酢酸イソアミ
ルは果実の香りに似た、極めて好ましい香気成分のひと
つであって、カプロン酸エチルとならんで例えば吟醸酒
の香りの主成分をなすものであり、その主原料はイソア
ミルアルコールである。
In general, aroma is an important factor in determining the quality of alcoholic beverages and foods, and isoamyl acetate, which is a flavor ester, is one of highly preferred flavor components similar to fruit aroma, and is similar to ethyl caproate, for example. It is the main component of the scent of Ginjo sake, and its main ingredient is isoamyl alcohol.

しかしながら一般に実用酵母のこれらの香気成分の生
産量は低いので、香気豊かな醗酵飲食品等を製造する場
合は、酵母に人工的突然変異を生成せしめて高級アルコ
ールまたはエステルの高生産能を付与する方法が取られ
ており、すでに、ロイシンのアナログに耐性を示す変異
酵母を用いた香気の豊かなアルコール飲料等の製造法
(特開昭62−6669号公報)が知られている。
However, in general, the production amount of these flavor components of practical yeasts is low, so when producing fermented foods and drinks rich in aroma, etc., artificial mutation is generated in the yeast to impart a high productivity of higher alcohols or esters. A method has already been known for producing a fragrant alcoholic beverage or the like using a mutant yeast having resistance to a leucine analog (Japanese Patent Laid-Open No. 62-6669).

〔発明が解決しようとする課題〕[Problems to be solved by the invention]

香気豊かな醗酵飲食品等の生産微生物の改良について
は、上記のような事が知られているが、従来の変異処理
方法では、特定の遺伝子を選択的に増幅させることに依
ってイソアミルアルコールおよび/または酢酸イソアミ
ルの生成量の増大をはかることは事実上できない。ま
た、変異処理によって優れた醸造特性が失われる危険が
伴う。
As for the improvement of microorganisms producing fermented foods and beverages with aroma, the above is known.However, in the conventional mutation treatment method, isoamyl alcohol and isoamyl alcohol are selectively amplified by selectively amplifying a specific gene. It is virtually impossible to increase the amount of isoamyl acetate produced. In addition, there is a risk that excellent brewing characteristics are lost by the mutation treatment.

また、一般に酵母の組換えDNA技術に用いられるプラ
スミドベクターの検出用マーカーには、主にアミノ酸な
どの栄養要求性が用いられているが、実用酵母は栄養要
求性をもっておらず、また突然変異処理による栄養要求
性の付与は困難であり、有用形質が損なわれるという危
険性も無視し得ない。
In general, auxotrophs such as amino acids are mainly used as markers for detecting plasmid vectors used in yeast recombinant DNA technology, but practical yeasts do not have auxotrophy and mutation It is difficult to impart auxotrophy with the use of liposomes, and the danger that useful traits are impaired cannot be ignored.

そこでこのような酵母を対象として突然変異を生じさ
せることなく選択が可能なマーカーとして、G418等の薬
剤に対する耐性遺伝子の利用が報告されているが、清酒
酵母は、その様な薬剤に対する抵抗性が高く、効率的な
形質転換体の選択は困難である。
Thus, the use of a resistance gene to a drug such as G418 has been reported as a marker that can be selected without causing a mutation in such a yeast, but sake yeast has a resistance to such a drug. It is difficult to select high and efficient transformants.

〔課題を解決するための手段〕[Means for solving the problem]

本発明は、上記した欠点を一挙に解決する目的でなさ
れたものである。
The present invention has been made for the purpose of solving the above-mentioned disadvantages all at once.

そこで本発明者らは、先ず、以下に示される酵母のロ
イシン生合成のパスウェイに着目した。
Therefore, the present inventors first focused on the following pathways for leucine biosynthesis in yeast.

上記ロイシン生合成系において、この経路の律速酵素
であるα−イソプロピルマレートシンターゼ(IPM)
は、通常、最終生産物であるロイシンによるフィードバ
ック阻害を受けている。しかしながら、本発明者らが得
た5−5−5−トリフルオロロイシン耐性株の内の一株
は、IPMがロイシンによるフィードバック阻害を受けな
いことが確認され、また、IPMの構造遺伝子として3種
類のアイソザイム(LEU4、LEU7、LEU8)が存在するが、
その内のLEU4遺伝子が変異型となっていることも確認さ
れた。
In the leucine biosynthesis system, α-isopropylmalate synthase (IPM) which is the rate-limiting enzyme in this pathway
Is usually subject to feedback inhibition by the end product leucine. However, it was confirmed that one of the 5-5-5-trifluoroleucine resistant strains obtained by the present inventors did not undergo feedback inhibition of IPM by leucine, and that three types of IPM structural genes were used. Isozymes (LEU4, LEU7, LEU8) exist,
It was also confirmed that the LEU4 gene was mutated.

上記のような知見に着目して、本発明者らは、遺伝子
組換え技術をイソアミルアルコールおよび/または酢酸
イソアミル生成酵母の育種に利用する研究を重ねた結
果、ロイシンアナログ耐性株由来のLEU4遺伝子の組み込
まれたプラスミドを用いて酵母を形質転換せしめた時
に、大部分の形質転換体がロイシンアナログ耐性株とし
て特異的に選択できることを見いだし、同時にこれらの
形質転換菌株が、培地中にイソアミルアルコールおよび
/または酢酸イソアミルをより多く蓄積することを見い
だし、本発明を完成した。
Focusing on the findings as described above, the present inventors have repeated studies using gene recombination technology for isoamyl alcohol and / or isoamyl acetate-producing yeast breeding. As a result, the LEU4 gene derived from a leucine analog-resistant strain was identified. When the yeast was transformed with the integrated plasmid, it was found that most of the transformants could be specifically selected as leucine analog resistant strains, and at the same time, these transformant strains were isolated in the medium by isoamyl alcohol and / or Alternatively, they have found that they accumulate more isoamyl acetate, and completed the present invention.

すなわち、本発明はロイシンアナログ耐性菌由来のDN
A、それが組み込まれたプラスミド、該プラスミドを用
いた酵母の形質転換法および該プラスミドで形質転換さ
れた酵母及び該酵母を利用する醗酵飲食品等の製造法に
関するものである。
That is, the present invention relates to DN derived from leucine analog-resistant bacteria.
A, a plasmid incorporating the same, a method for transforming a yeast using the plasmid, a method for producing a yeast transformed with the plasmid, and a method for producing fermented foods and drinks using the yeast.

以下、本発明を詳細に説明する。 Hereinafter, the present invention will be described in detail.

本発明のDNAはロイシンアナログ耐性を有する微生物
から得られる。
The DNA of the present invention is obtained from a microorganism having leucine analog resistance.

ここで言う「ロイシンアナログ耐性株」とは、サッカ
ロマイセス属酵母を親株として誘導される微生物であっ
て、親株が生育できないような高い濃度のロイシンアナ
ログを含む培地でも生育できるように遺伝的性質の変化
した微生物を言う。また、ロイシンアナログとはロイシ
ンと類似の構造を有する物質、例えば4−アザ−D,L−
ロイシン、5−5−5−トリフルオロ−D,L−ロイシン
などをいう。本発明で言うロイシンアナログ耐性はロイ
シンのアナログの少なくとも一つに耐性を有するもので
あれば良い。
The term "leucine analog-resistant strain" used herein refers to a microorganism derived from a yeast of the genus Saccharomyces as a parent strain, and has a genetic property change such that the strain can grow on a medium containing a high concentration of leucine analog so that the parent strain cannot grow. Say microorganisms. Leucine analogs are substances having a structure similar to leucine, for example, 4-aza-D, L-
Leucine, 5-5-5-trifluoro-D, L-leucine and the like. The leucine analog resistance referred to in the present invention may be a resistance to at least one of leucine analogs.

このようなDNAの供与菌の例としては、サッカロマイ
セス・セレヴィシエ7−F−13(FERM P−8236)があげ
られるが、この株に限定されるものではない。
An example of such a DNA donor is Saccharomyces cerevisiae 7-F-13 (FERM P-8236), but is not limited to this strain.

染色体DNAを抽出する方法としては、常法にしたがっ
て行えばよく、このようなDNA供与体微生物を培養した
後、微生物菌体を集菌し、これを例えばMarmurらの方法
又はRodoriguezらの方法(文献10、12)によって抽出す
ればよい。
The method for extracting chromosomal DNA may be performed according to a conventional method. After culturing such a DNA donor microorganism, the microbial cells are collected, and this is, for example, the method of Marmur et al. Or the method of Rodriguez et al. What is necessary is just to extract according to literature 10 and 12).

このようにして得た染色体DNAを用いて常法にしたが
って遺伝子ライブラリーを作成し、プローブを用いてプ
ラークないしコロニーハイブリダイゼイションを行い、
目的とするLEU4遺伝子を単離する。
Using the chromosomal DNA obtained in this manner to create a gene library according to a conventional method, plaque or colony hybridization using a probe,
Isolate the desired LEU4 gene.

このようにしてクローニングした後、LEU4遺伝子を含
むDNAをプラスミドにつないで組換え体DNAを形成する。
After cloning in this manner, the DNA containing the LEU4 gene is ligated to a plasmid to form a recombinant DNA.

得られたプラスミドにより酵母の形質転換を行うが、
本発明に係る形質転換体はロイシンアナログ耐性を有し
ているため、ロイシンアナログ含有培地を利用すれば目
的とする形質転換株のみが特異的に且つポジティブに選
択することができる。
The yeast is transformed with the obtained plasmid,
Since the transformant according to the present invention has leucine analog resistance, only a target transformant can be specifically and positively selected by using a leucine analog-containing medium.

このようにして得た形質転換株を利用すればイソアミ
ルアルコール及び/又は酢酸イソアミルを著量生産せし
めることができ、これらの芳香成分の製造、これら芳香
成分を利用した各種醗酵食品(吟醸酒、清酒、ブドウ
酒、焼酎、パン、シードル、ビール、甘酒その他)の製
造に広く利用することができる。また、このようにして
クローニングされたLEU4遺伝子及び/又はそれを含有す
るDNA断片をマーカーとすることにより、遺伝子操作で
得た各種目的形質転換体をポジティブに選択することが
でき、スクリーニングがきわめて効率的に行われるだけ
でなく、見落しや見誤りがなくきわめて正確に行われ、
きわめてすぐれている。
By using the transformant thus obtained, isoamyl alcohol and / or isoamyl acetate can be produced in a remarkable amount. Production of these aromatic components, and various fermented foods using these aromatic components (Ginjo sake, sake) , Wine, shochu, bread, cider, beer, amazake, etc.). In addition, by using the thus cloned LEU4 gene and / or a DNA fragment containing it as a marker, various target transformants obtained by genetic manipulation can be positively selected, and screening is extremely efficient. Not only oversight, but also very accurate without oversight or mistakes,
Very good.

このようにきわめてすぐれた特徴を有する本発明を実
施するには、先ずはじめに、染色体DNAを抽出した後、L
EU4遺伝子のクローニングを行うが、LEU4遺伝子のクロ
ーニングは、例えば、上記の染色体DNAを用いて文献5
などの方法に従って作成した遺伝子ライブラリーを、文
献11に報告されている野生型のLEU4遺伝子配列に基づい
て作製した合成DNAプローブを用いて文献5などの方法
でプラークまたはコロニーハイブリダイゼーションを行
い単離することができる。
In order to carry out the present invention having such excellent characteristics, first, after extracting chromosomal DNA, L
The EU4 gene is cloned. The LEU4 gene is cloned, for example, by using the chromosomal DNA described above in Reference 5.
A genomic library prepared according to the method described in Literature 11 is isolated by performing plaque or colony hybridization using a synthetic DNA probe prepared based on the wild-type LEU4 gene sequence reported in Literature 11 by the method described in Literature 5. can do.

クローニングに用いる宿主としてはエシェリシア・コ
リ(Escherichia coli)Q359(文献1)、P2392(文献
2)など、ベクターとしてはλファージクローニングベ
クターEMBL3(文献3)、λ2001(文献4)などを用い
ることができるが、本クローニングの目的を達成するも
のであれば上記以外の宿主及びベクターでも用いること
ができる。染色体DNAの断片化やファージベクターの切
断は、例えば、Sau3A IやBamH Iのような制限酵素を用
いた通常の酵素反応で行うことができる。
As a host used for cloning, Escherichia coli Q359 (Reference 1), P2392 (Reference 2) and the like, and as a vector, a λ phage cloning vector EMBL3 (Reference 3) and λ2001 (Reference 4) can be used. However, other hosts and vectors can also be used as long as they achieve the purpose of the present cloning. Fragmentation of the chromosomal DNA and cleavage of the phage vector can be performed, for example, by a normal enzyme reaction using a restriction enzyme such as Sau3AI or BamHI.

DNAの断片とファージベクターとの連結は、例えば、T
4DNAリガーゼのような酵素を用いた通常のライゲーショ
ン反応で行うことができる。連結されたDNAは、例え
ば、文献5などの方法によってファージ粒子に導入され
E.coliに対する感染力を付与することができる。また、
合成DNAプローブとしては、文献11に記載されてあるLEU
4遺伝子のDNA配列の任意の部分から17塩基以上の任意な
長さの配列と等しい合成DNAを作製しこれを用いること
ができる。
Ligation of a DNA fragment and a phage vector is performed, for example, by T
4 It can be performed by a normal ligation reaction using an enzyme such as DNA ligase. The ligated DNA is introduced into phage particles by the method described in Reference 5, for example.
It can impart infectivity to E. coli. Also,
As a synthetic DNA probe, LEU described in Reference 11
From any part of the DNA sequence of the four genes, a synthetic DNA equivalent to a sequence of any length of 17 bases or more can be prepared and used.

合成DNAプローブで選別された組換え体ファージは、
たとえば、文献5の方法で大量に増殖させ、このファー
ジからLEU4遺伝子を含むDNAを回収して、pBR322(文献
6)、pUC19(文献7)などの大腸菌のベクターや、YRp
7(文献8)、YEp13(文献9)などの酵母のベクターに
つなぐかあるいはLEU4遺伝子を含む染色体断片のみを用
いて酵母の形質転換に用いることができる。
The recombinant phage selected by the synthetic DNA probe was
For example, the phage is grown in large amounts by the method of Reference 5, DNA containing the LEU4 gene is recovered from the phage, and Escherichia coli vectors such as pBR322 (Reference 6) and pUC19 (Reference 7);
7 (Reference 8), YEp13 (Reference 9), or the like, or can be used for yeast transformation using only a chromosome fragment containing the LEU4 gene.

例えば、清酒酵母協会7号(JCM1818)を用いた場合
は、この酵母を一夜YEPD培地で培養し、滅菌(121℃、1
atm、15分)したTEバッファー(10mM Tris・HCl、1mM E
DTA、pH8.0)で洗浄後、0.2Mの酢酸リチウムで、30℃、
60分インキュベートした菌液100μに、10μgのプラ
スミドDNA(20μ)を添加混合後、さらに30分インキ
ュベートを続ける。次に、等容量の70%PEG−4000を添
加混合し更に60分インキュベートを続けた後、42℃、15
分保持する。この菌液を滅菌水で3回洗浄した後、100
μMの5−5−5−トリフルオロ−D,L−ロイシンを含
むSD寒天培地(2%グルコース、0.67%イースト・ナイ
トロジェン・ベース、2%寒天)にまき、生育して来る
コロニーをLEU4遺伝子自身が有するロイシンアナログ耐
性を指標として容易に選抜できる。
For example, when Sake Yeast Association No. 7 (JCM1818) is used, this yeast is cultured overnight in a YEPD medium and sterilized (121 ° C., 1 ° C.).
atm, 15 min) TE buffer (10 mM Tris-HCl, 1 mM E
DTA, pH 8.0), then with 0.2M lithium acetate at 30 ℃
After adding and mixing 10 μg of plasmid DNA (20 μ) to 100 μl of the bacterial solution incubated for 60 minutes, the incubation is continued for another 30 minutes. Next, an equal volume of 70% PEG-4000 was added and mixed, and the mixture was further incubated for 60 minutes.
Hold for a minute. After washing this bacterial solution three times with sterile water, 100
A colony growing on an SD agar medium (2% glucose, 0.67% yeast nitrogen base, 2% agar) containing μM 5-5-5-trifluoro-D, L-leucine was used to grow the colony. Selection can be easily performed using the leucine analog resistance of the subject as an index.

こうして得た形質転換体の例として、サッカロマイセ
ス・セレヴィシエK−7(JCM1818)の形質転換株であ
るサッカロマイセス・セレヴィシエ X−4(FERM P−11
424)があげられる。
As an example of the transformant thus obtained, Saccharomyces cerevisiae X-7 (FERM P-11) which is a transformant of Saccharomyces cerevisiae K-7 (JCM1818) is used.
424).

上記のサッカロマイセス・セレヴィシエ X−4株を用
いた醗酵飲食品等の製造法は従来一般的に行われている
製造法にしたがって行うことができ、この点においても
本発明は単越している。
The method for producing fermented foods and drinks using the Saccharomyces cerevisiae strain X-4 described above can be carried out in accordance with a conventionally and generally employed production method, and the present invention is singular in this respect.

本発明の説明に当り、本明細書において引用ないし参
考にした文献は次のとおりである。
In describing the present invention, the following documents are cited or referred to in the present specification.

参考文献: 1.T.Maniatis,E.f.Fritsch and J.Sambrook,Molecular
Cloning Cold Spring Habor(1982),504〜506 2.J.Gough and N.Murray,J.Mol.Biol.,166,1〜19.(198
3) 3.Frischauf A.M.et.al.,J.Mol.Biol.,170,827(1983) 4.J.Karn,H.Matthes,M.Gait and S.Benner,Gene,32,217
〜224(1984) 5.村松正實編:“ラボマニアル遺伝子工学"P73〜106(1
988) 6.Keith W.C.Peden,Gene,22,277(1983) 7.Yanisch−Perron,C,Vieria,J.and Messing,J.,Gene,3
3,103〜119(1985) 8.Struhl,K.,D.T.Stinchcomb,S.Scherer and R.W.Davi
s,Proc.Natl.Aced.Sci.U.S.,76,1035,(1979) 9.J.R.Broach,J.N.Strathern and J.B.Hick,Gene,8,121
〜133(1979) 10.Cryer,D.R.,R.Eccleshall and J.Marmur,Methods in
Cell Biology XII(ed.Prescott,D.M.)39,Academic P
ress(1975) 11.James P.Beltzer et.al.,J.Biol,Chem.,261,5160〜5
167(1986) 12.Rodoriguez and Tait,Recombinant DNA techniques,
Addisson−Wesley Pub.Co.(1983) 〔実施例〕 以下に、実施例をもって本発明をさらに具体的に説明
する。
References: 1. T. Maniatis, EfFritsch and J. Sambrook, Molecular
Cloning Cold Spring Habor (1982), 504-506 2.J. Gough and N. Murray, J. Mol. Biol., 166, 1-19. (198
3) 3. Frischauf AMet.al., J. Mol. Biol., 170, 827 (1983) 4. J. Karn, H. Matthes, M. Gait and S. Benner, Gene, 32, 217
224224 (1984) 5. Masanori Muramatsu ed .: “Lab-manual genetic engineering” P73-106 (1
988) 6. Keith WCPeden, Gene, 22, 277 (1983) 7. Yanisch-Perron, C, Vieria, J. and Messing, J., Gene, 3
3,103-119 (1985) 8.Struhl, K., DTStinchcomb, S.Scherer and RWDavi
s, Proc.Natl.Aced.Sci.US, 76,1035, (1979) 9.JRBroach, JNStrathern and JBHick, Gene, 8,121
~ 133 (1979) 10.Cryer, DR, R.Eccleshall and J.Marmur, Methods in
Cell Biology XII (ed. Prescott, DM) 39, Academic P
ress (1975) 11.James P. Beltzer et.al., J. Biol, Chem., 261, 5160-5
167 (1986) 12.Rodoriguez and Tait, Recombinant DNA techniques,
Addisson-Wesley Pub. Co. (1983) [Example] Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples.

実施例1 (1)染色体DNAの調製 5−5−5−トリフルオロ−D,L−ロイシン耐性を有
するサッカロマイセス・セレビシエ7−F−13(FERM P
−8236)を500mlのYEPD培地(ブドウ糖2%、ポリペプ
トン2%、酵母エキス1%)に接種し、30℃で1夜培養
し、得られた菌体よりMARMURらの方法(文献10)を用い
て染色体DNAを調製した。
Example 1 (1) Preparation of chromosomal DNA Saccharomyces cerevisiae 7-F-13 (FERM P) having 5-5-5-trifluoro-D, L-leucine resistance
-8236) into 500 ml of YEPD medium (2% glucose, 2% polypeptone, 1% yeast extract), incubate at 30 ° C overnight, and use the method of MARMUR et al. (Reference 10) from the obtained cells. To prepare chromosomal DNA.

(2)DNA消化物のナイロンフィルターへのブロッティ
ング (1)で取得したDNAを種々の制限酵素で消化し、ラ
ムダ−ファージのDNA(東洋紡社製)Hind III分解物の
分子量を基準にするアガロース電気泳動を行った。次
に、文献5の方法に従って泳動したゲルからDNAをナイ
ロンフィルターに写し取り、紫外線を5分照射して固定
した。
(2) Blotting of DNA digest on nylon filter The DNA obtained in (1) was digested with various restriction enzymes, and agarose electrophoresis was performed based on the molecular weight of lambda-phage DNA (manufactured by Toyobo) Hind III digest. Electrophoresis was performed. Next, the DNA was transferred to the nylon filter from the gel that had been electrophoresed according to the method of Reference 5, and fixed by irradiating with ultraviolet light for 5 minutes.

(3)LEU4を含む染色体断片の検出 文献5の方法にしたがって、ナイロンフィルターはハ
イブリダイゼーション液(5%フィコール、5%ポリビ
ニルピロリドン、5%牛血清アルブミン)中にて32
[P]−γ−ATPでT4DNAキナーゼで5′末端を32[P]
ラベルした合成DNA(第1図)を用いてハイブリダイゼ
ーションを60℃、一夜行なった。次に、ナイロンフィル
ター膜を2×SSC(0.3NaCl、0.03Mクエン酸ナトリウ
ム、pH7.0)で60℃、15分、で2回洗浄し、さらに0.1×
SSC(0.015M NaCl、0.0015Mクエン酸ナトリウム、0.1%
SDS、pH7.0)で60℃、5分洗浄した。次に、この膜をサ
ランラップ(旭化成:登録商標)で覆い、X線フィルム
と密着させ、−70℃で一夜感光させた。
(3) Detection of chromosome fragment containing LEU4 According to the method of Reference 5, a nylon filter was used in a hybridization solution (5% Ficoll, 5% polyvinylpyrrolidone, 5% bovine serum albumin).
[P] -γ-ATP at the 5 ′ end with T4 DNA kinase at 32 [P]
Hybridization was performed overnight at 60 ° C. using the labeled synthetic DNA (FIG. 1). Next, the nylon filter membrane was washed twice with 2 × SSC (0.3NaCl, 0.03 M sodium citrate, pH 7.0) at 60 ° C. for 15 minutes, and further 0.1 ×
SSC (0.015M NaCl, 0.0015M sodium citrate, 0.1%
(SDS, pH 7.0) at 60 ° C. for 5 minutes. Next, this film was covered with Saran Wrap (Asahi Kasei: registered trademark), brought into close contact with an X-ray film, and exposed to light at -70 ° C overnight.

(4)LEU4を含む染色体断片の大きさの推定 X線フィルムに現れたバンドの大きさを電気泳動の基
準DNAと比較して決定し、LEU4遺伝子は6.5kbのEcoR I断
片中に含まれていた。
(4) Estimation of the size of the chromosome fragment containing LEU4 The size of the band that appeared on the X-ray film was determined by comparing it with the reference DNA for electrophoresis, and the LEU4 gene was contained in the 6.5 kb EcoRI fragment. Was.

(5)制限酵素による染色体DNAの消化と分画 0.2μg/μの(1)で取得したDNAをハイ・バッファ
ー中で0.05nuit/μの制限酵素Sau3A Iで、37℃、15分
分解した分解物(DNA量で200μg)を9mlの10〜40%シ
ョ糖密度勾配中遠心し、0.5mlづつ分画採取した。遠心
は日立RP−65Tローターを用い、20℃、25,000rpm、24時
間行った。電気泳動で各画分の長さを測定し、9〜23kb
の画分を得た。
(5) Digestion and fractionation of chromosomal DNA by restriction enzyme The DNA obtained in (1) at 0.2 μg / μ was digested with 0.05 nuit / μ restriction enzyme Sau3A I in high buffer at 37 ° C for 15 minutes. The product (200 μg in DNA amount) was centrifuged in 9 ml of a 10 to 40% sucrose density gradient, and 0.5 ml fractions were collected. Centrifugation was performed at 20 ° C., 25,000 rpm for 24 hours using a Hitachi RP-65T rotor. Measure the length of each fraction by electrophoresis, and
Fractions were obtained.

(6)DNAの連結とE.coliへの感染 (5)で得たDNA断片4μgをファージベクターEMBL3
のBamH Iアーム(アマシャム社製)2μgにT4DNAリガ
ーゼととも100μの6mM MgCl2、6mM β−メルカプトエ
タノール、0.5mM ATP、6mM Tris・HCl(pH7.6)中で14
℃一晩インキュベートした後、この反応液20μをイン
・ビトロ・パッケージング・キット(アマシャム社製)
を用いてイン・ビトロ・パッケージングし連結したDNA
をファージ粒子の中に導入した。
(6) Ligation of DNA and infection of E. coli 4 μg of the DNA fragment obtained in (5) was phage vector EMBL3
2 μg of BamHI arm (manufactured by Amersham) together with T4 DNA ligase in 100 μm of 6 mM MgCl 2 , 6 mM β-mercaptoethanol, 0.5 mM ATP, 6 mM Tris · HCl (pH 7.6)
After incubating overnight at 20 ° C, 20 µl of this reaction solution is used in an in vitro packaging kit (Amersham).
In vitro packaged and ligated DNA
Was introduced into the phage particles.

次に、このファージ液1μを宿主E.coli P2392を文
献5の方法で培養した菌液200μと混ぜ37℃、15分イ
ンキュベートして宿主に感染させ、10mlのソフトアガロ
ースを添加混合し15cmの寒天プレート上にまいた。この
プレートを4〜10時間37℃で培養し寒天培地上にファー
ジのプラークを形成させた。制限酵素、T4DNAリガーゼ
は宝酒造(株)社製を用い、活性単位は付属説明書の定
義によった。
Next, 1 µ of the phage solution was mixed with 200 µ of a bacterial solution obtained by culturing the host E. coli P2392 according to the method of Reference 5, incubated at 37 ° C for 15 minutes to infect the host, 10 ml of soft agarose was added and mixed, and 15 cm of agar was added. Plated on a plate. This plate was cultured at 37 ° C. for 4 to 10 hours to form phage plaques on the agar medium. Restriction enzyme and T4DNA ligase were manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd., and the activity unit was defined according to the attached manual.

(7)一次スクリーニング 文献5の方法で、(6)で得たファージプラーク約20
000個をナイロンフィルター膜(ハイボンドN:アマシャ
ム社製)に写し取り、紫外線で固定化後、(3)に記載
の方法でハイブリダイゼーションおよびX線フィルムに
よる検出を行い、X線フィルムと同じ位置にあるファー
ジのプラークをLEU4を含むファージとして単離した。
(7) Primary screening According to the method of Reference 5, about 20 phage plaques obtained in (6)
000 pieces were transferred to a nylon filter membrane (Hibond N: manufactured by Amersham), immobilized with ultraviolet light, and then subjected to hybridization and detection using an X-ray film according to the method described in (3), and were placed in the same position as the X-ray film. One phage plaque was isolated as a phage containing LEU4.

(8)二次スクリーニング (7)で得たファージを用いて文献5の方法でファー
ジ溶菌液を調製し、これよりDNAを調製した。このDNAを
制限酵素EcoR Iで切断し、アガロース電気泳動を行っ
た。泳動されたDNAを(2)、(3)に記載された方法
でサザン解析を行い、6.5kbのEcoR I断片を有し、LEU4
遺伝子の地図と類似の切断地図を持つファージλ−26を
選択した。ファージλ−26の切断地図を第2図に示す。
(8) Secondary screening Using the phage obtained in (7), a phage lysate was prepared according to the method of Reference 5, and DNA was prepared therefrom. This DNA was cut with a restriction enzyme EcoRI and subjected to agarose electrophoresis. The electrophoresed DNA was subjected to Southern analysis by the method described in (2) and (3), and had a 6.5 kb EcoRI fragment and LEU4
A phage λ-26 having a cleavage map similar to the gene map was selected. FIG. 2 shows a cleavage map of phage λ-26.

(9)プラスミドへの連結 ファージλ−26の6.5kbのEcoR I断片をpUC19(宝酒造
社製)の中に挿入してプラスミドpL4を作製し、pL4に更
に自立的複製開始点およびTRP1遺伝子をつなぎプラスミ
ドpL4Tを作製した(第3図)。
(9) Ligation to plasmid Plasmid pL4 was prepared by inserting the 6.5 kb EcoRI fragment of phage λ-26 into pUC19 (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), and the autonomous replication origin and TRP1 gene were further connected to pL4. The plasmid pL4T was prepared (FIG. 3).

(10)プラスミドpL4を用いた酵母の形質転換 実用酵母協会7号(JCM1818)を先に得たプラスミドp
L4で形質転換させた場合は、pL4μgあたり5〜10個の
形質転換細胞が得られ、これらの形質転換細胞はすべて
100μMの5−5−5−トリフルオロ−D,L−ロイシン耐
性を獲得していた。
(10) Transformation of yeast using plasmid pL4 Plasmid p obtained previously from Practical Yeast Association No. 7 (JCM1818)
When transformed with L4, 5-10 transformed cells are obtained per 4 μg of pL, and all these transformed cells are
100 μM of 5-5-5-trifluoro-D, L-leucine resistance was obtained.

次に、得られたコロニーの中から、10株(X−1〜X
−10)選び、これらの株が形質転換体であることを確か
めるために、プラスミドの有無をpUC19をプローブとす
るサザン法で確かめたところ、全ての菌株が染色体上に
pL4が挿入されており、5−5−5−トリフルオロ−D,L
−ロイシン耐性を用いて形質転換体が特異的に選択でき
ることが明らかとなった。
Next, from the obtained colonies, 10 strains (X-1 to X-
-10) To confirm that these strains were transformants, the presence or absence of the plasmid was confirmed by the Southern method using pUC19 as a probe.
pL4 has been inserted and 5-5-5-trifluoro-D, L
-It was revealed that transformants can be specifically selected using leucine resistance.

次に、これらの形質転換体のイソアミルアルコール生
成量を見るために、親株サッカロマイセス・セレヴィシ
エ(JCM1818)を対照として、SD5培地(5%グルコー
ス、0.67%イースト・ナイトロジェン・ベース)で一夜
培養した培養液に含まれる高級アルコールをヘッド・ス
ペース・ガスクロマトグラフィーにて測定したところ、
全ての株がイソアミルアルコール高生産性を獲得してお
り、親株の5〜50倍のイソアミルアルコールを生成し
た。第1表に、その結果を示す。
Next, in order to check the amount of isoamyl alcohol produced by these transformants, the parent strain Saccharomyces cerevisiae (JCM1818) was used as a control and cultured overnight in an SD5 medium (5% glucose, 0.67% yeast nitrogen base). When the higher alcohol contained in the liquid was measured by head space gas chromatography,
All the strains have acquired high productivity of isoamyl alcohol, and produced 5 to 50 times the isoamyl alcohol of the parent strain. Table 1 shows the results.

実施例2 pL4Tを用いた酵母の形質転換 実施例1(9)で得たプラスミドpL4T 10μgを用い
て、協会7号酵母の形質転換を行った。得られた形質転
換体は全てが5−5−5−トリフルオロ−D,L−ロイシ
ン耐性を獲得していた。次に、得られたコロニーの中か
ら、5株(T−1〜T−5)選び、これらの株が形質転
換体であることを確かめるために、プラスミドの有無を
pUC19をプローブとするサザン法で確かめたところ、4
株の菌株においてpL4Tが存在していることが確認され、
5−5−5−トリフルオロ−D,L−ロイシン耐性を用い
て形質転換体が特異的に選択できることが明らかとなっ
た。
Example 2 Transformation of yeast using pL4T Using 10 µg of the plasmid pL4T obtained in Example 1 (9), yeast of Association No. 7 was transformed. All of the obtained transformants had acquired 5-5-5-trifluoro-D, L-leucine resistance. Next, 5 strains (T-1 to T-5) were selected from the obtained colonies, and the presence or absence of the plasmid was determined to confirm that these strains were transformants.
When confirmed by the Southern method using pUC19 as a probe, 4
PL4T was confirmed to be present in the strain,
It was revealed that transformants can be specifically selected using 5-5-5-trifluoro-D, L-leucine resistance.

実施例3 LEU4DNA断片を用いた形質転換 pL4 100μgを制限酵素EcoR Iで切断し、ラムダ−フ
ァージのDNA(東洋紡社製)Hind III分解物の分子量を
基準にするアガロース電気泳動を行った。このアガロー
スにより6.5kbのDNA断片を文献5に記載の方法により回
収し、回収DNA10μg用いて協会7号酵母の形質転換を
行ない、形質転換体のうち10株(TF−1〜TF−10)のイ
ソアミルアルコール生成量を測定したところ、約半数の
株において、イソアミルアルコールが親株の3〜6倍に
増加していた。第2表にその結果を示す。
Example 3 Transformation Using LEU4 DNA Fragment 100 μg of pL4 was digested with a restriction enzyme EcoRI and subjected to agarose electrophoresis based on the molecular weight of lambda-phage DNA (manufactured by Toyobo) HindIII digest. A 6.5 kb DNA fragment was recovered from this agarose according to the method described in Reference 5, and 10 μg of the recovered DNA was used to transform No. 7 yeast, and 10 strains (TF-1 to TF-10) of the transformants were used. When the amount of isoamyl alcohol produced was measured, in about half of the strains, the amount of isoamyl alcohol increased 3 to 6 times that of the parent strain. Table 2 shows the results.

実施例4 協会7号酵母、形質転換酵母X−4(FERM P−1142
4)の2種類の酵母で清酒を醸造した場合の香気生成を
比較した。仕込は、1段仕込で行い、酵母は、酵母懸濁
液を用い(仕込水1mlあたり2×107個)、15℃一定で醗
酵させた。仕込配合を第3表に、生成酒の一般成分を第
4表に示す。
Example 4 Association No. 7 yeast, transformed yeast X-4 (FERM P-1142)
The aroma generation when sake was brewed with the two yeasts in 4) was compared. The preparation was performed in a single-stage preparation, and the yeast was fermented at a constant temperature of 15 ° C. using a yeast suspension (2 × 10 7 per 1 ml of charged water). Table 3 shows the blended ingredients and Table 4 shows the general components of the resulting sake.

上記結果から明らかなように、イソアミルアルコール
および酢酸イソアミルがそれぞれ親株の約4倍および3
倍に増加しており、また、官能検査においてもフルーテ
ィな華やかな香りが強く感じられた。
As is evident from the above results, isoamyl alcohol and isoamyl acetate were about 4 times and 3 times the parent strain, respectively.
The number increased twice, and the fruity and gorgeous scent was strongly felt in the sensory test.

通常、イソアミルアルコールを生成する経路において
は、α−イソプロピルリンゴ酸合成酵素(IPM)がロイ
シンによるフィードバック阻害を受けており、α−ケト
イソヴァレリアン酸からα−イソプロピルリンゴ酸に変
わる反応がロイシンによって阻害されている。しかし形
質転換酵母では、1コピー以上の変異型のLEU4の導入に
よりその阻害の解除と遺伝子の数の増加による酵素活性
の増加によりイソアミルアルコール量が増加したことを
明らかに示している。
Usually, in the pathway for producing isoamyl alcohol, α-isopropylmalate synthase (IPM) is subject to feedback inhibition by leucine, and the reaction of changing α-ketoisovaleric acid to α-isopropylmalic acid is performed by leucine. Has been inhibited. However, the transformed yeast clearly shows that the amount of isoamyl alcohol was increased by the introduction of one or more mutant forms of LEU4 to release the inhibition and to increase the enzyme activity due to the increase in the number of genes.

実施例5 ワイン酵母サッカロマイセス・セレヴィシエ(IAM427
4)および形質転換酵母X−4(FERM P−11424)の2種
類の酵母でワインを醸造した場合の香気生成を比較し
た。
Example 5 Wine yeast Saccharomyces cerevisiae (IAM427)
The aroma generation when wine was brewed with two yeasts, 4) and transformed yeast X-4 (FERM P-11424), was compared.

甲州ブドウ果汁にブドウ糖を補糖して、糖分24%に調
製した。この果汁1000mlにたいしてそれぞれの酵母を湿
菌体重量として2gを加え18℃で7日間醗酵させた。ここ
で得られたワインの成分を第5表に示す。
Koshu grape juice was supplemented with glucose to prepare a sugar content of 24%. To each 1,000 ml of the juice, 2 g of each yeast was added as a wet cell weight and fermented at 18 ° C. for 7 days. Table 5 shows the components of the wine thus obtained.

上記の結果からも明らかなように、X−4を使用した
ワインは、イソアミルアルコール及び酢酸イソアミルが
IAM4274のそれぞれ約3倍、2倍と高く、また、官能的
にも爽やかな芳香を有することが確認された。
As is clear from the above results, the wine using X-4 has isoamyl alcohol and isoamyl acetate.
It was confirmed that each of IAM4274 was about 3 times and 2 times as high as IAM4274, and that it also had a refreshing aroma functionally.

実施例6 焼酎酵母醸造協会焼酎2号および形質転換酵母X−4
(FERM P−11424)を使用して、第6表に示す仕込配合
で焼酎を製造した。第6表の仕込配合に、培養酵母を、
湿菌体重量として2g加え、1段仕込を行った。15℃で14
日間醗酵させた後、醪をロータリー・エバポレータで減
圧下で蒸留した。得られた焼酎の成分を第7表に示す。
Example 6 Shochu Yeast Brewing Association Shochu No. 2 and Transformed Yeast X-4
Using (FERM P-11424), shochu was produced according to the charge formulation shown in Table 6. Add the cultured yeast to the charge formulation shown in Table 6.
2 g was added as a wet cell weight, and one-stage charging was performed. 14 at 15 ° C
After fermentation for days, the mash was distilled under reduced pressure on a rotary evaporator. Table 7 shows the components of the obtained shochu.

上記結果から明らかなように、X−4を使用した焼酎
は、イソアミルアルコール及び酢酸イソアミル濃度が高
く、官能的にも新しいタイプの焼酎であった。
As is clear from the above results, the shochu using X-4 was high in the concentration of isoamyl alcohol and isoamyl acetate, and was a new type of shochu in terms of functionality.

実施例7 ビール酵母サッカロマイセス・ウバラム(IFO0565)
および形質転換酵母X−4(FERM P−11424)の2種類
の酵母でビールを醸造した場合の香気生成を比較した。
Example 7 Beer yeast Saccharomyces uvalam (IFO0565)
The aroma generation when beer was brewed with two types of yeasts, and transformed yeast X-4 (FERM P-11424), was compared.

麦芽160gに水1を加え、加熱糖化した後、濾過して
麦汁を得た。これにホップ2gを加え煮沸した後ホップを
除き、冷却後加水して全量を1とした。この麦汁1
にそれぞれの酵母を湿菌体重量として2g加え、15℃で10
日間醗酵した。ここで得られたビールの成分を第8表に
示す。
Water 1 was added to 160 g of malt, saccharified by heating, and then filtered to obtain wort. 2 g of hops were added thereto, and after boiling, hops were removed, and after cooling, water was added to bring the total amount to 1. This wort 1
2 g of each yeast as wet cell weight at 10 ° C at 15 ° C.
Fermented for days. Table 8 shows the components of the beer obtained here.

上記結果から明らかなように、X−4を使用したビー
ルは、イソアミルアルコール及び酢酸イソアミル濃度が
高く、官能的にも新しいタイプのビールであった。
As is clear from the above results, the beer using X-4 was high in the concentration of isoamyl alcohol and isoamyl acetate, and was a new type of beer in terms of functionality.

実施例8 市販パン酵母および形質転換酵母X−4(FERM P−11
424)を使用して、第9表に示す配合でパンを製造し
た。第9表の配合に、培養酵母を、湿菌体重量として2g
加え、30度で4時間醗酵させたのち、このパン生地を18
0℃のオープンで25分焼き、パンを製造した。パン中に
含まれる、香気成分を測定した結果を第10表に示す。
Example 8 Commercial baker's yeast and transformed yeast X-4 (FERM P-11
424) was used to produce bread with the composition shown in Table 9. In the composition shown in Table 9, 2 g of the cultured yeast was added as a wet cell weight.
In addition, after fermenting at 30 degrees for 4 hours,
Baking was carried out for 25 minutes in an open at 0 ° C. to produce bread. Table 10 shows the measurement results of the flavor components contained in the bread.

上記結果から明らかなように、X−4を使用したパン
はイソアミルアルコール濃度がパン酵母の10倍程度高
く、官能的にも新しいタイプのパンであった。
As is clear from the above results, the bread using X-4 had a concentration of isoamyl alcohol about 10 times higher than that of baker's yeast, and was a new type of bread from a sensory viewpoint.

〔発明の効果〕〔The invention's effect〕

本発明によると、酵母の形質転換において5−5−5
−トリフルオロ−D,L−ロイシン耐性を指標として形質
転換体のみを効率よく選択でき、これは異種遺伝子を導
入する場合のマーカーとすることができる。また、該耐
性遺伝子LEU4の組換えプラスミドまたはLEU4を含む遺伝
子断片のみを酵母に導入することによって、酵母の生成
するイソアミルアルコール量および酢酸イソアミル量を
増大させることができる。また、形質転換酵母を使用す
ることによって、芳香豊かな新しいタイプの種々の醗酵
飲食品を製造することができる。
According to the present invention, in yeast transformation, 5-5-5
-Only transformants can be efficiently selected using trifluoro-D, L-leucine resistance as an index, and can be used as a marker when introducing a heterologous gene. Further, by introducing only a recombinant plasmid of the resistance gene LEU4 or a gene fragment containing LEU4 into yeast, the amount of isoamyl alcohol and isoamyl acetate produced by yeast can be increased. In addition, by using the transformed yeast, various types of fermented foods and drinks of a new type that is rich in aroma can be produced.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

第1図はLEU4遺伝子の検出に用いた合成DNAの配列であ
る。第2図はファージλ−26にクローン化されたLEU4遺
伝子を含む6.5kbのEcoR I断片の制限酵素認識部位を示
す。第3図は、LEU4遺伝子を組み込まれたプラスミドの
地図を示す。
FIG. 1 shows the sequence of a synthetic DNA used for detecting the LEU4 gene. FIG. 2 shows the restriction enzyme recognition site of a 6.5 kb EcoRI fragment containing the LEU4 gene cloned into phage λ-26. FIG. 3 shows a map of a plasmid incorporating the LEU4 gene.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI C12N 1/19 C12N 1/19 C12Q 1/68 C12Q 1/68 A //(C12N 15/09 C12R 1:865) (C12N 1/19 C12R 1:85) (C12N 1/19 C12R 1:865) (72)発明者 安井 克弘 京都府京都市伏見区下鳥羽須釜町2番地 の1 (56)参考文献 特開 平4−117293(JP,A) (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12N 15/52 ──────────────────────────────────────────────────の Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code FI C12N 1/19 C12N 1/19 C12Q 1/68 C12Q 1/68 A // (C12N 15/09 C12R 1: 865) (C12N 1 / 19 C12R 1:85) (C12N 1/19 C12R 1: 865) (72) Inventor Katsuhiro Yasui 2-1, Shimo-Tobasugamacho, Fushimi-ku, Kyoto-shi, Kyoto (56) References JP-A-4-117293 ( JP, A) (58) Field surveyed (Int. Cl. 6 , DB name) C12N 15/52

Claims (8)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】5,5,5−トリフルオロ−D,L−ロイシン耐性
を有し、かつイソアミルアルコールおよび/または酢酸
イソアミル高生産能を有するサッカロマイセス属酵母の
染色体DNAから得られ両端にEcoR Iの切断点を有する約
6.5kbのDNAで、該EcoR I断片中に2箇所のPvu IIサイ
ト、2箇所のBamH Iサイト、1箇所のSph Iサイトおよ
び1箇所のXho Iサイトを有するDNA。
1. A chromosomal DNA of Saccharomyces genus yeast having resistance to 5,5,5-trifluoro-D, L-leucine and high productivity of isoamyl alcohol and / or isoamyl acetate. About having a cutting point
A 6.5 kb DNA having two Pvu II sites, two BamH I sites, one Sph I site and one Xho I site in the EcoR I fragment.
【請求項2】請求項1記載のDNAが組み込まれたプラス
ミド。
2. A plasmid into which the DNA according to claim 1 has been incorporated.
【請求項3】プラスミドが第3図に示すプラスミドマッ
プpL4またはpL4Tである請求項2記載のプラスミド。
3. The plasmid according to claim 2, wherein the plasmid is the plasmid map pL4 or pL4T shown in FIG.
【請求項4】請求項3記載のプラスミドを用いることを
特徴とする形質転換体検出法。
4. A method for detecting a transformant, comprising using the plasmid according to claim 3.
【請求項5】形質転換体をポジティブに選択することを
特徴とする請求項4記載の検出法。
5. The method according to claim 4, wherein the transformant is positively selected.
【請求項6】請求項3記載のプラスミドを用いて酵母を
形質転換してなる酵母の形質転換体。
[6] A yeast transformant obtained by transforming yeast using the plasmid according to [3].
【請求項7】酵母がサッカロマイセス属酵母である請求
項6記載の形質転換株。
7. The transformed strain according to claim 6, wherein the yeast is a Saccharomyces yeast.
【請求項8】ロイシンアナログ耐性を有するサッカロマ
イセス属酵母の染色体DNAから得られたLEU4遺伝子が組
み込まれた請求項3に記載のプラスミドあるいは同LEU4
遺伝子を含む請求項1に記載の染色体DNAで形質転換さ
れたサッカロマイセス属酵母を用いることを特徴とする
発酵飲食品等の製造法。
8. The plasmid or LEU4 according to claim 3, wherein the LEU4 gene obtained from chromosomal DNA of Saccharomyces yeast having leucine analog resistance is integrated.
A method for producing fermented foods and drinks, which comprises using a Saccharomyces yeast transformed with the chromosomal DNA according to claim 1 containing a gene.
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